微生物标本采集要求..共94页文档
微生物检查的标本收集原则
微生物检查的标本收集原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
采集时间最好是病程早期、急性期或症状典型时，而且必须在使用抗生素或其它抗菌药物之前采集.2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
3.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
4.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
5.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。
采集量不应过少，而且要有代表性，同时有些标本还要注意在不同时间采集不同部位标本。
如肠热症患者，发病的第1 周应采集血液，第2 周应采集粪便和尿液。
否则影响细菌检出率。
6.采样后立即送检，最好在2h内。
为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。
一些对环境敏感的细菌如脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌和流感嗜血杆菌等应保温并立即送检，而其他所有的标本采集后最好在2h 之内送到实验室。
若不能及时送检，标本应置于一定环境中保存，如尸检组织、支气管洗液、心包液、痰、尿等标本应保存在4 ℃环境中。
脑脊液、滑膜液等则要在25 ℃保存。
一般情况下，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h 。
7.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。
8.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）标本运送和验收血培养1采血后应该立即送检,如不能立即送检接种入血培养瓶，需室温保存,时间≤24h切勿冷藏! 2拒收培养瓶:血培养瓶标识与化验申请单不符,培养瓶破裂或明显污染，血液凝固的培养瓶。
补做培养瓶:血标本采集后放置24h以上,用不适当类型的培养瓶收集标本,用过期的培养瓶收集标本,采血量不足等;建议补做血培养。
3a急性败血症：采集2—3份血液培养并要在10分钟内完成b心内膜炎，急性的：分别从不同部位采3 份血液培养，1—2小时内完成c亚急性心内膜炎：从3个部位采集3份血培养，间隔≥15分钟。
微生物标本采集规范
• 2、下呼吸道标本
（1）自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容 器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、 流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检 的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液， 不要唾液。
• （2）诱导痰：在医护人员指导下，用3 NaCL诱导咳 出痰液，用于结核分枝杆菌和肺孢子菌检测。
临床常见微生物学检验标本通常有血液、 痰液、尿液、粪便、伤口的脓液、胸水、腹水、 脑脊液及泌尿生殖系统的分泌物等，下面分别 介绍各种标本的采集方法。
一、呼吸道标本采集规范
病原体种类繁多而复杂 使呼吸道感染病原诊断成为难题
➢细菌 ➢真菌（包括肺孢子菌） ➢病毒 ➢支原体、衣原体与立克次体 ➢原虫 ➢寄生虫
（二）采集方法
1、咽拭子及鼻拭子 采集前患者应用冷开水反复漱口， 拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂； 预先沾湿拭子（非常重要）； 由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子 通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次以取得标本。 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，直取病灶部位，拭 子要避免接触口腔及舌粘膜。减少污染。 立即送检。室温保存。 接种同痰
（一）采集指征 •凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血 性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外 周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X 线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至 出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰 液或下呼吸道标本。
•对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物 安全防护。
2．耻骨弓上膀胱穿刺采集尿 使用无菌注射器直 接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评 估 膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但患者不 易接 受，主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的 婴儿尿 标本的采集。
微生物标本采集要求
微生物让人类步步为营，
我们应该追求： “准确的病原学诊断” “针对性病原学治疗”
正确的微生物标本采集和运送， 是准确的病原学诊断的前提！
