金属螯合层析介质
金属螯合亲和层析介质用于六聚组氨酸融合蛋白的纯化研究
李淑娟等:金属萱台亲和层析介质用于六聚组氨酸融台蛋白的纯化研究度测定结果可粗略计算:200血裂解液纯化后所得cDl55D1融合蛋白量约为200旭。
2.5co.cM.Asp-sephar∞e用于六聚组氨酸融合蛋白大量纯化的初步研究根据小量纯化的优化条件,将介质体积放大25倍纯化六聚组氨酸融合蛋白cDl55Dl,取50%的co-cM.A叩一sephar姻e悬浮液1.5mL与5mL含cDl55Dl的细胞裂解液孵育,co.cM.A8p.s8pIl哪se悬浮液装入层析柱中,洗柱后用5mL含200mml,L咪唑的c液洗脱蛋白,收集洗脱液5mL。
用Bmd州法测定蛋白浓度并计算可知蛋白质总量为4.6n蜗。
2.6Co・CM-Asp.sepharo辨与Ni・NTA・A辨ro辨的比较将co.cM.Asp—seph删se与商品化Ni—N1俳Agarose进行蛋白纯化的比较,取50%的co-cM.A8p.sephalose悬浮液和50%的Ni.NTA.A静ro特悬浮液各60皿分别与200ftL含六聚组氨酸融合蛋白gp4l(分子量36kD)的细胞裂解液孵育,并按各自清洗溶液对介质清洗后洗脱蛋白,对纯化后的剩余液和洗脱液进行sDS.PAGE,结果如图6所示。
从图6中可看出经c0.CM.Asp.sepharo∞与Qiagen公司的Ni.N1rA.A∞”介质纯化后剩余液中蛋白质的组成几乎一样,洗脱得到卵41蛋白的量相当,说明两者蛋白结合容量差别不大。
但是,以Ni.NTA.A朗f08e纯化后的洗脱液电泳结果中可见有少量杂蛋白的条带,而且与co.cM.Asp.s印har∞e相比,Ni,MrA.Ag啪眈介质纯化后剩余液泳道中杂蛋白减少较多,说明有较多的杂蛋白非特异性结合到Ni.NTA.Agm”介质上,便影响了纯化后所得蛋白的纯度。
这与文献中报道含镍螯台介质可与不含六个组氨酸残端的蛋白结合,因而会表现出一定非特异性吸附的结果一致““。
而以co-cM.Asp.sepharose纯化的洗脱液电泳条带中不存在杂蛋白,可见co—cM.Asp.sephamse对融合蛋白选择性高,非特异性吸附降低,因而表现出较好的纯化效果。
纯泰镍离子金属螯合亲和层析介质(Ni-NTA)使用说明书(完全版)[1]
mM Tris·Cl,用高浓度HCl调节pH至6.3。 z 缓冲液G: 8 M Urea,100 mM NaH2PO4,100
mM Tris·Cl,用高浓度HCl调节pH至4.5。 各种溶液配制完毕后,最好进行脱气处理,0.45 μm滤膜过滤备用。 注:也可按照可溶性蛋白的缓冲液配制与操作方式 进行,只需在缓冲液中加入8M脲或6M盐酸胍。
让介质自然沉降。
3) 从上端管口将另一垫片缓慢推至介质沉降平
面,使介质表面保持水平状态,注意避免垫片
与介质接触面滞留气泡(如对实验要求并非十
分严格,为提高流速,可不覆盖上垫片)。
4) 在使用一段时间后,如果层析柱流速减慢,可
先用小镊子沿边缘将垫片推翻,夹出垫片,倒
出介质,清洗或更换新的垫片后,按2)、3)所
层析柱中;静置30min,让介质自然沉降。
3) 从上端管口将转换杆出液端缓慢推至介质沉降
平面,使介质表面保持水平状态,注意避免转
换杆与介质接触面间滞留气泡。
4) 在使用一段时间后,如果流速减慢,可先卸下
上转换杆,将介质倒出,再取出下转换接头中
滤网,清洗或更换后重新装柱。
4. 过柱:
1) 用5~10倍介质体积的缓冲液A平衡亲和柱;
六、 实验实例
1. Ni-NTA Agarose 纯化 His-tag 蛋白 z 层析介质:纯泰®NTA 1ml;对照介质(国际领
先品牌)1ml z 样品:表达可溶性 His-tag 融合 thioredoxin 的
大肠杆菌 BL21 裂解液 z 结合缓冲液:10mM Na2HPO4,1.8mM KH2PO4,
3. 操作步骤:
生化分析实验金属螯和层析MCAC_XP
• Column: Glutathione Sepharose 4B, pre-packed • Binding: PBS + 1% Triton X-100 • Elution: 5 mM Glutathione, 50 mM Tris.HCl,
金属螯合层析的介质通常是在惰性 支持物上接有固定化的金属离子, 组氨酸与金属离子具有螯合作用, 对于具有不同组氨酸含量的不同蛋 白质分子对于一定金属离子的亲和 力大小不同 ,因而可通过柱层析进 行分离。
二、金属螯合剂
在Sepharos上接有亚氨基二乙酸 Iminodiacetic acid , IDE 将氯化锌或硫酸铜等溶液通过该柱时即
Affinity tag
Ligand
Glutathione-S-Transferase (GST) Glutat
Nickel ions
E tag sequence
Anti-E antibody
ZZ (domain B of protein A) IgG
M GuHCl (depends on tag) • A protease cleavage site allows the tag to be
removed after purification • Purity typically >90% in one step
Elution with Competing free ligand
四、实验方法
20mM, pH8.0 PBS+0.5M NaCl + CuSO4 平衡Buffer平衡 上样 改变 pH 或 离子强度洗脱 50mM EDTA 再生除去金属离子
镍离子金属鳌合亲和层析介质(Ni-NTA)说明
