痰标本在细菌学检验中的应用分析
痰标本的细菌学检查
痰标本的细菌学检查随着医疗技术的更新和医疗事业的不断发展,临床上采纳了很多介入性诊疗措施,以致于抗菌药物广泛应用、耐药菌株不断增多、细菌的耐药机制越发复杂和机体免疫功能下降引发感染逐渐增多,也正因此临床对于细菌学检查提出了更多、更迫切的要求。
细菌学检查所面临的最主要的问题是提供临床结果的可靠性和准确性,影响细菌检验结果可靠性的因素有很多,比如采取标本的时机、方法,标本的保存和运送方式以及分离培养方法、鉴定手段等等,临床中很多医生仅仅重视细菌标本的鉴定和培养方法,却忽略了标本的质量和采集方法。
其中痰标本的问题是最严重的,痰也是下呼吸道分泌物,在大多数情况下,采集痰标本的方式是自然咳痰,因此很容易受到上呼吸道分泌物的干扰,所以如何能够确定改为提高痰标本的治疗改为质量是十分重要的,这个问题也已经受到了国内外广大微生物工作者的重视,所以本篇文章就对痰标本的细菌学检查这一问题进行深入的探讨。
一、痰标本的现状以及存在的问题首先是痰标本的采取,目前大多数医院都对患者采取自然咳痰的方式采集清晨的第一口痰,患者在留痰前需要使用清水漱口,而且需要漱口三次,然后将痰液用力的咳出。
虽然有很多医院能够严格按照标准执行,但还有部分医院尚未按照要求去做。
其次是痰标本的运送,细菌学检查痰标本需要在留取痰标本之后立即将其送往细菌时,但是据相关数据显示,到目前位置仅有一小部分医院能够做到,绝大多数医院并没有在标本留取之后立刻送检。
尤其是对于住院的患者,医院的做法往往是将所有患者的标本集齐之后再由相关人员送往细菌室,以致于患者的标本从留取到送检之间耽搁了两至三个小时,如果痰标本在送到细菌室之后并未立进行接种或者是涂片,而是再耽搁一段时间的话,则会造成该观察的内容没有观察到,而且应该培养出来的细菌也并未培养出来。
随之而来的问题就是涂片染色显微镜检查,到目前为止,仍然有很多医院在培养痰标本之前并未进行涂片染色显微镜检查,不包括特殊检查,比如痰涂片找抗酸杆菌。
细菌学检测中痰培养的方法及临床意义分析
细菌学检测中痰培养的方法及临床意义分析摘要】目的分析细菌学检测当中痰培养的方法与临床意义。
方法选2016年8月至2017年10月在我院进行就诊的呼吸感染患者60例作为观察对象,对60例患者进行痰夜标本培养,观察呼吸道感染患者细菌学检测前实施痰夜培养的临床价值。
结果在60例呼吸道感染患者的痰夜标本当中,检出的菌株数为56株,病原菌分离检出阳性率为92.9%(52/56)。
结论根据正确及标准操作方法,所采集的标本能够提高痰液标本当中病原菌的阳性检出几率,临床检验痰液标本主要是采取病原菌检查,观察临床检查的效果,但是其检查的结果会受到多种因素的影响,难以达到诊断治疗效果。
【关键词】细菌学检测;痰培养;检测方法;临床效果实施痰培养的目的是通过从临床痰液标本当中将致病真菌分离,得到纯培养。
若患者咳嗽、痰液带脓、脓血、痰液有恶臭气味,多考虑患者属于支气管感染或肺部感染,需对患者进行病原学检查与药敏试验[1]。
此次就2016年8月至2017年10月在我院进行就诊的呼吸感染患者60例作为观察对象,观察细菌检测中痰液标本培养的临床效果,现分析如下:1资料与方法1.1病例资料选2016年8月至2017年10月在我院进行就诊的呼吸感染患者60例作为观察对象,60例患者当中有男性患者36例,女性患者有24例,年龄均在20至76岁之间,平均年龄为(54.8±3.4)岁。
1.2方法对60例患者均进行细菌学检测,在细菌学检测之前均实施痰液标本的培养。
采集患者早晨第一口气管的深部痰液,嘱咐患者将义齿清除,同时用清水漱口,减少正常菌群对患者口腔的污染,之后咯出气管深部痰液,并且放置在无菌的有盖痰盒之内,放置痰液混入进口腔与鼻咽腔分泌物,同时于两小时之内进行送检。
特别是流感嗜血杆菌极易死亡,需要将其放在保温箱内,并且在半个小时之内送检。
标本的容器的外部不能够被痰液所污染,若被污染,则会增加标本转送人员与实验室人员的伤害。
痰液标本预处理对细菌学检验的临床价值
痰液标本预处理对细菌学检验的临床价值【摘要】目的:探讨痰液标本预处理在细菌学检验中的临床价值。
方法:选取我院内科及儿科2013年6-2015年6月收治的患者为对象,送检其380例痰标本,所有标本经革兰染色筛选出合格标本,将合格标本进行预处理后接种培养,与直接接种结果比较,对比其结果阳性率。
结果:合格痰标本阳性检出率为58.08%,不合格标本阳性检出率为7.15%;经过痰液预处理有效提高了阳性菌株的检出率,但预处理时的孵育时间过长会使得需氧型阳性菌的检出率降低。
结论:对痰标本进行细胞学镜检及消化液预处理,有利于提高痰标本的质量,并有效提高其阳性菌检出率,值得临床广泛推广使用。
【关键词】痰液;预处理;细菌学检验对于呼吸道感染患者,临床常需要取患者痰液进行微生物检验,以确定治疗方案。
而通常情况下痰标本是通过患者咯痰采集,而上呼吸道中的正常菌群会不同程度的污染送检标本。
选取我院内科及儿科2013年6-2015年6月收治的患者为对象,对其痰标本进行细菌学检查,研究痰标本在预处理前后的阳性检出率,分析预处理对痰标本细菌学检验的临床应用价值,现具体报告如下。
1资料与方法1.1一般资料选取我院内科及儿科2013年6-2015年6月收治的患者为对象,收集痰标本380例,所有标本均为自然咯痰法收集,为患者清晨起床清水漱口数次后,尽力从气管深部咳出的第一口痰,收集于无菌容器中及时送检。
标本送检后,进行细菌培养前,先做细胞学镜检,取适量标本涂片行革兰染色,显微镜下观察白细胞及鳞状上皮细胞数,在低倍视野下检查,白细胞高于25个每低倍视野,鳞状上皮细胞小于10个每低倍视野,即为合格痰标本[1]。
其中合格标本167例,不合格标本213例。
1.2方法痰标本接种:接收标本后,按照《全国临床检验操作规程》[2]标准操作,用无菌接种环挑取脓性或有血丝等病变部位标本,每个标本均同时接种于麦康凯平板、血平板及巧克力平板,在35℃培养箱中培养24~48小时后观察;观察比较合格标本和不合格标本对细菌学检查结果的影响。
浅析痰液标本细菌学检验中存在的问题
浅析痰液标本细菌学检验中存在的问题目的:研究痰液标本细菌学检验中存在的问题。