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检，甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 8.送检标本应注明来源和检验目的
临床标本的分类
带菌体液
痰 咽拭子 尿液 粪便 其他类别
无菌体液
血液 脑脊液 关节腔积液 胸腹水 其他类别
一、血培养操作规范
临床常见的采血指征
发热（38C）或低温（36C） 寒战 白细胞增多（计数大于10，000109/L，特别有 “核左移” 未成熟的或杆状核的白细胞） 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1000109/L） 血小板减少 皮肤粘膜出血 昏迷 ，休克 多器官衰竭 CRP/PCT升高
瓶数及血量
结论1： –绝对不能只用一瓶 –寒战－升温之间应采血20毫升分装两个瓶内 –先分配在需氧瓶10ml，然后剩余的入厌氧瓶内，因为
真菌、绿脓杆菌、窄食单胞菌只长在需氧瓶内。 结论2：2-5天内不必重复取血 结论3：只有可疑为持续性菌血症：如心内膜炎、导管 相关sepsis时，才要有间隔地(1h至24h)几次取血监测 、捕捉、指导治疗；特别是金葡菌时。
采血份数和采血时机
采血培养应该在使用抗生素之前进行 间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来 之前0.5小时采集血液，不知发热规律应在寒 战或发热后半小时后进行。
24小时内采集2-3份血培养 持续性菌血症：如急性心内膜炎、导管相关 sepsis时需多次取血监测，捕捉指导治疗： 特别是金葡菌时
微生物样品的取样方法及取样要求
微生物样品的取样方法及取样要求样品取样的要求1）在取样之前应确认货、证是否相符。
2）取样过程中应避免与水等环境的不良因素影响，防止样品被污染。
3）取样用具（如注射器、采血管、试管、探子、铲子、匙、取样器、剪子、样品袋等）必须是经过灭菌的。
4）对采集的样品一般要求随机取样。
若怀疑最有可能受病原体污染或者带有病原体的样品，可以进行选择取样。
5）根据样品种类（如盒装、袋装、瓶装和罐装），应取完整密封的样品。
如果样品很大，则需用无菌取样器取样；若样品是粉末，应边取边混合；若样品是液体的，通过振摇即可混匀；若样品是冷冻的，应保持冷冻状态（可放在冰内、冰箱的冷盒内或低温冰箱内保存），而非冷冻动物产品须保持在0℃~5℃中保存。
6）取样前或取样后应在盛装样品的容器或样品袋上立即贴上标签，每件样品必须标记清除（包括品名、来源、数量、取样地点、取样人及取样日期）。
7）获取有关取样产品的信息：如样品名称、批量大小、包装类型、包装容器体积、生产线、产品编号或控制号、批量号、标签内容、包装破损状况、产品存放地点或建筑物的基本情况等。
8）当客户对所规定的取样程序有偏离、添加或删节的要求时，应详细记录这些要求和相关的取样资料，并记入包含检测结果的所有文件中，同时告知相关人员。
9）当取样作为检测一部分时，实验室应有程序记录与取样有关的资料和操作。
这些纪录应包括所用的取样程序、取样人的识别、环境条件（如果相关）、必要时有抽样地点的图示或其他等效方法，如果合适，还应包括取样程序所依据的统计方法。
食品微生物学的取样点食品微生物的取样计划中常包括以下取样点：原料、生产线（半成品、环境）、成品、库存样品、零售商店、或批发市场、进口或出口口岸。
原料的取样包括食品生产所用的原始材料、添加剂、辅助材料及生产用水等。
生产线样品是指食品生产过程中不同加工环节所取的样品，包括半成品、加工台面、与被加工食品接触的仪器面以及操作器具等。
对生产线样品的采集能够确定细菌污染的来源，可用于食品加工企业对产品加工过程卫生状况的了解和控制，同时能够用于特定产品生产环节关键控制点的确定和HACCP的验证工作。
微生物标本采集要求
微生物标本采集要求一、一般细菌培养标本的采集注意事项.明确掌握好取材时机及部位。
* 注意无菌操作。
* 标本应尽快送检或妥善保存。
* 使用药物前与使用后可使结果不同。
二、厌氧菌标本的采集注意事项.·1mL以上的水样标本（如：胸腹水、心包液、胆汁、脑脊液、关节液、稀脓、穿剌液）：将标本收集于血厌氧培养基（TH10培养基），迅速送检。
·深部组织块、1mL以下的粘稠标本（如：中耳炎、鼻炎、脑脓肿、宫内感染等感染部位的脓汁或分泌物）：到细菌室领取专用无菌拭子及运送培养基，用拭子拭取可凝部位标本，插入运送培养基，迅速送检。
·操作过程注意厌氧环境。
三、细菌培养标本的采集.·血液、骨髓：发热初期1～2天内或高峰期采血。
血量：成人5～10mL，儿童2～5mL.·尿液：导尿法、中段尿采集法、肾盂尿采集法、膀胱穿刺尿采集法。
·粪便：棉拭子采集。
·痰液及支气管分泌物：棉拭子采集。
·化脓创伤标本：棉拭子采集。
·鼻咽分泌物：棉拭子采集。
·脑脊液、穿刺液：用无菌管采集。
·生殖道分泌物：棉拭子采集。
·组织标本：用无菌管采集。
四、细菌结果发出时间.·一般标本的培养+药敏时间：3-4天。
·血液标本：5天(有菌生长即电话报告).·解脲支原体培养：2-3天.·衣原体抗原检测：1天.·真菌培养+药敏：2天(只培养鉴定)，3天(含药敏)。
·厌氧菌培养：6天(无菌生长)，10-14天(有菌生长)。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
微生物标本采集手册
微生物标本采集、运输、保存程序1. 目的规范标本采集程序，保证实验室检测前样本质量。
2. 范围微生物实验室受理的标本。
3. 职责3.1医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。
3.2门诊抽血人员和病房医护人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。
3.3由病房运输人员负责定时到临床各科室收集标本和运输标本；急症检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送微生物室。
14.标本管理的安全性警示4.1 所有标本的采集和处理应在无菌操作、防止污染原则下认真进行；工作人员应做好个人防护如戴手套、防护服。
