生理学实验介绍_神经肌肉标本制备
神经肌肉实验报告
一、实验目的1. 掌握蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
2. 观察神经肌肉的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点。
3. 研究不同刺激频率对肌肉收缩的影响,了解不完全强直收缩和完全强直收缩的机制。
4. 掌握微机生物信号采集处理系统和换能器的使用方法。
二、实验原理神经肌肉兴奋时,会产生动作电位,导致肌肉收缩。
刺激神经会引起肌肉收缩,而肌肉收缩的形式与刺激本身及其频率有关。
当刺激频率较低时,肌肉表现为一连串的单收缩;增大刺激频率,则肌肉产生不完全强直收缩;继续增加刺激频率,肌肉产生完全强直收缩。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:蟾蜍、任氏液、手术剪、手术镊、手术刀、眼科剪、眼科镊、毁髓针、蛙板、固定针、滴管、培养皿、玻璃分针、锌铜弓、污物缸、粗棉线等。
2. 实验仪器:微机生物信号采集处理系统、换能器、肌动器(肌槽)、铁架台、张力换能器。
四、实验步骤1. 制备蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本:a. 洗净蟾蜍,用手术剪剪开腹部皮肤,暴露内脏。
b. 用手术刀剪断坐骨神经,取出腓肠肌。
c. 将腓肠肌放入任氏液中浸泡,以保持其活性。
d. 将腓肠肌固定在肌动器上,用玻璃分针和锌铜弓进行电刺激。
2. 观察不同刺激频率对肌肉收缩的影响:a. 调整刺激频率,从低频到高频逐渐增加。
b. 观察肌肉收缩形式的变化,记录单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩出现的频率。
c. 使用微机生物信号采集处理系统记录肌肉收缩曲线。
3. 分析实验结果:a. 根据实验数据,绘制刺激频率与肌肉收缩形式的关系图。
b. 分析不完全强直收缩和完全强直收缩的机制。
五、实验结果与分析1. 实验结果显示,随着刺激频率的增加,肌肉收缩形式从单收缩逐渐转变为不完全强直收缩,最终发展为完全强直收缩。
2. 实验结果与理论相符,证实了不同刺激频率对肌肉收缩的影响。
3. 不完全强直收缩和完全强直收缩的机制:a. 不完全强直收缩:刺激频率较高,肌肉收缩时间短,肌肉舒张时间较长,导致肌肉收缩不完全。
生理学实验报告
生理学实验报告第一篇:生理学实验报告生理学实验报告坐骨神经-腓肠肌标本的制备一、实验目的及要求学习蛙类动物双毁髓的方法掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术,为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
二、实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似,而且其离体组织需要的生活条件非常简单,易于控制和掌握。
因此在生理学实验中,坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象,经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
三、实验对象蟾蜍或蛙。
四、实验器材及药品蛙类手术器械一套(金属探针1根,粗剪刀、眼科剪刀各1把,圆头镊子、眼科镊子各1把,玻璃分针2根),蛙板和玻璃板各1块,培养皿,滴管,废物缸、锌铜弓,丝线,棉花;任氏液。
五、实验方法及步骤1、双毁髓:左手握蟾蜍,背部向上。
用食指按压其头部前端,拇指压住躯干的背部,使头向前俯;右手持毁髓针,由两眼之间中线向后方划触,触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔,然后针尖向前刺入颅腔,在颅腔内搅动,以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔,针尖转向后方,与脊柱平行刺入椎管,以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时,可看到蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