酵母双杂交H2Y和Y187系统protocol
Y187酵母双杂交菌株使用说明
与 AD 结合,将要检测的蛋白质分别与 BD 和 AD 融合,形成 bait 融合蛋
白(bait -‐BD)和 prey 融合蛋白(prey-‐AD),如果 bait 和 prey 发生相
互作用,就会促使 BD 和 AD 的相互接近,形成完整的 GAL4,从而激活
位氨基酸区段的转录激活域(AD)。DNA-‐BD 能够识别 GAL4-‐responsive gene
酵母双杂交的一些问题
研究蛋白互作的方法蛋白互作的研究一直以来都受到重视,是研究细胞信号传导等非常重要的方面。
我就我现在做过的方法给大家介绍一下,抛砖引玉了,大家多补充纠正一下吧常用的体外互作研究方法:1、酵母双杂交(yeast two-hybrid,Y2h)酵母双杂交作为最经典的蛋白互作方法一直沿用至今,并且仍然保持着自己的优势。
酵母双杂交系统能在体内测定蛋白质的结合作用,具有高度敏感性。
酵母双杂交系统的最主要的应用是快速、直接分析已知蛋白之间的相互作用及分离新的与已知蛋白作用的配体及其编码基因。
优点在于:优点: ⑴作用信号是在融合基因表达后,在细胞内重建转录因子的作用而给出的,省去了纯化蛋白质的繁琐步骤。
⑵检测在活细胞内进行,可以在一定程度上代表细胞内的真实情况。
⑶检测的结果可以是基因表达产物的积累效应,因而可检测存在于蛋白质之间的微弱的或暂时的相互作用。
⑷酵母双杂交系统可采用不同组织、器官、细胞类型和分化时期材料构建cDNA文库,能分析细胞浆、细胞核及膜结合蛋白等多种不同亚细胞部位及功能的蛋白。
但是酵母双杂交有自己的缺点:⑴双杂交系统分析蛋白间的相互作用定位于细胞核内,而许多蛋白间的相互作用依赖于翻译后加工如糖基化、二硫键形成等,这些反应在核内无法进行。
另外有些蛋白的正确折叠和功能有赖于其他非酵母蛋白的辅助,这限制了某些细胞外蛋白和细胞膜受体蛋白等的研究。
⑵酵母双杂交系统的一个重要的问题是"假阳性"。
由于某些蛋白本身具有激活转录功能或在酵母中表达时发挥转录激活作用,使DNA结合结构域杂交蛋白在无特异激活结构域的情况下可激活转录。
另外某些蛋白表面含有对多种蛋白质的低亲和力区域,能与其他蛋白形成稳定的复合物,从而引起报告基因的表达,产生"假阳性"结果。
“假阳性”对策:即使根据严格的对照实验证明确实发生了蛋白间的相互作用,还应对以下方面进行分析:(1)这种相互作用是否会在细胞内自然发生,即这一对蛋白在细胞的正常生命活动中是否会在同一时间表达且定位在同一区域。
《酵母双杂交系统》课件
01
明确研究目标,确定需要验证的蛋白间相互作用或筛选与特定
蛋白相互作用的候选蛋白。
挑选合适的酵母菌株
02
根据研究目的选择适合的酵母菌株,如用于筛选候选蛋白的酵
母菌株或用于验证已知相互作用蛋白的酵母菌株。
构建诱饵和猎物蛋白的表达载体
03
将目的蛋白分别克隆到酵母表达载体上,构建诱饵和猎物蛋白
的表达载体。
应用领域
蛋白质互作网络研究
利用酵母双杂交系统可以大规模地筛选蛋白质之间的 相互作用,构建蛋白质互作网络。
疾病机制研究
通过研究疾病相关蛋白的相互作用,有助于深入了解 疾病的发生和发展机制。
药物靶点发现
发现新的药物靶点,为药物研发提供新的思路和方向 。
02
酵母双杂交系统的实验流程
准备阶段
确定研究目的
基因表达调控研究
研究转录因子与DNA的结合
利用酵母双杂交系统可以筛选与特定DNA序列结合的转录因子,进而研究其在基因表达调控中的作用 。
发现新的转录因子
通过与已知转录因子的相互作用筛选,可以发现新的转录因子,进一步揭示基因表达调控的机制。
药物发现与设计
寻找药物靶点
利用酵母双杂交系统可以筛选与药物作用靶点相互作用的蛋白质,为药物发现提供潜在 的靶点。
对生命科学领域的影响与贡献
促进基础研究
酵母双杂交系统作为一种强大的研究工具,有助于深入揭示生命 过程的奥秘,推动生命科学领域的基础研究。
疾病机制与治疗研究
通过研究疾病相关蛋白的相互作用,为疾病机制的解析和药物研发 提供有力支持。
生物技术产业
酵母双杂交系统的应用有助于推动生物技术产业的发展,如新药发 现、生物制品开发等。
酵母双杂交操作步骤
(酵母菌储存在-70℃中,引物和质粒DNA储存在-20℃中)概念:1. 次序转化:指的是先将一种质粒转化进酵母中(常是DNA-BD/bait plasmid),在选择培养基中选择出阳性克隆,之后再将另外一个质粒(AD fusion library)转化进去。
优点:就是比共转化使用更少的质粒DNA,也就是节约质粒DNA。
2. 共同转化:将两种质粒一起转化进酵母中。
优点:比次序转化更容易操作。
pGBKT7----的选择物是:kanamycin(卡那霉素)pGADT7----的选择物是:ampicillin (氨苄西林)各种SD培养基:1)SD/-ade(腺嘌呤)/-leu(亮氨酸)/-trp(色氨酸)/-his (组氨酸)(1000 ml)(“四缺”)酵母氮源(YNB): ;-ade/-leu/-trp/-his DO supplement 0.60g (购买来就配好的) ;葡萄糖20g (即2%)2)SD/-leu/-trp/-his (1000 ml)酵母氮源(YNB): ;-leu/-trp/-his DO supplement 0.62g ; (购买来就配好的)葡萄糖 20g. (即2%)3)SD/-leu/-trp (1000 ml) (“二缺”)酵母氮源(YNB): ;-ade/-leu/-trp/-his DO supplement 0.64g (购买来就配好的);葡萄糖 20g (即2%)4)SD/-leu (1000 ml)酵母氮源(YNB): ;-leu DO supplement 0.69g ; (购买来就配好的)葡萄糖 20g (即2%)5)SD/-trp (1000 ml)酵母氮源(YNB): ;-ade/-leu/-trp/-his DO supplement 0.74g ; (购买来就配好的)葡萄糖 20g (即2%)注意:YNB有两种,一种含有硫酸胺,另外一种不含硫酸胺。
