实验四电导率仪法测定活体植物根系的抗逆性

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植物抗逆性测定实验报告

植物抗逆性测定实验报告

植物抗逆性测定实验报告研究背景植物在不同的环境条件下,会受到各种逆境的影响,如高温、低温、干旱、盐碱等。

因此,了解植物的抗逆性是重要的,可以帮助人们选择适应特定环境条件的植物品种,提高农作物的产量和质量。

实验目的本实验旨在通过测定植物在不同逆境条件下的生理指标来评估植物的抗逆性能。

实验材料和方法材料- 拟南芥(Arabidopsis thaliana)幼苗- 温度调节装置- 盐溶液(0.2 M NaCl)- 干旱处理装置- 水分测定仪- 叶绿素测定仪- MDA(丙二醛)含量检测试剂盒方法1. 种植拟南芥幼苗在适宜的温度下,以确保正常生长。

2. 将一部分幼苗移至温度调节装置中,分别设置不同温度条件(如25C、35C、45C),并持续一定时间(如24小时)进行热处理。

3. 将另一部分幼苗浸泡在0.2 M NaCl溶液中,经过一定时间(如24小时)进行盐胁迫处理。

4. 将第三部分幼苗置于干旱处理装置中,断水一定时间(如48小时)进行干旱处理。

5. 分别收集处理后的植株,测量其叶片的水分含量、叶绿素含量和MDA含量。

实验结果经过不同逆境处理后,收集了拟南芥幼苗的数据如下:处理条件水分含量(%)叶绿素含量(mg/g)MDA含量(μmol/g)- -控制组90.2 2.35 0.12热处理组85.6 1.98 0.25盐胁迫组88.9 2.12 0.18干旱处理组80.5 1.45 0.36结果分析通过数据分析,我们可以得到以下结论:1. 在高温处理条件下,拟南芥幼苗的水分含量显著降低,叶绿素含量略有下降,而MDA含量明显增加。

这表明高温胁迫会导致植物脱水、叶绿素降解和细胞膜脂质过氧化。

2. 盐胁迫处理导致拟南芥幼苗的水分含量有所增加,叶绿素含量略有下降,MDA含量有轻微增加。

这表明适量的盐胁迫可以促进植物水分的吸收和保持,但高浓度的盐会对植物造成一定程度的伤害。

3. 干旱处理导致植物的水分含量显著降低,叶绿素含量明显下降,而MDA含量显著增加。

植物电导率的测定

植物电导率的测定

四、实验结果级分析
• 伤害率可以用下列三种形式表示: 伤害率可以用下列三种形式表示:
伤害率 = 处理电导率 − 对照电导率 ×100% 煮沸电பைடு நூலகம்率 − 对照电导率
伤害率 =
处理电导率 × 100% 煮沸电导率
伤害率 =
处理电导率 ×100% 对照电导率
• 试比较不同处理的叶片细胞透性的变化情 记录结果,并加解释。 况,记录结果,并加解释。
三、实验步骤
4.将准备好的三份材料放入真空干燥器, 4.将准备好的三份材料放入真空干燥器,用抽气机抽气 将准备好的三份材料放入真空干燥器 15min左右,以抽出细胞间隙中的空气; 15min左右,以抽出细胞间隙中的空气;重新缓缓放入空 左右 气,水即被压入组织中而使叶下沉。 水即被压入组织中而使叶下沉。 5.将抽过气的材料取出,放在实验桌上静置20min,然后用 5.将抽过气的材料取出,放在实验桌上静置20min, 将抽过气的材料取出 20min 玻棒轻轻搅动叶片, 20~25℃恒温下, 玻棒轻轻搅动叶片,在20~25℃恒温下,用电导仪测定溶 恒温下 液电导率。 液电导率。 6.测过电导率的之后,再放入100℃沸水浴中15min, 6.测过电导率的之后,再放入100℃沸水浴中15min,以杀 测过电导率的之后 100℃沸水浴中15min 死植物组织,取出放入自来水冷却10min, 20~25℃恒 死植物组织,取出放入自来水冷却10min,在20~25℃恒 10min 温下测其煮沸电导率。 温下测其煮沸电导率。
二、材料、仪器设备及试剂
材料:小麦、 1. 材料:小麦、女贞叶片 仪器设备: 2. 仪器设备: 电导仪;天平;温箱;真空干燥器; 电导仪;天平;温箱;真空干燥器; 抽气机;恒温水浴锅;注射器; 抽气机;恒温水浴锅;注射器; 试剂: 3. 试剂:无

电导法测抗寒性实验报告

电导法测抗寒性实验报告

用电导法测定果树的抗寒性一、 测定原理自Dexter 首次用电导法测定植物的抗冻性以来,有人不断提出可以根据膜选择透性的变化情况作为鉴定植物种或品种抗寒力的指标,经过逐步改进和日趋完善,目前在抗寒性研究中已被广泛应用。

细胞膜既是分隔细胞质和胞外成分的屏障,又是细胞与环境发生物质交换的主要通道,也是细胞感受低温胁迫最敏感部位,而低温胁迫对植物的伤害是多方面的、多线条的。

在低温胁迫下,膜的生物物理化学状态发生变化,膜脂组成和透性开始发生变化,这会导致植物质膜选择透性的改变或丧失,而膜透性的增加与外渗电导率呈正相关,膜透性的测定可做为植物抗寒性研究中的一个生理指标。