软,此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本:左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤,右手持手术剪横向剪断皮肤,然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉,用手术镊提起内脏,翻向头部,在看清支配后肢的脊神经发出部位后,于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢:将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上,右手持金冠剪纵向剪开脊柱,再剪开耻骨联合,使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经:将一侧后肢的脊柱端腹面向上,用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经,股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝,找出坐骨神经,剪断盖在上方的梨状肌,完全暴露坐骨神经,剪去支配腓肠肌之外的分支,再剪去脊柱及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备一、目的和原理蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动与温血动物近似,但其离体组织所需的生活条件比较简单,且易于控制,因此在生理学实验中常用其离体组织或器官作为实验标本。
例如:蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本,可用来观察和研究兴奋性、兴奋过程、刺激引起兴奋的条件、兴奋在神经-肌接头处的传递、肌肉收缩的特点等多种生理现象,所以,制备坐骨神经-腓肠肌标本,是生理学实验的一项基本操作技术。
本实验的目的是:学习并掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的方法,为以后的神经肌肉实验打下基础。
二、实验对象蛙或蟾蜍三、器材和用品蛙板、蛙针、蛙钉、剪刀(2把)、镊子(2把)、玻璃针、锌铜弓、培养皿、滴管、棉线、棉球、尸体盘(以上用品合称蛙类解剖器械一套)及任氏液。
四、方法与步骤1.破坏脑脊髓选一活泼健壮的蛙或蟾蜍,用清水冲洗干净。
左手握蛙,用食指下压吻端,拇指按压背部,使头前俯;右手持蛙针由吻端沿正中线向尾端触划,所触到的凹陷处即是枕骨大孔所在部位。
将蛙针由此垂直刺入皮下,再将针尖折向前方,经枕骨大孔进入颅腔,左右搅动捣毁脑组织(图1-1)。
然后将蛙针退出至刺入点皮下,再将针尖向后插入椎管捣毁脊髓。
图1-12.剪除前部躯干及内脏在骶髂关节以上1厘米处用粗剪刀剪断脊柱,并将前部躯干及所有内脏一并剪去,仅保留一段腰骶部脊柱和后肢。
在所留脊柱的腹侧两旁可看到坐骨神经丛。
剪下的部分置于尸体盘内。
3.剥皮左手捏住脊柱断端,右手捏住断端边缘的皮肤,向下剥掉后肢的全部皮肤,标本置于盛有任氏液的培养皿中待用,皮肤弃去。
洗净双手和器械,以免蛙或蟾蜍皮肤的分泌物损害神经和肌肉。
4.分离两后肢将下肢标本腹侧向上用蛙钉固定于蛙板上,用玻璃针沿脊柱两侧分离两条坐骨神经;在两条坐骨神经下各穿一线,于靠近脊柱处将其分别结扎,并在扎线与脊柱之间剪断神经;左手用结扎线提起坐骨神经,右手持剪刀或玻璃针向下游离,直至坐骨神经出盆腔处;将游离的两条坐骨神经分别置于两侧大腿的肌肉上。
生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备
生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备
本实验旨在通过制备坐骨神经腓肠肌标本的过程,掌握基础的组织学实验技能,同时加深对神经肌肉解剖结构的理解。
材料与方法:
材料:成年大鼠标本、无水乙醇、石蜡、光学显微镜、麻醉手套、组织取样器、组织取样盒、理化试管架等。
1.准备标本
用麻醉手套将成年大鼠净化神经集中于坐骨神经下1-2厘米范围内,然后将腓肠肌标本从骨骼中取出。
