收缩压下降曲线方式建立兔创伤性失血性休克模型

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家兔失血性休克实验报告【失血性休克及其抢救实验报告】

家兔失血性休克实验报告【失血性休克及其抢救实验报告】

2.2 仪器调试:在菜单中选择“血压〞。
下方做一“V〞型斜口,向心脏方向插入静脉插管,用已穿好的丝线扎紧
双击一通道,调整增益、采样参数,使基线归零,令图形位于屏幕 ZY, 插入管尖嘴部分稍后处,并以远心端丝线将插管缚紧固定,结扎血管同时
便于观看。
防插管从插入处滑出,静脉插管胜利后马上开始输液,并将输液速度调慢。
1.2 试验试剂:氨基甲酸乙酯,肝素,生理盐水;
13.5ml 由兔耳缘静脉内缓慢注入,留意观看家兔的反应。待麻醉后,将
1.3 试验仪器:铁架 XX,婴儿秤,RM6240 生物信号采集系统,手术剪 家兔仰卧固定于兔手术 XX 上,先后固定四肢及兔头。(以上步骤在做血压
1 把,止血钳,镊子,兔手术 XX,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血 调整因素时已完成)
Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhgic shock; microcircultion 1 试验材料
第1页共1页
1.1 对象:家兔 2.7kg;
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2.3 麻醉固定:家兔称重后,将氨基甲酸乙酯以 5ml/kg 的体重剂量
microcomputer biologicl signl cquisition nd processing system, the fourth chpter niml experiment technology. 3. The result: few bloodletting, blood pressure nd breth of decline, but in short time, rebounded, lrge bloodletting (45 ml), blood pressure, respirtory decline fster nd self recover cpcity reduction; Intrvenous tretment mesures for blood trnsfusion, roughly returned to norml. 4. Conclusion: smll mount of blood, the bodys own compenstory function cn mke blood pressure returned to norml; Excessive blood loss, the body will hppen decompensted role; The blood trnsfusion intrvenous tretment, blood pressure my restore bsic norml.

机能学实验 失血性休克及抢救

机能学实验 失血性休克及抢救

失血性休克及抢救学号xxxxxxx姓名xxxxxx 日期2010-5-28一.实验目的:1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机制3.分析失血性休克的抢救措施二.实验准备:1.动物:家兔一只,2.05kg,雄性2.药品:20%乌拉坦、肝素溶液(125U/ml)、3:2:1溶液(7.5%高渗盐水:低分子右旋糖酐:5%葡萄糖)、4% NaHCO3溶液、肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、异丙肾上腺素、多巴胺等3.器械:手术器械(剪毛剪,组织剪,止血钳,眼科剪,玻璃分针,止血夹等),注射器(50ml,20ml,10ml,1ml),针头(9号,16号),头皮针,动脉导管,气管插管,兔手术台,听诊器,压力换能器,HX200型呼吸流量换能器,RM6240多道生理信号采集处理系统。

三.实验步骤:1.家兔称后固定于手术台上,左耳耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦共12ml麻醉,待家兔麻醉后仰卧位固定于手术台上。

2.颈部剪毛,分离右侧颈总动脉,动脉插管,并连接三通管记录血压。

3.分离气管,做气管插管,插管另一端连接呼吸流量换能器。

4.将针形电极分别插入四肢踝部皮下,导联线按右前肢(绿)、左后肢(红)、右后肢(黑)的顺序连接,以记录心电图波形。

5.腹部左侧距中线2cm左右剪毛,做纵行切口,打开腹腔,牵出部分回肠,肉眼观察失血前后小肠微循环的变化。

6.连接RM6240信号采集处理系统,监测血压、呼吸、心电等生理指标。

7.从颈总动脉放血,至血压降至40mmHg左右停止放血,共放血20ml。

维持大约15min 后,做血气分析,并观察以上生理指标的变化。

8.失血性休克模型完成,实施抢救(以下均从耳缘静脉注射):(1)依次输全血5ml,3:2:1溶液10ml;(2)注射4% NaHCO3溶液5ml;(3)注射肾上腺素0.3ml;(4)注射酚妥拉明0.2ml;(5)注射异丙肾上腺素0.1ml;(6)继续扩容,依次输全血10ml,3:2:1溶液5ml;(7)注射去甲肾上腺素0.1ml,10min后再次注射0.2ml;(8)由于家兔血压一直维持在20mmHg左右,故继续采取扩容,注射肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等措施,但均未使血压恢复到正常水平,宣布抢救失败,实验结束。

创伤失血性休克中国急诊专家共识(2023-Ⅰ)

创伤失血性休克中国急诊专家共识(2023-Ⅰ)

