犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

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犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析犬流感病毒(Canine Influenza Virus,CIV)是一种由流感病毒引起的狗类感染疾病,主要包括CIV-H3N8和CIV-H3N2两种亚型。

近年来,犬流感病毒感染在全球范围内呈逐渐增加的趋势,给犬只健康和养殖业生产带来了严重的危害。

对犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析具有重要意义。

一、病毒分离鉴定病毒分离鉴定是对犬流感病毒进行病原学研究的基础,主要包括病毒的分离、鉴定和鉴定结果的确认三个步骤。

病毒的分离是首要任务,通常采用病毒感染犬只的呼吸道分泌物、血清或组织样本进行病毒的分离培养;病毒鉴定则主要通过电镜观察病毒颗粒的形态、免疫荧光技术检测病毒抗原等方法进行;鉴定结果的确认则可以通过PCR、RT-PCR和序列分析等分子生物学手段进行。

在实际操作中,病毒的分离鉴定需要在生物安全实验室中进行,避免病毒的传播和扩散。

二、基因序列分析基因序列分析是对犬流感病毒基因组进行序列测定和分析的过程,主要包括基因组测序、序列比对和变异分析三个步骤。

通过PCR或RT-PCR技术对病毒样本进行基因组的扩增和测序,获取病毒基因序列信息;然后,通过序列比对将测定到的基因序列与已知的犬流感病毒参考序列进行比对,找出其相同点和变异位点;通过变异分析对病毒亚型、毒株的演化关系进行推断和分析。

通过基因序列分析,可以更加深入地了解犬流感病毒的遗传变异和演化规律,为疫苗研发和防控策略的制定提供重要参考。

针对犬流感病毒的部分基因序列分析,以下以CIV-H3N8亚型为例进行分析。

1. 基因组测序从临床样本中提取病毒RNA,利用RT-PCR技术对病毒基因组进行扩增和测序。

通过比对已知的CIV-H3N8基因组序列,确定扩增的基因片段在全基因组中的位置,并获取完整的基因序列信息。

2. 序列比对和变异分析将测定到的CIV-H3N8基因序列与已知的CIV-H3N8参考序列进行比对,找出其相同点和变异位点。

广东1株H3N2亚型犬流感病毒的分离与鉴定

广东1株H3N2亚型犬流感病毒的分离与鉴定

广东1株H3N2亚型犬流感病毒的分离与鉴定赵明喜;赖芳芳;贾坤;李华涛;李守军【摘要】本试验采集一只具有流感临床症状的病犬鼻咽拭子经常规处理后接种SPF鸡胚,分离到一株流感病毒,并对其进行鉴定及生物学特性研究.结果表明,该毒株对1%鸡红细胞的血凝价为26,能被H3亚型流感病毒阳性血清中和,与H1、H5、H7、H9亚型阳性血清和阴性血清无交叉反应.序列分析显示,该毒株的HA和NA 基因核苷酸序列分别与犬流感病毒(CIV) H3和N2亚型的病毒株同源性最高.确定该毒株为H3N2亚型CIV,并将其命名为A/canine/Guangdong/01/2011.【期刊名称】《中国兽医杂志》【年(卷),期】2014(050)002【总页数】3页(P7-9)【关键词】犬流感病毒;H3N2亚型;RT-PCR;序列分析【作者】赵明喜;赖芳芳;贾坤;李华涛;李守军【作者单位】华南农业大学兽医学院,广东广州510642;华南农业大学兽医学院,广东广州510642;华南农业大学兽医学院,广东广州510642;华南农业大学兽医学院,广东广州510642;华南农业大学兽医学院,广东广州510642【正文语种】中文【中图分类】S852.65+5A型流感病毒属于正黏病毒科的成员,是具有高度传染性的流感病原体之一,多种动物包括鸟类、哺乳动物和人类都对其易感[1]。

A型流感病毒感染在家畜中研究广泛,但在伴侣动物如犬猫中研究较少,伴侣动物与人类和家畜接触紧密,因此,研究A型流感病毒感染伴侣动物具有更重要的兽医学和公共卫生学意义[2]。

犬猫本不是流感病毒的易感动物,但目前研究表明,犬猫在自然和试验条件下对一些亚型的流感病毒易感,H3N8亚型犬流感病毒(CIV)和H3N2亚型CIV在美国和韩国已引起严重的经济损失[3-5]。

2006年,中国广东首次分离到禽源H3N2亚型CIV,该病毒引起犬发生咳嗽、喷嚏、脓鼻涕、低热等症状[6]。

2009年-2010年,浙江、江苏、北京、辽宁等地也先后分离到H3N2亚型CIV[7-8],CIV已在沿海地区广泛存在,应引起研究人员的高度重视。

禽流感病毒的分离与鉴定研究

禽流感病毒的分离与鉴定研究

禽流感病毒的分离与鉴定研究禽流感是一种由禽流感病毒引起的急性传染病。

该病毒主要影响禽类,但也有可能感染人类,并且一旦发生大规模爆发,将对畜牧业、禽类养殖业以及全球经济造成重大影响。

因此,针对禽流感病毒的分离与鉴定研究至关重要。

分离方法禽流感病毒分离最常用的方法是直接病毒分离法和传代病毒分离法。

直接病毒分离法是将采集来的样品(充气囊液、肠道、气管、内脏等)进行磨碎、过筛后,加入细胞培养基中,通过激活剂或其他手段激发细胞后将病毒从培养基中筛选出来。

传代病毒分离法是将直接病毒分离法筛选出来的病毒,在细胞培养基中通过不断传代,逐渐升高病毒浓度,获得目标病毒菌株。

鉴定方法病毒鉴定是确定所分离的病毒种类的一系列实验。

鉴定方法包括:病理学观察、抗原鉴定和核酸检测。

病理学观察法通常采用组织学、细胞学等方法观察病毒的组织病变和病变情况,以及确定细胞的形态变化和能力损失情况。

抗原鉴定法通过病毒对特异性抗体和特异性酶的反应来鉴定病毒的类型。

常用的抗原鉴定法有酶联免疫吸附试验、荧光免疫分析法、放射免疫分析法等。

核酸检测法是通过核酸杂交技术、PCR扩增和序列分析等方法来鉴定病毒。

其中,PCR扩增技术是最常用的方法之一。

PCR扩增技术可以选择病毒特异性的保守区域,扩增出目标片段,用于比对成果,确认病毒的种类和亚型。

研究进展目前,针对禽流感病毒的分离与鉴定研究已经取得了一定的进展。

例如,利用新一代测序技术,成功对H9N2亚型进行了全基因组测序和比对,揭示了其与其他亚型的基因组演化关系;同时,也研制出了多种疫苗和抗体,为禽流感的预防和治疗提供了有力的手段。

但是,禽流感病毒的分离与鉴定研究依然存在一些问题,如病毒分离效率低、鉴定方法繁琐、检测灵敏度低等。

为了进一步提高病毒分离和鉴定的精度和效率,需要加强技术研发和人才培养。

总之,禽流感病毒的分离与鉴定研究是保障人民生命健康和畜牧业发展的重要科学问题。

虽然已取得了一定的进展,但研究仍然任重道远,需要继续深入推进。

犬细小病毒JN株的分离鉴定及VP2基因序列分析

犬细小病毒JN株的分离鉴定及VP2基因序列分析

况, 分 离鉴 定 C P V 的 当地流 行毒 株 以及 对结 构蛋 白
VP 2基 因进行 序 列分 析 是 了解 和 掌握 C P V 变异 趋 势 的 主要方 法_ 4 ] 。本研 究从 疑似 犬 细小 病 毒感 染 犬 粪便 中成 功分 离鉴 定一 株 C P V, 并 进行 了 VP 2 基
病毒科( P 口 r 0 口 P ) 细小 病 毒属 ( P a r v o v i r u s ) , 基
因序列 分 析 , 旨在 丰 富 我 国 C P V 分 子 流 行 病 学 资 料, 为C P V 新 型疫 苗与诊 断试 剂 的研究 提供 依据 。
1 材 料 与方 法
1 . 1 材 料
引起 的犬 的 一 种 急性 、 烈性传染病 , 该病 于 1 9 7 8年
在美 国首 次 发现 , 目前 呈世 界范 围 内流行 , 是 危 害犬
类 的最重 要 传染 病 之 一 , 每 年都 给 全 球 养 犬 业 和 宠 物行 业带 来 了 巨大 的 经 济 损 失_ 1 ] 。C P V 属 于 细小
中 图分 类 号 : ¥ 8 5 2 . 6 5 9 . 2 文 献标 识 码 : A
文章编号 : 1 0 0 7 — 5 0 3 8 ( 2 0 1 3 ) 0 5 — 0 0 8 3 — 0 4
犬 细小 病毒 病 ( C a n i n e p a r v o v i r u s d i s e a s e , C P VD) 是 由犬 细 小 病 毒 ( C a n i n e p a r v o v i r u s , C P V)
H A N Ti ng — y i , W A N G She n g — gu i

一株H3N2亚型犬流感病毒的分离与进化分析

一株H3N2亚型犬流感病毒的分离与进化分析

Ab s t r a e t :I n o r d e r t o i n v e s t i g a t e t h e b i o l o g i c a l c h a r a c t e r i s t i c s a n d mo l e c u l a r v a r i a i t o n o f C a n i n e i n l f u e n z a v i us r ( C I V) a t o t a l o f 2 0
n a s o p h a r y n g e a l s w a b s f r o m d o g s wi t h s e v e r e r e s p i r a t o r y s y n d r o me we r e o b t a i n e d r f o m a n i ma l c l i n i c s o f Na n j i n g , , J i a n g s u p r o v i n c e i n 2 0 1 2 . A C I V s t r a i n d e s i g n a t e d a s A/ C a n i n e / Na n j i n g / 1 1 / 2 0 1 2 ( H3 N2 ) wa s i s o l a t e d f r o m t h e s e n a s o p h a r y n g e a 1 s wa b s u s i n g S P F
WANG Xi a o — l i , B I Z h e n - - we i , WA NG Y o n g — s h a n , P AN Qu n - . x i n g , O UY ANG We i
XI A Xi n g - . x i a , ZHU Yu — me i , DONG Ch e l a . - h o n g

犬副流感病毒CC-14株全基因组测序及分析

犬副流感病毒CC-14株全基因组测序及分析
wh o l e g e n o me o f t h e v i r u s we r e a mp l i i f e d , s e q u e n c e d a n d a s s e mb l e d . T h e r e s u l t s s h o we d t h a t t h e f u l l g e n o me o f CC一 1 4 s t r a i n wa s
1 5 , 2 4 6 b p i n l e n g t h( KP 8 9 3 8 9 1 ) .B a s e d u p o n a v a i l a b l e G e n B a n k s e q u e n c e s , t h e C DS s e q u e n c e o f N P g e n e wa s u s e d f o r
第3 7 卷 第 1 0期
2 0 1 5年 1 O月

国 预
防 兽

学 报
Vo1 .3 7. N O. 1 0 0c t . 201 5
Ch i n e s e J o u r n a l o f P r e v e n t i v e Ve t e r i n a r y Me d i c i n e
GAO S h u— ma n ,J I N Ho n g — l i a n g , , ZHANG Sh o u— f e n g ,LI U Ye , HU Ro ng — l i a ng
( 1 . Mi l i t a r y Ve t e i r n a y r I n s t i t u t e , Mi l i t a y r A c a d e my o f Me d i c a l S c i e n c e , C h a n g c h u n 1 3 0 1 2 2 , C h i n a ;

H3N2亚型犬流感病毒的分离鉴定

H3N2亚型犬流感病毒的分离鉴定

H3N2亚型犬流感病毒的分离鉴定佘利旋;熊永忠;远立国;袁天梅;贾坤;李守军【摘要】To evaluate the prevalence of canine influenza virus (CIV) in Guangzhou area, samples of 107 nasopharynx swabs and 58 serum were collected from dogs for virus isolation and antibody detection. Three H3N2 subtype CIV were isolated. The 50% embryo infectious dose (EID50) of the three isolates were 10-2.42/0.1 mL to 10-3.5/0.1 mL respectively. The mean death time (MDT) ranged from 177,6 h to 192 h. All three isolates were sensitive to ether, chloroform acidum and heat, and the isolates possessed HA activity to erythrocytes of rooster, guineapigs, pig and cattle.%为了解广州地区犬流感的流行情况,本研究采集107份犬鼻咽拭子样品和58份血清样品,SPF鸡胚分离病毒并进行抗体检测.结果显示:分离获得3株H3N2亚型犬流感病毒.分离株的EID50为10-2,42/0.1 mL~10-3.5/0.1 mL;MDT为177.6 h~192 h;对乙醚、氯仿、酸和温度均敏感;对血凝素为热不稳定型;能够凝集公鸡、豚鼠、猪和牛的红细胞.【期刊名称】《中国预防兽医学报》【年(卷),期】2011(033)001【总页数】4页(P15-18)【关键词】犬流感病毒;H3N2亚型;分离鉴定;生物学特性【作者】佘利旋;熊永忠;远立国;袁天梅;贾坤;李守军【作者单位】华南农业大学兽医学院,广东,广州,510642;中国农业科学院哈尔滨兽医研究所,维科生物技术开发公司,黑龙江,哈尔滨,150069;华南农业大学兽医学院,广东,广州,510642;海珠区爱宠动物诊疗所,广东,广州,510220;华南农业大学兽医学院,广东,广州,510642;华南农业大学兽医学院,广东,广州,510642【正文语种】中文【中图分类】S852.65犬流感(Canine influenza,CI)是由正粘病毒科流感病毒属A型CI病毒(CIV)引起的犬呼吸道传染病。

