压片法制片
各种片剂的制备方法有什么特点
各种片剂的制备方法有什么特点片剂是一种固体剂型，广泛应用于药物制剂中。
各种片剂的制备方法根据药物的性质、要求以及制备过程的复杂程度不同，有着各自的特点。
下面将具体介绍一些常见的片剂制备方法及其特点。
一、直接压片法直接压片法是最常用的一种片剂制备方法。
其制备过程主要分为三个步骤：混合粉末、压片成型和后处理。
特点：1. 简单快捷：直接压片法无需特殊设备和复杂的制备工艺，省去了部分工序，制备过程相对简单且快速。
2. 药物稳定性高：由于制备过程中避免了高温及激光照射等对药物稳定性有害的因素，因此直接压片法能保持药物的稳定性。
3. 锁定颗粒和颗粒分布：直接压片法可使药物颗粒均匀地分布在整个片剂中，从而提高了药效的稳定性和一致性。
4. 容易控制剂量：通过调整药物颗粒的大小和混合比例，可以轻松地控制片剂的剂量。
5. 可以制备复合片剂：直接压片法可用于制备将多个药物混合到同一片剂中的复合片剂。
二、湿法制片法湿法制片法是通过将药物与一定量的溶剂进行混合，使药物成为可塑性较好的胶体混合物，然后采用压片机械将药物混合物压制成片剂。
特点：1. 药物溶解快速：在湿法制片法中，药物溶解于溶剂中，使药物能够迅速释放并发挥药效。
2. 适用范围广：湿法制片法适用于多种药物，无论是疏水性的还是亲水性的。
3. 能制备含高剂量药物的片剂：由于湿法制片法药物溶解度高，可以制备高剂量药物的片剂。
4. 可增加药物稳定性：湿法制片法中使用的溶剂通常具有高温杀菌和保湿效果，有助于提高药物的稳定性。
5. 需要专用设备：湿法制片法需要使用较为专门的设备，包括搅拌机、压片机等。
三、干法制片法干法制片法是将药物及辅料直接混合均匀后，利用物理或化学力作用使其具有一定的结合力，并通过压制成型制备片剂。
特点：1. 适用性广泛：干法制片法适用于多种药物，包括颗粒、粉末等多种形式的药物。
2. 节省时间和能源：干法制片法省去了水溶解过程，相对于湿法制片法，制备过程更加简洁、省时和省能源。
压片生产工艺
压片生产工艺压片是一种常见的制片工艺，它采用模具和机器设备将原料加工成具有一定形状的产品。
压片生产工艺包括原料处理、制粒、调整湿度、压片和烘干等几个主要步骤。
下面将详细介绍这些步骤。
首先是原料处理。
原料通常是粉状的或颗粒状的，需要经过筛选、研磨和混合等处理工序。
筛选是为了去除杂质，确保原料的纯净度；研磨是为了使原料颗粒的粒径更加均匀，有利于后续的制粒过程；混合则是将不同成分的原料按一定比例混合在一起，以确保产品的质量稳定。
接下来是制粒。
制粒是将原料加工成颗粒状的过程。
通常采用湿法制粒，先将原料与适量的溶剂混合，再通过制粒机械进行制粒。
制粒的目的是使原料颗粒均匀，减小颗粒间的空隙，提高压片的密实度和产品的质量。
然后是调整湿度。
制粒完后的原料通常是湿的，需要根据产品要求进行湿度调整。
湿度的调整可以通过加湿或减湿的方法实现。
加湿一般通过喷雾或蒸汽来实现，减湿则可以通过通风或热风等方式来实现。
调整湿度是为了使产品达到最佳的压片效果，保证产品的质量。
接下来是压片。
压片是将经过上述步骤处理好的原料放入模具，然后通过压片机进行压缩成型的过程。
在压片过程中，通过模具的挤压作用，原料颗粒之间相互粘结，形成一定的形状和尺寸。
最后是烘干。
压片后的产品通常是湿的，需要经过烘干来去除水分，使产品变得更加坚硬和稳定。
烘干通常使用烘干机或烘箱进行，温度和时间根据产品的要求进行调整。
烘干过程中需要注意控制温度和时间，确保产品烘干均匀，不产生变形或开裂。
以上就是压片生产工艺的主要步骤。
在实际生产中，还需要根据产品的具体要求进行工艺参数的调整和控制，以确保产品质量的稳定性和一致性。
压片工艺的优化和改进有助于提高产品的生产效率和质量，减少生产成本，提高企业的竞争力。
因此，压片工艺的研究和应用具有重要意义。
片剂的制备方法范文
片剂的制备方法范文片剂是指将药物和辅料按照一定比例进行混合、制粒、压制得到的固体制剂。
制备片剂的主要方法有湿法制片、干法制片和制粒-压片法。
下面将详细介绍这三种片剂制备方法。
一、湿法制片法湿法制片法是指将药物和辅料按照一定比例混合，加入适量的溶剂形成一定浓度的糊状混合物，再进行制粒和压片的方法。
具体步骤如下：1.配制糊剂：将活性药物、辅料和一定量的溶剂加入混合池中，进行均匀搅拌，使其形成均匀的糊状混合物。
2.制粒：将配制好的糊剂通过制粒机进行制粒，将糊状物体转化为颗粒状。
3.干燥：将制粒后的颗粒进行干燥，使其含水量达到合适的范围。