紧急救治 — 出血控制
• 在面对不可控的致命性出血时,医生需要在挽救生命和 挽救肢体间做出正确的选择。
• 松开止血带的操作有突然增加出血或再灌注损伤的风险, 即便是在有条件的院内情况下 也应做好充分的快速控制 出血的准备。
止血带使用时的注意事项
• 部位 • 绑扎在出血部位近心端 10 cm 以上非关节部位,如出血 部位不明确,应将止血带打在肢体根部。
• 内介入栓塞止血后应动态评估控制出血的效果、尽早评价残 留缺血病灶对整体的影响,并明确手术治疗的方式与时机。
早期确定性手术
• 任何时候都不能放弃 I 期重建修复手术的可能,也不能将早 期姑息性手术作为手术医生经验与能力不足的补救措施。
• 手术治疗策略的选择也与创伤医生自身能力、医疗环境有极 大的关系,因此建议提高创伤外科医生综合救治能力,提升 创伤中心建设效能,从而在必要时做出更为符合患者利益的 决策。
创伤失血性休克中国急诊专家共识(2023) (一)
前言
• 创伤是青壮年人群的首要死因,约 30%~40% 的创伤 死亡因大量失血所致,失血也是严重创伤后“可预防性 死亡”的主要原因。
• 及时、快速控制出血,纠正失血性休克不仅可以有效减 少严重创伤后继发性损伤所致的并发症,还可以大大降 低“可预防性死亡”的发生。
• 对于创道细长的贯穿伤,特别是颈部难以控制的盲管伤 ,可将 Foley 导管直接插入伤口,通过扩张前端球囊达 到控制出血的目的。
紧急救治 — 出血控制
• 止血带适用于四肢致命性出血的快速控制,包括: • 穿通伤(穿透性、贯通性) • 爆炸伤 • 大面积软组织毁损伤 • 创伤性截肢
紧急救治 — 出血控制
• 止血带的并发症包括: • 神经损伤、肢 体远端缺血再灌注损伤 • 创面感染风险增高 • 骨筋膜室综合征 • 肢体远端丢失(非必要的截肢)

创伤失血性休克诊治中国急诊专家共识(2022版)考核试题及答案

创伤失血性休克诊治中国急诊专家共识(2022版)考核试题及答案

创伤失血性休克诊治中国急诊专家共调2023版)一、单选题1 .创伤性休克病人到达急诊室后,首先应()[单选题]*A、立即行X线检查B、剖腹探查,了解有无腹腔脏器损伤C、及时清创并包扎伤口D、应用血管活性药物E、建立静脉通道,补充足够血容量V2 .休克早期心、脑血流的灌流情况是()[单选题]*A、明显增加B、明显减少C、无明显变化VD、脑灌流量增加,心灌流量无明显改变E、脑灌流量无明显改变,心灌流量可明显增加3 .休克检测过程中,定期抽查动脉血气的目的是()[单选题]*A、可了解血液稀释或浓缩的程度B、了解休克时酸碱代谢变化的过程和严重程度√C、判断休克的预后D、有助于判断休克时机体内环境和酸碱平衡是否稳定E、帮助了解是否有发生DIC的倾向4 .补充血容量是抗休克的根本措施,应首先()[单选题]*A、全血B、血浆C、10%葡萄糖溶液D、右旋糖酊E、等渗盐水或平衡盐溶液V5 .对休克病人的护理中,不正确的是()[单选题]*A、应进行心理护理B、采取平卧位或休克臣M立C、可用热水袋、电热毯给病人保暖VD、给病人吸氧E、加强基础护理6.男性病人,45岁,十二指肠溃疡。