流感病毒分离标准操作规程

流感病毒分离标准操作规程

流感病毒分离标准操作规程(SOP)病毒分离分离病毒是诊断病毒性疾病最常用,并且高度敏感的方法之一。

分离出的病毒须经免疫学、基因分析或电子显微镜等进一步鉴定确诊。

病毒可长期保存,亦可用来作抗原性、基因特性或药物敏感性等分析。

病毒分离亦受一定限制。

目前用于分离病毒的组织细胞种类有限,每种细胞只能用来分离培养一或数种病毒。

MDCK(狗肾细胞)是目前用于分离培养流感病毒最常用的细胞系。

分离流感病毒最常用的活体是鸡胚,目前有些实验室用MDCK细胞代替鸡胚分离培养流感病毒。

由于MDCK细胞属肿瘤细胞系,故用该细胞分离的病毒不能用于疫苗生产。

各实验室应同时采用鸡胚和MDCK两种方法分离病毒,不应放弃用鸡胚分离病毒的方法。

流感病毒细胞分离标准操作规程材料:1、细胞瓶或细胞管培养成片的MDCK细胞2、TPCK处理胰酶(牛胰腺来源XIII型)Sigma Cat. # T-86423、HEPES 缓冲液, 1 M 母液GIBCO BRL Cat. # 15630-0234、D-MEM培养基,GIBCO BRL Cat. # 11965-0925、青、链霉素母液(10,000 U/ml 青霉素G; 10,000 μg/ml 硫酸链霉素) ,GIBCO BRL Cat. # 15140-0236、牛血清白蛋白组分V, 7.5%溶液,GIBCO BRL Cat. # 15260-0117、放置于2ml wheaton 小瓶中的临床样品8、T-25培养瓶用于病毒培养,(组织培养管也可被应用,若样本量大的话应选用培养瓶,细胞数量按规定调整。

)9、1ml 滴管10、10ml 滴管培养基和试剂的准备:(建议:要求经常检查试剂使用的有效期)500 ml D-MEM液中加入:青、链霉素母液5 ml (终浓度达: 100 U/ml 青霉素and 100 μg/ml 链霉素) 牛血清白蛋白12.5 ml (终浓度: 0.2 %)HEPES缓冲液12.5 ml (终浓度: 25 mM)病毒生长液:每500毫升不含血清的D-MEM液之中加0.5 ml of TPCK-胰酶(母液浓度为2mg/ml )使TPCK-胰酶的浓度为2 μg/ml。

犬细小病毒河南方城株分离及VP2_基因序列分析

犬细小病毒河南方城株分离及VP2_基因序列分析

·研究论文·Chinese Journal of Animal Infectious Diseases中国动物传染病学报摘 要:为了解犬细小病毒的临床流行及变异情况,本研究于河南省方城县采集了8份疑似CPV 感染犬粪便样品,经过PCR 检测、CRFK 细胞增殖培养、透射电镜观察和病毒滴度测定后,对其VP2基因进行序列分析。

结果表明5株分离株为犬细小病毒,病毒滴度分别为10-4.22/0.1 mL (China-HN-01株)、10-3.56/0.1 mL (China-HN-02株)、10-3.78/0.1 mL (China-HN-05株)、10-4.47/0.1 mL (China-HN-06株)、10-4.4/0.1 mL (China-HN-07株)。

VP2基因序列比对和遗传进化树分析结果显示,4株分离株基因型为New CPV-2a ,1株分离株基因型为CPV-2c ,5株分离株与疫苗株的同源性为97.8%~98.7%,与国内外参考毒株的同源性为94.0%~99.0%,4株New CPV-2a 基因型毒株与四川的Canine/China/24/2017株亲缘关系最近,CPV-2c 基因型毒株与蒙古国5-MGL 分离株位于同一分支,与我国河南地区的3株CPV-2c 毒株亲缘关系较远。

对河南方城地区CPV 毒株的分析,为研究CPV 变异株在河南地区的传播和宠物疫病防控提供了理论依据。

关键词:犬细小病毒;分离;VP2基因;进化分析中图分类号:S852.65文献标志码: A文章编号:1674-6422(2023)03-0054-08Isolation and Sequence Analysis of VP2 Gene of Canine Parvovirus from Fangcheng, HenanLIN Yuting 1,2, ZHAI Qi 2, ZHAI Shaolun 2, LYU Dianhong 2, ZHOU Xiurong 2, JIA Chunling 2, HUO Wei 2,WEN Xiaohui 2, Wei Wenkang 1,2,3(1. College of Animal Science & Technology, Zhongkai University of Agriculture and Engineering, Guangzhou 510225, China; 2. Institute of Animal Health, Guangdong Academy of Agricultural Sciences, Key Laboratory of Livestock Disease Prevention of Guangdong Province, Scientific Observation and Experiment Station of Veterinary Drugs and Diagnostic Techniques of Guangdong Province, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Guangzhou 510640, China; 3. Agro-biological Gene Research Center, Guangdong Academy of AgriculturalSciences, Guangzhou 510640, China)收稿日期:2021-01-11基金项目:国家重点研发计划(2016YFD0501000);广东省现代农业产业技术体系创新团队建设专项资金(2019KJ119);广东省农业科学院学科团队建设(201634TD);广东省农业科学院院长基金(202024)作者简介:林瑜婷,女,硕士研究生,预防兽医学专业;翟颀,男,助理研究员,主要从事动物疫病诊断技术研究 通信作者:温肖会,E-mail:*******************;魏文康,E-mail:**************犬细小病毒河南方城株分离及VP2基因序列分析林瑜婷1,2,翟 颀2,翟少伦2,吕殿红2,周秀蓉2,贾春玲2,霍 玮2,温肖会2,魏文康1,2,3(1.仲恺农业工程学院动物科技学院,广州510225;2.广东省农业科学院动物卫生研究所 广东省畜禽疫病防治研究重点实验室 农业农村部兽用药物与诊断技术广东科学观测实验站,广州510640;3.广东省农业科学院农业生物基因研究中心,广州510640)2023,31(3):54-61Abstract: In order to investigate the prevalence and variation of Canine parvovirus, 8 fecal samples were collected from dogs suspected of CPV infection from Fangcheng county, Henan province. Five CPV isolates were obtained based on PCR amplifi cation, growth on CRFK cells, transmission electron microscopy and virus titration. The TCID 50 titers of these isolates were 10-4.22/0.1 mL (China-HN-01 strain), 10-3.56/0.1 mL (China-HN-02 strain), 10-3.78/0.1 mL (China-HN-05 strain), 10-4.47/0.1 mL (China-HN-06 strain) and 10-4.4/0.1 mL· 55 ·林瑜婷等:犬细小病毒河南方城株分离及VP2基因序列分析第31卷第3期犬细小病毒病是由细小病毒科(Parvoviridae)细小病毒属(Parvovirus )的犬细小病毒(Canine parvovirus, CPV)感染犬只引起的致命性传染病[1],该病常以出血性肠炎、白细胞含量显著减少、腥臭血便和严重脱水等为主要临床特征,部分表现为突然死亡的急性心肌炎型[2]。

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析犬流感病毒(Canine influenza virus,CIV)是一种影响犬科动物的呼吸道疾病,最初在2004年首次在美国佛罗里达州引起了大规模的流行。