2.固定标本
将取出的腓肠肌标本置于10%的无水乙醇中固定24小时;
3.去水
从10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%到80%的无水乙醇渐次去除,每步时间为1小时;
4.透明
将固定去水的腓肠肌标本分别置于50%敌敌畏-乙醇溶液、70% 敌敌畏-乙醇溶液和100% 敌敌畏透明液溶液中,每步时间为2小时,至标本彻底透明。
5.包埋
取出已透明的腓肠肌标本,置于石蜡组织取样盒中,根据实验需求,选择合适的包埋方向。
6.取薄片
将石蜡包埋的腓肠肌标本取出,用微型切片机切制厚度为5微米的切片,将切片拉直后在干净的水晶片上展开。
7.染色与制成玻片
用哈里斯血液染色将切片染色,脱色后洗净水片后,在水晶片上滴几滴覆盖剂,然后用平凡玻片将组织接口反过来盖住薄片,压紧即可。
实验成果:
经过制备和染色后,我们取得了成年大鼠坐骨神经腓肠肌的标本,通过光学显微镜的观察与检测,我们发现该标本包含完整的腓肠肌结构及肌纤维分离范围。
切片上清晰可见腓肠肌内有明显的核团和细胞质呈透明状,同时染色后肌纤维呈现出红色,血管呈现出蓝色,系统性地展示了腓肠肌肌纤维和血管位置的分布情况。
结论与意义:。
神经标本制作实验报告
一、实验目的1. 学习神经标本的制作方法,掌握神经组织的基本结构。
2. 观察神经纤维的形态、分布和神经节的特点。
3. 了解神经标本的保存方法。
二、实验原理神经组织是由神经细胞和神经胶质细胞组成的,具有传导兴奋和产生生物电信号的功能。
神经纤维是神经细胞的长轴突,具有绝缘性和传导性。
神经节是神经纤维汇集的地方,具有调节和控制神经信号的功能。
神经标本的制作可以通过切片、染色等方法,使神经组织结构清晰可见。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:豚鼠、酒精、甲醛、冰醋酸、苏木素、伊红、盐酸、蒸馏水等。
2. 实验仪器:解剖显微镜、切片机、染色缸、显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、剪刀、解剖针、剪刀、酒精灯、酒精瓶、滴管等。
四、实验步骤1. 取豚鼠一只,麻醉后固定于解剖台上。
2. 剖开豚鼠颅腔,暴露脑和脊髓,取出脑和脊髓。
3. 将脑和脊髓置于酒精中固定24小时。
4. 将固定好的脑和脊髓置于切片机中,制成5微米的切片。
5. 将切片置于染色缸中,用苏木素染色5分钟。
6. 将染色后的切片用蒸馏水冲洗,然后用伊红染色1分钟。
7. 将染色后的切片用蒸馏水冲洗,然后用盐酸酒精分化5秒。
8. 将分化后的切片用蒸馏水冲洗,然后用蒸馏水漂洗。
9. 将漂洗后的切片用甘油明胶封片。
10. 将封片后的神经标本置于显微镜下观察。
五、实验结果1. 观察到神经纤维呈束状排列,具有绝缘性和传导性。
2. 观察到神经节位于神经纤维汇集的地方,具有调节和控制神经信号的功能。
3. 观察到神经细胞具有细胞体和长轴突,细胞体呈椭圆形,轴突呈细长状。
六、实验讨论1. 神经标本的制作过程中,固定是关键步骤,固定不当会导致神经组织结构不清。
2. 苏木素染色可以使神经细胞核染色,伊红染色可以使神经纤维染色,盐酸酒精分化可以使神经纤维清晰可见。
3. 实验过程中,注意观察神经纤维的形态、分布和神经节的特点,以便更好地了解神经组织的基本结构。
七、实验总结本次实验成功制作了豚鼠脑和脊髓神经标本,通过切片、染色等方法,使神经组织结构清晰可见。
生理学实验报告-《坐骨神经-腓肠肌标本的制备》
实验二-坐骨神经标本—腓肠肌标本的制备一、实验目的:1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌的制备方法。
3.了解电刺激的极性法则。
二、实验原理:1、牛蛙作为实验动物的优势:离体实验是动物生理学主要的实验方法之一。
两栖动物是冷血动物,其基本生理机能与温血动物近似,而其离体组织器官维持活性所需要的条件比较简单,因此它常被选为生理学实验提供离体组织或器官的实验动物。
蟾蜍或青蛙坐骨神经—腓肠肌在任氏液中可维持生理活性数小时,在其基础上还可进一步制作神经干标本、腓肠肌标本,可用于研究肌肉收缩的特性,神经和肌肉的兴奋性、传导性,刺激与反应的关系,神经肌肉接头活动等生理活动及相关机制,甚至还可以用于药物筛选如抗疲劳药物的模型。
