植物组织与细胞培养试验指导
植物组织培养试验
植物组织培养试验《植物组织培养技术》实验指导实验一组培室设备参观及器皿的洗涤和灭菌一、目的要求：1.通过参观，了解组织培养室的几个主要组成部分和各部分应有的基本设备以及有关仪器的用途与功能。
2.通过实际操作，学会洗涤剂的配制和各种器皿的清洗和灭菌方法。
二、材料用具：高压灭菌锅、烘箱、超净工作台、双筒解剖镜、酸度测定仪、空调机、控温仪、百分之一与万分之一天平、电炉、玻璃器皿（试管、三角瓶、移液管、漏斗、烧杯、容量瓶、试剂瓶、量筒酒精灯），以及镊子、解剖刀、解剖针、手术剪，肥皂、洗衣粉、重铬酸钾、浓硫酸等。
三、说明：在进行各类具体的组培实验前，首先了解组培室的结构及主要设备的用途和性能是十分必要的,总体上的了解有利于以后各实验的进行以及正确的使用各种仪器和设备。
植物组织培养是一项十分细致的工作，为了保证植物外植体不受污染,第一关就是要对各种器皿进行清洗和消毒,使它们保持无菌状态，做这些工作同样有一套科学的方法和需要熟练的技巧，因此每个学生必须学好这套基本功。
四、方法和步骤：首先在老师带领下参观组培室，并听取讲解，然后配制洗液，称取工业用重铬酸钾40克，溶解在500ml在水中，然后徐徐加入450ml 粗制浓硫酸（或废硫酸）配好的溶液呈红色，铬酸洗液是一种强氧化剂，去污能力强，但玻璃器皿上沾有油脂、凡士林、石蜡等则用此液无效，铬酸洗液可反复使用，直到溶液呈青褐色为止。
此溶液腐蚀性强，洗涤时需注意。
每人清洗部分玻璃器皿，方法：清水洗净一泡入洗衣粉水溶液中进行洗刷f清水反复冲洗f蒸馏水淋一遍f烘干备用。
然后清洗部分较脏的玻璃器皿，方法：采用先碱后酸，即用洗衣粉洗刷后冲洗干净f晾干一侵入酪酸洗液，浸泡时间视器皿的肮脏程度而定f清水反复冲洗干净f蒸馏水淋洗一遍f烘干备用。
带有石蜡或胶布的器皿：先将其除去，再用常规洗涤，石蜡用水煮沸数次即可去掉，胶布粘着物则需用洗衣粉液煮沸数小时,再用水冲洗，凉干后浸入洗液，以后的步骤同前。
植物的组织_实验报告
一、实验目的1. 熟悉植物组织培养的基本原理和操作技术。
2. 掌握无菌操作技术，学会配制培养基。
3. 学习诱导愈伤组织形成的方法，并观察其生长情况。
4. 了解植物细胞的全能性及其在组织培养中的应用。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性，将植物的器官、组织或细胞在人工控制的条件下，诱导分化再生为完整植株的过程。
该实验主要包括以下几个步骤：外植体消毒、接种、愈伤组织诱导、再分化、生根、移栽等。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：小麦幼苗、MS培养基、愈伤诱导培养基、生根培养基、消毒剂（如70%酒精、无菌水等）、消毒工具（如解剖刀、镊子等）。
2. 实验仪器：超净工作台、高压灭菌锅、培养箱、显微镜、天平、烧杯、三角烧瓶、培养皿等。
四、实验步骤1. 外植体消毒：将小麦幼苗洗净，用70%酒精浸泡30秒，再用无菌水冲洗3次。
用解剖刀将幼苗切成1-2mm的段，用无菌滤纸吸干水分。
2. 配制培养基：按照实验要求，配制MS培养基、愈伤诱导培养基和生根培养基。
将培养基分装到培养皿中，高压灭菌30分钟。
3. 接种：将消毒好的外植体接种到愈伤诱导培养基中，每皿接种3-5段，每个处理重复3次。
4. 愈伤组织诱导：将接种好的培养皿放入培养箱中，在适宜的温度（25-28℃）和光照条件下培养。
观察愈伤组织形成情况。
5. 再分化：当愈伤组织形成后，将愈伤组织转移到再分化培养基中。
在适宜的条件下培养，观察愈伤组织再分化为芽和根。
6. 生根：当芽和根形成后，将植株转移到生根培养基中。
在适宜的条件下培养，观察植株生根情况。
7. 移栽：当植株生根良好后，将其从培养皿中取出，用无菌水冲洗根部，然后移栽到土壤中。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织形成情况：实验结果表明，小麦幼苗在愈伤诱导培养基中能形成愈伤组织，愈伤组织生长旺盛。
2. 再分化情况：愈伤组织在再分化培养基中能分化出芽和根，再分化效果良好。
3. 生根情况：植株在生根培养基中生根良好，根长且粗壮。
植物细胞与组织的实验原理
植物细胞与组织的实验原理植物细胞和组织的实验原理涵盖了多个方面，包括细胞结构的观察、组织培养和细胞分离等。
以下是对植物细胞与组织实验原理的详细解释：一、植物细胞结构观察实验原理：1. 细胞质染色观察：通过荧光染料如卡伦登染料或结构染料如甲苯胺蓝B染色剂对细胞膜、细胞质和核等结构进行染色，然后通过荧光显微镜或透射电子显微镜观察和记录。
2. 细胞器观察：通过不同的实验方法，如细胞器标记、免疫荧光染色或电镜观察等，来观察植物细胞中的细胞器，如叶绿体、线粒体、高尔基体、内质网和液泡等。
3. 细胞膜透明化和显微观察：通过染色和脱水技术，将植物细胞膜透明化，然后使用显微镜观察细胞膜的形态结构和细胞器的位置，以了解细胞内部结构的分布情况。
4. 细胞骨架的观察：通过染色和显微镜观察，可以研究植物细胞骨架的组成和结构，如微丝、中间丝和微管等，同时也可以观察细胞骨架在细胞分裂和细胞形态变化中的作用。
二、植物组织培养实验原理：1. 组织培养基的配制：根据植物组织的生长需求，配制含有不同植物激素和养分的培养基，确保组织的生长和分化。
2. 组织的获取和处理：从植物的茎、叶、根等部位获取组织，并通过消毒处理获得无菌组织。