方法:选取我院内科住院患者于2012年1月-2014年1月间采集到的200例痰液标本,将其随机分为观察组和对照组各100例,对对照组患者通过自然咳痰进行采集,对观察组患者在医护人员的监督与指导下进行采集,对两组患者分别进行细菌学检验,对比观察二者采集到的痰液标本病原菌检出率的相关性。
结果:观察组患者的痰液标本有效率为67.00%,对照组患者的痰液标本有效率为42.00%,观察组明显高于对照组,差异具有统计学意义(P<0.05);在细菌菌落阳性检出率方面,观察组明显优于对照组,差异具有统计学意义(P<0.05)。
结论:在医护人员的监督与指导下采集痰液标本不仅可以提高痰液标本的有效率,而且还能改善细菌菌落阳性的检出率,保证痰液标本的质量水平,值得临床推广使用。
标签:痰液标本;细菌学检验;细菌菌落阳性检出率在正常健康人群的体内,上呼吸道有正常的菌落,而下呼吸道却没有。
在采集痰液标本时,过去传统的方式是自然咳痰,然而这种方式存在一定的局限性,即上呼吸道分泌物中存在的正常菌落会影响或者污染痰液标本,从而降低痰液标本中病原菌的检出率。
因为痰液标本自身成分分布不均,其培养情况与涂片检查结果的重复性较差,所以在临床微生物检验过程中一直存在痰液标本的细菌学检验这一难题[1]。
本文就我院患者为研究对象,分析其解决措施,现将研究结果报道如下。
1、临床资料及方法1.1一般资料选取我院内科住院患者于2012年1月-2014年1月间采集到的200例痰液标本,将其随机分为观察组和对照组各100例,其中观察组包括男性患者57例,女性患者43例;年龄分布于11-71岁,平均年龄(48.17±5.63)岁。
对照组包括男性患者51例,女性患者49例;年龄分布于9-74岁,平均年龄(47.26±5.02)岁。
两组患者在性别、年龄、健康水平等一般资料方面的差异较小,无统计学意义(P>0.05),具有可比性。
痰液(呼吸道)标本细菌学检验
二、所致疾病
1、侵袭性疾病 主要引起化脓性炎症,是葡 萄球菌引起的最常见感染。
(1)局部感染:如毛囊炎、蜂窝组织炎、伤口 化脓等皮肤及软组织感染,多由金黄色葡萄球菌 引起。病灶特点是浓汁黄而黏稠,化脓灶多局限 ,与周围组织界限明显。还可引起气管炎、肺炎 、脓胸、中耳炎等内脏器官感染。
药物敏感试验
药敏报告为敏感(S): 表示用常规剂量治疗可获得临床疗效。
药敏报告是中介度(I): 表示加大剂量或药物浓缩部位可有疗效。
药敏报告耐药(R): 表示该药无疗效。
抗生素敏感试验
药敏结果 ≠ 临床疗效: 敏感——有效 耐药——无效 敏感——无效(假敏感) 耐药——有效(假耐药)
临床医师正确评价药敏试验结果的同时,必须参考病人机体 状况、临床治疗效果以及药动学、药物毒副作用和药物价格 以及本地区本医院等细菌耐药监测数据合理选用药物。
痰液(呼吸道)标本 细菌学检验
概述
痰是气管、支气管和肺泡分泌物的混合物。 健康人痰量很少,当下呼吸道粘膜和肺泡受刺
激时痰量会增加。在病理状态下,不仅痰量增 多,其性质也会发生变化。
痰培养
根据需要对患者的痰液进行需氧菌及厌氧菌培 养、真菌培养、涂片查结核杆菌等,用于呼吸 道感染的病因诊断;
目前痰培养是下呼吸道病原学诊断最常用方法。
三种葡萄球菌的主要性状
性状 色素 溶血作用 分解甘露醇 SPA 血浆凝固酶 耐热核酸酶 新生霉素敏感试验 致病性
金黄色葡萄球菌 金黄色 + + + + + S 强
表皮葡萄球菌 白色 S 弱
腐生葡萄球菌 白色或柠檬色 R 无
痰液细菌培养实验报告(3篇)
第1篇实验目的:通过痰液细菌培养实验,检测痰液中是否存在病原菌,为临床诊断和治疗提供依据。
实验材料:1. 标本:痰液2. 试剂:营养琼脂平板、麦康凯琼脂平板、巧克力琼脂平板、革兰氏染色液、细菌鉴定试剂等3. 仪器:恒温培养箱、显微镜、无菌操作台等实验方法:1. 标本采集:按照无菌操作要求,收集患者的痰液标本。
2. 标本处理:将痰液标本用无菌生理盐水稀释,取适量加入营养琼脂平板、麦康凯琼脂平板、巧克力琼脂平板,涂布均匀。
3. 培养与观察:将涂布好的平板放入恒温培养箱中,37℃培养24-48小时,观察细菌生长情况。
4. 细菌鉴定:根据细菌形态、染色性、培养特性等,对分离出的细菌进行鉴定。
5. 药敏试验:采用纸片扩散法,对分离出的细菌进行药敏试验。
实验结果:1. 细菌生长情况:在营养琼脂平板、麦康凯琼脂平板、巧克力琼脂平板上,观察到明显的细菌生长。
2. 细菌鉴定结果:根据细菌形态、染色性、培养特性等,鉴定出以下细菌:- 肺炎链球菌:革兰氏阳性球菌,呈双球菌排列,对青霉素、头孢菌素等敏感。
- 流感嗜血杆菌:革兰氏阴性杆菌,呈链状排列,对氨苄西林、头孢菌素等敏感。
- 铜绿假单胞菌:革兰氏阴性杆菌,呈短链状排列,对庆大霉素、头孢他啶等敏感。
3. 药敏试验结果:肺炎链球菌对青霉素、头孢菌素等敏感;流感嗜血杆菌对氨苄西林、头孢菌素等敏感;铜绿假单胞菌对庆大霉素、头孢他啶等敏感。
实验结论:根据痰液细菌培养结果,患者痰液中存在肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、铜绿假单胞菌等病原菌。
根据药敏试验结果,建议临床使用青霉素、头孢菌素、庆大霉素等抗生素进行治疗。
实验讨论:1. 痰液细菌培养是一种常用的细菌学检测方法,可以有效地检测痰液中是否存在病原菌,为临床诊断和治疗提供依据。
2. 在本实验中,肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、铜绿假单胞菌等病原菌的检出,可能与患者呼吸系统感染有关。
3. 药敏试验结果对于指导临床合理使用抗生素具有重要意义。
细菌学检验中痰培养的检测方法及临床意义
细菌学检验中痰培养的检测方法及临床意义摘要】目的:探讨细菌学检测中痰培养的方法及临床意义。
方法:选取2015年3月—2016年10月收治的呼吸感染患者36例痰直接涂片和常规培养方法及临床意义进行分析。
结果:呼吸感染患者36例痰标本检出菌株数31株,病原菌分离阳性率86.11%。
结论:按照正确、标准的操作方式采集标本可提高痰标本中病原菌的阳性检出率,临床检验痰标本主要是采用病原菌进行检查,而使用其方法进行检查结果有较高的效果,但检查结果也受很多因素的影响以实现诊断治疗的效果。