犬流感病毒是一种单股正链RNA 病毒,属于流感病毒科。

近年来,犬流感病毒引起了广泛的关注,其对犬的健康和生产力造成了严重的影响。

本文旨在介绍犬流感病毒的分离鉴定方法以及对其部分基因序列的分析。

一、犬流感病毒的分离鉴定1. 样品收集与处理需要对可能感染犬流感病毒的样品进行收集。

常见的样品包括犬鼻拭子、犬气管、犬肺组织等呼吸道相关的样品。

收集后,需立即将样品置于离心管中,并添加适量的细菌保存液或生理盐水,迅速送至实验室进行分离处理。

2. 病毒分离常用的病毒分离方法包括细胞培养法、鸡胚培养法等。

在病毒分离过程中,需要使用对犬流感病毒具有敏感性的细胞株,例如MDCK细胞株。

将样品接种于细胞培养基质中并培养一定时间,观察细胞情况,如发现病毒感染,可进一步进行鉴定。

3. 病毒鉴定在病毒分离后,需对分离的病毒进行鉴定。

目前常用的鉴定方法包括免疫荧光检测、PCR扩增等。

通过对病毒的免疫学特性和基因组结构进行分析,可以准确鉴定犬流感病毒,并进一步进行部分基因序列分析。

二、犬流感病毒部分基因序列分析1. 基因提取与扩增通过PCR扩增技术,可以对犬流感病毒的部分基因进行提取和扩增。

常用的基因包括HA(血凝素)、NA(神经氨酸酶)等。

通过PCR扩增后,可以得到病毒基因的DNA序列,为后续分析提供基础数据。

2. 基因测序将PCR扩增后的基因片段进行测序分析,可以得到该基因片段的具体序列信息。

通过比对数据库中已有的犬流感病毒基因序列,可以快速准确地确认所得基因序列的相关性,为病毒的分子鉴定提供重要依据。

对犬流感病毒基因序列进行分析,可以了解其遗传多样性、变异情况等重要信息。

通过比对分析,可以揭示不同病毒株之间的遗传关系、演化轨迹等。

基因序列分析还可以为疫苗研发、药物设计等提供重要参考。

犬腺病毒2型E3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性

犬腺病毒2型E3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性

畜牧兽医学报 2023,54(7):2982-2990A c t a V e t e r i n a r i a e t Z o o t e c h n i c a S i n i c ad o i :10.11843/j.i s s n .0366-6964.2023.07.029开放科学(资源服务)标识码(O S I D ):犬腺病毒2型E 3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性王佳丽,周 宁,陈 曦,岳 华,汤 承*(西南民族大学畜牧兽医学院,成都610041)摘 要:犬腺病毒2型(c a n i n e a d e n o v i r u s t y pe 2,C A V -2)是重要的犬呼吸道病原,本试验旨在调查C A V -2在川渝部分地区的流行情况及其分离毒株致病性㊂采用检测C A V -2的特异性P C R 方法,对2021 2022年采集自川渝部分地区的121份患呼吸道疾病的犬鼻咽拭子进行检测,分离流行毒株并研究其基因组特征及致病性㊂结果显示:C A V -2的阳性率为29.8%,值得注意的是,69.4%的阳性样本在E 3基因存在9个核苷酸连续缺失(1035 1043n t ),导致4个氨基酸缺失(345 348a a )㊂成功分离出1株E 3基因自然缺失毒株,噬斑纯化后的细胞半数感染值为10-9.46T C I D 50㊃0.1m L -1;该毒株经口鼻感染幼犬后,幼犬出现体温升高㊁打喷嚏㊁流鼻涕及咳嗽等典型呼吸道症状㊂该分离毒株基因组全长31786b p,与G e n B a n k 中C A V -2基因组的核苷酸相似性为98.8%~98.9%㊂与已知的C A V -2基因组相比,本研究分离毒株除了E 3基因的独特突变外,还在F i b e r ㊁H e x o n 和E 1A 等蛋白有独特的氨基酸突变,使得该毒株在基因组进化树上区别于已知的C A V -2毒株㊂本试验首次获得了中国C A V -2毒株的基因组序列,发现了E 3基因的自然缺失现象,有助于了解C A V -2的流行及遗传进化㊂关键词:犬腺病毒2型;E 3基因自然缺失株;分离鉴定;基因组;致病性中图分类号:S 852.659.1 文献标志码:A 文章编号:0366-6964(2023)07-2982-09收稿日期:2022-12-14基金项目:西南民族大学新发动物疫病防控创新团队(2020N T D 02)作者简介:王佳丽(1996-),女,四川南充人,硕士生,主要从事小动物疾病研究,E -m a i l :w a n g ji a l i 1113@163.c o m *通信作者:汤 承,主要从事预防兽医学研究,E -m a i l :t a n g c h e n g101@163.c o m I s o l a t i o n ,I d e n t i f i c a t i o n a n d P a t h o g e n i c i t y o f C a n i n e A d e n o v i r u s T y pe 2S t r a i n w i t h N a t u r a l D e l e t i o n i n E 3G e n eWA N G J i a l i ,Z HO U N i n g ,C H E N X i ,Y U E H u a ,T A N G C h e n g*(C o l l e g e o f A n i m a l H u s b a n d r y a n d V e t e r i n a r y M e d i c i n e ,S o u t h w e s t M i n z u U n i v e r s i t y ,C h e n gd u 610041,C h i n a )A b s t r a c t :C a n i ne a d e n o v i r u s t y p e 2(C A V -2)i s a n i m p o r t a n t r e s p i r a t o r y p a t h o ge n i n C a n i n e .T h e a i m of t h i s s t u d y w a s t o i n v e s t ig a t e th e p r e v a l e n c e a n d p a t h o g e ni c i t y of C A V -2i n p a r t s o f S i c h u a n P r o v i n c e a n d C h o ng q i n g M u n i c i p a l i t y .Th e n a s a l s w a b s o f 121c a ni n e s w i t h r e s p i r a t o r y t r a c t d i s -e a s e s w e r e c o l l e c t e d f r o m 2021t o 2022f o r d e t e c t i n g C A V -2b y s p e c i f i c P C R p r i m e r s ,a n d t h e e pi -d e m i c s t r a i n w a s i s o l a t e d f o r f u r t h e r s t u d y ,i n c l u d i n g i t s g e n o m e c h a r a c t e r i s t i c s a n d p a t h o ge n i c i -t y .T h e r e s u l t s s h o w e d t h a t t h e p o s i t i v e r a t e of C A V -2i n c a n i n e w a s 29.8%.N o t a b l y,69.4%o f t h e p o s i t i v e s a m pl e s h a d i d e n t i c a l 9c o n s e c u t i v e n u c l e o t i d e d e l e t i o n s (1035-1043n t )i n t h e E 3g e n e s ,w h i c h r e s u l t i n gi n 4a m i n o a c i d d e l e t i o n s i n t h e E 3g e n e s (345-348a a ).O n e s t r a i n w i t h n a t u r a l E 3d e l e t i o n w a s s u c c e s s f u l l y is o l a t e d ,a n d t h e h a l f i n f e c t i o n v a l u e o f M D C K c e l l s w a s 10-9.46T C I D 50㊃0.1m L -1a f t e r p l a q u e p u r i f i c a t i o n .T h e p u p p i e s i n o c u l a t e d w i t h t h e i s o l a t i o n7期王佳丽等:犬腺病毒2型E3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性s h o w e d t y p i c a l r e s p i r a t o r y s y m p t o m s,s u c h a s s n e e z i n g,r u n n y n o s i n g a n d c o u g h i n g.T h e g e-n o m e o f t h e i s o l a t e w a s31786b p,a n d s h a r e d t h e h o m o l o g y o f98.8%-98.9%i n n t w i t h t h e C A V-2g e n o m e s i n G e n B a n k.C o m p a r e d w i t h t h e k n o w n C A V-2g e n o m e s,b e s i d e s t h e u n i q u e m u t a t i o n s o f t h e E3g e n e,t h e i s o l a t e i n t h i s s t u d y a l s o h a d u n i q u e a m i n o a c i d m u t a t i o n s i n F i b e r, H e x o n,a n d E1A,w h i c h m a d e t h i s s t r a i n d i s t i n g u i s h f r o m t h e k n o w n C A V-2s t r a i n i n t h e g e-n o m i c e v o l u t i o n a r y t r e e.T h i s s t u d y o b t a i n e d t h e g e n o m e s e q u e n c e o f t h e C h i n e s e C A V-2s t r a i n f o r t h e f i r s t t i m e,a n d f o u n d t h e s t r a i n w i t h n a t u r a l d e l e t i o n i n E3g e n e s,w h i c h i s h e l p f u l t o u n-d e r s t a n d t h e p r e v a l e n c e a n d g e n e t i c e v o l u t i o n o f C A V-2.K e y w o r d s:c a n i n e a d e n o v i r u s t y p e2;E3g e n e n a t u r a l d e l e t i o n s t r a i n;i s o l a t i o n a n d i d e n t i f i c a t i o n;g e n o m e;p a t h o g e n i c i t y*C o r r e s p o n d i n g a u t h o r:T A N G C h e n g,E-m a i l:t a n g c h e n g101@163.c o m犬腺病毒(c a n i n e a d e n o v i r s,C A V)属于腺病毒科哺乳动物腺病毒属,是一种无囊膜㊁线状的双链D N A病毒,具有两种血清型:I型(C A V-1)㊁I I型(C A V-2)[1]㊂C A V-1主要引起犬传染性肝炎㊁狐狸脑炎;而C A V-2主要引起犬传染性气管支气管炎,临床表现为高热㊁流涕㊁咳嗽等[2],还可能与致死性腹泻病相关[3]㊂除了感染犬以外,C A V-2还有感染浣熊[4]㊁棕熊[5]㊁红狐[6]以及狼[7]等野生动物的报道㊂1962年,D i t h f i e l d等[8]从呼吸道病犬首次分离出C A V-2毒株;1988年,M a c a r t n e y等[3]从犬腹泻样本中分离出C A V-2,证实了可在犬的消化道中增殖;2009年,张洋等[9]首次从犬子宫上皮组织中分离出C A V-2,表明了该病毒有多种组织嗜性㊂据报道,C A V-2与犬呼吸道冠状病毒㊁犬副流感病毒㊁犬瘟热病毒等病毒存在混合感染[10]㊂当前,G e n B a n k中仅有3条C A V-2全基因组,分别来源于美国㊁加拿大㊁日本,基因组全长约31000b p㊂该病毒衣壳蛋白主要由F i b e r㊁H e x o n 和P e n t o n组成,F i b e r由凸起㊁轴㊁尾三部分构成,可介导病毒与宿主细胞受体间融合,在感染过程中起到关键作用[11];H e x o n含量最多,是决定腺病毒抗原性的主要蛋白;P e n t o n主要发挥内化作用[12],并对病毒存活功能稳定性有着重要作用㊂E3基因属于早期转录基因,主要编码免疫调节蛋白[13],具有免疫抑制的作用[14]㊂此外,E3基因是C A V-2分子检测的靶基因[15]㊂目前国内关于C A V-2的病原流行病学资料不多㊂薛林杰[16]对河南省2018 2020年采集的1410份犬粪便样本进行C A V-2检测,结果显示阳性率为2.48%;张发明等[17]对成都地区2016 2017年出现呼吸道症状的78份犬鼻拭子以及消化道症状的213份犬肛门拭子进行C A V-2检测,结果显示鼻拭子检出率为17.95%,粪便样本检出率为15.96%;冀君(J i)等[18]对河南㊁湖北㊁江苏三省2017 2019年的224份犬腹泻样本进行C A V-2检测,阳性率为8.5%㊂上述资料显示不同地方C A V-2在犬中的流行率差异较大,但未见关于国内C A V-2基因组研究的报道,其分子特征和遗传演化仍待调查㊂本研究的目的是对川渝部分地区C A V-2的流行情况进行调查,并对流行毒株的基因组及生物学特性进行探究㊂1材料与方法1.1材料1.1.1主要试剂M D C K细胞由本实验室保存;D M E M培养基㊁D N A提取试剂盒购自A i d l a b B i o t e c h北京有限公司;P C R P r e m i s T a q酶购自南京诺唯赞有限公司;胎牛血清购自武汉普诺赛生物;A l e x a F l u o r488山羊抗兔I g G㊁D A P I封片液购自A b b k i n e公司;大肠杆菌感受态细胞㊁p M D19-T克隆载体购自宝生物工程(大连)有限公司;兔抗C A V-2高免血清由本实验室保存㊂1.1.2样本来源2021 2022年,从重庆㊁成都㊁西昌7个宠物医院,共采集121份患呼吸道疾病的犬鼻咽拭子,其中重庆30份㊁成都43份㊁西昌48份㊂1.2D N A的提取将样本拭子放入2m L离心管中,加入适量含有1%双抗的P B S溶液,振荡涡旋混匀以后置于4ħ,7000r㊃m i n-1离心10m i n后吸取200μL上清液,采用D N A提取试剂盒提取病毒D N A㊂3892畜牧兽医学报54卷1.3检测C A V-2的P C R方法选取C A V-2参考毒株U77082的E3基因作为靶基因,使用P r i m e r5设计一对C A V-2特异性检测引物,F:5'-C C T C A A C G A G A T G C C T C T T C C C A-3';R:5'-C A T G G G C C T G A T T T T G T T G T T T-3',目的片段736b p㊂P C R扩增体系配比:2ˑP C R P r e m i x T a q12.5μL,d d H2O8.5μL,上㊁下游引物各1μL,模板D N A2μL;反应程序:94ħ预变性5m i n;94ħ变性30s,52ħ退火30s,72ħ延伸70s,35个循环;72ħ终末延伸7m i n㊂反应结束后,取P C R产物用1.5%琼脂糖凝胶电泳(120V, 25m i n)进行鉴定㊂所有阳性样本的P C R产物纯化后连接到p M D19-T载体上,再转化到大肠杆菌感受态细胞中,阳性质粒送往北京擎科生物有限公司测序及分析㊂1.4病毒的分离选取3份C A V-2阳性样本,将其上清用0.45μm的滤器过滤处理后,吸取200μL上清液接种于长成单层M D C K细胞的六孔板上;同时设置阴性对照,接种等量的D M E M培养基;分离的病毒液经噬斑纯化3次后,进行病毒的鉴定及T C I D50的测定㊂1.5病毒的鉴定1.5.1 P C R鉴定吸取200μL纯化后的病毒液提取D N A,采用 1.3 中的方法进行C A V-2检测㊂1.5.2间接免疫荧光试验病毒液接毒48h 后,弃去培养液,使用P B S清洗三次后,加入冰丙酮放入4ħ冰箱固定10m i n,弃去丙酮使用P B S清洗后,加入5%的B S A溶液放入37ħ培养箱封闭30m i n,弃去B S A溶液后,将兔抗C A V-2血清作为一抗(1ʒ500稀释),F I T C标记山羊抗兔I g G为二抗(1ʒ3000稀释),进行免疫荧光,同时设置未接毒的细胞进行同步操作,作为阴性对照㊂1.5.3 电镜观察收集纯化后的病毒液, 10000r㊃m i n-1离心5m i n,取上清送往成都里来生物有限公司进行透射电镜制样㊁观察,观察病毒形态及拍照㊂1.6E3基因自然缺失分离株对幼犬致病性自某养殖场购买6只1月龄中华田园犬,未接种疫苗㊁已驱虫,经检测犬细小病毒㊁犬冠状病毒㊁犬副流感㊁犬瘟热㊁C A V-2均为阴性,将幼犬平均分为2组,一组经口鼻接种2m L病毒滴度为10-9.46T C I D50㊃0.1m L-1的分离毒株病毒液;另一组接种等量的D M E M培养基;详细记录幼犬每日体温以及临床表现,每日采集鼻咽拭子与肛门拭子,采用荧光P C R方法[19]检测排毒情况㊂1.7分离株基因组扩增与拼接根据G e n B a n k中C A V-2全基因参考序列U77082,使用P r i m e r5设计18对基因组扩增引物,用于扩增分离毒株的全基因,相关引物信息见表1㊂获得的P C R的产物纯化后连接到p M D19-T载体上,转化到大肠杆菌感受态细胞后,挑取单个菌落送往北京擎科生物公司进行测序,最后使用S e q m a n 软件将所有测序结果拼接,获得分离毒株全基因组序列㊂1.8分离毒株的序列分析将本研究获得的C A V-2全基因㊁E3基因㊁F i-b e r基因㊁H e x o n基因㊁P e n t o n基因运用M E G A7软件分别与其对应参考序列的核苷酸及氨基酸进行多重比对,并采用最大似然法建立C A V-2全基因㊁E3基因遗传进化树,进行系统发育分析㊂采用R D P4.39软件对本研究获得的C A V-2全基因组进行重组分析㊂2结果2.1C A V-2的检测结果121份样本中,36份检测为C A V-2,阳性率为29.8%,测序结果进一步证实了检测结果的准确性㊂其中成都地区阳性率为27.8%㊁西昌地区阳性率为35.4%㊁重庆地区阳性率为23.3%,表明C A V-2已在上述地区流行,详见表2㊂值得注意的是,36份C A V-2阳性样本中,有25个毒株的E3基因存在同样的9个核苷酸的连续缺失(1035~1043n t),导致4个氨基酸的缺失(345~348a a)㊂2.2E3基因片段的进化分析选取G e n B a n k中全部45条C A V-2E3基因片段和本研究获得的36条长度为736b p的E3基因片段(G e n B a n k登录号:O P018862~O P018896),采用最大似然法建立进化树,结果显示:本研究所获得的36条E3基因序列共分为两大支,其中11条序列与G e n B a n k中现有C A V-2毒株序列聚为一大支,另25条E3基因部分缺失毒株序列则独立聚为一大支,详见图1㊂2.3病毒的分离与鉴定样本上清液接种于M D C K细胞,盲传3代以后,其中1份出现了细胞病变,连续传递至第5代48927期王佳丽等:犬腺病毒2型E 3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性表1 C A V -2全基因扩增引物T a b l e 1 P r i m e r s a r e u s e d t o a m p l i f y wh o l e g e n e o f C A V -2引物P r i m e r 引物序列(5'ң3')P r i m e r s e qu e n c e 片段长度/b pS i z eF 1TG G G A C G G T C A G G T T C A G G T R 1C G G A A T C T T G G A G G T C G T T G A1806(67-1872)F 2C C T G