小鼠尾静脉注射法

小鼠尾静脉注射是药理、毒理实验中常用的注射方法，有些实验要求注射时速快、准确。我们在长期的动物实验技能操作中，总结出一种新的小鼠尾静脉注射方法，具体方法介绍如下。

1器材

1ml一次性注射器，棉球、纱布、毛巾或棉纱手套。

2方法

2.1 固定小鼠尾部血管在背、腹侧及左右两侧均有集中分布，每侧均由数对伴行的动、静脉组成的血管丛。在这些血管中有4根十分明显：背腹各有一根动脉，两侧各有一根静脉。两侧尾静脉比较容易固定。将小鼠置于实验台上，操作（甲）左手（戴棉纱手套，也可用毛巾或几层纱布盖住小鼠背部及头部）轻轻按住动物头部及身体，使其露出尾巴。拇指及食指捏住小鼠尾巴根部，注意避开血管。右手大拇指及食指挤压小鼠尾巴根部静脉并往尾巴尖部推，同时将尾部向左或向右拧约90°，使一侧尾静脉充盈朝上。操作（乙）左手朝上，食指及中指置小鼠尾巴尾部，用拇指和食指控制小鼠尾巴角度，使其尾巴尖部朝下（图1）。左手食指及中指靠在实验台（桌）边缘，使小鼠尾巴与实验台保持平行。

2.2 进针（乙）右手持1ml注射器（4号针头），使针头与静脉平行（小于15°），从尾下1/4处（约距尾尖2cm）进针，于小鼠尾巴拐弯处平行刺入已经充盈的尾静脉内3~5mm。注射器外套置于拇指及中指交叉处，并调整好位置，保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线（图2）。

2.3 注射（乙）松开注射器，食指及中指夹住注射器外套，拇指推注射器按手，并将药液按一定速度推入（图3），同时（甲）松开挤压的血管。刺入后先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射时若出现隆起的白色皮丘，说明针头未注入血管，应重新向尾巴根部移动注射。

这种注射方法准确率高、速度快，1h可以完成注射约100~150只。注射完毕后用棉球按压止血。一次注射量小鼠为0.1~0.2ml/10g体重。如需反复注射，应尽可能从小鼠尾巴末端开始，以后向尾巴根部方向移动注射。

3体会

传统的小鼠尾静脉注射法是将小鼠置于特制的固定筒内（或倒置的大漏斗、乳钵下），使鼠尾在外。用体积分数为70%~75%的乙醇棉球涂擦尾部，或将鼠尾在50℃热水中浸泡30s，使血管扩张。左手拉尾尖，以右手持针。从鼠尾左右两侧尾静脉中，选择一条扩张最明显的尾静脉，将针尖刺入血管，推入药液。由于用上述方法进行小鼠尾静脉注射，操作繁琐，耗时较长，动物不能很好固定，而且血管不充盈而导致进针不准或者进针后由于动物挣扎，针头很容易刺穿血管，推注时通常阻力较大，且尾部肿胀变白而注射失败，准确率较低。我们用该方法指导学生实验和帮助校内外其他单位完成该实验，得到良好的效果。该方法准确、迅速，我们介绍该方法，以便用于药理学、毒理学等相关的小鼠尾静脉注射实验。