【关键词】细菌学检验;痰培养;检测方法;临床意义【中图分类号】R446 【文献标识码】A 【文章编号】1007-8231(2017)05-0088-01培养的目的在于从临床标本中分离出致病真菌,获得纯培养。
当咳嗽、咯痰、痰量增多、痰带脓或脓血,或痰有恶臭,常提示支气管和肺部感染,需要进行病原学检验和药敏试验以指导病因学治疗。
通常做需氧培养,根据需要可做厌氧培养、真菌培养或结核分枝杆菌培养[1]。
厌氧培养通常需要吸引支气管深部的分泌物,隔绝空气并避免口腔和咽喉的正常菌群污染。
1.资料与方法1.1 一般资料选取2015年3月—2016年10月收治的呼吸感染患者36例,其中男21例,女15例,年龄30~80岁,平均年龄55.2±3.5岁。
1.2 标本采取取早晨第一口气管深部痰。
嘱患者除去义齿,用清水(温开白水)漱口数次,以减少口腔正常菌群污染,然后咯出气管深部的痰置入无菌有盖痰盒内,避免混入口腔和鼻咽腔分泌物,在2小时内送检。
流感嗜血杆菌易死亡,应保温并在半小时内送检。
标本容器外不得被痰液污染,因可造成对标本转送和实验室人员的危害。
不合格的标本在说明原因后可以拒收。
对少痰或痰液不易咯出者,可用5%~10% NaCl溶液雾化吸入20~30分钟诱导排痰;经口腔咯出或支气管镜吸引的分泌物,通常有上呼吸道正常菌群污染,不适用于嗜肺军团菌的培养,因污染菌大量快速繁殖可抑制军团菌生长[2]。
痰液标本细菌学检验若干问题
痰液标本细菌学检验若干问题目的:通过对痰液标本细菌学检验问题的研究,建立规范的痰液标本细菌学的检验技术。
方法:取本院检验科细菌室在2011年1月—2014年12月采集的标本10012例,痰液标本为5799例,认真观察和探索痰液标本的细菌学检验的全过程。
结果:一般的细菌培养,适合同时应用巧克力平板和血平板。
提倡试用“12级法”,应用常规化的半定量的培养方式。
直接涂片和细菌培养革兰氏染色镜检适合同时进行。
实验室判定“自然咳痰”的方法采集标本的感染菌,应该按照当地不同年龄段的“健康人群”的口咽部的分泌物的细菌的半定量的调查结果和临床痰液的标本的细菌学检查的结果进行比较而定。
适用“认真对病理成分的选取”,对痰液标本的“前处理”问题还值得进一步探讨。
结论:应该规定医务人员要当面监督和指导痰液标本的取送,这样有利于保证痰液标本的质量;涂片—培养同时并举、“12级法”的半定量法、正确选择病原菌对临床检验有重要意义。
标签:痰液标本;细菌学检验;若干问题痰液标本在涂片的检查与细菌的培养的总标本中占50%以上[1]。
在健康的人群中,下呼吸道是无菌的,但上呼吸道具有正常菌群的生长,所以,在收集痰液标本使用自然咯痰法时,很容易受到上消化道中分泌物中的正常菌群的污染,“感染菌”的准确识别就受到影响。
[2]另外,痰液的标本有“非均质性”的特点,使细菌成分分布比较不均匀,所以导致涂片、培养的检查重复性比较差。
所以对痰液标本的检验是临床检验科工作中的一个难点和重点。
为了增强细菌的培养与涂片检查的结果的准确性和有效性,逐步实现操作的规范化、科学化和标准化,本文在这方面做了一写探讨和总结,报道如下。
1 材料和方法1.1材料(1)423例不同年龄段的”健康人群”的口咽部的分泌物拭子。
(2)临床科室送来的自然咯痰法采集的痰液。
1.2 微生物细菌学的检验直接涂片法“7级法”和半定量的培养“12级法”同时进行微生物细菌学的检验。
1.3 统计学的分析方法采用SPSS16.0软件系统对数据进行分析,计量资料间采用t检验,计数资料间采用x2检验,P<0.05为差异有统计学意义。
痰液(呼吸道)标本细菌学检验
三种葡萄球菌的主要性状
性状 色素 溶血作用 分解甘露醇 SPA 血浆凝固酶 耐热核酸酶 新生霉素敏感试验 致病性
金黄色葡萄球菌 金黄色 + + + + + S 强
表皮葡萄球菌 白色 S 弱
腐生葡萄球菌 白色或柠檬色 R 无
生物学特性
抵抗力 葡萄球菌是无芽孢的细菌中抵抗力最强的。耐
干燥、耐热,耐盐性强,能在10%-15%NaCl的 培养基中生长,可用于筛选菌种。
症状; 2、咯血:包括泡沫血痰、痰中带血等; 3、呼吸困难:呼吸急促或哮喘,常伴有胸痛; 4、发热伴白细胞增高尤其是中性粒细胞或
CRP明显增高; 5、胸部影像学检查提示有前采集; 专用的痰培养杯,避免正常菌群污染; 严格无菌操作; 以晨痰最好,主要有自然咳痰法、支气管镜采
(5)毒性休克综合征毒素-1:是由噬菌体I群 金黄色葡萄球菌产生的一类蛋白质,可引起毒性 休克综合征。
二、所致疾病
1、侵袭性疾病 主要引起化脓性炎症,是葡 萄球菌引起的最常见感染。
(1)局部感染:如毛囊炎、蜂窝组织炎、伤口 化脓等皮肤及软组织感染,多由金黄色葡萄球菌 引起。病灶特点是浓汁黄而黏稠,化脓灶多局限 ,与周围组织界限明显。还可引起气管炎、肺炎 、脓胸、中耳炎等内脏器官感染。
鼻咽部常见菌群: 链球菌(甲型或乙型)、绿脓杆菌、大肠杆菌、 葡萄球菌、肺炎球菌、流感杆菌等。
下呼吸道则在机体免疫功能的作用下自始至终 保持基本无菌状态。
PS:下呼吸道包括气管、支气管及肺泡。
痰培养结果
20世纪50年代以肺炎链球菌为主; 80年代后以革兰氏阴性杆菌为主:
如鲍曼不动杆菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、 肺炎克雷伯杆菌、阴沟肠杆菌等。
对细菌学检验痰标本的应用价值探讨
对细菌学检验痰标本的应用价值探讨目的:对细菌学检验痰标本的应用价值进行讨论。
方法:对送检的270例痰标本分别使用不同的培养基进行培养,对培养结果进行检验。
结果:1例标本检出细菌,具体为:罗氏培养基923TBB培养基以及7119B培养基中没有检出菌落生长,但在923TBL培养基中出现浑浊、有细菌生长,在7H9L培养基中出现油煎蛋形状的菌落。
结论:在高渗半固体培养基(如7H9L培养基)中可以分离临床痰标本中的结核分歧杆菌L型菌株,说明细菌检验痰标本具有一定的实际应用价值。
标签:细菌学检验;痰标本在各式病原菌中,当细菌的细胞壁出现部分缺损或者全部丧失就会出现细菌的L型,这种缺损可以是自然形成也可以由人工诱发,在实际应用中当然以人工诱发为主[1]。
在半固体琼脂培养基中,菌落呈现比较明显的油煎蛋样。
