毛细管电泳技术

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毛细管等速电泳

毛细管等速电泳
食品安全
将毛细管等速电泳应用于食品安全检测,如食品添加剂、农药残 留和毒素检测等的分离机制,以提高毛细管等速电泳的分离效果和效 率。
联用技术
将毛细管等速电泳与其他分析技术联用,如质谱、光谱等,以提高 检测灵敏度和准确性。
微型化与便携化
研究开发微型化和便携化的毛细管等速电泳设备,以满足现场快速检 测的需求。
毛细管等速电泳
目录 CONTENT
• 毛细管等速电泳简介 • 毛细管等速电泳实验技术 • 毛细管等速电泳在生物医学中的
应用 • 毛细管等速电泳的优缺点 • 毛细管等速电泳的未来发展
01
毛细管等速电泳简介
定义与原理
定义
毛细管等速电泳是一种利用电场 对带电粒子进行分离的电泳技术 。
原理
在毛细管中施加直流电场,带电 粒子在电场的作用下以不同的速 度进行迁移,通过不同时间到达 检测器,从而实现分离。
标准品
用于校准和验证实验结果。
实验步骤
准备毛细管和电解质溶液。
01
打开电泳仪电源,设置实验参数,如电压 、电流和温度等。
03
02
将毛细管连接到电泳仪上,并确保密封良好 。
04
注入电解质溶液和标准品,开始电泳分离 。
通过检测器检测带电分子,记录数据。
05
06
分析数据,得出结论。
03
毛细管等速电泳在生物医 学中的应用
高效进样技术
优化进样技术,减少样品在毛细管内的扩散和稀 释,提高检测灵敏度和准确性。
自动化与智能化
实现毛细管等速电泳的自动化和智能化,提高分 析速度和降低人工操作误差。
应用拓展
环境监测
将毛细管等速电泳应用于环境监测领域,如水质分析、土壤重金 属检测等。

毛细管电泳法

毛细管电泳法
毛细管电泳法
Capillary Electrophoresis, CE
毛细管电泳是带电粒子在 电场力的驱动下,在毛细 管中按其淌度或和分配系 数不同进行高效、快速分 离的电泳新技术,也称为 高效毛细管电泳。
20世纪30-40年代 蒂塞利乌斯 (A.W.K.Tiselius) 建立了移动界面电泳,将电泳发 展成分离技术 获得1948年诺贝尔化学奖
实验中,只发生电泳时有效淌度
μef =υef ﹒ (L /V) =( l / tm )﹒(L /V)
毛细管有效长度
迁移时间 毛毛细管细电泳管法 总长度
电压
2 电泳和电渗
电渗
与固液界面的双电层有着密切的关系
在毛细管壁双电层的扩散层中的阳离子,相对于毛 细管壁的负电荷表面,形成一个圆筒形的阳离子鞘, 在电场作用下,溶剂化了的阳离子,沿滑动面与紧 密层作相对运动,携带着溶剂一起向阴极迁移,便 形成了电渗流(electroosmotic flow , EOF)。
1981年 J.W.Jorgenson,K.D.Lukacs实验上和理论 上为毛细管电泳的发展奠定了基础。 上一世纪后二十多年分析化学领域中发展最迅速的分离 分析方法。
主要内容
毛细管电泳的原理 分离模式 进样与检测 毛细管电泳的应用
一 毛细管电泳的原理
1 装置
电极 缓冲液
毛细管
数据处理
毛细管电泳法
2 电泳和电渗
µeo正比于Zeta电势和介质的 介电常数
改变电渗流的方法
反比于介质的黏度
Zeta电势正比于双电层厚度 和界面有效电荷密度
1. 改变外加径向电场
反比于介质的介电常数
2. 改变缓冲液成分和浓度
Zeta电势
3. 改变缓冲液pH 4. 加入添加剂

毛细管电泳法

毛细管电泳法

毛细管电泳法类型 —— 非胶毛细管电泳
指介质中以有机溶剂占主要部分,即表现为非水体
系的性质。能承受更高的操作电压产生的高电场, 有更高的分享效率,也可在不增大焦耳热的条件下
提高溶液中的离子浓度或增大毛细管的内径,从而
增大进样量。 优点:使用超大内径毛细管柱、快速分析、降低吸 附、提高分离选择性、有利于难溶于水及在水中不 稳定的化合物的分离、对中性物质的分离、对手性
.改变电渗最方便有用的方法 .可能会引起溶质组分电荷和结构的改变 .离子强度增加,电流和焦耳热增加 .低离子强度可能存在样品的吸附问题 .导电性与样品不同可能引起峰形畸变 .离子强度低,样品装载量小
缓冲溶 pH降低,电渗降低 液pH值 pH降低,电渗增加 离子强 度或缓 冲溶液 浓度 温度 有机改 性剂 离子强度增加, Zeta电位降低, 电渗降低
V=Vep+Veo=(μep + μeo ) ·E
毛细管电泳法仪器构造
毛细管电泳法仪器构造