3. 组织培养和细胞分裂：将组织接种在含有培养基的培养皿中，在合适的温度、光照和湿度条件下培养，通过细胞分裂和组织分化来获得较大量的细胞和组织。
4. 细胞分化和组织再生：通过调节培养基中激素的类型和浓度，可以促进细胞分化和组织再生，形成新的植株。
三、植物细胞分离实验原理：1. 细胞溶解：将植物茎、叶、根等组织切碎，使用酶解液或溶解液对细胞进行溶解，以释放细胞内的物质。
2. 细胞筛选：通过离心和过滤等方法，将细胞的碎片和其他细胞组分分离出来，然后使用显微镜或流式细胞仪等设备对特定细胞进行观察和分析。
3. 细胞培养：将分离的细胞接种在含有培养基的培养皿中，促使细胞再次生长和分裂。
4. 细胞检测和分析：通过染色、免疫荧光染色、酶活性测定等方法，对分离的细胞进行检测和分析，以研究细胞的类型、结构和功能。
细胞生物学实验指导（植物版）
细胞⽣物学实验指导（植物版）细胞⽣物学实验实验⼀不同显微镜的使⽤及细胞⼀般形态结构的观测[实验⽬的]通过本实验，使学⽣巩固普通光学显微镜的使⽤，学习相差显微镜、暗视野显微镜和荧光显微镜的使⽤⽅法，学习显微测量及显微摄影的操作⽅法，增强对细胞的形态和真实⼤⼩的感性认识。
通过本实验操作，要求学⽣掌握细胞形态结构的基本观测⽅法与技术，为进⼀步的细胞⽣物学研究打好基础。
[实验原理]应⽤显微镜的成像原理(详见翟中和等主编《细胞⽣物学》，第三章第⼀节)，同时借助显微镜的镜台测微尺和⽬镜测微尺，两尺配合使⽤，进⾏测量和运算，观察细胞形态，得出细胞的⼤⼩。
该实验完成需时6学时。
[实验材料、试剂和仪器]⼀、仪器普通光学显微镜、相差显微镜、暗视野显微镜、荧光显微镜、显微拍摄系统、37℃温箱、镜台测微尺、⽬镜测微尺等。
⼆、材料洋葱根尖切⽚标本，念珠藻永久装⽚，兔肝细胞标本，夹⽵桃花丝⽑细胞，⼈⼝腔上⽪细胞等。
三、试剂⽣理盐⽔，10µg/mL罗丹明123染液（溶于甲醇，避光于4℃保存）[实验步骤]⼀、暗视野显微镜观察夹⽵桃花丝⽑细胞1、取⼀张清洁的载玻⽚，滴上⼀滴⽣理盐⽔。
⽤镊⼦轻轻夹下⼀根夹⽵桃花丝，置⽣理盐⽔中，盖上盖玻⽚，略微压⽚，⽤滤纸条吸去盖玻⽚四周多余的⽔分。
2、将上述装⽚置于显微镜载物台上，在10×物镜下找到夹⽵桃花丝⽑细胞清晰的图像。
3、换上暗视野聚光器，调节⾄最佳位置，通过聚光器上的调中螺旋调节聚光器的中⼼位置，得到最好的暗视野图像效果。
4、观察夹⽵桃花丝⽑细胞内部的显微结构和细胞质环流现象，并拍照。
5、换⽤⾼倍物镜观察时，要换⽤与⾼倍镜相匹配的暗视野聚光器，重复以上调节步骤。
⼆、相差显微镜观察夹⽵桃花丝⽑细胞1、取⼀张清洁的载玻⽚，滴上⼀滴⽣理盐⽔。
⽤镊⼦轻轻夹下⼀根夹⽵桃花丝，置⽣理盐⽔中，盖上盖玻⽚，略微压⽚，⽤滤纸条吸去盖玻⽚四周多余的⽔分。
2、将装⽚置于载物台上，在明视野⽤聚焦螺旋聚焦样品，将观察到的夹⽵桃花丝⽑细胞移到视野中央。
植物组织培养实验指导
《植物组织培养》实验指导教师：任峻目录实验一参观植物组织培养实验室实验二培养基母液配制实验三培养基配制与灭菌实验四植物快速繁殖培养实验考核一、课程的性质与任务植物细胞工程实验技术一般包括植物细胞组织离体培养技术、细胞融合技术、细胞拆合技术、外源基因转移技术等一系列重要的基础技术。
通过实验课程的学习，实验方法立足于初学者的专业基础和一般实验室的条件，将《植物细胞组织培养技术》课程的理论知识、一般的实验技能和科学研究的初步方法融为一体。
培养学生理论联系实际、独立思考及实践动手能力。
二、实验的目的与基本要求通过本课程的学习使学生掌握植物细胞工程技术的基本原理和实验操作方法，掌握植物细胞体外培养技术，结合科研和生产实际，提高学生分析问题、解决问题的能力。
以适应今后在教学、科研和生产开发等各方面对当代生命科学人才知识结构的需求。
在实验教学过程中，要求学生学习态度严谨，操作动作规范，观察记录耐心细致，独立思考，综合分析实验结果，充分理解后认真地完成实验报告。
09本《植物组织培养》实验考核一、考核方式：实验操作。
二、考核时间：三、考核地点：四、监考教师：实验考核以实验操作形式进行，根据实验4或实验5实验的实验结果（失败或成功）决定实验方案，如果失败，分析失败原因，提出改进措施，在重做中进行实验操作考核，如果成功则继续下一步的实验，实施实验操作考核。
二．考核办法：考核方法主要观察学生的实验操作是否正确，污染率是否高，并要求学生写出实验报告，总结实验中常出现的问题。
在3个课时内小组协作完成实验内容。
包括以下几个方面：1．对实验仪器设备的选择及操作。
湿热灭菌操作过程；无菌操作过程。
2.培养基的配制试剂的配制；母液的移取；实验配方计算。
3.培养条件的设置。
4.实验报告的规范性与科学性。
实验一 参观植物组织培养实验室一、实验的目的和要求掌握植物组织培养实验室的设计要点和必备的仪器设备。
二、实验内容：1. 植物组织培养实验室的设计要点。
组织培养实验(植物部分)
组织细胞培养技术实验教案实验一植物组织培养的培养基的配制、灭菌与仪器操作培训实验二植物的离体培养实验三植物离体培养中的形态观察和愈伤组织继代培养实验四动物细胞培养的培养基配制灭菌与仪器操作培训实验五鸡胚原代细胞的培养实验六动物细胞的传代培养实验七动物细胞的冻存与复苏实验一植物组织培养的培养基的配制、灭菌与仪器操作培训【目的要求】学习并掌握植物组织常用培养基的组成、配制与灭菌方法。
培养基能够提供植物生长、繁殖所必须的各类营养物质，以及生长因子，是开展植物组织培养研究的基础和前提。
植物的种类不同，研究的目的不同，所需要的培养基的种类也各不相同。
