细胞器分离
细胞器分离
(5) 1／15 mol／L磷酸缓冲液 (pH 6.8)： 1／15 mol／L磷酸二氢钾(KH2PO4) 50 mL 1／15 mol／L磷酸氢二钠(Na2HPO4) 50 mL (6) 卡诺(Cornay)固定液： 无水乙醇 6 mL 冰醋酸 1 mL 氯 仿 3 mL (7) 生理盐水
2．器具： 解剖刀，剪刀，漏斗，玻璃匀浆器，尼 龙织物，刻度离心管，显微镜，冷冻高 速离心机。
鼠肝线粒体的分离
【材料 材料】 材料 鼠肝脏或猪肝脏。 【实验用品 实验用品】 实验用品 1．试剂： (1) 0.25 mol／L蔗糖+0.01 mol／L三羟甲基氨基甲烷 (Tris)一盐酸缓冲液(pH 7.4)： 0.1 mol／L三羟甲基氨基甲烷溶液 10 mL 0.1 mol／L盐酸 8.4 mL 加双蒸水到100 mL，再加蔗糖使浓度为0.25 mol／L。 (2) 0.34 mol／L蔗糖+0.01 mol／L Tris一盐酸缓冲液 (pH7.4)，配法同上。
2．差速离心： 将0.34 mol／L蔗糖溶液4.5mL放入离 心管，然后沿管壁小心地加入4.5mL鼠肝 匀浆覆盖于上层。用冷冻控温的高速离 心按下图顺序进行差速离心。
分离细胞核：
鼠肝匀浆700×g离心10 min 沉淀(细胞核及质膜碎片) 上清液(1)
洗涤(0.25 mol／L预冷蔗糖溶液5 mL洗涤2次， 每次1000×g离心15 min。 沉淀(细胞核及质膜碎片) 清(1)合并 上清液(2)→与上
06实验六--细胞器的分离与观察nj
洋葱内表皮细胞的线粒体分布
植物根尖液泡的中性红染色
三、材料和试剂
材料：小鼠的肝脏
器材：高速冷冻离心机、天平、显微镜、Eppendorf 管、冰块、冰盒、载玻片、盖玻片、玻璃匀浆器
试剂：生理盐水、0.25mol/L蔗糖溶液、 0.34mol/L蔗糖溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液、 0.88mol/L蔗糖溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液、 95%乙醇溶液、丙酮、PBS液、 甲基绿-派洛宁染液、中性红-詹纳斯绿染液。
(3)分析：分级分离得到的组分，可用细胞化学和 生化方法进行形态和功能鉴定。
Unna染色法（甲基绿-派洛宁染色）
细胞核分析：甲基绿-派洛宁对DNA和RNA有选择性 的染色效果。核酸是酸性的，它们对于碱性染料甲 基绿和派洛宁的亲和力不同，而使这两种染料对两 类核酸具有了选择性。DNA被甲基绿染成绿色，RNA 被派洛宁染成红色，这样就能使细胞中两种核酸分 布显示出来。
分离细胞器最常用的方法是将组织制成匀浆， 在均匀的悬浮介质中用差速离心法进行分离， 其过程包括组织细胞匀浆、分级分离和分析三 步，这种方法已成为研究亚细胞成分的化学组 成、理化特性及其功能的主要手段。
(1)细胞匀浆(Homogenization)：低温条件下， 将组织放在匀浆器中，加入等渗匀浆介质(即 0.25mol／L蔗糖)进行破碎细胞使之成为各种细 胞器及其包含物的匀浆。
活体染料之所以能固定、堆积在细胞内某些特殊 的部分，主要是染料的“电化学”特性起重要作 用。碱性染料的胶粒表面带阳离子，酸性染料的 胶粒表现带有阴离子，而被染的部分本身也是具 有阴离子或阳离子，这样它们彼此之间就发生了 吸引作用。
ห้องสมุดไป่ตู้
中性红-詹纳斯绿染色
分离细胞匀浆中各种细胞器的方法
分离细胞匀浆中各种细胞器的方法
分离细胞匀浆中各种细胞器的方法有多种，以下列举其中三种：
1. 离心分离法：将细胞悬浮液放入离心管中，利用高速离心机在不同的转速下进行离心处理，离心的时间和速度可以调节，以分离出不同大小或密度分布的细胞器。