A A G C T G A C A G A C T T G A C C R 2C A G A C A G A C A A C G C T G G A C A C 1813(1773-3585)F 3A T G A T C T A A A G C A A C G A A TR 3G A A G A A G A T C C A A C T A A A G A C1998(3493-5490)F 4T G T A A A C A A A A G T C A T C A T C C T C R 4G T G C C A T T T A T G C T A G T T T T C C A 1976(5369-7344)F 5C C T G T T C T T T A C C A T T C C A A R 5A T C C A G C A G G C G G G C A A C A1881(7236-9116)F 6G C A T C A A G C C A C A A A C A A T C A C A AR 6T C T T T G C G G G A A G G C A C C A C 2094(8977-11070)F 7T T C A T C C C A G C C T T T T G C R 7T A C T C T G T C A C A T T A G G C A T 1952(11005-12956)F 8G G T G G G G A A T T T A A G T CR 8T C T G C G T A C A C T T C G T C A T A 1963(12904-14866)F 9C C C G T G G T G T T T A C T C C C GR 9G G C T G G T C A G A G G G C T T T A 1896(14796-16691)F 10C A C C C C T G A T G C C C A T G A C R 10T C C A G G C A G T A G G A G G A G A T T 1913(16595-18507)F 11G G A C T C C G C T A C C G T T C A C A A R 11C A T T A A A T T C C C A G A G T T C C A C 2007(18400-20403)F 12G T G T T C A T C G G A C C A G T G G A R 12A C C G C C T A A A C C C T C A A A C A C 1838(20367-22204)F 13G A G A T T G C T T A C C T G A C T A T G A A A CR 13C T T G T C T G G T G G T T G T C C T C A1887(22140-24026)F 14C A C T A A A G A G C C C A A A G C C A G R 14A G G C C C A G T T G G G A T G C A G G T T C T C 1880(23978-25857)F 15C T A A A G T C A G A A G C G G A G G C A R 15G C T T C A A T A G C A C C A T C T1825(25807-27631)F 16A T G G A A C A A T A G G G G C T G T G G T A R 16G G T T T T G A G T A T G A T G A T G C T C T T G C1855(27526-29380)F 17A C A C T T C T A A C A A A G A T A C A GR 17A C G G T G C T A T G C T T A G T G G T G T1158(29242-30399)F 18G C A A A A T A A C A A A A C A C C A C T A R 18C G T G T G C G T G T G C G T G C 1422(30365-31786)表2 C A V -2检测结果T a b l e 2 T h e r e s u l t s o f d e t e c t i n g CA V -2地区A r e a样本数S a m p l e 阳性率/%P o s i t i v e r a t e95%置信区间(C I)/%C o n f i d e n c e i n t e r v a l成都C h e n gd u 4327.814.1~41.5西昌X i c h a n g 4835.421.7~49.1重庆C h o n g q i n g 3023.37.6~39.0合计T o t a l12129.822.0~37.65892畜 牧 兽 医 学 报54卷Ә.本研究获得序列Ә.S e q u e n c e s o b t a i n e d i n t h i s s t u d y 图1 C A V -2E 3基因核苷酸序列进化树F i g .1 E v o l u t i o n a r y t r e e o f C A V -2E 3g e n e n u c l e o t i d e s e qu e n c e 后,细胞培养物在48h 左右出现稳定病变,表现为细胞圆缩㊁聚集呈典型的葡萄串状病毒,如图2B ㊂经测定,该分离株纯化后细胞半数感染值为10-9.46T C I D 50㊃0.1m L -1㊂经P C R 和间接免疫荧光试验及电镜鉴定该分离株为C A V -2㊂间接免疫荧光试验结果显示接毒的细胞胞浆内可见特异性的绿色荧光(图2C );电镜下可见排列整齐㊁无囊膜㊁大小约80n m 的典型腺病毒样粒子(图2D )㊂综上,本研究成功分离出一株C A V -2E 3基因自然缺失株,命名为G 1/C h i n a /C A V -2㊂2.4 G 1/C h i n a /C A V -2株对幼犬致病性2.4.1 临床表现 G 1/C h i n a /C A V -2株经口鼻感染幼犬3d 后,3只幼犬均出现体温增高㊁流鼻涕㊁打喷嚏的临床症状,体温变化详见图3A ;有2只第5天出现咳嗽的症状㊂第7天后感染犬临床症状逐渐减轻,第9天恢复正常㊂阴性组3只幼犬体温㊁临床表现正常㊂2.4.2 排毒情况 攻毒组幼犬在感染后第2天开始排毒,鼻咽拭子㊁粪便同时检测到病毒的排出;鼻咽排毒量在第5天达到高峰,第11天结束;粪便排毒第4天达到高峰,第8天排毒结束㊂排毒情况详见图3B ㊂2.5 G 1/C h i n a /C A V -2株基因组分析2.5.1 G 1/C h i n a /C A V -2完整基因组特征 本研究成功获得G 1/C h i n a /C A V -2株完整基因组68927期王佳丽等:犬腺病毒2型E 3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性A.对照细胞;B .接毒48h 病变细胞;C .间接免疫荧光;D.电镜(50000ˑ)A .C o n t r o l c e l l s ;B .C P E a t 48h h o u r s a f t e r v i r u s i n o c u l a t i o n ;C .I n d i r e c t i m m u n o f l u o r e s c e n c e ;D .E l e c t r o n m i c r o s c o pe (50000ˑ)图2 分离毒株鉴定图F i g.2 I d e n t i f i c a t i o n p i c t u r e s o f t h e i s o l a t e d s t r a in A .试验犬体温;B .试验犬排毒情况A.T e m p e r a t u r e d e t e c t i o n o f p u p p i e s ;B .D e t o x i f i c a t i o n o f t h e p u p pi e s 图3 G 1/C h i n a /C A V -2攻毒后幼犬的体温和排毒情况F i g .3 T e m p e r a t u r e c h a n g e s a n d d e t o x i f i c a t i o n o f t h e p u p p i e s p o s t c h a l l e n ge (G e n B a n k 登录号:O P 060355),与G e n B a n k 中全部3条C A V -2全基因组核苷酸相似性为98.8%~98.9%㊂与已知C A V -2全基因组相比,本研究分离毒株除了在E 3基因第1035~1043n t 缺失外,在基因组5'端第341n t 有一个碱基G 插入㊁E 1A 基因上第531~542n t 缺失㊁D N A p o l y m e r a s e 上第4034~4036n t 缺失㊁基因组5'第28232n t 处,有一个碱基G 插入㊂与G e n B a n k 全部33条F i b e r 蛋白完整序列相比,G 1/C h i n a /C A V -2株有2个独特的氨基酸位点突变(F 220S ㊁K 493R );与G e n B a n k 全部35条H e x o n 蛋白完整序列相比,有1个独特的氨基酸位点突变(A 559T );P e n t o n 蛋白无独特的氨基酸位点突变,遗传稳定㊂选取G e n B a n k 中全部3条C A V -2全基因组,以及3条C A V -1和其他物种2型腺病毒全基因序列作为外围毒株,采用最大似然法建立进化树,结果显示G 1/C h i n a /C A V -2株与C A V -2参考序列聚为一大支,但单独聚为一小分支,见图4㊂经R D P 4.39软件分析未见重组事件发生㊂2.5.2 G 1/C h i n a /C A V -2株E 3基因特征 G 1/C h i n a /C A V -2株的E 3基因共1086b p,与G e n -B a n k 中全部3条完整C A V -2E 3基因序列核苷酸之间相似性为97.0%~97.4%㊁氨基酸相似性为95.3%~95.9%㊂与已知E 3基因完整序列比对后发现:G 1/C h i n a /C A V -2株除了E 3蛋白有4个氨基酸连续缺失(345~348a a)外,还有9个独特的氨基酸位点突变,见表3㊂基于G 1/C h i n a /C A V -2株完整E 3基因的进化树与基因组进化树一致(结果未7892畜牧兽医学报54卷Ә.本研究所获得的C A V-2基因组Ә.C o m p l e t e g e n o m e o f C A V-2o b t a i n e d i n t h i s s t u d y图4C A V-2全基因的最大似然法进化树F i g.4M a x i m u m l i k e l i h o o d e v o l u t i o n a r y t r e e o f C A V-2c o m-p l e t e g e n o m e展示)㊂3讨论犬呼吸道疾病是犬的常见病和多发病,感染性因素是主要原因,常见的病原包括病毒㊁细菌㊁支原体等[20];C A V-2是犬重要的呼吸道病毒之一[21],但国内对其研究不多㊂本研究对2021 2022年川渝部分地区患呼吸道疾病的犬鼻咽拭子进行C A V-2检测的检出率为29.8%,表明C A V-2已在川渝部分地区广泛流行,其与犬呼吸道疾病的关系值得进一步关注㊂与薛林杰[16]对河南省犬粪便样本的C A V-2检出率为2.48%以及冀君等[18]对河南㊁湖北㊁江苏三省犬腹泻样本的C A V-2检出率为8.5%表3分离毒株G1/C h i n a/C A V-2E3蛋白氨基酸位点突变T a b l e3A m i n o a c i d s i t e m u t a t i o n o f E3p r o t e i n o f t h e i s o l a t e G1/C h i n a/C A V-2对比毒株C o m p a r e d s t r a i n氨基酸位点P o s i t i o n o f a m i n o a c i d s u b s t i t u t i o n 107126235245247295325331363O P060355S H A M N E V N S A C000020T P T K D D M D P U77082T P T K D D M D P L C557011T P T K D D M D P相比,川渝部分地区鼻咽拭子的C A V-2检出率明显更高,可能与地域差异或样本类型有关㊂本研究成都地区的检出率为27.8%,高于张发明等[17]对成都地区2016 2017年犬鼻拭子的C A V-2检出率(17.75%),提示犬呼吸道样本中C A V-2的流行有上升的趋势,值得进一步关注㊂有趣的是,本研究获得的36条E3基因片段中,有25条的E3基因出现9个核苷酸的连续缺失,导致4个氨基酸的缺失(347~349a a),占阳性样本69.4%,表明E3基因自然缺失株已成为当前川渝部分地区C A V-2优势流行毒株㊂E3基因序列相对保守,但是近年国外报道了E3基因发生点突变现象[22-23],本研究发现E3基因缺失株,说明当前C A V-2E3基因已经出现变异现象㊂腺病毒E3基因编码的蛋白可以阻断MH C-Ⅰ类限制性抗原的呈递以减少细胞毒性T细胞对病毒的杀伤作用,以及抑制免疫介质发挥作用,从而使病毒逃避宿主免疫系统攻击[13]㊂因此,E3基因突变可能会影响其免疫逃避能力,使得病毒粒子更易入侵动物机体,加大了临床防控的难度㊂本研究E3基因自然缺失毒株有4个氨基酸缺失和9个独特的氨基酸突变,是否会影响该病毒的免疫逃避功能仍需进一步研究㊂此外,E3基因作为C A V-2检测的靶基因[24],核苷酸突变可能会影响临床检测的准确性,延误动物的疾病诊断与治疗,临床上需要高度关注㊂作者成功分离到一株E3基因自然缺失毒株G1/C h i n a/C A V-2,该毒株口鼻感染幼犬后引起明显的呼吸道症状,包括打喷嚏㊁流鼻涕以及咳嗽,未观察到腹泻症状,与其他学者的人工感染结果相似[25-26];也有C A V-2毒株人工感染幼犬后出现腹泻[27-28]或致死[29]的报道,表明C A V-2不同毒株引起的临床症状差异较大㊂但遗憾的是,所有人工感染试验均无毒株基因组信息的报道,无法分析其症状多样化的分子基础㊂因此,进一步加强基因组研究对探究C A V-2毒株致病性差异是非常必要的㊂本研究成功获得了分离毒株G1/C h i n a/C A V-2的基因组序列,这是首次获得中国C A V-2毒株的基因组序列㊂基于基因组的进化分析显示,G1/C h i-n a/C A V-2在进化树上单独位于一分支,和已知的C A V-2有明显的遗传距离,显现了独特的遗传进化88927期王佳丽等:犬腺病毒2型E3基因自然缺失毒株的分离鉴定及其致病性方式㊂进一步分析发现该毒株除了E3基因的独特突变外,还在F i b e r㊁H e x o n和E1A等蛋白有独特的氨基酸突变,这些氨基酸突变对C A V-2生物学特性的影响还需进一步研究㊂4结论本研究对2021 2022年川渝部分地区呼吸道病犬的鼻拭子进行了C A V-2检测,检出率为29.8%,表明C A V-2已在川渝部分地区广泛流行,该病毒与犬呼吸道疾病的关系值得进一步关注㊂首次发现E3基因自然缺失毒株,且该毒株已成为川渝部分地区优势流行毒株㊂成功分离出一株E3基因自然缺失毒株,人工感染幼犬后引起典型的呼吸道症状;获得该毒株的完整基因组,这是首次获得中国C A V-2毒株基因组㊂本研究结果有助于了解C A V-2的流行及遗传进化㊂参考文献(R e f e r e n c e s):[1] D E C A R O N,MA R T E L L A V,B U O N A V O G L I A C.C a n i n e a d e n o v i r u s e s a n d h e r p e s v i r u s[J].V e t C l i nN o r t h A m S m a l l A n i m P r a c t,2008,38(4):799-814.[2] B E N E T K A V,W E I S S E N BÖC K H,K U D I E L K A I,e t a l.C a n i n e a d e n o v i r u s t y p e2i nf e c t i o n i n f o u rp u p p i e s w i t h n e u r o l o g i c a l s i g n s[J].V e t R e c,2006,158(3):91-94.[3] MA C A R T N E Y L,C A V A N A G H H M A,S P I B E YN.I s o l a t i o n o f c a n i n e a d e n o v i r u s-2f r o m t h e f a e 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[25]由欣月,刘畅,郝雲峰,等.犬腺病毒C A V-B J02株的分离与鉴定[J].畜牧兽医学报,2020,51(8):2016-2021.Y O U X Y,L I U C,HA O Y F,e t a l.I s o l a t i o n a n di d e n t i f i c a t i o n o f c a n i n e a d e n o v i r u s C A V-B J02s t r a i n[J].A c t a V e t e r i n a r i a e t Z o o t e c h n i c a S i n i c a,2020,51(8):2016-2021.(i n C h i n e s e)[26]廖均乐.犬腺病毒2型分离鉴定及感染模型建立与初步应用[D].郑州:河南农业大学,2022.L I A O J L.I s o l a t i o n a n d i d e n t i f i c a t i o n o f c a n i n ea d e n o v i r u s t y p e2a n d e s t ab l i s h m e n t a n d p r e l i m i n a r ya p p l i c a t i o n o f i n f e c t i o n m o d e l[D].Z h e n g z h o u:H e n a nA g r i c u l t u r a l U n i v e r s i t y,2022.(i n C h i n e s e)[27]邱薇,郑颖,张富强,等.犬Ⅱ型腺病毒KM株的分离鉴定[C]//第17次全国犬业科技学术研讨会论文集.太原:中国畜牧兽医学会,2017:188-193.Q I U W,Z H E N G Y,Z HA N G F Q,e t a l.I s o l a t i o na n d i d e n t i f i c a t i o n o f c a n i n e a d e n o v i r u s t y p e I I KMs t r a i n[C]//P r o c e e d i n g s o f t h e17t h N a t i o n a lS y m p o s i u m o n C a n i n e S c i e n c e a n d T e c h n o l o g y.T a i y u a n:C h i n e s e A s s o c i a t i o n o f A n i m a l S c i e n c e a n dV e t e r i n a r y M e d i c i n e,2017:188-193.(i n C h i n e s e) [28]范泉水,郑颖,邱薇,等.犬2型腺病毒云南强毒株的分离鉴定[C]//第十三次全国养犬学术研讨会论文集.泰州:中国畜牧兽医学会,2009:124-132.F A N Q S,Z H E NG Y,Q I U W,e t a l.I s o l a t i o n a n di d e n t i f i c a t i o n o f Y u n n a n v i r u l e n t c a n i n e a d e n o v i r u st y p e2[C]//P r o c e e d i n g s o f t h e13t h N a t i o n a lS y m p o s i u m o n D o g B r e e d i n g.T a i z h o u:C h i n e s eA s s o c i a t i o n o f A n i m a l S c i e n c e a n d V e t e r i n a r yM e d i c i n e,2009:124-132.(i n C h i n e s e) [29]张洋,袁子国,姜秋杰,等.犬2型腺病毒的分离鉴定及初步特性分析[J].军事医学科学院院刊,2008,32(6):541-544.Z HA N G Y,Y U A N Z G,J I A N G Q J,e t a l.I s o l a t i o n,i d e n t i f i c a t i o n a n d p r e l i m i n a r y c h a r a c t e r i s t i ca n a l y s i s o f a C A V-2[J].B u l l e t i n o f t h e A c a d e m y o fM i l i t a r y M e d i c a l S c i e n c e s,2008,32(6):541-544.(i n C h i n e s e)(编辑白永平)0992。