毛细管柱是CE的核心部件,目前多为25~75μm之间, 材料为聚四氟乙烯、玻璃和弹性石英,以石英居多。 选择细内径毛细管柱有利于最大散热,但比表面积大, 会增加溶质的吸附作用。
高压电源:包括电源、电极和电极槽
温度改变1℃,黏度 .温度由仪器自动控制,常用方法 变化约2%--3% 改变Zeta电位和黏 度(降低电渗) .变化复杂,其影响宜通过实验测定 .可能改变选择性
毛细管电泳法基本原理
粒子在毛细管内电解质中的迁移速度等于电泳和电渗流(EOF) 两种速度的矢量和。正离子的运动方向和电渗流一致,故最先 流出;中性粒子的电泳流速度为“零”,故其迁移速度相当于 电渗流速度;负离子的运动方向和电渗流方向相反,但因电渗 流速度一般都大于电泳流速度,故它将在中性粒子之后流出, 从而因各种粒子迁移速度不同而实现分离。

毛细管电泳法

毛细管电泳法
原理
在毛细管中施加电场,带电粒子在电场的作用下产生迁移,由于迁移速度与粒 子所带电荷、半径、质量等因素有关,因此不同粒子在电场中产生不同的迁移 速度,从而实现分离。
发展历程
01
02
03
1980年代初期
毛细管电泳法由 Jorgenson和Lukacs首次 提出并实验验证。
1980年代中期
该技术逐渐成熟,被广泛 应用于生物、医药、环境 等领域。
饮用水安全
毛细管电泳法能够检测饮用水中 的消毒副产物、有机污染物等, 保障饮用水安全。
在食品检测领域的应用
食品添加剂分析
毛细管电泳法能够分离和检测食品中 的添加剂,如色素、防腐剂等,有助 于食品安全监管。
营养成分分析
毛细管电泳法能够快速分析食品中的 营养成分,如氨基酸、维生素等,有 助于食品质量控制和营养评价。
核酸分析
毛细管电泳法能够分离和检测核酸片段,用于基 因诊断、基因表达研究和法医学鉴定。
3
临床检验
毛细管电泳法可用于检测体液中的小分子代谢物, 如氨基酸、糖类等,辅助临床诊断。
在环境监测领域的应用
污染物分析
毛细管电泳法能够分离和检测水 体、土壤中的有害物质,如重金 属、农药残留等,有助于环境监 测和污染治理。
在化学分析领域的应用
有机物分析
毛细管电泳法能够分离和检测有机化合物,如药物、染料等 ,在药物研发、化工生产等领域有广泛应用。
金属离子分析
毛细管电泳法能够高灵敏度地检测金属离子,如铅、汞、镉 等,可用于地质、冶金和环境等领域的研究。
谢谢
THANKS
加样
将处理好的样品加入毛 细管中,注意控制加样
量。
施加电压
启动电源,施加适当的 电压,使带电粒子在电

毛细管电泳技术及应用

毛细管电泳技术及应用
蛋白质分离
毛细管电泳技术能够高效分离蛋白质 ,包括白蛋白、球蛋白、酶等,为生 物制药、蛋白质组学等领域提供有力 支持。
DNA和RNA分析
毛细管电泳可用于分析DNA和RNA片 段,在基因诊断、基因工程和生物信 息学等领域有广泛应用。
药物分析
药物成分分离
毛细管电泳能够分离和检测药物中的有效成分和杂质,有助于药物质量控制和研发。
仪器设备与操作
仪器设备
包括高压电源、进样系统、毛细管、检测器和数据采集系统等部分。
操作步骤
首先将样品注入毛细管一端,然后施加电压使带电粒子在电场中移动,同时通 过检测器对分离出的粒子进行检测,最后通过数据采集系统记录数据并进行分 析。
02
毛细管电泳的分离模式
区带电泳
总结词
区带电泳是毛细管电泳中最简单的一种形式,其原理是将样 品加在毛细管的一端,然后施加电压,使样品在电场的作用 下进行分离。
详细描述
在区带电泳中,样品在毛细管中形成一色带,由于不同组分 在电场中的迁移率不同,因此会以不同的速度向另一端移动 ,从而实现分离。这种分离模式适用于简单样品,如氨基酸 、肽和蛋白质等。
胶束电动色谱
总结词
胶束电动色谱是在毛细管电泳中加入一种称为表面活性剂的物质,使溶液的离子 强度和粘度发生变化,从而影响离子的迁移率。
要点二
血液中成分分析
通过毛细管电泳技术,可以分析血液中的离子、小分子和 蛋白质等成分,为临床诊断和治疗提供依据。
04
毛细管电泳技术的优缺点
优点
高分离效率
毛细管电泳技术利用电场对带电粒子的作用力,使其在毛 细管中分离,具有极高的分离效率,特别适合于复杂样品 的分离。
高灵敏度
毛细管电泳技术结合了多种检测手段,如紫外-可见光谱 、荧光光谱等,可以实现高灵敏度的检测,有利于痕量物 质的检测。