本次试验的目的在于调查临床痰标本中的结核分歧杆菌L型是否存在以及存在情况,研究细菌学检验痰标本的应用价值,现报告如下:1、资料与方法1.1 资料选取我院2010年6月至2013年6月的270例痰标本进行各类培养基培养并进行检验。
1.2 检验方法1.2.1 培养基的配置罗氏培养基的配置:L-谷氨酸钠7.2g/L+磷酸二氢钾2.4g/L+柠檬酸镁0.6g/L+葡萄糖0.4g/L+硫酸镁0.24g/L+孔雀绿0.4g/L+基础液,取混合液49.84g,加入12ml 甘油、600ml蒸馏水混合后,煮沸10分钟,然后经过15分钟121℃高压灭菌后,自然冷却至55℃左右时,使用无菌操作法加入无菌搅匀的蛋液1L,混匀分装入试管,每试管8ml,然后成长斜面放入85℃干燥箱50分钟,冷却后在4℃温度下保存[2]。
1.2.2 消化液配置4%氢氧化钠溶液50ml+2.9%柠檬酸钠溶液50ml+N-乙酰基-L-半胱氨酸(NAC)0.5g,使用当天配置,配置后24h内使用[3]。
1.2.3 对痰标本进行细菌培养痰标本采取1:3消化液的比例混合,进行15分钟3000转/分的离心漩涡振荡之后加入PBS做重悬沉淀。
痰液标本的细菌检测分析
【 中图分类号】 R 4 4 6 . 1 9
【 文献标识码】 A
【 文章编号】 1 6 7 2 — 8 6 0 2 ( 2 0 1 4 ) 0 2 肺泡 、 支气 管 和气 管 的分 泌物 。正 常人 呼 吸道 内分 时 , 可见典型 的分生孢子柄 ( 柄 的末 端扩 展成顶囊 , 表面为多数带 泌物很少 , 当呼吸道粘膜受 到刺激时 , 分泌 物增多 , 痰 即增 多 , 故 串孢子所覆盖 ) , 特别在菌落边缘更清楚易见。根据本菌 的特 点如 痰主要 由粘液和炎性渗出液组成 。对于 呼吸系统 ( 上 呼吸道 、 支 符合鉴定依据的各项, 即可报告” 真菌培养有熏烟色曲霉菌生长 ” 。 气管 、 肺、 胸膜 ) 感染性 疾病 的诊 断、 治疗 具 有重要 意 义 ; 尤 其是 2 结 果 下呼吸道感染 , 近年来 已成 为最 常见 的感染 性疾 病之 一。现将 合格痰涂 片 1 5 6份 , 不合格 痰标本 4 4份 。痰涂 片阳性 率为 本院 2 0 0份痰标本进行微生物检验分析如下 。 2 7 . 5 %( 5 5 / 2 o o ) , 培 养 阳性率 为 3 9 . 5 %( 7 9 / 2 0 0 ) , 不合 格痰 标 1 资料 与方 法 本 涂片阳性率仅 为 1 . 3 %, 培养 阳性率仅 为 2 . 5 %。 1 . 1 一 般资 料 : 选取 2 0 0份痰 液标 本 中, 男1 3 0例 , 女7 0 3 讨 论 例, 年龄 3 6— 7 5岁 , 平均 6 7岁 。均为呼吸内科 , 慢性支气管炎 9 4 由于人体 喉以上 呼吸道黏膜表 面及其分 泌物含 有众 多微生 例, 肺心病 3 2例 , 肺炎 4 4例 , 肺气肿 2 2例 , 咯血待查 1 0例 , 支气 物 , 唾液含菌量为 1 0 一1 0 / m L; 老年 、 重症或住 院病 人的上呼吸 管扩胀 6例。 道定植致病 菌更 多 , 致使途经 口咽部 咳出 的痰 液常受 到污染 , 影 1 . 2 标本采集 : 采集痰液标本 的时间以清晨为好 , 因此 时患 响结果判定 。痰标本 的优 劣直接影 响病原学诊 断 的准确性 和可 者的痰量多 、 含 菌量也 多。采集 前 可嘱患 者用 温水 漱 口数 次 以 靠性 , 因此 , 应严 格按 操作 程序 进 行。痰标 本用 于普 通细 菌 、 分 除去 口腔 内大部杂茵 , 然后用力 自气管深 部 咳出痰液 , 吐入广 口 枝杆菌 、 真菌和军团菌 的检测 。但 不 适 于检 测厌 氧 菌。合格 的 带盖的无菌器 内送 检。检查 结核 分支 杆菌 的标本 , 如量较 多一 标本采集是取得正确检验结 果 的关 键 , 因此 , 临床工 作人员要 教 次即可 , 若量 甚少 , 则应采集 2 4 h痰液 , 以提 高阳性率 , 不能立 即 会病人如何 采集 或 亲 自去 采集 , 取得 深 部 的痰 液 而不 是 唾液 。 送检时应将标本放 冰箱 或冷 暗处保 存… 。检查 白喉杆 菌 时 , 用 下 呼吸道标本运送和保存 时 , 尽快 ( <2 h ) 送 至实验室 不及 时运 无菌棉拭 擦咽 、 喉头 、 鼻 黏膜 或病灶 部位 的伪膜与黏液 。检查脑 送 , 可导致肺炎链球菌 , 流感 嗜血杆 菌等苛养 菌浓度 下降甚 至死 膜炎球菌时 , 应 以无菌棉拭从鼻 咽部采取分 泌物 , 如需 培养应立 亡 。应急措施如不能及 时送达 , 应将呼吸道标 本暂存 于 4 ℃环境 即种于专用选择性 P・ V琼脂 ( 含多黏菌素 、 万古霉 素 ) 平 板上 , 中 J 。否则 , 会使 营养 要求 低 的细菌 如铜 绿假 单胞 菌等 过多 生 置烛缸中培养 。检 查麻 风杆 菌时 , 应 用无 菌棉拭 或 刀片刮 鼻黏 长 , 并 影响苛养菌的观察与检出 , 但4 q C 放置 时间不可超过 2 4 h 。 膜, 涂片 , 行抗 酸染 色镜检 , 有典型麻风杆菌 , 即可报告 。 作结核分枝杆菌检查 , 痰液量要多或 留取 2 4 h痰液 , 婴幼儿肺 结 1 . 3 检验方法 核要用 胃管取痰 。 1 . 3 . 1 肉眼观察 : 观察 痰液 的颜色 , 黏稠度 、 有无血 丝和是 痰培养用于肺和支气管 感染 的病原体 分离 和鉴定 。适宜 使 否呈脓性 、 硫黄样颗粒等 。 用 的痰标本应含有 较多 的 中性粒 细胞 , 无 或有 少量 扁平 上皮 细 1 . 3 . 2 直接涂 片 : 取脓和脓血部分薄涂 片 3~ 4张, 做单染 胞 ; 后者是唾液污染 的标 志 。有 较多鳞 状上 皮 的痰 不能 用作 细 色、 革兰染色 、 抗 酸 或 荧 光 染 色 镜 检 。如 发 现 革 兰 阳性 刀 尖 形 双 菌培养 。痰 中分离 的细 菌无论 是 否为 上呼 吸道 常在 菌 , 实验 室 球菌或同时荚膜染 色 阳性 , 对 肺 炎球 菌肺炎 的诊 断是 有力 的支 都要给予报告 。在免 疫损 害 时 , 上呼 吸道 常在 菌群 可造 成 吸人 持; 检验结果作初步报告。 性感染 。痰普通培养可发现 的病 原菌主要 有 : 金黄葡 萄球菌 、 1 . 3 . 