猪繁殖_呼吸道综合征病毒_PRRSV_CH_1a株基因型鉴定

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猪的病毒性传染病——猪繁殖和呼吸障碍综合征

猪的病毒性传染病——猪繁殖和呼吸障碍综合征

猪的病毒性传染病——猪繁殖和呼吸障碍综合征概述猪繁殖和呼吸障碍综合征(Porcine reproductive and respiratorysyndrome, PRRS)是由猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒(PRRSV)引起的猪的一种高度传染性疾病,又称“猪蓝耳病”,本病以妊娠母猪的繁殖障碍(流产、死胎、木乃伊胎)及各种年龄猪特别是仔猪的呼吸道疾病为特征。

本病是20世纪80年代末发生于养猪业发达国家的一种病毒性疾病,在世界各国引发了空前的“流产风暴”,给世界养猪业造成巨大的经济损失,现已成为规模化猪场繁殖障碍和呼吸道疾病的主要疫病之一。

本病于1987年在美国首先发生,随后加拿大也报道了本病, 90年代初欧洲开始流行,在我国,本病首先于1995年底在华北地区规模化猪场发生,其后短短几年时问在我国大部分养猪地区流行。

本病曾称为“神秘猪病”、“新猪病”、“猪流行性流产和呼吸综合征”、“猪生殖与呼吸综合征”、“蓝耳病”、“猪瘟疫”等。

1991年,欧洲学者提出将本病命名为“猪繁殖与呼吸综合征”,1992年在美国的明尼苏达州召开的第一届国际研讨会正式采用该命名,也是世界动物卫生组织(OIE)正式定名。

OIE将该病列为B类传染病,我国也将其列为二类传染病。

病原猪繁殖与呼吸综合征病毒为单股正链RNA病毒,属套式病毒目、动脉炎病毒科(Arterividdae)、动脉炎病毒属(Arterivirus)。

呈球形,有囊膜,直径在40~60nm之间,表面有约5nm大小的突起。

核衣壳呈二十面体对称,直径为25~30nm。

无血凝活性,不凝集哺乳动物或禽类红细胞。

有严格的宿主专一性,对巨噬细胞有专嗜性。

病毒的增殖具有抗体依赖性增强作用,即在亚中和抗体水平存在的情况下,在细胞上的复制能力反而得到增强。

病毒在氯化铯中的浮密度为1.13~1.19g/mL,在蔗糖梯度中的浮密度为1.18~1.23g/mL。

病毒的稳定性受pH和温度的影响比较大。

猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)ORF5基因的变异分析

猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)ORF5基因的变异分析

*基金项目:国家重点基础研究发展规划(973)项目(No.G1999011901)。

高志强:1974年生,男,博士研究生。

**通迅作者。

Author for correspondence,E-mail:<yhanchun@>.收稿日期:2003-04-17接受日期:2003-05-12农业生物技术学报Journal of Agricultural Biotechnology 2004,12(3):283~287·研究论文·猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)基因的变异分析*高志强郭鑫查振林陈艳红杨汉春**(中国农业大学农业部预防兽医学重点开放实验室,北京100094)摘要:从河北、江西猪场中分离到3株猪繁殖与呼吸综合征病毒(HB-1(sh)/2002、HB-2(sh)/2002和JX-1/2002)。

采用RT-PCR 方法扩增其完整的基因片段,进行了序列测定,并与其它5个国内毒株的基因序列进行了比较和变异分析。

所有这些毒株的基因均编码200个氨基酸,推导的氨基酸相似性在88.2%~99.0%之间。

其中BJ-4、S1及J1间的相似性较高,在98%~99%之间;HB-1(sh)/2002,HB-2(sh)/2002,JX-1/2002及CH-1a 间的相似性为92%~96%之间。

根据基因核苷酸序列的遗传进化距离,这些毒株可分为两个亚群,BJ-4、S1和J1为一个亚群,与VR2332及疫苗毒株接近;HB-1(sh)/2002、HB-2(sh)/2002、JX-1/2002和CH-1a 为另一个亚群。

关键词:猪繁殖和呼吸综合征病毒;基因;变异分析Variation Analysis of the Gene of Porcine Reproductive andRespiratory Syndrome Virus (PRRSV )GAO Zhi-Qiang GUO XinCHA Zhen-Lin CHEN Yan-Hong YANG Han-Chun**(Key Laboratory of Preventive Veterinary Medicine ,Ministry of Agriculture ,China Agricultural University,Beijing 100094,China)Three porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRSV)isolates (HB-1(sh)/2002,HB-2(sh)/2002and JX-1/2002)were obtained from Hebei and Jiangxi Provinces'pig farms.A RT-PCR method was used to amplify the complete gene of the viruses.Variation analysis ofgene of the three isolates and other five published PRRSV isolates in China showed that all ofthese isolates belonged to American type,and percent identity of amino acid ranged from 88.2%to 99.0%.gene among BJ-4,S1and J1had higher similarity,sharing 98%~99%identity of the deduced amino acid.HB-1(sh)/2002,HB-2(sh)/2002,JX-1/2002and CH-1a showed 92%~96%identity among theirgene.Phylogenetic analysis suggested that these isolates could be dividedinto two subgroups according to the genetic distance.BJ-4,S1and J1belonged to one subgroup,which are more close to VR2332and vaccine strains,whereas HB-1(sh)/2002,HB-2(sh)/2002,JX-1/2002and CH-1a belonged to anothersubgroup.porcine reproductive and respiratory syndrome virus;gene;variation analysis猪繁殖与呼吸综合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus ,PRRSV)为动脉炎病毒科成员之一,可引起妊娠母猪流产、早产、产死胎、弱胎、木乃伊胎、仔猪和肥育猪的呼吸道症状。

猪繁殖与呼吸综合征病毒

猪繁殖与呼吸综合征病毒

高背景
抗原变异会影响结果
血清中和试验
( SN )
可检测期长
敏感性低 耗时 抗原变异会影响结果
酶联免疫吸附试 自动化操作 高品质 高背景
验 ( ELISA )
控制
(三)分子生物学诊断技术 1、RT-PCR 2、巢式PCR 3、原位PCR 4、RT-PCR-RFLP 5、核酸探针技术 直接检测病料组织中的病毒。
一、PRRSV的形态特征
1、套式病毒目 动脉炎病毒科 动脉炎病毒属
2、基本形态及核酸 病毒粒子呈卵圆形,直
径50~65nm。 核衣壳直径30~35nm,
呈二十面体对称。 有囊膜。 单分子线状单股正链RNA
病毒。
3、病毒蛋白有核衣壳蛋白(N, 分子质量120000u)和两种主要囊 膜蛋白(M和GP5)。
采用血清学抗体检测技术是应用最为广泛的实验室诊 断方法。
目前有4种不同的方法用于检测血清中的 PRRSV抗 体,包括:
方法
优点
缺点
间接免疫荧光抗 特异性高 早期诊断 抗原变异会影响结果
体试验 (IFA)
结果主观判定
免疫过氧化物酶 特异性高 敏感性高 结果主观判定
单层试验(IPMA) 早期诊断
猪繁殖与呼吸综合征病毒
(Porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)
猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)能引起猪 的一种高度传染性疾病,又称“猪蓝耳病”。 症状:
妊娠母猪的繁殖障碍(流产、死胎、木乃伊胎)。 各种年龄猪特别是仔猪的呼吸道疾病 。
解该病在猪场的活动状况。
(6)对发病猪场要严密封锁,对发病猪场周围的 猪场也要采取一定的防范措施,避免疫源扩 散。