4.造粒：将干燥后的颗粒通过造粒机进行二次制粒，使颗粒更加均匀。
5.压片：将造粒后的颗粒通过压片机进行压片，使颗粒形成固定的片剂。
6.整形：将压制好的片剂进行整形和修整，使其外观美观且符合标准。
二、干法制片法干法制片法是指直接将药物和辅料按照一定比例混合，通过制粒和压片的方法制备固体片剂。
具体步骤如下：1.配制制粒剂：将药物和辅料按照一定比例混合，并进行均匀搅拌。
2.制粒：将混合好的制粒剂通过制粒机进行制粒，使其形成颗粒状。
3.干燥：将制粒后的颗粒进行干燥，使其含水量达到合适的范围。
4.压片：将干燥后的颗粒通过压片机进行压片，使颗粒形成固定的片剂。
5.整形：将压制好的片剂进行整形和修整，使其外观美观且符合标准。
三、制粒-压片法制粒-压片法是指将药物和辅料按照一定比例混合制粒，再将制粒后的颗粒通过压片机进行压片的方法。
具体步骤如下：1.配制制粒剂：将药物和辅料按照一定比例混合，并进行均匀搅拌。
2.制粒：将混合好的制粒剂通过制粒机进行制粒，使其形成颗粒状。
3.压片：将制粒后的颗粒通过压片机进行压片，使颗粒形成固定的片剂。
4.整形：将压制好的片剂进行整形和修整，使其外观美观且符合标准。
整个制备过程中需要注意以下几个关键环节：1.药物和辅料的选择：药物和辅料的选择直接影响到片剂的质量和功效。
植物染色体压片法
第一部分植物染色体压片法一实验目的1. 学习并掌握根尖处理、染色、压片及制片观察的方法。
2. 观察有丝分裂各时期染色体的形态变化，了解有丝分裂全过程。
二实验原理高等植物有丝分裂主要发生在根尖、茎尖生长点及幼叶等器官的分生组织(分生区)，其中根尖是最常用的材料：①根尖取材容易，操作和鉴定也比其它器官与组织方便；②实验室内采用种子萌发后所长出的新鲜幼嫩根尖，不受植物生长季节的影响和限制，并且可以大量获得；③对于某些珍贵而又稀少的试验材料，取用自然条件下生长植株的根尖，比取用茎尖、花器等对材料的伤害要小得多；④采用实验室内种子发根，切取根尖后的种苗通常还可以进行正常种植，利于后续研究进行。
有丝分裂期在整个细胞周期中所占的时间相对较短，有丝分裂制片的主要目的是进行染色体鉴定，希望观察到更多分裂相，尤其是分裂中期相，通常要对材料进行不同的预处理。
预处理主要通过抑制和破坏纺锤丝的形成来获得更多的中期分裂相；同时，预处理还可改变细胞质的粘度，促使染色体缩短和分散，便于压片和观察。
常用的预处理有物理法、化学法、混合处理法等。
植物细胞的细胞壁对细胞形态和结构起支撑和保护作用，分生组织的细胞壁结构将分生细胞结合成一个整体，因此在压片之前需要采用适当方法软化或部分分解细胞壁使细胞间易于分离，这一操作称为解离。
同时，解离也可适当清除部分细胞质，使细胞质背景趋于透明化，便于观察染色体。
常用的解离方法主要有酸解法和酶解法。
酸解法：步骤简便、容易掌握。
根尖分生组织经过酸解和压片后，呈单细胞。
酸解法广泛用于染色体计数、核型分析和染色体畸变的观察及相关分析。
酶解法：常用于染色体显带技术或姊妹染色单体交换研究。
通过解离和压片，分生细胞的原生质体能够从细胞壁里压出，使染色体周围不带有细胞质或仅有少量细胞质，让后续制片处理直接作用于染色体。
在普通光学显微镜下观察染色体形态结构还需要对材料进行染色，通常采用染色体染色效果好而细胞质着色少的碱性染料、酸性染料或孚尔根试剂染色。
有丝分裂实验步骤
四。
实验步骤
（1）取洋葱或百合根尖永久制片观察，在低倍镜下观察时可以根据染色体的分布情况及细胞核的变化（核仁、核膜是否消失等），大致了解分生区中细胞分裂情况。
观察时可参考有丝分裂的照片，掌握分裂过程中各个时期的特征，并在显微镜下识别出每一个分裂时期。
（2）材料处理用刀片截取已经培养好的洋葱鳞茎长出的幼根根尖，其长度以5mm为宜。
截取下的根尖放入固定液中固定15~30min。
然后用水冲洗后转入1mol/L盐酸最后给，在60C°下水解20min后，水洗1~2次即可压片观察。
（3）制片-压片法压片时，取已处理好的根先放在载玻片上，用解剖刀或解剖针，把根尖自伸长区以上部分切去，只剩下1~2mm长的一段，滴一滴醋酸洋红溶液染色，约10min后，根尖染为暗红色即可。
染色后加盖玻片，用大拇指压盖玻片，使根尖细胞分散开，即可在显微镜下观察。
（4）观察首先认清根冠、分生区、生长区和成熟区（根毛区）四部分。
然后放在显微镜下，用10X物镜观察，并将分生区移至视野中央；换高倍物镜仔细寻找，找出分裂期内典型的分裂相。
五．注意事项
（1）制片可以放在酒精灯下略微加热，这样可以使细胞质破坏，增进染色体染色。