突发大量呕吐血约700m1,病人烦躁,面色苍白,皮肤湿冷,BP104∕90mmHg,P102/分,其表现属于:()[单选题]*A、休克早期√B、休克期C、休克晚期D、未发生休克E、虚脱7、各类休克的病理生理基础是()[单选题]*A、血压降低B、脉压减小C、有效循环血容量锐减和组织灌注不足VD、尿量减少E、中心静脉压下降8、休克指数(Shockindex f SI)⅛()的比值[单选题]*A、脉搏与舒张压B、脉搏与收缩压√C、舒张压与收缩压D、脉压差与收缩压9 .早期纠正创伤后凝血功能障碍,下列处理中最正确的是?()[单选题]*A、尽早大量输入血小板B、根据凝血功能指标结果选择治疗VC、早期大量输注新鲜冰冻血浆D、应用重组凝血酶原复合物10 .动态评估创伤失血性休克患者的意义是?()[单选题]*A、加重医务人员工作量B、可更及时判断病情变化C、可指导治疗调整改善预后VD、可减少无效的监测11 .关于创伤失血性休克治疗目标的描述,错误的是?()[单选题]*A、总体目标是改善微循环及氧利用B、所有阶段的治疗目标应相同VC、不同阶段可适当调整目标D、要针对不同阶段监测相关指标12 .关于氨甲环酸的使用,正确的是?()[单选题]*A、可预防和治疗创伤后凝血障碍VB、可促进凝血C、对所有创伤患者应预防使用D、不宜在创伤后使用13 .关于血乳酸监测的意义,说法正确的是?()[单选题]*A、可判断氧合状态B、与组织灌注无关C、可判断治疗效果及组织缺氧改善情况,D、单次检测即可14 .早期纠正创伤后凝血功能障碍,正确的做法是?()[单选题]*A、尽早大量补充血小板B、早期补充新鲜冰冻血浆VC、应用重组凝血酶原D、根据凝血指标结果治疗15 .关于低体温创伤患者的急救加温,正确的是?()[单选题]*A、都可在短时间内迅速加温B、保温毯即可解决问题C、可直接进行强制性加温D、ECMO是重要的加温手段√16 .创伤失血性休克最早的临床表现是?()[单选题]*A、低血压B、心率增快VC发绢D、神志改变17 .使用氨甲环酸预防凝血障碍的原则是?()[单选题]*A、所有创伤患者入院时预防使用B、存在出血时使用√C、出血停止后使用D、损伤时间越长越适合使用18 .血乳酸水平的持续监测可以判断?()[单选题]*A、肾功能状态B、氧合情况C、组织灌注是否得到改善VD、电解质水平19 限制性容量复苏的关键措施是?()[单选题]*A、尽量达到正常血压B、采取可允许性彳氐血压复苏VC、不进行液体治疗D、根据标准方案输液20 .防治创伤失血性休克患者低体温的关键是?()[单选题]*A、加温毯B、进行强制性加温C、降温治疗D、尽量保温√21 .以下关于休克的急救原则,正确的有()[多选题]*A、尽快补充血容量VB、如果是失血所致休克,补液的同时立即止血√C、补充血容量同时积极处理原发病VD、对于疼痛病人可应用止痛药物E、先止血,后补液22 .治疗休克时,除尽快恢复有效循环血容量外,还应()[多选题]*A、积极处理原发病VB、改善心脏功能VC、纠正微循环障碍√D、恢复正常代谢√E、预防并发症V23 .以下哪些表现提示休克病人血容量已补足()[多选题]*A、神志逐渐转清醒√B、四肢温暖、口唇红润√C、CVP上升至U12CmH20√D、脉压大于3OmmHg√E、外周静脉充盈√24 .关于休克的表现,下列正确的是()[多选题]*A、四肢湿冷√B、收缩压<90mmHg√C、尿量<3Om1∕h√D、脉压<30mmHg√E、脉搏<90次/分三、判断题1 .休克指数的正常值为O.5~0.8[判断题]*对V错2 .创伤失血性休克是指创伤造成机体大量失血所致有效循环血量减少、组织灌注不足、细胞代谢紊乱和器官功能受损的病理生理过程。

休克分类与休克指数ppt课件

休克分类与休克指数ppt课件
为了规范事业单位聘用关系,建立和 完善适 应社会 主义市 场经济 体制的 事业单 位工作 人员聘 用制度 ,保障 用人单 位和职 工的合 法权益
(1)失血性休克: (2)感染性休克: (3)创伤性休克: (4)低血容量性休克: (5)心源性休克: (6)神经性休克: (7)过敏性休克:
病因学分类
为了规范事业单位聘用关系,建立和 完善适 应社会 主义市 场经济 体制的 事业单 位工作 人员聘 用制度 ,保障 用人单 位和职 工的合 法权益
血流动力分类法
1.低血容量休克
2.心源性休克
3.梗阻性休克
4.分布性休克
(有效循环血量减少)(心脏的泵功能衰竭) (血流通道受阻) (微循环分布性缺欠)
失血性休克 感染性休克 创伤性休克 神经性休克
创伤性休克
感染性休克 创伤性休克 过敏性休克
为了规范事业单位聘用关系,建立和 完善适 应社会 主义市 场经济 体制的 事业单 位工作 人员聘 用制度 ,保障 用人单 位和职 工的合 法权益
各种休克间的关系
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
为了规范事业单位聘用关系,建立和 完善适 应社会 主义市 场经济 体制的 事业单 位工作 人员聘 用制度 ,保障 用人单 位和职 工的合 法权益
休克指数
休克指数=脉搏/收缩压,辅助判定休克的有无及轻重
0.5为正常
=1为轻度休克,失血20%-30%
>1为休克
>1.5为严重休克,失血30%-50%
>2为重度休克,失血>50%

