黄色短杆菌TK0303的L-亮氨酸生物合成途径分析
氨基酸的代谢与控制(1)
PEP+EP
DS
优先合成 切断或减弱 支路代谢 解除反馈调 节的代谢流 AS
DAHP CA
PT AS
DAHP
CA
PT
CM
PD
CM
PPA Tyr
氨茴酸
TS
PPA
PD
氨茴酸
TS
Phe 野生型
Trp
Tyr
Phe
Trp
色氨酸产生菌 30
PEP+EP
DS
PEP+EP
DS
DAHP
CM PD
DAHP
CM
CA
HD
Hom
Met Thr TD Ile Hom高产菌
16
Thr TD
Met
Ile
ILe高产菌
在谷氨酸棒杆菌、黄色短杆菌等微生物中, 天冬氨酸激酶是单一的,并受Lys和Thr的协 同反馈抑制。反馈调节易于解除,使育种简 单化,故常用作氨基酸发酵育种的出发菌株。
17
二、芳香族氨基酸的生物合成机制及代谢调节
20
大肠杆菌、粗糙脉胞菌等许多微生物中, 有三种DAHP合成酶的同功酶。 在枯草芽孢杆菌中却只有一种DAHP合成 酶,受顺序反馈抑制。 在氢极毛杆菌中也有一种DAHP合成酶, 可能受积累反馈抑制。
21
谷氨酸棒杆菌芳香族氨基酸的生物合成及调节机制
部分抑制 I R A
磷酸烯醇式丙酮酸+4-磷酸赤藓糖
L-天冬氨酸
①
天冬氨酰磷酸
⑧
天冬氨酰半醛
②
L-高丝氨酸
④
⑤
二氢吡啶-2,6-二羧酸
⑨ 二氨基庚二酸
L-苏氨酸
黄色短杆菌产L-苏氨酸的中试发酵工艺研究
黄色短杆菌产L-苏氨酸的中试发酵工艺研究刘超;贾召鹏;伏广好【摘要】对黄色短杆菌在发酵罐中产苏氨酸的发酵工艺进行研究.通过单因素试验确定了培养时间、温度、pH和接种量的最优条件.在单因素试验的基础上,利用正交试验确定发酵最优条件.结果证明:在最优试验条件下(温度30℃,pH 7,接种量10%),L-苏氨酸产率为12.14%.【期刊名称】《发酵科技通讯》【年(卷),期】2016(045)002【总页数】4页(P103-105,113)【关键词】黄色短杆菌;L-苏氨酸;发酵工艺【作者】刘超;贾召鹏;伏广好【作者单位】山东阜丰发酵有限公司,山东莒南276600;山东阜丰发酵有限公司,山东莒南276600;山东阜丰发酵有限公司,山东莒南276600【正文语种】中文【中图分类】TQ92L-苏氨酸属于人体20种必需氨基酸之一,主要用于医药、食品及饲料领域,近年来需求量增长迅速[1]。
在医药方面,L-苏氨酸可以抗脂肪肝,促进淋巴细胞分化成熟,保护细胞膜;在食品方面,L-苏氨酸可以作为食品强化剂,提高食品的营养价值,与葡萄糖共热产生的焦香味可以增香,一般与其他氨基酸合并用于强化谷物营养;在饲料方面,L-苏氨酸与赖氨酸、色氨酸和蛋氨酸一起列为4大饲料添加剂,主要用于未成年仔猪和家禽等的饲料[2],并逐渐成为影响畜禽生产性能的主要限制因素[3]。
微生物发酵法是目前生产L-苏氨酸的主要方法[4],本文通过对本公司生产菌种的中试发酵工艺进行优化,期望可以降低后续实际生产中的能耗,增加公司利润。
1.1菌种黄色短杆菌(Brevibacteriumflavum),由本公司保藏。
1.2摇瓶培养基(200 m L)蛋白胨2 g,酵母膏2 g,NaCl 1 g,pH 7.0,150 r/min,30℃培养15 h。
1.3发酵培养基(20 L)蛋白胨200 g,牛肉膏200 g,酵母膏100 g,NaCl 100 g葡萄糖100 g,接种后转速300 r/min,气压0.1 MPa,每4 h采样分析。
代谢控制工程复习题1
《代谢控制工程》复习题1.名词解释代谢控制发酵:所谓代谢控制发酵就是利用遗传学的方法或其他生物化学的方法,人为地在脱氧核糖核甘酸的分子水平上,改变和控制微生物的代谢,使有用目的产物大量生成、积累发酵。
关键酶:参与代谢调节的酶的总称。
作为一个反应链的限速因子,对整个反应起限速作用。
变构酶:有些酶在专一性的变构效应物的诱导下,结构发生变化,使催化活性改变,称为变构酶。
诱导酶:诱导酶是在环境中有诱导物(通常是酶的底物)存在的情况下,由诱导物诱导而生成的酶。
调节子:就是指接受同一调节基因所发出信号的许多操纵子。
温度敏感突变株:通过诱变可以得到在低温下生长,而在高温下却不能生长繁殖的突变株。
碳分解代谢物阻遏:可被迅速利用的碳源抑制作用于含碳底物的酶的合成,就称为碳分解代谢阻遏。
氮分解代谢物阻遏:可被迅速利用的氮源抑制作用于含氮底物的酶的合成,就称为氮分解代谢阻遏。
营养缺陷型突变菌株:原菌株由于发生基因突变,致使合成途径中某一步骤发生缺陷,从而丧失了合成某些物质的能力,必须在培养基中外源补加该营养物质才能生长的突变菌株。
渗漏突变株:由于遗传性障碍的不完全缺陷,使它的某一种酶的活性下降而不是完全丧失。
因此,渗漏突变菌株能少量的合成某一种代谢最终产物,能在基本培养基上进行少量的生长。
代谢互锁:从生物合成途径来看,似乎是受一种完全无关的终产物的控制,它只是在较高浓度下才发生,而受这种抑制(阻遏)作用是部分性的,不完全的。
平衡合成:底物A经分支合成途径生成两种终产物E与G,由于a酶活性远远大于b 酶,结果优先合成E。
E过量后就会抑制a酶,使代谢转向合成G。
G过量后,就会拮抗或逆转E的反馈抑制作用,结果代谢流转向又合成E,如此循环。
(P45图)优先合成:底物A经分支合成途径生成两种终产物E和G,由于a酶的活性远远大于 b 酶的活性,结果优先合成E。
E合成达到一定浓度时,就会抑制a酶,使代谢转向合成G。
G 合成达到一定浓度时就会对c酶产生抑制作用。
营养及环境因素对黄色短杆菌发酵生产L-亮氨酸的影响
生
38 7
L I RS I B OT NOL E1 N I ECH T TE H OGY V l 7 No3 一 y 0 6 o 一 2 0 - 1 ・ Ma ,2 O j , O0 _
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f r e t to e pe m e t Co l in:T e fe t o n t to l e m n ai n x r i n. ncuso h e c s f u r ina an e v r m e tl o ii s n h fr e a in r du to i d n ion na c nd t on o t e e m ntto p o c in o f L-lucn we e vey mpo tn . e ie r r i ra t