但不宜过于热，如将染料煮沸则使细胞干缩毁坏，染料沉淀而不能观察；可用卡宝品红染液替代染色，把核和染色体染为红紫色，细胞质一般染不上颜色，北京清晰。
（2）压片时注意不要一次性完成。
首先轻压，在显微镜下观察分散的程度，如重叠度高，冲锋服前面的操作，直至视野内细胞分散均匀。
六．思考题
（1）在显微镜下处于分裂中期的细胞内，染色体是如何分布的
（2）绘制植物有丝分裂各时期示意图。
细胞学诊断组织印片、压片的制备
细胞学诊断组织印片、压片的制备细胞学诊断组织印片、压片的制备（一）组织印片：1．用锋利刀片剖开刚切取的新鲜肿瘤组织或淋巴结等，然后用清洁载玻片轻压于组织剖面处，将组织表面的细胞成分印在玻片上。
用稍微加温的载玻片制备印片时，可印得较多细胞。
2．制作淋巴结印片前，应先用滤纸吸去淋巴结切面上的血液、组织液。
（二）压片：1．选取微小薄片组织平铺于一张载玻片上，再用另一张载玻片叠加其上并予轻压。
2．脑组织质软，易于制作压片；稍硬的组织需切成细碎薄片制作压片。
四、涂片的固定（一）用于HE染色和巴氏染色的涂片必须湿固定，即涂片后立即进行固定。
乳头溢液涂片和液体标本离心沉淀物涂片，应待涂膜潮干（即周膜稍干而其中央区域未干）时进行固定。
用于瑞氏染色、May-Grünwald姬姆萨染色和免疫细胞化学染色的涂片，必须干固定，即待涂片稍干后再进行固定。
（二）固定液1．乙醇－冰醋酸液：95%乙醇∶冰醋酸＝99∶1。
常用。
2．乙醇－乙醚液：95%乙醇49.5ml, 乙醚49.5ml, 冰醋酸1ml。
较常用。
3．甲醇：滴加在干燥涂片上，用于瑞氏染色、May-Grünwald 姬姆萨染色和免疫细胞化学染色。
4．丙酮：适用于酶类染色。
5．Carnoy液：由无水乙醇、氯仿、冰醋酸按6:3:1比例混成，适用于显示核酸、糖原、黏液染色。
涂片在Carnoy液固定3～5min后，应移入95%乙醇中继续固定。
6．对于液体标本的离心沉淀物、食管拉网获取的小块组织或吸出物中的细小组织块等，固定于4%中性甲醛液中1h，然后制作常规石蜡包埋切片。
（三）固定方法1．浸入法：（1）将稍为干燥（不能完全干燥）的涂片直接浸泡于固定液内至少15 ～30min。
（2）因细胞容易脱落，宜以一个盛有固定液的容器只固定一例标本的涂片；一个容器固定多例涂片时，有可能造成的肿瘤细胞交叉污染。
（3）必要时可将标本涂在硅化载玻片上，以防脱落。
（4）固定液重复使用时，应先用滤纸过滤。
压片法实验报告
题目：压片法实验报告目的：掌握压片法的基本技术，以葱为例观察植物有丝分裂的各个时期,并对葱的染色体计数。
材料：葱根尖。
方法与操作步骤一、取材：上午8:30取洁净的葱根尖，取尖端2-3cm长于称量瓶中。
二、前处理：为了得到更多中期分裂项的细胞，同时使染色体缩短和良好分散，可对根尖进行预处理。
处理方法为：浓度为0.002M的8-羟基喹啉前处理3小时三、固定：卡诺氏（无水乙醇：冰醋酸=3:1）固定液（用量应在材料大小的20倍以上）固定9个小时。
四、解离1、用蒸馏水冲洗材料后，用50%乙醇处理30分钟。
2、1mol／L盐酸解离37分钟。
3、软化45%冰醋酸处理30min。
五、染色：改良苯酚品红染色10-18个小时。
六、制片1、取一个根尖放于一张洁净的载玻片的中间。
2、切取根尖端的3-4mm。
3、在材料上滴一滴蒸馏水，盖上盖玻片。
4、用食指和中指固定住盖玻片，然后用笔平整的一端撞击盖玻片，用吸水纸吸取多余水分。
七、镜检1、镜检时先用10*10倍需找比较适合观察的各分裂相细胞。
2、然后在换10*40倍进一步观察所选细胞的染色体分散效果如何，是否在一个近似的平面上。
选取染色体分散比较好，且近似在一个平面上的中期分裂相的细胞做染色体计数；选取典型的各分裂时期观察有丝分裂的前期、中期、后期和末期。
3、将10*40倍下选好的细胞换到油镜（10*100）倍观察，在100倍物镜下观察需要滴香柏油在盖玻片上。
结果与分析一、结果分析1、染色体计数的观察如下列图片所示2n=162n=162n=16 通过以上的观察数出葱染色体条数为2n=16。
1、根尖的选取时间应该在植物细胞分裂最旺盛的时刻，具体时间可以参考前人的研究，如果没有经验可以借鉴则要不同时间段多次取材以作比较。
本实验是根据前人的经验在上午8:30取材。
2、最好在根尖3-5cm长时取材。
3、前处理的时间及8-羟基喹啉的浓度要依材料染色体的大小而定。
如果是大染色体则需要处理时间长，小染色体需要处理的时间短。
压片步骤以及注意事项
压片步骤以及注意事项压片是一种将颗粒状物质制成片剂的常用方法，在药学、化工等领域都有广泛应用。