镍离子金属鳌合亲和层析介质(Ni-NTA)说明书一、简介金属螯合亲和层析介质,又称固定金属离子亲和色谱,其原理是利用蛋白质表面的一些氨基酸,如组氨酸能与多种过渡金属离子如Cu2+,Zn2+,Ni2+,Co2+,Fe3+发生特殊的相互作用,能够吸附富含这类氨基酸的蛋白质,从而达到分离纯化的目的。
因此,偶联这些金属离子的琼脂糖凝胶就能够选择性地分离出这些含有多个组氨酸的蛋白以及对金属离子有吸附作用的多肽、蛋白和核苷酸。
半胱氨酸和色氨酸也能与固定金属离子结合,但这种结合力要远小于组氨酸残基与金属离子的结合力。
镍NTA亲和层析介质(Ni-NTA )具有特异性好、流速快的优点,颗粒粒度均匀,粒径小,并且螯合镍更稳定,能耐受更高的还原剂,物理和化学稳定性好,批次重复性好。
本产品已经螯合好镍离子,使用更方便。
二、性能参数:三、适用范围分离带His标签的重组蛋白及能被金属离子吸附的多肽、蛋白、核苷酸、磷酸化蛋白。
四、应用实例实验名称:Ni-NTA 分离带His标签的重组蛋白实验步骤:1、Ni-NTA 装柱,1.6×20cm,柱床体积为10ml;2、用缓冲液1平衡2~5个床体积,流速为2ml/min;3、将20ml细胞破碎液(50mM PBS,pH7.4,0.5M NaCl)0.45μm滤膜过滤,上样,流速为1ml/min;4、用缓冲液1再洗2~5个床体积,流速为2ml/min;5、用分别含10、20、50、100、200、300、400mM咪唑的缓冲液3进行阶段洗脱,流速为2ml/min,收集各阶段洗脱峰,用SDS-PAGE检测融合蛋白的分子量大小和纯度;6、用纯水流洗5个柱床体积,再用20%的乙醇流洗3个柱床体积,流速为2ml/min,柱子置于+4-8℃环境中保存。
缓冲液组成:缓冲液1:50mM pH7.4的PBS缓冲液。
配制:0.5M NaH2PO419ml,0.5M Na2HPO481ml,NaCl 29.3g,加适量水溶解后定容到1000ml。
实验十一 金属螯合亲和层析分离蛋白质
实验十一金属螯合亲和层析分离蛋白质【实验目的】1.学习亲和层析的原理。
2.掌握亲和层析法分离蛋白质的技术与操作。
【实验原理】亲和层析是以普通凝胶作载体,连接上金属离子制成螯合吸附剂,用于分离纯化蛋白质,这样的方法称为金属螯合亲和层析。
蛋白质对金属离子具有亲和力是这种方法的理论依据。
已知蛋白质中的组氨酸和半胱氨酸残基在接近中性的水溶液中能与镍或铜离子形成比较稳定的络合物,因此,连接上镍或铜离子的载体凝胶可以选择性地吸附含咪唑基和巯基的肽和蛋白质。
过渡金属元素镍在较低pH范围时(pH 6-8),有利于选择性地吸附带咪唑基和巯基的肽和蛋白质,在碱性pH时,使吸附更有效,但选择性降低。
金属螯合亲和层析行为在很大程度上,由被吸附的肽和蛋白质分子表面咪唑基和巯基的稠密程度所支配,吲哚基可能也很重要。
本实验室纯化的目的蛋白是用IPTG诱导表达的pGFPuv,该蛋白是和6His融和表达的,含有特定的组氨酸标记物,这种可溶性蛋白质能用金属亲和层析法进行分离,且操作简单,快速,纯化效率高。
【试剂与器材】〈一〉试剂1. 0.05mol/L EDTA—0.5mol/L ,NaCL溶液100mL2. 2mol/L NaCL 溶液50mL3. 1mol/L NaOH溶液50mL4. 0.2mol/L NiSO4溶液50mL5. 平衡缓冲液:50mmol/L Tris-HCL,500mmol/L NaCL,pH7.0 500mL6. Ni2+Chelating Sepharose Fast Flow 5-10 mL7. 重组pGFPuv质粒大肠杆菌工程菌经诱导表达的细胞裂解蛋白样品20—50ml8. 洗涤液:50mmol/L咪唑,50mmol/L Tris-HCL,500mmol/L NaC,pH 7.09. 洗脱液:300mmol/L咪唑,50mmol/L Tris-HCL,500mmol/L NaCL.pH7.010 20%乙醇溶液50ml〈二〉器材1. 1.5cm X 50cm层析柱2. 蠕动泵3. 紫外检测仪4. 自动收集器5. 伍豪色谱工作站【操作方法】1. 样品的制备细胞的培养及荧光蛋白表达看实验十,细胞的破碎及蛋白的收集如下:收集在25 ℃用细胞培养液,8000r/min,离心5min,去上清液,菌体用平衡缓冲液洗涤一次,离心收集菌体,用三分之一(细胞培养液)体积的平衡缓冲液充分悬浮,冰浴下进行高压破菌处理。
金属螯合层析MCAC_XP1
四、实验方法
20mM, pH8.0 PBS+0.5M NaCl + CuSO4 平衡Buffer平衡 上样 改变 pH 或 离子强度洗脱 50mM EDTA 再生除去金属离子
Affinity-tagged fusion proteins
Matrix
Specific ligand
Recombinant fusion proteins
Deliberately designed for affinity purification
Affinity tag
Ligand
Glutathione-S-Transferase (GST) Glutathione Oligo(Histidine) Nickel ions E tag sequence Anti-E antibody ZZ (domain B of protein A) IgG Protein aros上接有亚氨基二乙酸 Iminodiacetic acid , IDE
将氯化锌或硫酸铜等溶液通过该柱时即 可制备出锌或铜等金属螯合剂。
IDE Na+
三、影响吸附的因素
1. 与金属离子的性质有关 Cu2+、Zn2+、Ca2+、Ni2+、 Mg2+等 2. 与样品的性质有关 His含量不同 His分布位置不同 Buffer 的 pH 及 离子强度