【实验用品】1.实验用具：电子天平、烧杯、量筒、三角瓶或培养瓶、移液管、药匙、玻棒、pH试纸、吸耳球、牛皮纸、皮筋等。
2.药品：蔗糖、琼脂、0.1mol/L NaOH、0.1mol/L HCL、各种培养基母液、激素母液【内容与方法】1.分组配制培养基激素用分析天平称取生长素或细胞分裂素50-100mg。
生长素用少量95%的酒精或0.1mol/L 的NaOH溶解，细胞分裂素用0.1mol/LHCL加热溶解。
加蒸馏水定容至100ml配制成0.5-1mg/L的溶液。
∨激素﹦∨配制×培养基中所要求的激素浓度÷激素母液浓度2.湿热灭菌培养基称取规定数量的琼脂，加水到培养基最终容积的3/4，水浴或电炉使之加热溶解。
根据配方要求，把按顺序量取的各种母液以及称取的蔗糖，都加入煮好的琼脂中，然后加水定容。
用0.1mol/L的NaOH或者HCl调pH。
分装培养基，包好或盖好，标明编号。
121℃(103kPa)灭菌15-20min。
3.作好植物组织培养的各项准备工作制备无菌水：121℃ (103kPa) 灭菌40min；配制0.1% HgCl2溶液（放置棕色瓶中）；准备接种用培养皿、金属器械等用具。
注意：1.实验前1天，无菌培养室每天都要用0.2%的新洁尔灭拖洗地面—次，超净工作台台面每次实验前要用75％酒精擦洗。
植物组织培养实验指导
植物组织培养实验指导一、材料与设备准备1.植物材料：选择符合实验要求的植物组织，如茎段、叶片等。
2.吐温20：用于表面消毒材料。
3.植物生长调节剂：包括激素和营养成分等。
4.植物培养基：选择适合所培养植物组织的培养基。
5.培养器具：试管、蒸馏水瓶、烧杯等。
6.其他辅助材料：包括消毒用酒精、无菌操作需要的洁净衣和手套等。
二、无菌操作准备1.操作台面准备：清洁操作台面，并用75%酒精消毒，然后用紫外线灯照射30分钟。
2.实验者准备：穿戴洁净衣、口罩和手套，洗手并用75%酒精消毒双手。
3.工具准备：将试管、蒸馏水瓶等器具洗净，并用高温高压消毒或用离子蒸汽灭菌器进行灭菌。
三、无菌茎段培养实验步骤1.材料准备：选择健康的植物茎段，将其切成1-2厘米长的小段，洗净并去除表皮。
2.表面消毒：将茎段放入含有0.1%吐温20的蒸馏水中浸泡15-30分钟，再用无菌蒸馏水冲洗3-4次。
3.培养基制备：按照特定比例和配方制备适合茎段培养的培养基。
4.培养基固化：将培养基倒入试管中，约3/4满，然后用高温高压或离子蒸汽灭菌器进行灭菌，同时密封试管。
5.培养基接种：将消毒后的茎段放入培养基中，约每个试管放入1-2个茎段。
6.培养条件设置：将培养瓶在适宜的光照和温度条件下培养，通常为25摄氏度，光照强度为3000-5000勒克斯，光周期为16小时光照和8小时黑暗。
四、观察和记录1.培养基观察：每隔一段时间，观察培养基的颜色变化、植物组织的生长情况等，并记录下来。
2.茎段生长观察：观察茎段的生长情况，包括根的生长情况、叶片形态等，并记录下来。
五、结果分析与总结根据观察和记录的数据，分析植株生长的情况、比较不同处理之间的差异等，并对实验的结果进行总结和讨论。
六、安全注意事项1.在操作过程中要严格遵守无菌操作要求，避免细菌、霉菌等的污染。
2.注意使用化学试剂时的安全操作，避免直接接触皮肤和吸入有害气体。
3.实验完成后，洗手消毒，清洁操作台面，并关闭紫外线灯。
植物组织培养实验(1)
实验报告内容
实验名称 实验目的 实验原理 实验材料和用具 实验步骤 实验结果与分析
2. 分装。将培养基分装到8个50ml三角瓶中，培养 三角瓶中， 分装。将培养基分装到8 50ml三角瓶中 基厚度约为5mm。做好标记。 基厚度约为5mm。做好标记。 3. 灭菌。用高压蒸汽灭菌锅在121℃、 0.1MPa条件 灭菌。用高压蒸汽灭菌锅在121℃ 0.1MPa条件 下灭菌15～20min。操作按仪器操作步骤进行。 下灭菌15～20min。操作按仪器操作步骤进行。 灭菌后待压力下降到0Pa时取出 凝固后待用。 时取出， 灭菌后待压力下降到0Pa时取出，凝固后待用。
（三）实验材料和用具
实验材料： 实验材料：黄瓜种子 实验药品：灯用酒精、 70％酒精、 95％酒精、 实验药品：灯用酒精、 70％酒精、 95％酒精、 0.1％氯化汞，吐温-80，无菌水。 0.1％氯化汞，吐温-80，无菌水。 灭菌培养基： 灭菌培养基：MS 实验用具：无菌室、无菌滤纸、无菌培养皿、 实验用具：无菌室、无菌滤纸、无菌培养皿、烧 解剖刀、镊子、剪刀、酒精灯、酒精棉花、 杯、解剖刀、镊子、剪刀、酒精灯、酒精棉花、 滴管、记号笔、废液罐、火柴、光照培养箱。 滴管、记号笔、废液罐、火柴、光照培养箱。
当植株的其他部位难以消毒时，可以选用 当植株的其他部位难以消毒时， 种子， 种子，消毒后的种子在无菌条件下播种到 含有水－琼脂培养基上或1/10 MS培养基上 含有水－琼脂培养基上或1/10 MS培养基上 使其发芽。将无菌培养的幼苗切成小片， 使其发芽。将无菌培养的幼苗切成小片， 作为外植体。 作为外植体。
作业
1. 1 周后观察灭菌培养基有无污染 ， 计算污 周后观察灭菌培养基有无污染， 染率（染菌瓶数/总瓶数×100％ 染率（染菌瓶数 /总瓶数 ×100％ ），分析 染菌原因。 染菌原因。 2. 1 周后观察初代培养体系有无污染 ， 计算 周后观察初代培养体系有无污染， 每一瓶内染菌外植体数和外植体外的菌落 分析染菌原因。 数，分析染菌原因。 3. 1 周 后 观 察 种 子 发 芽 情 况 ， 计 算 发 芽 率 （发芽种子数/种子总数×100％）。 发芽种子数/种子总数×100％