毛细管电泳法

毛细管电泳法
电极槽和毛细管内的溶液为缓冲液,可以加入有机溶剂作为改性剂,以及加入表面活性剂,称作运行缓冲液。 运行缓冲液使用前应脱气。电泳谱中各成分的出峰时间称迁移时间。胶束电动毛细管色谱中的胶束相当于液相色 谱的固定相,但它在毛细管内随电渗流迁移,故容量因子为无穷大的成分最终也随胶束流出。其他各种参数都与 液相色谱所用的相同。
此外,还有一类基于芯片的二维分离系统主要应用于蛋白质酶解物的分离分析。
除上述分离模式外,芯片自由流电泳也是芯片电泳分离蛋白质的重要方法。芯片自由流电泳是指在芯片中通 过外加电场使样品随缓冲液连续流动的同时沿电场方向进行电迁移,从而按照电泳淌度不同实现分离的电泳分离 模式。Raymond等采用芯片自由流电泳模式分离了人血清蛋白、缓激肽和核糖核酸酶A,其分离长度为3.1 cm,流 出时间为62 S。Kobayashi等采用自由流电泳的分离模式在一个体积为56.5 mm×35 mm×30 mm的微分离室 (60uL)中实现了持续的蛋白质分离,并用羟丙基甲基纤维素涂覆来抑制蛋白质吸附,在25 min内有效分离了细胞 色素C和肌红蛋白。最近,Kohl.heyer等H 3。制作了一种自由流等电聚焦分离蛋白质的玻璃芯片,成功地将人 血清白蛋白(pI=4.4)与等电聚焦标记物(pH 3和9)分离。
仪器要求
所用的仪器为毛细管电泳仪。正文中凡采用毛细管电泳法测定的品种,其所规定的测定参数,除分析模式、 检测方法(如紫外光吸收或荧光检测器的波长、电化学检测器的外加电位等)应按照该品种项下的规定外,其他参 数如毛细管内径、长度、缓冲液的pH值、浓度、改性剂添加量、运行电压或电流的大小、运行的时间长短、毛细 管的温度等,均可参考该品种项下规定的数据,根据所用仪器的条件和预试验的结果,进行必要的调整。
检测方法
毛细管电泳通常用到的检测方法有吸收光谱,荧光光谱,热镜,拉曼光谱,质谱和电化学方法。

毛细管电泳

毛细管电泳


CE开始主要用于蛋白质,多肽的分析,以 后逐渐被广泛应用于生物,化学,医药, 环保等领域。它具有分离效率高,分析速 度快,样品及试剂用量少,洁净无污染等特 点,和HPLC(高效液相色谱法)成为分析化学 中互补的技术。随着生命科学的发展,毛 细管电泳技术也有了广阔的发展空间.目前, 不同分离模式的毛细管电泳技术正成为最 重要的生物样品分离分析手段。
二.毛细管电泳基本原理
1.基本概念
有效长度 (Ld, cm)
迁移时间 (tm min)
毛细管的入口端到检测器窗口的距离;
带电粒子在电场作用下做定向移动的时间;
电泳速度(Ue cm/s) 在单位时间内,带电粒子在毛细管中定向 移动的距离; 电场强度(E V/cm) 在给定长度毛细管的两端施加一个电场后 所形成的电效应的强度;
tm = Lt2/UV
其中, U = Ue/Ueo
可见,在毛细管长度一定,某时刻电压 相同的条件下,迁移时间决定于电泳速 度Ue和电渗流速度Ueo,而两者均随组分 的不同荷质比而异;所以,基于荷质比 的差异就可以实现组分的分离。
Lt---有效长度 V---施加电压 U---溶质总流速 Ue---电泳速度 Ueo---电渗流速度
电泳仪工作示意图
三.毛细管电泳的分离模式
毛细管电泳有多种分离模式,给样品分离提供了不同的 选择机会.根据分离原理可分为:
毛细管区带电泳
毛细管凝胶电泳 CE 胶束电动力学毛细管色谱 毛细管等电聚焦电泳
毛细管区带电泳
毛细管区带电泳(CZE)也 称为自由溶液毛细管电泳, 是毛细管电泳中最简单, 应用最广泛的一种形式。 其分离机理在于:不同离子 按照各自表面电荷密度的差 异也即淌度的差异,以不同的 速度在电解质中移动,而实现 分离。当然,中性物质的淌 度差为零,所以不能以这种形 式分离。