第七章 金属螯合层析
一、基本原理 金属螯合层析 Metal Chelate Chromatography, MCC 又称为固定化金属离子吸附层析 Immobilized Metal Ion Adsorption Chromatography, IMAC 金属螯合层析是利用不同蛋白质分子表面所含 组氨酸的差别而将其分离纯化的一种层析技术。 金属螯合层析的介质通常是在惰性支持物上接 有固定化的金属离子,组氨酸与金属离子具有 螯合作用,对于具有不同组氨酸含量的不同蛋 白质分子对于一定金属离子的亲和力大小不同 , 因而可通过柱层析进行分离。
ida金属螯合亲和层析介质
ida金属螯合亲和层析介质引言:ida金属螯合亲和层析介质是一种重要的生物分离技术,广泛应用于生物医学、生物化学和生物工程等领域。
它是通过金属离子与靶分子之间的特异性配位作用,实现对靶分子的高效分离和纯化的方法。
本文将介绍ida金属螯合亲和层析介质的原理、制备方法、应用领域及发展前景。
一、ida金属螯合亲和层析介质的原理ida金属螯合亲和层析介质的原理基于金属离子与靶分子之间的特异性配位作用。
ida(亚铁二胺四乙酸)是一种广泛应用的金属螯合剂,它能够与多种金属离子形成稳定的配合物。
通过将ida固定在载体上,可以构建ida金属螯合亲和层析介质。
二、ida金属螯合亲和层析介质的制备方法制备ida金属螯合亲和层析介质的方法主要包括固定化ida的选择、载体的选择和固定化方法的选择。
固定化ida时,可以选择将ida 直接固定在载体上,也可以选择使用交联剂将ida与载体交联。
常用的载体包括琼脂糖、聚丙烯酰胺凝胶等。
三、ida金属螯合亲和层析介质的应用领域ida金属螯合亲和层析介质在生物医学、生物化学和生物工程等领域有广泛的应用。
在生物医学领域,ida金属螯合亲和层析介质可用于药物分离纯化、疾病诊断和治疗等方面。
在生物化学领域,ida 金属螯合亲和层析介质可用于蛋白质纯化、酶分离和多肽合成等方面。
在生物工程领域,ida金属螯合亲和层析介质可用于基因工程药物的纯化和制备等方面。
四、ida金属螯合亲和层析介质的发展前景ida金属螯合亲和层析介质作为一种高效、选择性的分离技术,具有广阔的发展前景。
随着生物医学和生物工程领域的不断发展,对高纯度生物分子的需求越来越大,ida金属螯合亲和层析介质作为一种有效的分离工具将会得到更广泛的应用。
同时,随着新型材料和新型固定化方法的不断涌现,ida金属螯合亲和层析介质在分离效率和选择性上将会有更大的突破。
结论:ida金属螯合亲和层析介质是一种重要的生物分离技术,通过金属离子与靶分子之间的特异性配位作用,实现对靶分子的高效分离和纯化。
镍离子金属螯合亲和层析介质使用说明书(完全版)
让介质自然沉降。
3) 从上端管口将另一垫片缓慢推至介质沉降平
面,使介质表面保持水平状态,注意避免垫片
与介质接触面滞留气泡(如对实验要求并非十
分严格,为提高流速,可不覆盖上垫片)。
4) 在使用一段时间后,如果层析柱流速减慢,可
先用小镊子沿边缘将垫片推翻,夹出垫片,倒
出介质,清洗或更换新的垫片后,按2)、3)所
6. 介质保存
4℃~8℃条件下,介质可长期保存于20%乙醇 中。
7. SDS-PAGE检测:
1) 不同浓度SDS-PAGE分离胶分离范围
-2-
分离胶浓度 6% 8% 10% 12% 15%
分离范围 50~150kD 30~90kD 20~80kD 12~60kD 10~40kD
2) SDS-PAGE操作流程
镍离子金属螯合亲和层析介质使用说明书(完全版)
一、 简介
三、 适用范围
金属螯合亲和层析,又称固定金属离子亲和色 谱,其纯化原理是利用蛋白质表面的组氨酸与多种 过渡金属离子如Cu2+,Zn2+,Ni2+,Co2+,Fe3+形成 配位相互作用,从而能够吸附富含这类氨基酸的蛋 白质,从而达到分离纯化的目的。因此,固定有这 些金属离子的琼脂糖凝胶就能够选择性地纯化这 类含有多个组氨酸的蛋白以及多肽和核苷酸。半胱 氨酸和色氨酸与固定金属离子结合力要远小于组 氨酸残基,对纯化影响不大。
二、 性能参数
特点
基质 配体 配体密度 吸附载量 介质平均粒径 最大流速
pH范围
保存温度 保存液体
特殊NTA、IDA结构设计,蛋白载 量大,专一性高,使用寿命长
6%的交联琼脂糖凝胶
NTA-Ni2+/
千纯 镍ni nta螯合亲和琼脂糖层析介质
千纯镍nta螯合亲和琼脂糖层析介质是一种用于蛋白质纯化的重要工具,在生物技术领域广泛应用。
本文将从其原理、特点、应用以及未来发展方向等方面进行介绍和分析。
一、原理千纯镍nta螯合亲和琼脂糖层析介质的原理主要是利用镍离子与蛋白质中的组氨酸残基结合的特性,实现对蛋白质的选择性结合和分离。
在琼脂糖基质的支持下,镍nta螯合亲和层析介质可以与目标蛋白质发生专一性结合,并通过洗脱等步骤实现对蛋白质的分离纯化。
二、特点1.高选择性:镍nta螯合亲和层析介质具有较高选择性,能够与蛋白质中的组氨酸残基结合,实现对目标蛋白质的有效分离。
2.良好的生物相容性:介质材料琼脂糖在生物体内具有良好的生物相容性,不会对生物体产生毒副作用。
3.稳定性:介质具有良好的稳定性,可以承受一定的流速和压力,适合于在不同操作条件下进行蛋白质的层析纯化。
三、应用千纯镍nta螯合亲和琼脂糖层析介质在生物制药、基因工程、生物化学等领域有着广泛的应用,主要体现在以下几个方面:1.蛋白质纯化:通过千纯镍nta螯合亲和琼脂糖层析介质可以实现对蛋白质的高效分离和纯化,为后续的生物学研究和药物开发提供优质的蛋白质样品。