2. 差速离心法：将细胞膜破坏后，形成由各种细胞器和细胞中其他物质组成的匀浆，将匀浆放入离心管中，用高速离心机在不同的转速下进行离心处理，就能将各种细胞器分离开。
3. 超声波破碎法：利用超声波的高强度振动作用于细胞组织或器官，使细胞破裂、组织或器官分解，从而分离出不同的细胞器。
请注意，这些方法各有优缺点，应结合实际需求选择最适合的方法。
如需了解更多信息，建议咨询生物学专家或查阅相关文献资料。
分离细胞中细胞器的常用方法
分离细胞中细胞器的常用方法
嘿，你知道不？分离细胞中细胞器那可是个超厉害的事儿！咱先说说步骤哈。
首先得把细胞给破碎了，这就好比把一个大城堡给拆了，露出里面的各种小房间，也就是细胞器。
可以用超声波破碎法、匀浆法啥的，把细胞弄破，让细胞器跑出来。
然后呢，根据不同细胞器的大小、密度啥的，用离心法把它们分离开来。
就像在游乐场玩旋转木马，不同重量的小朋友会被甩到不同的位置。
注意事项可不少呢！破碎细胞的时候可不能太用力，不然细胞器都给弄坏了，那可就悲催啦！离心的时候速度和时间也得把握好，不然也分不好。
这过程安全不？那肯定得小心啊！就像走钢丝一样，稍微不注意就可能掉下去。
不过只要严格按照步骤来，还是挺安全稳定的。
那这分离细胞器有啥用呢？应用场景可多啦！可以研究细胞器的功能啊，好比探索一个个神秘的小王国。
还能分析疾病的发生机制，为治疗疾病找到新办法，哇塞，这多棒啊！优势也很明显啊，能让我们更清楚地了解细胞的内部结构和功能，就像有了一把神奇的钥匙，可以打开细胞这个神秘宝库的大门。
举个实际案例吧，科学家们分离出线粒体来研究能量代谢，就像找到了一个超级发电机，搞清楚了它是怎么工作的。
这效果杠杠的！
分离细胞中细胞器真的超赞，能让我们更好地了解生命的奥秘。
这绝对是个超厉害的技术，大家都应该重视起来。
细胞器分离
差速离心法逐级分离出各个细胞器
低速离心
中速离心
高速离心
超速离心
大颗粒 中颗粒 小颗粒
不同大小的生物颗粒可以利用不同的离心机分离：普 通离心机（8000r/min）可分离直径大于1µm的生物颗 粒；高速离心机（8000-25000r/min）可分离直径为 0.1-10µm的生物颗粒；超速离心机（25000-80000 r/min）可分离直径为3.2-100nm的生物颗粒和生物大 分子。为了限制和保持细胞亚组分内酶的生物活性， 有的离心机还装有低温控制装置（0-4℃）。
离心场的离心力常用重力加速度g（9.8 m/s2）的倍 数来表示，而实际操作时人们习惯用r/min（离心机转
子每分钟旋转的圆周数）来掌握。两者关系如下：
离心力g=1.11×10-5n2r
注：r为离心机中轴到离心机远端的距离，n为离心机 每分钟的转速（r/min）
『实验内容和方法』
1、低速分离细胞核
（1） 将小鼠杀死，取出肝脏，剪成数小块，用预冷的生理 盐水反复洗涤除去血污，用滤纸吸干表面的水分。
（2）称取肝组织1g，取8ml预冷的匀浆介质，先加入少量于 小烧杯中，尽量剪碎肝组织，再将剩余的预冷匀浆介质加 入其中。
（3）匀浆，用3-4层纱布（先用少量匀浆介质润湿）过滤匀 浆介质至离心管中(可先过滤至皿中)，离心管内匀浆液为 6-8ml。
（4）普通离心机里以2500r/min的速度离心15分钟，缓缓吸 取上清液，移入eppendorf管中，放在有冰块的器皿中，等 分离线粒体时用（直接进入第二大步）。同时制一张上清 液涂片A，做好记号，自然干燥。
（5）用8ml离心介质悬浮沉淀物，用吸管混匀，以2500r/min 的速度离心15分钟，吸弃上清液，沉淀物加入0.5ml离心介 质，用吸管充分吹打成悬液，制备1张涂片B，做好标记， 自然干燥。
分离细胞器的方法
分离细胞器的方法细胞器是细胞内的重要结构，它们在细胞的生存和功能执行中起着至关重要的作用。
分离细胞器是细胞生物学和生物化学研究中的重要操作，可以帮助科研人员更好地了解细胞器的结构和功能。