(完整版)酵母双杂交原理
(完整版)酵母双杂交原理酵母双杂交系统原理酵母双杂交系统(Yeast Two-hybrid System)由Fields和Song等首先在研究真核基因转录调控中建立。
典型的真核生长转录因子,如GAL4、GCN4、等都含有二个不同的结构域: DNA 结合结构域(DNA-binding domain)和转录激活结构域(transcription-activating domain)。
前者可识别DNA上的特异序列,并使转录激活结构域定位于所调节的基因的上游,转录激活结构域可同转录复合体的其他成分作用,启动它所调节的基因的转录。
二个结构域不但可在其连接区适当部位打开,仍具有各自的功能。
而且不同两结构域可重建发挥转录激活作用。
酵母双杂交系统利用杂交基因通过激活报道基因的表达探测蛋白-蛋白的相互作用。
主要有二类载体: a 含DNA -binding domain的载体; b 含DNA-activating domain的载体。
上述二类载体在构建融合基因时,测试蛋白基因与结构域基因必须在阅读框内融合。
融合基因在报告株中表达,其表达产物只有定位于核内才能驱动报告基因的转录。
例如GAL4-bd具有核定位序列(nuclear-localization sequence),而GAL4-ad没有。
因此,在GAL4-ad氨基端或羧基端应克隆来自SV40的T-抗原的一段序列作为核定位的序列。
双杂交系统的另一个重要的元件是报道株。
报道株指经改造的、含报道基因(reporter gene)的重组质粒的宿主细胞。
最常用的是酵母细胞,酵母细胞作为报道株的酵母双杂交系统具有许多优点: 〈1〉易于转化、便于回收扩增质粒。
〈2〉具有可直接进行选择的标记基因和特征性报道基因。
〈3〉酵母的内源性蛋白不易同来源于哺乳动物的蛋白结合。
一般编码一个蛋白的基因融合到明确的转录调控因子的DNA -结合结构域(如GAL4-bd,LexA-bd);另一个基因融合到转录激活结构域(如GAL4-ad,VP16)。
酵母双杂交操作步骤
(酵母菌储存在-70℃中,引物和质粒DNA储存在-20℃中)概念:1. 次序转化:指的是先将一种质粒转化进酵母中(常是DNA-BD/bait plasmid),在选择培养基中选择出阳性克隆,之后再将另外一个质粒(AD fusion library)转化进去。
优点:就是比共转化使用更少的质粒DNA,也就是节约质粒DNA。
2. 共同转化:将两种质粒一起转化进酵母中。
优点:比次序转化更容易操作。
pGBKT7----的选择物是:kanamycin(卡那霉素)pGADT7----的选择物是:ampicillin (氨苄西林)各种SD培养基:1)SD/-ade(腺嘌呤)/-leu(亮氨酸)/-trp(色氨酸)/-his (组氨酸)(1000 ml)(“四缺”)酵母氮源(YNB): ;-ade/-leu/-trp/-his DO supplement 0.60g (购买来就配好的) ;葡萄糖20g (即2%)2)SD/-leu/-trp/-his (1000 ml)酵母氮源(YNB): ;-leu/-trp/-his DO supplement 0.62g ; (购买来就配好的)葡萄糖 20g. (即2%)3)SD/-leu/-trp (1000 ml) (“二缺”)酵母氮源(YNB): ;-ade/-leu/-trp/-his DO supplement 0.64g (购买来就配好的);葡萄糖 20g (即2%)4)SD/-leu (1000 ml)酵母氮源(YNB): ;-leu DO supplement 0.69g ; (购买来就配好的)葡萄糖 20g (即2%)5)SD/-trp (1000 ml)酵母氮源(YNB): ;-ade/-leu/-trp/-his DO supplement 0.74g ; (购买来就配好的)葡萄糖 20g (即2%)注意:YNB有两种,一种含有硫酸胺,另外一种不含硫酸胺。
酵母双杂实验操作手册和注意事项
酵母双杂(Yeast two-hybrid)实验操作手册和注意事项一. 酵母双杂的原理1989年,Song和Field建立了第一个基于酵母的细胞内检测蛋白间相互作用的遗传系统。
很多真核生物的位点特异转录激活因子通常具有两个可分割开的结构域,即DNA特异结合域(DNA-binding domain,BD)与转录激活域(Transcriptional activation domain ,AD)。
这两个结构域各具功能,互不影响。
但一个完整的激活特定基因表达的激活因子必须同时含有这两个结构域,否则无法完成激活功能。
不同来源激活因子的BD区与AD结合后则特异地激活被BD结合的基因表达。
基于这个原理,可将两个待测蛋白分别与这两个结构域建成融合蛋白,并共表达于同一个酵母细胞内。
如果两个待测蛋白间能发生相互作用,就会通过待测蛋白的桥梁作用使AD与BD形成一个完整的转录激活因子并激活相应的报告基因表达。
通过对报告基因表型的测定可以很容易地知道待测蛋白分子间是否发生了相互作用。
酵母双杂交系统由三个部分组成:(1)与BD融合的蛋白表达载体,被表达的蛋白称诱饵蛋白(bait)。
(2)与AD融合的蛋白表达载体,被其表达的蛋白称靶蛋白(prey)。
(3)带有一个或多个报告基因的宿主菌株。
常用的报告基因有HIS3,URA3,LacZ和ADE2等。
而菌株则具有相应的缺陷型。
双杂交质粒上分别带有不同的抗性基因和营养标记基因。
这些有利于实验后期杂交质粒的鉴定与分离。
根据目前通用的系统中BD来源的不同主要分为GAL4系统和LexA系统。
后者因其BD来源于原核生物,在真核生物内缺少同源性,因此可以减少假阳性的出现。
