疟疾镜检的实验室技术PPT课件

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疟原虫实验室检查PPT课件

疟原虫实验室检查PPT课件
约占寄生红细胞的1/3,很少见到一个红细胞寄生2 个环状体和一个环状体有2个核。
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间日疟滋养体-大滋养体
经8~10小时,虫体增大,胞质增多,伸出 伪足。
出现黄褐色的疟色素。 红细胞胀大,变形,颜色变淡,并出现数量
较多,淡红色的小点,称薛氏小点 36
间日疟裂殖体
经40小时晚期滋养体发育成熟, 虫体变圆,空泡消失
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瑞氏染色方法
厚、薄血膜间用蜡笔划一横线。薄血膜不用固 定,厚血膜需溶血。
在薄血膜上滴加瑞氏染液5-8滴,染色2分钟 后,再加与染液等量的水于薄血膜上,用吸管 将染液与蒸馏水混合均匀后,把染液引到厚血 膜上,使厚血膜再染色10分钟。用清水轻轻冲 去染液,晾干。
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厚薄血膜的标准
厚血膜血量适宜,不宜过多或过少 薄血膜平整,无皱折和空泡,红细胞单层排列
2
分类
寄生于人体的疟原虫有4种,即间日疟、恶 性疟、三日疟和卵形疟
3
发病机制
疟原虫在红细胞中增殖成裂殖子,使红细胞胀大 破裂时,大量的裂殖子和疟原虫代谢产物进入血 流,引起异性蛋白反应,机体肌肉收缩产热,网 状内皮系统吞噬细胞功能增强,故可引起肝、脾 肿大,多次发作可致贫血等。
疟原虫在红细胞内增殖成熟所需时间不同,间日 疟和卵形疟为48小时,三日疟为72小时,恶性疟 为24~48小时,故临床上出现周期性发作
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恶性疟原虫--环状体
环纤细,约为RBC直径的1/6,RBC不胀大
可见数粒,大小不一,红色粗大的茂氏点
核1个,但2个常见,红细胞常含2个以上原虫
虫体常位于红细胞的边缘 ,呈“飞鸟状”
不带色素
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恶性疟原虫—大滋养体

疟原虫镜检技术-制片与染色PPT课件

疟原虫镜检技术-制片与染色PPT课件
能够根据形态特征鉴别不同种类 的疟原虫,如恶性疟原虫、间日
疟原虫等。
病例分析
通过实际病例分析,提高疟原虫 形态鉴别能力。
诊断结果的判定与报告
结果判定
根据镜下观察到的疟原虫形态特征,准确判定是 否感染疟疾。
报告撰写
按照规范撰写诊断报告,包括患者基本信息、临 床表现、镜检结果和诊断意见等。
沟通与反馈
及时与临床医生沟通,提供诊断意见,并根据医 生反馈调整镜检技术。
05
注意事项与质量控制
制片过程中的注意事项
样本采集
采集的血液样本应新鲜,避免长时间放置,以免影响制片效果。
血膜制备
血膜应均匀涂片,避免出现厚薄不均或气泡,影响镜检结果。
干燥与固定
制片应在室温下自然干燥,避免过热或过冷,以免影响染色效果。
染色过程中的注意事项
染色液选择
01
根据制片要求选择合适的染色液,确保染色效果良好。
血膜的固定与干燥
固定方法
将固定液滴加在血膜上,使血膜完全浸没在固定液中,静置 10分钟,然后晾干或用吹风机吹干。
干燥注意事项
确保血膜干燥彻底,以免在染色过程中出现脱落或染色不均 的情况。同时,干燥后的血膜应妥善保存,避免污染和损坏 。
03
染色技术
染料的种类与选择
染料种类
注意事项
生物染料、荧光染料、酸性染料等。
02
制片技术
血液样本采集与处理
血液样本采集
采集患者耳垂或指尖血,确保血 液新鲜、无污染。
血液处理
将采集的血液与等量抗凝剂混合 ,摇匀后静置10分钟,然后离心 分离出血浆和血膜。
血膜的制作
血膜板制作
选择适当的血膜板,用吸管吸取少量 血浆,均匀滴加在血膜板上,形成圆 形血膜。

疟原虫实验室镜检-课件(1)

疟原虫实验室镜检-课件(1)

