小鼠腹水型肝癌淋巴道转移实验
昆明小鼠原位胃癌移植模型的建立实验具体步骤及说明
昆明小鼠原位胃癌移植模型的建立实验具体步骤及说明采用两种不同的肿瘤细胞株分别在昆明小鼠胃部原位建立胃癌模型。
造模后对原位移植瘤的生长速度进行观察,并对胃癌组织中v EG F 的表达及M v D 进行检测,结果显示模型的成瘤率均为100%。
昆明鼠胃部原位移植瘤的生长速度快,缩短了胃癌模型建立周期,为筛选抗胃癌药物提供了有效简单的模型。
一、昆明小鼠皮下移植瘤传代S180 细胞注人小鼠腹腔内,进行体外培养,5 -7 d 可见小鼠腹部肿胀,有腹水,收集腹水,细胞计数,调整细胞密度在2 x 106- 2x 107注射到昆明小鼠的腋部皮下形成实体瘤。
待肿瘤生长至直径1.5 -2.0 cm 之间,处死小鼠,按上述方法反复传3 代后作为原位移植用瘤源。
二、原位移植模型的建立1. 取一中传3 代后生长4 周左右处于对数生长期的昆明小鼠,常规消毒,从腋部皮下剥取肿瘤组织。
2. 剔除纤维包膜、血管,切开去除中间坏死的组织,选取生长良好、呈淡红色、鱼肉状的瘤组织,剪成约1-2 mm ,小块备用。
3. 昆明小鼠术前禁食12 h,以0.5% 戊巴比妥钠腹腔内注射(50 mg/kg)麻醉,固定小鼠,常规消毒皮肤,用手术剪刀在小鼠沿左侧腹部正中旁线切开,切口约1.5 cm ,小心暴露腹膜、胃壁,用一次性注射针头轻微损伤胃大弯中部浆膜层,以出血为度,用无齿镊将破损处向内推压,使局部胃壁形成凹完,植入1 块1-2 mm3瘤组织块,并在瘤表面滴1 滴OB生物胶,使其覆盖瘤组织表面,然后分层关腹。
4. 人胃癌组织块昆明小鼠原位种植后,逐日观察裸鼠全身状况,运动情况,腹部体征。
若实验过程中出现动物死亡,记录时间,并全面探查腹腔,观察胃肿瘤原位生长情况。
三、处死动物及移植瘤的观察定时观察所有裸鼠全身状况、运动情况、腹部体征、移植后脱颈处死解剖,取原位瘤。
所取标本经10%甲醛固定、石蜡包埋、切片、HE染色,做组织病理学检查。
四、免疫组化染色1. 采用EnVision免疫组织化学技术检测VEGF蛋白表达。
原位移植法建立肝脏H22肝癌细胞移植瘤小鼠模型
World Journal of Cancer Research 世界肿瘤研究, 2015, 5, 15-20Published Online January 2015 in Hans. /journal/wjcr/10.12677/wjcr.2015.51003Orthotropic Transplantation to EstablishH22 Hepatocellular Carcinoma Model in MiceChen Han1,2, Hengxiao Wang1,2*, Zhaoxia Wang31Department of Immunity, Institute of Basic Medicine, Shandong Academy of Medical Sciences, Ji’nan2School of Medicine and Life Sciences, University of Jinan-Shandong Academy of Medical Sciences, Ji’nan3Department of Pathology, Institute of Basic Medicine, Shandong Academy of Medical Sciences, Ji’nanEmail: *wanghengxiao@Received: Nov. 24th, 2014; revised: Dec. 22nd, 2014; accepted: Dec. 30th, 2014Copyright © 2015 by authors and Hans Publishers Inc.This work is licensed under the Creative Commons Attribution International License (CC BY)./licenses/by/4.0/AbstractObjective: To establish a liver orthotropic transplantation tumor model with H22 cells, for the further development of the related experimental study. Methods: A certain number of H22 cells were directly injected in the left lobe of the liver in C57BL/6 mice, establishing a transplanted tu-mor model of hepatocellular carcinoma in situ. Results: After 7 days of surgery, the liver surface appeared irregular size nodules, nodules increased with the prolongation of time increases, the late abdominal organs appeared invasion, adhesion, ascites was increased. Histopathological ex-amination of liver tumor tissues and adjacent tissues of cancer showed that liver orthotropic transplantation tumor formation rate was 100%, no spontaneous regression. Conclusions: Ortho-tropic injection of H22 cell established orthotropic transplantation tumor formation in the liver, and the tumor