2.蛋白质结构分析:可用于蛋白质的结构研究和功能分析,为了解蛋白质的结构和功能提供有效手段。
3.抗体制备:可用于从复杂混合物中纯化目标抗体,为抗体制备提供技术支持。
四、未来发展方向千纯镍nta螯合亲和琼脂糖层析介质作为一种重要的蛋白质纯化工具,其未来发展方向主要有以下几个方面:1.多功能化:将其与其他螯合亲和剂结合,开发出具有多功能性能的层析介质,实现对不同类型蛋白质的快速纯化。
2.自动化:结合自动化技术,实现对层析过程的自动控制,提高工作效率和操作便捷性。
3.高通量:发展高通量的层析介质,满足大规模蛋白质纯化的需求。
千纯镍nta螯合亲和琼脂糖层析介质作为一种重要的蛋白质纯化工具,在生物技术领域具有重要的应用价值,并且其具有良好的发展前景。
金属螯合预装柱5ml说明书-Ni-20120202
金属螯合预装柱(5ml)说明书1. 简介金属螯合亲和层析,又称固定化金属离子亲和层析(Immobilized metal ion affinity chromatography, IMAC)。
该法利用蛋白质表面的某些氨基酸(如组氨酸、色氨酸、半胱氨酸等)和金属离子(Cu2+、Zn2+、Ni2+等过渡金属离子)发生特殊的相互作用的原理,从而实现蛋白质的分离。
琼脂糖金属螯合介质(Ni-IDA QZT 6FF)是将亚氨基二乙酸(IDA)键合在高流速、高强度的琼脂糖微球上,并螯合金属离子Ni2+而形成的一种亲和层析介质,广泛用于蛋白质、核酸及多肽,尤其是组氨酸标签蛋白质的分离纯化。
2. 产品概述金属螯合预装柱预装了5 ml的Ni-IDA QZT 6FF亲和介质,可直接用于组氨酸标签蛋白质等生物分子的分离纯化,具有使用方便、操作简单、分离纯化效率高的特点。
Ni-IDA QZT 6FF亲和介质具有良好的稳定性、生物相容性和溶剂相容性,这不仅有利于保持产品的生物活性和提高产品的收率,还有利于扩大层析操作条件的选择范围。
Ni-IDA QZT 6FF亲和介质的理化性质和溶剂相容性分别如表1和表2所示。
表1. Ni-IDA QZT 6FF预装柱的理化性质及特征参数参数指标基质6%交联琼脂糖凝胶配基-N(CH2COOH)2 (IDA)形状球形平均粒径90 μm (45~165)金属离子密度~40 μmol Zn2+/ml wet gel动态载量a~25-30 mg蛋白(LDH)/ml wet gel柱体积1ml或5ml柱尺寸(内径x高度)0.9*1.57 cm (1ml柱子) 0.9*1.57 cm (5ml柱子)推荐流速b1ml/min (1ml柱子)或5ml/min (5ml柱子)地址:北京市海淀区中关村北二条1号中国科学院过程工程研究所最高流速b4ml/min (1ml柱子)或20ml/min (5ml柱子) 最高耐压b0.3 MPa (3 bar)化学稳定性c 避免使用的试剂0.01M HCl、0.1 M NaOH(37 °C, 7天);1M NaOH、70%乙酸(12 h);30%异丙醇(30 min);2% SDS(1 h)螯合剂,如EDTA、EGTA、柠檬酸等pH稳定性c2-14(短期,2 h);3-12(长期,7天)储存条件20%乙醇,4-30 o C动态载量a:样品:平衡缓冲液中含1mg/ml histidine-tagged LDH(Mr 140000);计算方法:根据10%穿透点计算介质动态载量(Q B, 10%);柱体积:1 ml或5 ml;流速:0.5 ml/min或2.5 ml/min;平衡缓冲液:20mM PB + 0.1M NaCl + 50 mM 咪唑, pH 7.4;洗脱缓冲液:20mM PB + 0.1M NaCl + 0.5 M 咪唑, pH 7.4;注意:动态载量与蛋白种类和操作条件密切相关。
蛋白质纯化柱-ni
网址:
合蛋白; 4) 用缓冲液B和缓冲液C配制的不同浓度缓冲液D
洗脱; 9 最高纯度洗脱方案:用含0、60、100、150、
200、250mM 咪唑的缓冲液D分步洗脱,每 个梯度2~3倍介质体积洗脱; 9 最高收率洗脱方案:先用5~10倍介质体积 含20mM咪唑的缓冲液D洗脱,再用5~10倍 介质体积含250mM咪唑的缓冲液D洗脱。 注:纯化过程流速不宜过快,对于1ml介质,流速 保持在0.5ml/min为宜。 5. 介质清洗与再生: 如果使用一段时间以后,介质上有杂质沉积导 致介质颜色改变和蛋白结合能力下降,需对介质进 行清洗或再生。 z 介质清洗: 1) 用10倍介质体积0.5M NaOH过柱,适当调整流 速,或洗脱至10倍介质体积时停30min后继续洗 脱,保证介质与NaOH溶液接触时间达到30min 以上。 2) 用10倍介质体积去离子水洗去层析柱中的碱 液。 3) 用10倍介质体积缓冲液A平衡层析柱。 z 介质再生: 1) 用2~5倍介质体积脱镍缓冲液(50mM Na3PO4, 300mM NaCl,100mM EDTA,pH 8.0)过柱; 2) 用5-10倍介质体积0.5M NaOH过柱,适当调整 流速,如流速较快,则洗脱至10倍介质体积时 停30min后继续洗脱,保证介质与NaOH溶液接 触时间达到30min以上; 3) 用10倍介质体积去离子水洗柱; 4) 用3倍介质体积10mM Na3PO4,1M NaCl,pH 7.4 缓冲液平衡层析柱; 5) 用3倍介质体积20mM NiCl2或NiSO4 (溶于去离 子水)过柱; 6) 用3倍介质体积10mM Na3PO4,1M NaCl,pH 7.4 缓冲液洗柱; 7) 用5倍介质体积缓冲液A平衡层析柱。
网址:
分离His融合蛋白及能被金属离子吸附的多肽、 蛋白、核苷酸、磷酸化蛋白。
金属螯合层析介质