下面将介绍常见的压片步骤以及注意事项。
压片步骤：1.准备工作：-根据所需的制片量计算原料比例，并准备好所需的原料。
-清洁和校准药片机，确保机器处于正常工作状态。
-准备好配方所需的辅助物质，如润滑剂、助剂等。
2.原料预处理：-检查原料的质量，并根据需要进行筛选或研磨。
-将原料进行混合，以保证成分均匀分布。
3.混合：-将原料放入药片机的料斗中，并启动机器。
-调整药片机的参数，如转速、压力等，以控制压片过程。
-把原料混合均匀，形成良好的流动性。
4.压片：-将混合好的原料放入模具中，并用压头将原料压实。
-根据需要可以采用不同的压头形状，以获得不同形状的片剂。
-调整压力和速度，以确保片剂的质量和稳定性。
5.松模：-等待片剂固化一段时间后，将模具打开，取出片剂。
-注意慢慢松动模具，以防止片剂断裂或变形。
6.干燥：-根据需要，将片剂放入烘干设备中进行干燥。
-控制烘干温度和时间，以确保片剂的干燥程度。
7.包装：-检查片剂的质量和外观，并进行必要的清洁。
-使用适当的包装材料包装片剂，防止受潮、氧化或污染。
压片注意事项：1.质量控制：-严格控制原料的质量，并确保其符合规定的标准。
-进行适当的原料检测和分析，以确保制得的片剂质量合格。
2.设备维护：-定期清洁和校准药片机，以保持机器的正常工作状态。
-注意机器的运行参数，如温度、压力、转速等，避免超过设定的范围。
3.混合均匀：-确保原料的充分混合，以防止成分不均匀或过多冷凝物的产生。
-可以采用适当的混合时间和速度，或使用辅助混合设备提高混合效果。
4.压制力控制：-控制好压制力的大小，避免过大或过小，影响片剂的质量。
-注意调整压制力时的速度，避免因突然改变而造成不均匀压实和破坏。
5.模具清洁：-在每次使用前后对模具进行清洁和消毒，以防止交叉污染和细菌滋生。
-注意不要使用锐利的工具清洁模具，避免刮伤或损坏。
红外压片方法及注意事项
红外固体压片操作步骤：
1、CO2和H2O在中红外段有较大的吸收峰，在制片和测试过程中的各个环节都应考虑到。
室内应配备除湿机，人员不超过3人，操作人员佩戴乳胶手套进行压片操作。
2、取用光谱级溴化钾用玛瑙研钵研细至200目以下，在烘箱中100度干燥后装在干燥容器中备用。
3、取200mgKBr，1~2mg样品，在玛瑙研钵中研细，约1~2分钟。
注意顺着一个方向研磨，以免破坏晶体结构。
为避免吸湿全程在红外灯烘烤下完成。
4、取模具，擦拭干净。
要求高的，压片过程中模具应接上真空泵来抽真空。
装好底座，把内模块光面向上放入，用药品匙将样品均匀放入。
可中间稍高于四周。
将顶柱加好，可轻轻转动来使样品均匀铺开。
将磨具放上压片机，调节压力至20Mpa，保持30-60秒，压片厚度约0.3-0.5mm，溴化钾片呈半透明状。
5、取出溴化钾片至已空白扫描的红外光谱仪上检视，打印光谱图，根据品种要求跟对照光谱集或对照品光谱对比。
对谱峰的位置、性状、吸收强度进行比对。
正极压片作业指导书制片
正极压片作业指导书制片操作步骤：一．作业前的准备：1．用丙酮彻底清洁滚筒、台面、桌面。
2．准备作业用的物料盘，毛刷、碎布、高纯丙酮等，戴上手指套，输片人员严禁戴手指套或手套操作。
3．确认当班生产型号，从烤箱中取出所需辊压正极片,数量由当班组长根据生产来安排(每次约200片)。
二．作业过程：1．调整滚筒间距，取几片正极片进行试压，直到滚压后的正极片厚度符合工艺要求，方可正式滚压。
2．将待压正极片放置于输片台上,输片人员从极片上层轻搓出2-6片正极片平放于输片台中间位置,每片之间留有间隙,双手按前后顺序将正极片送入滚筒内让其自然滚压。
3．接片人员用右手捏住正极片片头，左手轻轻夹住片尾,待片完全压过来，将其理平放置于接片台上,（压片厚度在工艺要求范围内），极片厚度要求经过首检确认即可批量压片。
4．压、接片人员在输片时多注意正极片的来料不良及极片滚压后造成的不良,如经发现一律挑出放置于压片机上的黄色物料盒内。
产品首检及自检采用五点测量法,用千分尺测正极片的片头、片尾及中间五点，尺寸合格后方可批量生产,员工自检时,每小时不得少于5片。
5．压片过程中，如有粉尘、颗粒粘附滚筒，应快速用蘸有高纯丙酮的碎布擦去；要求：a)滚压正极片一次性压到工艺要求的厚度；b)滚压方向，极片头部朝前；c)滚压数量：滚压大片每次只能滚压一片,滚压小片,可连续性放片,但要注意应保持极片不互相粘在一起；d)将每次压好的合格正极片理平放置在托盘内,转至下道工序；6. 启动吸尘器,左手拿几十片压好的正极片,右手用吸尘器的毛刷吸去极片表面及极片裁切端面的附粉。