3 普通分离培养 : 痰标本应 在无 菌盐水 中洗 涤后 取 中 流感杆菌 、 链球 菌 、 肺炎 球菌 、 脑 膜炎 球 菌 、 副流感 杆 菌、 绿脓 杆 间部 分接种血琼脂 平板 和巧 克力色 平板 ; 流感 杆 菌分 离培 养接 菌 、 克雷伯 杆菌 、 等 。而 百 E t 咳杆 菌 、 白喉 杆菌 、 嗜 肺军 团 菌、 结 种兔血平板 。根据 临床需要选 择厌氧 培养 、 嗜肺 军 团菌培养 、 真 核分枝杆菌 、 脆 弱类 杆菌以及其他 嗜血菌 属和奈瑟 菌属 细菌等 , 菌培养或分枝杆 菌培 养 。肺脓 肿 、 肺坏 疽应 同 时作需 氧培养 和 常规培养不能分离 出; 当临床怀疑 时 , 需 要特别 申请 和专 门留取 厌氧培养 。怀疑真菌感染应作 1 0 %K O H直接涂片镜检和真菌培 标本 , 用特殊方法证 明。从 痰液 中检 出嗜肺 军 团菌 、 结 核分枝 杆 养, 接种选择培养基 , 通常包括沙包罗和脑心浸液 ( B H I ) , 加 入一 菌 、 放线菌及奴 卡菌 , 具有 重要 临床 意义 , 是 确定 诊 断和 治疗 的 定量抗生素 以抑制污染菌 的过度生长 。怀 疑结核 菌感染应 作直 依据 。军团菌病 的病原体是 嗜肺 军 团菌 , 该 病主要 累及肺 脏 , 也 接涂片抗酸或荧光染色镜检和结核菌培养 。 可发生全身多器 官 的严重损 害 。嗜肺军 团菌 可 引起暴 发 流行 、 1 . 3 . 4 真菌培养 : ( 1 ) 白色假 丝酵母 菌 将痰液 标本用 生理 散在流行和医院 内持 久流 行 , 从痰 液 中分离 到该 菌对 军 团菌 病 盐水洗涤后做成悬 液 , 然后取 此悬 液接 种于两 管沙 保 弱培养 基 具有确诊意义。肺结 核在 结核 病 中最 为多见 , 由结 核分枝 杆 菌 上, 分别 置于 3 7 ℃及 2 2 ℃或室温 中培养 2— 7 d 。如有 中等大小 、 引起。痰液结核菌检 查是 确诊肺 结 核最 特异 的方 法 , 涂 片抗 酸 湿润 、 黄 白色乳酪样或浆糊状 , 具有 显著酵母 样气 味的菌落 时可 染色镜 检快速简便 , 培养则敏感性 和特异性 高。大约 1 / 3痰培 养 得出初步诊 断 。再 有厚 膜孢 子及 假 菌丝 , 糖 发酵 反 应 ( 葡萄糖 阳性的病人 , 在初 次痰 涂 片 中可 找 到抗 酸 杆 菌 , 若 连续 检 查几 +、 麦芽糖 +、 蔗糖 +、 乳糖 一) 符合 时 , 即可报告” 真菌培养有 白 天, 涂片 阳性率 可至 2 / 3 。因此有 条件 时涂 片和 培养均 应进 行 。 色假丝酵母菌生长” 。( 2 ) 熏烟色 曲霉菌 。熏烟 色曲霉菌一般生 放线菌病是一种无痛性化脓 性感染 , 为厌 氧性 放线 菌所致 , 该菌 长迅速 , 最初在沙保弱培养��
痰标本在细菌学检验中的应用分析
痰标本在细菌学检验中的应用分析作者:李懿来源:《中国社区医师》2018年第14期摘要目的:探讨痰标本在细菌学检验中的应用价值。
方法:收治呼吸道感染患者400例,其中200例患者根据痰标本采集方法的不同分为观察组1组(改进的标准采集方法)和对照组1组(自然采集法),各100例;另外200例患者根据是否使用抗生素分为观察组2组(没有使用抗生素)和对照组2组(采取痰标冬之前使用抗生素),各100例。
结果:观察组1组痰标本合格率以及阳性检出率都明显优于对照组1组(P关键词呼吸道感染;痰标本;细菌学检验呼吸道感染是临床上常见的一种疾病。
痰标本是对呼吸道感染患者进行检查诊断的主要手段,其诊断的阳性率受多种因素的影响,如何避免这些影响因素,提高痰标本诊断的阳性率成为重要问题[2,3]。
鉴于此,本文将2016年6月-2017年7月诊治的400例呼吸道感染患者作为研究对象进行分析,结果报告如下。
资料与方法2016年6月-2017年7月收治呼吸道感染患者400例。
其中200例患者根据痰标本采集方法的不同分为观察组l组和对照组1组,各100例。
观察组1组男65例,女35例;年龄41-79岁,平均(55.55±8.54)岁。
对照组1组男61例,女39例;年龄46-79岁,平均(56.64±8.32)岁。
另外200例患者根据是否使用抗生素分为观察组2组和对照组2组,各100例。
观察组2组男60例,女40例;年龄41-78岁,平均(55.57±8.32)岁。
对照组2组男59例,女41例;年龄45-78岁,平均(56.33±8.21)岁。
各组患者在一般资料上对比,差异无统计学意义(P>0.05),具有可比性。
方法:在对所有患者采集痰液的前1d,都需要做好健康宣教工作,让患者明白进行痰标本检验的重要性以及标本采集过程中需要注意的基本事项,还需要分清楚痰液和唾液的差异。
所有患者的痰标本检验项目都由医生参与项目资料填写,并准确填写患者是否使用抗生素以及使用时间。
痰标本在细菌学检查中的影响及干预措施
痰标本在细菌学检查中的影响及干预措施作者:魏红云张新亚来源:《健康必读·下旬刊》2011年第07期【中图分类号】R446.19 【文献标识码】A 【文章编号】1672-3783(2011)07-0227-01【摘要】细菌学检验中痰标本质量控制具有决定性作用,合格标本的采集是取得正确检验结果的关键。
上呼吸道存在着大量的细菌,自然咳痰留取的痰标本中存在上呼吸道的细菌,其可靠性就成为重要的问题,因此痰标本细菌学检查是人们一直关注的问题。
本文就此进行综述,探讨更合理的痰标本处理方法,以提高痰标本细菌学检验质量,以利于获取合格的痰标本和快速而准确的细菌学证据。
【关键词】痰标本培养质量干预措施痰液是气管,支气管及肺泡产生的分泌物,留取痰标本检验是呼吸系统明确诊断的一个重要检查。
痰标本的细菌学检查对于呼吸系统(上呼吸道、支气管、肺、胸膜)感染性疾病的诊断、治疗具有重要意义。
从呼吸系统感染患者的痰标本中分离出细菌的机会相当多,痰标本的质量问题是一个重要的环节,只有区别是病原菌还是上呼吸道的正常菌群,才能制定有效的治疗方案。
合格的痰标本和及时送检是取得正确检验结果的关键。
1 痰标本的要求1.1 应留取清晨第一口痰,因为晨痰量多而且含菌量少,留取标本时嘱患者清水漱口3次,然后用力咳出,临床上有一部分痰液留取不合格,对于特殊患者,应有护士指导下进行,以保证结果的追踪。