t e o t m e me tt n c n i o ,s e u t r i 6 n n c l m ie 1 % , 1 . / - e cn s a c mu ae h pi mu fr na i o dt n e d c l e t o i u me 3 h a d i o u u s 0 z 9 4 g L L lu i e wa c u lt d i 2 y s a ig f s e p r n n h yed f L lu i e wa 94 / n 6 y 0 l e e e tr f e b t h n 7 h b h k n a k x e me t a d t e il o - e cn s 2 .7 g L i 4 h b 1 一 i r fr n o e d ac l i t m
亮 氨 酸 具有 重要 影 响 。
[ 键 词 ] 黄 色 短 杆 菌 ; 一 氨 酸 ; 酵 条件 关 L亮 发
黄色短杆菌ilvBN和ilvC基因定点突变对L-缬氨酸发酵的影响
黄色短杆菌ilvBN和ilvC基因定点突变对L-缬氨酸发酵的影响宫卫波;王海雷;程国平;赵津津【摘要】以黄色短杆菌MH-1000为出发菌株,使用PCR技术克隆ilvBN与ilvC 基因,对ilvBN进行定点突变,获得解除L-缬氨酸对乙酰羟酸合酶反馈抑制突变型基因ilvBN′.对基因ilvC进行点突变,获得乙酰羟酸变位酶突变基因ilvC′.通过重叠延伸PCR方法,将基因片段ilvBN′和ilvC′拼接为ilvBN′C′,进而连接至穿梭载体pXMJ19获得重组质粒pXMJ19-ilvBN′C′.该重组质粒转化至出发菌株获得工程菌株MH-1032.50L分批补料发酵结果显示:MH-1000发酵72hL-缬氨酸质量浓度为35.2g/L,MH-1032发酵72 h L-缬氨酸质量浓度为38.4 g/L,增长9.1%,糖酸转化率从21.7%提高到25.8%.【期刊名称】《发酵科技通讯》【年(卷),期】2017(046)004【总页数】6页(P228-232,237)【关键词】L-缬氨酸;乙酰羟酸合酶;乙酰羟酸变位酶;黄色短杆菌【作者】宫卫波;王海雷;程国平;赵津津【作者单位】廊坊梅花生物技术开发有限公司 ,河北廊坊 065001;廊坊梅花生物技术开发有限公司 ,河北廊坊 065001;廊坊梅花生物技术开发有限公司 ,河北廊坊065001;廊坊梅花生物技术开发有限公司 ,河北廊坊 065001【正文语种】中文【中图分类】TQ922L-缬氨酸作为增味剂、添加剂,应用于食品、饲料、医药和化妆品等领域.L-缬氨酸是人体必需八种氨基酸之一.工业上主要使用发酵法生产L-缬氨酸,所用菌种以棒杆菌为主.一般通过增强L-缬氨酸代谢通路关键酶、限速酶的表达[1-2],阻断或者减弱支路代谢[3-4],改变细胞膜对底物和产物透性,增强细菌对糖等底物的耐受,抑制终产物分解[5-7]等方法提高L-缬氨酸产量.另外优化发酵培养基配方、改善发酵工艺也可提高L-缬氨酸产量[8-9].徐庆阳等[10]以黄色短杆菌(B. flavum)XV0505(Leu-+Ile-+2-TAr+α-ABr+SGr)在10 L小罐中发酵72 h,最高产L-缬氨酸53.4 g/L,糖酸转化率为26.7%.张伟国等[11]通过诱变筛选出了XQ-8(Leulα+ABhr+2-TAhr+AHVhr),摇瓶产酸达66 g/L.但是以诱变为基础的菌株筛选效率比较低,现基本被基因工程手段替代.笔者采用对ilvBNC进行定点突变的方法,解除了L-缬氨酸对乙酰羟酸合酶(AHAS)的反馈抑制,同时经过定点突变,将乙酰羟酸变位酶(AHAIR)的辅酶NADPH改为NADH,摇瓶发酵产L-缬氨酸19.5 g/L,比突变前提高16.8%;50 L发酵罐产L-缬氨酸38.4 g/L,比突变前提高9.1%.大肠杆菌transT1(北京全式金生物技术有限公司),黄色短杆菌MH-1000(α-ABhr+2-TAhr+AHVhr),廊坊梅花生物技术开发有限公司保藏菌种.大肠杆菌-棒杆菌穿梭质粒pXMJ19,本实验所使用的菌株及载体详见表1.限制性内切酶、DNA连接酶,MBI Fermentas公司;Fast pfu DNA polymerase,TransStart FastTaq DNA polymerase,TransStart FastPfu DNA polymerase,DNA Marker,dNTPs等,北京全氏金生物技术有限公司;质粒小量提取试剂盒、琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒、基因组提取试剂盒,北京天根生化科技有限公司;引物合成及测序送交英潍捷基(上海)贸易有限公司完成;往复式摇床、恒温培养箱、PCR仪、电泳-凝胶成像系统等;SBA生物传感仪,山东省科学院微生物研究所;50 L发酵罐,上海百仑生物科技有限公司.LB培养基:氯化钠10 g/L,蛋白胨10 g/L,酵母粉5 g/L,121 ℃灭菌20 min. 黄色短杆菌摇瓶及50 L小罐发酵培养基配制参考文献[11].LBHIS(LB with brain heart infusion and sorbitol)用于电转化后恢复培养,BHI(Brain heart lnfusion medium)感受态细胞培养等培养基配制参考文献[12-13].黄色短杆菌斜面培养基LBG:LB培养基+0.5%葡萄糖,NaOH调节pH至7.0,121 ℃灭菌20 min.黄色短杆菌种子培养基:葡萄糖25 g/L,尿素2.5 g/L,玉米浆40 g/L(氨基氮1.0%~1.3%,波美度19.5~22),KH2PO4 1 g/L,MgSO4 0.5 g/L,NaOH调节pH至7.0,121 ℃灭菌20 min.黄色短杆菌50 L发酵培养基:葡萄糖50 g/L,玉米浆15 g/L,KH2PO4 1 g/L,MgSO4 0.5 g/L,NaOH调节pH至 7.0,121 ℃灭菌20 min.摇瓶发酵条件:摇床转速170 r/min,发酵温度33 ℃,时间72 h.发酵结束后加水定容至20 mL;吸取菌液0.1 mL,使用0.5 mol/L盐酸稀释至5 mL,分光光度计测量OD562;取1 mL菌液至1.5 mL的EP管中,12 000 r/min离心2 min,安捷伦液相色谱测定L-缬氨酸产量;吸取1.5 mL EP管中10 μL上清液至990 μL去离子水中,SBA生物传感仪测定发酵液剩余葡萄糖;50 L发酵罐发酵条件,样品测定参考文献[11].大肠杆菌感受态细胞制备参考文献[14],MH-1000感受态细胞制备参考文献[15-16].基因组提取、质粒提取、酶切和连接等按照试剂盒或说明书进行操作.引物设计参照黄色短杆菌ATCC14067相关基因(表2),并添加相应的酶切位点和保护碱基. 提取黄色短杆菌基因组,使用引物ilvBN-F和ilvBN-R经PCR获得ilvBN.以ilvBN为模板,分别使用ilvBN-F,ilvBN-IR和ilvBN-IF,ilvBN-R扩增两个基因片段ilvB和ilvN.