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)PRRS,又称猪繁殖与呼吸综合征,猪蓝耳病,猪流行性流产----呼吸综合征,是近年来发现的一种病毒性传染病,给养猪业造成很大的经济损失。

本病主要引起母猪繁殖障碍,仔猪肺炎和断奶前后仔猪的死亡率增高,自1987年在美国,1990年在欧洲被发现后传播蔓延速度十分惊人,病毒分离和血清检查表明,PRRS现已传遍世界主要养猪国家。

1995年,我国在北京郊区首次暴发了PRRS,1996年以来,国内一些单位进行的流行病学和血清学调查证明,我国大部分省市都已有此病,且血清阳性率都很高,但呈地方性流行特征。

特别是2002年大有全国一片蓝的趋势。

针对PRRS的现状,各国都已引起高度重视,近年来在流行病学,免疫学及致病机理,实验室诊断技术,综合防制等方面开展了大量的调查研究工作,PRRS的诊断与防制尤其成为当前兽医研究的一个热点。

(--)病原PRRSV为一有囊膜的病毒,直径50---65nm,表面相对平滑,立方形核衣壳,核心直径25—35nm。

PRRSV对热敏感,这种敏感性提示用于病毒分离的血清和组织样品应保存在-20C下或4C条件下,以保护样品的感染性,用脂溶剂氯仿和乙醚处理以后,PRRSV失去活性。

北美和欧洲PRRSV分离株虽然不能凝集进行实验的各种红细胞,但最近的研究发现,部分毒株及用去污剂预处理的毒株可以表现出对一定动物红细胞的凝集性。

PRRSV具有严格的宿主特异性,最初是用猪肺泡巨噬细胞(PAM)及其它组织的巨噬细胞进行病毒的分离与鉴定的,在体外培养中,PRRSV可以在猪肺泡巨噬细胞(PAM)和非洲绿猴肾细胞(vero)及其衍生的细胞系如MARC—145,CL——2621中生长。

在肺泡巨噬细胞的培养物种加入PRRSV抗体后,可使病毒的复制增强,同样在病毒中加入PRRSV抗体后,其在妊娠期胎儿体内的复制也大为增强,这种现象称为抗体依赖性增强作用(ADE)其原因可能是病毒与抗体形成免疫复合物后借助细胞表面Fc受体与PAM结合,从而促进了病毒进入细胞。

猪繁殖与呼吸综合征

猪繁殖与呼吸综合征


公猪偶有发病,症状较轻,仅引起短暂的体温升高


保育猪主要表现为体温升高,呼吸困难,打喷嚏,精神不振,皮肤充血,


日增重减少等

育肥猪,偶有发病,主要表现为发热,暂时性呼吸症状,精神不振及厌食


临床 症状

母猪除了经典症状外,怀孕母猪几乎全部流产


性 猪
仔猪初期感染体温升高,随病情恶化,站立不稳,肌肉震颤,抽搐,后躯
2.野猪(自然感染宿主)
3.精液(公猪感染后,会通过精液长期排毒)
传播途径
14
接触.
节肢动物传播
垂直传播.
传播途径
人工授精
空气传播.
禽类粪便
流行特点
15
1.无明显季节性 2.初发地区呈爆发式,发生过的地区则流行缓和,多为散发 3.呈现“三高一低”的流行特点
危险因素
引种 1
购猪 3
16
毗邻感染猪群 5
猪繁殖与呼吸综合征
wanying
2021/8/14
1
目录
概述
病原学 流行病学
免疫致 病机理
临床症状 诊断防控
概述
猪繁殖与呼吸综合征是由 PRRSV引起的猪的繁殖障碍和呼 吸道症状的一种危害养猪业的 高度接触性传染病。猪繁殖与 呼吸综合征传染性强,流行范 围广,对养猪业可造成持久的 危害。
病原学
PRRSV为套式病毒目、动脉炎病毒科、动脉炎病毒属,为一 种有囊膜的单股正链RNA病毒,呈球形,直径约45-65nm,表面有 细小纤突。
病原学
非糖基化蛋白M,M蛋白
的大小为18-19KD,由
M
ORF6基因编码 .

猪繁殖与呼吸综合征病毒全基因组分子遗传特征分析

猪繁殖与呼吸综合征病毒全基因组分子遗传特征分析
息。
病毒基因组变异 可能导致疫苗免 疫效果降低
病毒基因组变异 可能导致疫苗免 疫效果持续时间 缩短
病毒基因组变异 可能导致疫苗免 疫效果产生耐药 性
病毒基因组变异 可能导致疫苗免 疫效果产生副作 用
基因组测序技术:二代测序、三代测序 等
基因组组装:利用生物信息学方法进行 基因组组装
基因变异分析:通过比对基因组序列, 分析基因变异
抗病毒药物的研发和应用,还可以为猪繁殖 与呼吸综合征病毒的预防和治疗提供新的手 段和方法,提高猪场的生产效益。
汇报人:
猪繁殖与呼吸综合征病毒 基因组遗传标记的定义和
作用
猪繁殖与呼吸综合征病毒 基因组遗传标记的分类和
特点
猪繁殖与呼吸综合征病毒 基因组遗传标记的检测方
法和技术
猪繁殖与呼吸综合征病毒 基因组遗传标记在疾病诊
断和研究中的应用
抗原性变异的定义:病毒 表面抗原发生变异,导致
免疫系统无法识别
抗原性变异的原因:病毒 基因突变、重组、插入、
基因功能预测:利用生物信息学方法预 测基因功能
基因组进化分析:通过比较不同物种 的基因组,分析基因组的进化关系
基因组数据可视化:利用生物信息学软 件,可视化基因组数据
基因测序:通过DNA测序技术,确定基因序列 基因分型:通过基因分型技术,确定基因型 基因突变检测:通过基因突变检测技术,确定基因突变 基因表达分析:通过基因表达分析技术,确定基因表达情况
病毒免疫逃逸:抗原变 异、免疫抑制等
病毒与宿主相互作用: 病毒感染、免疫应答、 免疫调节等
病毒基因组变 异:的能

变异与致病力 的关系:变异 可能导致致病 力的增强或减

研究意义:为 疫苗研发和疾 病防控提供依

猪繁殖与呼吸系统综合征病毒(PRRSV)CH-IR株单克隆抗体的制备

猪繁殖与呼吸系统综合征病毒(PRRSV)CH-IR株单克隆抗体的制备

叉 反 应 , 示 出 良好 的特 异 性 。连 续 培 养 2 后 能 稳 定 分 泌 抗 体 , 单 克隆 抗 体 的获 得 为 P R V 的 研 究 及 快 速诊 断 方 法 的 显 O代 此 R S
建 立 奠 定 了基 础 。
关 键 词 : 繁殖 与呼 吸障 碍 综 合 征 病 毒 ; 猪 酶联 免 疫 吸 附 试 验 ; 克 隆抗 体 单
收 稿 日期 :0 0 1 —9 2 1 — 00 作 者 简 介 : 海楠 ( 9 2 兰 1 8 一) 男 , , 吉林 人 , 士 , 究 方 向 : 博 研 细胞 生
1 2 病毒 增 殖 复 苏 Mac】 5细胞 , 细 胞 长至 。 r一4 待
单层 时 , 生长液 , 弃 用无 菌 P S液洗 2次 , B 接种 适量

