iTRAQ定量蛋白质组学解析
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通路富集结果：
案例2。蜂王浆提取物对肿瘤细胞的影响
实验背景：客户把从蜂王浆中提取到的一种化合物与人
的肿瘤细胞共同培养，观察到其抑制了肿瘤细胞的迁移 标记
侵袭能力。由此猜想，此化合物有抑制肿瘤生长的作用。 113
实验设计：对照组（2重复），模型组（3重复），给药 114
组（3重复）
115
实验过程：8组样本分别提取总蛋白定量，酶切后标记混
利用MetaCore软件，对所有显 著差异表达蛋白进行相互作用 网络分析，。相互作用网络分 析显示，差异表达蛋白富集到 30条经典子网络，右为包含 “SP1, TRAP230, Neprilysin, MIF, SLC38A2”等关键节点的子 网。
结果
4列样本共鉴定到861个蛋白，其中ELISA检测到的细胞因子也得到 验证
4组结果两两比较，筛选1.2倍以上差异，
数据分析
数据交盖图
数据分析
GO 富集分析 通过生物信息学分析工具DAVID对鉴定蛋白进行GO（Gene
Ontology，详细信息见网站：http://www.geneontology.org）功能 注释、功能富集分析及定位分析。（可按照客户要求绘制饼图等）
iTRAQ试剂是可与氨基（包括氨基酸N端及赖氨酸侧链氨基）连 接的胺标记同重元素。在一级质谱图中，任何一种iTRAQ试剂标记不同 样本中的同一蛋白质表现为相同的质荷比。
在一级质谱中，不同来源的相同肽段表现为一个峰；
在二级质谱中，iTRAQ试剂中的平衡基团发生中性丢失，信号离 子表现为不同质荷比(114～121)的峰，因此根据波峰的高度及面积，可 以得到同一蛋白在不同样本中的表达差异；同时，肽段的MS/MS结果 结合数据库检索可以鉴定出相应的蛋白种类。
实验设计：
1.客户用ELISA方法检测正常人与病患脑脊液 中几个细胞因子存在稳定差异
2wenku.baidu.com客户提供4种不同患者脑脊液样本进行 iTRAQ检测分析。
3.首先对其中一例样本进行SDS分析，可见脑 脊液中存在高峰度蛋白。
4.除去高峰度部分蛋白，其他条带切胶合并酶 切提取。（也可以使用商品化去除高峰度试 剂盒，成本较高，效果也因人而异。）
样品组 实验组1（对照） 实验组1（对照） 实验组2 实验组2 实验组2 实验组3 实验组3 实验组3
数据分析
采用DAVID在线工具对显著差异表达蛋白 进行GO功能富集分析和KEGG通路富集分 析。（PAHTWAY无显著富集）
客户关注的信号通路（pathway）
差异表达蛋白相互作用网络分析
NCBI截止现在为1773篇
4
相关杂志对重复性要求
5
建议
※首选2-3次生物重复，最好3次或以上 组内样品个体差异大的材料需要更多的生物重复 生物学重复样品较多时，可以适当混合以减少样品数目 无任何重复，可以结合其他技术进行验证
6
iTRAQ试剂标记原理
➢ 报告部分共有8种：质量数分别为114~121Da，因此iTRAQ最多可同时 标记8组样品（客户可按需选择标记个数）。 ➢ 肽反应部分：能与肽链N端及赖氨酸侧链发生共价连接，从而将报告部 分和平衡部位标记到肽段上，几乎可以标记所有蛋白质。 ➢ 平衡部分：质量数分别为31~24Da，与报告部分相互配合，保证 iTRAQ试剂标记的不同样本的同一肽段具有相同的质荷比。
数据分析
数据分析
Pathway通路富集分析
在生物体内，存在着大量的代谢、调控和信号转导过程，这些过程往往形成一条条 不同的通路（pathway），基于Pathway的分析有助于了解发生差异变化蛋白质所的 生物学进程位置。KEGG是有关Pathway的主要公共数据库（Kanehisa，2008）， 通过Pathway分析能确定蛋白质参与的最主要生化代谢途径和信号转导途径。
合。之后进行液相粗分离，最后QE质谱检测。
116
实验结果：蛋白序列数据库来源: 人类UniProt数据库。 117 质谱数据搜索采用PD搜索引擎共鉴定到蛋白4565个。差 118
异蛋白分组进行比较。（判断实验成功与否的标准为鉴 119
定到的总蛋白数是否达到文献水平，差异蛋白数与实验 121 设计相关，无法承诺。）
图1 iTRAQ技术原理图
iTRAQ技术优势
➢ 灵敏度高：可检测出低丰度蛋白； ➢ 分离能力强:可分离出酸/碱性蛋白，小于10KD或大于200KD的蛋白、难溶
性蛋白等； ➢ 适用范围广：可以对任何类型的蛋白质进行鉴定，包括膜蛋白、核蛋白和
胞外蛋白等。 ➢ 高通量：可同时对8个样本进行分析，特别适用于采用多种处理方式或来自
3. 标记好的各组样本等量混合，液 相分离和质谱分析.