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以下照片在一般发热病人血片中是观察不到的
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寄生的红细胞
染色后,寄生的红细胞溶解,轮 廓消失,但有时尚留下一“影子” 或小点。
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实图
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混合感染
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谢谢!
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小于正常红细胞;裂殖子 较小,8~26个,通常8、 18个,排列不规则,疟 色素成团块状,黑褐色
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雌配子体(薄血膜)
间日疟
恶性疟
大于正常红细胞,圆形;核 小.致密,深红色,偏于一 侧,胞浆深蓝色;疟色素散 在

疟原虫镜检PPT课件

疟原虫镜检PPT课件

薄血膜疟原虫形态
间 日 疟 未 成 熟 裂 殖 体
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薄血膜疟原虫形态
恶性疟未成熟裂殖 体
红细胞:大小正常,颜 色较深,可有茂氏小点。
大小: 较小。 胞浆: 规则,圆形或
卵圆形,兰色。 核: 分裂为二个以
上,红色。 色素: 黄褐色颗粒,
常集成黑褐团块。
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薄血膜中裂殖体前期形态特征
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薄血膜中常见的血液成分
中 性 白 细 胞
血小板
酸性球
大单核球
淋巴球
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红血球
薄血膜中被疟原虫寄生 红血球形态特征
• 间日疟原虫被寄生红细胞 • 恶性疟原虫被寄生红细胞
• 胀大色浅,薛氏点鲜红色, • 大小正常,色稍紫;茂氏
细小,数多
点紫红色,粗大,数少
第19页/共94页
的结构致密,只有在个别发育阶段较为疏松,例如间日疟原虫雄配子体的核。有 时因胞浆厚密或染色深蓝,使核呈暗红或紫红色。
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三、疟原虫形态特征
• ㈡ 细胞浆 • 被染成蔚蓝色或深蓝色,随着虫体发育长大,细胞浆逐渐增多。间日疟原虫发育到
大滋养体阶段,胞浆呈阿米巴样活动,胞浆内有空泡。三日疟原虫阿米巴活动不显 著。
第8页/共94页
红细胞内期 4
• 间日疟则有长潜伏期与短潜伏期两种,短者11-25天,平均14天;长者6-9个月, 最长者可达15个月。疟原虫在红细胞内按照生长、发育、繁殖的阶段不同而分 为滋养体、裂殖体和配子体3个时期或阶段,各期疟原虫的形态变化很大。
第9页/共94页
三、疟原虫形态特征
疟原虫的基本结构 •㈠ 核 • 即细胞核或染色质粒。在正常情况下核呈鲜红色,呈圆形或不规则的颗粒状。核

疟原虫镜检技术技术和要求 (王波)_PPT课件

疟原虫镜检技术技术和要求 (王波)_PPT课件
一、镜检疟原虫的重要性
及时发现病人; 开展规范治疗。
高超的镜检能力,不仅对于疟疾防控工作提供 了技术支撑,也为疟疾消除工作提供了科学依据。
二、概述
疟原虫有149种,自然界感染人体的疟原虫只 有四种:即间日疟(Pv)、恶性疟(Pf)、三日 疟(Pm)、卵形疟(Po)四种。
三、疟原虫生活史
1、红细胞外期 2、红细胞内期 3、配子生殖 4、孢子增殖
4、血片需要制作厚、薄血膜。 5、镜检结果需分型。(如果无法确定疟原虫类型,可及时
联系所在辖区疾控中心,进行血片复核) 6、一的制作(具体方法不做介绍)
制作血片的注意事项
血片放置待干时不可倾斜,否则厚血膜中血细胞沉 在一边,可使厚薄不匀。
制成的血膜须完全干燥后,始可进行固定及染色否 则薄血膜中的红细胞边缘皱缩,厚血膜容易在染色 时脱落,而常现网状的背景;反之,血片搁置过久 则有霉菌及枯草杆菌生长,血红蛋白凝固,也不能 使用,不利于镜检。
(二)采血的部位
以耳垂采血为主。 如使用抗凝静脉血,制作的血片容易造成厚血膜
的脱落。
(三)采血的血量
厚血膜血量约为5立方毫米左右(即一小滴),涂成 边缘光滑之圆形,直径约0.8—1.0厘米左右。
薄血膜血量只需0.5-1.0立方毫米左右,过多则血 膜过厚过大。薄膜宜涂成舌状长约2.5厘米,宽约 2厘米。
(五)血片的染色
吉氏染液 保存时间长,染色时间长
瑞氏染液 保存时间短,染色时间短
瑞吉氏
六、镜检工作的一些要求
1、疟原虫镜检工作中,凡是发热病人。疟疾、疑似疟疾、 及不明原因的发热病人均需进行疟原虫镜检。
2、做好镜检登记:凡是镜检疟原虫的均需如实登记,阴、 阳性片保存待复核。
3、每一个月均要向所在的县区疾控中心上报一次镜检数。 包括镜检人数、阳性、阴性数。

