尼氏染色液(亚甲蓝法)操作步骤及注意事项
亚甲基蓝染色液(1%)说明书
亚甲基蓝染色液(1%)说明书
货号：G1303
规格：100ml
保存：室温，避光，12个月。
产品说明：
亚甲基蓝(Methylene blue)又称美蓝、次甲基蓝、次甲蓝等，是一种芳香杂环化合物。
含水亚甲基蓝的分子式为C16H24ClN3O3S，分子量为373.9，CAS号为7220-79-3。
亚甲基蓝染色液常用于丝绸、纸张、细菌、细胞等染色。
因其容易氧化，染色结果不宜长久保存。
操作说明：（仅供参考）
1、样品处理
（1）对于石蜡切片：常规脱蜡复水。
（2）对于冰冻切片：蒸馏水2min。
（3）对于培养细胞：先用4%多聚甲醛固定，然后蒸馏水洗涤2min，最后换用新鲜的蒸馏水，再洗涤2min。
2、美蓝染色
（1）Methylene blue Stain(1%)染色。
（2）用蒸馏水或自来水充分洗涤，进行观察和拍照。
染色结果：
组织或细胞蓝色
注意事项：
1、第一次使用本试剂时建议先取1～2个样品做预实验。
2、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
相关产品：
G1300亚甲基蓝染色液（0.1%）
G1302亚甲基蓝染色液（0.5%）
G1301亚甲基蓝/美蓝染色液(0.2%)。
亚甲基蓝染色液(1%)
亚甲基蓝染色液(1%)简介：亚甲基蓝(Methylene blue)又称美蓝、次甲基蓝、次甲蓝等，含水亚甲基蓝的分子式为C16H24ClN3O3S，分子量为373.9，CAS号为7220-79-3。
Leagene亚甲基蓝染色液常用于丝绸、纸张、细菌、细胞等染色。
因其容易氧化，染色结果不宜长久保存。
组成：编号DZ0097 Storage名称Methylene blue Stain(1%) 100ml RT 避光使用说明书1份操作步骤(仅供参考)：1、样品处理①对于石蜡切片：二甲苯中脱蜡5～10min 。
更换新鲜的二甲苯，再脱蜡5～10min。
无水乙醇5min。
蒸馏水2min。
②对于冰冻切片：蒸馏水2min。
③对于培养细胞：用4%多聚甲醛固定10min以上。
蒸馏水洗涤2min。
换用新鲜的蒸馏水，再洗涤2min。
2、美蓝染色①Methylene blue Stain(1%)染色3～10min(可以根据染色结果和要求调整时间)。
②用蒸馏水或自来水充分洗涤，进行观察和拍照。
染色结果：组织或细胞蓝色注意事项：1、第一次使用本试剂时建议先取1～2个样品做预实验。
2、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
有效期：12个月有效。
相关：编号名称DC0032 Masson三色染色液DJ0001 普鲁士蓝染色液(核固红法)DM0002 姬姆萨染色液(1:9)DM0007 瑞氏-姬姆萨复合染色液PW0053Western抗体洗脱液(碱性)TO1013丙二醛(MDA)检测试剂盒(TBA比色法)。
尼氏染色步骤
尼氏染色步骤
尼氏染色法，又称尼氏显色法或尼氏酸性显色法，是一种常用的微生物学染色方法。
它能够有效地检测出体内的细菌，以及对病原体的检测和鉴定，它的应用非常广泛，是现代细菌学中不可缺少的重要技术手段。
尼氏染色法是一种酸性染色法，它利用了细菌与细菌杆菌体内含有高浓度的酸性脂肪酸而形成的细菌染色体的特殊性，将其酸性染料与细菌染色体结合起来，使细菌染色体呈色，从而使细菌染色体可见，进而诊断出病原体。
一般情况下，尼氏染色步骤如下：
1.准备标本
通常情况下，从被检样品中提取的细菌，用培养基悬浮液作为染色标本，然后将其涂在载玻片上，形成薄膜，即可进行尼氏染色。