其中牛蛙人工养殖成本低产出率高,相对蟾蜍要更安全。
因此,本次实验选择牛蛙作为实验对象。
2、锌铜弓刺激检测标本活性的原理:锌铜弓在溶液中沾湿以后,锌的表面电离出正离子,里面形成负离子;而铜的表面电离出负离子,里面形成正离子。
当用锌铜弓接触活组织时,电流便沿着锌一活组织→铜的方向流动而产生刺激效应。
所以锌相当于正极,面铜相当于负极发挥刺激作用;当断开时,则发生相反的效应。
锌的金属电势比铜低,形成一定的电势差(就相当于有电压),锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起,另一段分开,则接触样本(例如神经干)时,会引起样本局部去极化,引发动作电位。
三、实验器材:牛蛙,常用手术器械(手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针),蜡盘,蛙板(木质或硬泡沫塑料),玻璃板,固定针,锌铜弓,培养皿或不锈钢盘,污物缸,滴管,纱布,粗棉线,任氏液。
四、实验流程和步骤:1.牛蛙的双毁髓一手握住牛蛙,背部向上。
用拇指压住牛蛙的背部,食指按压其头部前端,使头端向下低垂;另一手持毁髓针,由两眼之间沿中线向后触划,当触及两耳中间的凹陷处(此处与两眼的连线成等边三角形)时,持针手即感觉针尖下陷,此处即是枕骨大孔的位置。
生理神经肌肉实验报告
一、实验目的1. 掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的方法。
2. 研究不同频率和强度的电刺激对肌肉收缩的影响。
3. 了解神经肌肉兴奋性、传导和收缩的规律。
二、实验原理神经肌肉兴奋性是指神经和肌肉对刺激产生反应的能力。
兴奋性受多种因素影响,如刺激强度、频率、神经和肌肉的生理状态等。
肌肉收缩是肌肉对神经刺激产生反应的结果,其形式和程度取决于刺激的参数。
三、实验材料1. 实验动物:蟾蜍2. 仪器设备:微机生物信号采集处理系统、换能器、电子刺激器、任氏液、手术器械等3. 药品:生理盐水、肾上腺素、氯仿等四、实验方法1. 制备坐骨神经-腓肠肌标本:将蟾蜍置于解剖台上,用探针破坏脑和脊髓,暴露坐骨神经。
将坐骨神经与腓肠肌分离,置于任氏液中。
2. 刺激参数设置:设置不同的刺激频率(1Hz、5Hz、10Hz、20Hz)和强度(1mA、2mA、3mA、4mA)。
3. 采集数据:使用微机生物信号采集处理系统记录肌肉收缩的波形和收缩力量。
4. 实验分组:将实验分为对照组和实验组,对照组仅给予生理盐水,实验组给予不同频率和强度的电刺激。
五、实验结果1. 对照组:肌肉无收缩反应。
2. 实验组:- 频率为1Hz,强度为1mA时,肌肉产生单收缩。
- 频率为5Hz,强度为1mA时,肌肉产生不完全强直收缩。
- 频率为10Hz,强度为1mA时,肌肉产生完全强直收缩。
- 随着刺激频率的增加,肌肉收缩力量逐渐增大。
六、分析与讨论1. 刺激频率对肌肉收缩的影响:低频刺激引起单收缩,高频刺激引起强直收缩。
这是因为低频刺激使肌肉在两次收缩之间有足够的休息时间,而高频刺激使肌肉无法恢复到松弛状态,导致强直收缩。
2. 刺激强度对肌肉收缩的影响:刺激强度越大,肌肉收缩力量越大。
这是因为刺激强度越大,产生的动作电位幅度越大,肌肉收缩力量越强。
3. 肾上腺素对肌肉收缩的影响:肾上腺素可以增加肌肉收缩力量,但过高的浓度会导致肌肉疲劳。
七、结论1. 刺激频率和强度对肌肉收缩有显著影响。
人体解剖生理学实验
实验二:神经--肌肉标本的制备与骨骼肌收缩[实验内容]1.坐骨神经—排肠肌标本的制备2.刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系3.骨骼肌单收缩的分析4.骨骼肌收缩的总和与强直收缩[目的要求]1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握蛙类坐骨神经-排肠肌标本的制备方法。
3.学习肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。
4.观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系。
5.分析骨骼肌单收缩的3个时期。
6.了解骨骼肌收缩的总和现象,观察不同频率的阈上刺激引起肌肉收缩形式的改变。