疟原虫镜检技术-制片与染色_PPT课件

疟原虫镜检技术-制片与染色_PPT课件
• 染色用水:为了使血膜着色较好,应用pH7.0~7.2水效果
最佳。中性的蒸馏水也可。
缓冲液配制
pH
1/15mol/L 磷酸氢二钠溶液
1/15mol/L 磷酸1
7.0
6.3
3.7
7.2
7.3
2.7
7.4
8.1
1.9
蒸馏水 (ml)
90
90
90
90
染色方法
• 少量血片染色:取吉氏染液1份,加入缓冲液或蒸馏水15 至20份,混合均匀后,滴在厚、薄血膜上,染色20~30分 钟,然后用缓冲液或蒸馏水将血片上的染液冲走,晾干待 检。
血膜的染色
• 染色液的制备:推荐使用吉氏染液。吉氏染剂不仅适用于 厚血膜和批量血膜的染色,而且效果稳定,染色时间和染 液浓度对染色结果影响较小,染色后的血膜保存时间较长, 同时吉氏染剂能长期保存而不变质。
• 吉氏染液配制:吉氏粉 5g,甲醇250ml,甘油250ml。将 吉氏粉置于研钵中,加入少量甘油充分研磨,边加边磨, 至甘油加完为止,倒入500ml有塞玻璃瓶中。在研钵中加 入少量甲醇,洗掉剩余部分,倒入瓶内,再次加甲醇,洗 后再倒入瓶中,至甲醇洗净研钵为止。塞紧瓶塞,充分摇 匀,室温内放置,每天用力摇动溶液5分钟,3天后即可使 用。
注意事项
• 染色效果的好坏与稀释用水的氢离子浓度 (pH)、染液的浓度、染色时温度的高低、 染色的时间长短、染液配制的时间长短等 都有密切的关系,因此,每批血片染色前 要进行试染,以取得更好的染色效果。
染色前血膜的保存
• 血膜制成后,立即将受检者号码写在玻片上,血膜朝下水平插入 标本盒内,让血膜自然干燥后才能染色。
• 血膜放置时间,夏天不宜超过48小时,冬天不宜超过72小时,否 则厚血膜会自然固定而不能溶血,影响镜检。

疟疾镜检的实验室技术ppt课件

疟疾镜检的实验室技术ppt课件
69、在一条长240米的水渠的一边植树,每隔3米植树一棵,如果两头都植树,共植树 () A.81 B.80 C.79
现代化新城的典范。澳大利亚堪培拉除了总理府保留一道围墙外,整座城市不见第二 道围墙。新加坡法律规定,有花园的住宅不允许筑围墙,让花木供路人欣赏,可予减 缴房地产税。
这段文字意在强调: A.中国与外国围墙的区别 B.中国城市建设的理念落后于外国 C.建筑绿色围墙是世界城市建设的主流趋势 D.国外著名城市都实现了人与环境和谐共存
• 亦可用洗涤液清洗,在整个擦洗过程中,应注意避免玻片互相磨擦,而使玻 片面磨毛,以致不堪使用。
疟疾镜检的实验室技术
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采血的部位和方法
• 以耳垂采血为主。 • 以75%酒精棉球消毒耳垂待酒精干后,左手拇指和食指紧
捏耳垂,右手持一次性采血针迅速刺入,适可而止第一 滴血不必擦掉,即可应用。(若由指头取血则受检者痛 楚较大,且易引起创口感染,一投不宜采用。)
141、小张和小赵从事同样的工作,小张的效率是小赵的1.5倍。某日小张工作几小时 后小赵开始工作,小赵工作了1小时之后,小张已完成的工作量正好是小赵的9倍。再 过几个小时,小张已完成的工作量正好是小赵的4倍? A.1 B.1.5 C.2 D.3
142、诉讼:法庭 A.运动:比赛 B.报告:领导 C.教学:课堂 D.结婚:登记
疟疾镜检的实验室技术
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血片的制作1
• 玻片的执持方法: 无论在拭擦玻片,制作血片或染色血片时,手指 仅可夹持玻片两侧缘,切匆触及玻片之上下面以免 手上油脂污及玻片面,使薄血涂布不匀,厚血膜易 于脱落
疟疾镜检的实验室技术
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B.1416 C.4720 D.20295
67、事实上,延期偿债不仅无助于真正缓解地方政府债务风险,在大多数情况下反而 是埋下了威力更为巨大的“定时炸弹”。一旦“借新还旧”成为地方政府的常规做法,后果 更是不堪设想。有鉴于此,中央政府应及时采取强硬手段,制止地方政府继续大唱“拖 字诀”;有关部委也应积极考虑借助资本市场消化地方政府公共债务,以债务证券化等 方式引入民间资本,化解债务风险;地方政府也应适当削减其经济建设职能,实现财 权、事权对等,从根本上消除负债过度的生存土壤。