金属螯合层析介质(征求意见稿)编制说明《金属螯合层析介质》国家标准起草工作小组二〇一九年一月《金属螯合层析介质》国家标准编制说明(征求意见稿)一、任务来源本国家标准的制定任务列入国家标准化管理委员会专项《国家质量基础的共性技术研究与应用》项目《生物产业共性技术标准研究》中课题《海洋生物产品质量控制与检测技术标准研究》,项目编号“2016YFF0202304”。
本项任务由中国标准化研究院提出并归口,定于2019年完成。
本标准起草工作组由中国科学院过程工程研究所等单位共同组成。
二、目的和意义金属螯合层析是近40年来出现的一种亲和层析技术,也称固定化金属离子亲和层析。
它于1975年首先被Porath和他的合作者们成功用于分离纯化人血清蛋白,并在此后的三十年里迅速发展。
该法利用蛋白质表面的某些氨基酸和金属离子发生特殊的相互作用的原理,从而实现蛋白质分离。
高流速琼脂糖金属螯合层析介质是将亚氨基二乙酸(IDA)、次氮基三乙酸(NTA)等配基键合在高流速琼脂糖微球上,并螯合金属离子Ni2+(或其它金属离子)而形成的一种亲和层析介质[1](图1)。
该类层析介质具有吸附容量大、选择性好、分辨率高、易于再生以及成本较低等优点,在标签蛋白等生物大分子纯化领域具有极为广泛的应用。
图1 金属螯合层析介质(IDA)结构示意图(X可以是H2O、缓冲液中离子以及蛋白配体等)目前国内外已有多家企业进行金属螯合层析介质的生产,由于缺乏相应的国家标准,金属螯合层析介质的性能要求没有统一标准,从而对其应用造成很大困扰,严重阻碍该类介质和层析技术的应用发展水平,对我国生物产业产生不利影响。
以金属螯合层析介质的载量测定方法为例,一种方法是将介质装柱并连在层析仪上,平衡后经含有His-乳酸脱氢酶的样品上样,上样结束后,依次经淋洗和洗脱,收集洗脱液,根据洗脱液中蛋白含量计算洗脱载量;另一种方法是用纯His-乳酸脱氢酶上样,依次经平衡和洗脱,收集洗脱液,根据洗脱液蛋白含量计算洗脱载量。
(03)金属螯和层析
金属螯和层析操作规程一、溶液配制1、8×Binding溶液40mM 咪唑4M NaCl160 mM Tris-HClpH7.92、4×Elute 溶液4M 咪唑2M NaCl80mM Tris-HClPh7.93、8×Wash 溶液160 mM 咪唑4M NaCl160 mM Tris-HClpH7.95、4×strip 溶液40 mM EDTA2M NaCl80mM Tris-HClPh7.9注:(1)如样品在变性状态下,则应在Binding,Elute,Wash溶液中加入4~8M的尿素。
(2)PH的调节应在加完尿素和稀释完储液后调节。
二、层析过程1、装柱将适当体积的柱料装入层析柱,用超纯水以工作流速的压实柱料(至少三个柱体积),以获得均一的柱床,同时避免带入气泡。
注:以下的层析操作流速不要超过装柱流速的1.75倍。
2、柱平衡由层析系统依次五个柱体积的Charge 溶液和三个柱体积的Binging 溶液。
注:柱子挂上镍离子后,可在Binging 溶液中过夜,4℃。
3、上样视样品的多少可选用LOOP或由泵直接上样两种方式,接穿透峰以备SDS-PAGE检测。
4、淋洗十个柱体积的BINDING溶液洗过后,用六个柱体积的WASH 溶液淋洗,以去除非特异结合的蛋白质,接穿透峰以备SDS-PAGE检测。
5、洗脱对于未知的蛋白初提液,可采用10 mM~500mM的梯度洗脱,并使用SDS-PAGE 检测活性峰。
6、柱再生用六个柱体积的STRIP溶液洗去镍离子。
7、柱保存用水,20%的乙醇依次过柱,置于4℃保存。
注意:(1)层析具体操作中各缓冲溶液的注入量以PH及电导基线基本不再变化为止。
(2)所有的样品和溶液层析前,应脱气和过膜(0.45μm)。
(3)当柱流速明显减低或层析介质被charge 后不再变蓝时,需再生柱子。
再生的方法:依次将以下的溶液按建议的体积数处理介质。
金属螯合亲和层析分离蛋白质的研究
!"卷#期$%%%年&月生物工程学报!"#$%&%’()*$+,(-.#(/%0"$(,(12’()*!"+(*#,-).!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!$%%%金属螯合亲和层析分离蛋白质的研究孙旭东李红旗隋洪艳沈忠耀(清华大学化工系北京!%%%1#)摘要金属螯合亲和层析是近$%年发展起来的一项新型分离技术。
它以配基简单、吸附量大、分离条件温和、通用性强等特点,逐渐成为分离纯化蛋白质等生物工程产品最有效的技术之一。
本文从单组分蛋白质入手,考查了23值、铵离子浓度、不同铵盐等对蛋白质洗脱的影响,并进行了分析。
还对不同的金属螯合柱和不同性质蛋白质的洗脱性能进行了研究,比较了不同金属离子与蛋白质亲和力的区别,为实际体系的分离研究打下了基础。
关键词金属螯合亲和层析,牛血清白蛋白,血红蛋白,分离中图分类号41!5文献标识码6文章编号!%%%07%"!($%%%)%#0%#/50%5金属螯合亲和层析,又称固定化金属离子亲和层析(899(:;);<=>?=@A)8(B6C C;B;@.D E F(9A@(0 G F A2E.,简称8?6D),是近$%年发展起来的一项新型分离技术。
最早由H A F(@E等人[!,$]提出。
该方法利用蛋白质表面的一些氨基酸,例如组氨酸、色氨酸、赖氨酸等能和金属离子发生特殊的相互作用的原理,从而对蛋白质加以分离[7]。
由于它具有配基简单、吸附量大、分离条件温和、通用性强等特点,逐渐成为分离纯化蛋白质等生物工程产品最有效的技术之一[#]。
本文主要以单组分蛋白质牛血清白蛋白(I J6)和血红蛋白为研究对象,考查了23值、铵离子浓度及阴离子等不同洗脱条件对出峰时间的影响。