7 ・ 4
生 物 技 术
中 国 畜 牧 兽 医 2 1 年 第 3 01 8卷 第 4期
猪 繁 殖 与 呼 吸 系 统 综 合 征 病 毒 ( RRS P V) C I 株 单 克 隆抗体 的 制备 H—R
兰 海 楠 孔 金 超 。 赵 小 丽 闫峰 李 维 赵 雪 郭 风 郑鑫 , , , , , , ,
中 图分 类 号 : 8 Q7 文献标识码 : A 文 章编 号 : 6 1 7 3 ( 0 1 0 — 0 40 1 7-2 62 1 )40 7-3
猪 繁殖 与呼 吸系统综 合征 病 毒 ( R V) 是 单 P RS , 股 正链 R NA 病毒 并伴 随 以严 重 的繁 殖 障碍 。猪 繁 殖 与呼 吸综合 征是 一 种 严重 的传 染性 疾 病 , 病 最 此 早 于 18 9 7年 发生于 美 国南 部 , 随后加 拿大 、 国 、 德 荷 兰 等一些 国家 也先 后 暴 发 了此 病 ( 安 雄 等 ,0 3 母 20 ;

猪繁殖与呼吸综合征的诊断

猪繁殖与呼吸综合征的诊断

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒引起的一种猪繁殖和呼吸障碍的传染性疾病。

母猪表现为流产、早产、死产、木乃伊胎及弱仔等。

仔猪和育肥猪则表现为呼吸困难。

仔猪发病率和死亡率很高,对养猪业构成了重大危害。

1临床症状妊娠后期母猪突然出现发热(可高达40℃以上),精神沉郁,嗜睡,食欲减退,呼吸困难,有些母猪发生流产、产死胎、木乃伊胎和弱仔。

仔猪临床症状明显,早产的仔猪当天或几天内死亡。

初生仔猪发热,喜扎堆,拉稀,多呼吸困难,呈腹式呼吸。

断奶仔猪主要表现呼吸困难、咳嗽、厌食,耳部及腹下皮肤发红,严重的耳尖发绀,病猪消瘦、贫血,最后死亡。

耐过的仔猪表现生长停滞,成为僵猪。

发病仔猪死亡率较高,达80%以上。

2病理变化剖检典型死亡病猪,主要表现为血液稀薄呈水样,淋巴结出血,肺脏水肿、充血、出血,有坏死灶,主要表现为间质性肺炎;肾肿大,有小出血点;肝脏肿大呈黄褐色;肠粘膜出血,肠系膜淋巴结水肿;部分在喉头、心外膜、膀胱粘膜有点状出血。

流产胎儿及弱仔剖检,可见头部、皮下水肿,胸腔内积有大量清亮液体。

根据上述症状和剖检变化初步诊断为猪繁殖与呼吸综合征。

为了进一步确诊,又进行了下列实验室检查。

3实验室诊断 3.1分子生物学诊断我们采用RT~PCR 的诊断方法:取PRRS病料(肺、淋巴结)组织研磨:应用TRIZOL细胞裂解液,按常规方法提取RNA;用下游引物进行反转录;用反转录产物cDNA进行PCR扩增(上游引物5′GCGGATCCATGCGATCTAACAAC3′;下游引物5′AGCGCGAGTCAGGCTAGGGAGGA3′),PCR反应条件为:94℃预变性3min,94℃变性1min,53℃退火1min,72℃延伸1min,30个循环后,72℃再延伸10min。

反应结束后,取PCR产物5μL在1%的琼脂糖凝胶中进行电泳。

结果扩增出大小为417bp左右的目的片段,与预期扩增417bp大小的片段相符。

猪繁殖与呼吸综合征 病理变化

猪繁殖与呼吸综合征 病理变化

猪繁殖与呼吸综合征病理变化猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是一种由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)引起的疾病,主要影响猪的繁殖力和呼吸系统。