2.加入染料
将尼氏染料溶于0.8%的盐酸中，然后将其滴加在载玻片上，盖上盖玻片，放置20分钟左右，使染料与细菌染色体结合起来，使细菌染色体变色，从而可见细菌染色体。
3.洗涤
将染色好的载玻片放入10%的盐酸中洗涤，洗涤时间约为15-30分钟，使多余的染料从细菌染色体中除去，以便观察细菌染色体。
4.染色结果观察
观察染色结果，细菌染色体可见，呈蓝色或蓝绿色，从而实现病原体的检测和鉴定。
尼氏染色法是一种快速、准确、经济的检测病原体的方法，由于它简单易行，因此深受细菌学家和微生物医学家的青睐。
近年来，随着各种新型抗菌药物的开发，尼氏染色法也受到了更多的关注，它不仅能够检测出体内的细菌，而且还可以检测出病原体的抗药性，为新型抗菌药物的开发奠定了基础。
内镜染色大全之亚甲蓝内镜色素的使用及配制方法
内镜染⾊⼤全之亚甲蓝内镜⾊素的使⽤及配制⽅法美兰在胃⾷管结合部的Barrett（BE）⾷管以及Barrett腺癌⽐较常⽤。
内镜下⾊素染⾊在指导BE活检中有重要意义。
亚甲蓝可被⼩肠和结肠上⽪主动吸收，⽽在鳞状
上⽪和胃黏膜等⾮吸收上⽪并不着染。
当⾷管或胃黏膜出现肠上⽪化⽣时，可被亚甲蓝染成蓝
⾊。
为获得较好效果，染⾊前⼀般先使⽤20ml去泡剂（如10%⼄酰半胱氨酸）喷洒以去除表⾯
黏液，2min后再喷洒0.5%的亚甲蓝液（5cm的病变约⽤20ml液体）。
2min后再⽤⽔冲洗。
因长
节段的BE有多量的肠上⽪化⽣⼏乎均呈弥漫性着染，⽽短节段BE因有胃型上⽪化⽣夹杂其中，
染⾊呈局灶或斑点状。
染⾊的原理：亚甲蓝吸收进⼊上⽪细胞内使细胞核着⾊。
染⾊阳性的意义：正常的肠道上⽪、⾷管和胃的肠化上⽪以及部分早期胃癌上⽪，⼗⼆指肠内
异位的胃化⽣细胞并不染⾊。
同时因美兰可以和细胞内的DNA结合，在⽩光下可诱导氧化损伤
甚⾄突变。
肠化/异型增⽣：浅蓝
癌性病灶：深蓝
主要⽤于慢性萎缩性胃炎的诊断。
亚甲蓝值试验操作规程
亚甲蓝值试验操作规程-CAL-FENGHAI-(2020YEAR-YICAI)_JINGBIAN
亚甲蓝值试验操作规程
1、将滤纸架空放置在敞口烧杯的顶部，使其不与任何其它物品接触。
2、细集料悬浊液在加入亚甲蓝溶液并经400r/min±40r／min转速搅拌1min后，在滤纸上进行第一次色晕检验。
即用玻璃棒沾取一滴悬浊液滴于滤纸上，液滴在滤纸上形成环状，中间是集料沉淀物，液滴的数量应使沉淀物直径在8mm～12mm之间。
外围环绕一圈无色的水环，当在沉淀物周围边缘放射出一个宽度约1mm左右的浅蓝色色晕时，试验结果称为阳性。
3、如果第一次的5mL亚甲蓝没有使沉淀物周围出现色晕，再向悬浊液中加入5mL亚甲蓝溶液，继续搅拌1min，再用玻璃棒沾取一滴悬浊液，滴于滤纸上，进行第二次色晕试验，若沉淀物周围仍来出现色晕，重复上述步骤，直到沉淀物周围放射出约1mm的稳定浅蓝色色晕。
4、停止滴加亚甲蓝溶液，但继续搅拌悬浊液，每1min进行一次色晕试验。
若色晕在最初的4min内消失，再加入
5mL亚甲蓝溶液；若色晕在第5min消失，再加入2mL亚甲蓝溶液。
两种情况下，均应继续搅拌并进行色晕试验，直至色晕可持续5min为止。
5、记录色晕持续5min时所加入的亚甲蓝溶液总体积，精确至1mL。
亚甲蓝染色原理和方法
亚甲蓝染色原理和方法亚甲蓝染色是一种常见的细胞和组织染色方法，通过染色剂亚甲蓝将细胞核和细胞质染色，帮助研究人员观察细胞结构和功能。
下面来详细介绍亚甲蓝染色的原理和方法。
一、原理亚甲蓝染色的原理是利用染色剂亚甲蓝与DNA或RNA 结合后呈现不同的颜色，从而观察细胞核和细胞质的结构和形态。