利用重叠延伸PCR的方法,以ilvBN-F,ilvBN-R为引物,等摩尔浓度的ilvB,ilvN为模板PCR,TransStart FastTaq DNA polymerase,TransStart FastPfu DNA polymerase混合酶,体积比1∶10,体系50 μL包括:10 μL 5×Primer star buffer (Mg2+ plus),4 μL的dNTP混合物(各2.5 mmol/L),引物各1 μL,混合酶1 μL,模板ilvB和ilvN适量,补水至50 μL.PCR条件:94 ℃预变性2 min;94 ℃变性20 s,55 ℃退火20 s,72 ℃延伸1 min,以上30 个循环;72 ℃延伸10 min.PCR结束后获得定点突变的ilvBN′.回收上步中PCR产物后,连接T载体pEASYTM-T5,获得pEASYTM-T5-ilvBN′,转化至大肠杆菌;使用M13为鉴定引物测序鉴定,提取质粒pEASYTM-T5-ilvBN′经Hind III与EcoR I酶切,回收ilvBN′片段,与相同酶切回收的pXMJ19连接,构建pXMJ19-ilvBN′.转化pXMJ19-ilvBN′至大肠杆菌,平板培养,挑单菌落进行摇瓶过夜培养,提取质粒作为模板,以pX-F和pX-R为引物进行PCR测序鉴定;鉴定完毕获得阳性克隆后,提取质粒pXMJ19-ilvBN′转化MH-1000,转化条件、培养基配方参考文献[12-13],以pX-F和pX-R为引物进行PCR测序鉴定筛选阳性克隆.提取黄色短杆菌基因组为模板,以ilvNC-F和ilvNC-R为引物PCR获得ilvNC;以ilvNC为模板,分别使用ilvNC-F,ilvC-IR和ilvC-IF,ilvNC-R为引物扩增两个基因片段ilvNCF和ilvCR.利用重叠延伸PCR的方法,以ilvNC-F,ilvNC-R为引物,等摩尔浓度的ilvNCF和ilvCR为模板进行PCR,获得定点突变ilvC′,连接T载体pEASYTM-T5,构建pEASYTM-T5-ilvC′,转化至大肠杆菌,24 h长出菌落后,挑单菌落或摇瓶过夜培养后提质粒作为模板,T载体自带引物M13进行PCR鉴定,测序,序列正确可用于ilvBN′C′的重叠延伸PCR.以ilvBN-F和ilvN-R为引物,ilvBN′为模板,扩增出ilvBN′F;以ilvNC-F和ilvC-R为引物,ilvC′为模板,扩增出ilvC′R.回收上步骤中ilvBN′和ilvC′R基因片段,以ilvBN′F与ilvC′R为模板,以ilvBN-F 和ilvC-R为引物,PCR扩增形成ilvBN′C′,条件基本同1.6.体系50 μL:包括10 μL 5×Primer star buffer(Mg2+ plus),4 μL的dNTP混合物(各2.5 mmol/L),引物各1 μL,混合酶1 μL,模板ilvBN′和ilvC′R适量,补水至50 μL.PCR条件为:94 ℃预变性2 min;94 ℃变性20 s,55 ℃退火20 s,72 ℃延伸1.5 min,以上30 个循环;最后72 ℃延伸10 min,连接T载体pEASYTM-T5,形成pEASYTM-T5-ilvBN′C′,使用M13引物、Hind III与EcoR I双酶切进行鉴定,鉴定阳性克隆测序.摇瓶过夜培养测序正确的大肠杆菌,提取质粒pEASYTM-T5-ilvBN′C′,使用Hind III与EcoR I酶切,回收ilvBN′C′片段后,连接同样酶切回收的pXMJ19,构建质粒pXMJ19-ilvBN′C′,转化至大肠杆菌,长出菌落后挑单菌落为PCR模板,以pX-F和pX-R为引物进行PCR进行扩增,测序验证为阳性克隆后,提取质粒pXMJ19-ilvBN′C′转化MH-1000,再次以pX-F和pX-R为引物,以转化后菌株为模板进行PCR,测序筛选阳性克隆.50 L发酵罐发酵条件:接种量10%,通风比1 vvm,搅拌转速200~500 r/min,温度31 ℃,25%氨水流加调节pH至7.0,流加650 g/L高浓度葡萄糖补充碳源,控制溶氧30%~50%,发酵液葡萄糖质量浓度1~2 g/L.将ilvBN从MH-1000菌株基因组上扩增,使用重叠延伸PCR方法进行定点突变,将AHAS小亚基别构中心的3个氨基酸做如下替换Gly20Asp,Ile21 Asp和Ile22 Phe,相应的的核苷酸GGAATCATT定点突变成GATGACTTT,解除了L-缬氨酸对AHAS的反馈抑制(图1),获得定点突变基因.质粒pXMJ19-ilvBN′模板,以pX-F,pX-R为引物PCR验证如图2所示,ilvBN′大小约为2.5 kb(基因大小2 413 bp)左右(泳道2).构建的pXMJ19-ilvBN′C′经Hind III和EcoR I双酶切,有两条片段(泳道4),质粒片段pXMJ19约为6.6 kb(质粒6 601 bp),验证结果为阳性,获得MH-1031.将ilvC从MH-1000菌株基因组中PCR扩增,对照本基因序列中氨基酸表达偏好性设计定点突变碱基(核苷酸5′-TCCCAGAACCTCCGCGATTCTGGCGTTGAGGTTGTCATT GGTCTGCG-3′),用重叠延伸PCR方法定点突变成5′-GGCCAGAACCTCCGCGATTCT GGCGTTGAGGTTGTCA TTGGTGAGTT-3′,即氨基酸替换为Ser34Gly,Leu48Glu和Arg49Phe.这样ilvC编码酶的辅酶从NADPH变为NADH,获得ilvC′,如图3所示.以质粒pXMJ19-ilvBN′C′为模板,pX-F,pX-R为引物进行PCR验证,如图4所示,获得的条带3.5 kb(泳道2:基因大小3 610 bp)左右.质粒pXMJ19-ilvBN′C′经Hind III和EcoR I双酶切,理论获得3 610 bp和6 551 bp的条带,分别为ilvBN′C′和pXMJ19质粒片段(图4),获得条带分别与所述相符.使用纯化的ilvBN′C′的PCR产物测序,获得序列除了碱基突变之外,与ATCC14067序列一致,用Vector NTI 11软件绘制质粒pXMJ19-ilvBN′C′图谱,如图5所示.将已构建的pXMJ19-ilvBN′和pXMJ19-ilvBN′C′分别转化至MH-1000后,获得MH-1031和MH-1032,通过20 mL/500 mL三角烧瓶和50 L发酵罐验证3 批次,发酵时间72 h,往复式摇床振幅5 cm,170 r/min,50 L发酵OD和L-缬氨酸见图6.