小分子或生物大分子的电解质水溶液都可以导电,电解质溶液的导电一般都是服从欧姆定律的(R=V/A)。

溶液的电阻大,导电能力就小,因此把溶液电阻的倒数定义为该溶液的电导,代号为S(S=1/R=A/V)。

对电解质溶液来说,取面积为1cm 2的两片电极,相距1cm ,中间1cm 3溶液所表现出来的电导称为该溶液的比电导,也称电导率,用K 表示(即K=SQ),单位为S ·cm -1,实际应用的单位是μS ·cm -1,式中Q 表示电极常数目前,电解质外渗量的表示方法较多,如:(1)外渗电导率值 M=WVK K 21 (K1标示样品浸提液电导率值,K2表示去离子水电导率值) (2)相对电解质渗出率:电解质渗出率(%)=煮沸后电导率值浸泡液电导率值×100% 伤害率(%)=对照电导率值处理煮沸后电导率值-导率值处理电导率值-对照电×100% (3)绝对电解质渗出量 M=WAV 可由标准曲线算得。

其中V 为 二、试材及用具1.试材及处理不同果树的纸条,将采回的枝条剪成40cm左右的长度,用自来水冲洗数遍(洗掉泥土、灰尘、虫卵),再用蒸馏水冲洗三次,然后用吸水纸吸干水分。

将每个品种的枝条分成相等的3份,其中一份作为对照,放于冰箱中(0℃~4℃)保存备用。

实验 46 逆境对植物的伤害(电导仪法)

实验 46 逆境对植物的伤害(电导仪法)
四、结果计算
伤害率可以用下列三种形式表示:
1. INCLUDEPICTURE "/jiaowu/jpk/jpk/images/id6_xxzd_45_clip_image002.gif" \* MERGEFORMATINET
2. INCLUDEPICTURE "/jiaowu/jpk/jpk/images/id6_xxzd_45_clip_image004.gif" \* MERGEFORMATINET
2. 各处理和对照的待测液的体积要一样。
3. 测定后电极要清洗干净。
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[ 思考题 ]
植物抗逆性与细胞膜透性有何关系 ? 用电导仪法定量测定细胞膜透性变化为什么要用纯 NaCl 做标准曲线 ?
?
【附注】 DDS-11A 型电导率仪的使用方法
1 .未打开电源开关之前,电表指针应指零;否则,应调整表头螺丝使指针指零。
***[JimiSoft: Unregistered Software ONLY Convert Part Of File! Read Help To Know How To Register.]***
6 .将电极插入电极插口内,旋紧插口上的紧固螺丝,同时把电极常数调节器调节在与之配用的电极常数相应的位置上。(测量范围在 10 ~ 10 4 μS/cm 时,使用 DJS-I 型铂黑电极;当被测物的电导率大于 10 4 μS / cm 时,则应选用 DJS-10 型铂黑电极,这时应调节在与之所配用电极常数 1/10 的位置上,例如:电极常数为 9.8 ,则应调节在 0.98 位置上,但要将测得的读数乘以 10 ,即为被测液的电导率)。
实验 46 逆境对植物的伤害(电导仪法)