亚甲蓝是一种带正电荷的碱性染料，可以与DNA 和RNA的负电荷结合形成亚甲蓝-DNA或亚甲蓝-RNA复合物。
当亚甲蓝与DNA或RNA结合时，会吸收特定波长的光线并反射出不同的颜色。
DNA和RNA与亚甲蓝结合的程度不同，因此呈现出颜色的深浅也不同，这使得亚甲蓝染色成为了观察细胞核结构及其他亲核物质定量分析的一种有效方法。
二、方法1. 前处理在进行亚甲蓝染色之前，需要对细胞进行前处理。
首先是细胞采集，采集后用PBS进行洗涤并离心。
然后将细胞加入适量的冰乙醇，冰乙醇会破坏细胞膜，使DNA裸露。
接着进行再次洗涤并离心，将细胞置于一个含有0.5%的氢氧化钠（NaOH, w/v）和0.5%的亚硫酸氢钠（NaHSO3, w/v）的缓冲液中，进行退火。
这个过程需要较高的温度和较长的时间。
2. 染色准备好前处理后的细胞样本，然后将样本涂沫在载玻片上。
然后将亚甲蓝染料加入，使其覆盖入完整的细胞。
让其静置15-20分钟，耗散残余亚甲蓝，最后用水冲洗玻片，把玻片晾干即可。
3. 观察将制片放入显微镜下，用透射光观察样品。
可以通过样品中不同部分颜色的不同来观察细胞结构和功能，这个技术在分离和诊断癌细胞等细胞学应用领域广泛应用。
三、优点与不足亚甲蓝染色具有以下优点：1. 可以清晰地观察细胞核和细胞质。
2. 操作简便，染色剂便宜易得。
3. 对细胞结构变形的情况下也可以使用。
但是，亚甲蓝染色也有着其不足，其中就包括：1. 亚甲蓝染色只能染色核酸，其他亲核物质不易染色。
2. 染色深浅不同会影响后续的细胞分析。
3. 可能会毒害或破坏细胞。
四、总结亚甲蓝染色是一种简便、有效的细胞核染色方法，已广泛应用于分离、鉴定和诊断不同类型的细胞研究。
尼氏染色法的原理和应用
尼氏染色法的原理和应用1. 原理尼氏染色法是一种常用的细胞染色技术，用来染色显示细胞核。
它是以尼氏酸为染色剂，可以与细胞核内的核蛋白质结合，使细胞核显色，从而方便观察细胞核形态和核染色质的结构。
尼氏染色法的原理主要包括以下几个步骤：1.细胞固定：首先，需要将待染细胞固定在载玻片上，一般使用甲醛等化学物质进行固定。
固定后的细胞可以保持形态和结构的完整性。
2.脱水：固定后的细胞需要经过脱水处理，即将细胞质内的水分逐渐脱除，以便后续的染色和显微观察。
一般用乙醇进行脱水处理。
3.染色：在脱水后的细胞上滴加尼氏酸染色剂，尼氏酸可以与细胞核内的核蛋白质结合，从而显色细胞核。
一般情况下，染色时间为几分钟至数十分钟。
4.水洗：尼氏染色完成后，需要用水充分洗去多余的染色剂，以防止染色过深。
5.固定：洗净后，可以用碘或碘酒溶液进行固定处理，同时也有助于增强染色效果。
2. 应用尼氏染色法在生物学和医学领域有广泛的应用，主要用于以下方面：2.1 细胞学研究尼氏染色法可以染色显示细胞核的形态和结构，对于研究细胞学过程以及细胞功能起着重要的作用。
通过尼氏染色，可以观察到细胞核的大小、形态以及染色质的状态，进而对细胞的生理状态和变化进行分析和研究。
2.2 病理学诊断在病理学中，尼氏染色法可用于诊断各种组织细胞核变化引起的疾病。
例如，在肿瘤病理学中，可以通过尼氏染色观察肿瘤细胞核的异常形态和结构，以便进行病理诊断和鉴定。
2.3 医学教学尼氏染色法是一种简单、易于操作的细胞染色技术，因此在医学教学中非常常用。
通过尼氏染色，可以展示细胞核的结构和变化，帮助学生更好地理解和掌握细胞学的基本知识和技术。
2.4 生物科研在生物科研中，尼氏染色法也是一种重要的实验手段。
通过染色显示细胞核的形态和结构，可以对细胞内基因组的组织和分布进行观察和研究，从而揭示细胞核的功能和调控机制。