植物组织培养实验
植物组织培养实验植物组织培养是指将植物的一些组织细胞分离出来，在特殊的培养基中进行培养和生长，目的是繁殖和获取大量的纯种植物。
本次实验通过试验实现相应的目标。
实验材料及器械：1. 培养基：MS培养基（Murashige和Skoog培养基）、B5培养基（Gamborg培养基）、N6培养基（Chu培养基）、KN培养基（Knudson培养基）等；2. 植物组织：初代愈伤组织，生长点、芽，小叶片；3. 水平台，无菌工作台，培养箱，显微镜，中性纸，平板培养瓶，筛网，剪刀，酒精灯，卷尺，移液枪，枪头等。
实验步骤：1. 资料准备：对不同材料的特点、培养基的制备方法及组成、实验的目的等进行归纳、总结和分析。
2. 组织处理：先将绿色植物的各种组织根据类型进行分离，选取具有分化能力的愈伤组织或生长点进行培养。
去除杂质后，取少量组织接种到平板培养瓶中，有的需要进行酶解，提高细胞分裂能力。
3. 培养基准备：按照MS、B5、N6、KN等培养基制备方法，称取培养基粉末，加入适量的蔗糖、植物激素等，将pH调整到5.8-6.2。
接种前对制备的培养基冷藏保存。
4. 组织接种：取出平板培养瓶，用无菌水加热消毒后，将组织以均匀的分布覆盖于培养基表面。
将试管装入培养箱中，控制温度、湿度、光照等条件进行培养。
5. 观察记录：每隔一段时间拿出培养样本，进行显微镜观察。
观察组织细胞的形态、颜色、大小、分化程度、生长情况等。
根据实验进程记录主要观察的实验数据。
实验结果及分析：1. 愈伤组织培养：初始培养时，愈伤组织的生长状况不同，在不同的培养条件下，细胞分化能力、再生器官的形成也有所不同。
初步培养的愈伤组织有不同的再生能力和生长状态：生长状况下降、枯死、增殖等。
愈伤组织需要在适宜温度、适宜光照的情况下进行培养，严格执行无菌操作，才能获得大量高质量的细胞。
在不同的培养环境下，诱导他们进行特定细胞分化，从而提高愈伤组织再生的成功率。
2. 生长点培养：生长点培养时，需要先将其消毒，以免污染飞溅到培养基上。
植物组织培养实验报告
植物组织培养实验报告实验报告：植物组织培养一、实验目的掌握植物组织培养的实验技术，培养植物组织，研究其生长过程和生理生化特性。
二、实验原理三、实验步骤1.提取组织：从植物器官中提取叶片、茎段等组织。
2.消毒处理：将提取出的组织进行消毒处理，浸泡在含有消毒剂的溶液中，达到杀灭外界微生物的目的。
3.培养基准备：配置适合植物组织培养的培养基，包括基础培养基和添加剂。
4.培养条件：将消毒处理后的组织置于培养基中，放置在恒温恒湿的培养箱中，设置适宜的光照和温度条件。
5.观察记录：观察组织在培养基上的生长情况，记录其形态变化、增殖情况等。
6.提取代表性样本：根据需要，提取生长良好、代表性的样本进行下一步的分析。
四、实验结果经过数天的培养，观察到了组织的形态发生了变化。
最初的组织经过消毒处理后放置在培养基上，经过一段时间的培养，发现组织逐渐增殖。
最初的组织形态变得模糊，开始出现小芽的形成。
随着时间的推移，这些小芽逐渐长大，发展成幼苗，并开始生长根系。
同时，观察到培养基的颜色也发生了变化，由最初的无色逐渐变为淡黄色。
五、实验分析由实验结果可知，植物组织培养可以通过一系列的人工控制，使植物细胞和组织在无菌条件下繁殖和发育。
通过调节培养基的配方、光照和温度等条件，可以控制生长的速度和分化程度。
实验中观察到的小芽和根系的形成表明植物组织在培养基上能够继续分化和增殖，这为后续的植物繁殖和基因改造提供了基础。
六、实验总结本次实验通过植物组织培养的方法，成功地培养出了植物幼苗，并观察到了其生长过程。
通过实验我们了解到了植物组织培养的基本原理和操作技术，并对植物的细胞分化和增殖有了更深入的了解。
植物组织培养作为一种重要的生物技术手段，不仅可以用于植物繁殖和育种，还可以应用于植物基因工程和药物研究等方面。
1.张三，李四，王五.植物组织培养技术的应用[A].植物生长与发育研究进展[C].北京：科学出版社。
2. Liu K，Liu G F.植物组织培养与应用研究进展[J]. 中国园艺科技.八、附录实验操作记录：日期操作内容观察结果XX月XX日提取叶片叶片消毒漂白后变白XX月XX日放置培养基出现小芽的形成.........注意事项：实验过程中需要严格遵守无菌操作规范，保持培养箱的洁净，避免外界微生物的污染。
植物组织培养实验指导
植物组织培养实验指导2012.3附录培养基母液的配制一、实验目的：掌握培养基母液配制的方法。
二、实验原理：配制培养基时，为了使用方便和用量准确，通常采用母液法进行配制，即将所选培养基配方中各试剂的用量，扩大若干倍后再准确称量，分别先配制成一系列的母液置于冰箱中保存，使用时按比例吸取母液进行稀释配制即可。
以MS培养基为例，所需配制的母液可分为：MS大量元素母液、MS微量元素母液、MS铁盐母液和MS有机化合物母液等。
另外，还要配制生长物质母液，在不同类型的培养基中使用。
三、实验器具与药品：电子分析天平、托盘天平、烧杯（50ml, 100ml, 500ml, 1000ml）、量筒（1000ml,100ml, 25ml）、容量瓶（1000ml,500ml,100ml）、药勺、称量纸、玻璃棒、滴管、电炉、冰箱。
配制MS培养基所需药品按培养基的配方准备。
植物生长调节物质，2,4-D, NAA, 6-BA等。
四、培养基母液的配制过程首先，按下表“MS培养基母液的配制”，将各种母液根据各自的扩大倍数，计算出扩大后的称取量，然后，分别进行药品称取和母液配制。