植物根系阳离子交换量测定及表示方法的比较

植物根系阳离子交换量测定及表示方法的比较

植物根系阳离子交换量测定及表示方法的比较植物根系的阳离子交换量 (CEC) 是指植物根系通过细胞膜和细胞壁吸收阳离子的能力。

CEC 对于植物的生长和发育具有重要的影响,因为植物所需的许多元素,如钾、钠、钙和镁,都是阳离子。

因此,准确测量植物根系的 CEC 对于了解植物对土壤中资源的利用情况,以及植物生长发育和土壤改良等方面的研究非常重要。

目前,有多种方法可以测定植物根系的 CEC,以下是这些方法的比较:1. 直接测定法:该方法通过直接测量植物根系中的阳离子含量来计算出CEC。

其中最常用的方法是重量法,该方法通过测量植物根系中阳离子的重量来计算出 CEC。

该方法的优点是简单、快速,缺点是精确度较低。

2. 滴定法:该方法通过滴定植物根系中的阳离子,计算出 CEC。

该方法的优点是精确度高,缺点是需要较长的滴定时间和滴定液的制备。

3. 电导法:该方法通过测量植物根系中的电导率来计算出 CEC。

该方法的优点是快速、简单,缺点是精确度较低。

4. 离子交换色谱法:该方法通过使用离子交换色谱仪来分离植物根系中的阳离子,然后计算出 CEC。

该方法的优点是精确度高,缺点是需要较高的技术和设备。

在实际应用中,选择哪种方法取决于研究的具体情况和所需的准确性和速度。

一般来说,对于一些简单的研究,直接测定法或滴定法可以很好地满足要求。

而对于更复杂的研究,电导法或离子交换色谱法可能更适合。

此外,CEC 的表示方法也有多种,包括毫克当量 (mg/kg)、毫克当量/升(meq/L) 和交换性阳离子总量 (CEC total) 等。

这些方法的区别主要在于对CEC 的计量单位的不同。

毫克当量是一种国际单位制 (SI) 单位,而毫克当量/升是一种容积单位。

交换性阳离子总量则是一种综合考虑了植物根系吸收的阳离子种类和数量后得出的值。

在选择表示方法时,需要考虑研究的具体情况和所需的精确度和简明性。

植物电导率的测定

植物电导率的测定

五、注意事项
整个过程中,叶片接触的用具必须绝对洁净, 1. 整个过程中,叶片接触的用具必须绝对洁净,也不要用 手直接接触叶片,以免污染。 手直接接触叶片,以免污染。 各处理和对照的待测液的体积要一样。 2. 各处理和对照的待测液的体积要一样。 3. 测定后电极要清洗干净。 测定后电极要清洗干净。
作业:试比较不同处理的叶片细胞透性的变化情况, 作业:试比较不同处理的叶片细胞透性的变化情况, 记录结果,并加解释。 记录结果,并加解释。
植物电导率的测定
电导仪法) (电导仪法)
一、原理Байду номын сангаас
植物细胞膜对维持细胞的微环境和正常的代谢起着 重要的作用。在正常情况下, 重要的作用。在正常情况下,细胞膜对物质具有选择透 性能力。当植物受到逆境影响时,细胞膜遭到破坏, 性能力。当植物受到逆境影响时,细胞膜遭到破坏,膜 透性增大,从而使细胞内的电解质外渗, 透性增大,从而使细胞内的电解质外渗,以致植物细胞 浸提液的电导率增大。 浸提液的电导率增大。 膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关, 膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关,也与植物 抗逆性的强弱有关。因此, 抗逆性的强弱有关。因此,电导法目前已成为作物抗性 栽培、 栽培、育种上鉴定植物抗逆性强弱的一个精确而实用的 方法。 方法。
二、材料、仪器设备及试剂
材料:小麦、 1. 材料:小麦、女贞叶片 仪器设备: 2. 仪器设备: 电导仪;天平;温箱;真空干燥器; 电导仪;天平;温箱;真空干燥器; 抽气机;恒温水浴锅;注射器; 抽气机;恒温水浴锅;注射器; 试剂: 3. 试剂:无
三、实验步骤
选取小麦三份。一份置于小烧杯中放在40℃ 40℃恒温箱内萎 1. 选取小麦三份。一份置于小烧杯中放在40℃恒温箱内萎 蔫2-3h,第二份置于小烧杯中放在4℃冰箱内冷处理23h,第二份置于小烧杯中放在4℃冰箱内冷处理2 4℃冰箱内冷处理 3h,第三份置于小烧杯中放在室温下做对照。 3h,第三份置于小烧杯中放在室温下做对照。 每处理选择大小相似植株10株共20 10株共20片叶片为实验用材 2. 每处理选择大小相似植株10株共20片叶片为实验用材 料,分别用蒸馏水冲洗二次,并用洁净滤纸吸干,将叶 分别用蒸馏水冲洗二次,并用洁净滤纸吸干, 片剪成1 2cm长小段( 片剪成1-2cm长小段(剪5剪刀)。 长小段 剪刀)。 3.将所剪材料分别放入带标记的大试管中, 3.将所剪材料分别放入带标记的大试管中,用干净尼龙网 将所剪材料分别放入带标记的大试管中 罩住,向各试管中准确加入蒸馏水20ml,浸没叶片 罩住,向各试管中准确加入蒸馏水20ml, 20ml (以不浮出尼龙网为原则)。 以不浮出尼龙网为原则)。

植物抗逆性检测方法及流程

植物抗逆性检测方法及流程

植物抗逆性检测方法及流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。

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植物生理学实验-实验三_电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性

植物生理学实验-实验三_电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性

实验三电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性一实验目的进一步认识细胞膜系统的结构和功能;掌握电导率仪法测定离体植物叶片抗逆性的原理与方法。

二实验原理植物抗逆性是指植物在长期系统发育中逐渐形成的对逆境的适应和抵抗能力。

在同样的逆境条件下,有些植物(或品种)不受害或受害很轻,有些植物则受害较重。

植物组织受到逆境伤害时,由于膜的功能受损或结构破坏而透性增大,细胞内各种水溶性物质不同程度的外渗,将植物组织浸入无离子水中,水的电导率将因电解质的外渗而加大,膜伤害越重,电解质外渗越多,电导率的增加也越大。

故可用电导率仪测定外液的电导率而得知伤害程度,从而反映植物的抗逆性强弱。

三实验材料植物离体叶片四设备与试剂电导率仪、真空泵(附真空干燥剂)、恒温水浴锅、水浴试管架、20ml具塞刻度试管、打孔器(或双面刀片)、10ml移液管(或定量加液器)、试管架、电炉、镊子、剪刀、搪瓷盘、记号笔、去离子水、滤纸、塑料纱网(约3cm2)。

五实验步骤(一)容器的洗涤电导率仪法对水和容器的洁净度要求严格,所用容器必须用去离子水彻底清洗干净,倒置于洗净而垫有洁净滤纸的搪瓷盘中备用。

水的电导率要求为1~2μS/cm。

为了检查试管是否洁净,可向试管中加入1~2ml电导率在1~2μS/cm的新制去离子水,用电导率仪测定是否仍维持原电导率。

(二)实验材料的处理分别在正常生长和逆境胁迫的植株上取同一叶位的功能叶若干片。

若没有逆境胁迫的植株,可取正常生长的植株叶片若干,分成2份,用纱布擦净表面灰尘。

将一份放在-20度左右的温度下冷冻20分(或置40度左右的恒温箱中处理30分)进行逆境胁迫处理。

另一份裹入潮湿的纱布中放置在室温下作对照。

(三)测定将处理组叶片与对照组叶片用离子水冲洗2次,再用洁净滤纸吸净表面水分。

用6~8mm 的打孔器避开主脉打取叶圆片(或切割成大小一致的叶块),每组叶片打取叶圆片60片,分装在3支洁净的刻度试管中,每管放20片。

在装有叶圆片的各试管中加入10ml的去离子水,并将大于试管口径的塑料纱网放入试管距离液面1cm处,以防止叶圆片在抽气时翻出试管。

植物抗逆性测定

植物抗逆性测定

植物抗逆性测定设计实验不同植物材料抗逆性比较逆境条件下,植物会受到不同程度的伤害,如:蛋白质变性、膜损伤。

但是、植物也可以通过本身的代谢变化,如:吸水力降低、蒸腾减弱、光合下降、呼吸增高或降低、激素改变、保护性酶增多、渗透物质(可溶性糖、脯氨酸)增加等来适应逆境。

农业生产上,可通过选育高抗品种、逆境锻炼、化学诱导和农业措施提高植物的抗逆性。

本组综合实验采用不同品种或对植物进行化学诱导和锻炼的方式研究逆境条件下的生理生化变化,为逆境生理研究打下基础,并培养综合分析能力和科研能力。

[研究方案]一、研究题目1、不同品种抗逆性生理指标比较2、几种外源物质浸种对种子萌发、幼苗生长和抗性的影响3、生长调节剂处理对植物抗逆性生理指标的影响4、逆境(低温、高温、干旱等)预处理对植物抗逆性的效应可在上述几个大题目下具体确定小题目。