摇瓶发酵初始产酸16.7 g/L,MH-1031产L-缬氨酸18.2 g/L,比出发菌增长9.0%,MH-1032产L-缬氨酸19.5 g/L,比出发菌增长16.8%,比MH-1031增长7.1%;50 L发酵罐发酵测试显示(图6):MH-1031/pXMJ19-ilvBN′,MH-1032/pXMJ19-ilvBN′C′生长比MH-1000缓慢,是由于高表达质粒所致;发酵过程葡萄糖控制1~2 g/L(曲线未给出);出发菌MH-1000经72 h发酵产L-缬氨酸35.2 g/L,MH-1031经72 h产37.3 g/L,比出发菌增长6.0%,MH-1032经72 h产L-缬氨酸38.4 g/L,比出发菌高9.1%,比MH-1031高2.9%(表3).50 L分批补料发酵结果显示:出发菌株MH-1000 72 h产L-缬氨酸35.2 g/L,MH-1032 72 h产L-缬氨酸38.4 g/L,比出发菌株增长9.1%.对L-缬氨酸代谢通路的ilvBN,将AHAS小亚基别构中心的3 个氨基酸定点突变为Gly20Asp,Ile21 Asp和Ile22 Phe,能够完全解除3 种支链氨基酸对AHAS的反馈抑制作用[7].一分子葡萄糖通过EMP途径产生两分子丙酮酸作为合成L-缬氨酸的底物,而一分子葡萄糖通过HMP途径,通过多种酶作用,脱掉一分子碳生成五碳糖,产生的丙酮酸少于EMP途径.EMP途径甘油醛-3-磷酸脱氢酶的辅酶为NADH,HMP 途径的葡萄糖-6-磷酸脱氢酶和6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶的辅酶为NADPH.NADH 辅酶的序列特征是GXGXXGXXXG(X代表一种氨基酸),而NADPH辅酶序列特征是GXGXXAXXXA,改变ilvC的氨基酸序列为Ser34Gly,Leu48Glu和Arg49Phe[1],AHAIR能够利用NADH作为辅酶代替NADPH,通过降低对NADPH的依赖以降低戊糖磷酸途径的物料消耗,相对较高浓度的NADH有助于反应向终产物L-缬氨酸方向进行,进而增加L-缬氨酸产量.【相关文献】[1] HASEGAWA S, UEMATSU K, NATSUMA Y, et al. 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2022-2023学年湖北省武汉市一中高三一轮复习期中质量检测生物试题
2022-2023学年湖北省武汉市一中高三一轮复习期中质量检测生物试题1.真核细胞具备的生物膜系统在细胞的生命活动中具有重要作用。
请据图判断下列关于生物膜的描述,正确的是()A.图中①②③④⑤⑥等结构的膜共同构成了生物膜系统B.细胞核中合成的mRNA,需穿过2层生物膜,与细胞质中的核糖体结合后起作用C.若对图中核糖体上的氨基酸用3 H进行标记,在分泌蛋白形成过程中,放射性物质在细胞结构中依次出现的顺序是⑤②①⑥③D.结构⑥在分泌蛋白形成前后,膜面积基本不变2.蒜素具有抗菌、抗血栓等多种功效,蒜素由蒜氨酸在蒜氨酸酶的作用下分解产生,但新鲜大蒜中蒜素的含量很低。
这是因为在完整的细胞中,蒜氨酸酶储存在液泡中,蒜氨酸存在于细胞质基质中。
以下叙述正确的是()A.液泡膜对蒜氨酸酶的通透性较低,而对蒜氨酸的通透性较高B.研磨生大蒜会破坏生物膜释放蒜氨酸酶,从而生成大量蒜素C.在冰箱中保鲜的大蒜,取出后立即捣碎,能产生更多的蒜素D.野生蒜类植物被天敌取食会产生蒜素,通过传递物理信息避免被采食3. ATP合成酶广泛分布于线粒体内膜、叶绿体类囊体膜、异养菌和光合菌的质膜上,在跨膜H+梯度的推动下合成ATP。
研究人员测定了菠菜叶肉细胞叶绿体类囊体ATP合成酶的活性:首先获得菠菜叶肉细胞的原生质体,然后将原生质体经过适当研磨、离心等,最后测定沉淀物的ATP合成酶活性。
下列相关叙述正确的是()A.可以用盐酸分解菠菜叶肉细胞的细胞壁从而获得原生质体B.研磨的目的是使类囊体膜解体,获得游离的ATP合成酶分子C.可以以无机磷消耗速率或者pH变化速率来反映ATP合成酶活性D.类囊体膜内的H +浓度不会影响代表酶活性大小的化学反应速率4. ATP快速荧光检测仪是基于萤火虫发光原理,利用“荧光素—荧光素酶体系”与ATP发生反应产生光,再根据发光强弱来估测微生物残留量。
下列说法错误的是()A.萤火虫细胞内线粒体是合成ATP的主要场所B.荧光检测仪可检测酸奶中厌氧型微生物的残留量C.ATP为上述荧光素酶催化荧光素的反应提供能量D.细胞中储存了大量ATP为细胞的生命活动提供能量5.如图是某同学验证呼吸作用产生二氧化碳的实验装置,在透明的容器B中放入湿润的种子,以下说法中错误的是()A.设置A装置的目的是为了除去空气中的CO 2,确保实验的科学性B.种子的呼吸作用一般不受光照的影响,但温度会影响呼吸作用的强度C.该装置一定要放在黑暗的环境中,避免光下种子光合作用的干扰D.C瓶中澄清石灰水变浑浊,是种子进行呼吸作用产生了CO 2的缘故6.图甲~戊为植物(2N=16)细胞有丝分裂不同时期的显微照片图,下列叙述正确的是()A.图丙细胞中的染色单体数和DNA分子数相同B.图丁中的染色体比图戊更为分散,更便于观察形态和数目C.图丁细胞中含8对同源染色体,4个染色体组D.15%盐酸解离细胞的本质是盐酸可将细胞间物质水解,降低细胞间的黏着性7.某科研小组研究了“IL-18(白细胞介素18,一种淋巴因子)对核辐射诱导小鼠脾细胞凋亡的抑制作用”,得到了细胞凋亡的相对值(见下表),下列分析正确的是()A.该实验的对照组为甲组B.从乙、丙两组的数据可知,IL-18能够抑制受到核辐射影响的脾细胞的凋亡C.分泌IL-18的细胞在骨髓中成熟D.核辐射引起细胞凋亡的过程中,无特异性mRNA和蛋白质的生成8.人类红绿色盲是由X染色体上的隐性基因a控制的遗传病。
支链氨基酸合成调控机制及菌种选育策略研究进展
支链氨基酸合成调控机制及菌种选育策略研究进展前言支链氨基酸(BBCAs)包括缬氨酸、亮氨酸和异亮氨酸,均为必需氨基酸,机体不能自身合成,只能通过食物补充。
它们不仅能调节蛋白质的代谢和机体免疫力,还能在机体运动中增加蛋白质的合成,降低肌肉蛋白的分解和损伤,是一类特别重要的营养补充剂,广泛运用于医药、食品及饲料生产等行业。
然而,目前国内生产厂家少,产酸水平低,远远不能满足市场的需求,仅配制氨基酸输液每年就需进口上百吨。
因此,了解支链氨基酸的生物合成及代谢调控机制,选育生产性能良好的高产菌株极为重要。
本文主要介绍了支链氨基酸的生物合成和代谢调节,以及高产菌株选育策略研究进展,为国内相关生产提供参考。
1. 支链氨基酸的生物合成途径1.1 生物合成方法:发酵法1.2 主要发酵菌株:谷氨酸棒状杆菌(corynebacterium glutamicum )黄色短杆菌(brevibacterium flavwn )乳糖发酵短杆菌(brevibacterium lactofermentum )大肠杆菌(escherichia coli )1.3 支链氨基酸生物合成途径注:图中虚线内表示三种支链氨基酸的合成途径,虚线内大写字母表示相应中间产物的缩写。
椭圆型内表示合成过程中相应的关键酶。