[基本原理]蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似,若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中,其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激,可在神经和肌肉上产生一个动作电位,肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次,表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在生理学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性;刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等,制备坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验的一项基本操作技术。
腓肠肌由许多肌纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不向反应。
当刺激强度过小时,不引起肌肉发生收缩反应.此时的刺激为阈下刺激。
当全部肌纤维同时收缩时,则出现最大的收缩反应。
这时,即使再增大刺激强度,肌肉收缩的力量也不再随之加大。
可以引起肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度为最适刺激强度。
肌组织对于一个阈上强度的刺激,发生—次迅速的收缩反应,称为单收缩。
单收缩的过程可分为3个时期:潜伏期、收缩期和舒张期。
两个同等强度的阈上刺激,相继作用于神经—肌肉标本,如果刺激间隔大于单收缩的时程、肌肉则出现两个分离的单收缩;如果刺激间隔小于单收缩的时程而大于不应期,则出现两个收缩反应的重叠,称为收缩的总和:当同等强度的连续阈上刺激作用于标本时,则山现多个收缩反应的叠加,此为强直收缩。
当后一收缩发小在前一收缩的舒张期时,称为不完全强宜收缩;后一收缩发生在前一收缩的收缩期时,各自的收缩则先全融合,肌肉出现持续的收缩状态,此为完全强直收缩。
生理学实验 坐骨神神经腓肠肌标本制备
实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术,为以后有关实验打下基础。
【实验原理】两栖类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似, 而其离体组织所需的生活条件 比较简单,易于建立、控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观 察兴奋与兴奋性的一些规律以及骨骼肌的收缩特点等。
所以坐骨神经腓肠肌标本的制备是生 理实验的一项基本操作技术。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验材料】两栖类手术器械 1套(粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、眼科镊、金属探针、玻璃 分针、蛙板)、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、任氏液。
【实验步骤】1. 破坏脑和脊髓取蟾蜍 1 只,用自来水冲洗干净。
左手握住蟾蜍,用拇指按压背部,食指按压头部 前端使其头部前俯,右手持金属探针在头前缘沿正中线向尾端触划,所触划到的头部后 端的凹陷处,即为枕骨大孔所在部位。
在此处将金属探针垂直刺入皮肤,有突破感后再 将金属探针折向前经枕骨大孔刺入颅腔,左右搅动捣毁脑组织;然后将金属探针回抽至 枕骨大孔处,转向后刺入脊椎管,反复提插捣毁脊髓。
此时如蟾蜍的四肢松软,呼吸运 动消失,表示脑和脊髓已完全破坏,否则应按上法再行捣毁。
2. 剪除躯干上部及内脏如图 1-1 所示,在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起,在骶髂关节水平以上 0.5~l 厘米处用粗剪刀剪断脊柱,然后将粗剪刀尖向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤,使蟾蜍 头、上肢与内脏自然下垂,将其一并剪除弃去,仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴于脊柱两 侧的坐骨神经。