二、实验材料准备实验材料主要采用幼芽和幼苗。

可用培养皿和瓷盘培养发芽材料1~2周。

三、实验内容根据不同研究题目,可在以下测定项目中选择:1、生长测量:芽长、根长、根数、地上部鲜重、地下部鲜重。

2、生理生化指标测定:植物抗逆性的鉴定(电导仪法);丙二醛含量的测定;脯氨酸含量的测定(酸性茚三酮法);过氧化氢酶活性测定(高锰酸钾滴定法);超氧物歧化酶活性测定(NBT还原法);植物蒸腾速率的测定(快速称重法);叶绿体色素的定量测定(分光光度法);植物体内可溶性糖的测定,(蒽酮法);植物组织中游离氨基酸总量的测定,(茚三酮显色法);植物组织中可溶性蛋白含量的测定(考马斯亮蓝G-250染色法)。

各研究题目的生理生化指标测定,根据教学安排和研究内容选做3~4个。

[实验安排]自由组合小组,选出组长,由组长安排实验材料和重复。

9~12学时、分3~4次进行。

[数据处理和结果统计]一、数据记录实验中要及时记载原始数据,以便计算和核对。

每个研究题目应设计专门的记录表。

二、结果统计通过实验获取的原始数据要及时照各实验方法计算出结果,并将结果统一列于结果统计表中,每个研究题目应设计专门的结果统计表,便于分析与比较。

植物细胞质膜透性的测定(电导率法)

植物细胞质膜透性的测定(电导率法)

45实验45 植物细胞质膜透性的测定(电导仪率法)作者:佚名资源来源:本站原创点击数:1933 更新时间:2008-5-26实验四十五植物细胞质膜透性的测定一、目的植物细胞质膜是细胞与外界环境的一道分界面,对维持细胞的微环境和正常的代谢起着重要作用。

但植物常受到外界不良因子的影响,而不同植物种类其抗逆性则不同。

用电导仪率法测定植物质膜透性的变化,可作为植物抗逆性的生理指标之一。

本实验主要测定低温对细胞质膜透性的影响,并掌握用电导仪法测定植物细胞质膜透性的原理及方法。

二、原理植物细胞的细胞质由一层质膜包围着,这种质膜具有选择透性的独特功能。

植物细胞与外界环境之间发生的一切物质交换都必须通过质膜进行。

各种不良环境因素对细胞的影响往往首先作用于这层由类脂和蛋白质所构成的生物膜。

如极端的温度、干旱、盐渍,重金属离子(如Cd2+等)和大气污染物(如SO2、HF、O3)等都会使质膜受到不同程度的损伤,其表现往往为细胞膜透性增大,细胞内部分电解质外渗,外液电导率增大。

该变化可用电导仪测定出来。

细胞膜透性变得愈大,表示受害愈重,抗性愈弱,反之则抗性愈强。

三、材料、仪器设备1. 材料:植物叶片。

2. 仪器设备:电导仪;电子天平;冰箱;真空泵;真空干燥器;恒温培养箱;电炉;50ml烧杯;50ml量筒;小镊子;纱布;表皿;滤纸条;镜头纸;剪刀;玻棒;胶头滴管;瓷盘。

四、实验步骤1. 清洗用具所用玻璃用具均需先用洗衣粉清洗,然后用自来水、蒸馏水洗3次,干燥后备用。

2. 实验材料的准备及处理选取叶龄相似的植物叶片,剪下后用湿布包住。

实验时用自来水将供试叶片冲洗,除去表面沾污物,再用蒸馏水冲洗1~2次,用干净纱布轻轻吸干叶片表面水分,然后剪成约1cm2的小叶片(或用直径为1的打孔器钻取小园片),注意除掉大叶脉。

将剪下的小叶片混合均匀,快速称取鲜样三份,每份1g,分别放入编号为A、B、C的三个烧杯中。

作如下处理:A杯放入冰箱0℃以下作低温处理,处理15~30min后取出(供试叶片也可以在实验前低温处理好待用,处理温度及时间依不同植物叶片耐寒性而定),加入蒸馏水50ml。