4: 不同样本中蛋白质的差异表达可 通过二级质谱中iTRAQ试剂的峰面积 确定，如图所示：与对照组相比， 该蛋白在3个处理组(114-116)中的 相对表达量较高。
5. 根据该肽段的二级质谱峰图， 结合数据库检索，得到蛋白的定 性信息。
案例1：人脑脊液（客户文章未发表，资料 仅供内部参考）
3：各组样本的肽段混合物分别 用不同的iTRAQ试剂标记；
4：等量混合各样本中的标记肽 段；
5：MS/MS质谱检测及分析。
iTRAQ实验结果示例
1: 提取各组蛋白质、定量并用胰酶 酶切；
2. 各组肽段分别用4种iTRAQ试剂标 记 (例如对照组用iTRAQ 117标记， 其他3个实验组分别用iTRAQ 114, 115, 116标记)；
多个处理时间的样本的差异蛋白分析； ➢ 结果可靠：定性与定量同步进行，同时给出每一个组分的相对表达水平、
分子量和丰富的结构信息； ➢ 自动化程度高：液质连用，自动化操作，分析速度快，分离效果好。
iTRAQ实验流程
iTRAQ实验流程。 1：收集不同组别的样本并分别
提取蛋白质；
2：蛋白质经过还原，封闭后用 胰蛋白酶酶切；
iTRAQ定量蛋白质组学
主要内容
iTRAQ技术简介 iTRAQ试剂标记原理 iTRAQ技术优势 iTRAQ实验流程 iTRAQ实验结果示例 iTRAQ实验详细步骤
iTRAQ技术简介
iTRAQ技术是由美国应用生物系统公司(Applied Biosystems Incorporation，ABI)2004年开发的同重标签标记的相对和绝对定量 (isobaric tags for relative and absolute quantitation，iTRAQ)技术。
案例2。蜂王浆提取物对肿瘤细胞的影响
实验背景：客户把从蜂王浆中提取到的一种化合物与人
的肿瘤细胞共同培养，观察到其抑制了肿瘤细胞的迁移 标记
侵袭能力。由此猜想，此化合物有抑制肿瘤生长的作用。 113
实验设计：对照组（2重复），模型组（3重复），给药 114
组（3重复）
115
实验过程：8组样本分别提取总蛋白定量，酶切后标记混
利用MetaCore软件，对所有显 著差异表达蛋白进行相互作用 网络分析，。相互作用网络分 析显示，差异表达蛋白富集到 30条经典子网络，右为包含 “SP1, TRAP230, Neprilysin, MIF, SLC38A2”等关键节点的子 网。
结果
4列样本共鉴定到861个蛋白，其中ELISA检测到的细胞因子也得到 验证
4组结果两两比较，筛选1.2倍以上差异，
数据分析
数据交盖图
数据分析
GO 富集分析 通过生物信息学分析工具DAVID对鉴定蛋白进行GO（Gene
Ontology，详细信息见网站：http://www.geneontology.org）功能 注释、功能富集分析及定位分析。（可按照客户要求绘制饼图等）
iTRAQ试剂是可与氨基（包括氨基酸N端及赖氨酸侧链氨基）连 接的胺标记同重元素。在一级质谱图中，任何一种iTRAQ试剂标记不同 样本中的同一蛋白质表现为相同的质荷比。
在一级质谱中，不同来源的相同肽段表现为一个峰；
在二级质谱中，iTRAQ试剂中的平衡基团发生中性丢失，信号离 子表现为不同质荷比(114～121)的峰，因此根据波峰的高度及面积，可 以得到同一蛋白在不同样本中的表达差异；同时，肽段的MS/MS结果 结合数据库检索可以鉴定出相应的蛋白种类。
实验设计：
1.客户用ELISA方法检测正常人与病患脑脊液 中几个细胞因子存在稳定差异
2wenku.baidu.com客户提供4种不同患者脑脊液样本进行 iTRAQ检测分析。
3.首先对其中一例样本进行SDS分析，可见脑 脊液中存在高峰度蛋白。
4.除去高峰度部分蛋白，其他条带切胶合并酶 切提取。（也可以使用商品化去除高峰度试 剂盒，成本较高，效果也因人而异。）
样品组 实验组1（对照） 实验组1（对照） 实验组2 实验组2 实验组2 实验组3 实验组3 实验组3
数据分析