对不同的金属螯合柱的性能和不同单组分蛋白质的洗脱性能进行了研究,比较了不同金属离子与蛋白质亲和力的区别,为实际生物产品的分离奠定了基础。
金属螯合层析
亲和层析中文名称:亲和层析英文名称:affinity chromatography定义1:利用分子与其配体间特殊的、可逆性的亲和结合作用而进行分离的一种层析技术。
可以选用生物化学、免疫化学或其他结构上吻合等亲和作用而设计的各种层析分离方法。
如用寡脱氧胸苷酸-纤维素分离纯化信使核糖核酸;用DNA-纤维素分离依赖DNA的DNA聚合酶;用琼脂糖-抗体制剂分离抗原;用金属螯合柱分离带有成串组氨酸标签的重组蛋白质等。
应用学科:生物化学与分子生物学(一级学科);方法与技术(二级学科)定义2:利用共价连接有特异配体的层析介质分离蛋白质混合物中能特异结合配体的目的蛋白或其他分子的一种层析法。
应用学科:细胞生物学(一级学科);细胞生物学技术(二级学科)本内容由全国科学技术名词审定委员会审定公布百科名片亲和层析将具有特殊结构的亲和分子制成固相吸附剂放置在层析柱中,当要被分离的蛋白混合液通过层析柱时,与吸附剂具有亲和能力的蛋白质就会被吸附而滞留在层析柱中。
那些没有亲和力的蛋白质由于不被吸附,直接流出,从而与被分离的蛋白质分开,然后选用适当的洗脱液,改变结合条件将被结合的蛋白质洗脱下来,这种分离纯化蛋白质的方法称为亲和层析。
利用共价连接有特异配体的层析介质分离蛋白质混合物中能特异结合配体的目的蛋白或其它分子的层析技术。
目录亲和层析(affinity chromatography)原理载体的基本要求和选择名词解释亲和层析(affinity chromatography)在生物分子中有些分子的特定结构部位能够同其他分子相互识别并结合,如酶与底物的识别结合、受体与配体的识别结合、抗体与抗原的识别结合,这种结合既是特异的,又是可逆的,改变条件可以使这种结合解除。
生物分子间的这种结合能力称为亲和力。
亲和层析就是根据这样的原理设计的蛋白质分离纯化方法。
原理亲和层析是一种吸附层析,抗原(或抗体)和相应的抗体(或抗原)发生特异性结合,而这种结合在一定的条件下又是可逆的。
金属螯合亲和色谱介质的合成及其色谱特性研究
第16卷第4期色 谱V ol.16N o.4 1998年7月CHIN ESE JOU R N AL O F CHRO M A T O GR AP HY July 1998金属螯合亲和色谱介质的合成及其色谱特性研究邸泽梅 陈国亮 雷建都 李 蓉 李华儒**(西北大学化工系 西安 710069)提 要 详细研究了亚氨基二乙酸(IDA)在硅胶基质上键合的适宜条件,利用国产小颗粒大孔径硅胶(7 m, 30nm)制备了固定有Cu2+,Ni2+,Co2+,Zn2+的金属螯合吸附剂,比较了蛋白质在金属螯合柱和裸柱上的保留特性,利用合成的C u-IDA-硅胶柱分离了来自牛血红细胞的超氧化物歧化酶(S OD)。
关键词 金属螯合亲和色谱法,介质合成,硅胶基质,超氧化物歧化酶分类号 O658/Q511 前言金属螯合亲和色谱法(M CA C)又称固定金属亲和色谱法(IM A C),是近20年发展起来的一项新分离技术[1]。
此法是将金属离子固定在载体上,利用金属离子与蛋白质表面组氨酸等的配位作用进行分离,因此可以选择性地分离对金属离子有亲和力的蛋白质。
传统的金属螯合柱大多以葡聚糖或琼脂糖等软基质作载体[2],这种凝胶机械强度小,仅适于常压或低压液相色谱法。
为了提高分离效率,缩短分析周期,一些作者提出利用硬基质金属螯合柱分离生物大分子[3~5]。
本工作以国产硅胶为基质,详细研究了金属螯合色谱介质合成的条件,利用合成的固定相考察了蛋白质的保留特性,首次用硬基质金属螯合柱分离了来自牛血红细胞的超氧化物歧化酶。
2 实验部分2.1 仪器与试剂L C-6A型高效液相色谱仪(日本岛津),751型紫外分光光度计(上海第三分析仪器厂),WY X-402型原子吸收分光光度计(沈阳分析仪器厂)。
硅胶(粒度7 m,孔径30nm,北京化学试剂研究所), -缩水甘油氧丙基三甲氧基硅烷(辽宁盖县化工研究所),亚氨基二乙酸(IDA,湖州生物化学厂),其它试剂均为分析纯(西安化学试剂厂),水为二次蒸馏水。
镍离子金属鳌合亲和层析介质(Ni-NTA)说明
镍离子金属鳌合亲和层析介质(Ni-NTA)说明书一、简介金属螯合亲和层析介质,又称固定金属离子亲和色谱,其原理是利用蛋白质表面的一些氨基酸,如组氨酸能与多种过渡金属离子如Cu2+,Zn2+,Ni2+,Co2+,Fe3+发生特殊的相互作用,能够吸附富含这类氨基酸的蛋白质,从而达到分离纯化的目的。
因此,偶联这些金属离子的琼脂糖凝胶就能够选择性地分离出这些含有多个组氨酸的蛋白以及对金属离子有吸附作用的多肽、蛋白和核苷酸。
半胱氨酸和色氨酸也能与固定金属离子结合,但这种结合力要远小于组氨酸残基与金属离子的结合力。
镍NTA亲和层析介质(Ni-NTA )具有特异性好、流速快的优点,颗粒粒度均匀,粒径小,并且螯合镍更稳定,能耐受更高的还原剂,物理和化学稳定性好,批次重复性好。
本产品已经螯合好镍离子,使用更方便。
二、性能参数:三、适用范围分离带His标签的重组蛋白及能被金属离子吸附的多肽、蛋白、核苷酸、磷酸化蛋白。
四、应用实例实验名称:Ni-NTA 分离带His标签的重组蛋白实验步骤:1、Ni-NTA 装柱,1.6×20cm,柱床体积为10ml;2、用缓冲液1平衡2~5个床体积,流速为2ml/min;3、将20ml细胞破碎液(50mM PBS,pH7.4,0.5M NaCl)0.45μm滤膜过滤,上样,流速为1ml/min;4、用缓冲液1再洗2~5个床体积,流速为2ml/min;5、用分别含10、20、50、100、200、300、400mM咪唑的缓冲液3进行阶段洗脱,流速为2ml/min,收集各阶段洗脱峰,用SDS-PAGE检测融合蛋白的分子量大小和纯度;6、用纯水流洗5个柱床体积,再用20%的乙醇流洗3个柱床体积,流速为2ml/min,柱子置于+4-8℃环境中保存。