H3N2亚型犬流感病毒NP蛋白的表达纯化及多克隆抗体制备

H3N2亚型犬流感病毒NP蛋白的表达纯化及多克隆抗体制备

H3N2亚型犬流感病毒NP蛋白的表达纯化及多克隆抗体制备王晓丽;毕振威;王永山;潘群兴;欧阳伟;夏兴霞;诸玉梅【摘要】将分离的H3N2亚型犬流感病毒(Canine influenza virus,CIV)A/Canine/Nanjing/11/2012 (H3N2)株的核蛋白(NP)基因克隆至原核表达载体pET28a(+)中,构建重组表达质粒pET-NP,然后转化大肠杆菌E.coli Rosetta(DE)感受态细胞,经IPTG诱导后,采用SDS-PAGE和Western blot进行分析.结果显示,大肠杆菌表达的重组NP蛋白的分子量约为61 kDa,与预期相符,并能与犬CIV阳性血清发生特异性反应.将表达的重组NP蛋白进行纯化后,免疫大白兔制备抗NP蛋白多克隆抗体血清,Western blot检测该血清可与CIV的NP蛋白发生特异性反应,间接ELISA检测该多克隆抗体血清的效价达1:30 000,显示了较高的抗体效价.本研究为CIV快速检测方法的建立和流行病学调查奠定了科学依据.%The nucleoprotein (NP) gene of H3N2 subtype Canine influenza virus (CIV)A/Canine/Nanjing/11/2012(H3N2) isolated from Nanjing,China,was cloned into pET-28a(+) for generation of a recombinant plasmid pET-NE The resulting recombinant pET-NP was then transformed into E.coliRosetta(DE3) competent cells following by induction with IPTG.The expression of the NP protein was detected in SDS-PAGE and Western blot.The results showed that the recombinant NP was 61 kDa protein corresponding to the expected molecular mass and reacted with the antiserum against H3N2 subtype CIV.The recombinant NP of CIV was purified via Ni-NTA affinity chromatography and the polyclonal antibodies were produced by immunizing rabbits with purified recombinantNP.Western blot indicated that the polyclonal antibodies specifically recognized the recombinant NP.The polyclonal antibodies were titrated in indirect ELISA using the purified recombinant NP as the coating antigen and the titer was as high as 1:30 000.The availability of the recombinant NP and polyelonal antibodies laid a foundation for development of rapid detection and epidemiological methods for CIV.【期刊名称】《中国动物传染病学报》【年(卷),期】2017(025)001【总页数】6页(P1-6)【关键词】犬流感病毒;H3N2亚型;核蛋白;原核表达;多克隆抗体【作者】王晓丽;毕振威;王永山;潘群兴;欧阳伟;夏兴霞;诸玉梅【作者单位】江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014;江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014;江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014;江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014;江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014;江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014;江苏省农业科学院兽医研究所农业部兽用生物制品工程技术重点实验室国家兽用生物制品工程技术研究中心,南京210014【正文语种】中文【中图分类】S852.659.5犬流感(canine influenza,CI)是由犬流感病毒(Canine influenza virus,CIV)感染犬引起咳嗽、喷嚏、流涕、发热、呼吸困难等症状的呼吸系统传染病[1]。

青岛地区犬流感的流行病学调查及H3N2亚型流感病毒的分离鉴定

青岛地区犬流感的流行病学调查及H3N2亚型流感病毒的分离鉴定

青岛地区%流感的流行病学调查及H3N2亚型流感病毒的分离鉴定刘佳卉,马清霞,杨海燕,李军伟,单虎,张传美(青岛农业大学动物医学院,山东青岛266109)摘要:为了解青岛地区犬流感的流行情况以及犬流感病毒的遗传进化情况,本研究在青岛及周边地区的犬只繁育场、犬只交易市场、流浪犬基地以及动物医院采集了134份犬血清和120份犬鼻咽拭子样本。

通过血凝抑制试验检测血清中流感病毒的抗体;鼻咽拭子接种SPF鸡胚分离病毒。

血清H1抗体阳性率为&2%(11/134)、H3抗体阳性率为7.5%(10/ 134)、H5抗体阳性率为0.7%(1/134)、H9抗体阳性率为4.7%(6/134)%分离得到1株H3N2亚型犬流感病毒,鸡胚半数感染量(EID50)为10-475/0.2mL,对小鼠有低致病性;遗传进化分析表明,该病毒的8个基因片段均为犬流感,与美国H3N2分离株的同源关系较近,而与此前亚洲分离株同源关系较远%表明当前青岛地区的犬只有流感病毒的暴露风险,H3N2亚型犬流感的流行毒株较年了抗%关键词:犬流感;流行病学调查;H3N2;遗传进化分析中图分类号:S855.3文献标志码:A文章编号:0529—6005(2020)10—0001—05Epidemiological Investigation of Canine Influenza in Tsingtao and Isolation andIdentification of H3N2Subtype Influenza VirusLIU Jic-hui,MA Qing-xic,YANG Hai-yan,LI Jun-wei,SHAN Hu,ZHANG Chuan-mei (College of Veterinary Medicine,Qingdao Agricultural University,Qingdao266109,China) Abstract:In order te understand the prevalence of canine influenza and the genetic evolution of canine influenza virus in Tsing-tao,134canine serum samples and120canine nasophayngeal swabs were ccllected from dog breeding farms,dog trading markets, stray canine shelters and animat hospitals in Tsingtao and its surrounding areas.Antibody of influenza virus in serum was detected by hemagglutination inhibition(HI)test,and virus isolation was performed using SPF chicken embryo by nasopharyngeal swab inoculu-tion.The positive rate of H1antibody in serum was8.2%(11/134),H3antibody was7.5%( 10/134),H5antibody was0.7% (1/134)and H9antibody was4.7%(6/134).A H3N2subtype canine influenza virus was isolated,and EID50was10_4'75/ 0.2mL,suggesting low pathogenicim te mice.Phylogenetic analysis showed that eight gene fraaments of the virus were alt canine infeuenaa,whiah had high simieaeieywieh eheAmeeiaan seeain.Theeesueesindiaaeeehaeehedogsin Tsingeaoaeeaeeisk ofeiposueeeo infeuenaavieus,and eheH3N2subeypeaanineinfeuenaavieushasaneigeniavaeiaeion aompaeed wieh peeviousyeaes.Key words:canine influenza;epidemiologicat investication;H3N2;phylogenetic analysisCorresponding auttor:ZHANG Chuan-mei,E-mait:zhangchuanmei100@犬流感病毒(Canine influenza virus,CID)属于病毒科流感病毒属A型流感病毒,犬的系病,为发烧、流鼻液、、%近年了多种亚型的流感病毒感染犬的:2004年,美国H3N8马流收稿日期:2019—09—08基金项目:国家重点研发计划子课题(2016YFD0501004)&青岛农业大学研基金;山东学校优势学科创培养计划项目:刘佳卉(1992-),女,硕士生,主要从事动物传染病的诊断与防治研究,E-mait:1365426015@通讯作者:张传美,E-mait:zhangchuanmei100@ 感病毒跨种族传播感染赛犬,的症状并导犬死亡[1];2007年,韩国犬感染禽源H3N2流感病毒⑵;我国于2006—2010年分离了多株H3N2亚型犬流感;2009年,我国发犬感染H1N1亚型流感病毒,时流行的人甲型H1N1流感病毒高度同源[5];2015年,H3N2亚型犬流感病毒从亚洲传播到了美国[6],随后在多个地区报道;我国自2016年以来H3N2亚型犬流感流行毒株的抗原性了很大变化,取代了之前的流行毒株[7];2017—2018年,在加拿大H3N2亚型犬流感疫情,出现104例确诊病例,认为从亚洲进口的犬只是感染源[8]%犬作为重要的伴侣动物,与人类接触密切,并且可以感染多种流感病毒⑼,其在流感病毒跨物种传播过程中有重要的公共卫生学意义。

病毒的分离与鉴定

病毒的分离与鉴定

病毒的分离与鉴定病毒是一类微小的病原体,其特点是不能自主繁殖,必须寄生在宿主细胞内才能完成复制过程。

为了有效地控制和治疗病毒引起的疾病,研究人员需要对病毒进行分离和鉴定。

本文将介绍病毒的分离与鉴定的方法和步骤。

一、病毒的分离方法1. 细胞培养法:病毒通常寄生于宿主细胞内,通过培养宿主细胞,可以将病毒从样本中分离出来。

这种方法适用于许多病毒,如流感病毒、乙肝病毒等。

2. 动物接种法:某些病毒只能在特定宿主动物中复制,通过向实验动物接种疾病样本,可以使病毒复制并分离出来。

例如,用小鼠进行实验可以分离出小鼠肝炎病毒等。

3. 组织切片法:对于某些病毒,它们会引起组织的明显病变,此时可以取得感染组织的切片进行病毒分离。

例如,用患病动物的脑组织切片进行病毒分离,可用于研究狂犬病病毒等。

二、病毒的鉴定方法1. 电镜观察法:电子显微镜(TEM)可以观察到病毒的形态和结构特征,通过观察病毒的颗粒形状、大小、壳结构等特征,可以初步确定病毒的种类。

2. 免疫学方法:根据病毒与宿主细胞之间的免疫反应,可以采用免疫学方法进行病毒鉴定。

包括免疫荧光法、酶联免疫吸附试验(ELISA)等,可以检测病毒的抗原或抗体存在。

3. 分子生物学方法:利用PCR(聚合酶链式反应)技术、序列分析等分子生物学方法,可以对病毒的基因组进行检测和鉴定。

这些方法对于那些无法用传统手段鉴定的病毒,如新型冠状病毒等,具有重要意义。

4. 勒芒氏法:这是一种用于病毒核酸的立体构建鉴定方法。

勒芒氏法根据病毒核酸在Denhardt液中染色的不同程度进行鉴定。

在进行病毒的分离与鉴定时,研究人员需要注意采取适当的实验室安全措施,避免交叉感染和意外暴露。

此外,病毒的分离与鉴定是一个复杂的科研过程,需要综合运用各种实验技术和方法,推动疾病防控工作的进展。

总结起来,病毒的分离与鉴定是关键的实验工作,它们为了研究病毒的性质、传播途径以及寻找有效的防治策略提供了基础性的支持。

犬副流感病毒NP基因的克隆与原核表达

犬副流感病毒NP基因的克隆与原核表达

的基 因序 列 已定 向克 隆 到 p X 6 - 载 体 , 功 构 建 了其 原 核 表 达 载 体 , 能 在 大 肠 杆 菌 B 2 ( 3 中 得 到 表 GE -P 1 成 并 L 1 DE )
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新 疆 农 业 大 学 学 报
2 1 ,3 2 :4 ~1 0 0 0 3 ( ) 1 6 5
J u n l f X n in g iutr l nvri o r a ija gA rcl a i st o u U e y
文 章 编 号 :1 0 — 6 4 2 1 ) 20 4 — 5 0 78 1 ( 0 0 0 — 1 6 0
LI n — e , M A — h n,SH U Te g f i Su z e EN e— o g, W ih n
TAo —h n ,CH h n — a J AN i n Yu c e g EN S e gn n, I Z-i j a
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NP sa wa mplfe y r v r e ta c i ton p y r s han r a to e ho .Th n, he PCR o c s ii d b e e s r ns rp i ol me a e c i e c i n m t d e t pr du t wa c o e n o p D1 一 smpl e t r a s s q e e .Att a e tme, he c o e ne wa u l ne ln d it M 8 T i e v c o nd wa e u nc d he s m i t l n d ge s s bco d i o e p e so e t r p nt x r s i n v c o GEX一 P一 a d t e ula c ns r c s t a f r d i o E. c l 6 1 n he r s t nt o t u t wa r ns o me nt o i BL21( DE3) c ls a n c d by I el nd i du e PTG o e ue i f r s q ncng,de iy n nd e p e so i ntf i g a x r s i n.Se ue e a a yss wa h q nc n l i s s owe ha dt t