1.2 标本要及时送检。
留取后最好10分钟内送到实验室,避免暴露于空气中,时间延长会使呼吸道细菌丧失活力。
1.3 痰标本在培养前应进行显微镜检查,长期住院患者,口腔中的革兰氏阴性杆菌的数量明显增多,其中大部分是引起医院感染的细菌,而且咳出的痰液在口腔中停留易被污染,还可能有上呼吸道的正常菌群。
2 痰细菌培养存在的问题2.1 留取方法不规范,咳痰量因人而异,临床上约有10-30%的患者干咳无痰或咳痰无力,通过自主咳嗽无法获取痰标本,往往留出的是鼻咽部的分泌物,而不是气管内的痰液。
痰标本培养在细菌学检验中的临床应用
痰标本培养在细菌学检验中的临床应用发表时间:2014-07-21T15:29:24.637Z 来源:《中外健康文摘》2014年第17期供稿作者:于艳霞[导读] 在采用痰标本细菌学检查进行诊断中,对于为何进行痰培养具有很多争议。
于艳霞(内蒙古兴安盟阿尔山市医院 137801)【摘要】目的:探讨痰标本培养在细菌学检验中的临床价值。
方法:选取呼吸科收治的284例患者,对其进行痰标本培养细菌学检查。
结果:284例痰标本共检出243株细菌,占85.56%,其中真菌分布最高,占42.96%,其次为革兰氏阳性球菌,占30.28%;84例痰标本分离的细菌中,草绿色链球菌最多,占27.11%,其次为类产硷假单胞菌11.27%,肠杆菌10.56%。
结论:通过痰标本的细菌学检验,对呼吸系统疾病的诊断及治疗均具有重要意义。
【关键词】痰标本细菌临床应用【中图分类号】R446.5 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085(2014)17-0199-02痰液是由支气管、肺泡、气管产生的分泌物。
细菌种类随着社会大环境的改变,也在不断发生改变,同时加上抗生素的应用,导致支气管、肺部感染的细菌种类越来越复杂,同时耐药菌也大量增加,在治疗中,若仅仅是根据经验给予抗感染治疗则常常导致治疗失败。
通过痰标本的细菌学检验,对呼吸系统疾病的诊断及治疗均具有重要意义。
本文就我院收治的284例呼吸住院患者痰标本细菌学检验结果进行分析。
现报告如下。
1 临床资料1.1 标本来源选取2013年1月~2013年12月呼吸科收治的284例患者,其中152例男性,132例女性;年龄6~81岁,平均年龄(53.2±8.7)岁,病情分布:120例慢性支气管炎,85例肺炎,48例哮喘伴感染患者,21例支气管扩张患者。
1.2 标本采集清晨,嘱患者用0.1%新洁尔灭进行3次以上漱口,而后进行用力咳嗽,将深部第1口痰咳出吐在无菌广口有螺旋帽的容器内。
若患者痰液过少,则可使其保持头和肩低于胸部水平位置10min,或用10%~15%NaCl进行雾化吸入诱导痰液咳出。
简析痰标本在细菌学检验中的运用效果
2015.02医苑纵横279在导致疾病感染的病原菌中,细菌L 型是一种由于细菌细胞壁缺损或全部丧失而导致产生的疾病,有些属于自发疾病,而有些则属于人工诱导而成,且人工诱导出现频率远远高于自发性疾病[1]。
本次研究对应用不同方法采集的痰液标本在细菌学检验过程中所发挥的效果进行对比研究。
现汇报如下。
1 资料和方法1.1 一般资料选择2012年3月-2014年3月在我院就诊的接受细菌学检验的呼吸道感染疾病患者84例。
其中包括男性患者45例,女性患者39例;患者年龄18-74岁,平均年龄(46.1±1.3)岁;呼吸道感染发病时间1-9天,平均发病时间(3.2±0.5)天。
上述三项自然指标研究对象之间比较无显著差异(P>0.05),可以进行比较分析。
1.2 方法所有研究对象在痰标本采集前1天接受宣教,明确痰培养检验的重要性,在采集过程中要对痰液和唾液存在的差异性、采集时间及采集注意事项有充分的了解。
医生参照患者病情进行填写合理痰培养检验项目,根据实际情况填写抗生素类药物应用计划。
在入院第1天采集痰标本。
(1)首先采用自然咳痰法采集(定义为对照组),具体方法为:患者早起后,采用清水漱口3次,用力将气管深处咳出的第一口痰置与容器中,在采集后的60min 内送检[2]。
(2)然后采用改进的标准采集法采集(定义为研究组),具体方法为:患者晨起后认真刷牙,再次宣教,用清水漱口3次,尽力将气管内存在的痰液咳出,吐于容器中。
将采集到的痰液标本置于盛有20mL 左右的灭菌等渗盐水试管内,剧烈振荡处简析痰标本在细菌学检验中的运用效果黄 萍重庆市奉节县疾病预防控制中心 重庆市 404600【摘 要】目的:对应用不同方法采集的痰液标本在细菌学检验过程中所发挥的效果进行对比研究。
方法: 选择在我院就诊的接受细菌学检验的呼吸道感染疾病患者84例,首先采用自然采集方法对痰液标本进行采集(定义为对照组),然后采用改进的标准采集方法对痰液标本进行采集(定义为研究组)。
痰及下呼吸道分泌物标本培养在细菌学检验中的应用
痰及下呼吸道分泌物标本培养在细菌学检验中的应用作者:卢丽鹏来源:《医学信息》2015年第02期摘要:目的探讨痰及下呼吸道分泌物标本培养在细菌学检验中的应用。
方法收集1770例送检痰及下呼吸道分泌物标本,对其进行培养鉴定,分析标本菌种分布。
结果 1770份痰及下呼吸道分泌物标本中共培养出致病菌株为520例,阳性率占29.38%,其中排前三位的分别为大肠埃希菌117株(22.5%)肺炎克雷伯氏菌80株(15.38%)、白色念珠菌68(13.08%)。
结论呼吸道疾病采用痰及下呼吸道分泌物标本的细菌学检验,能够为临床医生诊断治疗提供有效的证据,并且为保证检验的准确性以及临床用药的安全合理性,应当加强对标本质量的重视。
关键词:痰;下呼吸道分泌物;细菌学检验下呼吸道感染是临床常见疾病之一,导致其发病的因素多为细菌感染,因此,在临床治疗中,必须对导致感染的病原体明确诊断方能选择适宜的抗生素[1]。
通过痰及下呼吸道分泌物标本的培养是临床最常用的、也是能够明确对病原诊断的辅助方法。
本研究中通过分析痰及下呼吸道分泌物标本培养在细菌学检验中的应用,旨在为临床使用抗生素提供一定的指导作用。
1 资料与方法1.1 一般资料本研究收集的资料为2013年6月~2014年6月送检的1770份痰及下呼吸道分泌物标本,其中男920份,女850份;年龄群为8个月~74岁,平均年龄(46.6±5.3)岁。