毛细管电泳法

毛细管电泳法

毛细管电泳法简介毛细管电泳法是一种常用于分离和检测化学物质的分析技术。

它基于样品在电场作用下在毛细管中的迁移速度的差异,利用电泳现象进行分离。

该方法具有分离效果好、分析速度快、样品消耗少等优点,被广泛应用于生物、环境、食品等领域的分析研究。

原理毛细管电泳法的基本原理是利用电场作用下带电粒子在毛细管中的迁移速度差异分离物质。

当样品通过直径较小的毛细管时,由于电场的作用,带电物质会在毛细管中产生电泳迁移。

迁移速度快的物质会较早到达检测器位置,而迁移速度慢的物质则会滞留在毛细管中,从而实现了物质的分离。

毛细管电泳法主要利用了物质在电场、毛细管中的迁移速度与其电荷、粒径、溶剂性质等因素之间的关系。

其中,电荷是最重要的因素之一。

毛细管电泳法可分为两种类型:正交电泳和非正交电泳。

正交电泳主要用于带电物质的分离,而非正交电泳则用于非带电物质的分离。

操作步骤1. 准备工作在进行毛细管电泳实验之前,需要准备好以下实验器材和试剂:•毛细管电泳仪•毛细管•电解质缓冲液•样品溶液2. 设置电泳条件根据实验需要,设置好合适的电场强度、电解液pH值和缓冲液浓度等参数。

这些参数的选择对于实验结果的准确性和分离效果的好坏至关重要。

3. 毛细管填充将毛细管浸入缓冲液中,通过电力作用使缓冲液进入毛细管,直至毛细管完全填充。

4. 样品进样通过微量注射器将样品溶液缓慢注入毛细管,注意避免气泡的产生。

5. 开始电泳将毛细管两端插入正、负电极中,开启电源,开始电泳过程。

6. 结果分析根据实验需要,可以选择不同的检测方法进行结果分析,如紫外检测、荧光检测等。

应用领域毛细管电泳法广泛应用于生物、环境、食品等领域的分析研究。

具体的应用包括:1.蛋白质分析:毛细管电泳法可用于蛋白质的分离和定量分析,对于药物研发、生物学研究等具有重要意义。

2.DNA分析:毛细管电泳法可以用于DNA序列分析、基因突变检测、DNA测序等领域,对于遗传学研究、法医学等具有重要意义。

色谱分析法第九章 毛细管电泳法简介-精品文档

色谱分析法第九章 毛细管电泳法简介-精品文档

5)CGE中使用改性剂
9.5.4毛细管等电聚焦(CIEF) 1)毛细管等电聚焦原理
毛细管等电聚焦属于毛细管电泳中的一种聚焦技术类型,其溶
质通常是蛋白质,分离基于蛋白质等电点(PI)的差异。毛细管内充 满两性电解质和蛋白质溶液,加上一个电场,在毛细管中产生一个
pH梯度。各种蛋白质因为它们的等电点不同,而在毛细管内聚焦为
图9.6 溶质通过毛细管的顺序
图9.7阳离子、中性分子、阴离子 的电泳谱图
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色谱分析法
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1)电渗流的作用 2)电渗流的产生
图9.8 电渗流的产生
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图9.9 不同驱动力的流型和相应的谱带峰形 3)电渗流的速度和迁移率 (1)电场强度
(2)缓冲液的pH值
子的尺寸和离子所带电荷的大小和符号。
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图9.1 毛细管电泳示意图 9.1.2区带电泳 9.1.3引起区带扩散的因素 9.1.4管的直径对对流扩散的影响
9.1.5介质中的电泳
9.1.6毛细管电泳
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色谱分析法
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9.2毛细管电泳体系 9.2.1概述 从概念上来讲,毛细管电泳体系比较简单。如图9.2所示,其 主要组成有样品池、入口池、出口池、毛细管、检测器、高压电 源、数字结果处理设备,如一台分析仪或一台计算机。
许多狭小的区带。毛细管内的溶液在动力作用下通过检测器而产生 电泳图。
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2)毛细管内形成pH梯度 3)等电聚焦
图9.13 CIEF分离机理示意图