图1 支链氨基酸生物合成途径(1)乙酰羟酸合成酶(AHAS)(α-酮丁酸→α-乙酰-α-羟基丁酸)有三种同工酶。
分别由ilvBN,ilvGM,ilvIH编码。
ilvBN高效表达阻碍丙氨酸合成,提高支链氨基酸生成量。
有人证明通过将黄色短杆菌ilvBN 基因高效表达,是缬氨酸产量提高了9.85%,同时是丙氨酸和乙酸产量下降了30.49%和20.89%。
(2)二羟基脱水酶(DHAD)(α,β-二羟基-β-甲基戊酸→α-酮-β-甲基戊酸)在谷氨酸棒状杆菌中,该酶受到L-缬氨酸和L-亮氨酸抑制,不过在三种氨基酸都存在的情况下,没有发现协同抑制作用。
15N标记L-亮氨酸
du i i a iy ”N— lucn . cng h gh qu lt L—e i e
K e r s:¨N ;L—e i e;l b lng y wo d lucn a ei
稳定 性 同位素 N 示踪 技术 , 在研 究 多肽 和
方法处 理乳 糖 发 酵 短杆 菌 2 5 , 终 选 出一 株 26 最 L 亮氨 酸 高 产 菌 ( 4号 菌 , l 一 3 I 一+ 2T f e 一A + } - HL ) 可在 1 %葡萄糖 培养基 中积 累 L 亮氨 酸 , 3 一
t a g L h n 1 / .Th N n ih n f“N— lu iewa r h n 9 % , n h r d c u 8 e e rc me t o L—e cn smo et a 8 a dt ep o u tp —
rt a or ha 9 . The r s lsde on ta e h tt e t c ni e w a uia l o r - iy w s m e t n 9 e u t m s r t d t a h e h qu ss t b ef rp o
第 1期
张 亮 等 : N 标 记 L 亮 氨 酸 一
1 / 。产 品 中 N 同位 素 丰 度 > 9 V , 纯 度 > 9 。此 工 艺 适 用 于制 备 高 品 质 N 标 记 L 亮 氨 酸 , 8g L 8 0 N 9 一 具
有 较 高 的经图分 类 号 : 8 73 ; R 1 - 3 TQ1 6 2 2. 文 献标 志码 :A 文 章 编 号 : 0 07 1 ( 0 0 0 — 0 40 1 0 - 5 2 2 1 ) 10 3 - 5
摘 要 : 用 生物 发 酵 法 制 备 ” 标 记 的 L亮 氨 酸 。 以 实 验 室 选 育 获 得 的 突 变 株 黄 色 短 杆 菌 TL 38为 出 采 N 一 U5 — 发 菌 株 , 究适 用 于“ 标 记 L 亮 氨 酸 生产 的实 验 配方 、 酵 工艺 、 纯工 艺 。结 果 表 明 , 株 发 酵产 酸 量 > 研 N 一 发 提 菌
亮氨酸氨肽酶结构
亮氨酸氨肽酶结构亮氨酸氨肽酶结构是指亮氨酸氨肽酶分子中各种元素组成的三维空间结构。
亮氨酸氨肽酶是一种重要的酶类蛋白质,它参与了许多生物化学反应,具有很高的生物活性和极强的稳定性。
下面我们来逐步分析亮氨酸氨肽酶的结构。
第一步,我们来了解亮氨酸氨肽酶的基本结构。
亮氨酸氨肽酶的基本结构包括蛋白质的氨基酸序列、蛋白质的空间结构以及蛋白质的功能活性。
蛋白质的氨基酸序列是由20种氨基酸按一定顺序排列组成的,间以肽键连接成多肽链,而蛋白质的空间结构则是由多肽链在三维空间中的折叠构成的。
蛋白质的功能活性主要是由其空间结构决定的。
亮氨酸氨肽酶是一种典型的蛋白酶,它的分子量约为25-30kDa,由210个氨基酸组成。
第二步,我们来了解亮氨酸氨肽酶结构的形成。
亮氨酸氨肽酶的三级结构是由四个重要的元素共同影响而形成的,包括蛋白质的二级结构、蛋白质的氨基酸侧链相互作用、蛋白质与其配体之间的相互作用以及蛋白质在环境中的折叠和稳定。
蛋白质的二级结构主要由α螺旋、β折叠和无规卷曲构成,氨基酸侧链相互作用包括氢键、范德华力、离子键和亲疏水相互作用等,而蛋白质与配体相互作用则是由空间位阻、电荷分布等因素共同决定的。
第三步,我们来了解亮氨酸氨肽酶结构的功能。
亮氨酸氨肽酶结构的功能主要是由其空间结构与其配体之间的相互作用所决定的。
亮氨酸氨肽酶的主要功能是通过剪切肽键,将多肽链分解为小分子物质。
亮氨酸氨肽酶的活性位点位于其分子的C端附近,由三个氨基酸残基组成,分别是丝氨酸、组氨酸和苯丙氨酸。
活性位点靠近亮氨酸氨肽酶的表面,利用酶切反应使多肽链的链条断裂,使其变为更小的多肽链或单肽,以完成其催化功能。
总之,亮氨酸氨肽酶结构是由其基本结构、形成及其功能三个方面共同决定的。
了解亮氨酸氨肽酶的结构,对于我们研究其功能、构建新型多肽链药物,以及对蛋白质折叠和稳定性的研究都有着重要的参考价值。
黄色短杆菌中L-异亮氨酸同位素丰度及分布的分析方法研究
第43 卷第 3 期2024 年3 月Vol.43 No.3496~500分析测试学报FENXI CESHI XUEBAO(Journal of Instrumental Analysis)黄色短杆菌中L-异亮氨酸同位素丰度及分布的分析方法研究赵雅梦1,2,范若宁1,2,雷雯1,2*(1.上海化工研究院有限公司,上海 200062;2.上海市稳定同位素检测及应用研发专业技术服务平台,上海 200062)摘要:随着代谢组学、蛋白质组学等生命科学领域的迅猛发展,稳定同位素标记试剂,尤其是标记氨基酸,因无放射性、与非标记化合物理化性质一致等优势得到广泛应用。
该文建立了一种稳健、快速的氨基酸同位素丰度分析方法。
方法采用Hypersil Gold Vanquish(100 mm × 2.1 mm,1.9 μm)色谱柱,以水和含0.1%甲酸的甲醇为流动相,正离子模式下进行液相色谱-高分辨质谱联用(LC-HRMS)分析;测得细菌发酵液中L-异亮氨酸-15N的同位素丰度为98.58%,相对标准偏差为0.03%,可应用于不同稳定同位素(15N或13C)示踪的黄色短杆菌中L-异亮氨酸同位素丰度及分布的准确测定。
该方法具有简便、灵敏、稳健等优点,有望在合成生物学、同位素示踪代谢流等研究中发挥重要作用。