二.所用的载体及相关信息1. pGBKT7载体的图谱和相关信息The pGBKT7 vector expresses proteins fused to amino acids 1–147 of the GAL4 DNA binding domain (DNA-BD). In yeast, fusion proteins are expressed at high levels from the constitutive ADH1promoter (PADH1); transcription is terminated by the T7 and ADH1 transcription termination signals(TT7 & ADH1). pGBKT7 also contains the T7 promoter, a c-Myc epitope tag, and a MCS. pGBKT7replicates autonomously in both E. coli and S. cerevisiae from the pUC and 2 m ori, respectively. Thevector carries the Kan r for selection in E. coli and the TRP1 nutritional marker for selection in yeast.Yeast strains containing pGBKT7 exhibit a higher transformation efficiency than strains carrying other DNA-BD domain vectors (1).b. pGADT7载体的图谱和相关信息pGADT7-T encodes a fusion of the SV40 large T-antigen (a.a. 86–708) and the GAL4 AD (a.a. 768–881). The SV40 large T DNA (GenBank LocusSV4CG) was derived from a plasmid referenced in Li & Fields (1993) and was cloned into pGADT7 using the EcoR I and Xho I sites. pGADT7-T has not been sequenced.三.实验主要流程A.需要准备的药品和设备1.两种酵母菌种(AH109,Y187)2.酵母培养所需的药品: Yeast nitrogen base without amino acidsAgar (for plates only)sterile 10×Dropout Solution单缺-T,-L(clontech公司)二缺-T/-L (clontech公司)四缺-T/-L/-Ade/-His(clontech公司)3.酵母转化所需的药品: 10×TE buffer10×LiAc40%PEGcarrier DNA4.酵母显色所需要的药品: x- -GAL5.其他仪器设备: 30℃恒温培养箱30℃摇床.水浴锅分光光度计B.DNA-BD和DN-AD fusion protein 载体的分别构建。
酵母双杂交检测(Yeast
酵母双杂交检测(Yeast Two酵母双杂交检测(Yeast Two-Hybrid Assay)产品专题检测原理:酵母双杂交系统(Yeast two-hybrid assay)是⽤于体内研究蛋⽩相互作⽤的⼀种⾮常便利的⼯具,常⽤的如GAL4为基础的系统,使⽤酵母转录因⼦GAL4来检测转录激活后的蛋⽩相互作⽤。
某些转录因⼦(如GAL4)由两个可以分开,功能上相互独⽴的结构域组成,N端有⼀个147个氨基酸组成的DNA结合域(DNA binding domain,BD),C端有⼀个由113个氨基酸组成的转录激活域(transcription activation domain,AD)。
BD可以和上游激活序列(UAS)结合,⽽AD能激活UAS下游基因进⾏转录。
单独的BD或AD不能激活基因转录,两者只有通过某种⽅式结合在⼀起形成完整的转录激活因⼦的功能【见图1】。
酵母双杂交系统主要利⽤酵母GAL4的这个特性通过两个杂交蛋⽩在酵母细胞中的相互结合及对报告基因的转录激活来研究活细胞内蛋⽩质的相互作⽤,对蛋⽩质之间微弱、瞬间的作⽤都能通过报告基因敏感的检测到。
酵母双杂交系统应⽤:1)对新的与已经蛋⽩相互作⽤的鉴定2)对预测蛋⽩相互作⽤的确认3)对蛋⽩相互作⽤区域的鉴定双杂交检测原理图。
两个蛋⽩分别表达,⼀个(诱饵蛋⽩bait protein)融合到Gal4 DNA 图1.双杂交检测原理图。
结合域表达,另⼀个(诱捕蛋⽩prey protein)融合到Gal4转录激活结构域(AD)表达。
在Y2HGold酵母菌株中,只有当两个蛋⽩之间相互作⽤并结合到Gal4反应性启动⼦上才能活化报告基因(AUR1-C, ADE2, HIS3, 和MEL1)的表达。
酵母双杂交系统重要元件介绍(以Matchmarker GAL4-based two hybrid assay为例)诱饵(the bait)⼀、⼀、诱饵(为了建⽴GAL4 DNA-BD/bait融合蛋⽩,推荐使⽤质粒pGBKT7;要调查三元蛋⽩复合物,推荐使⽤含2个MCS区域的三杂交载体,能表达GAL4 DNA-BD/bait融合蛋⽩和第⼆个感兴趣蛋⽩,在bait和prey蛋⽩之间发挥桥梁作⽤。
酵母双杂交步骤
酵母双杂交步骤酵母双杂交是一种常用的实验方法,用于研究基因之间的相互作用以及确定基因功能。
这种方法可以帮助科学家更好地理解生物学系统的复杂性,并为疾病的研究提供重要线索。
下面将介绍酵母双杂交的步骤及其意义。
进行酵母双杂交实验需要准备两个重要的构建:酵母表达载体和融合蛋白质的基因。
酵母表达载体通常包含启动子、选择标记基因和复制起点等元件,可以在酵母细胞中稳定表达外源基因。
而融合蛋白质的基因则是由研究人员设计合成,其中包含感兴趣的基因片段与激活结构域的融合。