家兔失血性休克及救治实验设计 - 副本

家兔失血性休克及救治实验设计 - 副本

家兔失血性休克及救治实验设计【实验目的】1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型;2、观察失血性休克发生前后家兔的血压、心率、呼吸频率等生理指标的变化;3、观察和了解休克发生、发展过程中,实验动物肠系膜微循环血液灌流的变化特点;4、讨论实验指标变化的原因及其病理生理学意义;5、了解失血性休克的治疗,探讨失血性休克的发病机理,根据该发病机理设计救治措施并实施,根据观察抢救后动物功能代谢变化、微循环改变及血气指标变化验证救治措施是否有效。

【实验原理】休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少,是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或弥散性血管内凝血期)。

但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环状态。

具体至本实验所用盐酸多巴胺而言,其主要激动α受体、β受体和多巴胺受体,中等剂量能增加心肌收缩力及心搏出量,收缩压升高而不易诱发心律失常。

值得注意的是,由于组织灌注减少,促使发生无氧代谢,导致血液中乳酸含量增高引发代谢性酸中毒,故本实验需要静脉注射NaHCO3以纠正代谢性酸中毒【实验对象】家兔,体重2.0~2.5kg。

【实验器材】PowerLab 10T 主机,曲臂显微镜,微循环生物信号处理系统,i-STAT血气分析仪,兔台,电子天平,酒精灯,石棉网,手术器械一套,动脉插管2个,钢针3枚,动脉夹2个,血气分析片3片,气管插管,静脉插管各一个,150ml烧杯2只,5ml、20ml、50ml注射器各3支。

家兔失血性休克实验设计

家兔失血性休克实验设计

家兔失血性休克实验设计实验背景:失血性休克是由于大量失血导致循环血量减少、组织缺氧和血压下降的一种病理状态。

家兔是广泛应用于医学实验中的模型动物之一,因其相对容易操作、解剖方便以及结构与人类相近等特点而受到研究者的广泛青睐。

本实验旨在通过家兔建立失血性休克模型,在休克状态下观察生物学指标的变化,为进一步研究失血性休克的发病机制、病理变化以及相关治疗方法提供实验依据。

实验设计:1.动物选择和处理:选择健康的成年家兔作为实验对象,除毛洗净并寄生虫处理,随后进食禁食12小时,并限水制禁水12小时。

2.分组设计:将家兔随机分为实验组和对照组,每组10只家兔。

实验组:进行失血性休克模型制备,并观察指标变化。

对照组:未进行任何处理,作为对照。

3.失血性休克模型制备:3.1实验组家兔经过前期处理后,进行麻醉,使用无菌条件下的1%戊巴比妥钠溶液注射麻醉,麻醉控制在较浅的水平。

3.2每只家兔将其右侧颈部动脉用吸引管插入失血组中,通过微创方法控制失血量。

3.3失血量控制为总血量的30%,通过控制失血时间和抽取失血速度实现。

3.4控制失血后立即停止失血,并进行下一步观察。

4.实验观察指标:4.1血压测定:使用无菌条件下的血压计测定家兔麻醉前和失血后不同时间点的平均动脉血压。

测定方案:在颈部动脉上一根合适的动脉进行逐秒测量,记录测得的数据并计算平均值。

4.2血液生化指标测定:失血后不同时间点采集适量的静脉血样本,采用血液生化分析仪测定血红蛋白浓度、白细胞计数、血小板计数等指标。

4.3组织病理学观察:失血后不同时间点处死家兔,取出心脏、肝脏、肾脏等重要器官进行组织取样,固定、染色、制片并进行镜检。

5.数据处理和统计:将数据进行统计学分析,使用SPSS软件进行方差分析,结果以均值±标准差表示,并进行显著性检验。

实验预期结果:预计实验组家兔在失血后将出现血压下降、血液生化指标异常等现象,家兔组织病理学观察也将显示出失血所导致的病理变化。

休克分类与家兔休克模型建立方法

休克分类与家兔休克模型建立方法

xu mu shui chan摘要:休克是兽医临床上的常见症状,是各种强烈致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭。

引起休克的原因很多,但为了便于临床兽医诊断治疗,将休克按照发生的始动环节,分为低血容量性、心源性和血管源性休克三类。

休克动物实验模型是研究休克发病机制及有效治疗方法的主要方式。

本文主要分析几种常用家兔休克模型建立,为兽医临床诊断治疗和今后的相关研究提供重要参考。

关键词:家兔;休克模型;始动环节;建立方法中图分类号:R459.7文献标识码:ADOI 编号:10.14025/ki.jlny.2018.14.043洪菲,梁晚枫*(延边大学,吉林延吉133000)休克分类与家兔休克模型建立方法休克是由于微循环有效灌流量不足而引起的动物各组织器官缺血、缺氧、代谢紊乱、细胞损伤以致严重危及生命活动的过程。