formation time was relatively short, tumor formation processes associated with organ metastasis and ascites. This model was reasonable to simulate the pathological and physio-logical body of liver cancer in human, and could satisfy the requirement of research on liver can-cer.KeywordsHepatocellular Carcinoma, Orthotropic Transplantation, Experimental Animal Models原位移植法建立肝脏H22肝癌细胞移植瘤小鼠模型韩琛1,2,王恒孝1,2*,王朝霞3*通讯作者。
肝癌小鼠造模实验方法
肝癌小鼠造模实验方法(1)肿瘤细胞悬液的制备小鼠肿瘤细胞用小鼠腹腔培养,然后抽取腹水,是取得大量肿瘤细胞最便捷的方法。
具体操作如下:将肿瘤细胞株复苏后,接种于babl/c(昆明小鼠)腹腔,培养8-10天后,接种小鼠的腹腔内长出含肿瘤细胞的腹水,选择腹水饱满的小鼠,在超净台内于无菌条件下消毒小鼠腹部,用注射器抽取淡腹水为瘤源,放入无菌容器内,加入无菌生理盐水稀释瘤液,小心摇匀,并置冰水上保存。
若用多只动物做瘤源时,则应混合腹水。
(腹水应为淡黄色浓稠液体,若为深黄色或红色则应弃去不用。
)(2)肿瘤细胞计数取少量腹水,放置于干试管内,用生理盐水稀释100倍,用枪头吸取少许腹水,滴于载玻片上,推片,镜下观察细胞形态:细胞为圆形,胞浆均匀,透明,折光性好,分布均匀。
并于镜下进行细胞分类计数,其中肿瘤细胞数应≥95%。
7mL,在小鼠右侧腋下(右侧腋窝(3)肿瘤细胞接种腹水用无菌生理盐水调整细胞浓度为1*106个瘤细胞)(5*106)?。
全程严格无菌操作,皮下?)常规接种H22瘤液0.2mL/只(含2*1040min内完成。
(4)分组与给药昆明小鼠用上法造模,造模后再将腹水瘤小鼠按体重分层,随机分为阳性对照组(CTX)、青蒿素各剂量组(150mg/kg、300mg/kg)、青蒿琥酯P0组(60mg /kg)、青蒿琥酯ip组(60mg/kg)、青蒿醇提物和青蒿水提物各剂量组(1000mg/kg、4000mg/kg)和模型对照组(Model),每组各lO只小鼠。
造模24h后,阳性对照组(CTX)20mg/kg和青蒿琥酯ip组(60mg/kg),腹腔注射0.2mL/只,每天1次,连续lOd:其它组灌胃给药,灌服溶液0.4mL/只,每天1次,连续lOd。
模型对照组仅予等量CMC-Na 溶液,连续lOd。
平均每只小鼠每天给等量鼠料,每周换垫料2次,每日换新鲜水1次。
记录各小鼠死亡的时间。
其他问题:检测药物对肿瘤的抑制作用,给药时间怎么确定?1、造模后第二天给药2、肿瘤长出一定体积后在给药。
内质网分子蛋白在小鼠腹水型肝癌高、低淋巴道转移株中的表达及意义
肝细胞癌(hepatocellular carcinoma)具有较高的发病率与死亡率,是世界范围内最为常见的恶性肿瘤之一[1]。
研究证明,转移和复发是导致《中国癌症杂志》2015年第25卷第2期 CHINA ONCOLOGY 2015 Vol.25 No.295内质网分子蛋白在小鼠腹水型肝癌高、低淋巴道转移株中的表达及意义张亚楠1,2,唐建武11.大连医科大学基础医学院病理学与法医学教研室,辽宁 大连 116044;2.山东中医药大学基础医学院病理学教研室,山东 济南 250355 [摘要] 背景与目的:内质网分子伴侣29(endoplasmic reticulum molecular chaperons 29,ERp29)是一种内质网应激蛋白,其高表达与肿瘤转移相关。
本研究旨在探讨ERp29在小鼠腹水型肝癌高、低淋巴道转移株中的表达及与肝癌淋巴道转移的关系。
方法:构建小鼠腹水型肝癌细胞株(高转移株Hca-F、低转移株Hca-P)淋巴道转移动物模型,通过免疫组织化学、蛋白质印迹法(Western blot)和流式细胞仪等方法检测ERp29在Hca-F、Hca-P细胞株中的表达情况。
结果:免疫组织化学检测结果显示,ERp29在Hca-F、Hca-P中均呈阳性表达,定位于细胞质,部分细胞核也有表达。
Western blot检测结果显示,ERp29在Hca-F、Hca-P 中的表达吸光度值分别为0.97±0.03和1.17±0.03,ERp29在Hca-F细胞株中的表达(吸光度值)明显低于Hca-P,差异有统计学意义(P <0.01)。
流式细胞仪检测结果显示,ERp29在Hca-F细胞株中的相对荧光强度值(375.27±47.33)显著低于Hca-P(623.91±46.80),差异有统计学意义(P <0.01)。
结论:ERp29在小鼠腹水型肝癌细胞株Hca-F和Hca-P均有表达,且在Hca-F中表达较低,而在Hca-P中表达较高。
采用直接注射法制作BALB/c小鼠肝癌原位移植瘤模型探讨
采用直接注射法制作BALB/c小鼠肝癌原位移植瘤模型探讨摘要目的:培养小鼠BNL肝癌细胞,采用直接注射法制作BALB/c小鼠肝癌原位移植瘤,为后续实验奠定基础。
方法:小鼠BNL肝癌细胞体外培养,将调整好的对数生长期的肝癌细胞直接注射到小鼠肝脏,15日后解剖实验小鼠取下肝左叶,4%多聚甲醛固定、常规组织包埋、切片及HE染色后镜下观察。
结果:实验小鼠在肝脏左叶均可以见到肿瘤生长,HE染色示肝细胞肝癌。
结论:直接注射法制作BALB/c小鼠肝癌原位移植瘤模型可操作性强,成癌率高且周期短,值得推广使用。
标签:BALB/c小鼠;肝癌;原位移植瘤;前言肝癌是世界范围内发病率第五,死亡率第三的癌症,而在我国肝癌死亡率居恶性肿瘤死亡率的第二位[1 2]。
所以早期发现、早期诊断、早期治疗是肝癌防治的关键。
因此,如果能够建立一个类似人肝癌的理想模型,从而积极的用于癌症的相关研究,将会对肝癌药物的临床实验治疗具有深远的意义。
建立肝癌的模型临床报道较多,但采用培养好的肝癌细胞直接注射在小鼠肝脏上制作肝癌原位模型在临床上是比较常见的[3]。
