分子生物学实验课件..

实验一、菌株复壮与单菌落菌株的获取

一、实验目的

学习细菌培养的LB培养基及抗生素抗性筛选培养基的配制，掌握高压灭菌和获取细菌单菌落菌株两种基本实验操作技能。

二、实验材料、设备及试剂

1、实验材料

大肠杆菌（E. coli）DH5α菌株：R-，M-，Amp-

2、实验设备

恒温摇床，电热恒温培养箱，无菌工作台，高压灭菌锅

3、试剂

酵母浸膏，蛋白胨，氯化钠，琼脂，卡那霉素

三、实验步骤

液体LB（Luria-Bertain）培养基配方：

蛋白胨(typtone) 1.0% （1 g/100 ml）

酵母提取物(Yeast extraction)0.5% （0.5g/100 ml）

氯化钠 1.0% （1 g/100 ml）

PH 7.0

固体LB培养基：每100 ml液体培养基中加入1.5g琼脂粉

请按试剂瓶上的编号使用相应编号的药勺取药，防止药品相互污染！

(1)每组按上述液体LB培养基配方，以配制100ml的量称取药品放入烧杯。

(2)用量筒量取约80 ml 蒸馏水注入烧杯中，玻棒搅拌使药品完全溶解后用100ml量筒定容

至100ml。

(3)pH试纸检测pH值，并用1 N NaOH或1 N HCl调节pH值至7.0。

(4)将100ml溶液分装入两个三角瓶，每瓶为50ml。

(5)按固体培养基配方称取适量琼脂粉分别放入两个三角瓶中，以配制成两瓶50ml固体LB培

养基。

(6)两个三角瓶分别用锡纸包扎瓶口。并用记号笔在三角瓶上标注各组标记。

(7)把装有培养基三角瓶放入灭菌锅中，盖上锅盖，以对称方式拧紧锅盖，打开排气阀通电加

热，至有连续的白色水蒸气从排气阀排出时，关闭排气阀。当高压锅温度（气压）指示器指示锅内温度升高至121℃（0.1Mpa）时，调节电压（或利用手动开关电源的方式）使高压锅稳定在该温度（压力）下20 min，然后断开电源。待指示器指示压力降为0时，方可打开排气阀，然后再打开锅盖小心取出锅内物品。

(8)取出三角瓶后，在酒精灯火焰旁进行下述操作。

(9)取其中的一瓶直接倒培养皿，每皿倒入的量以刚好能在培养皿底铺展成薄薄的一层即可。

每组倒1块培养皿，在皿盖上用记号笔写上“LB”及各组的标记。

(10)另外一瓶培养基待温度降低至60℃左右时（刚能感觉不烫手），向培养基中加入0.1ml

50mg/ml的氨苄青霉素（Amp）溶液，使培养基中Amp的终浓度为50mg/L。快速充分混匀后每组倒1块培养皿，在皿盖上标注“LB+”及各组的标记。

(11)接种环蘸取菌液，密密划线。

(12)倒置于37℃恒温培养箱中进行培养。

(13)一天后观察菌落。

四、思考题

(1)在说明本实验所用的菌种时用到这样的符号：“R-，M-，Amp-”，这告诉我们关于该菌

种的什么信息？

(2)在步骤7中，为何须待连续的白色水蒸气从排气阀排出时才能关闭排气阀？当灭菌完

毕，为何又须待高压锅指示器指示压力降为0时才能打开高压锅，而且操作次序必须是先打开排气阀然后才能打开高压锅盖？

(3)在步骤12中，为何需将涂有菌的培养皿倒置于37℃恒温培养箱中进行菌的培养？为什

么不是正放呢？

(4)你预计该实验结果是什么，即两种培养基上菌的生长情况如何？

实验二碱裂解法小量提取质粒DNA

一实验目的

了解少量质粒制备方法与原理，掌握碱法小量提取质粒DNA的操作步骤。

二实验原理

本实验利用NaOH破坏菌体细胞使核酸物质从细胞中释放出来，因此称为碱裂解法抽提。十二烷基磺酸钠(SDS)能裂解细菌细胞膜，但更重要的作用在于其与钾离子反应后所引起的溶液中绝大部分蛋白质以及基因组DNA共沉淀。由于还有很多蛋白质不能被共沉淀掉，因此要进一步用酚、氯仿对溶液进行抽提。最后加入2倍体积的无水乙醇或0.7倍体积的异丙醇沉淀就能得到质量稳定的质粒DNA。从细菌中分离质粒DNA