缓冲液组成:缓冲液1:50mM pH7.4的PBS缓冲液。
配制:0.5M NaH2PO419ml,0.5M Na2HPO481ml,NaCl 29.3g,加适量水溶解后定容到1000ml。
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金属螯合层析介质(征求意见稿)编制说明《金属螯合层析介质》国家标准起草工作小组二〇一九年一月《金属螯合层析介质》国家标准编制说明(征求意见稿)一、任务来源本国家标准的制定任务列入国家标准化管理委员会专项《国家质量基础的共性技术研究与应用》项目《生物产业共性技术标准研究》中课题《海洋生物产品质量控制与检测技术标准研究》,项目编号“2016YFF0202304”。
本项任务由中国标准化研究院提出并归口,定于2019年完成。
本标准起草工作组由中国科学院过程工程研究所等单位共同组成。
二、目的和意义金属螯合层析是近40年来出现的一种亲和层析技术,也称固定化金属离子亲和层析。
它于1975年首先被Porath和他的合作者们成功用于分离纯化人血清蛋白,并在此后的三十年里迅速发展。
该法利用蛋白质表面的某些氨基酸和金属离子发生特殊的相互作用的原理,从而实现蛋白质分离。
高流速琼脂糖金属螯合层析介质是将亚氨基二乙酸(IDA)、次氮基三乙酸(NTA)等配基键合在高流速琼脂糖微球上,并螯合金属离子Ni2+(或其它金属离子)而形成的一种亲和层析介质[1](图1)。
该类层析介质具有吸附容量大、选择性好、分辨率高、易于再生以及成本较低等优点,在标签蛋白等生物大分子纯化领域具有极为广泛的应用。
图1 金属螯合层析介质(IDA)结构示意图(X可以是H2O、缓冲液中离子以及蛋白配体等)目前国内外已有多家企业进行金属螯合层析介质的生产,由于缺乏相应的国家标准,金属螯合层析介质的性能要求没有统一标准,从而对其应用造成很大困扰,严重阻碍该类介质和层析技术的应用发展水平,对我国生物产业产生不利影响。
以金属螯合层析介质的载量测定方法为例,一种方法是将介质装柱并连在层析仪上,平衡后经含有His-乳酸脱氢酶的样品上样,上样结束后,依次经淋洗和洗脱,收集洗脱液,根据洗脱液中蛋白含量计算洗脱载量;另一种方法是用纯His-乳酸脱氢酶上样,依次经平衡和洗脱,收集洗脱液,根据洗脱液蛋白含量计算洗脱载量。
这两种方法测定同一介质样品得到的结果具有明显差异。
类似问题也出现在其他的参数测定上。
因此建立关于金属螯合层析介质的国家标准具有重要意义。
在此基础上,通过标准化工作提高介质及相关技术发展水平,促使我国相关产业在国际贸易方面取得话语权,推动我国层析介质及相关产业在国际上占有一席之地。
三、标准制定原则(一)标准编制原则金属螯合介质属于生物体系分离材料,重点围绕介质的主要性能要求,设定相应技术内容。
在确保产品质量的基础上,充分体现产品的特点。
(二)标准制订主要依据1、标准编写遵循GB1.1-2009《标准化工作导则第1部分:标准的结构和编写规则》的有关要求。
2、标准编写内容参考我国与化学品相关的法规、标准,包括GB/T 601 化学试剂标准滴定溶液的制备、GB/T 603 化学试剂试验方法中所用制剂及制品的制备等等。
四、标准主要技术内容(一)标准适用范围的说明本标准规定了金属螯合层析介质的质量要求、检测方法、检验规则、标志、包装、运输和贮存的标准。
本标准适用于骨架为琼脂糖微球的金属螯合层析介质的生产与检测。
(二)内容提要金属螯合层析介质的主要理化性质包括外观、粒径、流速、配基密度、动态载量、微生物污染和化学稳定性等。
2.1 外观2.1.1 方法提要采用光学显微镜观测金属金属螯合层析介质的外观形貌。
光学显微镜使用普及率高,可观测范围一般在数微米到数百微米之间,样品处理过程和观测过程都简便易行,观测结果清晰、重复性好,是常用的材料外观表征方法之一[2]。
金属螯合层析介质的外观形貌主要包括球形和透明性,其尺寸大小在光学显微镜的测量范围内[3]。
2.1.2 试剂和材料实验用水应符合GB/T 6682-1992中三级要求。
光学显微镜。
砂芯漏斗为G3(4.5-9 μm)。
真空泵极限真空0.1MPa。
2.1.3 样品前处理用量筒量取5 mL金属螯合层析介质,置于50 mL砂芯漏斗中。
用三级水清洗5次每次2 min,抽干5 min。
将洗净的琼脂糖白球置于烧杯中,琼脂糖白球上应有2 cm的三级水。
混匀后得到琼脂糖白球与水的混合体系。
2.1.4 样品观测用塑料吸管吸取1 mL金属螯合层析介质与水的混合体系置于载玻片上,调整显微镜放大倍数。
以视野里80%以上面积均为白球为标准,用塑料吸管增减载玻片上的微球,最后用盖玻片压上。
调节光学显微镜焦距,使视野中的影像清晰。
拍摄金属螯合层析介质照片并保存。
图2 金属螯合层析介质光学显微镜照片2.1.5 方法验证为了确定检验方法,标准起草单位已委托三家单位对方法进行复核验证。
2.2 粒径及其分布2.2.1 方法提要粒径和粒径分布是微球最基本的性质参数,对流速和分辨率均有重要影响[2]。
金属螯合层析介质是球形颗粒,其大小用直径来量度。
微球用于生化分离介质时,其粒径通常较小。
常见的金属螯合层析介质粒径范围是45-165μm,平均粒径是90μm[4]。
分辨率更高的一类金属螯合层析介质,其平均粒径为34μm。