下面将从病理变化的角度探讨猪繁殖与呼吸综合征的特征。

猪繁殖与呼吸综合征病毒主要通过呼吸道和性接触传播。

感染后,病毒首先侵入呼吸道上皮细胞和巨噬细胞,引发呼吸道症状。

在呼吸系统中,病理变化主要表现为肺泡炎、支气管炎和间质性肺炎。

肺泡炎主要表现为肺泡壁增厚、肺泡内炎细胞浸润和渗出物积聚。

支气管炎主要表现为支气管黏膜增厚、上皮细胞脱落和炎细胞浸润。

间质性肺炎主要表现为肺间质纤维化和炎细胞浸润。

这些病理变化导致猪出现咳嗽、打喷嚏、呼吸急促等呼吸道症状。

除了呼吸系统,猪繁殖与呼吸综合征病毒也会影响猪的生殖系统。

在母猪中,病毒可导致胎儿死亡、流产和畸形。

在公猪中,病毒可引起睾丸炎和精子减少。

这些病理变化导致了猪繁殖与呼吸综合征对养殖业的严重影响。

猪繁殖与呼吸综合征病毒的病理变化与其致病机制密切相关。

病毒侵入宿主细胞后,会引发宿主免疫系统的反应,包括炎症反应和免疫应答。

炎症反应导致炎细胞浸润和组织损伤,进而导致上述病理变化。

免疫应答则可能对病毒清除和宿主免疫保护产生影响。

除了病理变化,猪繁殖与呼吸综合征病毒还会影响猪的免疫系统。

病毒通过与宿主免疫系统的相互作用,抑制免疫细胞的功能,降低宿主免疫应答,从而使猪易于感染其他病原体。

此外,猪繁殖与呼吸综合征病毒还具有高度变异性,不同毒株之间存在较大的基因差异,这也增加了疫苗研发和预防控制的难度。

猪繁殖与呼吸综合征病毒引起的疾病具有明显的病理变化,包括肺泡炎、支气管炎、间质性肺炎以及生殖系统的损害。

这些病理变化严重影响了猪的繁殖力和呼吸系统功能。

深入了解病毒的病理变化有助于更好地预防和控制猪繁殖与呼吸综合征的传播和流行。

猪繁殖呼吸综合征病毒(PRRSV)SA毒株的分离与鉴定

猪繁殖呼吸综合征病毒(PRRSV)SA毒株的分离与鉴定
维普资讯
上海农业 学报
2 0 ,8 2 :6 9 0 2 1 ( )7  ̄7
Ac a A r c lu a h n h i t g iu t r e S a g a
文章 编 号 :003 2 (0 2 0 —60 10 —94 2 0 )27 —4
年代末发生的严重危害养猪业的一种新的病毒性传染病 , 以引起母猪繁殖障碍 、 猪和育成猪 仔
呼吸道症状和高死亡率为特征 。 自 18 97年北美首 次发现此病后 , 】至今十余年 来, R S P R 几乎传遍全球的养猪国家, 经济危害十分严重。19 年我国郭宝清报道 , 96 。 分离到猪繁殖呼 吸道综合征病毒( R S , P R V)证实 了我国太陆已存在 P R R S疾病的流行。19 年本课题组在上 97
为 P R V- 毒 株。 R S S
关键词
猪繁殖 呼吸综音征 ( R S ;s P R ) ^毒株 ; 分离 ;鉴定
文献标识码 : A
中圉分类 号 : 8 8 2 ;¥5 .5 S 5 .5 . S 5 8 8 2 6 ; 82 6 9 2
猪繁殖呼吸综合征 (oc erp dc v n si t ysn r ,P R ) 2 世纪 8 P rn r ut eadr p a r d me R S 是 0 i eo i e ro y o O
海地区继首先分离到 P R V . 毒株后 , R S S、 又分离到一株 P R V, R S 本文报道该项研究结果
l 材 料 与 方 法
1I 被检材料 来源于上海远郊某猪场外表健康的 1 . 5日龄仔猪。无菌采集肝 、 、 、培养液( M 含青 、 链霉素 10 U mL 制成 1 1 00 / ) :0的内脏悬液 , 冻融 3 次后 , 30 r n 经 00/ 离心 1mi后取上清液 , 一3℃冰箱保存 。 mi 0 n 置 O 12 细胞 与培养 P B K MA C15细胞 由本实验室提供。培养细胞 的营养液是含 , K、 H 2、 R -4 J 7 %~1%犊牛血清的 D 0 M卟 D M 粉末培养基购 自G B O公司) ( ME IC 。 I3 R S . P R V抗体 诊 断试 剂 盒 购 自美 国 Hedce DE X产 品 ,/ < 0 4为 阴性 ,/ ≥ r hk I X sP sp

猪繁殖与呼吸综合征病毒CH-1R株全基因组序列测定及遗传变异分析

猪繁殖与呼吸综合征病毒CH-1R株全基因组序列测定及遗传变异分析
的氨 基 酸 位 点 ,推 测 其在 毒 株 致弱 过 程 中起 到 了重 要 的作 用 。
关键 词 :猪繁 殖与 呼吸 综 合征 病 毒 ;全 基 因组 序 列分 析
中 : 10 —5 9 2 1 )70 1.5 0 80 8 ( 0 00 —5 20
Se u n ig a ay i o ule g h g n me o o cn e r d cie q e cn n lss ff lln t e o fp r ie r p o u t v a d r s i t r y d o e vr s CH一 sr i n e pr o y s n r m i a u 1 R tan
S 1 nd , r n —a g wA n — n , NG S uj , ig x n H -a L U Yo ggn , NG Ho gf g WA h -e MA Pn , u Mi, we e i
Jabi i — n.CAIXu — ui eh
( iiino wieIfc osDi ae, t eKe aoaoyo eeiayBoeh lg , abnVee nr eerhIstt o Dvs fS n net u s ss Sa yL b rtr fV tr r itcoo y H ri tr ayR sac tue f o i e t n i n i C ieeAcdmyo n utrl c n e, abn 10 0 , hn ) hn s a e f Ag c l a S i cs H ri 0 1 C ia u e 5
19位 。 其 中 P RS H 1 3 R V C .R株 的 Ns2蛋 白和 结 构 蛋 白的 变 异相 对较 大 , 尤其 是 Ns2蛋 白的 变异 , 同 C — p p Hl a株

猪繁殖与呼吸综合征病毒检测

猪繁殖与呼吸综合征病毒检测

猪繁殖与呼吸综合征病毒检测1 范围本标准规定了猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-LAMP检测原理、试剂和仪器设备、检测程序和结果判定。

本标准适用于猪临床样品(肺脏、脾脏和血清)和细胞培养物中猪繁殖与呼吸综合征病毒的检测;同时适用于猪繁殖与呼吸综合征病毒经典型、高致病性、类NADC30型三种基因亚型的分型检测。

2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。

凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。

凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改版)适用于本文件。

GB 19489 实验室生物安全通用要求GB/T 27401 实验室质量控制规范动物检疫。

NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范SN/T1193 基因检验实验室技术要求3 缩略语PRRSV: porcine reproductive and respiratory syndrome virus,猪繁殖与呼吸综合征病毒LAMP:loop-mediated isothermal amplification, 环介导的恒温扩增RT-LAMP:Reverse transcription, loop-mediated isothermal amplification,反转录环介导的恒温扩增。

4 原理猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)主要引起猪繁殖与呼吸综合征(俗称蓝耳病)。

该病毒有美洲型和欧洲型两个血清型。

美洲型又有多个基因亚型。

我国流行的美洲型PRRSV主要有传统型、高致病性和类NADC30型毒株,其主要区别存在于病毒的Nsp2基因。

环介导的恒温扩增(LAMP)是一种体外恒温核酸扩增技术,用于快速检测DNA。

RT-LAMP是一种逆转录LAMP,用于检测RNA。

本标准RT-LAMP,根据PRRSV开放阅读框架7(ORF7)基因序列、ORF1a(非结构蛋白Nsp2)基因序列设计4组引物,建立4种RT-LAMP检测方法(即LAMP1、LAMP2、LAMP3和LAMP4),其中LAMP1的特异性引物识别ORF7基因,LAMP2、LAMP3和LAMP4的特异性引物识别Nsp2基因。

猪繁殖与呼吸综合征研究进展

猪繁殖与呼吸综合征研究进展

猪繁殖与呼吸综合征研究进展猪繁殖与呼吸综合征是一种由高致病力的冠状病毒引起的猪类疾病,主要特点是高度致病性、迅速传播、临床症状严重。

近年来,随着对猪繁殖与呼吸综合征的研究不断深入,人们对该疾病的病原学、发病机制、流行病学等方面有了更为深入的了解。

本文将综述猪繁殖与呼吸综合征研究的进展。

首先,猪繁殖与呼吸综合征的病原学研究取得了重要进展。

通过病毒分离、基因序列分析等方法,已将该疾病的病原鉴定为猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)。