疟原虫显微镜镜检技术(共74张PPT)

疟原虫显微镜镜检技术(共74张PPT)

正确的推片姿势
取血量及涂片法(涂片操作)
厚血膜 用推 片的一角, 从取血部位刮取约4微升 血量(相当于火柴头 小),使血滴与平置的 载玻片接触,再由里向 外一个方向旋转,转 2~4圈,涂成直径 0.8~1厘米大小圆形厚 血膜,血膜厚薄均匀, 过厚易于脱落,过薄达 不到检出率的要求。
涂制厚、薄血膜的位置
定的实验室检查方法(WS259-2006)。
镜检目的与意义
疟疾诊断标准中把疟疾病例分为疑似病例、 临床病例、确诊病例和带虫者,前两者依 据流行病学史和临床表现即可做出诊断, 而后两者需通过发现病原体方能做出诊断。
通过对发热病人血检达到确诊疟疾病例。 及时发现传染源和明确感染的疟原虫种类, 以能针对虫种选择正确的治疗方案。
(吉氏染色) 散在呈金黄色,集成团块呈黑褐色
在薄血膜上加瑞氏染液5~8滴,染色1~2分钟。 单张血片染色:薄血膜经固定干燥后,用2%吉氏染液稀释液1~2毫升,滴入血片标本上染色30分钟左右; 虫体占红细胞体积的2/3至3/4 虫体较小,圆形,占满胀大的红细胞 涂制成直径1cm的厚血膜由于在制备过程中红细胞已溶解,疟原虫在形态上仍可分辨,但胞浆和胞核不可避免地形成一定程度的固缩。 厚血膜涂在第3格中央,薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部。 在普查时均应查完整个厚血膜,未查见疟原虫则判为阴性。 将瑞氏染剂粉1g置于研钵内,加入15ml甘油充分研磨后,倒入有塞玻璃瓶中,再用500ml甲醇洗出研钵中的甘油溶液,倒入瓶中,摇匀后, 置室温下,每天摇动5分钟,3天后即可使用。
血片的染色
一、吉氏染液母液配制
取吉氏粉克置于研钵中,加少量甘油充分研磨,边加 边磨,至25毫升加完为止,倒入60或100毫升带有玻
塞的有色玻瓶中。在研钵中加少量无水甲醇,洗去甘油浓

疟疾镜检的实验室技术

疟疾镜检的实验室技术

疟疾镜检的重要性
疟疾镜检能够快速、 准确地诊断疟疾,为 及时治疗提供依据。
对于疟疾高发地区, 疟疾镜检是监测和评 估疟疾流行情况的重 要手段。
通过疟疾镜检,可以 及早发现疟疾,防止 病情恶化,减少并发 症的发生。
疟疾镜检的历史与发展
疟疾镜检最早可追溯到19世纪末期,当时使用简单的显微镜观察血液样本。
免疫学检测
检测方法
采用酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫荧光抗体试验(IFA)等方法检测血液中疟 原虫抗原或抗体。
检测原理
利用特异性抗体与疟原虫抗原结合的原理,通过显色反应或荧光标记来判断疟原 虫的存在。
03
疟疾镜检的步骤与操作
样本采集与处理
采集时间
选择疟疾感染后红细胞期, 即发热后2-3天采集样本, 此时疟原虫数量最多,检 出率最高。
改进样本处理方法,提高疟原虫 的提取和富集效果,降低背景干
扰,提高检测灵敏度。
特异性抗体标记
利用特异性抗体标记疟原虫,降 低非特异性染色,提高检测特异
性。
基因检测技术
利用基因检测技术,对疟原虫基 因进行检测,提高检测的灵敏度
和特异性。
降低操作复杂度与成本
简化操作流程
优化检测流程,减少操作步骤,降低操作复杂度。
采集部位
通常采集静脉血液,常用 肘静脉或耳垂。
采集量
根据检测需求,一般采集 5-10ml血液。
血液样本处理
离心分离
将采集的血液放入离心管中,以 一定速度离心,使红细胞下沉, 分离出血浆和白细胞层。
制备涂片
用毛细管吸取白细胞层中的疟原 虫,均匀涂在载玻片上,晾干后 进行显微镜检查。
显微镜检查
显微镜类型
镜检过程需要经过多个步骤,包括血液采集、制片、染色和观察等,操作较为复杂。