查阅文献发现BALB/c小鼠属于近交系的小鼠,此类小鼠的成瘤率高,而且容易饲养,因此我们探索了采用直接注射法[4]建立BALB/c小鼠肝癌原位移植瘤的方法。
1 实验材料与方法1.1 实验动物健康雌性BALB/c近交系小鼠,6周龄,体重18±2g,购自北京华阜康生物科技股份有限公司,合格证号:SCXK(京)2009-0007,饲养于贵阳中医学院中心实验室动物房。
1.2 实验试剂胎牛血清、DMEM高糖购自美国Gibco公司,青链霉素混合液、0.25%的胰蛋白酶购自美国Hyclone公司。
1.3 实验方法和步骤1.3.1 细胞培养将购买的小鼠BNL肝癌细胞株培养于浓度为15%的DMEM 高糖培养基中,37度,5%的CO2培养箱中常规培养,细胞生长到一定程度用0.25%的胰蛋白酶进行消化,继续传代培养,最终达到实验要求的细胞浓度。
实验四 腹水型单抗的制备及纯化
实验四腹水型单抗的制备及纯化迄今为止,通常情况下均采用动物体内生产单抗的方法,鉴于绝大多数动物用杂交瘤均由BALB/c小鼠的骨髓瘤细胞与同品系的脾细胞融合而得,因此使用的动物当然首先BALB/c 小鼠。
本方法即将杂交瘤细胞接种于小鼠腹腔内,在小鼠腹腔内生长杂交瘤,并产生腹水,因而可得到大量的腹水单抗且抗体浓度很高。
可见该法操作简便、经济,不过,腹水中常混有细胞及其残渣、小颗粒物质、脂肪滴以及小鼠的各种杂蛋白,因此在很多情况下要提纯后才能使用。
而腹水单抗的纯化是一个相当困难的工作,本实验将进行IgG1型腹水单抗的提纯方法。
材料:1、成年BALB/c小鼠。
2、灭菌液体石蜡或福氏不完全佐剂;处于对数生长期的杂交瘤细胞;新鲜采集的腹水(或冻存的腹水)。
3、饱和硫酸铵(pH7.2-7.4)溶液,正辛酸,0.1M NaOH,1M NaOH,0.06M,pH4.0NaAc-HAc缓冲液,0.01M,pH7.4 PBS,10×PBS(0.01M,pH7.4)。
方法:一、腹水的制备1.取12周龄的BALB/ c小鼠腹腔注射灭菌石蜡,0.5ml/只或腹腔注射福氏不完全佐剂,0.2-0.3ml/只。
2.1周后(注射灭菌液体石蜡)或3天后(注射福氏不完全佐剂)腹腔接种用PBS或无血清培养基稀释的杂交瘤细胞,每只小鼠1—3×106/0.3ml。
3.间隔5天后,每天观察小鼠腹水产生情况,如腹部明显膨大,以手触摸时,皮肤有紧张感,即可用16号针头采集腹水,一般可连续采2-3次,通常每只小鼠可采5-10ml腹水。
将腹水离心(2000rpm离心5min),吸去最上层的脂肪组织,除去细胞成分和其他的沉淀物,收集上清,将上清加入50﹪甘油冻存于-20℃冰箱,留下一小部分测定效价。
二、辛酸—硫酸铵法纯化腹水中的单抗1.取3ml腹水,2500r/min离心弃杂质,加入0.06M,pH4.0 NaAc-HAc缓冲液3ml,调pH 至4.8(用0.1M NaOH调);2.加入99ul正辛酸(33ul/ml腹水),室温搅拌≥30min,4℃搅拌≥60min,逐滴加完,4℃澄清2h(20min);3.取出15000r/min离心30min(10min)(4℃),去沉淀(白蛋白和其它非IgG蛋白),上清加入1/10体积的10×PBS(0.01M,pH7.4),用1M NaOH调pH至7.2;4.上清滴加等量饱和硫酸铵(pH7.2-7.4)溶液,使硫酸铵的饱和度为50%,继续搅拌10-30min,静置30min;5.10000rpm(4℃)离心30min(10min),弃上清,将沉淀溶于1.2ml,0.01M,pH7.4 PBS 中,6.0.01M,pH7.4 PBS透析过夜(4℃),其间换液3次,收集透析袋内液体,—20℃保存备用。
不同方法建立小鼠肝癌原位移植瘤模型差异性的探讨
不同方法建立小鼠肝癌原位移植瘤模型差异性的探讨潘蕊;喻锟;张海亮;郑永仁;赵笑雨;唐钧泽;吴健铭;程欣【期刊名称】《中国实验动物学报》【年(卷),期】2024(32)3【摘要】目的比较肿瘤细胞注射和肿瘤组织块移植方法建立小鼠肝癌原位模型的差异,为小鼠肝癌原位模型的建立提供技术参考。
方法取健康雄性KM小鼠,随机分为4组:A组注射小鼠肝癌H22细胞;B组注射腹水型肝癌H22细胞;C组采用小鼠肝癌组织块移植法;D组肝部注射生理盐水作为假手术组。
定期观察各组小鼠活动情况、体重变化。
记录4组小鼠的生存时间。
观察各组小鼠肝部成瘤状况、肿瘤程度、与腹腔脏器粘连程度和转移情况,并进行B超成像,检测血清中甲胎蛋白(alpha-fetoprotein, AFP)、异常凝血酶原(des-gamma-carboxyprothrombin, DCP)的浓度及苏木素-伊红(HE)染色观察肝组织病理学变化。
结果 A组、B组、C 组小鼠造模操作时间分别为(3.36±0.44)min、(3.30±0.41)min、(5.68±0.65)min。
建模第25天,A组、B组、C组小鼠成瘤率均100.0%,A组腹腔重度粘连率为40.0%,B组腹腔重度粘连率为60.0%,C组与D组均未出现重度腹腔粘连。
A组、B组、C组小鼠腹水出现率分别为40.0%、100.0%、0.0%;腹壁瘤出现率分别为30.0%、60.0%、0.0%。
B组小鼠还存在肝转移情况(40.0%)。
B超成像、血清AFP和DCP水平检测、组织病理学检查结果显示,与D组小鼠相比,A组、B组、C 组小鼠肝边缘均不光滑,回声欠均匀,可见稍低回声包块;保持AFP、DCP高分泌;存在大量炎症细胞与肿瘤细胞。
结论在第25天时,3种方法均可以建立肝癌原位移植模型,其中,相较于肝癌组织块移植,肿瘤细胞注射具有操作简单、肝内存在多个转移结节的特点。
而肝癌组织块移植相较于肿瘤细胞注射,则具有对腹腔等脏器影响较小等特点。
小鼠肝癌原位移植模型的建立及其意义的研究