关键词:同位素标记氨基酸;液相色谱-高分辨质谱(LC-HRMS);黄色短杆菌;同位素分布及丰度中图分类号:O657.72;O629.7文献标识码:A 文章编号:1004-4957(2024)03-0496-05Analysis of Isotope Abundance and Distribution for L-Isoleucinein Brebvibacterium flavumZHAO Ya-meng1,2,FAN Ruo-ning1,2,LEI Wen1,2*(1.Shanghai Research Institution of Chemical Industry Co. Ltd.,Shanghai 200062,China;2.Shanghai Professional Technology Service Platform on Detection and Application Development for Stable Isotope,Shanghai 200062,China)Abstract:In the rapidly advancing life science fields such as metabolomics and proteomics,stable isotope labeling reagents that are non-radioactive and have similar physiochemical properties with un⁃labeled compounds have been widely utilized. Biological fermentation is one of the major synthesis ap⁃proaches for labeled amino acids. In this study,we have established an accurate,robust,and rapid method to determine the isotope abundance of the amino acids in the fermentation broth to aid in early assessment of batch quality and optimization of fermentation conditions and amino acid yield. A Hy⁃persil Gold Vanquish column(100 mm × 2.1 mm,1.9 μm)with water and methanol containing 0.1%formic acid as mobile phase and a liquid chromatography-high resolution mass spectrometry(LC-HRMS) system in positive ion mode were used for the study. The isotopic abundance of L-iso⁃leucine-15N samples was determined to be 98.58%,closely matching the indicated value(>98%),with a relative standard deviation of 0.03%,demonstrating excellent accuracy and precision for the method. Then the method was successfully applied to determine the isotopic abundance and distribu⁃tion of L-isoleucine in Brevibacterium flavum labeled with 15N or 13C. The proposed method is simple to perform,convenient,highly sensitive,and robust,holding wide application potentials in syn⁃thetic biology and research in stable isotope traced metabolic pathways.Key words:stable isotope labeled amino acid;liquid chromatography-high resolution mass spec⁃trometry(LC-HRMS);Brebvibacterium flavum;isotope distribution and abundance利用同位素标记技术将化合物中普通原子替换为同位素核素所合成的稳定同位素标记化合物,结合质谱技术,已在蛋白质组学、代谢组学、生物靶标发现、临床诊断等生命科学研究中发挥重要作用[1-4]。
2023届辽宁省抚顺市普通高中第一次模拟考试生物及答案
2023年抚顺市普通高中高三模拟考试生物学注意事项:1.答卷前,考生务必将自己的姓名、准考证号填写在答题卡上。
2.答选择题时,选出每小题答案后,用铅笔把答题卡对应题目的答案标号涂黑。
如需改动,用橡皮擦干净后,再选涂其它答案标号。
答非选择题时,将答案写在答题卡上。
写在本试卷上无效。
3.考试结束后,将本试卷和答题卡一并交回。
一、选择题:本题共15小题,每小题2分,共30分。
在每小题给出的四个选项中,只有一项是符合题目要求的。
1.下列关于生物种群的叙述,正确的是A.不同种群的生物之间均存在生殖隔离B.年龄结构能直接决定种群密度C.种群中个体的迁入与迁出会影响种群的基因频率D.使用农药有利于将害虫种群数量长期控制在较低水平2.下列关于生命物质和生命活动的叙述,正确的是A.酶和核酸都是含有氮元素的生物大分子,脱氧核苷酸控制酶的合成B.高等植物细胞间不能进行信息交流,因其表面是细胞壁,没有糖蛋白C.抗体、受体、酶和tRNA都具有专一识别的特点,其中只有抗体在内环境中发挥作用D.给正常小鼠饲喂添加了甲状腺激素的饲料后,小鼠的代谢水平会上升3.下列关于遗传物质基础的叙述,正确的是A.格里菲思通过肺炎链球菌转化实验证明了使R型菌转化成S型菌的“转化因子”是DNAB.赫尔希和蔡斯做的T2噬菌体侵染大肠杆菌的实验属于对比实验C.科学家运用了同位素标记和差速离心的方法,证明了DNA的半保留复制D.人类基因组计划测定的是23条染色体上DNA的碱基序列4.光作为一种信号,能影响、调控植物生长和发育的全过程。
下列相关叙述正确的是A.植物的种子萌发都需要在有光的条件下才能进行B.光敏色素是一类蛋白质,分布在植物的各个部位,其中在叶肉细胞内比较丰富C.在受到光照射时,光敏色素的结构会发生变化,这一变化的信息最终会传导到细胞核内,影响特定基因的表达D.光敏色素主要吸收红光和蓝紫光,所以环境中的红光和蓝光,对于植物的生长发育非常关键5.下丘脑既是神经系统重要组成部分,又是联系神经调节和体液调节的枢纽,它在维持内环境稳态中起着非常重要的作用。
亮氨酸生产工艺
亮氨酸生产工艺亮氨酸(L-leucine)是人体内必需的氨基酸之一,也是一种重要的蛋白质成分。
现在,亮氨酸已经广泛应用于食品、保健品和医药等领域。
下面我将介绍一种亮氨酸的生产工艺。
首先,亮氨酸的生产主要通过微生物发酵的方式进行。
最常用的微生物是大肠杆菌、首乌曲霉和酿酒酵母等。
这些微生物经过经过基因工程改造,使其能够高效地合成亮氨酸。