3. 优点和注意事项尼氏染色法具有以下优点：•显色清晰：尼氏酸染色剂与核蛋白质结合后，显色效果清晰，细胞核易于观察和分析。
幽门螺旋杆菌染色液(亚甲蓝法)使用说明书
幽门螺旋杆菌染色液(亚甲蓝法)使用说明书
货号：G1931
规格：100mL
保存：RT避光保存，12个月有效。
产品说明：
胃幽门螺杆菌(Helicobacter Pyloric，HP)又称胃幽门弯曲菌(Campylobacter Pyloric)。
现已证实这种细菌与慢性胃炎和消化性溃疡有密切关系。
胃幽门螺杆菌一般呈弧形、S形或海鸥状，有时可见3～4个弯曲呈螺旋状，常呈鱼群状分布。
该菌多见于胃黏膜表面上皮与黏膜层之间，并贴近表面上皮细胞，部分进入上皮细胞胞质内，胃小凹和黏膜浅层腺腔内亦有此菌。
幽门螺旋杆菌染色主要有亚甲蓝法、硝酸银法、迈格林华-姬姆萨法、碱性品红法等。
硝酸银法对比清楚，染片可以长期保存，但操作较为麻烦、耗时，其他方法较为简便，但染片容易褪色。
幽门螺旋杆菌染色液(亚甲蓝法)采用亚甲蓝法，价格便宜，保存时间长，质量稳定。
临床上常亚甲蓝法对慢性胃炎和消化性溃疡的诊断和治疗效果的判断，推荐采用亚甲蓝法作为鉴别幽门螺旋杆菌的常规染色方法。
自备材料：
10%福尔马林固定液、蒸馏水、系列乙醇
操作步骤(仅供参考)：
1、组织固定于10%的福尔马林，常规脱水包埋。
2、切片厚4µm，常规脱蜡至水。
3、蒸馏水洗1次。
4、滴入HP Stain染色2～3min。
5、迅速水洗。
6、稍吹干或烤干切片。
7、二甲苯透明，中性树胶封固。
染色结果：
胃幽门螺旋杆菌蓝色
注意事项：
1、水洗后无需乙醇清洗，否则容易脱色。
2、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
尼氏染色步骤
小鼠脑冰冻切片后，想做尼氏染色，用焦油紫，具体步骤是什么？焦油紫的溶液该如何配制？焦油紫染液的配制：焦油紫/0.1g蒸馏水/99ml1%冰醋酸1ml冰冻切片氯仿中1分钟；无水酒精中1分钟；95%酒精、70%酒精各1分钟，蒸馏水洗片刻；进入焦油紫染液染色30分钟（37度温箱中染色10分钟），蒸馏水洗涤；95%酒精分色；常规脱水、透明、封片。
尼氏体呈紫色，细胞核呈淡紫色，胶质细胞呈淡紫色。
研究脊椎动物中枢神经系统的细胞构筑学,最常用的方法是神经细胞染色,也称尼氏染色.虽然碱性染料都可用于中枢神经系统染色,但常用的有以下几种: 焦油紫,甲苯胺蓝、硫堇.甲苯胺蓝属于人工合成的醌亚胺类碱性染料，有两个发色团，一个是亚胺基(- N =), 另一个是醌基，同类的有硫堇、亚甲兰，次甲基紫、中性红、焦油紫等；因为是碱性燃料，多作为细胞核染色剂－－细胞核中的核酸含有酸性物质对碱性燃料有亲和力，称之为“嗜碱性”。
硫堇染液(工作液)①干液(硫堇)：硫堇1g或2g溶于100mL 50%乙醇中，溶解后过滤备用；②醋酸钠缓冲液：醋酸钠·3H2O 9.7g，巴比妥钠14.7g，溶于500mL蒸馏水中；③0.1 mol／L盐酸；按①：②：③=40：28：32比例配成混合液，调pH5.7±0.2，即得硫堇工作液。
尼氏体又称虎斑,是神经细胞的一种特殊结构,具有嗜碱性的特点易被碱性染料,如焦油紫,甲苯胺蓝、硫堇等着染.受染后呈块状(形如虎斑)或粒状.尼氏体分布在神经细胞除轴突之外的细胞质中,核周围颗粒较大 , 近边缘处较小而细长.尼氏体还可因生理状态的改变而变化,如在生理情况下,尼氏体大而数量多,反映出神经细胞旺盛的功能状态;在神经元受损伤时尼氏体的数量可减少甚至消失 .因此取材时应尽量获取新鲜材料才能制作出满意的标本.mickeyzq wrote:焦油紫染液的配制：焦油紫/0.1g蒸馏水/99ml1%冰醋酸1ml冰冻切片氯仿中1分钟；无水酒精中1分钟；95%酒精、70%酒精各1分钟，蒸馏水洗片刻；进入焦油紫染液染色30分钟（37度温箱中染色10分钟），蒸馏水洗涤；95%酒精分色；常规脱水、透明、封片。