母液种类成分规定用量ml/L 扩大倍数称取量mg母液定容体积ml配1LMS培养基吸取量ml大量元素KNO3NH4NO3MgSO4·7H2OKH2PO4CaCl2·2H2O 190016503701704402038000330007400340088001000 50微量元素MnSO4·4H2OZnSO4·7H2OH3BO322.38.66.2 10002230086006200 1000 1KINa2MoO4·2H2O CuSO4·5H2O CoCl2·6H2O 0.830.250.0250.0258302502525铁盐Na-EDTAFeSO4·7H2O 37.327.8 10037302780 1000 10维生素和氨基酸烟酸甘氨酸Vit.B1Vit.B6肌醇0.52.00.10.51001002510052550001000 10（1）MS大量元素母液的配制按照MS培养基配方的用量扩大20倍，将大量元素配制成20倍的母液。
植物组织培养与细胞培养技术研究
植物组织培养与细胞培养技术研究植物组织培养与细胞培养技术是现代生物技术领域中非常重要的一部分，它的应用广泛，包括农业、林业、医药和生物工程等多个领域。
它能够对植物进行育种、繁殖、遗传转化和基因修饰等研究，对于保护生物多样性和实现农业可持续发展具有重要作用。
植物组织培养技术是指通过细胞分离培养基和生长因子的作用，使植物体内的一系列细胞体外生长繁殖，最终形成新的植物个体的过程。
它包括原生质体培养、愈伤组织培养和植物再生技术等。
原生质体培养技术是指通过将植物细胞进行分离和培养，培养出单个细胞，然后通过电融合或化学刺激等方式将不同种类的原生质体进行融合，形成新的杂交种，产生具有新特性的植物个体。
目前这种技术在植物育种中已经得到了广泛的应用，例如水稻、玉米、小麦等作物的培育，不但可以提高作物的产量和抗病能力，同时可以丰富作物种类，实现农业可持续发展。
愈伤组织培养技术是指通过将植物切割或切除部分组织，然后将其进行培养，形成愈伤组织，进而通过细胞分裂和分化，形成新的植物个体。
这种技术的优点是可以进行无性繁殖，大大加快了培养和繁殖的速度，并且可以对植物组织进行遗传转化，培育出具有新特性的植物。
植物再生技术是指通过植物体的组织或细胞进行分化和再生，形成新的植物个体。
这种技术的优点是可以进行整体遗传改良，包括基因改造、基因转移等技术，例如将抗病基因、抗虫基因、早期成熟基因等导入到目标植物中，提高植物的产量和抗病抗虫能力。
细胞培养技术是指将植物体内的细胞在无菌的培养基上进行细胞培养，形成细胞群落。
这种技术通常是在实验室环境中进行的，目的是对植物的生理和代谢进行研究。
应用广泛的包括植物激素的研究、药物代谢机制等。
植物组织培养技术的应用非常广泛，不仅可以对植物进行改良，还可以用来繁殖罕见和濒危物种，恢复和保护生态环境，解决农业生产和森林经营中的问题。
但同时也应该注意到，植物组织培养技术的应用还存在一些问题，例如容易产生变异、突变和杂交，导致植物品种的稳定性和一致性下降，需要加强对其安全性和环境风险的评估和管理。
细胞及组织培养实验报告
一、实验目的1. 熟悉细胞及组织培养的基本原理和操作步骤；2. 掌握无菌操作技术，培养植物愈伤组织；3. 了解植物细胞全能性的表现，加深对植物细胞分化和发育过程的认识。
二、实验原理1. 植物细胞具有全能性，即每个植物细胞都包含有该物种的全套遗传基因，在一定培养条件下每个细胞都可发育成一个与母体一样的植株。
2. 细胞及组织培养是将植物器官、组织或单个细胞在人工条件下，利用培养基的营养成分和适宜的环境条件，使其继续生长、分化、发育成一完整植株的过程。
3. 愈伤组织是指在培养基上，原本已分化停止生长的细胞，在一定条件下重新分裂，形成没有组织结构的细胞团。
4. 再分化是指在愈伤组织内部形成具有分生能力的小细胞团，进而分化成不同的器官原基。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：豌豆种子、MS培养基、乙醇、HgCl2（或次氯酸钠）、6-BA、琼脂等。
2. 实验仪器：高压灭菌锅、水浴锅、解剖刀、三角烧瓶（100mL）、烧杯、量筒、培养皿、超净工作台、分析天平、长镊子、剪刀、橡皮筋等。
四、实验步骤1. 配制培养基：将MS培养基、蔗糖、2,4-D、琼脂等试剂按比例混合，高压灭菌后备用。
2. 种子消毒：将豌豆种子用乙醇消毒，再用HgCl2（或次氯酸钠）消毒，然后用无菌水冲洗干净。
3. 取材：将消毒后的豌豆种子放入解剖刀，取豌豆的茎、叶等部位作为外植体。
4. 切割外植体：将外植体切成小块，用无菌手术刀将其切成约0.5cm×0.5cm的小块。
5. 接种：将切好的外植体接种到培养基上，注意保持无菌操作。
6. 培养过程：将接种好的培养基放入培养箱中，温度控制在25℃，光照强度为2000lx，光照时间为12小时。
7. 观察与记录：定期观察愈伤组织的形成和生长情况，记录愈伤组织的颜色、形状、大小等特征。
8. 再分化培养：当愈伤组织形成后，将其转移到再分化培养基上，观察根、芽等器官原基的形成。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织形成：经过一段时间培养，豌豆茎、叶外植体在培养基上形成了愈伤组织，愈伤组织呈淡黄色，质地柔软。
植物细胞培养的具体实验流程
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植物细胞组织培养技术实验指导书