小鼠肝癌原位移植模型的建立及其意义的研究项亮亮;侯杰;王婕;焦成斌【摘要】目的:探讨用肝癌H22细胞建立小鼠肝癌原位移植模型.方法:将肝癌H22细胞注入小鼠腹腔内,建立异位移植模型;抽取腹水中癌细胞接种于小鼠肝实质内,建立原位移植模型.结果:移植后10d可扪及肿瘤生长,模型成功率94.4%;晚期自发转移率79.4%,腹水产生率35.3%,无自发消退;移植瘤保持甲胎蛋白(AFP)、异常凝血酶原(DCP)高分泌及γ-氨基酰转氨酶(γ~GT)同工酶阳性的特点;模型平均自然生存期28d.结论:小鼠肝癌原位模型成功率高,易于制作,生物学特征符合模拟人类肝癌在体内发生发展的全过程,可成为今后人类研究肝癌的重要动物模型.【期刊名称】《黑龙江医药科学》【年(卷),期】2015(038)006【总页数】2页(P48-49)【关键词】肝癌;H22细胞;原位移植模型;小鼠【作者】项亮亮;侯杰;王婕;焦成斌【作者单位】佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003;佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003;佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003;佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003【正文语种】中文【中图分类】R735.7肝癌是世界范围内常见的恶性肿瘤之一,因其发病率高、恶性程度高、死亡率高,素有“癌中之王”的称号[1]。
目前已有大量研究为肝癌临床的治疗提供基础依据,而肝癌动物模型一直是肝癌临床与基础研究工作的重要工具。
目前有关人肿瘤转移模型大多是用裸大鼠、裸小鼠,动物肿瘤则多数是用Wistar或SD大鼠建立的,而用小鼠建立原位肿瘤移植模型国内外报道较少。
小鼠作为一种更经济,易饲养,易获得的实验研究载体,在发挥其普遍应用性方面有着重大的作用。
小鼠肝癌原位移植模型作为一种新型的动物模型是否能更好地模拟人肝癌在体内发生、发展、侵袭及转移的过程,本实验将研究报道如下。
小鼠结肠癌肝转移模型的构建
ByDONGCP2015-03-17C6-/-转基因小鼠肠癌脾肝转protocol研究目的以C6-/-转基因小鼠为受试动物,评价补体系统抑制后对鼠CT26.WT肠癌脾肝转移模型的影响。
试验动物C6-/-转基因小鼠。
小鼠以C6-/-转基因小鼠与C57BL6Crossbreed十代以上。
实验材料麻醉剂:水合氯醛(或者戊巴比妥钠替代),生理盐水注射器:1ml注射器,2-5ml注射器手术器械:固定班,胶带,止血钳,眼科镊,手术缝合针术后:青霉素,电热毯(也可以无),纱布试验方法1, 小鼠肠癌CT-26细胞悬液的制备。
取对数生长期细胞,用0.25% 胰蛋白酶消化收集细胞,PBS或者无血清培养基洗涤重悬制成单细胞悬液。
台盼蓝染色测定活细胞率≥95%,细胞浓度为:1X10^7/只。
个人感觉是70-80%细胞活力最强。
注意将收集好的细胞放置于冰盒内。
2,小鼠麻醉与固定。
麻醉剂水合氯醛,一次配制10ml(10ml生理盐水融入0.38g水合氯醛)。
注射时候按照0.01ml/g体重注射。
麻醉后用胶带固定在手术展板上。
20g可以考虑0.25ml腹腔注射。
3,脾脏注射切脾组小鼠左上腹行横切口约6mm,逐层剥离进腹后于腹外侧找到柳叶状脾脏,小心显露脾脏,使脾上托于切口外用1ml注射器5号针头从脾上极进针约3mm,注意进针与脾脏平行,将肿瘤细胞悬液注入至脾被膜下,每只缓慢注入细胞浓度为1X10^7/ml细胞悬液0.2ml,可见注射部位脾被膜发白肿胀,待白色肿胀被膜消退后拔出针头压迫止血2分钟(结扎脾蒂,切除脾脏)查无出血,逐层关腹。
黄色字体步骤为切除脾脏方案的操作3,仔细缝合,两层缝合。
缝合后伤口用青霉素涂敷。
也可追加青霉素溶液注射,注射单位参考青霉素说明书。
注意:术中保持脾脏表面湿润,用5ml注射器滴加生理盐水。
术后小鼠的保暖工作对生存有一定影响。
可以用电热毯辅热。
小鼠腹水制备的原理
小鼠腹水制备的原理小鼠腹水制备的原理主要包括两个方面:胸腺B细胞的免疫应答和血液与淋巴液的滤过。
首先,胸腺是免疫系统中的一个重要器官,其中主要存在B淋巴细胞。
当小鼠体内存在所谓的"外来"抗原(如蛋白质),免疫系统将启动免疫应答。
B细胞在胸腺中通过特定受体(BCR)结合并识别到外来抗原,这时候会对该抗原进行内化和处理。
内化后的抗原将进入内质网并被加工,最终表达出B细胞表面的MHC-II分子。
在这个过程中,抗原加工和递呈机制会施行一种叫做"适应性免疫"的应答,因为机体需要适应不同类型的抗原。
其次,血液和淋巴液在小鼠体内循环,并经过肝脏和脾脏等器官进行过滤和处理。
血液中的浆液和淋巴液会包含很多溶解性的物质,其中就包括"外来"抗原。
这些"外来"抗原可以通过淋巴系统的滤过进入腹腔。
淋巴系统拥有很多淋巴结,这些结构会对其中的有害物质进行分解和清除。
当血液中的有害物质进入淋巴系统豆状气球肿大以致虚化,在这个层级,淋巴球与外界的相遇被更加从细胞层级进行进行。
因此,腹腔是淋巴系统中能够以各种方式吞噬、清除外界抗原的一个理想场所。
通过以上两个过程,小鼠体内的外来抗原和淋巴液中的有害物质能够通过胸腺B 细胞的免疫应答以及血液和淋巴液的滤过进入腹腔,从而形成腹水。
腹水的组分主要由外来抗原、细胞成分和溶解物质等构成,其组成和性质与疾病或病变有关。
腹水的产生往往伴随着机体免疫系统的应激和病理反应,因此腹水的制备也可以作为一种动物模型来研究相关的疾病机制和治疗方法。
需要注意的是,制备小鼠腹水是一种对动物实验进行的手术技巧,需要遵循相应实验伦理和安全规范,并在合适的实验条件下进行。
制备腹水后,一定要对腹水样本进行相应的分析和处理,以保证研究结果的可靠性。
肿瘤移植模型
肿瘤模型我们一般常用的就是小鼠模型和人肿瘤裸小鼠移植瘤模型。
其中用得最多的是皮下模型,另外还有腹水(或者尾静脉注射)以及原位模型,其他的模型很少用,就不提他们了。
小鼠模型分三大类:第一类是以S180、EAC、H22等为代表的,他们的宿主小鼠多选用KM,可产生腹水,也可在皮下成瘤。
多以腹水传代,实验时抽取腹水,经过一定稀释后皮下接种构建模型,接踵后第二天开始给药,给药7到10天,接种10天后结束试验,剥取肿瘤称瘤重。
1. 关于构建瘤种可以用体外细胞株培养后,用PBS悬浮至1~3×106/0.1ml/mouse,i.p接种即可,最好用6号左右的针头,就是常用的2ml一次性注射的针头。