在整个剪除过程中注意勿损伤神经。
3. 剥皮左手用组织镊夹紧或用手直接捏住脊柱断端(注意:不要夹住或接触神经),右手捏,将标本放在盛有任氏液 住其上的皮肤边缘,用力向下剥掉全部后肢皮肤(见图 1-2)的平皿中。
将手及用过的粗剪刀、组织镊等全部手术器械洗净,再进行下述步骤。
4. 分离两腿用镊子从背位夹住脊柱将标本提起,剪去向上突出的骶骨(注意勿损伤坐骨神经),然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半,并从耻骨联合中央剪开两侧大腿,然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。
实验七:神经肌肉标本制备与骨骼肌收缩
[实验内容] 1.坐骨神经—排肠肌标本的制备 2.刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系 3.骨骼肌单收缩的分析 4.骨骼肌收缩的总和与强直收缩
[目的要求] 1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。 2.学习并掌握蛙类坐骨神经-排肠肌标本的制备方法。 3.学习肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。 4.观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系。 5.分析骨骼肌单收缩的3个时期。 6.了解骨骼肌收缩的总和现象,观察不同频率的阈上 刺激引起肌肉收缩形式的改变。
本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性;刺激与反应的 规律和肌肉收缩的特征等。
[实验方法与步骤]
一、神经-肌肉标本的制备 1.破坏脑、脊髓 2.剪除躯干上部、皮肤及内脏 3.剥皮 4.分离两腿
5.游离坐骨神经和腓肠肌
6.剪去其它不用的组织
7.检验标本
二、仪器的连接 1.实验仪器用品的准备 2.计算机采集系统的准备 通道控制面板设置 通道功能-张力-连续肌肉收缩功能分析 放大倍数-10/50,50Hz陷波-打开
[基本原理] 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动
物相似,若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中,其
兴奋性在几个小时内可保持不变。 若给神经或肌肉一次适宜刺激,可在神经和肌 肉上产生一个动作电位,肉眼可看到肌肉收缩和舒 张一次,表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在生理学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标
强度范围与强度(阈上刺激)-见前一实验 刺激周期-由2000起、1000、500、300ms 刺激数-10, 延时-仪器原设定, 波宽-前面实验一至。
② 记录刺激频率阈肌肉收缩反应关系 (3)记录实验结果,完成实验报告。
思
考
题
人体解剖生理学实验:蛙神经-肌肉标本的制备及刺激与肌肉收缩的关系02
图1-3剥掉后肢皮肤
任氏液由无机盐和蒸馏水 配置而成,每升溶液含 NaCl 6.5g、KCl 0.14g、 CaCl2 0.12g,、NaHCO3 0.20g、NaH2PO4 0.01g。 任氏液的理化特性与蛙的 组织液近似。可用于蛙的 组织、器官润湿和营养。
2. 把穿好线的坐骨神经轻轻提起,放 在刺激电极上或将刺激电极与肌肉 直接接触。
图1-5坐骨神经腓肠肌标本
肌肉收缩检测 模式图
刺激电极
记录电极
神经传导动作电位检测模式图
MedLab实验系统
CH1 CH2 CH3 CH4 刺激
张力换能器
标本盒 123 456 7
坐骨神经
+-
不同刺激强度对骨骼肌收缩的影响
刺激强度和频率 与肌肉收缩的关系
一、实验目的
1.观察给予不同强度刺激时骨骼肌
的收缩情况,验证刺激强度与肌肉 收缩的关系。