下面将介绍几种常用的分离细胞器的方法。
一、差速离心法。
差速离心法是一种常用的分离细胞器的方法，通过利用细胞器的不同密度来进行分离。
首先，需要将细胞悬液置于离心管中，然后进行低速离心，使细胞器沉淀到离心管底部。
接下来，将上清液转移到另一个离心管中，进行高速离心，这样可以将不同密度的细胞器分离出来。
通过这种方法，可以获得相对纯净的细胞器样品。
二、梯度离心法。
梯度离心法是利用密度梯度离心离心细胞器的方法。
首先，需要制备密度梯度离心液，然后将细胞悬液均匀地加在离心管上，进行超速离心。
在离心过程中，不同密度的细胞器会在密度梯度中分层沉淀，从而实现分离。
这种方法可以得到高纯度的细胞器。
三、超声破碎法。
超声破碎法是一种利用超声波对细胞进行破碎，分离细胞器的方法。
首先，将细胞悬液置于超声破碎仪中，经过超声波的作用，细胞膜会破裂，释放出细胞器。
然后，通过差速离心或梯度离心的方法，可以将细胞器分离出来。
这种方法操作简单，适用于一些对纯度要求不高的实验。
四、亲和层析法。
亲和层析法是利用生物分子之间的特异性相互作用来分离细胞器的方法。
通过将含有特定亲和基质的层析柱与混合细胞器悬液一起进行层析，利用细胞器与亲和基质之间的特异性结合来实现细胞器的分离。
这种方法可以得到高纯度的细胞器样品，适用于对细胞器纯度要求较高的实验。
五、离心上清法。
离心上清法是一种简单快捷的分离细胞器的方法。
首先，将细胞悬液进行差速离心，将上清液收集起来。
然后，通过连续的离心步骤，可以逐渐将不同密度的细胞器分离出来。
这种方法操作简单，适用于一些对纯度要求不高的实验。
总结。
以上介绍了几种常用的分离细胞器的方法，每种方法都有其特点和适用范围。
在实际操作中，可以根据实验的需要选择合适的方法进行细胞器的分离，以获得满意的实验结果。
分离细胞器常用的方法
分离细胞器常用的方法
分离细胞器常用的方法有以下几种：
1. 细胞破碎法：将细胞破碎，使得细胞器释放出来。
常用的方法包括机械破碎、超声破碎和液氮冷冻破碎等。
2. 差速离心法：通过差速离心，根据细胞器的大小和密度的不同，将其分离出来。
常用的差速离心法有差速离心、密度梯度离心和梯度离心等。
3. 亲和纯化法：利用特定染色剂或抗体与目标细胞器结合，然后通过凝胶过滤或亲和层析等方法，将目标细胞器从混合物中分离纯化。
4. 细胞器标记法：通过将细胞器标记上特定的荧光染料或放射性标记物，然后使用荧光显微镜或放射性探测技术，对细胞器进行定位和分离。
5. 电泳法：根据不同细胞器的电荷、大小和形状等特性，利用电场将其分离出来。
常用的电泳方法有凝胶电泳、等电聚焦电泳和免疫电泳等。
这些方法可以单独使用，也可以结合使用，根据需要选择适合的方法进行细胞器的分离和纯化。
不同细胞器分离方法-概述说明以及解释
不同细胞器分离方法-概述说明以及解释1.引言1.1 概述在细胞生物学中，细胞器是细胞内进行特定功能的结构和器官。
为了更深入地了解细胞内各个细胞器的功能和相互作用，研究人员需要将细胞内的不同细胞器进行分离和纯化。
细胞器分离方法是一种将细胞内各个细胞器分离出来的实验技术，它可以使我们更好地研究和理解细胞器的功能。
本文将着重介绍三种常见的细胞器分离方法，分别是方法A、方法B 和方法C。
每种方法都有其独特的优点和缺点，我们将对其进行详细的介绍和比较。
通过对这些方法的了解，我们可以选择适用于不同研究场景的细胞器分离方法。
在文章的结论中，我们将对这些方法进行比较，并针对不同研究场景给出合适的选择建议。
此外，我们还将探讨细胞器分离方法的发展趋势和展望，展望未来研究中可能出现的新的分离方法和技术。
通过本文的阅读，相信读者能够对细胞器分离方法有一个清晰的了解，并且能够根据自身研究的需求选择适合的方法，为细胞器研究提供有力的支持。