2. 关于腹水传代观察到第一代的种鼠肚子较大后(一般约8~9天左右),可以传代,传代时取1ml注射器,用2ml注射器的针头,种鼠腹部消毒后直接将针头插入抽取腹水即可,注意不要把针头插得很深,尽量浅一点,还可以把老鼠拎起来,利用重力,让腹水集中在某处便于抽取,一般抽个0.5ml就可以了,不用离心,直接用PBS3~6倍稀释后,接种到新的老鼠腹腔,腹水颜色为白色或者略有发黄都是正常的,但是血性腹水说明不好,需要注意调整,第二代以后,尽量6~7天的时候传代,不要等的时间太久,否则腹水容易血性。
三代后可用于试验。
3. 关于接种进行试验这个时候抽取的腹水需要量比较多,一般需要处死种鼠后,小心地用消毒眼科剪刀镊子剥开腹部皮肤,注意不要弄破肌肉,然后,用镊子(最好是哪种前面有倒勾的镊子,学名好像是唇型镊)拎起腹部的肌肉,用剪刀剪开一个小口,然后用玻璃滴管或者去掉针头的注射器吸取腹水。
然后进过一定的稀释后,接种到小鼠的腋下。
关于稀释量,各个实验室的情况都不一样,最好摸索一下,开始的时候可以适当的计数,但是要用台盼兰染色后计活细胞数。
接种部位在小鼠腋下,但是不要深入到腋窝里面,会给以后的操作带来麻烦。
接种时的进针处离接种处远一点,让针头在皮下多走一段,不容易污染。
小鼠单抗腹水纯化步骤
小鼠单抗腹水纯化步骤小鼠单抗是一种通过免疫响应体外制备的抗体,通常通过腹水提取方式来获得。
下面是小鼠单抗腹水纯化的一般步骤:1.小鼠免疫将小鼠注射目标抗原,通常使用免疫佐剂将抗原与免疫系统刺激起来。
免疫期间要注意小鼠的饮食和生活环境,保证其健康状态。
2.收集腹水在免疫后,根据小鼠的体重和免疫剂量,使用注射器从小鼠的腹腔中收集腹水。
使用无菌器具,注意操作过程要无菌。
3.储存和预处理腹水收集到的腹水用离心机离心,去除其中的杂质和细胞。
然后将澄清的腹水分装入无菌离心管中,并进行储存。
4.蛋白质浓缩和沉淀将腹水进行浓缩,可以使用离心或超滤等方法。
浓缩过程中要注意温度和时间的控制,以避免蛋白质降解。
浓缩后的腹水可以进一步进行封冻保存。
5.抗原亲和纯化使用亲和层析柱,将浓缩的腹水与目标抗原相互作用。
亲和层析柱可以选择已经与目标抗原结合的树脂,或者通过动态亲和层析的方法进行柱填充。
6.纯化和洗脱将亲和层析柱上结合的抗原-抗体复合物进行洗脱。
可以使用洗脱液来改变物质之间的亲和力,以实现复合物的解离。
洗脱后的洗脱液可以进行进一步的分析和检测。
7.鉴定和分析对纯化后的抗体进行鉴定和分析,可以使用免疫层析、SDS-、Western blot等方法。
这些方法可以检测纯化后的抗体的纯度、抗体滴度和特异性。
8.储存和保存将纯化后的抗体进行分装并储存,通常以冷冻的形式保存。
在保存的过程中要注意使用无菌的存储容器,避免污染和降解。
以上是小鼠单抗腹水纯化的一般步骤。
根据实际需求和具体实验条件的不同,可能会有所调整。
另外,为了保证实验的安全和可重复性,建议在进行实验前充分了解相关实验操作和操作流程,并遵守实验室安全规范。
小鼠淋巴细胞转化实验报告
小鼠淋巴细胞转化实验报告背景淋巴细胞转化实验是一种常用的实验方法,用于研究免疫系统对外界刺激的反应。
该实验通过刺激小鼠淋巴细胞,观察和分析其增殖和分化情况,以了解免疫细胞对特定抗原的应答能力。
淋巴细胞是免疫系统中的重要组成部分,主要负责识别和攻击入侵体内的病原体。
在免疫应答过程中,淋巴细胞会发生转化,即从静止状态进入活跃状态,并开始增殖和分化为具有特定功能的效应细胞。
实验设计本次实验旨在通过刺激小鼠淋巴细胞,观察其在不同条件下的转化情况,并进一步分析其增殖和分化能力。
具体实验设计如下:1.实验组:将小鼠淋巴细胞与特定抗原共培养。
2.阳性对照组:将小鼠淋巴细胞与已知刺激剂共培养。
3.阴性对照组:将小鼠淋巴细胞与无刺激剂共培养。
4.观察时间点:分别在培养开始后的24、48和72小时观察和采样。
实验步骤1.准备工作:消毒实验器具,准备所需培养基和试剂。
2.提取淋巴细胞:通过离心法从小鼠脾脏中提取淋巴细胞。
3.细胞计数和调整浓度:使用显微镜计数室计数细胞数量,并根据实验要求调整细胞浓度。
4.培养实验组、阳性对照组和阴性对照组:将相应的淋巴细胞与特定抗原或刺激剂共培养。
5.培养条件控制:保持适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度,定期更换培养基。
6.观察和采样:在规定的时间点,观察细胞形态变化,并采集样本用于后续分析。
分析结果细胞形态观察在实验进行的不同时间点,观察到了细胞形态的变化。
刺激后的淋巴细胞在24小时内开始出现细胞体积增大、核浓缩和细胞质深染的特点。
随着时间的推移,细胞数量逐渐增多,并呈现出更多分裂和分化的特征。
细胞增殖分析使用MTT法对不同时间点的培养物进行细胞增殖分析。
结果显示,在实验组和阳性对照组中,细胞增殖率明显高于阴性对照组。
并且,在实验组中,随着时间的延长,细胞增殖率逐渐增加。
细胞表面标记物检测通过流式细胞术检测实验组中转化后淋巴细胞表面标记物的表达情况。
结果显示,在实验组中,与阴性对照组相比,特定抗原诱导了一系列免疫相关标记物的表达上调。
益气养阴方对小鼠肝癌淋巴道转移的影响
转移情况等的指标 变化。结果 巴结转移显著减少。结论
益气养 阴方对 H 肝癌淋 巴道 转移有 一定 的抑制作用。 [ 文献标 识码 】A [ 文章 编号 ]6 26 9 (0 9 0 -190 17 - 0 20 )20 4 -3 7 -
,
[ 关键词] 肝肿瘤 ; 巴转移 ; 淋 益气养 阴; 模型 , 动物 [ 中图分 类号]R 3 . 757
中国临床保健杂志
20 0 9年 4月第 1 2卷第 2期
C i JCi a h , pi20 V 11 , O. hn l Heh cA r 0 9, o.2 N 2 n l
・Leabharlann 19・ 4 ・基础研 究 ・
益气养 阴方对 小鼠肝癌淋 巴道转移 的影 响
丁波 孙 静 ,
(. 1 山东省立医院药剂科 , 济南 20 2 ; . 50 12 山东 中医药大学病理教研室 )
目前 尚无 报道 。为 了进 一步 了解 益气 养 阴方抗 肿瘤
1 12 药 品 ..