亚甲基蓝染色液(0.2%)
注意事项：
1、 第一次使用本试剂时建议先取 1～2 个样品做预实验。 2、 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
北京雷根生物技术有限公司
亚甲基蓝染色液(0.2%)
简介：
亚甲基蓝(Methylene blue)又称美蓝、次甲基蓝、次甲蓝等，含水亚甲基蓝的分子式 为 C16H24ClN3O3S，分子量为 373.9，CAS 号为 7220-79-3。亚甲基蓝染色液常用于丝绸、 纸张、细菌、细胞等染色。因其容易氧化，染色结果不宜长久保存。
组成：
编号 名称 Methylene blue Stain(0.2%) 使用说明书
DZ0095 Storage
100ml RT 避光 1份
操作步骤(仅供参考)：
1、样品处理 ①对于石蜡切片：
二甲苯中脱蜡 5～10min。 更换新鲜的二甲苯，再脱蜡 5～10min。 无水乙醇 5min。 90%乙醇 2min。 70%乙醇 2min。 蒸馏水 2min。 ②对于冰冻切片： 蒸馏水 2min。 ③对于培养细胞： 用 4%多聚甲醛固定。 蒸馏水洗涤 2min。 换用新鲜的蒸馏水，再洗涤 2min。 2、美蓝染色 ①Methylene blue Stain(0.2%)染色。 ②用蒸馏水或自来水充分洗涤，进行观察和拍照。
亚甲基蓝染色液使用说明
亚甲基蓝染色液使用说明好嘞，今天我们来聊聊亚甲基蓝染色液，听名字就觉得有点神秘对吧？别担心，我会把这玩意儿的使用说明说得通俗易懂，让你一听就明白。
亚甲基蓝这东西，主要是用在生物实验里，比如说观察细胞、组织啥的，它的颜色很独特，像是深海里的蓝宝石，特别好看，瞬间就能让你觉得自己在做一件高大上的事情。
准备工作可不能少，像是做菜前先洗手一样，咱们得先把实验台收拾干净，清理杂物，保持环境整洁。
然后，别忘了穿上实验服，像个科学家一样。
把亚甲基蓝染色液准备好，一般都是液体，颜色浓得让人一看就想叫好。
你会发现，拿到手里的时候，它的颜色就像是新鲜的蓝莓汁，忍不住想拿来喝一口，哈哈，当然可千万别这么做哦，这可不是饮料。
使用的时候，通常需要稀释一下，别直接拿原液就来，毕竟浓度太高的话，效果反而不好。
可以用生理盐水或者蒸馏水稀释一下，轻轻搅拌，直到它变得柔和些，像是调和好的一杯果汁。
这时你就可以把样品放进去，记得要浸泡一段时间，具体多长时间就看你实验的需求。
就像泡茶，泡得越久，味道越浓。
过程中，最好时不时看看，别让它泡得太久，要不然可就成了“重口味”了。
泡完后，样品要取出来，轻轻冲洗，别让多余的染色液留在上面。
冲洗的时候，水流不要太大，小心翼翼地对待，像是呵护一块稀世珍宝。
冲洗干净之后，放在显微镜下观察，哇，蓝色的细胞像小星星一样闪闪发光，这种视觉享受简直太棒了！你会觉得，所有的努力都值了，实验的乐趣全在这瞬间。
不过，注意安全哦，亚甲基蓝可不是无害的玩意儿，使用的时候尽量避免接触皮肤和眼睛，万一不小心溅到，赶紧用大量清水冲洗。
对了，实验结束后，记得把剩下的染色液妥善处理，别随便倒掉，环保意识要有，像个合格的公民一样。
说到这里，大家可能会问，亚甲基蓝还有什么其他的用途呢？哈哈，其实它还有点小“多才多艺”。
除了用于染色，它还可以用来做一些医疗用途，比如说抗菌、治疗某些病症，这玩意儿可真是个宝藏呢！不过，这方面的使用就得在专业人士的指导下进行，咱们可不能随便尝试，毕竟不是每个人都能当医生。