H3N2亚型犬流感病毒南京分离株的鉴定及遗传演化分析

H3N2亚型犬流感病毒南京分离株的鉴定及遗传演化分析

中图分类号:S 852.659.5 文献标志码:A 文章编号:1673-4696(2013)04-0345-06H3N2亚型犬流感病毒南京分离株的鉴定及遗传演化分析高珊珊,蒋 毅,黄璐璐,林 焱,陆承平,刘永杰*(南京农业大学动物医学院,江苏南京 210095) 摘要:为了解南京地区犬流感病毒的亚型,采集17只具有呼吸道症状犬的鼻咽拭子,接种SPF鸡胚分离病毒,并对分离株进行亚型鉴定和序列分析。

结果,获得2株犬流感病毒,其半数鸡胚感染量(EID50)分别为10-4.54/0.1mL和10-1.42/0.1mL;血凝素(HA)基因和神经氨酸酶(NA)基因序列分析显示,2株病毒与已报道的所有H3N2亚型犬流感病毒相应序列的同源性在98%以上,但个别抗原位点有突变;遗传演化分析显示,2株病毒与近年来从犬和猫分离的犬流感病毒中国分离株及韩国分离株的亲缘关系均较近,位于同一进化分支。

关键词:犬流感病毒;H3N2亚型;分离鉴定;遗传演化Identification and genetic evolution analysis of H3N2canineinfluenza virus isolated in Nanjing of ChinaGAO Shan-shan,JIANG Yi,HUANG Lu-lu,LIN Yan,LU Cheng-ping,LIU Yong-jie(College of Veterinary Medicine,Nanjing Agricultural University,Nanjing210095,China) Abstract:In order to investigate canine influenza virus(CIV)infection in Nanjing of China,a total of17nasopharyngeal swabs from dogs with severe respiratory syndrome were collected from the Animal Clin-ics of Nanjing Agricultural University in 2011.Two viral strains were isolated from specific pathogen free(SPF)embryonated chicken eggs.The 50%embryo infectious doses(EID50s)were 10-4.54/0.1mL and10-1.42/0.1mL,respectively.Sequence analysis of hemagglutinin(HA)gene and neuraminidase(NA)geneshowed that two CIV isolates shared high similarity(above 98%)to the known H3N2CIV strains,butthere were individual antigenic site mutations.The HA and NA genetic evolution analysis indicated that thetwo isolates were most similar to the newly isolated canine H3N2viruses from dogs and cats in Korea andChina,and they were in the same evolutionary branching.The result provided a foundation for further in-vestigation of biological characteristics of CIV.Key words:canine influenza virus(CIV);H3N2subtype;isolation and identification;genetic evolution 犬流感(canine influenza)是由正黏病毒科甲型流感病毒属犬流感病毒(canine influenza virus,CIV)引起犬的一种呼吸道传染病[1]。

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析

犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析犬流感是一种由犬流感病毒引起的病毒性疾病,主要症状为发热、咳嗽、打喷嚏、流涕等症状。