益 气养 阴方 中药 由建联 中药 店提 供 ,
[ b t c] Obet e oivs gttee et f e fr n i n or hn i o ea ma y ht A sr t a jc v T et a f co i oc gQ dN ui i Yn nh pt mpai i n i eh f R n i a s g o L c
磷酸化JNK在小鼠腹水型肝癌高、低淋巴道转移株中表达的研究
磷酸化 J K在小 鼠腹水 型肝癌高 、 N 低 淋 巴道 转 移 株 中表 达 的研 究
张宇虹 唐建武 , , 王绍清 , 玲 孙成荣 王 李 , , 波 王 梅 ,
(. 1 大连 医科大学附属第 -N院 超声科 , - 辽宁 大连 162 ; . 107 2 大连医科 大学 病 理学 教研室 , 辽宁 大连 164 ; 104 3 大连医科大学附属第 二医院 实验 中心 , . 辽宁 大连 162 ) 107 摘要 : 目的 观察磷酸化 J K pJK) N (- 在小 鼠腹水 型肝癌高 、 N 低淋巴道转移株( e-、 e-) H aF H aP 中的表达水平 , 分析其
关键词 : 肝癌 ; 巴道转 移 ;- K; s r Bo 淋 pJ Wet l N e n t
中图 分 类 号 : 75 7 R 3 . 文献 标 识 码 : A Su yo E pes no -N nMos e a crio si sC lLn s aF ( i l me s t )a dHc- ( w td f xrsi f J K i ueH pt ac maA ce e ie - hg y t t i n aP 1 o p o n t l Hc h a ac o me s t ) Z A G Y-og , A GJ nw , A hoq g ,t 1 ( . eateto laon t e n fie tti a ac H N uhn T N i -u a W NGSa-i e a. 1 Dpr n fUt sud,h Sc dA lt n m r e o f ad i
( h b脚 C i JL n a
, 0 ,2 14 ) 2 8 1 :37 0
抗肿瘤中药研究进展[1]
主要成分
药理作用
白英碱 对S180、Walker癌 龙葵碱 肉瘤的抑制作用
应用 肺癌等
紫草素
对S180、绒癌有抑 膀胱癌、肺癌、
制作用
妇科癌
Ⅰ-15
八月札 木通甙
Ⅰ-16
柘木
黄酮类 生物碱
对S180、S37有抑 制
对艾氏腹水癌U14 体外食管癌细胞 株有细胞毒作用
多种肿瘤 消化道癌
二、活血化瘀类药
抑制
Ⅰ-8 多凌 萜类、皂甙、 对S180、S37、 食管、贲门 草 冬凌草素 U14、Walke有抑 癌、肺癌 制作用
附表Ⅰ 清热解毒类药
编号 药名 主要成分
药理作用
应用
Ⅰ-9 长春花 长春新碱 对小鼠白血病、艾氏腹 治疗白血病、
长春花碱
水癌L3H自发性乳癌有 效
多种肿瘤的合 并用药
Ⅰ-10 喜树
Ⅲ -4
天南星
皂甙、氨息香 酸β-谷甾酸
对S180有抑制作用
食管贲门癌
附表Ⅲ 化痰散结类药
编号 药名
Ⅲ -5
山慈 姑
Ⅲ -6
夏枯 草
Ⅲ -7 牡蛎
Ⅲ -8
猫爪 草
主要成分
秋水仙碱
皂甙 Ca、P、S、 Mg、Al、Fe
元素 氨基酸
药理作用 对S180、Walker 癌肉瘤有抑制 对S180、U14有
(一、)莪术
(3)莪术醇对小鼠宫颈癌U14的抑制率可 达77.13%。
(4)莪术双酮对小鼠肉瘤、小鼠宫颈癌、 小鼠艾氏腹水癌细胞也有明显抑制作用, 能使之变性坏死。
(5)莪术总油对ECA、S180、ARS三种腹水 型瘤及S37、S180两种实体瘤均有明显实验 治疗效果。
小鼠肝脏淋巴细胞分离
肝脏淋巴细胞分离protocol
1. 腹腔注射100uL/只小鼠麻醉;
2. 用约20mL PBS从下腔静脉处灌洗(肾,肺,肝均变白,肝脏灌注也可);
3. 取10cm细胞培养皿,加入10mL 10% FBS+DMEM,将滤网浸于其中,取出的肝组织置于滤网中;
4. 用1mL注射器的内芯研磨,制备细胞悬液;
5. 从皿中吸取细胞悬液到50mL离心管,补加PBS至30mL;
6. 50g离心3min,上清转移至新管;
7. 1500rpm X 5min离心,2.5mL DMEM重悬细胞。
8. 准备percoll:
6mL 100% percoll + 660uL 10X PBS配成90% percoll
4mL 90% percol + 1.12mL DMEM配成70% percoll
2.5mL细胞重悬液+ 2mL 90% percoll配成40% percoll;
9. 将40% percoll细胞悬液沿管壁缓缓加入70% percoll中;
10. 2000rpm离心20min,brake和accelerate都设为level 1;
11. 吸取中间层细胞,PBS补加到10mL,400g离心10分钟;
12. 弃上清,加1mL红细胞裂解液,裂解2min
13. 补加PBS到10mL,终止裂解,400g离心10分钟
14. 将细胞重悬到合适体积,计数,用于下游分析。
ANXA11表达稳定下调的肝癌Hca-P细胞株的建立
ANXA11表达稳定下调的肝癌Hca-P细胞株的建立王嘉盛;刘淑清;郭春梅;孙明忠【摘要】Objective To design small hairpin RNA (shRNA) targeting Annexin All (ANXA11) , to transfect mouse hepatoma Hca — P with Annexin All (ANXA11) , to obtain the Hca — P cell line with Anxal 1 stable knock —down and to establish material basis for future study. Methods Two Anxal 1 shRNAs, shRNA -1 and shRNA - 2, were synthesized, li-gated topGPU6/GFP/Neo expression plasmid and transfected into Hca - P cell. The monoclonal pGPU6/GFP/Neo -ANXA11 - Hca - P cell with stable knockdown of ANXA11 was obtained by G418 screening and limited dilution. ANXA11 mRNA and protein expression levels were measured by RT - PCR and Western blot,and compared with empty vector transfected Hca -P and Hca - P control. Results The recombinant expression vector pGPU 6/GFP/Neo - shRNA - ANXA11 was successfully constructed. The monoclonal pGPU 6/GFP/Neo — ANXA11 — Hca — P cell lines were obtained. Compared to normal Hca — P cell, the ANXA11 mRNA and protein level in Hca — P cells transfected with shRNA — 1 wese down —regulated by about 80. 