临床的主要表现为患病动物体温突然降低,血压下降,心跳加快,脉搏细弱,皮肤湿冷,可视粘膜苍白或发绀,耳鼻及四肢末端发凉,静脉萎缩,尿量减少或无尿,精神高度沉郁,甚至昏迷和死亡[1]。

人类对休克的理解经历了不同的时期。

休克最初被意识到是机体遭受强烈刺激而产生的危机状态,只限于对休克临床症状的描述和识别。

随着实验生理学的发展和研究,发现休克时血液循环严重障碍,动脉血压降低是其发生发展的关键,认为休克的症状是由血压降低所致,判断休克的标准为血压下降,治疗休克的主要措施是使用升压药。

但是使用升压药并不能挽救休克患者,有些病畜经过升压后,情况不但不能改善,甚至病情反而恶化。

后来由于微循环研究的发展,经研究和大量实验发现休克时有明显的微循环障碍,组织器官的机能、代谢障碍与微循环动脉血液灌流量有关,而且微循环障碍往往发生在血压降低之前,休克初期因小动脉收缩,血压降低一般不明显或不降低,但微循环已经出现明显出血。

所以任何原因引起的休克都是由于微循环有效灌流量的急剧减少,以致重要的动物器官组织因缺氧而发生的机能和代谢障碍,这是各种休克共同的发病环节。

实验 家兔失血性休克及其抢救 gyx

实验   家兔失血性休克及其抢救   gyx

实验家兔失血性休克及其抢救【实验目的】1. 复制失血性休克的动物模型。

2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压的变化及微循环改变,了解失血性休克的病理生理过程。

3.了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。

【实验原理】休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血性休克是临床上常见的急症,由于血容量减少,机体有效循环血量降低,从而使机体重要脏器血液灌流减少,而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器官的缺血,使器官功能进一步障碍。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或DIC期)。

但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

本实验采用颈总动脉放血方法,造成机体有效循环血量减少,复制失血性休克。

通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官的功能障碍,加深对失血性休克的认识。

由于微循环障碍是失血性休克的基础,治疗的主要措施就是改善微循环灌流,因此,实验中采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌流状态,对失血性休克进行抢救。

【实验对象】家兔【实验学时】4学时【器械与药品】常规手术器械,气管插管,动脉套管,动脉夹,婴儿秤,兔固定台,5ml、20ml、50ml 注射器,输液装置,水检压计,二道生理记录仪,滤纸,烧杯,丝线,粗棉线。

20%乌拉坦,1%肝素,3.8%枸橼酸钠,生理盐水。

【步骤与方法】1. 麻醉和固定家兔称重后,自耳缘静脉注射20%乌拉坦(5ml/kg.bw)进行全身麻醉,动物仰卧固定,剪去手术部位被毛。

家兔失血性休克及抢救实验报告

家兔失血性休克及抢救实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔失血性休克及抢救实验报告篇一:休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型,观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。

探讨其发生机制。

2.用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克,观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。

二、实验材料和方法实验器械:兔手术台,常规手术器械,注射器,动脉夹,动脉插管,电刺激连线,血压换能器,三通管,铁架台,棉线,纱布实验仪器:电脑,Rm6240生物信号采集系统实验药品:20%氨基甲酸乙酯,肝素,生理盐水0.1ml/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试:首先打开电脑,选择medLab生物信号处理系统;从第1、2、3通道中选择1个通道,记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。

其次将血压换能器连接线与相应的通道相连,检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡,先清零,血压0mmh2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只,称重:2.8Kg,用20%氨基甲酸乙酯以5ml/Kg (体重),耳缘静脉缓慢注射麻醉,共注射14ml,至呼吸深而慢、反射迟钝(角膜反射、夹肢反射)为止。

把兔子以背位固定法固定。

3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管(1)颈部备皮,作颈部,正中3~5cm切口,左右颈总动脉分离,穿线标记,备用。

(2)左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化,左颈总动脉远心端结扎,近心端动脉夹夹闭,动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入,结扎固定。

放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。

(3)右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。

右颈静脉近心端动脉夹夹闭,远心端结扎,静脉前壁倒“V”切口,输液管插入,固定。

缓慢输液,保持通畅。

(4).右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器(其中保留少许肝素液)和动脉插管中空气,右颈总动脉远心端结扎,近心端动脉夹夹闭,动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入,结扎固定。

实验四家兔失血性休克

实验四家兔失血性休克

实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型;观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化;探讨失血性休克的发病机制。