1.2文章结构文章结构部分的内容可以按照以下方式编写：1.2 文章结构本文分为引言、正文和结论三个部分。
引言部分主要概述了本文的主题内容，介绍了细胞器分离方法的重要性和研究背景。
同时，明确了本文的目的，即探讨不同细胞器分离方法的优缺点，并提供适用场景的选择指南。
正文部分包括了三种不同的细胞器分离方法(A、B、C)，每种方法都有对应的方法介绍、优点和缺点的详细说明。
这些内容的详尽分析将有助于读者全面了解各种方法的特点和适用范围。
结论部分是对正文部分所提及的细胞器分离方法进行比较和总结。
首先，对各种方法的优劣进行评估，并指出在不同的实验场景下，应选择哪种方法；其次，对细胞器分离方法的发展趋势和展望进行展示，包括当前研究热点、可能的改进和未来的发展方向。
通过以上结构安排，本文将系统性地介绍不同细胞器分离方法的相关知识，并帮助读者了解如何选择适合自己研究需要的方法。
同时，对细胞器分离方法的比较和展望，将为相关研究领域提供新的思路和发展方向。
细胞器的分离实验原理及步骤
实验二十二细胞器的分离一．实验目的：以大鼠肝为例，介绍用差速离心法分离细胞器的一般操作程序二．实验原理：（略）三．试剂和器材（一）试剂：１.生理盐水2 . 0.25mol/L 蔗糖-0.01mol/L Tris-盐酸缓冲液（pH7.4）。
配法：0.1mol/L Tris 10ml 0.1mol/L盐酸 8.4ml 加双蒸水到100ml。
再向上述缓冲溶液中加蔗糖，使浓度为0.25mol/L。
蔗糖为密度梯度离心用D（+）蔗糖。
3. 0.34mol/L 蔗糖-0.01mol/L Tris-盐酸缓冲液（pH7.4）。
4. 0.34mol/L 蔗糖-0.5mmol/L Mg（AC）2溶液，用1mol/L NaOH调pH到7.4。
5. 0.88mol/L 蔗糖-0.5mmol/L Mg（AC）2溶液， pH7.4。
6. RSB溶液：0.01mol/L Tris-盐酸缓冲液（pH7.2）,0.01mol/L NaCl，1.5mmol/L MgCl27. 比重d20=1.18的蔗糖溶液（51.5g/L）。
比重d20=1.16的蔗糖溶液（51.0g/L）。
8. 1%詹纳斯绿（Janus green B）染液，用生理盐水配制9. 甲基绿-派洛宁染液。
配法：甲液：2%甲基绿水溶液 14ml 5%派洛宁水溶液 4ml 蒸馏水 16ml 乙液：0.2mol/L 醋酸缓冲液（pH4.8）16ml将甲液和乙液混合均匀，此染液不宜久置。
10. 卡诺固定液无水乙醇 6ml 冰醋酸 1ml 氯仿 3ml11. 丙酮。
实验六细胞器的分离与观察课件
（3）纯化：将沉淀用5倍体积0.34mol/L蔗糖 溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液混悬，用长针头 注射器再混悬液下轻轻加入4倍体积 0.88mol/L蔗糖溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液。 尽量使两种溶液明显分层。以 1500g(4752rpm)离心15～20min。弃上清液， 沉淀即为经过纯化的细胞核，用PBS溶液悬浮 ，4˚C保存。
（2）离心：低温离心机（4℃）中进行。
每次离心前一定要在天平（托盘天平）上将 两离心管配平。第一次以600g(3005rpm)离心 10min。将其上清夜移入Eppendorf管中，盖 好盖子置于冰浴中，留待后面使用（分离线 粒体）。沉淀使用1ml预冷的0.25mol/L蔗糖 溶液离心洗涤2次，每次1000g(3880rpm)离心 10min。
四、实验方法与步骤