疟原虫的镜检技术ppt课件

疟原虫的镜检技术ppt课件

间日疟原虫雄配子体
恶性疟雌(大)配子体形态
形状:新月形,两 端稍尖。
胞浆:深蓝色。 核:一个,较小,
致密,深红色, 位于中央,核周 可见透明不染色 带。 疟色素:黑褐色, 密布于核的周围。
薄血膜恶性疟雄(小)配子体形态
形状:腊肠形,两端钝 圆。
胞浆:浅蓝色或淡紫红 色。
核:一个,较大,疏松, 位于中央,浅红色, 核周可见不染色带。
单张血片染色:将处理好的血膜,加姬氏母液1-2滴,加中 性蒸馏水15-30滴,染色30分钟左右,然后用清水轻轻将片上 的染液冲洗干净,晾干镜检。
较理想的染色结果是红细胞为淡红或淡紫红色,疟原虫的 胞质呈蓝色,核为紫红色,疟色素为棕褐色。
吉氏染液浓度
门诊染色
操作1 (快染) 配制5%染液,(每张血片约需染 液2ml):量筒内量2ml缓冲液或新鲜凉开水, 直接滴加吉氏原液7滴,混匀,滴入待染标本的 厚薄血膜上,染色10min,清水细缓冲洗,晾干 镜检。(一般配制5%-10%,染色时间短,一定掌握好时间。)
薄血膜中常见的血液成分
嗜酸性粒细胞
中 性 粒 细 胞
血小板
单核细胞
淋巴细胞
红细胞
薄血膜疟原虫形态
间日疟 环状体
感染的红细胞:胀大 不明显,基本正常。
虫体大小:较大,约 为红细胞直径1/3。
胞浆:环状,浅蓝色。 核:红色,一个,偶
有二个。 疟色素:无。
约占寄生红细胞的1/3,很少见到一个红细胞 寄生2个环状体和一个环状体有2个核。
体积小。 核:一个,红色。 疟色素:较细的黑褐色颗
粒,常集成块。
恶性疟大滋养体
间日疟未成熟裂殖体
红细胞:胀大,褪色, 可有薛氏小点。
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以推片左端中央沾取薄血膜所需之血,与载玻片约成25一45度角,使血滴向二旁扩展至一定宽度时,
血片的制作--薄血膜涂制 立即向左边轻轻迅速推出即成薄血膜。推时速度之快慢和角度均影响血膜的厚薄程度,最理想的薄血
膜是一层血细胞,血细胞的分布排列比较均匀。无裂缝,无空隙。
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血片的编号
血片编号可根据实际操作进行。 号码必须不易脱落,建议用铅笔在薄血膜上编号。
疟疾镜检的实验室技术
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血片的清洁
新的载皮片必须洗洁净后才可直接浸于 9 5%的酒精中,然后一一取出,用软 而洁净并没有棉花毛的细布擦干,擦亮,妥善放置,勿使灰尘沾污。
用过的载玻片可用5%之煮沸肥皂水洗涤,将玻片一张一张的放入其中待肥皂 水稍冷后,用毛刷或纱布细心拭擦。再用清水漂洗干净并以纱布擦干,然后 浸于 95%酒精内脱脂,照上述法处理,
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血片的制作1
玻片的执持方法:
无论在拭擦玻片,制作血片或染色血片时,手指 仅可夹持玻片两侧缘,切匆触及玻片之上下面以免 手上油脂污及玻片面,使薄血涂布不匀,厚血膜易 于脱落
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血片的制作-厚血膜涂制
取洁净的载玻片和推片各一张载玻片放桌上,推片以右手拇指和食指持其二侧,以左端下角从受检者 之耳垂沾取血滴,在载玻片之适当位置, 自内向外回转扩大,涂成厚血膜,使厚薄均匀。涂毕后用 干棉球拭掉推片上和耳垂上之残留小量血液。
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采血的时间---恶性疟
恶性疟原虫,从理论上说,因为恶性原虫的裂体生殖是在内脏的毛细血管内 进行的,所以在发作之前,患者的末稍血液中不易查到。但实际情况不尽如 此,一般在受染者的末稍血液中,随时能见到少数恶性疟原虫的环状滋养体 ,
虽然如此,较理想的取血时间,是在发作后的20小时左右,因为这个时候, 环状滋养体虽已滋长发育至最高峰,但尚未回至内脏的毛细血管中去进行裂 体生殖。
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薄血血片膜的用固甲定和醇脱固膜定 现场检查的血片厚血膜可以不脱血膜,直接染色。