【实验原理】采用动脉放血的方法,造成家兔失血,使其组织血液灌流量急剧减少,导致微循环障碍,复制失血性休克。

通过及时输血、补液,补充血容量,抢救休克。

【实验对象】家兔。

【实验药品和器材】2%的普鲁卡因,生理盐水,肝素,动脉插管,BL-410生物机能实验系统等。

【实验步骤】1.选取健康家兔一只,称重,固定于兔台上,剪去颈部、腿部的兔毛,进行基础局部麻醉。

2.分离颈动脉,穿线以备插管。

3.分离股动脉,穿线以备插管。

4.从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。

5.插管生理盐水排气,选择通道,进行电脑调零。

6.结扎颈动脉和股动脉的远心端,止血夹夹住近心端,进行颈动脉插管,股动脉插管。

7.从股动脉取5ml血液,标记为①,以待测HCT。

8.观察血压、心率、呼吸、角膜反射,球结膜血管充盈度,HCT。

9.继续从股动脉放血(约30-40ml,加入混有生理盐水和肝素的杯子中),直到血压下1/2。

记录下此时的血压。

10.10-15min之后,观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度,取5ml血液标记为②,待测HCT。

11.将①②4000转离心五分钟,记录HCT的数据。

12.静脉快速回输血液救治,血压回升后再次观察上述各项指标,记录下观察结果。

【实验结果】放血量:30ml观察指标放血前(正常)放血后输血输液后(理论结果)角膜反射(+/-) + + +球结膜血管充盈度充盈充盈充盈心率(次/分)115 57 110呼吸正常加深加快逐渐恢复正常血压(详情见图)正常先下降后有所回升缓慢上升至正常HCT 44 32 43【实验讨论】1.机体一般失血多少可以引起休克?答:机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%,超出机体代偿的能力,即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。

2.机体失血后为何导致相关生理指标的变化?答:①失血性休克时,刚开始血压降低,失血休克代偿期,血压有所恢复,心率加快。

急诊科创伤性失血性休克的救治策略与讨论

急诊科创伤性失血性休克的救治策略与讨论

创伤性失血性休克的手术治疗
紧急手术
针对出血部位进行止血手术,如 血管结扎、脾切除、血管修补等 。手术应在全身情况允许的情况 下尽快进行。
损伤修复
在控制出血后,对其他损伤进行 修复,如骨折复位固定、脏器修 复等。
术后管理
术后要加强监测,保持血压、呼吸、心率、尿量等指标稳定。积极预防感 染和并发症,如肺栓塞、深静脉血栓等。
心电监护
密切监测患者的心律和血压,及 时发现心律失常或血压下降。
创伤性失血性休克的液体复苏策略
目标
恢复血容量,改善组织灌注,维持血压稳定。 避免液体超负荷,防止肺水肿和脑水肿。
原则
• 快速输液,早期大剂量,持续监测。 • 选择合适的液体种类,根据患者情况调整。 • 注意监测血压、心率、尿量和呼吸等指标。
尿量
尿量反映了肾脏的灌注情况, 休克时尿量减少,是肾脏功能 受损的表现。
意识状态
意识状态反映了脑部缺氧的程 度,休克时意识状态会下降, 严重者可出现昏迷。
创伤性失血性休克的初步评估
生命体征监测
1
包括血压、心率、呼吸频率、体温等,评估患者循环状
态及生命体征的变化。
2
伤情评估
快速评估患者受伤部位、出血量、出血速度以及是否有
创伤性失血性休克的预后影响因素
患者的年龄与基础疾病
患者的年龄越大,基础疾病越 严重,预后越差。
创伤的严重程度
创伤的严重程度越高,失血量 越大,预后越差。
救治措施的及时性和有效 性
救治措施越及时有效,预后越 好。
患者的营养状况
患者的营养状况良好,预后越 好。
创伤性失血性休克的救治流程 图
创伤性失血性休克的救治流程图应包括以下关键步骤:初期评估、液体复苏、 止血、输血、并发症预防、手术治疗以及转运原则。流程图的建立有助于医务 人员规范救治流程,提高救治效率,降低病死率。

家兔失血性休克模型制作与微课的教学应用

家兔失血性休克模型制作与微课的教学应用

家兔失血性休克模型制作与微课的教学应用作者:宋园园杨成梅等来源:《发明与创新(职业教育)》 2020年第5期宋园园杨成梅任家荣成怡璇王明辛段常乐(山西医科大学晋祠学院,山西太原030000)摘要:家兔失血性休克实验是医学机能学实验教学中的重要组成部分。

在日常教学过程中,传统教学方法存在一定弊端,加之现在多数高校具备多媒体教学条件,因此通过录制微课对实验过程进行详细讲解,可以充分调动学生学习兴趣,对其深入理解和掌握有关休克理论具有重要意义。