植物叶片相对电导率的测定实验报告

植物叶片相对电导率的测定实验报告

植物叶片相对电导率的测定实验报告
实验目的:
了解植物叶片的相对电导率,探究植物叶片的生理状态。

实验材料:
植物叶片、电导仪、导电质液等。

实验原理:
当物质受到外界刺激时,其细胞膜的离子流动会导致细胞膜电势的改变。

而导电仪可以测量物质在电场中的电阻值,通过测量植物叶片的电导率可以得到叶片细胞膜受到刺激后电势的变化情况,从而了解植物叶片的生理状态。

实验步骤:
1. 准备工作:将电导仪接通电源,并预置测试参数。

2. 取一片健康的植物叶片,用导电质液将其表面润湿,使液体均匀分布,同时将该叶片的两端分别连接到电导仪电极上。

3. 观察电导仪读数,记录下植物叶片的相对电导率。

4. 将该叶片切成小块,再次润湿并连接到电导仪中重复读数。

实验结果:
通过对多片植物叶片的相对电导率的测定可以得出,不同状态下的植物叶片的相对电导率是不同的。

例如,健康状态下的植物叶片相对电导率相对稳定,而受到外界刺激后植物叶片的相对电导率会发生显著变化。

实验分析:
本实验是通过测量植物叶片的电导率来探究植物叶片的生理状态,从而为研究植物抗逆性提供了参考依据。

在实验过程中需要注意,植物叶片应当健康完整且采集后尽可能快地进行实验,以免细胞膜的离子流动受到影响。

此外,实验中要保证导电质液的均匀涂布,电导仪读数应当准确无误。

实验结论:
通过本实验可得出:测量植物叶片的相对电导率可以了解植物叶片的生理状态,为研究植物抗逆性提供重要参考。

电导法植物实验报告

电导法植物实验报告

一、实验目的1. 了解电导法在植物逆境生理研究中的应用。

2. 掌握电导法测定植物细胞膜透性的原理和操作步骤。

3. 通过电导法,分析不同逆境条件下植物细胞膜透性的变化,探讨植物的抗逆性。

二、实验原理植物细胞膜是细胞与环境之间进行物质交换的主要通道,也是细胞感受环境胁迫最敏感的部位。

当植物受到逆境胁迫时,细胞膜的选择透过性会发生改变,导致细胞内物质(尤其是电解质)大量外渗,从而引起组织浸泡液的电导率发生变化。

通过测定外渗液电导率的变化,可以反映出质膜的伤害程度和所测材料抗逆性的大小。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:小麦、玉米、大豆等植物叶片。

2. 实验仪器:电导率仪、电子天平、恒温箱、剪刀、纱布、无离子水、NaCl溶液等。

四、实验步骤1. 准备工作:将植物叶片用纱布擦拭干净,剪成适当大小,称取2g,放入烧杯中。

2. 设置实验组:将烧杯放入恒温箱中,分别设置不同逆境条件(如高温、低温、干旱、盐渍等),处理时间为24小时。

3. 对照组设置:将烧杯放入室温条件下,作为对照组。

4. 电导率测定:将处理后的叶片浸泡在无离子水中,待叶片恢复原状后,用电子天平称取2g,放入电导率仪的烧杯中,读取电导率。

5. 数据记录:记录不同逆境条件下植物叶片的电导率。

五、实验结果与分析1. 不同逆境条件下植物叶片的电导率变化:通过实验数据可以看出,在高温、低温、干旱、盐渍等逆境条件下,植物叶片的电导率均高于对照组,说明逆境胁迫导致植物细胞膜透性增大,电解质外渗。

2. 植物抗逆性分析:通过比较不同植物在相同逆境条件下的电导率变化,可以分析植物的抗逆性。

实验结果表明,小麦、玉米、大豆等植物在高温、低温、干旱、盐渍等逆境条件下的电导率依次增大,说明它们的抗逆性依次增强。

六、实验结论1. 电导法可以有效地测定植物细胞膜透性,为研究植物逆境生理提供了一种简便、快速的方法。

2. 植物在逆境条件下,细胞膜透性增大,电解质外渗,导致电导率升高。

植物细胞质膜透性的测定(电导率法)

植物细胞质膜透性的测定(电导率法)

45实验45 植物细胞质膜透性的测定(电导仪率法)作者:佚名资源来源:本站原创点击数:1933 更新时间:2008-5-26实验四十五植物细胞质膜透性的测定一、目的植物细胞质膜是细胞与外界环境的一道分界面,对维持细胞的微环境和正常的代谢起着重要作用。

但植物常受到外界不良因子的影响,而不同植物种类其抗逆性则不同。

用电导仪率法测定植物质膜透性的变化,可作为植物抗逆性的生理指标之一。

本实验主要测定低温对细胞质膜透性的影响,并掌握用电导仪法测定植物细胞质膜透性的原理及方法。

二、原理植物细胞的细胞质由一层质膜包围着,这种质膜具有选择透性的独特功能。

植物细胞与外界环境之间发生的一切物质交换都必须通过质膜进行。

各种不良环境因素对细胞的影响往往首先作用于这层由类脂和蛋白质所构成的生物膜。

如极端的温度、干旱、盐渍,重金属离子(如Cd2+等)和大气污染物(如SO2、HF、O3)等都会使质膜受到不同程度的损伤,其表现往往为细胞膜透性增大,细胞内部分电解质外渗,外液电导率增大。

该变化可用电导仪测定出来。

细胞膜透性变得愈大,表示受害愈重,抗性愈弱,反之则抗性愈强。

三、材料、仪器设备1. 材料:植物叶片。

2. 仪器设备:电导仪;电子天平;冰箱;真空泵;真空干燥器;恒温培养箱;电炉;50ml烧杯;50ml量筒;小镊子;纱布;表皿;滤纸条;镜头纸;剪刀;玻棒;胶头滴管;瓷盘。

四、实验步骤1. 清洗用具所用玻璃用具均需先用洗衣粉清洗,然后用自来水、蒸馏水洗3次,干燥后备用。

2. 实验材料的准备及处理选取叶龄相似的植物叶片,剪下后用湿布包住。

实验时用自来水将供试叶片冲洗,除去表面沾污物,再用蒸馏水冲洗1~2次,用干净纱布轻轻吸干叶片表面水分,然后剪成约1cm2的小叶片(或用直径为1的打孔器钻取小园片),注意除掉大叶脉。

将剪下的小叶片混合均匀,快速称取鲜样三份,每份1g,分别放入编号为A、B、C的三个烧杯中。

作如下处理:A杯放入冰箱0℃以下作低温处理,处理15~30min后取出(供试叶片也可以在实验前低温处理好待用,处理温度及时间依不同植物叶片耐寒性而定),加入蒸馏水50ml。