T植物细胞组织培养技术实验指导书中国计量学院生命科学学院二零零六年七月《植物细胞组织培养》实验指导目录实验一、植物组织培养培养基母液的配制实验二、植物组织培养的培养基配制实验三、康乃馨的离体快繁实验四、胡萝卜愈伤组织的建立实验五、组织培养物的继代培养实验一组织培养基母液的配制一、仪器及药品冰箱、天平（0.0001g）容量瓶: 1000 ml, 500 ml、250 ml、100 ml、25 ml广口储液瓶：500 ml、250 ml、50 ml、25 ml烧杯：1000 ml 、500 ml 、250 ml、100 ml 、50 ml数十根玻璃搅棒、大药勺、小药勺或挖耳勺标签纸、胶水、50%酒精、95%酒精、1 mol/L盐酸、1 mol/L NaOH几种常用的培养基所需的大量元素、微量元素、有机物、激素、铁盐等药品蒸馏水二、方法和步骤：按照培养基配方,把大量元素、微量元素、铁盐、有机物、植物激素分类,每一类中各种药品分别称量,如N6培养基各种母液的配制步骤如下：大量元素母液：包括用量较大的几种化合物〈见N6培养基配方〉，按表中排列顺序,将每种药品的用量扩大10倍，分别称取，分别溶解，然后按照顺序混合在一起。
如钙盐等易发生沉淀的药品不能混合，应单位定容，最后加上蒸馏水，定容至1升或500毫升。
在定容时注意用蒸馏水洗净烧杯和玻璃搅棒以减少误差。
定容后的溶液为大量元素母液，配制培养基时，每配1 L培养基需吸取该母液l00 ml或50 ml。
微量元素母液：因用量少，为了称量精确和方便,常配成 100倍或1000倍的母液，即每种药品扩大l00倍或者l000倍。
逐个溶解，混合在一起成为微量元素母液，每配1 L N6培养基需吸取该母液10 ml或者1 ml。
铁盐：在N6培养基中需要单独配制，它是由硫酸亚铁（FeSO4•7H2O）2.78 g和乙二氨四乙酸二钠（Na2-EDTA）3.73 g，分别溶解，混合后，用酒精灯加热半小时以上，冷却后定容至1 L。
植物组织与细胞培养
植物组织与细胞培养：在无菌和人工控制条件下，利用合适的培养基，对植物的器官、组织、细胞或原生质体进行精细操作和培养，使其按照人们的意愿生长、增殖或再生的一门生物技术学科。
植物细胞全能性：任何具有完整细胞核的植物细胞，都拥有形成一个完整植珠所必须的全部遗传信息和发育成完整植株的能力。
初代培养：芽、茎段、叶片、花器等外植体从植物体上分离下来的第一次培养的过程。
继代培养：初代培养后，将组织转移到新的培养基上进行培养的都称为继代培养。
体细胞胚：植物组织培养过程中能够产生与正常合子胚相似的结构，由体细胞发育而成，也称为胚状体。
（离体）胚的培养：在无菌条件下将胚从胚珠或种子中分离出来，置于培养基上进行离体培养的方法。
外植体：从植物体上分离下来的用于离体培养的材料。
驯化现象：植物组织经长期继代培养，要加入生长调节物质，其后加入少量或不加入生长调节物质就可以生长，这种现象称为“驯化”现象。
玻璃化苗：当植物材料不断地进行离体繁殖时，有些试管苗的嫩茎、叶片往往会呈半透明水迹状，这种现象通常称为玻璃化，这种出现玻璃化现象的试管苗成为玻璃化苗。
愈伤组织：通常是指植物受到机械、动物或微生物等伤害后，创伤部位细胞脱分化而不断增殖形成的松散排列、无特定结构和功能的非器官化组织。
脱分化：已分化好的细胞在人工诱导条件下，恢复分生能力，回复到分生组织状态的过程。
再分化：脱分化后具有分生能力的细胞再经过与原来相同的分化过程，重新形成各类组织和器官的过程。
人工种子：人工种子是指植物离体培养中产生的胚状体或不定芽包裹在含有养分和保护功能的人工胚乳和人工种皮中所形成的能发芽出苗的颗粒体。
褐化现象：褐化是指在接种后，外植体表面开始褐化，释放出褐色物质，有时甚至会使整个培养基褐化的现象。
器官培养：以植物器官作为外植体进行离体培养，包括离体的根、茎、叶、花器和果实的培养。
原生质体培养：用酶及物理方法除去细胞壁，对所得到的原生质体进行培养的方法。
植物细胞工程实验指导
实验一植物组织培养培养基的配制【实验目的】通过实验，掌握常用MS培养基的配制。
【仪器及试剂】1．仪器：：500 ml试剂瓶4个，100 ml试剂瓶4个，高压灭菌锅，电子天平，烧杯（大、中、小各2个），玻璃棒，移液管，搪瓷缸，培养瓶，电炉，pH计或精密pH试纸，容量瓶（大、中、小各1个）2．试剂：见MS培养基的配制方法一览表【操作步骤】1、母液的配制：为了避免每次配制培养基时都要对所需的各种成分进行称量，人们便把培养基中必需的一些物质按原量的10倍、100倍或1000倍称量后放在一起，成为一种浓缩液，这种浓缩液就叫“母液”。
①大量元素：一般配成使用浓度的10－20倍，浓度太大的母液在冰箱保存时会结晶。
除钙盐外，其它大量元素按一定倍数分别称量并分别用蒸馏水溶解后混合在一起，最后加蒸馏水定容。
钙盐要单独配制，不能和PO43-、SO42-混合，以免生成Ca3(PO4)2或CaSO4，发生沉淀。
②微量元素：微量元素因用量小，为称量方便及精确起见常配成100倍或1000倍的母液，即每种化合物的量加大100倍或1000倍，逐个溶解并混合在一起。
③铁盐：微量元素中的铁盐是单独配制的，由硫酸亚铁（FeSO4·7H2O）5.56克和乙二铵四乙酸二钠（Na2-EDTA）7.46克溶于1升水中配成。
每配1升培养基加铁盐5毫升。
④有机物质：主要指氨基酸和维生素物质，它们都是分别称量及分别用容量瓶配成所需浓度（0.1－10毫克/毫升），用时按培养基配方中要求的量分别加入。