第三章毛细管电泳法

第三章毛细管电泳法

一、毛细管区带电泳
(Capillary zone electrophoresis , CZE) 带电粒子的迁移速度=电泳和电渗流速度的矢量和。 正离子:两种效应的运动方向一致,在负极最先流出; 中性粒子:无电泳现象,受电渗流影响,在阳离子后流出;
阴离子:两种效应的运动方向相
反;ν电渗流 >ν电泳时,阴离子在负极 最后流出,在这种情况下,不但可以 按类分离,同种类离子由于差速迁移 被相互分离。 CZE是最基本、应用广的分离模式;
第二节 毛细管电泳基础理论
+

一、电泳流

电泳:在电解质溶液中,位于电场中的带电离子
在电场力的作用下,以不同的速度向其所带电荷
相反的电极方向迁移的现象。


+
电泳时,不同离子在电场中具有不同的定向迁移 速度,迁移速度与哪些因素有关?
淌度(μ):单位电场下的电泳速度。 绝对淌度:在无限稀释溶液中测得的淌度。 有效电泳淌度:在实际溶液中测得的淌度。
加入有机溶剂如甲醇、乙腈,使电渗流增大。
三、CE中的参数与关系式
1.迁移时间(保留时间) CE兼具有电化学的特性和色谱分析的特性。有关色谱理 论也适用。 ldet ldet ldet ltot t ap ap E ap V
Vap是表观迁移速度;μap是表观淌度;ldet 是毛细管有效长度; ltot 是毛细管总长度
毛细管内径一般为20~100μm。
3.缓冲液池
化学惰性,机械稳定性好;
4.检测器
要求:具有极高灵敏度,可柱端检测; 检测器、数据采集与计算机数据处理一体化; 类型 紫外-可见 检测限/mol 10-13~10-15 特点 加二极管阵列,光谱信息

毛细管电泳的原理

毛细管电泳的原理

毛细管电泳的原理
毛细管电泳是一种高效液相色谱技术,利用电场的作用将样品中的化合物沿着内径较小的毛细管进行分离和分析。

在毛细管电泳中,有两种常用的电泳模式:毛细管区带电泳和开列电泳。

毛细管区带电泳中,毛细管两端分别注入带有不同荧光标记的样品,再施加直流电场,荧光标记的样品由于在电场作用下带电移动,在毛细管中形成不同带电物质的区带;而在开列电泳中,毛细管中注入样品后,在施加电场的同时使用在线探测器进行实时监测,通过测量峰面积或峰高来判断样品的含量。

毛细管电泳的分离机理主要包括电泳迁移和色谱效应两个因素。

电泳迁移是指样品分子在电场作用下由于带电而移动,其移动速度与电场强度和分子带电量有关;色谱效应是指毛细管内壁与样品分子的相互作用,在毛细管中形成不同的分离机制,如离子交换、氢键作用、静电作用等。