4.2 所有标本应置于防渗漏、密封、不易破损的无菌容器中运送，条码应清晰注明标本的所有资料，并贴于标本容器，由运送人员在规定时间内安全送至微生物实验室。
4.3 不能将已渗漏的标本运送至实验室。
5. 标本的选择和采集5.1 在许多有正常菌群出现的感染部位（主要来自皮肤、粘膜、呼吸道、消化道），可能正常菌群过杂、过度生长，掩盖了真正的致病菌，会对培养结果产生影响。
因此采样时应避免有寄生菌的污染，保证每份标本能真实反映感染情况。
工作中如遇到不能向临床提供有意义信息的标本，2可建议临床重取替代的标本或说明不处理的原因，此类标本见表。
无临床意义的标本及其替代标本或建议标本类型改进或建议(可替换的标本) 烧伤或伤口拭子送组织块或抽吸物结肠造口术排出物不处理压疮（拭子）送组织块或抽吸物Foley导管头(即尿道插管) 不处理坏死性伤口拭子送组织块或抽吸物新生儿胃吸取物不处理恶露不处理牙周的损伤（拭子）送组织块或抽吸物肛周脓肿（拭子）送组织块或抽吸物静脉曲张性溃疡（拭子）送组织块或抽吸物呕吐物不处理5.2 选择正确的采集部位、适当的时间、适当的设备采集标本。
35.3 对于厌氧菌培养的标本，活检组织或针筒抽取物是最佳选择，厌氧菌拭子标本次之，但标本不可冷藏保存，应尽快送检，也可联系微生物室人员做床旁接种。
5.4 采集足够量的标本，以保证检测的阳性率，量不足可能导致假阴性结果。
(完整版)微生物标本采集及保存要求
微生物标本采集及保存要求一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。
二、临床标本的采集（一）下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。
（二）、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。
（三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。
（四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。
（五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。
（六）、：1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
当然在病人发热或寒颤时采集也可。
2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml；3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀，4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。
（七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液：严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。
（八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。
（九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。
（十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。
如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。
微生物标本采集送检及处理原则
微生物标本采集、送检及处理原则一、标本采集的一般原则：1、病程早期、急性期或症状典型时,使用抗生素前;2、无菌采集应无污染,严格进行无菌操作;3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本,采集量不应过少;4、注意在不同病程采集不同部位标本;5、采集标本时要防止传播和自身感染;二、标本的处理：1、标本保存在4℃环境中,在2h之内送检;脑脊液则要在25 ℃保存,用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h;对环境敏感的细菌应保温并立即送检;2、标本中可能含有致病菌,必须注意安全防护;切勿污染环境;对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送,严格按规定包装;3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送,有时可直接用抽取标本的注射器运送;Ⅰ血液及骨髓标本：血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法;如从患者血液中检出细菌,一般应视为病原菌;常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌A、B群、肺炎链球菌等、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等;1、采血时间及次数2、抽血部位及抽血量3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”;查见细菌报告菌名和药敏结果;4、菌血症、败血症的诊断标准：1两次培养均出现同一种细菌可排除污染；2发病星期后血中抗体滴度上升;Ⅱ脑脊液标本：脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值;正常人的脑脊液是无菌的,检出细菌提示有细菌性急性化脓性、结核性等脑膜炎;常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌A、B群和肺炎链球菌、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等;1、涂片检查：1 