1.2 标本采集所有患者在进行痰及下呼吸道分泌物采集的清晨起床刷牙后,用清水进行3次漱口,将气管内痰液及下呼吸道分泌物用力咳出,并采用一次性无菌容器采集,护理人员将采集到的痰液放入盛有15~20mL的灭菌等渗盐水试管内,然后在10~60min内送入检验科检验[2]。
1.3 细菌学检验参照于艳霞[3]文献资料,取出标本,按1:3加入消化液,以3000r/min速度离心15min,加入适量PBS重悬沉淀,取300ml分别接种于巧克力平板、血琼脂平板、中国蓝平板上,对检出酵母(样)菌者,立即加种沙保罗培养基培养,培养液温度控制在370C静置培养[4]。
痰与其他下呼吸道标本的细菌学检查分析
痰与其他下呼吸道标本的细菌学检查分析目的:对痰与其他下呼吸道标本的细菌学检查进行探讨。
方法:随机抽取我院在2012年1月—2013年12月治疗的90例呼吸内科住院患者,利用回顾性分析法对患者的细菌培养结果进行分析。
结果:90例痰标本经过培养后共培养出73株细菌,细菌分布如下:13例肺炎链球菌,2例草绿色链球菌,7例消化链球菌,4例金黄色葡萄球菌,2例脆弱拟杆菌,10例白色念球菌,9例流感嗜血杆菌,24例肺炎克雷伯杆菌,1例大肠埃希菌,1例口腔杆菌。
结论:痰标本在培养前,需进行涂片,不仅能够对痰标本的合格率进行检查,而且还保证痰培养的阳性率。
标签:痰;下呼吸道标本;细菌学检查;培养Sputum bacteriology examination analysis and other lower respiratory specimens[abstract]:Objective:to phlegm and other lower respiratory specimens of bacteriology examination were discussed. Methods:Randomly selected hospital in January 2012 - December 2013,for the treatment of 90 cases of hospitalized patients with respiratory medicine,using retrospective analysis of patients with bacterial culture results were analyzed. Results:90 cases of sputum specimens after training cultivate a total of 73 strains of bacteria,the bacteria distribution is as follows:13 cases of streptococcus pneumoniae,2 cases of streptococcus viridans,7 cases of digestive streptococcus,4 cases of staphylococcus aureus,2 cases of bacteroides fragilis,10 cases of white read aureus,9 cases of h. influenzae,24 patients with klebsiella pneumoniae,1 case of e. coli,1 cases of oral bacteria. Conclusion:The sputum specimens in front of the train,need to smear,not only can carry on the inspection to the qualification rate of sputum specimens,but also guarantee the positive rate of sputum culture.Key words:phlegm;The lower respiratory tract specimens;Bacteriology examination;To cultivate痰细菌学[1]检查主要常见于下呼吸道感染病原的诊断中,例如慢性支气管炎、肺脓肿、细菌性肺炎肺结核等,且痰标本容易受到口咽部细菌的影响。
分析痰培养在细菌学检验中的应用价值
分析痰培养在细菌学检验中的应用价值摘要】目的:分析痰培养在细菌学检验中的应用价值。
方法:对到我院治疗的72例病患进行分析,将其分成四组:对照A组、研究A组、研究B组、对照B组,对照A组使用自然采集方法,而研究A组使用改进的标准采集方法;对照B组病患在采集谈标本前曾使用抗生素进行治疗,研究B组没用使用抗生素。
两组采集方法和研究A组相同。
结果:对照A组痰标本经过检验合格率是34.33%,病原菌阳性率是38.89%;研究A组痰标本经过检验后分别为58.33%、75.57%,对比对照A组和研究A组,统计学有意义(p<0.05);对照B组痰标本经过检验病原菌阳性率是43.89%,研究B组为68.89%,对比研究B组和对照B组,统计学有意义(p<0.05)。
结论:严格按照标准方法所采集痰标本经过检验后可以提高病原菌阳性率,为临床治疗和诊断提供有利的依据。
【关键词】痰;培养;细菌学在引起疾病感染的全部病原菌中,L型细菌由于细菌细胞壁发生部分缺损或全部丧失而形成,在细菌细胞壁出现缺失的过程中,有些是人为诱导的,而有些属于自发的,而自发所产生的频率低于人为诱导频率。
痰标本在细菌学检验过程中受许多因素的影响,文章分析了呼吸道感染72例病患的痰标本检验结果,现陈述如下:1.资料和方法1.1一般资料我院抽取抽取2012年2月~2014年2月到我院治疗的72例呼吸道感染病患,将其中36例病患根据痰标本不同的采集方法,分为对照A组和研究A组,每组均分为18例;将其余的36例病患根据是否利用抗生素,分为研究B组和对照B组,每组均分为18例。
全部病患都应符合呼吸道感染的诊断标准。
其中42例为男性,30例为女性;年龄在52~83岁之间,平均年龄在(65.33.8)岁之间。
对每组病患的年龄、性别、病情以及基本资料进行对比,(p>0.05)统计学没有意义,有可比性。
1.2方法1.2.1采集痰标本全部病患在采集痰标本的前一天都应给予正确的宣传教育,让病患认识痰培养检验的重要意义,在采集过程中清楚痰液和唾液形成的差异性、注意事项和采集痰液时间等。