7. 作业完毕，及时用丙酮将滚筒彻底擦净，喷洒防锈油，做好工作记录和周围环境的“5S”。
极片尾部片颁标准极片头部三．注意事项：1．滚压大片时，应特别留意，如果大片表面有折痕明显凸起、严重划痕等应先分条，滚压正常小片，严重不良直接改裁或报废；2．滚压期间，确保滚筒上不粘附有任何游离粉尘,保持工作台上干净整洁,避免杂物或其它物品输进滚筒内，造成不必要的损失；3．极片滚压后，边缘不能有波纹，不能呈弧形弯曲，横向厚度必须一致；4．极片需轻拿轻放；5．严格按工艺要求进行滚压,严禁极片压重、压叠、压斜;6．注意操作安全,滚压机滚筒前无安全防护挡板时严禁开机工作；7．如有异常，需及时停机并通知上级主管；8．严禁非操作人员动用机器设备。
植物切片制作
植物组织制片技术是随着显微镜的出现而发展起来的技术，是人们认识植物体结构的有效手段，已成为植物生物学的重要组成部分。
植物制片技术已建立了许多方法，现简要介绍如下几种最常见的制片技术：徒手切片法、滑走切片法、离析法、压片法、石蜡制片法和冰冻切片法。
徒手切片法徒手切片法是指手拿刀片把植物新鲜材料切成薄片，所作的切片通常不经染色或经简单染色后，制成临时的水装片用于观察，亦可以通过脱水与染色制成永久制片。
优点：简单、方便，不需要复杂的设备，不经过化学药物的处理，基本上保留了植物活体的状态。
用品与材料显微镜、载（盖）玻片、刀片、毛笔、培养皿、吸水滤纸、滴管、ddH2O或清水、1%番红水溶液、菜叶、胡萝卜、马铃薯实验材料对于软硬适中，便于手持的材料，可将实验材料截成适当小块，一般以长2~3cm，切片断面不超过3~5mm2为宜。
对于过于柔嫩的器官（如叶片等），一般可选用胡萝卜根、土豆块茎等作为支撑物，包被住材料后再进行切片。
有时也可将叶片卷成圆筒后再进行切片。
实验步骤1、在小培养皿中放入ddH2O或清水。
2、用左手拇指、食指和中指拿住材料，拇指略低于食指与中指，并使材料略为突出在指尖上面。
3、右手持刀，将刀片平稳地放在左手食指之上，与材料切面平行，然后以均匀的动作，自左前方向右后方，斜着向后拉切，切时用臂力而不用腕力。
4、切下许多薄片后，用湿毛笔将这些薄片放人培养皿中。
用毛笔挑选透明的薄片，放在载玻片上，用吸管滴一滴水在载玻片上，盖上盖玻片，制成临时装片进行观察。
注意事项1、在切片前，要不断地用水湿润材料和刀片。
2、切片时，两只手应该保持活动状态，不要使它们紧靠身体或实验台，且用力不要过猛，不能用刀片挤压材料或来回切割材料。
3、动作要敏捷，材料要一次切下，不要追求切片形状的完整。
简单的组织化学染色经徒手切片法切下的薄片，可以进行简单的组织化学染色，这样更容易分辨细胞的结构，同时可以观察到细胞各部分的化学成分。
压片法操作步骤范文
压片法操作步骤范文压片法是一种制备固体样品的方法，它通过将粉末物质转化为坚固的片状样品，以便于后续实验的进行。
下面是压片法的操作步骤：1.首先，准备所需的原料和实验设备。
原料包括需要压制成片的物质，实验设备包括钢模、压片机、石墨纸、氧化铝平板等。
2.将所需物质称取并混合均匀。
可以使用研钵和研杵对粉末进行混合，也可以使用旋转搅拌器等设备。
3.准备钢模。
钢模可以是圆形的或方形的，根据需要选择合适的形状。
将钢模内壁涂一层薄薄的润滑剂，如石蜡，以便于取出压制好的片。
4.将混合均匀的粉末物质倒入钢模中，并用手指或研杵轻轻压实。
注意不要填满钢模，留出适当的空隙。
5.将一个压片机臂放置在钢模上，并用手控制压片机的压力和压时间。
开始时可以使用较低的压力，逐渐加大，直到达到所需的压力。
压片时间一般为几十秒至几分钟。
6.压制完毕后，停止压片机，并取下压片机臂。
将压制好的片取出，放在石墨纸或氧化铝平板上进行干燥。
7.将片放在通风处晾干，或者使用烘箱等设备进行加热干燥。
温度和时间根据不同的物质而定，一般在60℃-150℃范围内。
8.干燥后的片可以用外观、颜色、硬度等来判断其质量。
合格的片一般应具有均匀的颜色、平整的表面和一定的硬度。
9.最后，将片进行包装保存，避免受潮和受污染。
可以使用塑料袋或漆包纸等材料进行包装。
需要注意的是，压片法在实验过程中需要保持实验环境的清洁和干燥，以避免杂质的进入和湿气的影响。
另外，压片机的操作需要小心谨慎，避免发生事故。
在操作过程中要严格遵守实验安全规范，佩戴个人防护用品，确保实验的顺利进行。
XRF测定中熔片的制片方法