随着人们对宠物狗的日益关注,犬流感病毒的研究也日渐重要。

本文介绍了对犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析。

病毒分离首先,需要获取患犬样本。

样本通常为喉拭子,应该在咳嗽和喉咙炎症状发作时采集,存放在RNA保护剂中,以免被破坏。

如果样本无法及时处理,冷冻保存也是可行的。

其次,将样本加入到合适的细胞培养基中,如犬肾细胞或犬胚细胞中,通过培养使病毒复制和扩增。

细胞在适宜的温度和营养条件下生长良好,可以发现透明液滴的形成,这被认为是病毒复制释放的标志。

收集透明液滴后,用PCR方法检测病毒的存在。

病毒检测检测病毒是分离病毒的重要步骤之一,最常用的分析方法是PCR。

PCR技术利用病毒的核酸在经过不断的复制和扩增后进行检测。

PCR不仅能提供病原体的存在与否的信息,还可以通过病毒的基因序列和物种,确定病毒的类型和亚型。

基因序列分析基因序列分析是对病毒的基因组进行研究的一种方法。

在犬流感病毒中,血凝素HA和神经氨酸酰胺酶NA是具有免疫原性的蛋白质,同时也是犬流感病毒疫苗的主要成分。

因此,对这些蛋白的基因组序列的分析可以提供在预防和控制犬流感病毒方面有用的信息。

基因序列分析可以通过比较同一病毒的不同株的基因组序列,或是不同病毒的基因组序列,从而了解病毒的变异和进化历史。

例如,犬流感病毒和人流感病毒同属于A型流感病毒,但两者的HA和NA基因序列却有很大的差异。

总之,分离鉴定和基因序列分析是研究犬流感病毒的关键步骤。

这些研究有助于加深我们对犬流感病毒作用机制的理解,为宠物狗的健康提供更好的预防和治疗方案。

一株H3N2亚型犬流感病毒的分离鉴定

一株H3N2亚型犬流感病毒的分离鉴定

动物医学进展,2020,41(6):130G134P r o g r e s s i nV e t e r i n a r y Me d i c i n e 一株H 3N 2亚型犬流感病毒的分离鉴定㊀收稿日期:2019G11G04㊀基金项目:北京市农林科学院畜牧兽医研究所事业基金项目(X M S S Y J J 201902)㊀作者简介:郑祥茹(1995-),河南信阳人,硕士研究生,主要从事动物疾病的诊断与防治技术研究.∗通讯作者郑祥茹1,林㊀健2,杨志远2,刘立新2,程慧敏2,黄㊀程2,王小蕾2,潘㊀洁2,段会娟2,赵际成2,刘月焕2∗(1.北京农学院动物科学技术学院,北京102206;2.北京市农林科学院畜牧兽医研究所,北京100097)㊀㊀摘㊀要:从北京市延庆区某疑似发生犬流感的德国牧羊犬采集犬鼻拭子,采用鸡胚接种㊁传代㊁H I 试验㊁H A 和N A 基因扩增和序列同源性分析及比格犬回归试验等方法对病毒进行分离鉴定.结果表明,分离的病毒具有H A 活性,且H A 活性可被H 3亚型禽流感病毒阳性血清所抑制(H I 抗体效价为1ʒ160),与H 1㊁H 5㊁H 7亚型禽流感病毒阳性血清和犬流感阴性血清H I 试验均为阴性反应(H I 抗体效价<1ʒ10).分离病毒HA 基因㊁N A 基因与A /c a n i n e /G e o r gi a /89750.1/2017(H 3N 2)毒株H A ㊁N A 基因的同源性均为99.8%.攻毒后第4天开始,2只犬均出现体温升高㊁咳嗽㊁流鼻和精神沉郁等临床症状,并从鼻拭子中分离到病毒,该病毒是一株H 3N 2亚型的犬流感病毒,将其命名为A /c a n i n e /C h i n a /H u a b e i G170607/2017(H 3N 2).㊀㊀关键词:H 3N 2亚型流感病毒;分离鉴定;犬中图分类号:S 855.3;S 851.31文献标识码:B文章编号:1007G5038(2020)06G0130G05㊀㊀犬流行性感冒简称犬流感,是由正黏病毒科(O r t h o m y x o v i r i d e a )A 型流感病毒属(I n f l u e n z aA v i r u s )的犬流感病毒(C a n i n e i n f l u e n z av i r u s ,C I V )引起的一种在犬中传播的高度接触性呼吸道传染病[1].A 型流感病毒根据其血凝素(h e m a g gl u t i n i n ,H A )不同可以分为H 1~H 18共18个亚型,根据其神经氨酸酶(n e u r a m i n i d a s e ,N A )的不同可以分为N 1~N 11共11个亚型[2].2004年,美国佛罗里达州发生H 3N 8亚型犬流感[3G4],经鉴定是由马源流感病毒跨物种传播到犬的;2007年,韩国暴发了H 3N 2亚型犬流感,经调查可能由于犬误食了禽流感致死的鸡导致了H 3N 2亚型禽流感的跨物种传播[5].2009年我国江苏地区分离到了6株H 3N 2亚型犬流感病毒,系统发育树显示与韩国的一株猫源H 3N 2亚型犬流感病毒的亲缘关系最近[6].在世界范围内,犬感染流感病毒的种类在不断增多,这表明犬对禽源㊁人源㊁马源的流感病毒具有天然易感性,犬有可能成为另一种 流感病毒基因混合器[7].近年来,宠物犬作为人类伴侣动物,与人类关系越来越密切,有文献报道,H 3N 2亚型犬流感的H A 基因有可能通过重配引入到人流感病毒中[8G9].鉴于犬类不断发生流感以及流感病毒可能重组及跨宿主传播的风险,对犬流感病毒进行分离和研究具有重要的公共卫生意义[10].2017年,华北地区某德国牧羊犬育种场2岁~5岁犬发现疑似犬流感,患病犬咳嗽,流鼻,精神沉郁,体温升高,哺乳期犬未发病.为防止细菌继发感染,对发病犬注射了青霉素和链霉素进行治疗.为了确诊疾病,采集了4只病犬的鼻拭子,分离到一株H 3N 2亚型犬流感病毒.1㊀材料与方法1.1㊀材料1.1.1㊀鸡胚㊀10日龄的S P F 鸡胚,北京勃林格殷格翰维通生物技术有限公司产品.1.1.2㊀试剂和引物㊀P B S (0.01m o l /L ,pH7.2)㊁胰蛋白胨磷酸盐肉汤,0.5%的鸡红细胞悬液,按常规方法制备,阿氏液,胰酪大豆胨液体培养基(T S B )和硫乙醇酸盐培养基(T G )按中华人民共和国兽药典(三部)2015版制备[11];T a K a R a M i n i B E S T V i r a lR N A /D N A E x t r a c t i o nK i tV e r .5.0(C o d eN o .9766)试剂盒㊁T a K a R aP r i m e S c r i pt T MR T GP C R K i t (C o d e N o .R R 014A )试剂盒和D N A M a r k e r D L 2000(C o d eN o .3427A ),宝生物工程(大连)有限公司产品;参考G e n B a n k 数据库中H 3N 2亚型C I V 流行毒株基因序列,使用P r i m e r5.0引物设计软件设计H A 基因和N A 基因的特异性引物,HA 基因上㊁下游引物分别为A G C A A A A G C A G G G G A T A C GT T T C和A G T A G A A A C A A G G G T G T T T T T AGA T T A T T A G T A C A,N A基因上㊁下游引物分别为A G C A A A A G C A G G A G T A A A A A T G A A C C C A和T C A A G G A G T T T T T T T T T A A A A T T G C G A A AGG C T T A T A T A G G C.1.1.3㊀参考血清㊀A/D K/A l b/35㊁A/t k y/E n g/69㊁R eG8,A/T k y/E n g/647,英国V L A(V e t e r i n a r y L aGb o r a t o r i e sA g e n c y)参考实验室产品;健康犬血清,北京市农林科学院畜牧兽医研究所动物疫病研究室制备和保存.1.1.4㊀实验犬㊀2只6月龄雄性比格犬,北京玛斯生物技术有限公司提供.经检测其H3亚型H I抗体为阴性.1.1.5㊀攻毒试验地点㊀河北省唐山怡安生物工程有限公司负压动物舍,实验动物使用许可证号为S Y X K(冀)2016G001.1.1.6㊀主要仪器设备㊀基因扩增仪(D N A E n g i n e P T CG0200G)㊁凝胶成像仪(M o l e c u l a r I m a g e rʻR G e l D o c T M X R+w i t hI m a g e L a b T M S o f e w a r e),美国B i oGR a d公司产品;电泳仪(D Y YG6C型),北京市六一仪器厂产品;孵化器,德国G r u m b a c h公司产品.1.2㊀方法1.2.1㊀病毒的分离和传代㊀将采集到的4份犬鼻拭子样本,保存于T P B溶液,置-20ħ冻存.将冻存的样品融化㊁振荡,5000r/m i n离心10m i n,吸取上清液,用0.22μm的针头式滤器过滤除菌.将处理好的样品滤液以0.2m L/枚的剂量经尿囊腔接种10日龄的S P F鸡胚,每个样品接种5枚鸡胚.36.5ħ㊁60%相对湿度孵化,120h后收获尿囊液.用0.5%鸡红细胞悬液测定血凝(H A)效价.将收获的病毒尿囊液稀释至10-7,经S P F鸡胚传代3次,建立种子批(F1~F3),接种T G和T S B培养基进行无菌检验.1.2.2㊀H A亚型鉴定㊀1.2.2.1㊀H I试验㊀将F2代病毒用P B S稀释成含4个血凝单位的病毒液,分别与H1㊁H3㊁H5和H7亚型禽流感病毒阳性血清及健康犬血清进行H I试验,H I试验方法参考吴涛等人方法进行[12].1.2.2.2㊀H A基因序列测定与同源性分析㊀选用F2代鸡胚尿囊液病毒,根据T a K a R a M i n i B E S T V i r a l R N A/D N A E x t r a c t i o n K i tV e r.5.0试剂盒说明提取病毒R N A.根据T a K a R aP r i m e S c r i p t T M R TGP C R K i t试剂盒说明进行R TGP C R反应.P C R反应条件:94ħ预变性5m i n;94ħ变性30s,55ħ退火30s,72ħ延伸1m i n,30个循环;72ħ8m i n;4ħ结束反应.取5μL的P C R产物用10g/L的琼脂糖凝胶电泳检测,使用凝胶成像系统观察结果并记录.将P C R阳性产物送宝生物工程(大连)有限公司进行测序.测序结果与不同地区不同时间来源的参考毒株的HA基因序列进行分析,用M E G A6.0软件N e i g h b o u rGj o i n i n g(K i m u r a2Gp a r a m e t e r模型, B o o t s t r a p1000)法绘制P h y l o g e n e t i cT r e e对序列进行分析.1.2.3㊀N A亚型鉴定病毒㊀用同样的方法提取F2代病毒的R N A,进行R TGP C R扩增N A片段并送公司测序,对测序结果进行比对分析.1.2.4㊀病毒含量测定㊀将F1~F3代毒种分别用P B S作10倍系列稀释至10-9,取10-5㊁10-6㊁10-7㊁10-8㊁10-95个稀释度经尿囊腔接种10日龄S P F鸡胚,每个稀释度5枚,0.1m L/胚,孵化120h后,测定H A效价,鸡胚尿囊液H A效价不低于1ʒ16时判为病毒感染,采用Kär b e r计算病毒的鸡胚半数感染量(E I D50)[13].1.2.5㊀动物回归试验㊀将F2代毒株用无菌P B S进行10倍稀释,每只犬各鼻腔喷雾接种3m L(含3ˑ106.9E I D50),观察16日.攻毒后第5天采集犬的鼻拭子进行病毒分离.攻毒后第16日心脏内注射饱和氯化钾致死犬,剖检,观察肺脏病变.取肺脏病变部位置于10%中性福尔马林溶液固定,制作石蜡切片,H E染色[14],在显微镜40倍放大下进行病理组织学观察.2㊀结果2.1㊀病毒分离4份浸泡病犬鼻拭子的T P B滤液经尿囊腔接种鸡胚120h后收获的鸡胚尿囊液均能凝集0.5%的鸡红细胞,其中H A效价最高为1ʒ64,在鸡胚上连续传代到第5代时达到1ʒ512.2.2㊀H A亚型测定结果2.2.1㊀H I试验㊀分离毒株对禽流感病毒H1㊁H5㊁H7亚型阳性血清H I试验均为阴性反应(H I抗体效价小于1ʒ10),对禽流感H3亚型阳性血清H I 试验为阳性反应(H I抗体效价为1ʒ160),H I试验结果该病毒分离株可能为H3亚型犬流感毒株.2.2.2㊀H A基因序列测定与同源性分析㊀R TGP C R 扩增产物的电泳图显示,该毒株H A基因和N A基因在约1700b p和1400b p各有1条特异性条带,与预期大小一致(图1),G e n B a n k登录号分别为MN653237和MN653238.该毒株H A基因核苷酸序列与近年来参考毒株的同源性在97.2%~99.8%之间,与A/c a n i n e/131郑祥茹等:一株H3N2亚型犬流感病毒的分离鉴定G e o r g i a /89750.1/2017(H 3N 2)的同源性最高(99.8%).根据H A 基因核苷酸序列与不同时间地区的参考毒株比较绘制的进化树显示(图2),实验室分离到的犬流感病毒与韩国和中国江苏地区分离到的H 3N 2亚型犬流感病毒在同一分支,并在禽流感谱系内,且不与禽流感病毒在同一分支.1.N A 阴性对照;2.N A 基因;3.H A 阴性对照;4.H A 基因;M.D N A 标准D L20001.N An e g a t i v ec o n t r o l ;2.N A g e n e ;3.H A n e g a t i v ec o n t r o l ;4.H A ge n e ;M.D N A M a r k e rD L2000图1㊀HA 基因和N A 基因P C R 产物电泳结果F i g .1㊀HAa n dN A g e n n e e l e c t r o ph o r e s i s r e s u l t s o f P C R p r o d u c t s 2.3㊀N A 基因序列与同源性分析将N A 基因测序结果与G e n B a n k 中流感N A基因序列进行比对,发现该病毒分离株与A /c a n i n e/G e o r gi a /89750.1/2017(H 3N 2)的亲缘关系最近,同源性为99.8%.与参考序列中A /c a n i n e /T h a i l a n d /C U GD C 5299/2012(H 3N 2)亲缘关系最远,同源性为96.5%.根据N A 基因核苷酸序列进化树显示(图3),该分离株为N 2亚型毒株,综合H I 试验结果和H A 序列分析,确认该毒株为H 3N 2亚型毒株,将其命名为A /c a n i n e /C h i n a /H u a b e i G170607/2017(H 3N 2).2.4㊀病毒含量测定该毒株可在S P F 鸡胚上连续传代并对鸡胚适应性逐代增强,F 1~F 3代的E I D 50分别为105.1/0.1m L ㊁10-6.9/0.1m L ㊁10-7.7/0.1m L .2.5㊀动物回归试验结果攻毒后第4天,试验犬开始出现体温升高㊁咳喘㊁精神沉郁和鼻腔黄色分泌物等临床症状(图4A );攻毒后第6天,试验犬咳喘减轻,精神尚可,鼻腔分泌物减少;攻毒后第11天,试验犬咳喘消失,精神状态良好.从2只犬采集的拭子浸泡于T P B 中,经振荡㊁离心和过滤后接种鸡胚,每个样品接种5枚鸡胚,һ为分离株һT h e i s o l a e图2㊀HA 基因遗传进化树F i g .2㊀P h y l o g e n e t i c t r e e a n a l ys i s o fH A g e n e 231动物医学进展㊀2020年㊀第41卷㊀第6期(总第324期)һ为分离株һT h e i s o l a e图3㊀N A 基因遗传进化树F i g .3㊀P h y l o g e n e t i c t r e e a n a l ys i s o fN A g e n e 120h 后收获鸡胚尿囊液H A 效价均在1ʒ256~1ʒ512.攻毒后第16天剖检犬,2只犬的肺脏均出现色泽暗红的实变(图4B ),气管和其他脏器未见明显病变.病理切片显示肺脏出血,上皮细胞脱落,淋巴细胞增生,毛细血管壁增厚(图4C ).A.症状;B .肺脏剖检;C .肺脏切片A.S y m p t o m s ;B .P a t h o l o g i c a l l e s i o n so f l u n g s ;C .H i s t o p a t h o l o gi c a l l e s i o n s o f l u n g图4㊀回归试验F i g .4㊀R e s u l t s o f c h a l l e n ge t e s t 3㊀讨论本研究从华北地区某德国牧羊犬饲养场分离得到一株C I V ,通过H I 试验鉴定,初步证实该分离株为H 3亚型流感病毒.为进一步鉴定该毒株,扩增了该病毒的H A 基因和N A 基因,并进行了系统发育进化分析,结果表明该病毒分离株为H 3N 2亚型的犬流感病毒,将实验室分离到的毒株命名为A/c a n i n e /C h i n a /H u a b e i G170607/2017(H 3N 2).该毒株与A /c a n i n e /G e o r g i a /89750.1/2017(H 3N 2)的亲缘关系最近,同源性为99.83%.H A 基因核苷酸序列进化树显示,该毒株与中国江苏地区分离到的H 3N 2亚型犬感病毒有较高同源性,与2010年韩国1株猫源毒株及2011年犬源毒株在一个小的进化分支内.宠物犬㊁猫的增加和人口流动,犬㊁猫的数量日331郑祥茹等:一株H 3N 2亚型犬流感病毒的分离鉴定益增加,流动范围越来越广,为犬流感的传播提供了有利条件[15G16].希望相关单位重视对犬流感疫情的监测,为宠物业的健康长期发展和人类的健康安全提供保障[17G18].本研究对2017年分离毒株H3N2亚型犬流感病毒的H A基因进行了同源性㊁遗传进化和序列分析,为我国H3N2亚型犬流感病毒的遗传进化提供了数据[19].该流感病毒虽然属于低致病性流感病毒,但回归试验表明毒力强,该病毒的流行将引起对犬的危害.因此,仍需继续进行流感病毒的监测和研究,为该亚型犬流感的防控和疫苗研制提供参考依据[20G21].参考文献:[1]㊀WR I G H T P F,N E UMA N N G,K AWA O K A Y.O r t h o m y x oGv i r u s e s[C].F i e l d sV i r o l o g y5t he d,2007,1691G1740.[2]㊀林㊀焱.H3N2亚型犬流感病毒江苏分离株基因组特征与致病特性研究[D].南京:南京农业大学,2014.[3]㊀C R AW F O R D PC,D U B O V IEJ,C A S T L E MA N W L,e ta l.T r a n s m i s s i o no fe q u i n ei n f l u e n z av i r u st od o g s[J].S c i e n c e,2005,310(5747):482G485.[5]㊀王晓丽.一株H3N2亚型犬流感病毒的分离及其分子变异性分析[C]//中国畜牧兽医学会动物传染病学分会第十六次学术研讨会论文集.湖北武汉:中国畜牧兽医学会动物传染病学分会,2015:7.[6]㊀L I S J,S H I ZH,J I A OPR,e t a l.A v i a nGo r i g i nH3N2c a n i n e i nGf l u e n z a A v i r u s e s i nS o u t h e r n C h i n a[J].I n f e c tG e n e tE v o l,2010,10(8):1286G1288[7]㊀L A U R A KB,MO DS,MA IGJ U A N MA,e t a l.A n i m a l i n f l u e nGz a v 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iGm i n,HU A N GC h e n g, WA N G X i a oGl e i,P A NJ i e,D U A N H u iGj u a n,Z H A OJ iGc h e n g,L I U Y u eGh u a n(C o l l e g e o f A n i m a l S c i e n c e a n dT e c h o n o l g y,B e i j i n g U n i v e r s i t y o f A g r i c u l t u r e,B e i j i n g,102206;I n s t i t u t e o f A n i m a lH u s b a n d r y a n dV e t e r i n a r y M e d i c i n e,B e i j i n g A c a d e m y o f A g r i c u l t u r a l a n dF o r e s t r y S c i e n c e s,B e i j i n g,100097,C h i n a)A b s t r a c t:As u s p e c t e dc a s eo fG e r m a ns h e p h e r d i n f e c t e dw i t hc a n i n e i n f l u e n z av i r u sw a s f o u n d i nY a n q i n g D i s t r i c tB e i j i n g a n d t h en a s a l s w a bw a s c o l l e c t e d f r o mt h i s d o g s u b s e q u e n t l y.T h e v i r u sw a s i s o l a t e d a n d iGd e n t i f i e db y i n o c u l a t i o n a n d p a s s a g e o n c h i c k e n e m b r y o,H I t e s t,PC Ro fH Aa n dN A g e n e s,s e q u e n c e a n a lGy s i s a n d a n i 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广东省H3N2亚型犬流感血清流行病学调查和病毒的分离、鉴定及遗传进化分析

广东省H3N2亚型犬流感血清流行病学调查和病毒的分离、鉴定及遗传进化分析

广东省H3N2亚型犬流感血清流行病学调查和病毒的分离、鉴定及遗传进化分析广东省H3N2亚型犬流感血清流行病学调查和病毒的分离、鉴定及遗传进化分析犬流感是犬科动物普遍感染的一种高传染性呼吸道疾病,由犬流感病毒引起。

近年来,广东省的犬流感病例有所上升,特别是H3N2亚型的病例明显增加,对犬类的健康造成了一定的威胁。

因此,为了解H3N2亚型犬流感的流行情况,并开展病毒的分离、鉴定及遗传进化分析,我们进行了一项研究。

首先,我们对广东省的犬流感病例进行了血清流行病学调查。

共收集了广东省各地的370份犬流感病例血清样本,并进行了病毒中和试验。

结果显示,72.4%的病例被检测出对H3N2亚型犬流感病毒具有中和抗体。

这表明H3N2亚型是广东省犬流感的主要流行亚型。

为了分离H3N2亚型犬流感病毒,我们从患病犬只的鼻腔和咽喉分泌物样本中分离出了14株病毒。

通过电镜观察,我们发现这些病毒呈现典型的流感病毒形态。

在细胞培养中,我们成功地将这些病毒分离出来,并进行了鸡胚增殖试验和病毒鉴定。

结果显示,这些病毒均为H3N2亚型犬流感病毒。

为了进一步了解这些病毒的遗传特征和进化关系,我们对其基因组进行了测序和分析。

通过对测序结果的比对和系统进化树的构建,我们发现这些病毒的基因组序列与之前报道的H3N2亚型犬流感病毒的基因组序列高度一致。

同时,我们还发现这些病毒的HA和NA基因都有一定程度的变异。

进一步的遗传进化分析显示,这些H3N2亚型犬流感病毒在广东省中存在一定的遗传多样性。

通过比较这些病毒与其他H3N2亚型犬流感病毒的基因组序列,我们发现这些病毒可能是由其他地区传入广东省的。

此外,我们还发现这些病毒在HA和NA基因上有一些突变,这可能与其适应性演化和抗原演化有关。

综合以上结果,我们发现广东省存在H3N2亚型犬流感的流行问题,并且这些病毒在基因组上具有一定的遗传多样性。

这些结果对于制定犬流感的防控策略和疫苗研发具有一定的指导意义。

针对H3N2犬流感病毒的重组犬源化抗体scFv-Fc的制作流程

针对H3N2犬流感病毒的重组犬源化抗体scFv-Fc的制作流程

图片简介:本技术介绍了一种针对H3N2犬流感病毒的重组犬源化抗体scFv Fc,其包括,提取感染细胞的总RNA、反转录得cDNA;扩增VH、VL和Fc基因;然后进行PCR融合,提取重组质粒T scFv和/或T CE Fc;以所述T scFv和/或T CE Fc扩增出scFv和/或Fc,将所述scFv和/或所述Fc目的片段连接至克隆载体中,挑选阳性菌株;以所述scFv为模板,用CE scFv F和/或CE scFv R为引物,扩增,将产物与载体进行同源重组连接,完成后转化Rosetta感受态细胞,抗性平板筛选后,挑选阳性菌株命名ET32a scFv Fc。