分子流行病学研究发现,PRRSV至少存在两个主要亚群,即欧洲亚群和美洲亚群,且存在较高的遗传变异率。

近年来,病毒亚群之间的基因重组事件越来越频繁,使得疫苗的设计与开发面临更大的挑战。

其次,在病原传播途径方面的研究也取得了一定进展。

猪繁殖与呼吸综合征主要通过两种方式传播,即直接接触和通过空气传播。

病毒在病猪体内主要定殖在单核细胞系,但也可通过唾液、粪便和尿液等分泌物和排泄物进行传播。

此外,病毒在猪场内环境中的存活时间较长,使得传播风险更高。

因此,加强猪场内环境卫生管理对于控制疾病传播具有重要意义。

最后,针对猪繁殖与呼吸综合征的预防和控制研究也在不断深入。

目前,该病的主要控制措施包括疫苗接种、生物安全措施和药物治疗等。

疫苗接种是目前预防猪繁殖与呼吸综合征的主要手段,但由于病毒变异率高,疫苗的保护效果存在一定局限性。

因此,研发针对该疾病不同亚群的疫苗仍然是当前的研究重点。

此外,加强生物安全措施,如限制人员流动、加强检疫和消毒工作,有效地控制了疾病的传播。

还有一些研究表明,采用抗病毒药物对病猪进行治疗也可以取得一定的效果,这对于控制疾病的严重程度具有一定的意义。

总之,随着对猪繁殖与呼吸综合征研究的不断深入,人们对该疾病的病原学、传播途径、预防和控制等方面有了更全面的认识。

然而,由于该疾病的病原特性和环境因素的影响,对其完全控制仍存在挑战。

因此,需要进一步加强对猪繁殖与呼吸综合征的研究,以期能够开发出更有效的防控措施,为猪产业的健康发展提供保障。

猪繁殖与呼吸道综合症(PRRS)综合防治技术

猪繁殖与呼吸道综合症(PRRS)综合防治技术

猪繁殖与呼吸道综合症(PRRS)综合防治技术作者:董江华齐文华朱才亚虞颉来源:《农家致富顾问·下半月》2015年第05期摘要:猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是近年来发现的一种急性、高度传染性的病毒性传染病。

因为其典型症状为猪耳根到耳尖部成蓝色,故又称之为蓝耳病。

猪蓝耳病已发现30余年,最早于1987年在美国的北卡罗来纳州首次爆发。

最初人们不能确定其病因,故此一度被称为“神秘病”。

1991年荷兰分离到该病的病原“LV”病毒株,欧盟提议将此病命名为“猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)”,1992年国际兽医组织将其定为B类传染病。

PRRS病毒分为欧洲型和美洲型两种,分别以1991荷兰分离的LV和1992年美国分离的VR-2332为代表毒株。

关键词:猪;繁殖;呼吸综合征;防治猪繁殖和呼吸障碍综合征病毒为单股正链RNA病毒,属套式病毒目,动脉炎病毒科,动脉炎病毒属。

不凝集哺乳动物或禽类红细胞,有严格的宿主专一性,对巨噬细胞有专嗜性。

病毒的增殖具有抗体依赖性增强作用,好在中和抗体水平存在的情况下,在细胞上的复制能力反而得到增强。

鉴于PRRS病毒的生物学特性和流行病学特征,目前要在一个PRRS流行的国家和地区消灭该病几乎无法完成,从长远观点看,这也将是一项非常艰巨的任务。

目前对于一些未使用过PRRS病毒疫苗的小型猪场,可以采用免疫学方法检测抗原或抗体,进行早期诊断,淘汰阳性猪;并且,用PRRS病毒阴性的公猪进行配种或用无PRRS病毒污染的精液进行人工授精。

1 材料与方法1.1 试验时间与地点试验时间为2011年11月12日到2012年5月10日,地点在安徽省宿松县中兴牧业有限公司养猪场,场内共有母猪505头,公猪12头、其中5头为后备公猪,采用人工授精技术,年出栏育肥猪约1万头以上。

1.2 试验材料PRRS疫苗为中牧实业股份有限公司成都药械厂生产的蓝耳病灭活疫苗;保健药物为中草药黄芪多糖(单方)针剂,由北京大北农公司生产;维生素E粉剂由上海三维制药有限公司生产。

猪繁殖与呼吸综合征病毒活疫苗

猪繁殖与呼吸综合征病毒活疫苗

猪繁殖与呼吸综合征病毒活疫苗猪繁殖与呼吸综合征病毒活疫苗(CH-1R株)1、高度安全性疫苗弱毒株,毒力不返强,安全,稳定可用于普免安全性试验:从2个方面检测该疫苗所用的PRRSCH-1R毒株的安全性:第一:毒力返强试验:选择对兰耳病毒最敏感的85-93胎龄的重胎母猪做试验,经猪继代3~4次后就很难在血清、鼻拭子检测到病毒核酸,试验母猪没有发生繁殖障碍等临床表现,说明PRRSCH-1R毒株的遗传性状是稳定的。

第二:对疫苗不同免疫剂量的安全性进行了检测,分别以单剂量重复免疫、10倍量大剂量免疫,对怀孕母猪和断奶仔猪的免疫结果观察,各批次疫苗免疫仔猪的临床症状和母猪的产仔情况均正常。

证明该疫苗对猪是安全。

2、超强免疫效力疫苗毒株为国内分离的美洲株。

与2006年“无名高热综合征”中兰耳病分离株同源性达98%以上。

更快启动保护,产生有效保护力。

免疫1周产生抗体,2周产生保护力,可用于紧急免疫。

疫苗效价高于105.0TCID50/头份。

免疫期可达4个月。

免疫保护试验:免疫后血清抗体的检测:免疫28~35日龄仔猪,免疫后7天将能检测到PRRSV 的IFA抗体,免疫后2周,80%以上的猪就可以获得保护。

最小免疫剂量和使用剂量:疫苗滴度达到104.0TCID50/头份的免疫剂量,即可完全保护仔猪和母猪抵抗强毒的攻击,为了确保疫苗的使用效果,我们将疫苗的使用剂量定为105.0TCID50/头份,而实际上我们的出厂标准定为106.0TCID50/头份,相当于100倍的最小免疫剂量。

免疫持续期:通过分别用3个以上批次的疫苗,分别免疫28~35日龄的仔猪和怀孕母猪1次,免疫后5个月,强毒攻毒,保护率为100%。

出于安全的考虑,我们将免疫保护期定为4个月。

3、低免疫应激性免疫健康猪群无体温升高、采食下降和影响增重现象。

猪繁殖与呼吸综合征灭活疫苗(Ch-1a株)安全性好由于繁殖与呼吸综合征灭活疫苗的本身性质决定了该苗具有良好的安全性,该苗选用国内分离毒株(CH-1a株),该毒株是经Marc-145细胞系传代、多次克隆纯化,筛选出嗜Marc-145细胞生长的PRRSV毒株,该毒株的细胞培养液经化学试剂灭活后,配以医用油佐剂,制成了繁殖与呼吸综合征灭活疫苗。

猪繁殖与呼吸综合征病毒遗传变异分析及DNA疫苗的初步研究

猪繁殖与呼吸综合征病毒遗传变异分析及DNA疫苗的初步研究

猪繁殖与呼吸综合征病毒遗传变异分析及DNA疫苗的初步研究猪繁殖与呼吸综合症(porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合症病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus, PRRSV)感染引起的以怀孕母猪繁殖障碍及各年龄段猪呼吸道疾病为主要特征的猪传染病。