将融合蛋白质的基因克隆到酵母表达载体中,构建成表达载体。
然后将这些表达载体分别转化到两株不同的酵母菌株中,形成两个亲本菌株。
接着,将这两个亲本菌株进行交配,使它们在同一酵母细胞内共存。
接下来,通过培养这个双杂交菌株,观察融合蛋白质是否发生相互作用。
如果两个融合蛋白质相互结合,可能会激活报告基因的表达,从而产生可检测的信号。
通过检测这些信号,可以初步判断这两个蛋白质之间是否存在相互作用。
为了验证这种相互作用的真实性,通常需要进行一系列的对照实验和进一步的验证。
例如,可以利用突变体蛋白质来确认相互作用位点,也可以通过共沉淀实验证明这种相互作用在细胞内是否真实发生。
酵母双杂交实验是一种简单而有效的方法,可以帮助科学家快速筛选出潜在的蛋白质相互作用,并为后续的深入研究提供基础。
通过这种方法,研究人员可以更好地理解生物学系统的复杂性,揭示基因之间的相互关系,为疾病的研究和治疗提供新的思路。
总的来说,酵母双杂交是一种重要的实验方法,对于生物学研究具有重要意义。
通过这种方法,科学家们可以揭示基因之间的相互作用,探索生物学系统的奥秘,为人类健康和疾病治疗提供新的思路和方法。
希望未来能有更多的科研工作者投入到这一领域,共同推动生命科学的发展和进步。
酵母双杂交系统
酵母双杂交系统酵母双杂交系统,又称蛋白阱捕获系统,是由Fields和Song等人根据真核转录调控的特点创建的。
利用酵母双杂交系统能够快速、直接分析已知蛋白之间的相互作用,并能寻找、分离与已知蛋白相互作用的配体,在研究抗原和抗体相互作用、发现新的蛋白质和发现蛋白质的新功能、筛选药物作用位点及药物对蛋白互作影响、建立基因组蛋白连锁图等方面应用广泛。
酵母双杂交原理酵母双杂交系统的建立是基于对真核生物转录调控过程的认识。
真核生物中基因转录需要转录激活因子的参与,真核生物的转录激活因子含有两个不同的结构域:DNA结合结构域(DNA binding domain,DNA-BD)和DNA转录激活结构域(Activation domain,AD),这两个结构域可以独立分开,功能互不影响。
BD和AD分别单独作用并不能激活转录反应,只有当二者在空间上充分接近时,才呈现完整的转录激活因子活性,使下游基因得到转录。
根据这一原理,可设计酵母双杂交系统。
将两待研究蛋白(蛋白X与蛋白Y)分别与BD、AD结构域构建融合质粒。
将构建好的两个质粒转入同一酵母细胞中表达,如果两蛋白之间不存在相互作用,则下游基因(报告基因)不会转录表达;如果两个蛋白存在相互作用,则BD与AD两结构域空间上很接近,从而下游基因(报告基因)得到转录。
判断通过报告基因表达与否,即可判断两蛋白之间是否存在相互作用。
图1:酵母双杂交原理如何判断是否存在相互作用?报告基因作为一种营养标记,常用的有HIS3,URA3,LacZ和ADE2等,对应的宿主菌则是相应标记的缺陷型细胞,必须要在含有该营养标记的培养基中生长。
因此,当有相互作用的蛋白存在时,激活报告基因的表达,从而能够在不含营养标记的培养基中生长,以此验证是否存在相互作用。
酵母双杂交系统重要元件酵母双杂交系统由三个部分组成:•与DNA结合结构域(BD)融合的蛋白表达载体(BD-X),被表达的蛋白称为诱饵蛋白(bait)或称为诱饵,通常诱饵蛋白为已知蛋白。
酵母双杂交体系Yeasttwo-hybridsystem酵母双杂交
转录因子
能直接或间接辨认和结合上游区段DNA 的蛋白质----反式作用因子. 其中能直接或间接与RNA聚合酶结合的 称为转录因子(TF). 相应于RNA聚合酶ⅠⅡⅢ的转录因子为 TF Ⅰ,Ⅱ,Ⅲ 真核生物的TFⅡ又分为TFⅡ A与TFⅡ B
真核生物转录起始前复合物
GAL1 UAS
(上游激活序列)
启动子
Lac Z(报告基因)
缺陷型宿主菌株
常见的有SF562和HF7c. 特点: 无表达GAL4转录激活因子的能力
载体------穿梭质粒
pGBT9, 又称DNA-BD质粒载体。靶基 因插入可与GAL4-BD形成融合蛋白Ⅰ。 pGAD424,又称AD质粒载体。靶基因 插入可与GAL4-AD形成融合蛋白Ⅱ。 二者均可在大肠杆菌和酿酒酵母中自主复 制。 两种融合蛋白可在酵母中高表达。在核定 位序列作用下,进入酵母细胞核内。
用DNA重组技术,将DNA-BD和AD分 开,并放在同一宿主细胞中表达。
将编码DNA-BD的基因与已知蛋白质 Bait protein的基因构建在同一个表达 载体上,在酵母中表达两者的融合蛋白 BD-Bait proteiRARY表达载体上。
基本原理
DNA结合域(DNA-BD):N端1-147 氨基酸 转录激活域(AD):C端786-881氨基 酸
DNA-BD:识别GAL4效应基因上游的 激活序列(UAS) ,并与之结合 AD:通过同转录机制(transcription machinery)的其它成分之间的结合以启 动上游激活序列(UAS)下游的基因转录。
酵母双杂交
阻止它们的相互作用以达到治疗疾病的目的。
4、建立基因组蛋白连锁图
众多的蛋白质之间在许多重要的生命活动中都是彼 此协调和控制的。基因组中的编码蛋白质的基因之间存在 着功能上的联系,通过基因组的测序和序列分析发现了很
1、发现新的蛋白质和蛋白质的新功能
酵母双杂交技术已成为发现新基因的主要途
径。用已知基因作诱饵,利分离得到AD-Library载体,对其进行
测序并在GenBank中进行比较,可以得到与已知
基因在生物学功能上的联系。另外,也可作为研 究已知基因的新功能或多个筛选到的已知基因之 间功能相关的主要方法。
酵母转录因子(Gal 4)
与BD-fusion ---诱饵蛋白(bait protein ) 与AD-fusion ---猎物或靶蛋白(prey or target protein)
报告基因(reporter gene)
---Lac Z(编码β -半乳糖苷酶)
报道株
经改造的、含报告基因的重组质粒的宿 主细胞。 酵母细胞作为报道株的酵母双杂交系统具有 许多优点:
多新的基因和EST序列。