本技术可用于类似生物制剂的制备。

本技术针对H3N2亚型CIV的重组犬源化抗体,为防控该病毒引起的犬群感染,以及应对其对人类健康和公共卫生构成的潜在威胁奠定物质基础。

技术要求1.一种制备针对H3N2亚型CIV的重组犬源化抗体scFv-Fc的方法,其特征在于:包括,提取感染细胞的总RNA、反转录得cDNA;以所述cDNA为模板,以VH-F和/或VH-R、VL-F和/或VL-R、Fc-F和/或Fc-R中的一种或几种为引物,扩增VH、VL和Fc基因;以所述扩增的VH、VL、Fc为模板,以CIV-VH-F和/或CIV-VH-R、CIV-VL-F和/或CIV-VL-R、CIV-Fc-F和/或CIV-Fc-R中的一种或几种为引物,再次扩增VH、VL和Fc基因,然后进行PCR融合,胶回收并连接至克隆载体中,转化DH5α感受态细胞,经抗性挑选出阳性菌,提取重组质粒T-scFv和/或T-CE-Fc;以所述T-scFv和/或T-CE-Fc扩增出scFv和/或Fc,将所述scFv和/或所述Fc目的片段连接至克隆载体中,完成后转化Rosetta感受态细胞,经抗性平板筛选后,挑选阳性菌株命名为pET-32a-scFv和/或pET-32a-Fc;以所述scFv为模板,用CE-scFv-F和/或CE-scFv-R为引物扩增,将产物与载体进行同源重组连接,完成后转化Rosetta感受态细胞,经抗性平板筛选后,挑选阳性菌株命名ET-32a-scFv-Fc。

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犬流感病毒的分离鉴定及部分基因序列分析摘要:使用Vero细胞接种临床症状疑似感染犬流感病毒(CIV)的犬肺组织,盲传3代,观察其病变情况,收集72 h培养液进行PCR鉴定、血凝特性及形态学观察,同时进行序列测定和分析,并制作系统进化树。

结果表明,从犬肺中成功分离出一株犬流感病毒,该病毒能够凝聚豚鼠、猪、鸡抗凝血,电镜观察病毒呈圆形、长丝状等形态多样、大小不等的颗粒状;序列分析表明,与人源、犬源等10株有代表性的流感病毒基因同源性极高,只有少数地方發生了特异变异。

这些数据的分析对于犬流感的防控有一定的参考价值。

关键词:犬流感病毒;分离鉴定;基因序列中图分类号:S858.292 文献标识码:A 文章编号:1007-273X(2019)08-0009-02 犬流感是由犬流感病毒(CIV)引起的犬的一种接触性传染病,该病的主要临床症状表现为发热、流涕和咳嗽。

CIV是犬传染性呼吸系统疾病的主要病原之一,其容易引起犬的支气管炎和支气管肺炎,损害呼吸道上皮细胞,给其他病原体的感染创造了条件。

该病对于世界各国养犬业的发展也产生了一定的影响。

CIV在分类上属于副黏病毒科副黏病毒亚科如布拉病毒属。

其与同属的猴病毒V型、人SV5分离株及人流感病毒等抗原性密切相关。

当前,市场上虽然有相关疫苗,但是该病的发生率依然很高,之所以出现这种现象可能与该病毒的不断变异存在一定的关系。

基于该原因,分离当前的流行变异株、了解序列变异情况对于该病的预防、诊断及治疗意义重大。

本试验对一例疑似犬流感病例的肺组织中分离出的病毒进行了鉴定,并尝试对该病毒中的部分基因序列进行了分析,探讨了其出现遗传变异的情况。

现将其报道如下。

1 材料与方法1.1 材料本研究选取临床诊断为犬流感的病死京巴犬1只,其年龄约1岁左右,临床表现为患犬精神萎靡不振、不喜进食、咳嗽、流涕、喘息等呼吸道症状,同时还伴有发热等不良症状。

最终该犬治疗无效死亡,将病犬的肺脏取出进行处理[1]。

细胞系:Vero细胞购于海南壹田生物科技有限公司,并用于后期的分离鉴定和部分基因序列分析。

1.2 病毒分离参照已有的分离方法对病毒进行分离,并将成功分离的病毒命名为QF20180726。

1.3 病毒鉴定血凝试验:分别采集豚鼠、鸡、猪抗凝血,使用PBS液洗涤红细胞四次,1 500 r/min离心10 min,用PBS液配成1%红细胞悬液进行血凝试验。

然后对细胞培养液负染色,进行电镜观察[1]。

2 结果与分析2.1 病毒分离培养病料接种到Vero细胞第五代24 h后出现典型细胞病变,截止到第5天收毒的时候,大部分细胞融合、裂解死亡,培养液中碎片增多,相同条件下的正常细胞没有出现这种变化。

2.2 血凝试验病毒在25 ℃的环境下能够凝集豚鼠、猪、鸡红细胞。

2.3 RT-PCR鉴定结果对Vero细胞培养病毒进行犬流感病毒的RT-PCR检测,最终结果显示,Vero细胞培养的病毒为CIV阳性。

2.4 电镜观察电镜片显示,CIV为圆形,有囊膜,其直径为80 mm左右,囊膜上有直径8~10 nm的纤突。

病毒因囊膜破损而呈现出不规则的形态,成多形性、长丝状等。

2.5 N基因序列同源性分析与人源、犬源等10株有代表性的流感病毒N基因相比较,核苷酸同源性为95.7%~99.8%,氨基酸同源性为97.4%~99.6%。

有两处氨基酸发生了新的变异,分别是第257位由V变成了A,第301位由A变成了T。

其中与人源流感病毒分离株LN同源性最低,为97.4%,与犬源流感病毒分离株08-1990和D277同源性最高,均为99.6%。

2.6 F基因序列同源性分析与人源、犬源等10株有代表性的流感病毒F基因相比较。

核苷酸同源性为94.7%~99.6%,氨基酸同源性为95.6%~99.3%。

有两处发生特异变异,其分别是第56位由T转变为S,第89位由T转变为M。

其中与人源流感病毒分离株LN同源性最低,为95.6%,与犬源流感病毒分离株08-1990同源性最高,为99.3%。

2.7 HN基因序列同源性分析与人源、犬源等10株具有代表性的流感病毒HN基因相比较,核苷酸同源性为95.5%~99.8%,氨基酸同源性为96.3%~99.6%,其中与人流感病毒分离株LN同源性最低,为96.3%,与犬源流感病毒分离株D277同源性最高,为99.6%。

2.8 N、HN和F基因克隆、测序使用设计的N、F和HN基因引物扩增的产物经琼脂糖凝胶电泳,分别可以见到约1 680、1 970和1 830 bp左右的3个基因片段,其大小与N、F和HN蛋白基因类似,预测结果证实本试验所克隆的基因是正确的,这也从侧面说明本次研究是有效的。

3 小结与讨论本研究在对该病进行分析时,已经建立起了病毒分离、血凝、血凝抑制监测方法以及RT-PCR方法,但是这些方法对实验条件的要求相对比较高,而且所需要的时间也比较长,其推广难度相对来说比较大。

而分离鉴定及部分基因序列分析则是一种简单、快速、准确的基因测试法。

本研究对CIV检测的反应条件进行了优化,提高了犬流感病毒分离鉴定及部分基因序列分析的特异性和灵敏度,该技术基本上克服了当前临床和实验室诊断CIV方面存在的不足,其操作条件简单方便,在对病毒进行分析和测试时,不需要太过复杂的仪器设备、分离成本比较低,为相关疾病的诊断和治疗提供了较大的便利。

犬流感是一种可以在成年犬间快速传播、引起犬呼吸系统不畅的疾病,该病在比较严重的情况下会造成犬只死亡。

据相关研究表明之所以会出现犬流感病毒,是因为这些流感病毒来源于异种动物。

流感病毒与其他病毒不同,其可以突破种间屏障,感染异种动物,犬作为宠物与人接触密切,因此对该病必须要引起足够的重视。

本试验之所以开展分离鉴定及部分基因序列分析,就是为了建立一种行之有效的CIV检测方法,其对于开展CIV的综合防治与疾病诊断有着极为重要的意义。

据血清学调查表明,CIV在世界各地普遍存在,是危害犬业发展的主要传染病之一,该病毒在所有的犬类中都有流行,对于已经患病的犬来说,还可能会引发其他的并发症,如急性脑脊髓炎、脑内积水等,该病的出现严重危害了犬类的健康生长。

近些年来,随着我国养犬业的不断扩大,CIV也受到了越来越多人的重视[2]。

本试验以海口某动物医院诊治的1例临床诊断疑似CIV感染京巴犬作为对象,发现其在患病之后的主要临床症状表现为精神萎靡不振、不喜进食、咳嗽、流鼻涕、喘息声粗重等呼吸道症状,同时还伴有发热等不良症状,因治疗无效而死亡。

一般情况下,犬单独感染CIV 的情况并不多见,在对死亡病犬解剖检查时,发现病犬的死亡可能与细菌、支原体和病毒等混合感染有一定的关系。

为了更加深入分析CIV变异情况,本试验从患犬肺组织中分离得到了一株CIV,并结合实验室检测手段对其中的部分基因序列进行了分析,详细研究了基因变异情况。

结果表明该病毒能够在4 ℃条件下将豚鼠、猪、鸡等凝聚到一起,这一特性与CIV的血凝特性基本上是一致的。

在电镜下观察病毒株结构时,发现其超微结构呈圆形、长丝状等不规则形态。

通过对N、HN和F基因进行扩增和测序,其核苷酸和氨基酸同源性分析和系统进化关系显示,与10株有代表性的犬流感病毒N基因核苷酸的同源性为95.7%~99.8%,氨基酸同源性為97.4%~99.6%,其中有两处氨基酸发生了全新的变异:第257位由V变成了A,第301位由A变成了T;其中与人源流感病毒分离株LN同源性最低,为97.4%,与犬源流感病毒分离株08-1990和D277同源性最高,均为99.6%。

HN基因分析显示,与10株有代表性的流感病毒HN基因核苷酸同源性为95.5%~99.8%,氨基酸同源性为96.3%~99.6%;其中与人源流感病毒分离株LN同源性最低,为96.3%,与犬源流感病毒分离株D277同源性最高,为99.6%。

与10株有代表性的流感病毒F基因核苷酸同源性为94.7%~99.6%,氨基酸同源性为95.6%~99.3%[3]。

有两处发生特异变异,分别是56位由T变成S,89位由T变成了M。

其中与人源流感病毒分离株LN同源性最低,为95.6%,与犬源流感病毒分离株08-1990同源性最高,为99.3%。

F基因的遗传变异对于CIV的预防有着极为重要的影响,特别是重要抗原位点的变化,其可能会导致疫苗的免疫保护不够全面,本次分离株F基因的变异是否能导致疫苗的免疫保护不全或者是增加CIV的毒力变化值则还需要进一步深入研究和分析。

N、HN和F基因序列分析还表明,犬流感病毒流行毒株之间氨基酸序列变化并不是很大,但与其他毒株之间的差异相对来说是比较大的。

4 结论本试验成功分离出一株犬流感病毒,该病毒在25 ℃条件下可以成功吸附豚鼠、鸡、猪血红细胞。

电镜观察显示病毒为圆形、长丝状等形态多样、大小不等的病毒粒子。

结合N、HN和F基因序列分析显示,成功分离的犬流感病毒株与犬流感病毒分离株08-1990的亲缘关系是最近的,同时由于病毒感染,其基因序列发生了特异性变异。

参考文献:[1] 罗思思,谢芝勋,谢丽基,等.H7亚型和N9亚型禽流感病毒RT-LAMP可视化检测方法的建立[J].畜牧兽医学报,2015(7):1176-1183.[2] 陈樱,莫彦宁,周华波,等.类人H3N2犬流感病毒广西分离株的鉴定及其遗传演化分析[J].中国预防兽医学报,2015(5):401-404.[3] 于志君,朱晓文,刘红,等.A型流感病毒跨种传播和致病性相关蛋白研究进展[J].动物医学进展,2011(11):90-94.感谢您的阅读!。

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