亚甲基蓝染色法
亚甲基蓝染色法亚甲基蓝染色法是一种常用的生物化学染色方法，广泛应用于细胞和组织的染色研究中。
本文将介绍亚甲基蓝染色法的原理、步骤和应用。
一、原理亚甲基蓝是一种亲水性染料，它可以与细胞质中的核酸结合形成蓝色的染色体。
亚甲基蓝染色法利用亚甲基蓝与DNA分子中的负电荷结合，从而使细胞核和染色体显现出深蓝色的特点。
这种染色方法简便、快速，而且染色效果清晰，所以在生物学研究中得到了广泛的应用。
二、步骤亚甲基蓝染色法的步骤相对简单，主要包括固定、染色和洗涤三个步骤。
1.固定：将待染细胞或组织用4%的多聚甲醛或其他适当的固定液固定，一般固定时间为10-30分钟。
2.染色：将固定的细胞或组织连续浸入亚甲基蓝染色液中，染色时间一般为5-15分钟。
染色液的配制可以根据实验需要进行调整。
3.洗涤：用去离子水或缓冲液轻轻洗涤染色的细胞或组织。
洗涤时间根据需要可重复进行。
三、应用亚甲基蓝染色法在生物学研究中有多个应用领域。
1.细胞染色：亚甲基蓝染色法可以用于观察细胞形态、细胞核的大小和形状等细胞特征。
2.染色体分析：通过亚甲基蓝染色法可以观察和分析染色体的数量、结构和缺陷等。
3.核酸染色：亚甲基蓝染色法可以用于检测DNA和RNA的存在和定量。
4.细胞增殖分析：亚甲基蓝染色法可以用于观察细胞增殖和细胞周期。
5.细胞毒性分析：通过亚甲基蓝染色法可以评估药物或化合物对细胞的毒性。
四、注意事项亚甲基蓝染色法虽然简便易行，但在操作过程中仍需注意以下事项：1.固定液的选择和浓度要适当，过浓或过稀都会影响染色效果。
2.染色液的浓度和染色时间要控制好，过浓或过浅都会导致染色不均匀。
3.洗涤过程要轻柔，避免造成细胞或组织的破坏。
4.染色后要及时观察和记录结果，避免染色体颜色褪色或变化。
总结：亚甲基蓝染色法是一种常用的生物化学染色方法，可以用于细胞和组织的染色研究。
通过固定、染色和洗涤三个步骤，可以清晰地观察细胞核和染色体的形态和结构。
亚甲基蓝染色法在细胞学、遗传学和分子生物学等领域有广泛的应用，为科学研究提供了重要的实验手段。
百度文库-尼氏染色液使用说明
性树胶。
3、如果要做免疫组化，请在免疫组化结束后、进行该染色。
4、如果进行免疫荧光类染色，先做该染色、再进行免疫荧 光染色。
过程说明： 1. 样品处理 a) 对于石蜡切片：
判定结果：
。 经元呈淡紫蓝色，细胞核呈紫蓝色
脊髓×100
依据病理常规至水化步骤。
b) 对于冰冻切片： 蒸馏水 5 分钟。 c) 对于培养细胞： 用 4%多聚甲醛固定 15 分钟。 蒸馏水洗涤 2 分钟，再换缸进行第二次洗涤。
广州市外显子生物技术有限公司
尼氏(Nissl)染色液说明书
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产品说明： Nissl 染色是以德国的精神病学家和神经病理学家的名
字命名的，主要用于石蜡或冰冻切片神经元细胞浆中的尼氏 小体(Nissl body)染色。染色后呈蓝紫色，用于显示脑或脊 髓的基本神经结构。Nissl 小体大而数量多，说明神经细胞 合成蛋白质的功能较强；相反在神经细胞受到损伤时，Nissl 小体的数量会减少。甲酚紫等可以和 RNA 或 DNA 结合，可以 染
粗面型内质网上的核糖体以及细胞核。
产品组成: 货号 S-1502 --
产品 尼氏(Nissl)染色液 说明书
实验前说明：
规格 100ml 1份
实验中有任何问题，请联系我们，感谢您使用外显子生物 实验室的产品。
染色结果：
1，要先做预实验，掌握基本操作。
2，提前制备 4%多聚甲醛、70%乙醇、95%乙醇、二甲苯，中.