HUA等人利用酵母双杂交技术,将母双杂交技术,绘制出了人与致病性细菌
蛋白,从而找到基因之间的联系,建立基因组蛋白连锁图。
蛋白间相互作用的基因组蛋白网络连锁图,为深入研究人
与致病菌间的相互作用关系奠定了基础。
五、酵母双杂交的应用
酵母双杂交系统是在真核模式生物酵母中进行的, 研究活细胞内蛋白质相互作用,对蛋白质之间微弱的、 瞬间的作用也能够通过报告基因的表达产物敏感地检 测得到,它是一种具有很高灵敏度的研究蛋白质之间 关系的技术。
酵母双杂交实验原理及具体步骤
酵母双杂交原理:酵母双杂交(Yeast two-hybrid,Y2H)是一种常用的蛋白质相互作用研究技术,用于检测蛋白质间的物理相互作用关系。
其原理基于转录因子的两个功能域的可拆分性。
①转录因子可拆分性:构建酵母诱饵(bait)和猎物(prey)表达载体:将目标蛋白分别将其编码序列分别克隆到两个表达载体中。
其中,诱饵载体通常包含一个“催化域”(activation domain,AD),用于连接目标蛋白和转录激活子域;猎物载体通常包含一个“DNA结合域”(DNA binding domain,BD),与转录因子的靶位点序列结合。
通过将目标蛋白的相互作用引入到转录因子中,可以重新组装功能域并激活报告基因表达。
②目标蛋白的诱饵和猎物构建:将目标蛋白分别克隆到诱饵载体和猎物载体中。
诱饵载体中的目标蛋白与BD结合,形成诱饵蛋白-BD复合物;猎物载体中的目标蛋白与AD结合,形成猎物蛋白-AD复合物。
③互补的转录因子和报告基因:将诱饵和猎物载体转化到同一酵母细胞中,诱饵蛋白与猎物蛋白发生相互作用后,诱饵蛋白的BD域与猎物蛋白的AD域重新组装为完整的转录因子。
该转录因子能够结合到特定的报告基因启动子上,激活报告基因的表达。
④报告基因表达和筛选:通过培养在所选的选择性培养基上,只有发生了特定蛋白相互作用的酵母细胞才能生长。
选择性培养基可能缺乏某些必需营养物质,当酵母菌株与目标蛋白质发生相互作用时,新的遗传特征和功能产物的表达则能够弥补酵母细胞在选择性培养基上的缺陷。
例如,当使用缺乏组氨酸(histidine)的培养基时,只有酵母菌株表达了完整的转录因子,才能够合成组氨酸并正常生长。
⑤结果验证:据此可以筛选出具有蛋白相互作用的酵母突变株。
验证通常通过进一步的亲和试验(如共免疫沉淀)或其他技术(如荧光共定位)来确认蛋白质相互作用的可靠性。
总体来说,酵母双杂交实验通过利用转录因子可拆分性的原理来检测蛋白质的相互作用。
酵母双杂交系统(参考资料)
GENBANK序号 序号
NM_003282
P1 P5 P6 P1
16
800.000 700.000 β-G al Ac tivi ty ( Unit) 600.000 500.000 400.000 300.000 200.000 100.000 0.000 E1 E4 E8 E9 E11 E15 E17 E21 E22
10
11
以粒pGBT9-ERRα1/LBD的准备
DBD
LBD
PCR
ERRα1/LBD
13
14
2. 结果 2.1 酵母双杂交试验结果
A
A:在SD/-Leu/-Trp平板上接种的24个His+阳性克隆
B
15
B:菌落滤膜影印后X-gal/Z 缓冲液显色法共有17个克隆在8h之内变蓝
克隆序号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12. 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24
克隆编号 E1-3* E2-2 E2-5 * E4-1 * E8-1 * E9-3 * E10-2* E11-3 * E11-4 E12 -1 * E13-1 * E13-2 E14-1 * E15-3* E17-2* E17-3 E18-1* E18-2 E18-3 E20-5 * E21-3 E21-10 * E22-5 * E23-2 *
2
Yeast two-hybrid system:
a genetic assay for detecting protein-protein interactions
Regulation of gene expression in yeast
transcription activator
酵母双杂交系统
酵母双杂交的原理
• 利用酵母作为真核鉴定蛋白的相互作用 • 使用不同的培养基筛选阳性克隆
• 双杂交系统的两个重要元件:
• 转录激活因子: DNA结合结构域(DNA binding domain, 简称为DB)和转录激活结构域(activation do筛选相互作用的蛋白
序列分析
酵母双杂交系统 的优点与缺点
再次,双杂交鉴定过程中要经过两次转化,而且,酵母细胞的转化效率比细菌要低约4个数量级。
对于认识一些重要的生命活动:如信号传导、代谢途径等有重要意义。
将诱饵质粒转化缺乏报告基因启动子的酵母细胞株中,选择被转化的酵母
Bait Protein
Prey Protein
DNA-Binding Domain
DNA-Binding Site
Rep4或LexA或其他合适蛋白的DNA结合域融合构 建诱饵质粒
• 将诱饵质粒转化缺乏报告基因启动子的酵母细胞株中,选择被 转化的酵母
GAL 4 DNA-BD
GAL 1 UAS
GAL 4 AD Promoter
Transcription GAL1
Protein X GAL 4 DNA-BD
GAL4 AD protein Y
Protein X
GAL 4 DNA-BD
GAL 1 UAS
GAL 4 AD Protein Y
Transcription
DNA-Binding Site
酿酒酵母的GAL4蛋白质N-端和C-端分别融合的两种蛋白质相互作用可激活具有UAS(upstream activating sequence,上游激活序列)
报告基因的表达
将待测基因与Gal4或LexA或其他合适蛋白的DNA结合域融合构建诱饵质粒