2% and 77. 7% with statistic significance (P <0. 01). Conclusion Mouse monoclonal hepatoma Hca -P cell with stable knock - down of ANXA 11 was successfully constructed by RNAi and gene transfection , which provides a solid base for studying the effect and mechanism of ANXA 11 in hepatoma lymphatic metastasis.%目的构建针对膜联蛋白A11(Annexin A11,ANXA11) 的shRNA(small hairpin RNA),稳定转染小鼠低淋巴道转移力肝癌Hca-P细胞,筛选ANXA11稳定下调的单克隆细胞株,为后续研究奠定基础.方法合成2条ANXA11的shRNA序列(shRNA-1和-2),与真核表达载体pGPU6/GFP/Neo连接,构建pGPU6/GFP/Neo-shRNA-ANXA11表达载体并转染Hca-P细胞,通过G418筛选及有限稀释法获得单克隆细胞株,Western blot检测Hca-P细胞ANXA11蛋白表达,并与空载体转染及对照组比较.结果成功构建了pGPU6/GFP/Neo-shRNA- ANXA11重组表达质粒,并获得pGPU6/GFP/Neo- shRNA- ANXA11-Hca-P单克隆细胞株;shRNA-1重组质粒的抑制效果在mRNA和蛋白水平对ANXA11抑制率分别为80.2%和77.7%,P<0.01.结论通过RNA干扰和基因转染技术成功建立了ANXA11表达稳定下调的Hca-P细胞株,得到了其单克隆细胞株,为进一步研究ANXA11在恶性肿瘤淋巴道转移中的作用及机制打下了基础.【期刊名称】《大连医科大学学报》【年(卷),期】2013(035)003【总页数】5页(P218-222)【关键词】ANXA11;淋巴道转移;Hca-P;RNA干扰【作者】王嘉盛;刘淑清;郭春梅;孙明忠【作者单位】大连医科大学,生物化学与分子生物学教研室,辽宁,大连,116044;大连医科大学,生物化学与分子生物学教研室,辽宁,大连,116044;大连医科大学,生物技术系,辽宁,大连,116044;大连医科大学,生物技术系,辽宁,大连,116044【正文语种】中文【中图分类】Q291肝癌致死率位居癌症死亡率第2位,肝外肿瘤转移是影响肝癌患者预后和生存重要因素,淋巴道转移是肝癌转移的一个重要途径[1],探究肝癌淋巴道转移机制对肝癌防治有重要意义。
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小鼠腹水型肝癌淋巴道转移实验[摘要] 目的:1.通过可移植性小鼠腹水型肝癌淋巴道转移实验,从感性上认识肿瘤侵袭与淋巴道转移的生物学特性,了解肿瘤动物实验模型建立的过程及意义。
2.进一步了解动物尸体解剖、组织取材、染色的过程。
3.强化科研思维的培养及实验技能的训练。
方法:将高转移力小鼠腹水型肝癌细胞(HCa - F)经 615 小鼠右腋中线皮下接种,定期观察右腋皮下肿瘤的生长和同侧腋窝淋巴结及腹股沟淋巴结肿大情况,并于接种后 21 天处死全部小鼠,取皮下瘤体及双侧腋窝淋巴结,腹股沟淋巴结称重并测量大小,同时观察肿瘤的形态特点,生长方式,肺、肝、肾等脏器,并将瘤体、淋巴结及脏器做切片处理以作染色和镜下观察。
结果:21 天观察,实验使用 10 只小鼠,最终存活 8只,其中形成肿块 7 只(3只形成的肿块较大),成瘤率 70%,淋巴结转移率 70%。
肉眼观察,较大肿瘤 2*1.5*1.3cm,灰白色,质地较硬,从中间切开,发现肿块大部分坏死,中心部分出现腔,腔内有肿瘤坏死物质。
镜下观察,坏死组织粉染,轮廓尚存。
残存肿瘤组织细胞存在异型性:瘤细胞大小和形态不一致,细胞核体积增大并呈现多形性,核浆比增大。
核的大小、形状和染色不一。
核分裂象增多,核浆比失调,胞浆减少。
结论:高转移力小鼠腹水型肝癌细胞通过淋巴道转移,无器官转移,且具有高转移力。
[关键词]HCa-F(高转移力小鼠腹水型肝癌细胞); 615小鼠; 高淋巴道转移[前言]研究背景:原发性肝癌的发生率地区差异大,在亚非国家较常见,我国的发病率较高,属于常见的肿瘤之一。
近年来,我国对肝癌的防治研究取得了明显的成绩,一些直径在1cm一下的小肝癌已被发现并及时治疗取得满意的疗效[1]。
随着临床治疗经验的积累,逐渐意识到即使是小肝癌根治性切除,转移复发仍然是一个十分严峻的问题,术后 5 年复发率可高达 50% 。
存在的问题:本次试验采用的方法是将瘤细胞移植于615小鼠右腋中线皮下,观察肿瘤生长及转移状态[2]。
所以移植瘤没有展现自发性肿瘤从正常组织转变成肿瘤、随后出现转移的全过程,没有了解疾病完整的自然史。
实验的意义:为了探究肝癌的实质性问题,即肿瘤本身的生物学特性,尤其是其转移的生物学特性,本次试验对肝癌转移的生物学行为进行实验性研究。
即将肿瘤细胞直接接种到小鼠的皮下组织然后观察肿瘤细胞在小鼠体内的生长及转移情况。
它基本上模拟了从肿瘤生长到转移瘤形成的一系列步骤,又涉及宿主的反应性,因此结果可靠,近似于临床病人的实际情况,对提高恶性肿瘤患者的生存率和预后有重要的意义[3]。
[正文]一、材料1、细胞系:高转移力小鼠腹水型肝癌细胞,由大连医科大学病理教研室建株并保存。
2、实验动物:近交系615小鼠,雌雄兼用,6-8周龄,体重18-22g,由大连医科大学实验动物中心提供。
3、主要试剂及器皿搪瓷盆、温度计、离心管、1ml注射器、手术刀、眼科手术剪、眼科手术镊、乳胶手套、生理盐水、1%来苏儿溶液、75%酒精棉、10%甲醛固定液等。
二、方法1、细胞系获取从液氮罐中取出高转移力小鼠腹水型肝癌细胞(Hca-F)塑料冷冻管,立即放入40摄氏度的温水中,1分钟内是冷冻液全部融化,立即送入无菌室。
取出细胞悬液放入离心管中,用生理盐水洗涤2次,离心,弃上清,再加1ml生理盐水吹打均匀。
向小鼠腹腔内接种0.2mlHCa-F细胞悬液,于第6天无菌条件去腹水。
2、615小鼠皮下接种肿瘤细胞取615小鼠癌性腹水0.1ml,内含2*106 个活瘤细胞,接种于615小鼠右腋中线皮下。
局部严格消毒。
选择右腋皮下接种。
定期检查右腋皮下肿瘤生长和同侧腋窝淋巴结及腹股沟淋巴结肿大情况,于接种后21天处死全部小鼠,取皮下瘤体及双侧淋巴结称重,同时观察肺、肝、肾等脏器。
将上述组织固定于10%甲醛固定液中,石蜡包埋制片,HE染色,显微镜观察。
3、组织取材将皮下瘤体、淋巴结、肺、肝、肾选取病变部位,切成2~3mm的小于2cm*1cm大小的组织块,10%中性甲醛固定。