毛细管电泳的原理还与毛细管内径、电场强度、缓冲液pH值
等因素有关。

毛细管内径越小,分离效率越高;电场强度越大,迁移速度越快,但也会增加毛细管的热效应;缓冲液pH值的
选择要根据样品的性质来确定。

在实际应用中,毛细管电泳具有分离效率高、分析速度快、耗样量小、操作简便等优点。

它广泛应用于生物医药、环境监测、食品安全等领域。

同时,还可以与其他技术如质谱联用,进一步提高分析的灵敏度和准确性。

毛细管电泳

毛细管电泳

种现象称为电渗流,用EOF表示。
一般情况下,电渗流的运动方向与电泳运动方向相反,
电渗流迁移速度与电泳速度一样,受电场强度、溶液粘度, Zeta电势等因素有关联。电渗速度(Veo)的表达式为: 电渗流迁移速度Veo = ── E 4 : 电解常数 : 毛细管壁与表面平切面的Zeta电势 :缓冲液黏度
(5)电势(Zeta Potential) 参与形成双电层被毛细管表面吸附的一层离子与溶液中的 游离阳离子之间会产生一个电势,称为毛细管壁Zeta电势 。毛细管壁为高电位区,中心点为低电位区,毛细管的半 径越大电位差越大,形成的电势越大。
(6)电渗流(Electroosmetic Flow) 用EOF表示 在高电压下毛细管电泳溶液中的正电荷与毛细管内壁表面 上的负电荷之间相互作用,导致流体朝负极方向运动,这
核磁共振检测器,灵敏度可达到10-21g
3.4制冷系统
(1)空气制冷:在毛细管分析室内输入制冷空气使毛细管迅
速冷却,达到制冷的目的。
(2)液体制冷:在毛细管的夹层中输入制冷液体达到制冷的
目的。
3.5电极槽 主要与存放电极缓冲液和进样,由于毛细管电泳是超微量 分析,电极液用量很少,使用的电泳槽很小。
(1)毛细管性质
不同材质制成的毛细管性能有所不同,
聚四氟乙烯毛细管:电渗小,但性能不太稳定。
普通玻璃毛细管:价格便宜,但电渗大,吸附作用大。 石英玻璃毛细管:性能稳定,电渗较大,但也有一定的 吸附。 (2)型号 细管(内经2-5m) 中粗管(内径 25-75m)
粗管(内径100-250m)
(3)毛细管的改性:
今后发展新型的毛细管电泳分离模式提供了依据。
1987年H.Jerten把等电聚焦电泳、凝胶电泳引入到毛细管 电泳中。 1989年改用10-25m的毛细管电泳,并获得满意的分离效果 1994 年又推出了 2 - 5m 的毛细管柱,使得毛细管电泳在 分析领域有了很大的发展。

生化仪器分析之“毛细管电泳”

生化仪器分析之“毛细管电泳”

2012-4-19
25
(二)新进展 微型化
• 在硅片上光刻出矩形槽作为毛细管,理论塔板 在硅片上光刻出矩形槽作为毛细管, 数105/m; ;
联用仪器
• CE-MS
阵列毛细管凝胶电泳
• 应用于人类基因 应用于人类基因DNA测序 测序
• 高效毛细管电泳技术概述 • 高效毛细管电泳仪仪器系统 • 高效毛细管电泳理论基础 • 高效毛细管电泳分离模式 • 高效毛细管电泳应用及进展
(二)电渗流 • 毛细管内壁表面的电荷所引起的管内 液体的整体流动,源于外加电场对管 壁溶液双电层的作用
电渗流的作用特点
使液体沿毛细管 壁均匀移动;
使携带不同电性 的分子均向负极 移动,中性分子 也随着电渗流一 起移动
电渗流 方向
样品分子 泳动方向
电渗流的流型特点
电渗流
HPLC
塞流 层流
高效毛细管电泳
加入高于胶束临界浓度的 表面活性剂
胶束电动色谱
• 使毛细管电泳不仅能分离离子化合物,而 且还能分离中性化合物 • 比高效液相色谱更为高效 • 比高效液相色谱更为高速
毛细管凝胶电泳
• 用多孔性的凝胶或其它筛分剂作介质,网 状结构,按分子的大小分离 • 是毛细管自由溶液区带电泳派生出的一种 电泳方式
高效毛细管电泳分离模式
毛细管区带电泳 毛细管胶束电动色谱 毛细管凝胶电泳 毛细管等电聚焦 毛细管等速电泳 毛细管阵列电泳
毛细管区带电泳
• 也称为毛细管自由溶液区带电泳 • 毛细管电泳中最基本的操作模式,应用最 广泛,是其它各种操作模式的母体
胶束电动色谱
• 以胶束为假固定相的一种电动色谱,是电 泳技术和色谱技术的结合
经典电泳技术与现代 微柱分离相结合的产 物。
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2.毛细管材料的影响 不同材料毛细管的表面电荷特性 不同,产生的电渗流大小不同
3. 电解质溶液性质的影响
(1)溶液pH的影响
对于石英毛细管,溶液pH增高时,表面电离多,电荷密度增加,管 壁zeta电势增大,电渗流增大,pH=7,将近达到最大; pH<3,完全被氢 离子中和,表面电中性,电渗流为零。
(4)毛细管等电聚焦(Capillary Isoelectric Focusing, CIEF) 是一种根据等电点的差别分离生物大分子的电泳技术。两性物质以电中性 状态存在时的pH值称为等电点,用pI表示。将被分离的物质和两性电解质混合 物装入毛细管,在电场作用下,不同等电点的两性载体电解质沿毛细管自动形成 pH梯度,被分离的两性物质各自迁移至其等电点,形成很窄的区带,分辨率很 高。
毛细管电泳仪主要构造
(1)高压电源
能输出0~30kV稳定、连续可调、极性可转换的直流电源,具有恒压、
恒流和恒功率输出,有些仪器还有电场强度程序控制。 (2)毛细管 内径20~100 μm、外径350~400 μm、长20~100 cm的弹性石英毛细管。
(3)缓冲液池 内装缓冲液,为电泳提供工作介质,要求体积小、清洗方便、对缓冲液呈化 学惰性。 (4)检测器
实际操作时,保持毛细管两端缓冲溶液平面高度相同。
毛细管电泳的几种分离模式
(1)毛细管区带电泳(Capillary Zone Electrophoresis, CZE) 是指溶质在毛细管内均一的背景电解质缓冲溶液中以不同速率迁移而 形成彼此分离的溶质带的电泳模式,分离的基础是淌度的差别。CZE只能分 析带有电荷的离子而不能分离中性物质。
1967年,Hjerten使用内径为3mm的石英玻璃管进行了自由溶液电泳。 1979年,Everaerts使用内径为200m的聚四氟乙烯管成功分离了16种有机酸。
1981年,Jorgenson和Luckas,用75m内径石英毛细管进行电泳分析,柱效高达 40万/m,促进电泳技术发生了根本变革,迅速发展成为可与GC、HPLC相媲美的崭新 的分离分析技术——高效毛细管电泳。
HPCE中的参数 1.迁移时间(保留时间)
HPCE兼具有电化学的特性和色谱分析的特性。有关色谱理论也适用。
t
Lef
V—外加电压;L—毛细管总长度;
ap