工艺的第一步是菌种培养。
首先,将选定的微生物菌种接种到培养基中,然后进行发酵。
培养基通常包含碳源、氮源、无机盐和生长因子等物质。
发酵条件包括温度、湿度、pH值、通气速率和搅拌速率等参数的控制。
发酵时间一般持续24-48小时。
在发酵过程中,微生物会利用培养基中的碳源进行代谢,产生亮氨酸。
亮氨酸的合成由多个酶催化的反应组成,包括酶聚酰化、氨基酸合成和分裂、脱氢作用等。
为了提高产量,需要在发酵过程中合理控制这些反应的速率和平衡。
发酵结束后,需要对发酵液进行分离和纯化。
常用的分离方法有离心、滤液和沉淀等。
纯化主要通过各种色谱技术进行,如离子交换色谱和凝胶过滤色谱等。
这些技术能够去除发酵液中的杂质,提高亮氨酸的纯度。
最后,通过结晶、干燥和粉碎等步骤,得到成品亮氨酸。
总的来说,亮氨酸的生产工艺主要包括菌种培养、发酵、分离和纯化等步骤。
不同的微生物菌株和发酵条件对亮氨酸的产量和纯度有着重要影响。
因此,需要通过优化发酵条件和改良菌株,提高亮氨酸的生产效率和质量。
目前,亮氨酸的生产工艺已经相对成熟,能够满足市场需求。
然而,随着人们对健康食品和保健品的需求增加,对亮氨酸的需求也会进一步增长。
因此,未来的发展方向主要是提高亮氨酸的产量和质量,并探索更加环保和经济的生产工艺。
亮氨酸的生产工艺是一个综合性的工程,需要涉及发酵、分离、纯化等多个领域的知识和技术。
通过不断的研究和创新,相信亮氨酸的生产工艺将会进一步完善,为人们的健康和生活带来更多益处。
基因敲除降低L-缬氨酸发酵中亮氨酸和异亮氨酸含量的研究
基因敲除降低L 一缬氨酸发酵中亮氨酸和异亮氨酸含量的研究胡炎华,朱亚然。
宫卫波(廊坊梅花生物技术开发有限公司,徊-I l t 廊坊,065001)摘要:黄色短杆菌(B r evi abact er i um f l avum )是L 一缬氨酸生产的重要菌株,但缬氨酸发酵中常出现亮氨酸、异亮氨酸含量超标的问题。
本研究敲除编码黄色短杆菌亮氨酸和异亮氨酸合成的关键基因.自主构建得到了工程菌株M H 一1000一A i l vA 、M H 一1000一A l euA 和M H 一1000一A i l vA △l euA 。
对这些工程菌株进行摇瓶发酵和50L 罐发酵,结果表明,工程菌株有效地降低了L 一缬氨酸发酵液中L 一亮氨酸和L 一异亮氨酸的含量.对于缬氨酸的高纯度生产具有一定的实际意义。
关键词:黄色短杆菌;基因敲除;L 一缬氨酸;亮氨酸;异亮氨酸St udi esonR educi ng Leuci ne and l s ol euci ne i n L -va l i neFer m ent at i on by G e ne K nockout Y anhuaH U Y a —hua ,ZH U Y a —r an ,G O N G Wei —bo (M ei H ua B i otech(Langf ang)C o .,Lt d ,Langfang065001,Chi na)A bst r a ct :B r evi abac t e r i um f lavum i sani m por t ant m i c r oor gani s m f or L -val i ne pr oduct i on .H ow e —ver ,ther e w er e accom pani ed wi t h excess i ve l evel s of l euci ne and i sol eu ci ne i n L -val i ne f er m en —t a -t i on .I n t hi s st udy ,t he key ge ne f or l e uc i ne and i sol eu ci ne synt hesi sw e r eknocked out ,a ndt hr ee r ec om bi nant st r ai ns ,nam e d M H 一1000一△i l vA ,M H 一1000-A l euA and MH -1000一A i l vA △f e 姒w er er e cei ve d .T hese s t rai ns w er ef er m e nt ed i n f l as k and t hen i n a50L ferm ent or .T her esul t i s t hat t he r ec om bi nant s t rai nsca nef fect i vel y r educ e t heco nt en tof L-l euci ne and L ——i sol e uci ne i n L —val i ne fer m ent at i on br ot h .t hi si s s i gni f i cant l y for hi gh puri t y L -va l i ne product i on .K eyw or ds :B r evi abact eri um fl avum ;geneknockout ;L —val i ne ;Leuci ne ;I sol euci neL 一缬氨酸属于中性氨基酸.是人体必需的八种氨基酸之一.广泛应用于食品、医药、化妆品、饲料等领域,与L 一亮氨酸、L -异亮氨酸一起被称为支链氨基酸[1-31。
氨基酸谷等化学物质的发酵过程
氨基酸
α 碳原子分别以共价键连接氢原子、羧基和氨基及侧链。 侧链不同,氨基酸的性质不同。
上述氨基酸结构通式具有两个特点:①具有酸性的一 C则O具O有H和不碱对性称的碳一原N子H,2,因为此两是性光电学解活质性;物①质如。果甘R氨≠酸H, (分子式中R=H)无不对称碳原子,因而无D-型及L-型 之分,其余α-氨基酸的α-碳原子皆为不对称碳,故都有 D-型及L-型2种异构体。氨基酸的D—则或L别是以L-甘 油醛或L-乳酸为参考的。凡α-位上的构型与L-甘油醛 (或L-乳酸)相同的氨基酸皆为L-型,相反者为D-型。
日本的味之素、协和发酵及德国的德固沙 是世界氨基酸生产的三巨头。它们能生产 高品质的氨基酸,可直接用于输液制剂的生 产。
日本在美国、法国等建立了合资的氨基酸 生产厂家,生产氨基酸和天冬甜精等衍生物。
国内生产氨基酸的厂家主要是天津氨基酸公司, 湖北八峰氨基酸公司,但目前无论生产规模及产 品质量还难于与国外抗衡。
I 乙醛酸循环(TCA 循环支路)
乙酸
乙酰-CoA
(乙酰--CoA合成酶)
异柠檬酸
(异柠檬酸裂合酶)
苹果酸 (苹果酸合成酶) 琥珀酸 + 乙醛酸
4.异柠檬酸脱氢酶活力强 提供NADPH,用于还原α-酮戊二酸生成谷氨酸,形成氧化还原共扼体系
5.氨的导入
合成谷氨酸的反应有3种:
谷氨酸脱氢酶
α-酮戊二酸 + NH4+ + NADPH