关键词:家兔失血性休克;微课;教学医学机能实验学教学是基础医学中的一个重要组成部分。

休克是临床上,尤其是危急重症过程中常伴随的病理生理学过程。

抢救休克对挽救病人的生命具有及其重要的意义。

因此休克一直以来都是病理生理学课程当中的经典内容[1]。

在实验中按照标准教学条件,每个实验小组应在4~5人,但由于实验条件的诸多限制,往往都达不到此标准。

每次教师在进行演示教学的时候,绝大多数学生都不能近距离地观看到演示的细节,因此这也是导致学生做实验困难的原因之一。

为了解决这一问题,我们尝试对家兔失血性休克的实验过程录制视频,并配合讲解,让学生更加容易理解实验过程和深刻掌握休克的理论知识。

一、家兔失血性休克模型制作(一)材料1.实验对象:家兔,雌雄不限,健康良好。

2.实验器材:家兔手术器械一套、BL-420生物机能实验系统、压力换能器、张力换能器、气管插管、动、静脉插管、小烧杯、注射器50、10、5ml各一个,兔台、婴儿秤、纱布、棉线。

3.实验药品:生理盐水、0.5%肝素、25%乌拉坦、1:10000去甲肾上腺素。

(二)方法1.称重与麻醉:家兔称重后,25%乌拉坦溶液(4ml/kg)由耳缘静脉推注(注意观察动物肌张力、呼吸频率、疼痛反射、角膜反射的变化,防止麻醉过深),麻醉完成后仰卧位固定于手术台上。

2.插管:剪去兔子颈部被毛,做颈正中切口,分离出气管、双侧颈总动脉和一侧颈外静脉,分别于气管、颈外静脉及一侧颈总动脉插管固定,连接到生物机能实验系统,从静脉插管处注入2-3ml0.5%肝素,家兔血液肝素化。

家兔失血性休克实训报告

家兔失血性休克实训报告

一、实验目的1. 了解失血性休克动物模型的复制方法,并复制失血性休克的动物模型。

2. 观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变。

3. 了解失血性休克的治疗,探讨失血性休克的发病机理及救治措施。

二、实验原理休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少,是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或DIC期)。

但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环。

三、实验材料与仪器1. 实验动物:家兔2. 仪器:血压计、心电图机、呼吸机、手术器械、注射器、药物(阿拉明、多巴胺等)3. 药品:生理盐水、肝素、肾上腺素、去甲肾上腺素等四、实验方法1. 家兔麻醉:采用腹腔注射戊巴比妥钠进行麻醉。

2. 建立动物模型:通过手术暴露心脏,采用心脏穿刺术进行失血,失血量约为总血量的20%。

3. 观察指标:血压、心率、呼吸、微循环变化。

4. 休克抢救:采用阿拉明、多巴胺等药物进行抢救,观察治疗效果。

五、实验结果1. 休克早期:动物血压降低,心率加快,呼吸加快,微循环出现淤血现象。

2. 休克期:动物血压持续降低,心率持续加快,呼吸变浅,微循环淤血加重。

3. 休克晚期:动物血压降至最低点,心率减慢,呼吸停止,微循环衰竭。

4. 抢救治疗:阿拉明、多巴胺等药物治疗后,动物血压逐渐升高,心率逐渐恢复正常,呼吸逐渐加深,微循环得到改善。

家兔失血性休克模型

家兔失血性休克模型

家兔失血性休克的模型班级:2014级临床专升本班组别:第2实验室第1组组长:郭财进组员:徐冰孙荣贺顾春晓杨飞飞周志豪家兔失血性休克的模型郭财进徐冰孙荣贺顾春晓杨飞飞周志豪(吉林医药学院:临床医学院2014级临床专升本班,吉林132013)【摘要】学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其代偿机制,方法:家兔麻醉后,分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管,正确连接管道并用肝素冲洗,进入电脑程序,描记正常血压,快速放血,使血压维持60mmHg,血压稳定后,夹闭右颈总动脉,记录并观察血压变化。

待血压稳定后,再放血,使血压降至40mmHg并维持,在维持期间的20min 内记录并观察血压变化。

【关键词】失血性休克、抢救。

【实验目的】1.观察失血性休克发生后机体变化;2.掌握急性失血性休克模型复制方法;【实验原理】动脉放血是循环血量减少,当少量失血时,有效循环血量减少可通过机体的一系列代偿措施(包括微循环的灌流量明显减少),使血压不出现明显的降低。

但当快速失血量超过30%或大量失血时,有效循环血量急剧减少,超出机体的代偿能力,引起心输出量减少,血压降低和微循环严重和长时间缺血与缺氧,引起休克。

休克分为三期:微循环缺血期(缺血性缺氧期);微循环淤血期(淤血性缺氧期);微循环凝血期(播散性血管内凝血);【实验材料】1.实验对象:成年健康家兔1只,体重2.5kg左右。