采用激光粒度分析仪测定金属螯合层析介质的粒径方法十分简便[2]。
平均粒径及其粒径分布的定义如下:其中d B i为单个介质的粒径,d B n为所统计的一定数量介质颗粒的平均值,N 为所统计的介质颗粒的数目。
2.2.2 试剂和材料实验用水应符合GB/T 6682-1992中三级要求。
砂芯漏斗为G3(4.5-9 μm)。
真空泵极限真空0.1MPa。
2.2.3 样品前处理方法同2.1.3。
2.2.4 样品测定设置测量颗粒类型为通用型,分散剂类型为水,分析模式为单峰模式,添加样品进行测定。
通过激光粒度仪的检测结果包括平均粒径值及其分布图。
以45-165 μm为例,根据粒径分布(如图1中表格)按公式(1)计算该粒径范围内微球数量所占百分比。
(1)式中:W粒径——45-165 μm粒径范围内微球数量所占百分比,单位是%;W1,W2,……W x——符合45-165 μm范围的各粒径范围百分比,例如图1中45.709 μm-52.481 μm的球所占百分比为5.35%。
体积平均粒径按公式(2)计算: (2)图3 金属螯合层析介质粒径分布图2.2.5 允许差同一试样三次测定结果之差,应不超过平均值的5%。
表1 精密度试验(n=3)试验序号平均粒径值(μm)1 88.982 88.703 89.01x 88.90s 0.17RSD(%) 0.19%2.2.6 方法验证为了确定检验方法,标准起草单位已委托三家单位对方法进行复核验证。
2.3 配基密度(金属离子(Ni2+)密度)测定2.3.1 方法提要金属螯合层析法是利用蛋白质表面的某些氨基酸和金属离子发生特殊的相互作用的原理,从而实现蛋白质分离。
因此金属螯合层析介质上的金属离子Ni2+(或其它金属离子)的数量对蛋白的吸附量有很大的影响。
检测时将一定量的Ni2+与未螯合金属离子的介质反应,将反应后剩余的Ni2+进行定量,即可算出金属螯合层析介质螯合的金属离子的量。
该方法操作简单,精确性好,可重复性较高。
2.3.2 试剂和材料乙二胺四乙酸二钠,基准氧化锌,浓盐酸,氨水,氯化铵,铬黑T,六水合硝酸镍,紫脲酸铵,无水乙醇,氯化钠,盐酸羟胺,天平,容量瓶,广口瓶,层析柱(Φ1.00 cm×20.00 cm),滴定管。
2.3.3 样品前处理用量筒量取5 mL金属螯合层析介质,置于50 mL砂芯漏斗中。
用三级水清洗5次每次2 min,再用0.1 mol/L EDTA 溶液清洗5次每次5min将介质上螯合的金属离子清洗净,最后用三级水清洗5次每次2 min,抽干5 min。
2.3.4 装柱称取2.00 g抽干的偶联IDA(或NTA)配基的琼脂糖微球(未螯合金属离子),将其与水的混合浆液倒入层析柱中,堵住柱子出口,静置,待柱床层稳定。
柱子上端充满水,放入上筛板。
打开柱子入口,连续向柱中通入三级水(10个柱体积),保持床层稳定。
2.3.5 样品检测准确量取50 mL标定的0.05 mol/L 的Ni(NO3)2•6H2O溶液,匀速通过柱内,立即收集流出液;用去离子水洗涤珠体表面未被吸附的Ni2+离子,同时收集流出液,同上步收集的流出液混合。
反应后的Ni(NO3)2溶液用氨水调节pH值至7~8,加入50 mL氨-氯化铵缓冲液乙,0.25g紫脲酸胺指示剂,用0.1mol/L的EDTA标准溶液进行滴定至溶液由黄色变为紫色为终点。
记录所消耗的EDTA标准溶液的体积,进行计算。
2.3.6 结果表示根据公式(2)计算湿胶Ni2+的螯合量:C N2+=CEDTA´(VEDTA,0-VEDTA,1)W´1.42´1000 (2)式中,C N2+——湿胶Ni2+的螯合量,单位为微摩尔每毫升μmol/ml;C EDTA——EDTA 标准溶液的浓度,单位为摩尔每升mol/L;V EDTA,0——反应前的Ni(NO3)2溶液消耗EDTA标准溶液的体积,单位为毫升mL;V EDTA,1——反应后收集到的Ni(NO3)2溶液消耗EDTA标准溶液的体积,单位为毫升mL;W——称量的样品重,单位为克g;1.42——1g湿胶的体积为1.42 mL。
2.3.7 允许差同一试样三次测定结果之差,应不超过平均值的5%。
表精密度试验(n=3)试验序号Ni2+离子密度(umol/ml)1 53.322 57.903 56.20x 55.81s 2.32RSD(%) 4.15%2.3.8 方法验证为了确定检验方法,标准起草单位已委托三家单位对方法进行复核验证。
2.4 动态载量2.4.1 方法提要金属螯合层析介质的动态载量是表征介质动态吸附平衡的参数之一,它是指每克干介质或每毫升湿介质在一定操作条件下吸附某一特定物质的实际容量。
“一定的操作条件”是指所用的缓冲液的种类、工作液的pH值、杂质存在情况及操作流速等特定的操作条件。
在层析柱内操作时,其与流速有关,因此,动态吸附性能又称为动力学容量[4],在实际生产中较好的动态载量能更有效的提高生产效率,降低生产成本。
本方法先将金属螯合介质装柱,再使用层析系统将足够量的目标蛋白吸附到金属螯合介质上,最后将吸附上的蛋白洗脱并收集,根据洗脱液蛋白含量计算动态载量。
层析系统操作简便,自动化程度高,测定重复性好,是测定金属螯合层析介质动态载量的通用方法。
2.4.2 试剂和材料组氨酸标记蛋白冻干粉,十二水合磷酸氢二钠,二水合磷酸二氢钠,氯化钠,咪唑。
中低压蛋白层析系统。
紫外分光光度计。
pH计。
层析柱(Φ1.60cm×20.00 cm)。
过滤装置。
微滤膜:0.45μm。
真空泵极限真空0.10 MPa。
2.4.3 样品前处理方法同2.1.3。
2.4.4装柱将介质与水的混合浆液倒入层析柱中,堵住柱子出口,静置,待柱床层稳定(Φ1.60 cm×5.00 cm),柱子上端充满水。