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌,可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌,可能是流感嗜血杆菌;2结核分枝杆菌涂片检查3新生隐球菌涂片检查2、分离培养3、报告方式：培养48小时,仍无菌生长者报告“培养2天无细菌生长”;查见细菌报告细菌,报告菌名和药敏结果;Ⅲ呼吸系统标本：一痰标本下呼吸道的痰液是无细菌的,而经口腔咳出的痰带有多种上呼吸道的正常寄生菌如草绿色链球菌;若从患者痰标本中查见致病菌或条件致病菌,提示有上呼吸道感染;常见的病原菌主要有肺炎链球菌、A群链球菌、金黄色葡萄球菌、卡他布兰汉菌、白喉棒状杆菌、结核分枝杆菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肠杆菌和军团菌;1、标本的采集时间2、标本采集方法：1 自然咳痰法 2 气管镜下采集法 3 气管穿刺法 4 结核分枝杆菌标本收集法：收集24h痰液以提高阳性检出率;3、涂片检查：1一般细菌涂片2结核分枝杆菌涂片3放线菌及诺卡菌涂片4、培养：1培养标本的选择：应选择粘液痰作涂片;2痰标本培养前处理：用无菌盐水将痰洗涤3次,加入等量的1%胰酶溶液,37oC水浴90min,使痰液均质化后备用;3分离培养5、报告方式：痰标本培养24小时后仅有草绿色链球菌生长而无致病菌生长,报告“正常菌群”;查出的致病菌,报告菌名和药敏结果,同时报告细菌的量化指标;二咽拭标本正常咽拭有多种上呼吸道的正常菌群如草绿色链球菌;若从患者标本中查出致病菌提示上呼吸道有细菌感染如急、慢性扁桃体炎,咽炎,喉炎等常见的病原菌主要有金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、化脓性链球菌、微球菌和棒状杆菌等;1、涂片检查先培养后涂片;2、分离培养3、报告方式：同痰标本检查;Ⅳ穿刺液标本穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等;正常穿刺液是无菌的,若从患者穿刺液中查见致病菌或条件致病菌提示该部位有细菌感染;胸腔感染的病原菌以结核分枝杆菌多见；腹腔感染的病原菌以肠道细菌如大肠挨希菌、粪肠球菌,以及结核分枝杆菌多见；心包炎和关节腔液以金黄色葡萄球菌、溶血性链球菌、大肠埃希菌和铜绿假单胞菌多见;1、涂片检查先接种后涂片2、分离培养：1普通培养 2厌氧培养 3结核菌培养3、报告方式：培养24h无细菌生长,报告“培养24h无细菌生长”;查见细菌,报告菌名和药敏结果;Ⅴ泌尿、生殖道标本一尿液标本中段尿培养加计数对于泌尿道感染的诊断有重要价值;细菌培养必须结合菌落计数辨别是否为病原菌;有致病菌或条件致病菌生长,菌落计数>105/ml,提示感染膀胱炎,肾盂肾炎、肾或膀胱结核等;常见病原菌主要有大肠埃希菌、葡萄球菌、链球菌、变形杆菌和伤寒沙门菌等;1、中段尿标本采集法2、涂片检查：1一般细菌及淋病奈瑟菌2念珠菌3结核分枝杆菌3、一般细菌培养：如培养2d无细菌生长,即可弃去;1倾注平板法2平板接种环法3标准接种环法：若定量接种环含量为.001ml,则整个平板菌落数超过100个,可报告“菌落数>105/ml”;4、特殊培养：1淋病奈瑟菌培养2厌氧菌培养3结核分枝杆菌培养5、报告方式：培养24h细菌生长,报告“24h无细菌生长”;查见细菌,报告菌名及其菌落计数菌落数/ml和药敏结果;二生殖道标本正常的内生殖器是无菌的,而外生殖器包括男性尿道口和女性阴道有多种细菌寄生;查见病原菌提示有细菌感染;常见的病原菌主要有葡萄球菌、肠球菌、链球菌、淋病奈瑟菌、大肠埃细菌、变形杆菌等;1、涂片检查：革兰染色镜检2、分离培养：1普通培养2淋病奈瑟菌培养3阴道加特纳菌培养4报告方式：如查见淋病奈瑟菌、阴道加特纳菌等病原菌,报告菌名和药敏结果;Ⅵ粪便标本正常情况下肠道中有多种细菌;引起感染性腹泻的病原微生物有：1细菌性：产毒素型腹泻、侵袭型腹泻、食物中毒、慢性腹泻；2真菌性；3病毒性;1、标本采集：1自然排便采集；2直肠试子;2、涂片检查：粪便标本因各种正常菌群含量甚多,仅以染色性和形态无法分辩是否为病原菌;因此,粪便标本一般不作涂片检查;3、培养：1沙门-志贺菌培养2致病性大肠埃细菌培养3霍乱弧菌培养4副溶血弧菌培养5小肠结肠炎耶尔森菌培养6真菌培养7菌群失调的细菌学检验4、报告方式：Ⅶ脓液及创伤感染分泌物标本化脓性感染可由单种或多种细菌引起;常见病原菌主要有金黄色葡萄球菌、化脓性链球菌、大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、变形杆菌和结核分枝杆菌、诺卡菌,以及梭杆菌和拟杆菌等;1、标本采集：1开放性脓肿和脓性分泌物；2大面积烧伤的创面分泌物；3封闭性脓肿2、涂片检查：根据形态和染色特点,可报告“查见革兰×性细菌,形似××菌”或报告“未查见细菌”;3、培养：1普通培养2厌氧菌培养3嗜血杆菌及奈瑟菌培养4结核分枝杆菌培养5真菌培养4、报告方式：查见致病菌,报告菌名和药敏结果;。
临床微生物学检验标本采集
☆酒精消毒脓疱或水疱表面及周围皮肤 ☆干燥后用针头挑破脓疱，无菌拭子采集脓疱液和基底
部标本。
第三十四页，共64页。
◈ 厌氧菌感染的标本采集
☆针筒直接由病灶处抽取标本，床边接种或置 于厌氧运送培养基内送检。
☆避免接触空气。
第三十五页，共64页。
➢注意事项
◈ 采Байду номын сангаас前病灶局部应避免用抗菌药物或消毒剂，应 在用药前采取。
♦ 可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，应改 变血培养方法，以获得罕见的或苛养的微生物。
♦ 可疑细菌性心内膜炎，在1～2h内采集3份血标本， 如果24h后阴性，再采集2份血标本。
第十一页，共64页。
常见病原体
G+球菌：葡萄球菌、链球菌、肠球菌 G+杆菌：结合分枝杆菌、产单核李斯特菌、阴道加特
◈特殊器械采集法
☆ 纤维支气管镜采集法 ☆ 防污染毛刷采集法（PSB） ☆ 支气管肺泡灌洗法（BAL）