实验四植物抗逆性的测定

实验四植物抗逆性的测定

实验四植物抗逆性的测定实验植物抗逆性的测定(电导仪法)⼀实验⽬的进⼀步理解和认识逆境胁迫对植物细胞膜透性的影响,了解电导法在植物逆境⽣理与抗性育种研究中的应⽤范围。

⼆、实验原理在正常⽣长状况下,植物细胞膜保持着良好的选择透性,⽽当植物组织受到逆境(例如⼲旱、低温、⾼温、盐渍等)伤害时,由于膜脂过氧化、膜蛋⽩变性及膜脂流动性改变,造成膜相变和膜结构破坏,使得细胞膜透性增⼤,从⽽使细胞内的电解质外渗,以致植物细胞浸提液的电导率增⼤。

膜透性增⼤的程度与逆境胁迫强度有关,胁迫强度越⼤,伤害越重,外渗越多,电导率的增加也越⼤。

同时也与植物抗逆性的强弱有关,抗性越强,伤害越轻,外渗越少,电导率的增加也越⼩。

所以,通过测定外渗液电导率的变化,就可以反映出细胞膜的伤害程度和所测材料抗逆性的⼤⼩。

三、材料、仪器和试剂1. 材料:各种植物叶⽚(如丁⾹、⼩麦等)2. 仪器设备:电导仪;天平;恒温箱;真空⼲燥器;抽⽓机;恒温⽔浴锅;烧杯;剪⼑或打孔器;吸⽔纸;纱布等。

3.试剂:去离⼦⽔四、实验步骤1.容器的洗涤:电导法对⽔和容器的洁净度要求严格,所⽤容器必须彻底清洗,再⽤去离⼦⽔冲净,倒臵于洁净滤纸上备⽤。

2.试验材料的处理:选取正常⽣长的⼩麦或其他植物相同部位叶⽚若⼲,剪下后,先⽤纱布拭净,分成2份,将其中⼀份放臵50℃左右的恒温箱中处理30min,进⾏逆境胁迫处理。

另⼀份放臵在室温下作对照。

3. 测定步骤(1) 将处理组叶⽚与对照组叶⽚⽤去离⼦⽔冲洗2次,再⽤洁净滤纸吸净表⾯⽔分,各称取2g,然后剪成长约1cm⼩段放⼊⼩烧杯中(⼤⼩以够容电极为度),并⽤玻璃棒压住,在杯中准确加⼊蒸馏⽔20ml,浸没叶⽚。

将其放⼊真空⼲燥器中,⽤抽⽓机抽⽓7~8min以抽出细胞间隙中的空⽓;重新缓缓放⼊空⽓,⽔即被压⼊组织中⽽使叶⽚下沉。

(注:材料为阔叶时,最好使⽤打孔器取材)(2) 将抽过⽓的⼩烧杯取出,放在实验桌上静臵20min ,然后⽤玻棒轻轻搅动叶⽚,在20~25℃恒温下,⽤电导仪分别测定处理组和对照组得电导值为T 1和C 1。

逆境对植物细胞膜透性的影响 (电导法)

逆境对植物细胞膜透性的影响 (电导法)

植物生理学实验报告实验题目:逆境对植物细胞膜透性的影响(电导法)姓名班级学号一、实验原理和目的原理:植物细胞膜对维持细胞的微环境和正常的代谢起着重要的作用。

在正常情况下,细胞膜对物质具有选择透性能力。

如高温或低温,干旱、盐渍、病原菌侵染后,细胞膜遭到破坏,膜透性增大,从而使细胞内的电解质外渗,以致植物细胞浸提液的电导率增大。

膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关,也与植物抗逆性的强弱有关。

比较不同植物或同一植物不同品种在相同胁迫温度下膜透性的增大程度,即可比较植物间或品种间的抗逆性强弱。

用电导仪测定可以比较植物组织中的外渗电解质的含量,从而间接了解细胞透性的大小。

因此,电导法目前已成为植物抗性栽培、育种上快速鉴定植物抗逆性强弱的一个精确而实用的方法。

二、实验器具和步骤植物材料:女贞叶片;实验器具:电导仪;温箱;恒温水浴锅;小烧杯,量筒步骤:1.选取低温(高温)处理的女贞叶片5片,先用纱布拭净,再用打孔器打取20片小圆叶,放入小烧杯中,加入20ml 蒸馏水作为处理组。

2.再用相同的方法打取20片未经处理的小叶放入小烧杯中,加入20ml 蒸馏水作为对照组。

3.将小烧杯放入35℃水浴锅中静置25min,期间用玻棒轻轻搅动叶片,到时间后用,电导仪测定溶液电导率。

4. 测过电导率之后,再放入100℃沸水浴中10min,以杀死植物组织,取出烧杯放入自来水冷却,测其煮沸电导率。

[ 注意事项]1. 整个过程中,叶片接触的用具必须绝对洁净(全部器皿要洗净),也不要用手直接接触叶片,以免污染。

2. 测定后电极要清洗干净。

计算按下式计算相对电导度:相对电导度(L)=(S1-空白电导率)/(S2-空白电导率)S1:煮前的电导率S2:煮后的电导率空白电导率:蒸馏水的电导率相对电导度的大小表示细胞膜受伤害的程度由于室温对照也有少量电解质外渗,故可按下式计算由于低温或高温胁迫而产生的外渗,称为伤害度(或伤害性外渗)。

伤害度(%)=100 1⨯--CKCKtLLL式中L t—处理叶片的相对电导度;L ck—对照叶片的相对电导度四、思考题1.植物在逆境情况下细胞膜的透性会怎样变化?答:在逆境下细胞膜的透性增大。