酵母双杂交系统的原理
酵母双杂交系统的原理酵母双杂交(systems)系统是一种基于酵母(yeast)细胞的生物技术,该技术用于研究蛋白质相互影响及其在蛋白质互作网络中的作用。
该技术采用重组DNA 技术将目标基因插入酵母细胞的基因组内,在酵母细胞内表达融合蛋白,通过检测融合蛋白的相互作用来分析蛋白质间的相互作用关系。
酵母双杂交系统的原理:酵母双杂交系统(principle of yeast two-hybrid system)基于蛋白质间的相互作用原理,其中包括:转录调控、信号传递及代谢途径等方面。
首先需要构建两个载体,一个是酵母转录因子的DNA结合结构域(BD)融合载体,另一个则是酵母活化装置的活化结构域(AD)融合载体。
在BD载体中含有一个目标基因的蛋白质结构域,该载体专门用于识别具有相互作用能力的肽链。
这个肽链是作为目标基因的蛋白质结构域插入到BD载体的后端,从而形成一个融合蛋白(BD-Target)。
在AD载体则含有另一目标基因的蛋白质结构域,该结构域是作为另一个相互作用配体的蛋白质结构域插入到AD载体的后端,并形成一个融合蛋白(AD-Target)。
当两个融合蛋白(BD-Target和AD-Target)进入同一个酵母细胞时,它们会自行相互结合。
这种相互结合会使BD域融合物释放出其与DNA结合的传输活性。
该生物技术利用此原理,通过分离酵母细胞中的mRNA,并对其进行筛查确定其结合后的特异性。
同时,酵母细胞也会检测信息的转移,并以此促进由两个融合蛋白之间的相互作用而激活的报告基因的表达。
这些报告基因可以编码酵母细胞中可见性较高的荧光蛋白,从而方便检测生物体中的酵母如何解释信号。
酵母双杂交系统的优势:酵母双杂交系统是一种非常有用的方法,可以在操作简单的情况下,高效地分析蛋白质间的相互作用及其生物学意义。
酵母双杂交系统的优点如下:1.可高效筛选蛋白质相互作用:酵母双杂交系统在高通量筛选系统中表现出良好的性能表现;这表明可以将其用于大规模筛选目标蛋白质相互作用蛋白。
酵母双杂交衍生系统
酵母双杂交衍生系统马海蓉1*李维琪2(1中国科学院新疆理化技术研究所 乌鲁木齐 830000 2中国科学院研究生院 北京 100039)摘要 酵母双杂交系统是在酵母体内分析蛋白质2蛋白质相互作用的基因系统,由Fields 等人于1989年首次建立并得到广泛地应用。
十余年来,随着酵母双杂交迅速推广,不断涌现出一些衍生系统,其中包括酵母双杂交的二元诱饵系统,逆向双杂交系统,非转录读出特点的双杂交系统(如Sos 蛋白招募系统、PI3K 介导的靶蛋白识别系统和断裂2泛素为基础的双杂交系统)以及转录激活因子与其相关蛋白之间的相互作用的双杂交系统(如以pol Ó为基础的杂交系统和RT A 系统)等。
它们的建立在很大程度上克服了传统酵母双杂交系统的局限性,扩大了被研究的蛋白质的范围,提高了系统的灵敏度。
关键词 酵母双杂交系统 蛋白质2蛋白质相互作用 衍生系统修回日期:200229218*电子信箱m hrsj@1631com酵母双杂交系统是由Fields[1]等人在1989年首次建立的在酵母体内分析蛋白质2蛋白质相互作用的基因系统。
该系统的基本原理是基于对真核生物转录激活因子的功能的认识。
转录激活因子功能有二:一是结合于D N A 序列的特定位点(UA S G )上;二是协助RN A 聚合酶激活其下游基因的转录。
重要的是,这两个功能是通过两个独立的结构域,即D N A 结合结构域(D NA binding domains,DB)和转录激活结构域(ac tivation domains,AD)依次完成,二者缺一不可。
于是根据转录激活因子的这个特点构建两个融合蛋白,其中蛋白X 与D B 相融合构成融合蛋白1,亦称之为/诱饵0;蛋白Y 与AD 相融合构成融合蛋白2,亦称之为/猎物0。
两个融合蛋白在酵母细胞中共表达,如果X 与Y 相互作用,则导致DB 和AD 在空间上接近,形成一个有功能的转录激活因子,激活其下游报告基因的表达,结果可以根据酵母细胞的表型观察到。
酵母双杂交系统
酵母双杂交系统1.原理酵母双杂交系统的建立得力于对真核细胞调控转录起始过程的认识。
研究发现,许多真核生物的转录激活因子都是山两个可以分开的、功能上相互独立的结构域(domain)组成的。
例如,酵母的转录激活因子GAL4,在N端有一个山147 个氨基酸组成的DNA结合域(DNA binding domain,BD), C端有一个山113个氨基酸组成的转录激活域(transcription activation domain,AD)o GAL4 分子的DNA 结合域可以和上游激活序列(UPStream activating sequence, UAS)结合,而转录激活域则能激活UAS下游的基因进行转录。
但是,单独的DNA结合域不能激活基因转录,单独的转录激活域也不能激活UAS的下游基因,它们之间只有通过某种方式结合在一起才具有完整的转录激活因子的功能。
2.试验流程酵母双杂交系统正是利用了GAL4的功能特点,通过两个杂交蛋口在酵母细胞中的相互结合及对报告基因的转录激活来捕获新的蛋口质,其大致步骤为:2. 1、视已知蛋白的CDNA序列为诱饵(bait),将其与DNA结合域融合,构建成诱饵质粒。
2. 2、将待筛选蛋口的CDNA序列与转录激活域融合,构建成文库质粒。
2. 3、将这两个质粒共转化于酵母细胞中。
2. 4、酵母细胞中,已分离的DNA结合域和转录激活域不会相互作用,但诱饵蛋口若能与待筛选的未知蛋白特异性地相互作用,则可激活报告基因的转录;反之,则不能。
利用4种报告基因的表达,便可捕捉到新的蛋白质。
3.特点优点蛋口-蛋口相互作用是细胞进行一切代谢活动的基础。
酵母双杂交系统的建立为研究这一问题提供了有利的手段和方法。
缺点尽管该系统己被证实为一种非常有效的方法,但它也有自身的缺点和问题。
1、它并非对所有蛋口质都适用,这是山其原理所决定的。