保存时间较长的标本片厚血膜要脱血膜后保存。
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平血放片制、作有的注盖意、事项防止灰、尘和植物孢子污染。 防止苍蝇、蟑螂等昆虫吮吸 自然干燥,不能太阳晒和火烤
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制作血片的注意事项
制成的血片切勿用火烤、日晒或放在新购置之标本盒内,以免血红蛋白凝固无法脱除。血片 放置待干时不可倾斜,否则厚血膜中血细 胞沉在一边,可使厚薄不匀。此外还要防止苍蝇 吮吸血膜和灰尘污染血片。
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谢应当考虑在什么时候取血 较为适宜,尤在确定不下虫种和查不到疟原虫的疑似疟疾 患者的情况下。
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采血的时间---间日疟
间日疟原虫及三日疟原虫,在患者刚发冷发热以后,大部是在环状滋养体期,故这一时期区别疟原虫种 类是不容易的。虽在—般情况下,随便什么时间检查感染者的末稍血液, 多少能查到各个时期的原虫 ,但适当的取血时间,一般是在患者发作数小时至十余小时,即已滋养发育至具有易于鉴别的晚期滋养 体期.
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血片的染色
吉氏染液的成份 原料:吉氏染粉 10
中性甘油 纯甲醇
g 500 ml
500 ml
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将吉吉氏氏液染染液色方配法成3%的稀释液 水97 ml + 3 ml吉氏液 PH7.0--7.2 染色25—30分钟
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影响染色效果的因素
染料和溶剂的质量 染液的新旧 染液稀释后的使用时间 染液的稀释浓度 染色时间:根据染液质量、新旧、浓度和气温 染色用水PH7.0—7.2
亦可用洗涤液清洗,在整个擦洗过程中,应注意避免玻片互相磨擦,而使玻 片面磨毛,以致不堪使用。
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采血的部位和方法
以耳垂采血为主。
以75%酒精棉球消毒耳垂待酒精干后,左手拇指和食指紧 捏耳垂,右手持一次性采血针迅速刺入,适可而止第一滴 血不必擦掉,即可应用。(若由指头取血则受检者痛楚较 大,且易引起创口感染,一投不宜采用。)
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采血的血量
厚血膜血量约为5立方毫米左右(即一小滴),涂成边缘光 滑之园形,直径约0.8—1.0厘米左右。
薄血膜血量只需0.5-1.0立方毫米左右,过多则血膜过厚过 大。薄膜宜涂成舌状长约2.5厘米,宽约2厘米
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采血的时间
进行疟疾普查时,在同一时间内常常需要检查很多居民, 故一般无法考虑取血的时间。
环状滋养体的数量与构造,有助于疟原虫种类的鉴别。恶性疟原虫的配子体 很易识别,但在初发时,一般需要在发作八日后才能在末稍血液中出现,应 当注意
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薄血膜宽2cm,长2.5cm
厚血厚膜、直径薄0.血8-1膜cm 的形状和位置
假定将玻片划成三格等分,则厚血膜应位于中格靠右侧线处,薄血膜则从玻片中央起至左格 中部止,右端空格供记录姓名,编号或贴标签之用(如图)
制成的血膜须完全干燥后(自然情况下约4-12小时才能全干燥;必要时,可置于3 7℃的暖 箱中,促其速干)始可进行固定及染色否则薄血膜中的红细胞边缘皱缩,厚血膜容易在染色 时脱落,而常现网状的背景;反之;血片搁置过久则有霉菌及枯草杆菌生长,血红蛋白凝固 ,也不能使用,因此不利于镜检。
若把未经固定的血片能盛于氯化钙的干燥器内,然后放入冰箱中,可保存3年之久,并仍可 较满意的染色。
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