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痰标本在细菌学检验中的应用分析摘要目的:探讨痰标本在细菌学检验中的应用价值。
方法:选择送检于检验科的300例痰标本,分别接种培养于不同的培养基上。
结果:1例标本在923tbl液体培养基浑浊,有细菌生长,在7h9l 半固体蔗糖培养基中有油煎蛋样的菌落出现,而在罗氏培养基、923tbb和7119b培养基中没有菌落生长。
结论:用高渗半固体培养基可以从临床痰标本中分离出结核分枝杆菌l型菌株,表明痰标本在细菌学检验中仍有一定的价值。
关键词痰标本细菌学检验
在感染疾病的病原菌中,细菌l型是细菌细胞壁部分缺损或完全丧失而造成的,细菌胞壁的缺失可以是自发的,也可以是人工诱导的,但人工诱导的频率远比自发为高。
痰标本在琼脂培养基上,菌落呈“油煎蛋”样式[1]。
本实验旨在筛查临床痰标本中结核分枝杆菌l型细菌的存在情况,论述了痰标本在细菌学检验中的应用效果,为进一步研究结核分枝杆菌l型细菌的形成提供思路,现报告如下。
资料与方法
实验对象:2009年6月~2012年5月送检于检验科的300例痰标本。
培养基配制:罗氏培养基的配制:基础液,谷氨酸钠1.8g、磷酸二氢钾1.2g,枸橼酸镁0.3g,葡萄糖0.3g,硫酸镁0.1g,丙三醇6ml、蒸馏水300ml。
上述溶液加热充分溶解,加入土豆粉6g,
摇匀加热5分钟。
冷却到40~50℃时,加入500ml全卵液,加入已经高压灭菌的2%孔雀绿10ml,摇,静置后进行分装。
呈斜面放置于干燥箱85℃,1.5小时。
冷却后,培养基斜面颜色鲜艳,表面光滑无气泡,4℃保存。
痰标本的细菌培养:取痰标本,以1:3的比例加入消化液,漩涡振荡,3000转/分,离心15分钟,加入适量pbs重悬沉淀,取300ml分别接种于middlebrook mgit 7h9液体、7h9l、7h9b半同体培养基、923tbb和923tbl液体培养基中,37℃静置培养。
消化液的配制:4%naoh 50ml,2.9%枸橼酸钠50ml,n-乙酰-l-半胱氨酸0.5g当天配制,24小时内使用。
染色涂片后光学显微镜下镜检。
结果
细菌培养结果:痰液经预处理后接种于middlebrook mgit 7h9液体、7h9l、7h9b半同体培养基、923tbb和923tbl液体培养基,培养结果显示1例标本在923tbl液体培养基浑浊,有细菌生长,在7h9l半固体蔗糖培养基中有油煎蛋样的菌落出现,而在罗氏培养基、923tbb和7119b培养基中没有菌落生长。
涂片镜检分析:1例标本菌株的煎蛋样菌落经抗酸染色可见大小不等的短杆状的细菌。
病历分析:患者,男,19岁,汉族。
患者于2010年10月曾患“颈淋巴结核”抗痨治疗好转,2011年10月患者无诱因出现咳嗽,以干咳为主伴少量白色稀薄液,x线左肺上中野见斑片状阴影,边界模糊,ct左肺斑片状密度不均一影。
入院检查:痰检三次均为阴
性,医师根据影像学结核胸片病灶形态以临床症状,考虑为继发性肺结核。
常规:粒细胞百分比71.7%(30~90),淋巴细胞绝对值1.3×109(2~10),入院后给予抗炎,抗痨支持治疗:inh 0.4g,1次/日,rfp 0.4g,1次/日,pza 1.5g,1次/日,sm 0.759g,1次/日症状,缓解,无药物不良反应,痊愈后出院。
讨论
细菌细胞壁缺陷型(细菌l型),在某种情况下细胞壁肽聚糖结构可遭破坏,或当其合成受到抑制时,革兰阳性菌细胞壁几乎完全缺失,原生质仅被一层胞膜包绕,一般呈球形,称原生质体[2]。
革兰阴性菌经溶菌酶处理后,因其细胞壁中肽聚糖含量较少,且可保留某些或全部的外膜保护,内部渗透压又比革兰阳性菌低,故形成一种对低渗环境具有一定抵抗力的圆球体,或称原生质球[3,4]。
痰是病理产物,主要是肺、支气管和气管内的炎性分泌物。
咳嗽的患者采集痰标本,主要目的是为了检查,进行病原菌的鉴定,并有助于诊断和治疗。
我们知道,肺结核患者痰中能否找到l型细菌,除痰中含菌量大小外,正确留取痰标本的方法是:在留痰之前先用清水漱口数次,以清除口腔内的食物残渣及部分杂菌。
留取的痰应是用力咳嗽后自气管内咳出的痰,然后盛于痰盒内送检。
不要将唾液或鼻涕吐入痰盒,以免影响查痰结果。
初次就诊需查痰,医生要求送3个痰标本:即时痰:就诊当时咳出的痰;夜间痰:前1天晚间咳出的痰;清晨痰:起床后深咳吐出的痰,其中以清晨第1次咳出的痰效果最好[5]。
应采集12~24小时内的痰液。
测定24
小时痰量或观察分层情况时,容器可加少量石炭酸防腐。
用于细菌培养的标本,必须无菌采集,并先用无菌水漱口,以避免口腔内正常菌的污染。
为了防止痰液污染,用过的标本应灭菌后再处理[6]。
本文通过痰检验结果显示,本文1例患者是多次抗痨治疗,抗痨药物中异烟肼对细胞壁的合成有抑制作用,这给l型细菌的形成提供了条件,但是经过痰涂片抗酸染色没有发病病原菌,通过将痰液消化处理,接种于培养l型细菌的7h9高渗半固体发现了l型细菌。
总之,用高渗半固体培养基可以从临床痰标本中分离出结核分枝杆菌l型菌株,表明痰标本在细菌学检验中仍有一定的价值。
参考文献
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3chiodini rj,van kruiningen hj,thayer wr,et
al.spheroplastic phase of mycobacteria isolated from patients with crohn’s disease.j clin microbiol,2009,24(3):357-363.
4朱明利,张永乐,张立诚,等.肺结核患者结核菌l型感染及其荧光定量pcr检测的意义[j].中国实验诊断学,2008,12(5):632-635.
5卢润生,蒋绍双,李定越.结核菌l型培养基的改进[j].四川
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6朱明利,张元和,李明君,等.肺结核、肺癌患者外周血结核分枝杆菌及其1型的检测方法[j].蚌埠医学院学报,2011,26(1):
71-73.。