这些化合物都易溶于水，直接用水配制。
⑤生长调节物质：一般配成0.1－1.0毫克/毫升。
生长素类IAA、NAA、2,4-D等，配制时先按要求浓度称好药品，置于小烧杯中，用1－2毫升0.1 N氢氧化钠溶解，再加蒸馏水稀释至所需浓度。
如果用少量95％的乙醇来溶解亦可，有时效果不如氢氧化钠好。
配制细胞分裂素类物质时，则宜先用少量0.5 N或1 N盐酸来溶解，然后加蒸馏水至所需量。
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实验一实验室的组成、主要设备的使用方法及常用药剂的配制一、目的了解植物组织培养实验室的基本组成，掌握主要设备的使用方法及常用药剂的配制。
二、实验室的组成：参观本院的植物细胞与基因工程实验室。
三、主要设备的使用方法（课堂现场操作）纯水仪、高压灭菌锅、分析天平、微波炉、酸度计、超净工作台、摇床、生物显微镜、体视解剖镜等。
四、几种常用药剂的配制（一）、用95%酒精配比不同浓度酒精的配制。
学习配制70%和75%酒精。
（二）、消毒剂1、20%次氯酸钠溶液称取20g次氯酸钠用适量的去离子水（或蒸馏水）溶解，然后用去离子水（或蒸馏水）定容至100ml。
2、0.1%升汞（HgCl2）溶液称取0.1g HgCl2用适量的去离子水（或蒸馏水）溶解，然后用去离子水（或蒸馏水）定容至100ml。
（三）、洗涤剂1、2HCl酒精95%酒精100ml加入2mlHCl2、硫酸－重铬酸钾洗液称取10g重铬酸钾加入蒸馏水90ml，加热溶解冷却后，逐渐加入浓硫酸175ml，放入棕色玻璃瓶备用，（注意：切记不可将盛过洒精，甲醛等原剂的药品玻璃器皿直接泡入洗液在，因为重铬酸钾是一种强的氧化剂，一旦被还原氧化，洗液变绿，失去洗涤作用）。
这些器皿必须用自来水冲洗干净并晾干再浸入洗液。
（四）、1摩尔浓度NaOH 和1摩尔浓度HCl配制。
摩尔浓度是指用1升（1000ml）溶液中所含溶质的分子量数来表示的溶液的浓度。
用M表示。
1、NaOH摩尔浓度（M）NaOH摩尔质量=分子克数=40g1M NaOH是指1000ml溶液中含有40克摩尔质量的NaOH，现要配制100ml，即需NaOH 4g。
称取NaOH 4g，用少量去离子水（或蒸馏水）溶解，定容100ml.2、HCl的摩尔浓度具体配制酸的mol浓度时，应考虑原浓酸的比重mol浓度。
要求配制的mol浓度×需配制的体积×原酸分子量V＝———————————————————————原酸的百分浓度×原酸的比重×1000配制1.0M HCl 100ml，即量取38%，比重为1.19的HCl8.06ml加去离子水蒸馏水，定容至100ml。
思考题怎样构建商品性生产的组培室？实验二洗涤与灭菌植物组织培养能否成功重要的一环是在无菌条件下进行操作与培养，导致污染的来源主要有：⑴器皿和用具；⑵培养基；⑶培养材料；⑷工作人员本身；⑸操作时的环境。
防止污染的有效方法是将所有与培养有关的器皿，用具、培养基、接种室、培养室等进行灭菌和无菌操作。
一、洗涤（一）、玻璃器皿的洗涤1、新购置的玻璃器皿的洗涤因有游离碱性物质，使用前先用1%稀盐酸浸泡一夜，然后用肥皂水浸泡、洗净，清水冲洗，最后用蒸馏水冲洗一次，干后备用。
2、已用过玻璃器皿先将残渣除去，用清水洗净，再用热肥皂水或洗衣粉浸泡、洗净，然后用清水冲洗干净，最后用蒸馏水冲洗一次，干后备用。
3、对一些不宜刷洗的玻璃器皿如：吸管，滴管及较脏的器皿等先用去污粉和去油剂刷洗，自来水冲干净后，晾干，再浸入硫酸－重铬酸钾洗液中浸泡若干小时，用夹子取出在自来水冲洗干净，再用蒸馏水冲洗1－3遍，稍晾不滴水后置于干燥箱内烘干备用。
4、对带有凡士林，石蜡，或胶布的器皿选用特殊方法处理后，再用常规方法洗涤。
带有凡士林的器皿须先用废纸把凡士林擦去，再用汽油擦洗干净，然后用热肥皂水煮沸半小时，刷洗后，自来水冲干净。
若带有石蜡，可在玻璃器皿下垫几层废纸，放入60－70℃烘箱中加热1－2小时，待石蜡融化后，再用废纸反复擦2－3次即去石蜡，再泡入有洗衣粉的热水中洗干净，最后用自来水冲洗。
若有胶布粘着物，先用70%酒精棉球擦数遍，溶解粘胶物，并用少许去污粉刷抺，再用洗衣粉煮沸半小时，刷洗干净，自来水冲洗，晾干，备用。
(二)、金属器皿新购置金属器皿因其上有润滑油或防绣油，用蘸有四氯化碳（CCl4）布擦去油脂，再用湿布擦净，干燥备用。
二、灭菌（一）器皿和用具常用灭菌方法：1、热压灭菌法将洗净的培养器皿，用具，用牛皮纸包好，放入高压灭菌锅中，在1.1kg／cm2压力下灭菌20－30分钟。
2、干热灭菌法洗净的玻璃器皿置于电热干燥箱中，150℃40分钟或120℃两小时，待冷却后使用。
（二）、接种室、培养室的灭菌1、用新洁尔灭擦抺工作台，70%酒精擦拭超净工作台。
2、薰蒸用甲醛、高锰酸钾提前1－3天薰蒸密封房间：方法1：甲醛倒入蒸发皿加热，用量10ml/m2。
方法2：甲醛（HCHO）与高锰酸钾（KMn4）以10：1比例混合。
3、接种前用70－75%酒精喷雾，使飘在空气中的尘埃沉积下来。
4、用紫外光灯进行照射灭菌（波长2650－2660A最好）接种箱及用具20－30分钟。
（三）、培养基灭菌（略）（四）、培养材料灭菌（略）（五）、工作人员无菌操作（略）实验三培养基的制备植物组织培养的历史，紧密地伴随着培养基的研制史。
在离体条件下，不同种植物的组织对营养有不同的要求，甚至同一种植物的不同部分的组织对营养的要求也不相同，只有满足了它们各自的特殊要求，它们的生长才能尽如人意，因此，没有任何一种培养基能够适合一切类型的植物组织和器官，在建立一项新的培养体系时，首先必须找到一种能满足该组织诱导、增殖、分化、生长所需要的营养。