小块组织一般固定数小时,较大标本需固定24~48小时。
经冲洗(用递升浓度的酒精等)、透明(用二甲苯等)、浸蜡(用石蜡),然后用石蜡将组织包埋成蜡块,再经切片机切片和染色制成切片。
一般常规作苏木精-伊红染色。
4、切片染色石蜡切片法、HE染色法。
⑴脱水程序及时间:组织固定,冲洗,然后:1)脱水:以下列顺序进行:60%酒精30分钟→80%酒精1~2小时→95%酒精2~4小时或过夜→95%酒精2~4小时→100%酒精2~4小时→100%酒精2~4小时或过夜。
2)透明:二甲苯I 30~45分钟;二甲苯Ⅱ 30~45分钟。
3)浸蜡。
蜡碗Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ(各30~45分钟);包埋。
4)修蜡块:修蜡块,贴号。
5)切片。
6)烘烤。
烘烤切片60~70摄氏度,1小时。
7)染色。
⑵HE切片染色程序与方法1)切片脱蜡水洗:将烘干的切片浸入二甲苯Ⅰ、Ⅱ各5~10分钟。
无水酒精3-10分钟(消除二甲苯)→95%酒精1~3分钟→80%酒精1~3分钟→70%酒精1~3分钟→50%酒精1~3分钟→自来水冲洗5分钟以上(洗去切片上的酒精,切片透明)→蒸馏水清洗(防止污染苏木精染液)。
脱蜡是水化过程,目的是通过酒精的缓冲作用,易于水洗与染色。
因为染剂是水,从无水酒精直接放入染液中,容易引起激烈的扩散作用,造成切片漂浮脱落或损伤组织。
而经各级浓度酒精缓冲后即可避免发生这种现象。
2) HE染色苏木精-伊红染色是先用苏木精将组织切片适当的过染,经水洗后再用盐酸酒精分化,弱碱性水溶液显蓝。
使胞核呈明显的蓝色,胞质及背景无色。
再经水洗后用伊红染胞质,染成深浅不同程度的粉红色至红色。
苏木染色(染核)5~15分钟→自来水冲洗3~5分钟→0.5%盐酸酒精溶液分化数秒钟→自来水洗1~5分钟→弱碱性水溶液显蓝30~60秒→自来水冲洗5~10分钟→蒸馏水洗1~2次→伊红1分钟→蒸馏水洗1~2次。
3)脱水、透明、封固:脱水、透明的目的是使存留在切片上的水分及漂浮的染色液全部除净,经透明剂的作用后,将脱水剂清除出来,使切片产生适宜的折光率。
最后用盖玻片及封固剂封固,便于观察和长期保存。
80%酒精30~40秒→95%酒精30~60秒→无水酒精Ⅰ1~5分钟→无水酒精Ⅱ1~5分钟→二甲苯Ⅰ1~5分钟→二甲苯Ⅱ1~5分钟→中性树胶封固。
5、镜下观察。
三、结果21天观察10只小鼠,最终存活8只,其中形成肿块7只,3只形成的肿块较大。
成瘤率70%,淋巴结转移率70%。
肉眼观察:淋巴结较正常增大,皮下瘤体较大,与皮下组织粘附紧密,肝和肾脏可见肿瘤结节,较大肿瘤2*1.5*1.3cm,灰白色,质地较硬,从中间切开,发现肿块大部分坏死,中心部分出现腔,腔内有肿瘤坏死物质。
镜下观察,坏死组织粉染,轮廓尚存。
残存肿瘤组织细胞存在异型性:瘤细胞大小和形态不一致,细胞核体积增大并呈现多形性,核浆比增大。
核的大小、形状和染色不一。
核分裂象增多,核浆比失调,胞浆减少。
四、讨论将小鼠右腋皮下腋下作为肿瘤细胞的接种部位是其由于此处的淋巴结相对较多,且有血循环丰富,利于肿瘤的转移。
人体内对抗癌细胞的功能主要由免疫系统承担。
免疫系统被肿瘤细胞阻塞,淋巴液就会向相反的方向流动,导致不符合常规的转移现象。
小鼠腹水型肝癌细胞瘤株属于小鼠肝细胞癌。
由于615小鼠淋巴系统比较发达且有许多近交系,部分近交系有其特定的自发性肿瘤,可利用其自发肿瘤与人体肿瘤的相似之处做为动物模型进行肿瘤发生、发展和治疗的研究。
同时,胸腺严重缺陷的裸小鼠可接受人类各种肿瘤细胞的植入,成为活的癌瘤细胞"试管",是研究人类肿瘤生长发育、转移和治疗的绝佳动物。
在本实验中观察到的肿瘤细胞的异型性准要表现在以下几个方面:1肿瘤细胞的多形性表现为瘤细胞大小不一,形态不规则,甚至出现胞体特大的瘤巨细胞。
少数分化差的肿瘤细胞较相应组织的正常细胞小,圆形,且大小较一致。
2核的多形性细胞核大小不一,形态不规则,甚至出现多核、巨核、畸形核瘤细胞。
肿瘤细胞核明显增大,因而使核/浆比例增大,从正常的1:4~6增至1:1.5~2,甚至1:1。
核染色质呈粗大颗粒状,分布不匀,常靠近核膜分布,使核膜显得增厚。
核仁肥大,数目增多。
核分裂像多见,并可出现病理性核分裂,即多极性、不对称性、顿挫型核分裂。
恶性肿瘤细胞核多形性与染色体呈多倍体或非整倍体有关。
3胞质的改变恶性肿瘤细胞的胞质一般由于分化低而减少,但有时也可以增多。
由于胞质内核蛋白体增多,故多呈嗜碱性染色。
此次试验便是通过建立小鼠腹水型肝癌淋巴道高转移细胞系HCa—F细胞模型,对肿瘤侵袭与淋巴道转移的生物学特性有所了解。
通过模型的建立,染色制片,镜检等一系列的过程建立了科研的学术观念,掌握了相关的专业知识。
恶性肿瘤细胞转移的可能机制有1、淋巴道转移 2、血道转移 3、种植性转移。
本实验中重点研究淋巴道转移,恶性肿瘤侵入淋巴管后,随淋巴流首先到达局部淋巴结。
局部淋巴结发生转以后,可继续转移至下一站的其他淋巴结,最后,可经胸导管入血再继发血道转移。
值得注意的是,有的肿瘤可以逆行转移或者越过相应的引流淋巴结发生跳跃式转移。
肿瘤细胞一般经血液和淋巴道转移,在实验中经过HE染色可以观察到肝脏和肾脏有转移瘤,因而可以推断小鼠腹水型肝癌细胞经过了转移,而且在淋巴结中也发现了肿瘤细胞,也能说明小鼠腹水型肝癌细胞经过淋巴道转移。
本实验结果可以为预防恶性肝癌转移提供较为清晰的预防思路。
[参考文献][1]李甘地,来茂德.病理学.人民卫生出版社,2001: 261[2]李连宏,唐建武,孙雷.医学形态实验学.人民卫生出版社,2009 :97[3]孙成荣,唐建武,孙明忠,采用定量蛋白组学技术筛选小鼠肝癌淋巴道转移相关蛋白.生物化学与生物物理进展,2007,34(8):856~864[4] 张宏颖,刘春平,唐建武,许国旺,等.姜黄素对小鼠腹水型肝癌高淋巴道转移细胞株(HCa-F)生物学行为的影响.中国科学院上海冶金研究所; 材料物理与化学(专业) 博士论文 2000年度[5]Sobel MW.J Natl Cancer Inst,1990;82:267[6]Saigoh K, Wang YL, Suh JG, et al. Intragenic deletion in the gene encoding ubiquitin carboxy-terminalhydrolase in gad mice [J]. Nat Genet. 1999, 23(1):47~51.6、BurelillSA,et al.Br J Cancer,1995;71:278[7]李海燕,方肇勤,梁尚华.小鼠移植性肝癌(H22)模型的研究及在中医药抗肿瘤中的应用.中国中医基础医学杂志,2000,6,1,27[8]凌茂英,刘希风,郑怀祖,等.小鼠肝癌细胞系H22-F25/L的建立及其生物学特性.中华肿瘤杂志,1991,13(1):13.[9]陈桑, 凌茂英, 刘希风,等. 小鼠腹水型肝癌高、低转移克隆稳定性的研究[ J ]. 大连医学院学报, 1992, 14: 32- 37.[10]张宏颖,唐建武,朱文婷,胡春秀,许国旺.小鼠腹水型肝癌淋巴道高转移细胞系HCa—P/L6细胞模型的建立及其药物敏感性的评价.大连医学院学报,2008,30(5):465-468.。