☆ 环甲膜穿刺经气管吸引法（TTA） ☆ 经胸壁针穿刺吸引法(TNA)
第四十四页，共64页。
◈小儿取痰法
用弯压舌板向后压舌，将棉拭子伸入咽部，小儿经压 舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。 幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
第三十七页，共64页。
常见病原体
G+球菌：葡萄球菌、链球菌、肠球菌、消化链球菌、 四联球菌
G+杆菌：分枝杆菌、破伤风杆菌、产气荚膜梭菌、炭
疽芽胞杆菌 G-球菌：脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌、卡他布兰汉菌 G-杆菌：肺炎克雷伯菌、变形杆菌、大肠埃希菌、铜绿
假单胞菌、流感嗜血杆菌、拟杆菌、梭杆菌
其 他：放线菌
微生物标本采集操作规程
微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。
2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。
3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。
4.标本采集后应立即送至细菌室。
床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。
6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。
一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2.采血部位：肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。
怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。
对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。
4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。
过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。
消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。
2024版临床微生物标本采集规范
临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。
尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。
粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。
呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。
生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。
其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。
微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。
成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。
成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。
严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。
采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。
微生物样本采集要求
微生物样本采集要求《微生物样本采集要求》篇一：微生物样本采集要求之环境样本采集一、引言嘿，咱为啥要对微生物样本采集提出要求呢？你想啊，现在微生物研究可火了，无论是探究环境生态，还是防止病菌传播，微生物样本采集都是第一步，也是超关键的一步。
如果采集得乱七八糟，那后面的研究就全乱套了，就像盖房子，地基没打好，上面盖得再漂亮也白搭。
而且啊，环境中的微生物种类繁多，分布也不均匀，所以得有个靠谱的采集要求。
二、主体要求1. 采集地点选择- 要具有代表性。
比如说采集土壤微生物样本，不能光挑那种刚被翻过，施了好多肥的地儿。
得找那种没怎么被人为干扰的自然区域，像树林里、山坡上那些相对原生态的地方。
对于水体微生物采集，河流的话，要避开排污口附近，选择水流相对稳定、水质看起来比较正常的区域，比如河流中间段，而不是靠近岸边可能有很多泥沙和杂物堆积的地方。
- 要考虑多样性。
如果是采集室内环境微生物，不能只在一个角落采集。
像一个房间，要在不同的功能区采集，如卧室、厨房、卫生间都得涉及，这样才能全面反映室内微生物的种类和分布。
2. 采集工具准备- 工具必须清洁无菌。
采集土壤样本的小铲子，在使用前要用酒精擦拭消毒，晾干后才能用。
对于采集水体微生物的采水器，要用高压蒸汽灭菌锅灭菌，灭菌时间不能少于15分钟，温度要达到121℃。
- 工具要合适。
采集空气微生物的沉降平板，大小要合适，一般直径为90mm左右比较好。
如果太小，采集到的微生物数量可能不足；太大呢，又不好操作。
3. 采集过程规范- 采集土壤样本时，要分层采集。
表层0 - 5cm是一层，5 - 10cm又是一层。
每层采集的量不能太少，每个采样点每层至少采集10g土壤，然后混合均匀。
- 采集水体微生物时，采水的深度有讲究。
如果是湖泊或者池塘，要分表层（0 - 20cm）、中层（水体深度的1/2处）和底层（离底部20cm 左右）采集，每层采集的水样量不少于500ml。
三、结尾这些要求对于我们准确研究环境微生物那可是相当重要的。
2024年微生物标本采集