2006年,我国爆发了高致病性PRRS,给我国养猪业造成巨大的经济损失。

PRRSV具有高度变异性,研究发现:高致病性PRRSV和传统PRRSV毒株存在很大差异。

其中高致病性PRRSV在Nsp2上普遍存在不连续的30个氨基酸的缺失,ORF5也是变异最大的基因之一,ORF7是较为保守的基因。

本研究设计了三对PRRSV特异性引物,分别扩增4株PRRSV毒株的ORF5, ORF7和Nsp2基因,并克隆至pMD-18T载体上,测序得到基因序列。

利用分子生物学软件对测得的序列及一些国内外分离株序列进行比较,分析病毒分子遗传变异规律。

序列分析表明:4个分离株ORF5基因核苷酸序列同源性为89.4%~99.5%;ORF7基因的核苷酸序列同源性为94.1%-100%;Nsp2基因核苷酸序列同源性83.3%~99.7%。

遗传进化树分析表明:HB毒株与国内疫苗株CH-1a高度同源;DL-US毒株与美洲型代表毒株VR-2332高度同源;JX毒株Nsp2缺失30个氨基酸,与国内报道的高致病性PRRSV毒株JXA1毒株高度同源,与传统毒株VR-2332差异较大。

DL-TB毒株Nsp2基因与传统毒株CH-1a同源性最高,但ORF5以及ORF7基因却与高致病毒株具有很高的同源性,由此推测DL-TB毒株可能是高致病性PRRSV 毒株和传统毒株发生重组后的变异株。

PRRSV分子流行病学研究表明:与传统毒株相比,高致病性的PRRSV毒株,在基因水平上发生了较大的变异,在临床症状上具有更高的致病性和死亡率,能够产生更大的危害。

猪繁殖与呼吸综合征病毒山东株的分离鉴定

猪繁殖与呼吸综合征病毒山东株的分离鉴定
中图 分 类 号 :¥ 5 . 5 . 8 26 96 文献标识 码 : A
I oa i n a d l e tfc to fPo cn p o u t e a d s l to n d n iia i n o r i eRe r d ci n v
Re p r t r y d o e Vi u D t r i s ia o y S n r m r sS S a n
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猪繁殖与呼吸综合征流行特征与问题分析

猪繁殖与呼吸综合征流行特征与问题分析

摘要:猪繁殖与呼吸综合征又称猪蓝耳病,是由猪繁殖与呼吸综合征病毒引起以母猪繁殖障碍、仔猪呼吸道疾病为主要特征的急性接触性传染病。

本文围绕猪繁殖与呼吸综合征流行病学特征,重点阐述了其病毒的变化趋势和典型临床表现,分析生产实践中的防控难点与对策,以期为广大养猪户预防和控制该病提供理论指导。

关键词:猪繁殖与呼吸综合征;蓝耳病;疫病防控;美洲株;欧洲株猪繁殖与呼吸综合征流行特征与问题分析张希胜(临沂市河东区葛沟畜牧兽医站山东临沂276000)doi:10.3969/j.issn.1008-4754.2024.03.0141前言猪繁殖与呼吸综合征(porcine reproduction and respiratory ,PRRS ),俗称猪蓝耳病。

母猪以发情滞后、坐胎率低、怀孕后期流产、死胎和弱胎为特征。

流产率可达30%以上。

乳猪和断乳仔猪以严重呼吸道疾病和高死亡为特征,发病率可达100%。

自1987年在美国中西部首次暴发[1,2],分别于1991年和1992年分离到该病病原———欧洲型和美洲型的PRRSV [3,4]。

1990—1991年间仅在欧洲所暴发的毁灭性流行,就造成了100万头以上猪的死亡,被形象地称为“流产风暴”,目前已呈现世界性分布[5],90年代中期PRRS 先后在亚洲的菲律宾、日本、韩国及中国台湾省暴发。

因为PRRSV 容易出现变异,使得该病在流行形式和危害程度等方面均发生了变化,对控制和扑灭措施提出了严峻挑战。

本文围绕猪繁殖与呼吸综合征流行特征,阐述了其典型临床表现,分析生产实践中的防控难点,以期为本病防控提供参考。

猪繁殖与呼吸综合征危害全球养猪业的健康发展。

据不完全统计,本病每年在北美地区造成经济损失超过6.6亿美元[5]。

在我国,猪繁殖与呼吸综合征发展历程典型(表1),已传遍整个大江南北,严重威胁着养猪业的健康发展。

2020年,中国农业大学杨汉春教授对472个猪场的39173份血清抗体的监测结果表明,只有0.6%的猪场是猪蓝耳病阴性场,阳性率高达99.4%,且PRRSV 还在不断变异,防控难度不断加大,该病毒病已经成为当前养殖场最重要的疾病。

猪繁殖 - 呼吸道综合征病毒(PRRSV)CH-1a株基因型鉴定

猪繁殖 - 呼吸道综合征病毒(PRRSV)CH-1a株基因型鉴定

猪繁殖 - 呼吸道综合征病毒(PRRSV)CH-1a株基因型鉴定仇华吉;郭宝清;童光志;刘文兴;于力【期刊名称】《中国兽医学报》【年(卷),期】1998(18)2【摘要】根据猪繁殖-呼吸道综合征病毒(PRRSV)美洲型毒株和欧洲型毒株的基因组序列设计合成了2对引物,即1008PS/1009PR和1010PLS/1011PLR。

我国分离的CH-1a株用这2对引物均能扩增出与预期大小相符的RT-PCR产物,分别与美洲型代表株(VR-2332)的RT-PCR产物大小相当。

特异性试验表明,这2对引物均不能扩增其他常见的繁殖障碍相关病毒的RNA或DNA以及未感染的MARC-145细胞RNA。

间接免疫荧光试验也证明,CH-1a株与PRRSV核衣壳蛋白特异性单克隆抗体以及美洲型毒株抗血清均呈阳性反应。

因此初步证实CH-1a株为美洲型PRRSV。

【总页数】4页(P118-121)【关键词】猪;PRRSV;RT-PCR;基因型【作者】仇华吉;郭宝清;童光志;刘文兴;于力【作者单位】中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室【正文语种】中文【中图分类】S852.65;Q78【相关文献】1.猪繁殖呼吸综合征病毒(PRRSV)SA毒株的分离与鉴定 [J], 张婉华;叶向阳;祁贤;朱永军;陆鑫芳2.shRNA抑制猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)JXA1-R株在Marc-145细胞中复制及抗PRRSV细胞株的建立 [J], 李红梅;贺聪;张茂;孟轩;张建峰;张健騑;郭鹏举3.一株不能被高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒(HP-PRRSV)疫苗抗血清中和的HP-PRRSV的分离鉴定 [J], 陈家锃;白云;常丹;张秋月;王倩;冷超粮;张武超;赵鸿远;叶超4.表达猪繁殖与呼吸综合征病毒CH-1a株核衣壳蛋白重组鸡痘病毒的构建 [J], 智海东;王云峰;张晶;王玫;刘娣;童光志5.猪生殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)CH-1a株非结构基因的分子克隆及其基因特征的研究 [J], 刘光清;仇华吉;蔡雪晖;钱平;薛强;童光志;郭宝清因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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第18卷第2期中 国 兽 医 学 报Vol.18,No.2 1998年3月Chinese Journal of Veter inary Science M arch1998猪繁殖-呼吸道综合征病毒(PRRSV)CH-1a株基因型鉴定仇华吉 郭宝清 童光志* 刘文兴 于 力 (中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室,哈尔滨150001)摘要 根据猪繁殖-呼吸道综合征病毒(P RRSV)美洲型毒株和欧洲型毒株的基因组序列设计合成了2对引物,即1008P S/1009PR和1010PL S/1011P L R。