双杂交系统要求两种杂交体蛋口都是融合蛋口,都必须能进入细胞核内。
因为融合蛋口相互作用激活报告基因转录是在细胞核内发生的。
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目录(一)介绍 4 (二)试剂盒物品清单 7 (三)额外附加物品列表9 (四)酵母菌株11 (五)酵母载体14 (六)方法简述:单杂交文库的构建和筛选16 方法简述:双杂交文库的构建和筛选17 (七)构建用于酵母单杂交的报告质粒载体18 (八)构建用于酵母双杂交的DNA-BD融合载体19 (九)构建生成cDNA文库21 (十)构建和筛选酵母单杂交和双杂交文库(简述)27 (十一)酵母单杂交文库的构建和筛选28 (十二)酵母双杂交文库的构建和筛选30 方法A:通过酵母配对(Yeast Mating)来筛选目的蛋白30方法B:通过共转化的方法筛选目的蛋白35 (十三)分析阳性相互作用结果38 (十四)问题解决指南44 (十五)参考文献47 (十六)相关产品50 附录A: 双链 cDNA合成的典型结果51 附录B: 酵母感受态的制备—LiAc 法52 附录C:单杂交对照载体信息53 附录D:双杂对照载体信息54 表格列表Table I. BD Matchmaker酵母菌株的基因型11 Table II. BD Matchmaker酵母菌株的表型11 Table III.单杂交系统的载体14 Table IV.双杂交系统的载体15 Table V.各BD-Matchmaker DNA-BD 载体的比较19 Table VI. RNA起始浓度和PCR扩增循环数之间的关系24 Table VII.单杂交共转化的对照实验的设置29 Table VIII.单杂共转化对照实验:期望的结果29 Table IX.双杂交转化的对照实验的设置33 Table X.双杂交配对筛选的对照实验的设置Table XI.双杂交共转化的对照实验的设置Table XII.双杂交共转化的对照实验:期望的结果Table XIII.用于PCR筛选菌落的Assembling Master Mixs图片列表Figure 1.使用BD Matchmaker单杂交系统筛选蛋白-DNA相互作用 4 Figure 2.使用BD Matchmaker单杂交系统筛选蛋白-蛋白相互作用 4 Figure 3.酵母单杂交和双杂交筛选的大致步骤5 Figure 4.构建和筛选BD Matchmaker酵母单杂交和双杂交文库6 Figure 5.酵母菌株AH109和Y187中的报告基因12 Figure 6.BD Matchmaker酵母单杂交文库的构建和筛选16 Figure 7.BD Matchmaker酵母双杂交文库的构建和筛选17 Figure 8.用BD SMART技术合成高质量的ds cDNA 21 Figure 9.BD CHROMA SPIN纯化柱和收集管26 Figure 10.通过酵母重整合作用来构建AD融合文库27 Figure 11.为双杂交筛选AD融合文库32 Figure 12.分析和证明可能的单杂交和双杂交相互作用阳性结果的策略39 Figure 13.通过酵母配对来验证蛋白-蛋白相互作用42 Figure 14.用对照用人胎盘Poly A+ RNA合成双链cDNA 51 Figure 15.p53HIS对照载体的图谱53 Figure 16.pGAD-Rec2-53 AD对照载体的图谱53 Figure 17.pGADT7-RecT AD对照载体的图谱54 Figure 18.pGBKT7-53 DNA-BD 对照载体图谱54 Figure 19.pGBKT7-Lam DNA-BD 对照载体图谱55(一)介绍BD Matchmaker TM Library Construction & Screening试剂盒提供一种简便的方法构建cDNA文库用来进行酵母双杂交和单杂交的筛选,这些试剂盒结合了BD Matchmaker TM Systems和BD SMART TM cDNA Synthesis的技术,只需要用任何组织的1 μg poly A+ RNA 或total RNA就能构建cDNA文库。
通过一般细胞内克隆步骤,你能利用BD Matchmaker Systems所提供的灵敏的转录方法所构建的文库来进行单杂交或双杂交实验。
单杂交实验的原理——蛋白-DNA相互作用实验单杂交实验使你能够确定和描述蛋白与目的顺式DNA激活序列的绑定,该序列可能是处于最小限度的启动子上游的用于增强转录的元件。
这个实验也可以用于预测或新蛋白的DNA 绑定结构域的确定。
通过BD Matchmaker One-Hybrid System你可以很容易的获得这些基因表达的蛋白在BD Matchmaker One-Hybrid实验中,潜在的DNA绑定蛋白基因是与克隆在pGADT7-Rec2(为单杂交设计的低拷贝载体)上GAL4激活结构域(AD)序列一起融合表达的。
一个或多个目的DNA序列的串联拷贝被构建在pHIS2(含有HIS3营养缺陷报告基因的报告载体)。
DNA绑定蛋白和目标序列的相互作用会激活HIS3的转录(Figure 1),该过程要在宿主菌株Y187(组氨酸缺陷型)中进行并在缺少组氨酸的培养基生长双杂交实验的原理——蛋白-蛋白相互作用的原理双杂实验分析能用于鉴定新的蛋白与蛋白相互作用、确定疑似作用、明确结构域。
在一个BD Matchmaker双杂交实验分析中,诱饵基因是与GAL4 DNA(DNA-BD)绑定结构域序列融合表达的,同时其他的基因或其cDNA与GAL4激活域(AD)序列融合表达(Fields & Song, 1989; Chien et al., 1991)。
当诱饵与文库融合蛋白在AH109(ADE2, HIS3, lacZ, MEL1)这样的报告菌株中相互作用,DNA-BD和AD相接近结合,并激活报告基因转录(Figure 2)DNA-BD 和AD的融合序列是将cDNA序列克隆进酵母表达载体pGBKT7 和pGADT7-Rec载体中来实现的。