Lef
ap E

Lef L
ap V
2.分离效率(塔板数)
在HPCE中,仅存在纵向扩散,σ 2=2Dt
n
apVLef
5.其他影响因素 (1)电分散作用对谱带展宽的影响
当溶质区带与缓冲溶液区带的电导不同时,也造成谱带展宽;尽量 选择与试样淌度相匹配的背景电解质溶液。
(2)“层流”现象对谱带展宽的影响
一般情况下,HPCE中不存在层流,但当毛细管两端存在压力差时, 出现抛物线形的层流;
产生的原因:毛细管两端液面高度不同。
(2)胶束电动毛细管色谱
(Micellar Electrokinetic Capillary Chromatography, MEKC)
在缓冲溶液中加入大于临界胶束浓度(CMC)的表面活性剂。胶束相在分离中起准固定相 的作用,中性分子在胶束相和溶液(水相)间分配,疏水性强的组分与胶束结合的较牢, 流出时间长。
阻 力:F = fν 故: qE = fν
所以,迁移速度:
qE q E f 6π
(球形离子)
物质离子在电场中差速迁移是电泳分离的基础。 电泳淌度μ :单位电场强度下的平均电泳速度。
q E 6π

电渗现象和电渗流
electroosmosis and electroosmotic flow 当固体与液体接触时,固体表面由于某种原因带一种电荷,则因静电引力 使其周围液体带有相反电荷,在液-固界面形成双电层,二者之间存在电位差, 叫做Zeta电势 。在毛细管两端施加一个电压时,组成扩散层的阳离子被吸引而 向负极移动。由于这些离子是溶剂化的,故将拖动毛细管中的体相溶液一起向 负极运动,这种液体相对于固体表面的移动的现象叫电渗现象。电渗现象中整 体移动着的液体叫电渗流(electroosmoticflow ,简称EOF)。
无限稀释溶液中带电离子在单位电场强度下的平均迁移速 度,简称淌度。可在手册中查阅。
2.表观淌度 μap
离子在实际分离过程中的迁移速度(表观迁移速):
μap = μab + μEOF
带电粒子的迁移速度=电泳+电渗流;两种速度的矢量和。 正离子:两种效应的运动方向一致,在负极最先流出; 中性粒子无电泳现象,受电渗流影响,在阳离子后流出; 阴离子:两种效应的运动方向相反。ν电渗流 >ν电泳时,阴离子在负极最后流出。
毛细管内径小、进样量少,须采用高灵敏度的检测器。应用较多的有紫外-可 见吸收、荧光、电导检测器等。
类型 紫外-可见 荧光 激光诱导荧光 电导
检测限/mol 10-13~10-15 10-15~10-17 10-18~10-20 10-18~10-19
特点 加二极管阵列,光谱信息 灵敏度高,样品需衍生 灵敏度极高,样品需衍生 离子灵敏,需专用的装置;
HPCE 进样方式
(1) 流体力学进样方式 a、进样端加压 b、出口端抽真空 c、虹吸进样
进样体积 Pd 4π t 128L
(2)电动进样方式 毛细管一端插入样品瓶,加电压
( eo ef )Vπ r 2ct 进样量 t L
(3)扩散进样 试样通过扩散作用进入分离柱端口处
HPCE 基本操作
4. 温度的影响
毛细管内温度的升高,使溶液的黏度下降,电渗流增大。 HPCE中的焦耳热与背景电解质的摩尔电导、浓度及电场强度成正比。
温度每变化1℃ ,将引起背景电解质溶液黏度变化2%~3%;
5. 添加剂的影响
加入表面活性剂,可改变电渗流的大小 和方向; 加入不同阳离子表面活性剂来控制电渗 流。 加入阴离子表面活性剂,如十二烷基硫 酸钠(SDS),可以使壁表面负电荷增加, zeta电势增大,电渗流增大; 加入有机溶剂如甲醇、乙腈,通常使 电渗流增大。
电渗流: 直接影响分离情况和分析结果的重现性。
电渗流的流型
电荷均匀分布,整体移动,电渗流的流动为平流,塞式流动(谱带展宽很 小); 液相色谱中的溶液流动为层流,抛物线流型,管壁处流速为零,管中心处 的速度为平均速度的2倍(引起谱带展宽较大)。
HPCE中影响电渗流的因素
1.电场强度的影响 电渗流速度和电场强度成正比,当毛细管长度一定时,电渗流速度 正比于工作电压。
高效毛细管电泳技术
内 容
1 、 概述
2、 理论基础
3、毛细管电泳仪主要部件及功能
4、毛细管电泳应用
5、毛细管电泳技术展望