微生物标本采集微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。
本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。
一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。
2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。
3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。
4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。
5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。
二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。
2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。
3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。
4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。
5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。
6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。
7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。
三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。
2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。
3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。
4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。
5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。
四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。
一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。
临床微生物标本采集及相关质量控制
4.采集次数
对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同 时采集2~3套（不同部位）血培养标本。（即双瓶双 臂同时采集血培养标本。）
婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血 培养标本。
在采血后的2-5天无需重复采血培养；
为什么要求多次采血？
❖ （1）菌血症有“持续性”和“暂时性”之分，多次采血 可提高阳性检出率，减少漏检；
5.采血量 要求： 成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml，每
瓶不少于5ml。 婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。
说明：血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。成人
血培养采血量在2~30ml之间，病原菌检出率与采血量成正 比例增长。每增加1ml的血液，病原菌的检出率增加3.2%。 儿童患者因为血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于 成人。对血液病患者或者血容量相对较低的患者建议使用儿 童瓶来减少血液的采集量增加病原菌的检出率。
前或寒战后1h内采血；若无明显的寒战阶段，应在第二次服抗菌药物前 采血； ❖ 对于无明显感染病灶或未找到发热原因的发热患者，先在不同部位采集 2-3份血标本，间隔大于或等于1h，24h-36h后再次采集2份以上； ❖ 疑似沙门菌感染的患者在病程第1-2周采集静脉血；
3.采集部位
从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血培养。 至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静脉采血做 第三套血培养。一次静脉采血注入到多个培养瓶中 应视为单个血培养。
一、血液、静脉导管标本 3．大面积创伤感染：可取感染组织块或沾有脓汁的内层敷料送检。
慢性感染，污染严重，很难分离到致病菌，可取感染部位下的组织，研磨成组织匀浆接种于适宜的培养基。 采集足够量的标本，以保证检测的阳性率； 短期留置的血管内导管，皮肤定值菌通过皮下隧道移植到导管尖端，随后引发感染； 2．封闭性脓肿 局部消毒后用针及注射器抽吸脓肿壁，将所有物质置于无菌试管内送检，疑为厌氧菌感染时立即作床边接种或置于厌 氧转运装置送检（针头插一橡皮塞隔绝空气）。 对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时采集2~3套（不同部位）血培养标本。 有不明原因的发热，无其他局部症状； 疑似胆石症、胆囊炎、肝胆系统感染等。 多次培养出“共生菌”，则可以确定为感染的病原菌； 腹泻患者应在急性期，并尽可能在使用抗生素之前采集新鲜粪便； 咳痰标本应用最早且广泛，但也是最受争议的标本 ; 凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高 ，X线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰液或下呼吸道标本。