• 1.细胞核的分离 （1）组织匀浆:将饥饿24h的大白鼠处死,立即剪开 腹部,迅速取出肝组织浸入预冷的生理盐水,洗去血 污,用滤纸吸干。称取0.5g肝组织,在小烧杯中剪碎, 用预冷的0.25mol/L蔗糖溶液洗涤数次。将烧杯中的 悬浮肝组织倒入匀浆管中进行匀浆,匀浆过程要在冰 浴中进行。匀浆完毕,移入1.5ml离心管中。
活体染料之所以能固定、堆积在细胞内某些特 殊的部分，主要是染料的“电化学”特性起重 要作用。碱性染料的胶粒表面带阳离子，酸性 染料的胶粒表现带有阴离子，而被染的部分本 身也是具有阴离子或阳离子，这样线粒体分析：詹纳斯绿（Janus green B） 是对线粒体专一的活细胞染料，毒性很小，属 于碱性染料，解离后带正电，由电性吸引堆积 在线粒体膜上。由于线粒体内具有细胞色素氧 化酶系，能使詹纳斯绿保持在氧化状态（淡蓝 绿色）。中性红为弱碱性染料，对液泡系(即 高尔基体)的染色有专一性，将活细胞中的液 泡系染红色。
细胞器的分离、纯化
1．取去叶脉的新鲜菠菜5g于研钵中，加入 0.35mol/l NaCl 15ml研磨。注意开始研磨时也是 先加入少许介质，磨碎后再加入剩余的。 2．绿色的匀浆液用尼龙网(200目)过滤．滤液分 别转入两支干净的离心管中，以1000rpm离心4分 钟．除去沉淀。 3．上清液在高速低温离心机上以3000rpm离心 5分钟，所得沉淀即为叶绿体。 4．用0.35mol/lNaCl液(视沉淀多少)稀释，置冰 箱中保存备用，在干净的载玻片上滴一滴叶绿体悬 液，加盖玻片(需特别干净．线粒体离心匀浆介质： 0.25 M蔗糖。0.067 M PH7.2PBS， 0.05M EDTA，0.75mg／ml牛血清白蛋白。 2．l％Janus green B的O．25M蔗糖溶液。 3．0.05M Tris—HCl液体 PH 8.0 0.02M Tris 55ml 0.1N HCl 55ml 蒸馏水200ml 4．0.35mol/lNaCl
学习细胞器的分离及纯化的 一般原理和方法。
细胞分级分离法是一种通过离心从而分离细胞内不 同结构成份的细胞器(包括核、叶绿体、线粒体、微 体等)以研究其形态结构，化学组成成份和生理活性 的方法。 这个方法包括匀浆化，分级分离，分析三个步骤。 通过匀浆化得到细胞匀浆液；把匀浆液放在一定的 液体环境下，在离心机中进行离心分离处理。因为 离心力的作用，可以把细胞内比重和大小不同的各 种结构分开。
细胞器的沉降速度取决于辐射向外的离心场，我们 通常用相对离心场表示：
RCF=1．11×10-5· n2r
其中RCF为相对离心场(单位为g)；n为转数(单位 为转数／分)；r为离心半径(单位是cm)
(一)材料：新鲜菠菜 (二)器械：显微镜、高速低温离心机、 普通离心机、离心管、200目的尼龙 网、漏斗、烧杯、组织研磨器等。
实验六细胞器的分离与观察
0.34mol/L蔗糖溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液、
0.88mol/L蔗糖溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液、
95%乙醇溶液、丙酮、PBS液、
甲基绿
Байду номын сангаас
-派洛宁染液、中性红-詹纳斯绿染液。
四、实验方法与步骤
1.细胞核的分离
（1）组织匀浆:将饥饿24h的大白鼠处死,立即剪开腹 部,迅速取出肝组织浸入预冷的生理盐水,洗去血污,用滤 纸吸干。称取0.5g肝组织,在小烧杯中剪碎,用预冷的 0.25mol/L蔗糖溶液洗涤数次。将烧杯中的悬浮肝组 织倒入匀浆管中进行匀浆,匀浆过程要在冰浴中进行。 匀浆完毕,移入1.5ml离心管中。
细胞器分离过程中的悬浮介质常使用水溶性的 蔗糖溶液，因为它比较接近细胞质的分散相， 在一定程度上，能保持细胞器的结构和功能， 保持酶的活性，避免细胞器的聚集。
沉淀
转速x时间
A 150g x 20min
B 1000g x 20min