2、染色，接以上步骤：
a) 尼氏(Nissl)染色液在 37℃，染色 20-30 分钟，具体时 间要根据玻片情况调整。
b) 如果效果不好，染色时温度提高到 42-50℃。 c) 蒸馏水洗涤 2 次，每次 2 秒即可。 d) 95%乙醇约 3-5 秒，无水乙醇 1 分钟。 e) 如需保存、晾干、透明后封片。
亚甲蓝溶液配制方法
亚甲蓝溶液配制方法摘要：亚甲蓝溶液是一种常用的生物染色剂，可用于细胞染色、细胞计数等生物实验中。
本文将介绍亚甲蓝溶液的配制方法，包括所需材料、步骤和注意事项。
关键词：亚甲蓝溶液、生物染色、配制方法、步骤、注意事项引言：亚甲蓝溶液是一种常用的生物染色剂，其具有较强的颜色深度和清晰的对比度，被广泛应用于生物学实验中的细胞染色、细胞计数以及组织染色等方面。
本文将向读者介绍亚甲蓝溶液的配制方法，希望能为生物实验工作者提供一种方便、快捷且稳定的配制亚甲蓝溶液的方法。
材料与方法：所需材料：- 亚甲蓝粉末：可在生物试剂供应商处购买到。
- 离心管或试管：用于容纳亚甲蓝溶液。
- 蒸馏水：用于溶解亚甲蓝粉末。
- 称量仪：用于准确称取亚甲蓝粉末。
配制步骤：1. 准备工作：- 洗手，穿戴实验室衣物和个人防护装备。
- 准备所需材料并摆放在干净的工作台上。
2. 称取亚甲蓝粉末：- 使用称量仪准确称取3克亚甲蓝粉末，并将其放入离心管或试管中。
3. 溶解亚甲蓝粉末：- 将3克亚甲蓝粉末加入30毫升蒸馏水中。
- 使用离心机以适当的速度和时间将试管中的溶液离心混合。
4. 调整溶液体积：- 根据实验需求，可使用蒸馏水将亚甲蓝溶液的体积调整至50毫升。
5. 储存亚甲蓝溶液：- 将配制好的亚甲蓝溶液转移到干净的集装管中，并密封保存于4摄氏度的冰箱中。
- 注意避免光照，以免影响亚甲蓝溶液的稳定性。
注意事项：1. 在配制亚甲蓝溶液的过程中，务必遵守实验室的安全规范，包括佩戴实验室衣物和个人防护装备，以及避免直接接触亚甲蓝粉末和溶液。
2. 在称取亚甲蓝粉末时，应尽量准确称取，并避免粉末的浪费。
3. 溶解亚甲蓝粉末时，可根据需要调整溶液的浓度，但避免稀释过多，以免影响染色效果。
4. 储存亚甲蓝溶液时，应注意避免光照，以免溶液的颜色变化和降解。
5. 配制的亚甲蓝溶液应注意密封保存，并在使用前检查是否有菌落或其他污染。
结论：通过本文所介绍的方法，我们可以简单且可靠地配制亚甲蓝溶液，为生物实验中的细胞染色、细胞计数等方面提供便利。
细菌活菌亚甲蓝染色原理
细菌活菌亚甲蓝染色原理
细菌活菌亚甲蓝染色是一种常用的染色方法，可以用于观察细菌活力及形态。
亚甲蓝是一种碱性染料，它可以与细菌细胞壁或细胞膜结合，使细胞染成深蓝色。
细菌活菌亚甲蓝染色的步骤如下：
1. 取少量的细菌培养物加入在玻璃片上。
2. 在细菌培养物上滴加亚甲蓝染液，让其覆盖整个细菌培养物。
3. 在室温下静置2-3分钟。
4. 用水冲洗干净。
5. 用酒精脱色。
6. 用水冲洗干净。
7. 在显微镜下观察。
在染色过程中，细菌细胞壁或细胞膜会与亚甲蓝结合，使其染成深蓝色，而背景则显现出浅蓝色。
通过观察细菌形态及染色结果，可以初步判断细菌种类及活力。
细菌活菌亚甲蓝染色是一种简单易行的染色方法，可以直接观察细菌活力及形态，是微生物学研究中不可或缺的技术之一。
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甘油-亚甲蓝染色液使用说明书
甘油-亚甲蓝染色液使用说明书甘油-亚甲蓝染色液使用说明书货号：G1980规格：100ml保存：室温避光储存，有效期6个月。
产品说明：亚基蓝(Methylene blue)又称亚甲蓝、美蓝、次甲基蓝、次甲蓝等，含水亚甲基蓝的分子式为C16H24ClN3O3S，分子量为373.9，CAS号为7220-79-3。