2.实验药品:20%乌拉坦溶液,0.7%肝素,台式液。

5%葡萄糖生理盐水,兔手术台,电子秤,微循环生物信号处理系统,静脉输液及中心静脉压测量装置一套,微循环观察装置,手术器械一套,动脉插管2个,气管插管、静脉插管各一个,5ml、20ml、50ml注射器各2支。

【实验步骤】1. 麻醉与固定(1.1)取成年家兔一只,称重,于耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦(以5ml/kg 体重计算麻醉剂总量),作全身麻醉。

(1.2)动物固定:将动物仰卧固定于兔手术台上,颈前部和腹部等手术部位剪毛备皮。

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实用医药杂志 2 0 1 3年 O 1月 第 3 O卷 第 0 1期
P r a e J Me d& P h a r m. V o l 3 0 , 2 0 1 3 一
. Q !
・4 1・
基 础 医学


著・
收缩压下降曲线方式建立兔创伤性失血性休克模型
李 大鹏 , 张秋玲 , 赵立军, 吕春 g性 失血 性休 克 ( T HS ) 是 院前 急救 中常见 的
急 危重 症 , 也是 现代 战创 伤死 亡 的主要 原 因【 1 】 。加 强 院 前 创 伤 休 克 急 救技 术 研 究 是 提 高创 伤 复 苏 技 术 的 重要 内容 。 对急 救 中心创 伤 救治 模 式 及创 伤 救 治 方式 研究 也 有重要 指 导意 义 。现将 笔者 选择 大 鼠 急性 失 血方 法 , 建 立 收缩 压下 降 曲线 并对 T HS发 生 过 程 进 行分 段 研 究 , 并建立实验流程易控制 、 非 控
『 摘 要1 目的 建立创伤性失血性休 克( T H S ) 模 型。方法 选 择 大 鼠急 性 失 血 损 伤 方 法 , 根 据 收 缩 压 下 降 曲
线对发生相关过程分段 , 研 究曲线不 同位 置血 流动力学相关指标变化 。 结果 收缩压下降曲线 的不 同位置血流动力 学 相 关 指 标 比较 , 阶段 相 比存 在 统计 学差 异 。 结论 选 择 急 性 失 血 形 成 收 缩 压 下 降 曲线 方 式 , 可 建 立 实 验 流 程 易 控 制、 非控制性 失血性休 克影 响及复苏 因素易掌握 的创伤性失血性休克模型 。
『 关 键 词1 创 伤 性 失 血 性 休 克 ; 动 物模 型 ; 收 缩 压 下 降 曲 线
冲 图分 类号】 R 一 3 3 2
[ 文献标识 码】 A
Es t a b l i s h i n g a n i ma l m o d e l o f t r a u ma t i c h e mo r r h a g i c s h o c k t h r o u g h s y s t o l i c b l o o d p r e s s u r e d e c l i n i n g
wh i c h mi g h t b e c o n v e n i e n t l y c o n t ol r t he e x p e ime r n t a l p r o c e s s ,t he u n c o n t r o l l e d h e mo rh a g i c s h o c k’ s i mp a c t a n d
c u r v e L I D a - p e n g ,Z HA N G Q i u - l i n g ,Z HA O L i - j a n ,e t a 1 .T h e C e n t r a l L a b o r a t o r y ,t h e 8 8 t h H o s p i t a l o f P I ,
s t a g e s .Co n c l u s i o n I n v i r t u e o f t h e s y s t o l i c b l o o d p r e s s u e d r e c l i n i n g c u ve r t h e T HS mo d e l c o u l d b e e s t a b l i s h e d ,
T a i a n ,S h a n d o n g 2 7 1 0 0 0 ,C h i n a
【 Ab s t r a c t 】 0b j e c t i v e T o e s t a b l i s h a t r a u ma t i c m o d e l o f h e m o r r h a g i c s h o c k( T H S )m de o 1 . Me ho t d s A c u t e
b l o o d l o s s wa s s e l e c t e d a s t h e me t h o d s o f r a t s ’ S d a ma g e .T h e p r o c e s s W s s a e c t i o n e d a c c o r d i n g t o t he s y s t o l i c b l o o d p r e s s u r e d e c l i n i n g c u r v e ,t h e n s t u d i e d c h a n g e s o f h e mo d y n a mi c s i n d i c a t o r s r e l a t e d t o d i f e r e n t s t a g e s o f t h e d e c l i n i n g c u r v e .Re s u l t s T h e r e we r e s t a t i s t i c a l l y s i g n i ic f a n t d i f e en r c e s i n h e mo d y n a mi c s i n d i c a t o r s a mo n g d fe i r e n t
r e c o v e r y f a c t o r s .
【 Ke y w o r d s 】 T r a u m a t i c h e mo r r h a g i c s h o c k ; A n i ma l mo d e l ; S y s t o l i c b l o o d p r e s s u r e d e c l i n i n g c u ve r
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