2.观察剌激频率与收缩形式之间的
关系,了解单收缩和强直收缩。
二、实验原理
坐骨神经是由多条神经纤维组成的神经干,神经干中 各组成纤维的兴奋性有所不同。
刚刚引起肌肉收缩所需的刺激强度称为阈刺激强度。 随着刺激强度的增加,坐骨神经干中发生兴奋的纤维
数目随之增多,肌肉收缩的幅度也随之增大。 当神经干中的全部纤维都发生兴奋时,所需的最低刺
激强度称为最大刺激强度。 阈刺激强度至最大刺激强度之间的刺激称为阈上刺激
强度。 超过最大强度的刺激,神经所支配肌肉的收缩幅度不
再增强。
二、实验原理
肌肉组织对于一个阈上强度的刺激发生一次迅 速的收缩反应,称为单收缩。
刺激器参数
模式
自动调幅
神经肌肉生理实验报告
1. 掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
2. 研究不同频率和强度的电刺激对肌肉收缩的影响。
3. 了解神经肌肉兴奋传导和肌肉收缩的基本原理。
二、实验原理神经肌肉生理实验主要研究神经和肌肉之间的相互作用。
在实验中,通过电刺激神经,可以观察到肌肉的收缩反应。
刺激的频率和强度会影响肌肉收缩的形式,包括单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩。
三、实验材料1. 实验动物:蟾蜍2. 实验仪器:手术显微镜、微机生物信号采集处理系统、换能器、刺激器、任氏液、剪刀、手术剪、眼科镊、金属探针、玻璃分针、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器等。
四、实验方法1. 制备坐骨神经-腓肠肌标本:将蟾蜍麻醉后,剪开背部皮肤,暴露坐骨神经和腓肠肌。
使用手术剪和眼科镊分离坐骨神经和腓肠肌,并将其固定在蛙板上。
2. 连接实验仪器:将微机生物信号采集处理系统、换能器和刺激器连接好,并将电极插入坐骨神经和腓肠肌。
3. 实验操作:打开刺激器,调整刺激频率和强度,观察肌肉收缩的反应。
五、实验步骤1. 调整刺激器频率为1Hz,强度为5V,观察肌肉的单收缩反应。
2. 逐渐增加刺激频率,观察肌肉收缩的形式变化,记录不完全强直收缩和完全强直收缩的刺激频率范围。
3. 保持刺激频率不变,逐渐增加刺激强度,观察肌肉收缩的强度变化。
4. 改变刺激频率和强度,观察肌肉收缩的反应,记录不同条件下的肌肉收缩形式和强度。
1. 在1Hz、5V的刺激下,肌肉表现为单收缩。
2. 当刺激频率增加到10Hz时,肌肉开始出现不完全强直收缩。
3. 当刺激频率继续增加到20Hz时,肌肉表现为完全强直收缩。
4. 在不同刺激强度下,肌肉收缩的强度也随之增加。
七、实验分析1. 不同频率的电刺激对肌肉收缩的影响:低频率刺激引起单收缩,较高频率刺激引起不完全强直收缩,更高频率刺激引起完全强直收缩。
2. 不同强度的电刺激对肌肉收缩的影响:刺激强度越大,肌肉收缩的强度也越大。
3. 实验结果与理论相符,验证了神经肌肉兴奋传导和肌肉收缩的基本原理。
神经肌肉标本制备
生理学实验介绍/神经肌肉标本制备
一、实验结果
坐骨神经-腓肠肌标本制备:
1.双毁髓处死牛蛙后,可见牛蛙四肢肌肉完全松弛。
2.剪断脊柱,除去前肢和内脏等后,可见牛蛙背侧明显的白色坐骨神经丛。
3.用玻璃分针把大腿背侧股二头肌和半膜肌分开,见一条粗大的坐骨神经。
4.标本制作完成后,用锌铜弓轻触坐骨神经,肌肉收缩。
触碰坐骨神经的不同部位,发现越靠近腓肠肌,肌肉收缩越迅速、灵敏。
二、分析与讨论
1.锌铜弓轻触坐骨神经引起肌肉收缩的原理
任氏液是电解质溶液,当锌铜弓刺激坐骨神经表面,形成原电池,引起接触点的动作电位。
该动作电位沿着坐骨神经传播到神经-肌肉节点,突触前膜释放递质。
该递质与突触后膜上的受体结合,使腓肠肌肌肉细胞膜去极化,最终引起肌肉收缩。
2.标本检查后的反思
用锌铜弓检查标本的兴奋性时,并不是每次都成功。
刺激越靠近腓肠肌,成功率越高。
可能有两个原因:①标本制备过程中,远离肌肉端的神经剥离较早,受到损伤。
②标本制作完成后,浸泡在任氏液的时间不够长,肌肉兴奋性不稳定。
生理学实验——精选推荐
生理学实验一、神经和肌肉实验1 坐骨神经腓肠肌标本的制备坐骨神经干标本的制备【实验目的】学习坐骨神经腓肠肌和坐骨神经干标本的制备方法。