采用DAVID在线工具对显著差异表达蛋白 进行GO功能富集分析和KEGG通路富集分 析。（PAHTWAY无显著富集）
客户关注的信号通路（pathway）
差异表达蛋白相互作用网络分析
NCBI截止现在为1773篇
4
相关杂志对重复性要求
5
建议
※首选2-3次生物重复，最好3次或以上 组内样品个体差异大的材料需要更多的生物重复 生物学重复样品较多时，可以适当混合以减少样品数目 无任何重复，可以结合其他技术进行验证
6
iTRAQ试剂标记原理
➢ 报告部分共有8种：质量数分别为114~121Da，因此iTRAQ最多可同时 标记8组样品（客户可按需选择标记个数）。 ➢ 肽反应部分：能与肽链N端及赖氨酸侧链发生共价连接，从而将报告部 分和平衡部位标记到肽段上，几乎可以标记所有蛋白质。 ➢ 平衡部分：质量数分别为31~24Da，与报告部分相互配合，保证 iTRAQ试剂标记的不同样本的同一肽段具有相同的质荷比。
数据分析
数据分析
Pathway通路富集分析
在生物体内，存在着大量的代谢、调控和信号转导过程，这些过程往往形成一条条 不同的通路（pathway），基于Pathway的分析有助于了解发生差异变化蛋白质所的 生物学进程位置。KEGG是有关Pathway的主要公共数据库（Kanehisa，2008）， 通过Pathway分析能确定蛋白质参与的最主要生化代谢途径和信号转导途径。
合。之后进行液相粗分离，最后QE质谱检测。
116
实验结果：蛋白序列数据库来源: 人类UniProt数据库。 117 质谱数据搜索采用PD搜索引擎共鉴定到蛋白4565个。差 118
异蛋白分组进行比较。（判断实验成功与否的标准为鉴 119
定到的总蛋白数是否达到文献水平，差异蛋白数与实验 121 设计相关，无法承诺。）
图1 iTRAQ技术原理图
iTRAQ技术优势
➢ 灵敏度高：可检测出低丰度蛋白； ➢ 分离能力强:可分离出酸/碱性蛋白，小于10KD或大于200KD的蛋白、难溶
性蛋白等； ➢ 适用范围广：可以对任何类型的蛋白质进行鉴定，包括膜蛋白、核蛋白和
胞外蛋白等。 ➢ 高通量：可同时对8个样本进行分析，特别适用于采用多种处理方式或来自
3. 标记好的各组样本等量混合，液 相分离和质谱分析.
4: 不同样本中蛋白质的差异表达可 通过二级质谱中iTRAQ试剂的峰面积 确定，如图所示：与对照组相比， 该蛋白在3个处理组(114-116)中的 相对表达量较高。
5. 根据该肽段的二级质谱峰图， 结合数据库检索，得到蛋白的定 性信息。
案例1：人脑脊液（客户文章未发表，资料 仅供内部参考）
3：各组样本的肽段混合物分别 用不同的iTRAQ试剂标记；
4：等量混合各样本中的标记肽 段；
5：MS/MS质谱检测及分析。
iTRAQ实验结果示例
1: 提取各组蛋白质、定量并用胰酶 酶切；
2. 各组肽段分别用4种iTRAQ试剂标 记 (例如对照组用iTRAQ 117标记， 其他3个实验组分别用iTRAQ 114, 115, 116标记)；
多个处理时间的样本的差异蛋白分析； ➢ 结果可靠：定性与定量同步进行，同时给出每一个组分的相对表达水平、
分子量和丰富的结构信息； ➢ 自动化程度高：液质连用，自动化操作，分析速度快，分离效果好。
iTRAQ实验流程
iTRAQ实验流程。 1：收集不同组别的样本并分别
提取蛋白质；
2：蛋白质经过还原，封闭后用 胰蛋白酶酶切；
iTRAQ定量蛋白质组学
主要内容
iTRAQ技术简介 iTRAQ试剂标记原理 iTRAQ技术优势 iTRAQ实验流程 iTRAQ实验结果示例 iTRAQ实验详细步骤
iTRAQ技术简介
iTRAQ技术是由美国应用生物系统公司(Applied Biosystems Incorporation，ABI)2004年开发的同重标签标记的相对和绝对定量 (isobaric tags for relative and absolute quantitation，iTRAQ)技术。