电泳技术发展
1809年俄国物理学家F F Reuss 首次发现电泳现象。他在湿粘土中插上带玻璃管的正负 两个电极,加电压后发现正极玻璃管中原有的水层变混浊,即带负电荷的粘土颗粒向正极移 动,这就是电泳现象。 1937年,蒂塞利乌斯( Tiselius,瑞典)将蛋白质混合液放在两段缓冲溶液之间,两端施 以电压进行自由溶液电泳,第一次将人血清提取的蛋白质混合液分离出白蛋白和α 、β 、γ 球 蛋白。1948年,获诺贝尔化学奖。 利用电泳现象对某些化学或生物物质进行分离分析的方法和技术叫电泳法或电泳技术。 按形状分类:U型管电泳、柱状电泳、板电泳; 按载体分类:滤纸电泳、琼脂电泳、聚丙烯酰胺电泳、自由电泳; 传统电泳分析:操作烦琐,分离效率低,定量困难,无法与其他分析技术相比。
2 DL

ap ELef
2D
;
tR n 5.54 Y 1/ 2
2
3.分离度
2(t 2 t1 ) R W2 W1
影响分离效率的因素
1.纵向扩散的影响
在HPCE中,纵向扩散引起的峰展宽:σ 2=2Dt
由扩散系数和迁移时间决定。大分子的扩散系数小,可 获得更高的分离效率,大分子生物试样分离的依据。 2.进样的影响 当进样塞长度太大时,引起的峰展宽大于纵向扩散。分 离效率明显下降;理想情况下,进样塞长度: Winj= (24D t )1/2 实际操作时进样塞长度小于或等于毛细管总长度的1%~2%。
1984年,胶束毛细管电动色谱问世,可分析中性物质。
1987年,毛细管凝胶电泳技术出现。
1992年,阵列毛细管电泳技术出现,并用于重要改进: 一是采用了小内径的毛细管,
二是采用了可高达数万伏的电压。
• 毛细管的采用使产生的热量能够较快散发,大大减小了温度效应,使电 场电压可以很高。 • 电压升高,电场推动力大,又可进一步使柱径变小,柱长增加, • 高效毛细管电泳的柱效远高于高效液相色谱,理论塔板数高达几十万块/ 米,特殊柱子可以达到数百万。
(2)阴离子的影响 电泳介质中由于各种阴离子的形状、大小、荷电量不同,它们的电 导率不同,因而电流会有很大差别,进而导致介质产生的焦耳热不同, 温度和黏度不同,电渗流的大小也不同。
(3)离子强度对电渗流的影响 缓冲溶液离子强度,影响双电层的厚度、溶液黏度和工作电流,明显影响电渗流 大小。缓冲溶液离子强度增加,电渗流下降。
3.焦耳热与温度梯度的影响 电泳过程产生的焦耳热可由下式计算:
V I 2 Q Λm cb E 2 πr L
m—电解质溶液的摩尔电导;I—工作电流:cb—电解质浓度;
散热过程中,在毛细管内形成温度梯度(中心温度高), 破坏了塞流,导致区带展宽。
改善方法: (1)减小毛细管内径; (2)控制散热;
电渗流的大小可用电渗速率
EOF / E
电渗淌度
EOF /
实际电泳分析,可在实验测定相应参数后,按下式计算
νEOF = Lef /teo
Lef —毛细管有效长度; teo—电渗流标记物(中性物质)的迁移时间。
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