我国分离的CH-1a株用这2对引物均能扩增出与预期大小相符的RT-PCR产物,分别与美洲型代表株(V R-2332)的RT-P CR产物大小相当。

特异性试验表明,这2对引物均不能扩增其他常见的繁殖障碍相关病毒的RN A或DN A以及未感染的M A RC-145细胞R N A。

间接免疫荧光试验也证明,CH-1a株与P RRSV核衣壳蛋白特异性单克隆抗体以及美洲型毒株抗血清均呈阳性反应。

因此初步证实CH-1a株为美洲型P RRSV。

关键词 猪繁殖-呼吸道综合征病毒 RT-P CR 基因型中图分类号 S852.65 Q78 近年来,猪繁殖-呼吸道综合征(porcine re-pro ductive and r espiratory syndr ome,PRRS)在亚太国家和地区呈蔓延之势[1~3]。

在国内,原因不明的猪繁殖障碍综合征早已存在,并造成重大经济损失。

1996年,郭宝清等[4]从国内疑似PRRS 流产胎儿分离出PRRS的病原PRRS病毒(PRRSV),首次确认了PRRS在中国大陆的存在。

PRRSV为单股正链RNA病毒,其基因组含有8个开放阅读框架(ORF)[5],其中ORF7编码保守的15000核衣壳蛋白(N)[6]。

PRRSV分离株间存在很大变异,可区分为2种基因型,即欧洲型(代表株为Lely stad病毒,LV)和美洲型(代表株为AT CC VR-2332株)。

CH-1a株系从暴发PRRS的国内某猪场分离的一株PRRSV。

为了确定国内毒株的基因型类型,以便为PRRS的诊断与防制提供依据,我们应用RT-PCR对PRRSV CH-1a株进行了鉴定,并结合间接免疫荧光(IIF)试验证实了CH-1a株属于美洲型。

1 材料与方法1.1 病毒 PRRSV AT CC VR-2332株和LV *通讯作者 本文收到日期:1996-09-09株(分别由Dr D A Benfield和Dr G W ensv oort 惠赠),分别用作美洲型和欧洲型参考毒株;CH-1a株由本所分离,按已报道的方法用M ARC-145细胞(由Benfield惠赠)培养[7]。

猪瘟病毒(HCV)石门株(由黄骏明副研究员惠赠)、猪伪狂犬病病毒(PrV)Bartha株(由李亚香副研究员惠赠),分别用作RN A病毒和DNA病毒对照毒株。

1.2 RT-PCR1.2.1 RNA抽提 病毒培养物收毒后冻融3次,以6300r/min4℃离心30m in(Beckman JA 20.1转子),弃沉淀,上清液以27000r/min4℃离心2h(Beckman WS-28转子),弃上清,病毒粒子沉淀(除PrV核酸选用DNA抽提法外)均用异硫氰酸胍-酚-氯仿一步法[8]抽提病毒RNA, RNA悬浮于DEPC处理水中。

1.2.2 引物 根据PRRSV IAF-ex p91株(美洲型)基因组ORF7序列设计1对引物1008PS/ 1009PR,上游1008PS序列为5′TAAAT AT GC-CAAAAACAAC3′,下游1009PR序列为5′T AGGTGACT TAGAGGCACA3′,预期扩增产物大小为468bp。

根据PRRSV LV株基因组3′末端序列设计1对引物1010PLS/1011PLR,上游1010PLS序列为5′AT GGCCAGCCAGTC-AAT CA3′,下游1011PLR序列为5′TCGCCC-TAAT T GAAT AGGT G3′,预期扩增产物为433bp。

1.2.3 反转录(RT) 总RNA10L L加25 pm ol/L下游引物,70℃变性10min,立即冰浴致冷。

cDNA合成反应为50L L,含1×cDNA第一链缓冲液、10mmol/L DT T、1m mol/L各dNT P、400U鼠源反转录酶(Life Technolog ies, Inc产品)和40U RNasin(华美公司产品),37℃温育1h。

反转录产物94℃加热5min灭活反转录酶。

1.2.4 PCR PCR反应总体积为50L L,含cD-NA10L L、1×PCR缓冲液、0.2m mol/L dNTP、上下游引物25pmo l/L、1U T aq酶(原平公司产品),加一层石蜡油,按下列程序进行PCR反应: 95℃5min,94℃1min,55℃1min,72℃2min,共35个循环;72℃延伸10min。

PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳检查,紫灯下观察、照相。

1.3 间接免疫荧光(IIF)试验 用PRRSV AT CC VR-2332株、NVSL株(由Dr M L Frey 惠赠)和CH-1a株分别接种M ARC-145细胞,出现CPE后,制备细胞涂片,用针对N蛋白保守表位的单抗SDDW-17(由Benfield惠赠)、VR-2332和NVSL抗血清以及HCV、PrV、PPV和HEV 抗血清,按以往的方法[9]进行IIF试验。

2 结果2.1 RT-PCR CH-1a株、VR-2332株用2套引物均能扩增出预期大小的RT-PCR产物,并且产物大小分别相近;而对LV株,仅1010PLS/ 1011PLR能扩增出预期大小的产物,1008PS/ 1009PR则无特异性扩增条带;HCV、PrV及未接种的M ARC-145细胞用RT-PCR检验均无扩增产物(附图),表明CH-1a与VR-2332的基因组具有很高的同源性。

2.2 IIF 单抗SDOW-17以1∶5000稀释对CH-1a、VR-2332和NVSL细胞培养物进行IIF 检测,均呈强阳性胞浆荧光,对照细胞(未接种的M ARC-145细胞)则为阴性,表明该单抗可识别PRRSV2种基因型的保守性抗原表位;用V R-2332和NVSL抗血清对CH-1a进行IIF试验,间接免疫荧光滴度均达1∶80,而PrV、HCV、PPV 和HEV抗血清对CH-1a和未接种的M ARC-145细胞用IIF试验均呈阴性(附表),表明CH-1a与美洲型毒株有共同抗原。

附图 PRR SV CH-1a、VR-2332、L V株及HCV、P rV和未接种的M A R C-145细胞用引物对1008P S/1009PR和1010PL S/1011P L R的RT-PCR结果1.100bp DN A L adder(Gibco BR L);2.CH-1a1010PL S/1011PL R; 3.CH-1a1008P S/1009PR;4.V R-23321010PL S/1011PL R;5.VR-23321008PS/1009P R; 6.L V1010PL S/1011P LR;7.LV1008P S/1009P R;8.HCV1010P L S/1011PL R;9.Pr V1010P L S/1011PL R;10.M A RC-145细胞1010PL S/1011P L R;11.ddH2O1010PL S/1011PL R;12.100bp D NA L adder附表 PRRSV SDOW-17单抗及VR-2332、NVSL、HCV、PrV、PPV和HEV抗血清用IIF试验对CH-1a、VR-2332和NVSL及未接种的M ARC-145细胞试验结果单抗或抗血清CH-1a VR-2332NVS L对照细胞S DOW-17(1∶5000)###-VR-2332抗血清1∶801∶801∶80-NVSL抗血清1∶801∶801∶80-HCV抗血清--PrV抗血清--PPV抗血清--HEV抗血清--3 讨论 RT-PCR以其敏感特异、快速简便的优点而被广泛用于RNA病毒的检测[10~12]。