C 3000g x 6min
D 10000g x20min
E 105000g x120min
（2）离心：低温离心机中进行。 每次离心前 一定要在天平（托盘天平）上将两离心管配平。 第一次以600g离心10min。将其上清夜移入 Eppendorf管中，盖好盖子置于冰浴中，留待 后面使用(分离线粒体)。沉淀使用1ml预冷的 0.25mol/L蔗糖溶液离心洗涤2次，每次 1000g离心10min。
r为离心机中轴到离心管远端
的距离
n为离心机每分钟的转速
（r/min）
1000g=9.8牛（N）
离心技术类型
离心技术可用于细胞器的分离。
离心技术一般包括：差速离心和密度梯度离 心
实验六 细胞器的分离与观察1.jsp
注射器再混悬液下轻轻加入4倍体(至1ml)积
0.88mol/L蔗糖溶液-0.5mmol/Mg（Ac)2溶液。尽 量使两种溶液明显分层。以1500g （4752r/min ） 离心16min。弃上清液，沉淀即为经过纯化的细 胞核，用PBS溶液悬浮，4˚C保存。
（4）鉴定：将分离纯化的细胞核制成涂片，空气
中性红-詹纳斯绿染色
詹纳斯绿（Janus green B）是对线 粒体专一的活细胞染料，毒性很小，属 于碱性染料，解离后带正电，由电性吸 引堆积在线粒体膜上。由于线粒体内具 有细胞色素氧化酶系，能使詹纳斯绿保 持在氧化状态（淡蓝绿色），在胞质区 詹纳斯绿则被还原为无色。中性红的阳 离子可与带有一定负电荷的原生质及细 胞核结合，而使原生质与细胞核染色。
(2)鉴定:在干净的载玻片中央滴加1～2滴中性红詹纳斯绿染液,用牙签挑取沉淀物均匀涂片。盖上
盖片,染色5min,镜检。
线粒体蓝绿色，呈小棒状或哑铃状。
五、 实验结果
核DNA呈蓝绿色，核仁和混杂的细胞质RNA呈 红色。 线粒体蓝绿色，呈小棒状或哑铃状。 观察每个视野中所见完整细胞核和线粒体的 数量及纯度。
的0.25mol/L蔗糖溶液洗涤数次。30滴0.25mol/L蔗糖
溶液悬浮肝组织倒入匀浆管中进行匀浆,匀浆过程要在
冰浴中进行。匀浆完毕,过滤，移入1.5ml（1.5ml）离
心管中。
（2）离心：低温离心机中进行。 每次离心前一
定要在天平（托盘天平）上将两离心管配平。第
一次以600g（3005 r/min ）离心10min。将其上
(3)分析 分级分离得到的组分，可用细胞化
学和生化方法进行形态和功能鉴定。
Unna染色法（甲基绿-派洛宁染色）
科学家分离各种细胞器的方法
科学家分离各种细胞器的方法
科学家分离各种细胞器的方法是指通过使用特定的技术，将不同的细胞器分离出来。
细胞器是细胞的结构单位，它可以完成具有特定功能的生理过程。
它们是细胞的组成部分，在细胞的正常功能和形态下起着重要作用。
因此，科学家需要分离各种细胞器以了解它们之间的相互作用以及揭示它们在细胞中所发挥的重要功能。
科学家分离各种细胞器的方法主要有三类：利用物理属性，化学属性和生物学属性。
首先，科学家可以利用物理属性来分离各种细胞器。
物理属性是指细胞器的大小、形状、密度和磁性等特征。
比如，科学家可以使用离心分离器，根据细胞器的大小和密度来分离不同的细胞器。
此外，科学家还可以使用电泳技术，根据细胞器的磁性来分离不同细胞器。
其次，科学家可以利用化学属性来分离各种细胞器。
化学属性是指细胞器内的蛋白质、核酸或其他化学物质的组成、结构和表面特征等特征。
比如，科学家可以使用沉淀法，根据细胞器内的蛋白质或其他特定化学物质的特征来分离不同的细胞器。
最后，科学家也可以利用生物学属性来分离各种细胞器。
生物学属性是指细胞器与外界物质的相互作用特性，
包括细胞器的受体特异性、吸附能力和敏感性等特征。
比如，科学家可以使用表面层析法，根据细胞器与外界物质的相互作用特性来分离不同的细胞器。
总之，科学家分离各种细胞器的方法包括利用物理属性、化学属性和生物学属性。