采取措施:少量多次流加尿素,维持最 适生长温度,减少风量等,促进菌体生 长。
氧对氨基酸发酵的影响及其控制
要求供氧充足的谷氨酸族氨基酸发酵:生 物合成与TCA循环有关。
精氨酸生产工艺
黄色短杆菌生产L一精氨酸发酵工艺
1.2.4发酵罐发酵培养基各成分及用量(g· L ):葡 萄糖50—200,玉米浆1O一20,(NH4)2SO4 10—50, 尿 素3,KH2PO4 1.0,MgSO4· 7H20 0.5, FeSO4· 7H20 0.02,MnSO4· H20 0.02生物素50lxg· L~, pH7.O~ 7-2,实验时应对上述培养基成分作相应调整 灭菌条件:均为121℃ ,20min
黄色短杆菌生产L一精氨酸发酵工艺
1.3培养条件 1.3.1种子培养条件:从培养24h的斜面上挑取一 环菌体接人摇瓶种子培养基,种子培养基为 250ml三角瓶装30ml, 在往复式摇床上30℃ , 120r· rain~,培养18h 1-3.2摇瓶发酵培养条件:从培养好的种子液中吸 取2m1种液接人摇瓶发酵培养基,摇瓶发酵培养 基为300ml三角瓶装20ml, 在往复式摇床上 30℃,120r· min ,培养96h 1-3_3 20L发酵罐补加试验培养条件:装液量12L, 用氨水自动流加控制pH6.8~7.2,通气量0.6~ 1.0L/min,转速150~500r/min,用转速和风量控制 溶氧>l5% ,培养温度为3O℃
精氨酸生物合成途径
黄色短杆菌生产L一精氨酸发酵工艺
1 材料和方法 1.1菌种:黄色短杆菌(Brev acteriumnavum) 1.2培养基成分 1.2.1斜面培养基各成分及用量(g· L ): 葡萄糖10.0,酵母膏5.0,牛肉膏5.0,蛋白胨 10.0,NaC1 5.0,琼脂20.0,pH7.0-7.2 1.2.2摇瓶种子培养基各成分及用量(g· L ):葡萄 糖25.0, 玉米浆20.0,(NH4)2SO4 2.5,尿素3.0, KH/PO4 1.0,MgS040.5,CaCO3 30,pH7.0-7.2 1.2.3摇瓶发酵培养基各成分及用量(g· L ):葡萄 糖120.0,玉米浆20.0,(NH4)2so~5o.0,尿素3.0, KH2PO4 1.0,MgSO4· 7H2O0.5,,FeSO4· 7H20 0.02, MnSO4· H2O 0.02生物素501xg· L~,CaCO3 50.0, pH7.0~7.2
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化学计量平衡式
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材料和方法
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通过途径分析获得的反应模型 (表 !) 。任何一 个基础反应模型都包含一系列无用的反应 (用 “/” 表 示) 。基础反应模型的求解可以通过 ]"#0"5 线性 规划实现。由表 ! 可知, 各反应模型的 0+亮氨酸的 得率由高到低分别为 <-: /^M; <!、 <%、 <&: /^,; <’、 <,: /^’; <M、 <N: /^&; <P、 <-/: /^%; <--: /^!; <-!: /^-。 丙酮酸是 0+亮氨酸生成途径中的关键节点, 亦
作者简介: 刘
辉 (0%7$ C ) , 男, 山东东营人, 博士研究生, 研究方向为代谢工程。 :9;5,-:-,DED,%7$# @ ?5EFFA BF;A B=
收稿日期: #$$89$79$7;接受日期: #$$890$9#!;修回日期: #$$890$900
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是 0+亮氨酸生物合成的直接前体。在 <M <N <P <-/ <-- <-! 模型的 J-N 反应中磷酸烯醇式丙酮酸羧激酶 将大量的 $L$ 转化为 R"", 从而减弱了丙酮酸的合 成, 造成了碳架的浪费, 降低了 0+亮氨酸的转化率。 丙氨酸合成途径分析表明丙酮酸是丙氨酸合成 的直接前体, 丙酮酸脱氢酶缺失或活性低有利于丙
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微 生 物 学 报 !"#$ %&"’()&(*(+&"$ ,&-&"$
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酸的代谢途径, 确定了 H9亮氨酸合成的最佳途径和最大理论产率。通过比较途径分析所获得的反应模型, 确定了 丙酮酸和乙酰辅酶 ) 是 H9亮氨酸合成途径的关键节点。在此基础上改变外界环境因子, 强化 H9亮氨酸生物合成途 径中丙酮酸和乙酰辅酶 ) 两个关键节点的代谢流, 以期进一步提高 H9亮氨酸产率。结果表明, 经过谷氨酸以及醋 酸铵的调节, 代谢途径流量发生显著变化, H9亮氨酸产量有明显提高。 途径分析; 黄色短杆菌 关键词:H9亮氨酸; 中图分类号: 1I%## 文献标识码: ) 文章编号: $$$098#$%(#$$")$#9$#!%9$’
每升含葡萄糖 ($X, 玉米 脂粉 #$X。$ 种子培养基: 浆 #’;H, 尿素 #[$X (分消) , 磷酸二氢钾 0[$X, 硫酸镁 硫酸锰 $[$0X, 蛋氨酸 $[(X, 生物素 $[!X, \M0 ($$ X, % 每升含葡萄糖 0($X, 玉米浆 #$$ X。&发酵培养基: % 硫酸铵 #!X, 醋酸铵 ##X, 磷酸二氢钾 0X, 硫酸 !0;H, 硫酸锰 $[$0X, 谷氨酸 $[!#X, 蛋氨酸 $[’X, 镁 $[!X, 异亮氨酸 $[$8X, 生物素 ’$ \M0 ($$ X, X。以上培养 % % 基 用 Y5]T 调 *T "[$ & "[#,"’^_5 蒸 汽 灭 菌 [ ] #$;,= 0$ 。 ’() 培养方法 ’()(’ 斜面活化培养:#7‘ 培养 #$ & #!E。 ’()() ’H 自控发酵罐分批发酵: ’H 发酵罐中装液 量 (H, 接种量 ($$;H, 流加氨水控 #7‘ 通风比 0 a 0, 通 过 流 加 泡 敌 消 泡。 搅 拌 转 速 为 制 *T 在 "[$, 发酵 8!E。 ’$$+ b ;,=, 分析方法 ’($ 发酵液稀释一定倍数后, 在波长 ’($(’ ]/ 值测定: 8#$=; 处用 "’# 分光光度计测定。 采 用 :-,>29 ’($() 发 酵 液 中 H9亮 氨 酸 含 量 测 定: ))) 氨基酸分析仪测定。
图! "#亮氨酸生物合成代谢网络
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