I论坛■X R F测定中熔片的制片方法文/顾强殷雪霞冀丽英王敏摘要:X R F仪器具有超强的稳定性，很少出现曲线不稳定和仪器故障情况，但X R F使用过程中，需采用恰当方式对样品展开测定，确保获取高质量样片。
本文从X P F测定中常用制片方法入手，依托实例验证其有效性，以期为类似研究提供参考。
关键词:X R F测定熔片制片方法随着技术进步和经济水平提高，各行业对分析测试结果 的出报效率要求也越来越高，因此，很多价格昂贵的大型精密 仪器被普遍用于实际生产中，其中，包括X荧光光谱仪。
在 XRF使用中，经常要以玻璃片方法对样品进行测定，但实际测试 生产中，所制作出的玻璃片经常出现测试面不光洁、脱模不易、样 片炸裂等现象，还会腐蚀白金坩埚，降低坩埚使用寿命。
本文提 出的玻璃片制片方法能解决这些问题，得到高质量的样片。
一、 制片主要方法制片常用两种方法：第一，压片法，将待测样品利用压片 机在塑料环内压制成致密的样片，此方法仅需注意压力和时 间合适即可，如有不易压片的样品，可适量加入粘合剂如淀粉 糊精等。
压片法较简单，本文不作讨论。
第二，熔片法，本文主 要讨论这种方法。
利用熔剂在高温下将样品稀释，在白金坩埚 中熔制成均匀稳定的玻璃片。
总的来讲，样片制作过程对理论 要求较低，通常由技术人员提出制片流程后由操作人员来执 行。
从目前的公开资料看，很少有人对这一过程进行深入研 究。
然而，这一部分对测试结果的影响是很大的，很多测试机 构的熔片质量存在一定问题。
二、玻璃片制作在制作玻璃片的过程中，为保护白金坩埚不被腐蚀，要对 待测样品进行氧化，添加合适的脱模剂。
氧化剂选择：不同品种的合金成分不同，所选氧化剂配方 不同。
进行试验，能将合金粉末全部氧化，待测元素能毫无损 失地熔如玻璃片，且不能引入干扰待测成分。
氧化剂与脱模剂 混合合金粉末后，氧化中不能造成合金或熔剂损失。
氧化剂在 氧化后须保证剩余量可控，完全分解挥发或者不挥发，易挥发 且不能完全挥发的不能用于作氧化剂。
染色体技术之制片技术的原理
三、比较：
植物染色体标本的制备最常用的方法是压片法， 但压片法的不足是由于细胞堆积致使染色体很难彻 底分散开。 而去壁低渗火焰干燥法则有效地克服了压片法 中存在的染色体分散不开，平展不开等不足，现已 广泛用于核型分析，染色体显带
原理：
有丝分裂是体细胞分裂的主要方式，一般发生在植物的根 尖或茎尖的分生组织中。在有丝分裂时，细胞核与细胞质有 较大的变化，但以细胞核内染色体的变化最为明显，而且是 有规律的进行。 各种生物染色体在数目和形态上是相对恒定的，并随科属 种的不同而具有一定的特征。 人们若需了解某一物种的染色体数目，最有效的方法就是 观察有丝分裂的中期，这样可以得到较为准确的结果。
二、去壁低渗干燥火焰法
原理：
植物细胞有很坚实的细胞壁，染色体很难像动物染色体 那样平整地贴在载玻片上，可通过纤维素酶和果胶酶处理去 掉细胞壁；用低渗溶液处理可以提高染色体的分散程度。 去壁低渗干燥火焰法是：先用纤维素酶和果胶酶去除细胞 壁，得到原生质体，再将细胞进行低渗处理，即把细胞置于 低渗液（低浓度的kcl或蒸馏水）中，使细胞充分吸胀,染色 体分散，平展地铺在载玻片上，再用火焰干燥让染色体紧贴 在载玻片上。
如何制作永久植物玻片标本
如何制作永久植物玻片标本石蜡切片（paraffin section）组织学常规制片技术中最为广泛应用的方法。
石蜡切片不仅用于观察正常细胞组织的形态结构，也是病理学和法医学等学科用以研究、观察及判断细胞组织的形态变化的主要方法，而且也已相当广泛地用于其他许多学科领域的研究中。
教学中，光镜下观察切片标本多数是石蜡切片法制备的。
活的细胞或组织多为无色透明，各种组织间和细胞内各种结构之间均缺乏反差，在一般光镜下不易清楚区别出；组织离开机体后很快就会死亡和产生组织腐败，失去原有正常结构，因此，组织要经固定、石蜡包埋、切片及染色等步骤以免细胞组织死亡，而能清晰辨认其形态结构。
石蜡切片制作基本技术石蜡切片法包括取材、固定、洗涤和脱水、透明、浸蜡、包埋、切片与粘片、脱蜡、染色、脱水、透明、封片等步骤。
一般的组织从取材固定到封片制成玻片标本需要数日，但标本可以长期保存使用，为永久性显微玻片标本。
1.取材应根据要求选取材料来源及部位。
例如植物细胞有丝分裂多选取洋葱根尖，细胞分裂快又便于切取；猪的肝小叶边界清晰明确；耳蜗以豚鼠的内耳易于定位和剥离。
材料必须新鲜，搁置时间过久则产生蛋白质分解变性，导致细胞自溶及细菌的滋生，而不能反映组织活体时的形态结构。
2.固定用适当的化学药液——固定液浸渍切成小块的新鲜材料，迅速凝固或沉淀细胞和组织中的物质成分、终止细胞的一切代谢过程、防止细胞自溶或组织变化，尽可能保持其活体时的结构。