甘油-亚甲蓝染色液由甘油、亚甲蓝、去离子水组成，可用于检查粪便的各种蠕虫卵。
自备材料：1、不锈钢、塑料或纸平板2、亲水性玻璃纸条操作步骤(仅供参考)：1、准备玻璃纸条：将玻璃纸浸润于甘油-亚甲蓝染色液至少大于24h。
2、置少量粪便样本于报纸或小纸片上，用滤网在粪便标本上加压，使部分粪便样本通过滤网积聚于网上。
3、用刮片横刮滤网以收集筛过的粪便样本。
4、取带孔平板置于载玻片中央位置，用刮片时孔内填满粪便样本，并用刮片边缘横刮板面以去除孔边过多的粪便。
5、小心取下平板，使粪便样本呈矮小圆柱状留在玻片上。
6、玻璃纸条浸泡于甘油-亚甲蓝染色液，取出并覆盖于粪便上。
7、翻转玻片，在另一张玻片或在表面平滑、坚硬的物体上，朝向玻璃纸条挤压粪便样本，以使标本在玻片不玻璃纸条间均匀散开。
澄清后，应能透过涂片读出本说明书上的字迹。
8、轻轻从侧面滑动并秱下上层玻片，避免不玻璃纸条分离或使之掀起，将玻片置于实验台上，玻璃纸条面朝上。
目的玻片(除钩虫卵外)应置于室温一至数小时，以使样本清晰。
9、以上下或横向秱动方式检查涂片，并报告所发现的每种虫卵的计数，然后乘以适用的数值得出每克粪便中虫卵的数目。
如使用20mg平板，乘以50；使用41.7mg平板，乘以24；使用50mg平板，乘以20。
注意事项：1、刮片和滤网经仔细清洗后，可重复使用。
2、粪便样本较干燥时，覆盖粪便的玻璃纸条必须湿润；如为软便，覆盖粪便的玻璃纸条的水分可略少。
在干燥的气候条件下，过多的甘油只能延缓而不能防止粪便样本的干燥。
3、本法制片中的蛔虫及鞭虫卵可保存较长时间；血吸虫卵可保存数月；钩虫卵在制片30～60min后往往就观察不到了。
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尼氏染色液(亚甲蓝法)操作步骤及注意事项
货号：G1434
规格：3×50ml
保存：室温，避光，6个月。
产品内容：
规格
3×50ml Storage
名称
试剂(A):Methylene Blue Stain50ml RT避光
试剂(B):Nissl Differentiation50ml RT
试剂(C):Ammonium Molybdate Solution50ml RT
产品简介：
尼氏体(Nissl body)或称尼氏小体是分布于神经细胞胞质内的三角形或椭圆形小块状物质，能被碱性染料如硫堇、亚甲蓝、甲苯胺蓝和焦油紫等染料染成紫蓝色。
尼氏染色液(Nissl Stain，亚甲蓝法)主要优点是操作简便、染色稳定、适用范围广，可以用于石蜡组织切片的尼氏物质、神经元等的染色，尼氏体的存在和消失是神经细胞是否受损的重要指标，当发生脑炎、脑缺血、轴突反应等情况时，尼氏体会发生溶解甚至消失。
操作步骤(仅供参考)：
1、新鲜组织固定于20%甲醛液中，常规脱水包埋。
2、切片厚5µm，常规脱蜡至水。
3、Methylene Blue Stain滴染10min。
4、入Nissl Differentiation分化，在显微镜下观察至尼氏体清晰为止。
5、入Ammonium Molybdate Solution处理切片数分钟。
6、蒸馏水冲洗。
7、常规脱水透明，中性树胶封固。
染色结果：
尼氏小体蓝色
背景红色或粉红色
注意事项：
1、尼氏体离体后容易溶解，所以组织取出后应立即固定，否则难以着色。
2、组织固定起着非常重要的作用，固定可采用乙醇、Carnoy固定液或中性福尔马林
溶液。
3、本染色试剂盒对石蜡组织切片的尼氏染色效果较好。
4、石蜡切片厚度7～10µm或25µm(皮质神经元密度的评估要用25µm厚的切片)。