这些方法都可以帮助科学家深入了解细胞器的功能，进而更好地探索细胞的结构和功能。
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（5）用8ml离心介质悬浮沉淀物，用吸管混匀，以2500r/min 的速度离心15分钟，吸弃上清液，沉淀物加入0.5ml离心介 质，用吸管充分吹打成悬液，制备1张涂片B，做好标记， 自然干燥。
（2）线粒体：取步骤(3)中，上清液和沉淀物悬液 分别做涂片C和D，马上各滴1滴1%詹纳氏绿B染液 染色20分钟，盖上盖玻片镜检观察。
『作业』
绘图：A,B,C,D载玻片上观察到的细胞器（标 注所拍摄到的细胞器类型，器
低速离心
中速离心
高速离心
超速离心
大颗粒 中颗粒 小颗粒
不同大小的生物颗粒可以利用不同的离心机分离：普 通离心机（8000r/min）可分离直径大于1µm的生物颗 粒；高速离心机（8000-25000r/min）可分离直径为 0.1-10µm的生物颗粒；超速离心机（25000-80000 r/min）可分离直径为3.2-100nm的生物颗粒和生物大 分子。为了限制和保持细胞亚组分内酶的生物活性， 有的离心机还装有低温控制装置（0-4℃）。
『实验原理』 利用各种物理方法如研磨、超声振荡和低渗等将
组织制成匀浆，细胞中的各种亚组分即可从细胞中释 放出来。由于细胞内各种颗粒成分的大小、形状和密 度不同，可以利用不同的离心方法进行分离，通过组 织匀浆、分级分离和分析三步完成。
分离的方法主要有差速离心和密度梯度离心两种。
差速离心法：由低速到高速逐级沉淀分离，使较大的 颗粒先在较低转速中沉淀，再用较高转速将原先悬浮 于上清液中的较小颗粒分离沉淀下来，从而使各种亚 细胞组分得以分离，必须反复悬浮和离心加以纯化。
2、高速离心分离提取线粒体
（1）将装有上清液的eppendorf管取出平衡，在冷冻高速离心机 上以15000r/min离心20分钟，缓缓吸去上清液，留取沉淀物。 如沉淀的表面有1层浅色的疏松层时，则应连同上清液一起小 心吸去。
（2）沉淀再加入预冷离心介质悬浮，用tip头吹打后再以 15000r/min离心20分钟。
（3）将上清液吸入另一eppendorf管中，留存沉淀物中加0.1ml 的匀浆介质混匀成悬液（沉淀充分吹散）。eppendorf管同时 置于冰浴中，待制片时鉴定用。
3、分离物鉴定
（1）细胞核：将涂片A、B浸入甲醇-冰醋酸液中固 定15分钟，充分吹干，滴姬母萨染液染色10分钟。 自来水冲洗，吹干，镜检。
（1） 将小鼠杀死，取出肝脏，剪成数小块，用预冷的生理 盐水反复洗涤除去血污，用滤纸吸干表面的水分。
（2）称取肝组织1g，取8ml预冷的匀浆介质，先加入少量于 小烧杯中，尽量剪碎肝组织，再将剩余的预冷匀浆介质加 入其中。
（3）匀浆，用3-4层纱布（先用少量匀浆介质润湿）过滤匀 浆介质至离心管中(可先过滤至皿中)，离心管内匀浆液为 6-8ml。
实验七、 细胞器的分离与观察
『目的要求』 1、掌握细胞器分离的原理（细胞核与线粒体） 2、掌握离心分离细胞器的一般操作程序 『实验用品』
普通离心机、冷冻高速离心机、8ml离心管、匀浆器、 eppendorf管、光学显微镜、解剖工具、纱布、载玻 片、冰块、生理盐水、0.25mol/L蔗糖溶液(匀浆介 质)、0.34mol/L蔗糖溶液（离心介质）、固定液（甲 醇-冰醋酸=3：1）、Giemsa染液、 Janus green B、 小鼠
离心场的离心力常用重力加速度g（9.8 m/s2）的倍 数来表示，而实际操作时人们习惯用r/min（离心机转
子每分钟旋转的圆周数）来掌握。两者关系如下：
离心力g=1.11×10-5n2r
注：r为离心机中轴到离心机远端的距离，n为离心机 每分钟的转速（r/min）
『实验内容和方法』
1、低速分离细胞核