固定能使组织硬化，有利于切片的进行，而且也有媒浸作用，有利于组织着色。
固定液的种类很多，其对组织的硬化收缩程度以及组织内蛋白质、脂肪、糖类等物质的作用各不相同。
例如纯酒精可固定肝糖而能溶解脂肪，甲醛能固定一般组织，但溶解肝糖和色素。
固定液可分为单一固定液及混合固定液。
前者有甲醛（蚁醛、福尔马林）、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、锇酸（四氧化锇）、重铬酸钾及苦味酸等，单一固定液不能固定细胞中的所有成分；混合固定液可以互补不足，常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液（配方见有关技术书籍）。
简述片剂不同制备方法的特点及应用
简述片剂不同制备方法的特点及应用下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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干法压片工艺流程
干法压片工艺流程干法压片工艺流程是一种常用的制片工艺，在制备陶瓷材料和金属粉末冶金领域广泛使用。
以下是一种典型的干法压片工艺流程：1. 原料准备：首先，需要准备所需的原料，包括粉末材料和添加剂。
粉末材料一般是细粉，可以通过研磨或球磨等方法得到。
添加剂的作用是改善粉末的流动性和压实性能。
2. 混合均匀：将粉末材料和添加剂按照配方比例放入高速搅拌机或旋转搅拌机中进行混合，以确保各种成分均匀分布。
混合时间一般为几小时，确保各成分充分混合。
3. 干燥：混合好的粉末材料需要进行干燥，去除其中的水分。
干燥方法可以是自然风干或使用烘干机进行快速干燥。
干燥条件需要根据粉末材料的性质来确定，一般需要在低温下进行，避免粉末团聚或化学反应。
4. 压片：将干燥后的粉末材料放入压片机的模具中进行压制。
压片机通过施加一定的压力使粉末材料形成固体块状，并且按照模具的形状和尺寸进行压制。
压片压力一般为几百到几千兆帕。
5. 烧结：压制成块状的粉末材料需要进行烧结，以使其成为致密的固体材料。
烧结条件需要根据材料的属性来确定，包括温度、时间和气氛等。
烧结时，粉末材料会发生晶粒增长和粒子间的结合，形成具有一定力学性能和化学稳定性的块体材料。
6. 后处理：烧结后的材料可能需要进行进一步的加工和处理。
这包括打磨、切割、抛光等工序，以使成品达到所需的尺寸和表面质量。
7. 检测和质量控制：在整个干法压片工艺流程中，需要进行检测和质量控制来确保最终产品的质量。
常用的检测方法包括密度测量、力学性能测试、化学成分分析等。
干法压片工艺流程是一种成熟且经济的制片方法，适用于生产各种形状和尺寸的陶瓷材料和金属粉末。
通过合理的原料选择和工艺参数控制，可以制备出具有良好性能和稳定质量的制品。
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1. 压片法
在生物技术上，除用切片法观察细胞外，还可用压片法，尤其是观察细胞中的染色体数目，用压片法最为合适，不仅省事，结果也比切片法好。
压片法是将材料置载玻片上，用解剖刀或解剖针拨开，加染液一滴，盖以盖玻片，施以压力，使材料破碎，细胞分散，然后进行观察。
压片法种类很多，下面介绍两种：
(1). 醋酸——洋红法
此法多用于制备幼小花药，观察花粉母细胞减数分裂的压片。
而对根尖压片有时染色不好(但对洋葱根尖染色较好)。
其步骤如下：
a. 将花药或根尖(先切成0.5cm长)，投入卡诺氏固定液中固定1刻钟至l小时，然后移至70％酒精中保存。
b. 取固定保存的材料放入盐酸酒精解离液(95％酒精一份，浓盐酸一份，将二者混合即成)中5～8分钟。
或置1N盐酸(取比重1.19的盐酸82.5毫升，加水至1000毫升即成)中于60℃的水浴温度下，处理6～8分钟，至透明为止。
c. 用清水冲洗干净解离液。
d. 取洗净的材料，放在载玻片上，用醋酸洋红染液(或醋酸苏木精染液)染色5～10分钟。
e. 然后将材料移至另一清洁的载玻片上。
重新用染液装片，覆以盖玻片，以铅笔的橡皮头端轻轻压盖玻片，使材料呈现分散的薄层，置镜下观察。
(2). 铁矾——苏木精法
此法一般用于细胞有丝分裂中的染色体计数，由于染色体被染成紫兰黑色，用于显微照相，效果较好。
（由于各种植物有自己的特殊性，因此，取材的时间、取材的部位、预处理的时间、固定的时问、水解的时间、染色的时间等，都有可能不同。