pGBKT7表达了与GAL4 DNA-BD融合的蛋白,而pGADT7-Rec表达与GAL4 AD相融合的蛋白。
在酵母中,两种融合基因在组成型启动子P ADH1下高水平表达的。
其他的像pGBT9、ADH1、pAS2-1、pBridge基于GAL4的克隆载体与这个试剂盒也相兼容的。
pBridge载体能被用于鉴定三蛋白复合体的酵母三杂交实验。
单杂交和双杂交实验分析的生物学基础单杂交和双杂交方法是基于许多真核转录因子被发现是复合组成的,它们的转录激活和DNA绑第结构域在结构上和功能上是分开的。
这使研究者可以构建各种融合基因,当在酵母中表达时,能同时结合到目标DNA序列并激活下游报告基因的转录(Figure1和Figure2),BD Matchmaker systems 使用的GAL4的转录激活域与DNA绑定域是被完全阐述的的转录因子(Zhu, L. & Hannon, G. J., 2000.)双杂和单杂文库的建立和筛选双杂和单杂文库的建立和筛选由四个主要步骤组成,(注:有两个步骤遵从同样的流程)。
如果想去筛选双杂交相互作用,第一步是建立一种DNA-BD融合载体。
第二步是使用试剂盒所提供BD SMART试剂从你所抽提poly A 和total RNA建立cDNA文库。
就酵母双杂筛选而言,如果你打算我们从预制的BD Matchmaker cDNA文库选取来替代自己准备文库,可以跳过RNA分离、cDNA合成、AD融合文库构建。
这些包含非常广泛组织的文库被有效的保存在甘油中或预转化到Y187酵母菌株。
我们也提供一种BD Matchmaker文库服务,基于这个服务,提供给我们你想筛选的组织与细胞,我们为你制作AD融合文库。
请注意,我们尽管在高拷贝酵母表达载体中建立了很多的预制和预转化的BD Matchmaker cDNA文库,对双杂工作非常理想的,但他们很少适合单杂分析。
在单杂分析中我们推荐使用pGADT7-Rec2 and pHIS2等低拷贝载体,因为他们产生较少的假阳性克隆。
其次是cDNA合成,把cDNA克隆到BD Matchmaker AD克隆载体中建立一个GAL4 AD 融合文库,如果是建立双杂文库是pGADT7-Rec载体,单杂则是pGADT7-Rec2载体。
克隆在细胞内通过同源重组来进行的,这一步利用酵母替内高效重组系统使ds cDNA和相应的GAL4 AD质粒融合。
采用重组介导的克隆,文库的构建和筛选能紧密的完成,而不需要任何的细菌转化和扩增步骤。
简单的把cDNA文库和相应的BD Matchmaker载体转化到酵母中,然后把细胞用于成分缺省培养基筛选双杂作用。
Figure 3. 酵母单杂和双杂筛选的一般步骤,更加详细单杂和双杂筛选流程图,请参考Figures 6 and 7.Figure 4. BD Matchmaker TM 单杂和双杂文库筛选与构建.如这个图表所示,As this diagram shows,重组介导克隆使文库构建和筛选更快捷高效,尽管这里没有显示,双杂文库能通过酵母融合筛选(细节参照Section XII).BD SMART TM 的cDNA合成和扩增,请参照Section IX. pGADT7-Rec被用于双杂文库构建和筛选而pGADT7-Rec2被用于单杂文库构建和筛选。
被pGADT7-Rec[2]所显示的两个相关载体有不同复制元件。
更多的信息请参照Section X 和相关的载体信息包.i(二)试剂盒内试剂列表此试剂盒包含有足够试剂能制备5次单杂或5次双杂文库。
去离子水、BD CHROMA SPIN柱,、NaCl溶液、缺省(DO)补充物、NaOAc、LiAc、PEG、TE Buffer,、YPD Plus培养基在室温下保存;.酵母菌株、对照Poly A +和BD SMART III Oligo 保存在–70°C,其他试剂储存在–20°C.下。
cDNA第一条链合成cDNA扩增Trial –Size BD Advantage TM PCR 试剂盒cDNA 纯化单杂交文库构建双杂交文库构建BD Yeastmaker 酵母转化系统(三)自备材料下列试剂自备,无其他特别要求所有的试剂与溶液均储存与室温下。
cDNA第一条链合成●无菌0.5ml离心管●Poly A+ or total RNA●矿物油●热循环仪●DNA marker (1-kb DNA ladder)● 1.2% Agarose/EtBr gelcDNA的分离● 1.5ml无菌离心管●带有小架子环型支架●95%乙醇(-20℃)●1% 氯代二甲苯诱饵质粒构建● E. coli感受态细胞。
像DH5α or BD Fusion-Blue 感受态细胞●T4 DNA连接酶●10X T4 连接buffer●LB/amp 平板●50 mM NaCl●从E. coli转化子中提取质粒的试剂盒酵母转化(在无菌容器中准备试剂)●PEG/LiAc溶液● 1.1X TE/LiAc溶液●二甲亚砜酵母的培养与配对●YPD培养基(参照Yeast Protocols Handbook)●YPDA培养基(添加30 mg/L adenine hemisulfate,参照Yeast ProtocolsHandbook)●TE buffer或者无菌的蒸馏水●适合转化的无菌试管和烧瓶●100-和150-培养平板●无菌玻璃棒,用于扑板弯曲的吸管●X-α-Gal(用于酵母双杂MEL1表达的蓝白筛选)●有agar的Minimal SD Base和没有agar的Minimal SD Base●3-AT(抑制SD缺省his培养基背景生长)●Kanamycin 储存液(50 mg/ml )保存于-20℃●Ampicillin 储存液(50 mg/ml )保存于-20℃文库长期保存●100%甘油●YPD冷冻培养基(25%v/v甘油)酵母双杂文库的构建与筛选BD Matchmaker Two-Hybrid Library Construction & Screening Kit不提供下列缺省补充物。