植物电导率测定方法

植物电导率测定方法

植物电导率测定方法
植物电导率测定,听起来是不是很专业很神秘呀!其实啊,它可没那么难理解。

植物就像我们人类一样,也有自己的“健康指标”,而电导率就是其中很重要的一个呢!
你想想看,我们要了解植物的状况,就像医生要了解病人的身体情况一样。

电导率测定就像是给植物做了一次特别的“体检”。

首先呢,得准备好需要的器材,这就好比战士上战场要带好武器呀!然后选取合适的植物样本,这可不能马虎,就像挑水果得挑新鲜的一样。

把样本处理好后,放入特定的溶液中,这时候啊,就像一场奇妙的化学反应要开始啦!
接下来,就是测量的关键步骤啦!通过仪器来读取数据,那数据可就是植物给我们的“信号”呀!是不是很有趣?这就好像植物在跟我们“说话”,告诉我们它现在的状态是好还是不好呢。

测定植物电导率有啥用呢?哎呀,用处可大啦!可以帮助我们了解植物在不同环境下的适应能力,就像我们人在不同地方生活需要适应一样。

还能知道植物是不是受到了什么伤害,是不是很神奇?
而且哦,这个方法还能用于农业呢!农民伯伯可以通过它来判断农作物的生长状况,及时采取措施,这不是能让庄稼长得更好,收获更多嘛!这不就像给庄稼请了个“私人医生”嘛!
植物电导率测定方法,真的是一个很有价值的工具呀!它让我们能更深入地了解植物的世界,就像打开了一扇通往神秘植物王国的大门。

我们可以通过它更好地保护植物,让它们茁壮成长,为我们的地球增添更多的绿色和生机!所以呀,大家可不要小看这个看似简单的方法哦,它的作用可大着呢!。

实验四电导率仪法测定活体植物根系的抗逆性

实验四电导率仪法测定活体植物根系的抗逆性

实验四电导率仪法测植物根系的抗逆性一、 实验目的 通过测定高温和低温处理来进行观察植物根系的抗逆性。

二、 实验原理植物细胞膜起调节控制细胞内外物质交换的作用,当膜受到损伤时,物质易从细胞中外渗到周围环境中。

当细胞受到高温或低温后,细胞膜差别透性就会改变或丧失,导致细胞内的物质(尤其是电解质)大量外渗,导致组织浸泡液电导率增大,通过测定外液电导率的变化即可反映出质膜受害程度和植物抗逆性的强弱。

三、 实验材料小麦四、 设备与试剂电导率仪、电冰箱、温箱、恒温水浴锅、100mL 量筒、0.5mL 和2mL 移液管、大试管和小试管、镊子、试管夹、愈创木酚,过氧化物酶,NaCl 溶液五、 实验步骤1.选取小麦在一定部位上生长叶龄相似的叶子若干,剪下后,先用纱布拭净,称取二份,各重2g 。

2. 一份插入小杯中放在40℃恒温箱内萎蔫0.5~1h ,另一份插入水杯中放在室温下做对照。

处理后分别用蒸馏水冲洗二次,并用洁净滤纸吸干。

然后剪成长约1cm 小段放入小玻杯中(大小以够容电极为度),并用玻棒或干净尼龙网压住,在杯中准确加入蒸馏水20ml ,浸没叶片。

3. 放入真空干燥器,用抽气机抽气7~8min 以抽出细胞间隙中的空气;重新缓缓放入空气,水即被压入组织中而使叶下沉。

4. 将抽过气的小玻杯取出,放在实验桌上静置20min ,然后用玻棒轻轻搅动叶片,在20~25℃恒温下,用电导仪测定溶液电导率。

5. 测过电导率的之后,再,放入100℃沸水浴中15min ,以杀死植物组织,取出放入自来水冷却10min ,在20~25℃恒温下测其煮沸电导率。

伤害率=%100⨯--对照电导率煮沸电导率对照电导率处理电导率 六.实验结果七、 注意事项1.2组处理的幼苗根选择要尽量一致,可相似的分别放入各组,则各组总体大致相同。

2.一切用具,器皿,事前均须洗净,并用蒸馏水冲洗过。

3.使用后要清理电极。

八、 讨论九、参考文献[1]苍晶,徐仲. 植物生理学实验. 哈尔滨:哈尔滨工业大学出版社,2004[2]王学奎. 植物生理生化实验原理与技术. 北京:高等教育出版社,2002:164-165.[3]郝再彬.植物体内游离脯氨酸的测定. 植物生理学通讯,1983,19(1):35-36.。

测定植物电导率

测定植物电导率

伤害率
处理电导率 100% 对照电导率
• 试比较不同处理的叶片细胞透性的变化情 况,记录结果,并加解释。
五、注意事项
1. 整个过程中,叶片接触的用具必须绝对洁净,也不要用 手直接接触叶片,以免污染。 2. 各处理和对照的待测液的体积要一样。
3. 测定后电极要清洗干净。
作业:试比较不同处理的叶片细胞透性的变化情况, 记录结果,并加解释理
植物细胞膜对维持细胞的微环境和正常的代谢起着
重要的作用。在正常情况下,细胞膜对物质具有选择透
性能力。当植物受到逆境影响时,细胞膜遭到破坏,膜 透性增大,从而使细胞内的电解质外渗,以致植物细胞 浸提液的电导率增大。 膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关,也与植物
抗逆性的强弱有关。因此,电导法目前已成为作物抗性
片剪成1-2cm长小段(剪5剪刀)。
3.将所剪材料分别放入带标记的大试管中,用干净尼龙网 罩住,向各试管中准确加入蒸馏水20ml,浸没叶片
(以不浮出尼龙网为原则)。
三、实验步骤
4.将准备好的三份材料放入真空干燥器,用抽气机抽气 15min左右,以抽出细胞间隙中的空气;重新缓缓放入空 气,水即被压入组织中而使叶下沉。 5.将抽过气的材料取出,放在实验桌上静置20min,然后用 玻棒轻轻搅动叶片,在20~25℃恒温下,用电导仪测定溶
液电导率。
6.测过电导率的之后,再放入100℃沸水浴中15min,以杀 死植物组织,取出放入自来水冷却10min,在20~25℃恒 温下测其煮沸电导率。
四、实验结果级分析
• 伤害率可以用下列三种形式表示:
伤害率 处理电导率 对照电导率 100% 煮沸电导率 对照电导率
伤害率
处理电导率 100% 煮沸电导率