在此只作了大致的介绍，具体材料还需作预备实验进行摸索。
另外还要注意，各次水洗一定要洗干净沾在材料上的药液，以免影响下一个步骤的结果。
）染色步骤如下(以蚕豆根尖作材料为例)：
a. 取材：将蚕豆种子萌发。
待种子根长至1cm左右，在上午8时～11时之间，切下长约0.5cm的根尖，进行预处理。
b. 预处理：目的使分裂细胞的染色体缩短和比较分散，便于压片观察。
预处理是在固定以前进行，方法是将材料切下放入以下溶液：
0.05～0.2％秋水仙碱水溶液中处理2～5小时；
或：对二氯苯饱和水溶液中处理3-5小时；
或：8-羟基奎啉(0.004～0.005％)，处理2～12小时；
或：富民隆乳剂(0.01％)，处理24～48小时；
或：在0～3℃下冷冻处理24小时。
c. 固定：通常用95％酒精—冰醋酸(3：1)固定液固定1～24小时。
固定后换入70％酒精中保存。
一般可保存1～2星期，如放入冰箱中(3～8℃)则可保存数月。
(4) 离析：将保存在70％酒精中的根尖，用刀纵切成两半，换入蒸馏水，然后移入1N盐酸中，在60℃的水浴中离析10～15分钟。
d. 水洗：离析后必须用水洗净残留盐酸，否则会影响染色。
e. 媒染：将根尖移入4％铁矾水溶液中，媒染20～30分钟，然后用水洗净。
f. 染色：放入0.5％苏木精水溶液染色3～5小时，如果需要染色较久(例如过夜)则可将苏木精溶液浓度稀释。
g. 压片：用镊子夹取根尖一段，放在载玻片上，滴上一小滴醋酸，迅速捣碎根尖，盖上盖玻片，用铅笔的橡皮头轻压，使材料分散成一薄层。
h. 镜检：将材料压好后，放置显微镜下观察。
若要作永久保存，可将玻片放在电冰箱中冷冻，结了冰霜后便可揭下盖玻片，然后将沾有材料的玻片分别与另外干净的盖玻片和载玻片进行封片处理，制作永久玻片。
也可按以下步骤制成永久制片：
a. 将压片直接倒放在盛有1/2 45％醋酸1/2 95％酒精的培养皿中，并使玻片稍成倾斜(一边可垫上一玻棒)。
待过5～10分钟，即可见盖玻片从载玻片上脱落下来，此时即按原来位置翻开。
b. 将已分开的载玻片与盖玻片，用吸水纸吸去边去多余的醋酸液，换入冰醋酸无水酒精(1：1)中，3分钟。
c. 将载玻片与盖玻片移入无水酒精中(二次)，每次3分钟。
d. 移入无水酒精二甲苯(1：1)，3分钟。
e. 移入二甲苯(二次)，各3分钟。
f. 用加拿大树胶按原来的位置封藏玻片。
g. 移入温箱烘干(20～30℃)，3小时，即得永久制片。
2. 酶法(略)
附：改良石炭酸品红染色液配制法：取3克碱性品红，溶于100毫升70％酒精中(可无限期保存)；取10毫升此溶液加入90毫升5％石灰酸水溶液(两周内用有效)；取此溶液55毫升，加入冰醋酸和37％甲醛各6毫升；取此混合液2～10毫升加入90～98毫升45％醋酸和1.8克山梨醇。
这样便配制成了染色液，此液放置越久后越好使用。
3. 染色体计数与核型分析
首先，计数体细胞染色体数目，统计的细胞数目在30个以上。
然后，以体细胞分裂中期的具有高质量的染色体图像作为形态描述，应以5个以上的细胞为准，测量的内容有：绝对长度=放大的染色体长度÷放大倍数(单位以微米表示)。
相对长度=染色体长度÷染色体组总长度×100％，相对长度系数：染色体长度/全组染色体平均长度，染色体长度比：最长染色体长度/最短染色体长度，核型不对称系数=长臂总长/全组染色体总长，臂比=长臂长度/短臂长度，差值=长臂长度—短臂长度，着丝点指数，等等。
另外，还要确定染色体长度类型、着丝点位置，绘制核型分析结果表、核型图、核型模式图，摄制模式照片，写出核型公式，划分核型类型，等等。
最后，根据各项数据、结果进行讨论分析。
附：
(1). 染色体长度类型确定
相对长度系数值长度类型符号记为
≥1.26 长染色体L
1.25～1.01 中长染色体M2
1.00～0.76 中短染色体Ml
≤0.75 短染色体S
(2). 着丝点位置确定
臂比值着丝点位置符号记为
1.00 正中部着丝点M
1.01～1.70 中部着丝点区m
l.71～3.00 近中部着丝点区sm
3.01～7.09 近端部着丝点区st
7.01以上端部着丝点区t
∞端部着丝点T
(3). 核型类型确定
(4). 核型公式表示方法
以芍药为例：2n：2x=10=6m 2sm 2st
(5). 核型模式图绘制方法
根据核型分析结果表中所列各染色体的相对长度平均值绘制一坐标图。
横轴上标明各染色体序号，每一染色体与其序号相对应，纵轴表示相对长度值(％)，零点绘在纵轴的中部，并与各染色体的着丝点相对应。
此即为该细胞的核型模式图。