的方法主要包括3个基本步骤：培养细菌使质粒扩增；收集和裂解细胞；分离和纯化质粒DNA。

三实验材料

转化质粒pUC19后经氨苄抗性筛选获得的E. coli DH5α系列菌株

四实验设备

微量取液器(100μl,1000μl)，台式高速离心机

五试剂

溶液Ⅰ：50 mmol/L 葡萄糖，25 mmol/L Tris.Cl (pH8.0)， 10mmol/L EDTA (pH8.0)。溶液Ⅰ可成批配制,每瓶100ml,高压灭菌15分钟,储存于4℃冰箱。

溶液Ⅱ：0.2 mol/L NaOH 、1％ SDS (临用前用0.4mol/L NaOH和2％ SDS母液稀释)。

溶液Ⅲ：5 mol/L KAc 60ml，冰醋酸 11.5ml， H2O 28.5ml，定容至100ml, 并高压灭菌。溶液终浓度为: K+ 3mol/L, Acˉ 5mol/L

饱和酚、氯仿、TE缓冲液

六实验步骤

1. 用移液枪取1.5ml培养液放入1.5ml eppendorf管中，5000 rpm 5 min收集菌体；

2. 弃上清,将管倒置于吸水纸上尽量使液体流尽；

3. 菌体沉淀重悬浮于200μl溶液Ⅰ中；

4. 按试剂配方配制溶液Ⅱ，加入新配制的溶液Ⅱ200μl, 盖紧管口，快速温和上下颠倒eppendorf管数次以混匀溶液(千万不要振荡，动作轻柔)；

5. 立即加入200μl预冷的溶液Ⅲ，盖紧管口并温和颠倒离心管数次，混匀溶液，置冰浴中10分钟；

6. 12000 rpm离心10分钟；

7. 加入等体积的酚/氯仿(1:1)，颠倒混匀， 12000 rpm 10分钟；

8. 小心吸取上清夜移入干净eppendorf管中，加入2倍体积的无水乙醇，振荡混匀后置于-20℃冰箱中20分钟；

9. 12000 rpm离心10分钟；

10. 弃上清, 将管倒置于吸水纸上使所有液体流出，加入200μl预冷的70％乙醇洗涤沉淀。

11. 同步骤10，重复洗涤沉淀一次；

12. 弃去乙醇溶液，将管倒置于吸水纸上使液体流尽，室温或37℃下干燥；

13、将沉淀溶于5μl TE缓冲液(pH8.0，含20μg /ml RNaseA)中，储于-20℃冰箱中。

[注意]

1. 提取过程应尽量保持低温。

2. 提取质粒DNA过程中除去蛋白很重要,采用酚/氯仿去除蛋白效果较单独用酚或氯仿好。最好在用酚/氯仿抽提一次后再用氯仿抽提一次，以去除残留的酚对质粒的后继实验，如酶切反应等的不良影响。

3. 沉淀DNA通常使用冰冷的无水乙醇,在低温条件下放置时间稍长可使DNA沉淀完全。沉淀DNA也可用异丙醇，但由于常把盐沉淀下来，所以多数还是用乙醇。

4. 质粒DNA分子小，所以没有变性，染色体变性后不能复性。

5．用碱法分离质粒DNA时，染色体DNA之所以可以被除去，是因为：C

A.染色体DNA断成了碎片

B.染色体DNA分子量大，而不能释放

C.染色体变性后来不及复性

D.染色体未同蛋白质分开而沉淀