植物组织电导率实验报告

植物组织电导率实验报告

一、实验目的1. 了解植物组织电导率测定的原理和方法。

2. 掌握电导率仪的使用技巧。

3. 通过实验分析植物组织在不同逆境条件下的电导率变化,探讨逆境对植物组织的影响。

二、实验原理植物组织电导率是指植物细胞膜在逆境条件下对电解质传导能力的指标。

当植物遭受逆境(如高温、干旱、盐碱等)影响时,细胞膜会受到损伤,导致细胞内电解质外渗,使外界溶液电导率发生变化。

通过测定植物组织在不同逆境条件下的电导率,可以了解植物组织对逆境的抵抗能力。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜植物叶片、蒸馏水、0.5mol/L氯化钠溶液、100℃沸水。

2. 仪器:电导率仪、电子天平、剪刀、移液管、试管、烧杯、温度计。

四、实验步骤1. 准备实验材料:取新鲜植物叶片若干,用剪刀剪成约1cm×1cm的小块,用蒸馏水冲洗干净,沥干水分。

2. 设置实验组:将叶片分为三组,分别标记为A组、B组和C组。

3. A组:正常对照组,将叶片放入烧杯中,加入蒸馏水,置于室温下。

4. B组:高温组,将叶片放入烧杯中,加入蒸馏水,加热至100℃,保持5分钟。

5. C组:盐胁迫组,将叶片放入烧杯中,加入0.5mol/L氯化钠溶液,保持室温。

6. 测定电导率:将叶片从各组中取出,用移液管吸取少量蒸馏水,清洗叶片表面,然后将叶片放入电导率仪中,测定其电导率。

7. 数据记录:记录各组叶片的电导率值。

五、实验结果与分析1. 实验结果:- A组(正常对照组)电导率:X1- B组(高温组)电导率:X2- C组(盐胁迫组)电导率:X32. 结果分析:- 通过比较A组、B组和C组的电导率值,可以发现,高温组和盐胁迫组的电导率均高于正常对照组,说明逆境条件下植物组织的电导率增加。

- 高温组电导率高于盐胁迫组,说明高温对植物组织的损伤程度大于盐胁迫。

六、实验结论1. 植物组织电导率是衡量植物逆境抵抗能力的重要指标。

2. 高温、盐胁迫等逆境条件会导致植物组织电导率增加,说明细胞膜受到损伤,细胞内电解质外渗。

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实验四
电导率仪法测植物根系的抗逆性
一、 实验目的 通过测定高温和低温处理来进行观察植物根系的抗逆性。

二、 实验原理
植物细胞膜起调节控制细胞内外物质交换的作用,当膜受到损伤时,物质易从细胞中外渗到周围环境
中。

当细胞受到高温或低温后,细胞膜差别透性就会改变或丧失,导致细胞内的物质(尤其是电解质)大量
外渗,导致组织浸泡液电导率增大,通过测定外液电导率的变化即可反映出质膜受害程度和植物抗逆性的
强弱。

三、 实验材料
小麦
四、 设备与试剂
电导率仪、电冰箱、温箱、恒温水浴锅、100mL 量筒、0.5mL 和2mL 移液管、大试管和小试管、镊
子、试管夹、
愈创木酚,过氧化物酶,NaCl 溶液
五、 实验步骤
1.选取小麦在一定部位上生长叶龄相似的叶子若干,剪下后,先用纱布拭净,称取二份,各重2g 。

2. 一份插入小杯中放在40℃恒温箱内萎蔫0.5~1h ,另一份插入水杯中放在室温下做对照。

处理后分别用
蒸馏水冲洗二次,并用洁净滤纸吸干。

然后剪成长约1cm 小段放入小玻杯中(大小以够容电极为度),并
用玻棒或干净尼龙网压住,在杯中准确加入蒸馏水20ml ,浸没叶片。

3. 放入真空干燥器,用抽气机抽气7~8min 以抽出细胞间隙中的空气;重新缓缓放入空气,水即被压入组
织中而使叶下沉。

4. 将抽过气的小玻杯取出,放在实验桌上静置20min ,然后用玻棒轻轻搅动叶片,在20~25℃恒温下,
用电导仪测定溶液电导率。

5. 测过电导率的之后,再,放入100℃沸水浴中15min ,以杀死植物组织,取出放入自来水冷却10min ,
在20~25℃恒温下测其煮沸电导率。

伤害率=%100⨯--对照电导率
煮沸电导率对照电导率处理电导率 六.实验结果
七、 注意事项
1.2组处理的幼苗根选择要尽量一致,可相似的分别放入各组,则各组总体大致相同。

2.一切用具,器皿,事前均须洗净,并用蒸馏水冲洗过。

3.使用后要清理电极。

八、 讨论
九、参考文献
[1]苍晶,徐仲. 植物生理学实验. 哈尔滨:哈尔滨工业大学出版社,2004
[2]王学奎. 植物生理生化实验原理与技术. 北京:高等教育出版社,2002:164-165.
[3]郝再彬.植物体内游离脯氨酸的测定. 植物生理学通讯,1983,19(1):35-36.。

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