目前对比较适合多种植物的一般营养要求的培养基，已经有了相当多的配方可供选择(见表1)。
一、实验目的通过实验，学习和掌握培养基制备的方法二、实验仪器和药品分析天平、粗天平、高压灭菌锅、酸度计、电炉或微波炉、不锈钢锅或铝锅、三角烧瓶、烧杯、量简、容量瓶、移液管(1，2，5，10m1)、封口膜、玻捧、皮筋、储存培养基母液容器。
MS培养基所需的化学试剂，各种植物生长调节剂。
三、MS培养基的配制(一) 大量元素母液按培养基组分的10倍用量，称取各种大量元素，用蒸馏水分别溶解，逐个加入(力求Ca++、S04-、P04--错开，以免产生沉淀)，再定容至1000毫升。
此溶液为MS基本培养基中大量元素的10倍浓度母液。
(二) 微量元素母液硼、镍、锰、铜、钴等用量极少，可按配方100倍的量称取，溶解后混合，再定容至1000毫升，此溶液为MS基本培养基中微量元素的100倍浓度母液。
(三) 有机成分母液有机成分用量都极少，可按配方100倍的量称取，溶解后混合，再定容到1000毫升。
此溶液为MS基本培养基中有机成分的100倍浓度母液。
(四) 单独配铁盐及各种植物生长调节剂铁盐常配成100倍的母液，即取2.78克FeS04·7H20和3.73克Na-EDTA溶于1000毫升的蒸馏水中。
、各种植物生长调节剂配制，此类药物用量极少，久放容易变质，可分别配制0.1-1毫克／毫升的母液，有些物质不溶于水，如2,4-D、萘乙酸、吲哚乙酸等可用少量95％酒精溶解；动力精和6-苄基腺嘌呤可用少量1N盐酸溶解，再加蒸馏水定容，配叶酸时，先用少量稀氨水溶解，再加蒸馏水定容。
(五) 配制好的母液装瓶后应分别贴上标签，注明母液名称、浓缩的倍数、配制日期。
配制好的母液贮放在4℃水箱备用，在低温下可保存好几个月。
若发现有霉菌或沉淀产生时不能使用。
(六) 按所需容量分别吸取母液，混合在一起母液吸取量=需配培养基体积（ml）／称量扩大的倍数。
如，若配500毫升培养基，则其需要大量元素母液量50毫升，其它依次类推。
用蒸馏水定容到所需量后，直接加入蔗糖：接着进行PH值的调整(用NaOH或HCL调整)，加入琼脂0,6%~1％浓度(视琼脂质量而定)，煮沸至溶解，趁热分装到试管或三角瓶中，培养基约为试管的1／5---1／4，用封口膜封口。
然后放入高压灭菌锅中，采用1.1kg／cm2的压力灭菌15~20分钟。
然后，切断电源，让其自然降压，待压力接近零时，打开放气阀放气，待高压锅内的压力减至零时，打开锅盖取出被灭菌过的培养基。
思考题在培养基制备过程中应注意哪几些环节?表1 植物组织和细胞培养常用的培养基注：单位mg.L-1实验四植物营养器官培养植物营养器官培养主要是指植物根、茎、叶的无菌培养。
在植物组织培养这个范畴中，植物营养器官不但是研究得最多，而且在应用上也是卓有成效的方面之一。
其中如茎尖培养在去除病毒，解决引起作物退化的问题上(如土豆、甘蔗等)已得到某些抗菌良种，通过茎尖、茎段、叶片培养等技术，在快速繁殖兰花，草莓、刁柏、桉树、杨树等，已达到实际上的应用。
一．实验目的学习和掌握植物营养器官培养技术。
二．实验仪器及药品高压灭菌锅、电炉或微波炉、分析天平、酸度计(或PH试纸)、超净工作台、干燥箱、蒸煮锅、组培瓶、量筒、烧杯、容量瓶、移液管、封口膜，解剖刀、接种剪、镊子、酒精灯、无菌纸等。
配制培养基所需的各种化学试剂及所需的植物生长调节剂种类和数量。
三．实验材料植物的茎段、茎尖、叶片和叶柄均可，具体由学生自行选择。
四．实验步骤1．玻璃器皿清洗、烘干，接种室、超净工作台的表面消毒，无菌操作器械的灭菌等。
2．根据培养目的设计培养基培养基根据培养的目的由学生自行设计及配制。
3．培养基的灭菌培养基的灭菌参见实验三。
4．外植体的灭菌及接种选用的外植体，精心冲洗后，用70％乙醇消毒30s，用无菌水冲洗3次，再用0．1％氯化汞溶液浸泡5～10分钟，后用无菌水冲洗4~次，即可接种。
接种时，吸干外植体表面的水分，将外植体剪成相应的大小接种在培养基上。
接种后，在培养瓶上贴上标签，写上材料名称、日期、接种者的姓名，移入培养室进行培养。
5．培养条件：培养温度25℃±2℃，光强1500-20001x，光照时间12～14h／d。
6．生长和分化以花叶芋叶柄培养为例，接种培养半个月后，开始形成颗粒状的愈伤组织，二个月后，形成大量芽丛和愈伤组织。
此时，愈伤组织用于继代培养，芽丛转入生根培养基培养。
约过1个月，即可行试管苗移栽。
7．试管苗的移栽当根系长至1—1．5cm且处于生长旺盛期，即要及时进行试管苗移栽，移植前要打开三角瓶的封口膜炼苗2—3天，然后，洗净根部的培养基，栽入消毒过的土壤中，此时，要特别注意水、肥、温管理，使之成为一完整生产用苗。
思考题影响植物组织培养成败的因素有哪些?实验五花药培养诱导单倍体植株花药培养是将一定发育阶段的花药，通过无菌操作接种在人工培养基上进行离体培养，诱导其花粉发育为完整的植株。
植物的花粉是由花粉母细胞经过减数分裂形成的，其染色体是单倍性的。
用离体培养花药的方法，可以使其花粉发育成一个完整的植株，这植株就是单倍体植株。
通过这种诱发单性生殖(花药培养)的方法，使植物或其杂交后代的异质配子长成单倍体植株，再经染色体加倍成纯系，然后进行选育新品种。
这就是单倍体育种的理论根据，这种方法能够加快育种速度，提高选择效率。
此外，利用单倍体研究植物个体形态发生，遗传及变异规律等一系列问题，都具有重大意义。