该方法不仅可以用于PRRSV的检测[13,14],而且根据引物的特异性还可用来鉴定PRRSV的基因型。

本研究所用的引物1008PS/1009PR是根据IAF-ex p91株(美洲型)基因组N基因设计合成的,用它只能扩增美洲型ORF7片段,而不能扩增欧洲型119第2期仇华吉等:猪繁殖-呼吸道综合征病毒(PRR SV)CH-1a株基因型鉴定ORF7片段,具有型特异性;1010PLS/1011PLR 是根据LV株3′末端ORF7的保守序列设计的,它兼能扩增美洲型和欧洲型毒株的特定序列,因而具有通用性。

2套引物合并应用,可用于PRRSV分离株的基因型鉴定。

根据RT-PCR试验结果,可以确定CH-1a株属于美洲型。

据报道[15],欧洲型与美洲型毒株间存在相当大的抗原差异。

美洲型毒株虽与欧洲型毒株抗血清有交叉反应,但与之相反的是,欧洲型毒株与美洲型毒株抗血清不发生交叉反应。

IIF试验结果显示,CH-1a株与美洲型毒株的抗血清有交叉反应,这从另一方面佐证了上述结论。

PRRSV是如何传入我国的尚不清楚。

根据本研究结果推测,国内毒株与美洲毒株有很高的同源性,很可能来自北美洲,这与我国同该地区频繁的贸易往来和密切的人员互访有极大关系。

尚需进一步探讨国内毒株与美洲毒株的分子病毒学关系。

今后我国PRRS的检测与防制应重点针对美洲型毒株采取相应措施,并加强对欧洲地区输入产品的检疫,防止欧洲型毒株的传入而使PRRS防疫工作复杂化。

(本研究得到阎玉河博士、张绍杰硕士、王柳助理研究员、王玫同志、王莉同志和张伟华硕士的大力支持,谨致谢忱)参 考 文 献1 Wensvo or t G.P or cine r epr oduct ive and r espirato r y sy ndr ome.In:P ro ceeding s of the13th Inter na tio nal P ig V et erinar y So ciety Co ngr ess.1994.11~142 Chang C C.Po rcine r epr oduct ive and r espirato ry sy n-dro me in T aiwa n.J Chin So ci V et Sci,1993,19(4): 268~2703 Shimizu M.Isolatio n of repr oductive a nd r espirato r y sy ndr ome v ir us fr om pigs w it h Heko Heko disease.J V et M ed Sci,1995,56(12):389~3914 郭宝清,陈章水,刘文兴等.从疑似PR RS流产胎儿分离PRR SV的研究.中国畜禽传染病,1996,2:1~4 5 M eulenber g J J M,Hulst M M,De M ijer E J et al.L elystad virus,the causative agent of por cine epidem-ic abor tio n and r espir ato ry syndro me(P EAR S),isr elated t o L DV and EA V.V ir olo gy,1993,192:62~726 M eulenberg J J M,Besten A P,De K luy ver E P et al.Char acterizat ion of pro teins encoded by O RF s2t o 7of L elystad virus.V ir olo gy,1995,206:155~163 7 Kim H S,K w ang J,Yo on I J et al.Enhanced replica-tion of po rcine repr oductive and respir ato ry sy ndro m (PR RS)v ir us in a homo geneous subpo pulatio n of M A104cell line.A rch V ir io l,1993,133:477~483 8 Chomczynsky P Y,Sacchi N.Sing le-step method of R N A isolatio n by acid g uanidium thio cy anate-phenol-chlor ofo rm ex traction.A nal Bio chem,1987,162: 156~1599 郭宝清,陈章水,刘文兴等.应用间接免疫荧光法从国内生殖障碍综合征猪群中检测P RRS阳性抗体的研究.中国兽医科技,1996,26(3):3~510 A ndr easo n J R Jr,Jackw o od M W,Hilt D A.Po ly-merase chain r eact ion amplification of t he genome of infectio us bro nchitis virus.A v ian Dis,1991,35: 216~22011 Chirnside E D,Spaan W J M.Rever se t ranscription and cDN A amplification by the poly merase chain r e-actio n of equine art erit is vir us(EAV).J Viral M etho ds,1990,30:133~14012 Hy ypia T,Auv inen P,M aa ro nen M.Poly merase chain r eactio n fo r human picor nav ir uses.J Gen Vi-ro l,1989,70:3261~326813 Su′a r ez P,Zardoy a R,Pr ieto C et al.Dir ect detec-tio n of the por cine r epr oduct ive and respir ato ry sy n-dr ome(PR RS)v ir us by r ever se tr anscr iption po ly-merase chain r eactio n(RT-PCR).A r ch V iro l, 1994,135:89~9914 M ar dassi H,Wilson L,M ounir S et al.Detectio n of por cine repr oductive and r espir ato ry syndro me v irus and efficient differentiatio n betw een Canadian and Euro pean str ains by r ever se t ranscription and P CR amplificatio n.J Clin M icr obio,1994,32:2197~220315 Wensvo or t G,D e K luy ver E P,L uijtze E A et al.A nt ig enic compar ison of L ely st ad virus a nd sw ine in-fertility and respira tor y syndr om e v ir us.J V et Diagn Invest,1992,4:134~138120中 国 兽 医 学 报1998年Genotyping of Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus Strain CH -1a Isolated in China by RT -PCR and Indirect Im -munofluorescence TestQiu Huaji Guo Baoqing To ng Guangzhi * Liu Wenx ing Yu Li(State K ey L ab o f V et B iotechnology ,H arbin V et Res Inst ,CA AS ,H arbin 150001) Abstract CH-1a iso lated from an outbreak of PRRS in a pig farm in China.T w o sets of olig onu-cleotide primers ,1008PS /1009PR and 1010PLS /1011PLR w ere desig ned acco rding to the sequences of PRRSV strain IAF -exp 91and LV (Euro pean pro to ty pe )to determine the g enotype of the PRRSV strain.The r esults show ed that PRRSV strain CH-1a could be amplified using either primer pair by RT -PCR,yielding a sing le band of the predicted size after agarose gel electrophor esis,to be sim ilar in size to the products of str ain VR -2332.No amplification w as o bser ved w hen RNAs w er e ex tracted fr om hog cholera virus (HCV )and uninfected M ARC-145cells or DNAs from pseudorabies virus (PrV).MA RC-145cells infected with strain CH-1a w ere show n to r eact w ith antiser a against strains VR-2332and NVSL (Am er ican isolate)by indirect imm unofluorescence staining.Thus,it is conclud-ed that the Chinese PRRSV strain CH -1a belong s to Am er ican genotype . Key words PRRSV;RT -PCR;g enotype *cor r esp onding author121第2期仇华吉等:猪繁殖-呼吸道综合征病毒(PRR SV )CH -1a 株基因型鉴定。

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