【实验原理】两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物类似,但其离体组织所需存活条件比较简单,易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蛙或蟾蜍的离体组织或器官作为实验标本来观察组织的兴奋性、兴奋过程、兴奋性的变化以及骨骼肌的收缩特点等。
【实验对象】蟾蜍(或蛙)。
【器材和药品】蛙类手术器械一套(蛙板、玻璃板、探针、粗剪刀、组织剪、眼科剪、眼科镊、大头针、玻璃分针、搪瓷碗、培养皿、滴管、纱布、丝线)、锌铜弓、任氏液。
【操作步骤和观察项目】(1)破坏脑和脊髓:左手持蛙,用食指下压头部,拇指按压背部,使头前俯。
右手持探针从枕骨大孔处垂直刺入,再将针插向前方刺入颅腔搅碎脑组织。
将探针退回进针处,向下刺入椎管捣毁,待蛙四肢松软,表明脑和脊髓已完全破坏(图5-1)。
图5-1 破坏蛙脑和脊髓图5-2 横断脊柱图5-3 剪断躯干上部及内脏图5-4 剥离皮肤(2)剪除躯干上部及内脏:在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱,将头、前肢及内脏一并剪除,保留腰骶部脊柱及后肢。
在腹部脊柱的两旁可以见到坐骨神经丛(图5-2、图5-3)。
(3)剥皮:左手捏紧脊柱断端,右手捏住断端处皮肤边缘,用力向下剥掉全部后肢皮肤(肛门皮肤粘膜移行处先行剪开),把标本放入任氏液中,洗净手及所有用过的器械(图5-4)。
(4)游离坐骨神经:将后肢标本腹面向上用大头针固定于蛙板上,沿脊柱两侧用玻璃分针分离坐骨神经,用普通剪刀剪下一小段与神经相连的脊柱,提起脊柱,逐一剪去神经分支。
从耻骨联合处将两下肢分开。
将一侧下肢背面向上,用玻璃分针划开梨状肌及附近的结缔组织,循坐骨神经沟(股二头肌与半膜肌之间)找出坐骨神经的大腿部分,提起坐骨神经,小心剪断坐骨神经的所有分支,一直游离到膝关节(图5-5)。
图5-5 坐骨神经走向示意图图5-6 蛙坐骨神经腓肠肌标本示意图(5)游离腓肠肌:将分离干净的坐骨神经搭于腓肠肌,在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉,并用普通剪刀将股骨刮干净,在股骨中部剪去上段股骨。
最新实验27 神经-肌肉标本的制备及刺激神经诱发肌肉收缩现象观察-药学医学精品资料
3、观察不同的刺激强度和频率与骨骼肌
收缩形式之间的关系。
[实验器材]
1.药品与器材 任氏液。蛙板,玻璃板,蛙 类手术器械1套(粗剪刀、组织剪、眼科剪 各1把,大、小镊子各1把,探针1根,玻璃 分针2根),培养皿,锌铜弓,丝线,图钉, 肌动器,张力换能器; PCLAB-UE生物生物 医学信号采集处理系统。 2.实验对象 青蛙。
[思考题]
1.为什么要用任氏液湿润标本? 2.锌铜弓为什么能够检验神经肌肉的兴奋性?
[方法步骤]
1.制备坐骨神经腓肠肌标本
①破坏脑和脊髓-图A
②剪去躯干上部及内脏-图B
A B
③剥皮 、洗手及器械、分离两腿
④制作坐骨神经腓肠肌标本-图C.D
⑤用锌铜弓检查标本兴奋性
C D
2.将标本固定在肌动器内,连接张力换能器。
3.打开电脑,进入PCLAB-UE生物生物医学信号 采集处理系统。
实验项目→神经肌肉实验→①刺激强度与反应的关系
②刺激频率与反应的关系
[结果]
1. 阈刺激、阈上刺激、最大刺激
意事项]
1. 实验过程中经常用任氏液湿润标本,以防干 燥。 2. 股骨不可保留过短,否则标本不好固定。
3. 分离神经须用玻璃分针,不能用金属器械。 4. 避免过长时间地连续刺激标本,以防标本疲 劳。
蛙板玻璃板蛙类手术器械类手术器械11套套粗剪刀组织剪眼科剪粗剪刀组织剪眼科剪各各11把大小镊子各把大小镊子各11把探针把探针11根玻璃根玻璃分针分针22根根培养皿锌铜弓丝线图钉培养皿锌铜弓丝线图钉肌动器张力换能器
实验27 神经-肌肉标本的制备及 刺激神经诱发肌肉收缩现象观察
[目的要求]
1、学习坐骨神经腓肠肌标本制备方法。 2、掌握使用PCLAB-UE生物生物医学信号采集
神经肌肉综合实验报告
一、实验目的1. 了解神经肌肉的基本结构和功能;2. 掌握神经肌肉标本的制备方法;3. 观察不同刺激条件下神经肌肉的收缩反应;4. 研究刺激强度、频率和持续时间对神经肌肉收缩的影响。
二、实验原理神经肌肉系统是人体最重要的功能系统之一,负责将神经系统的指令传递给肌肉,使其产生收缩。
神经肌肉标本的制备是研究神经肌肉生理学的基础,通过观察不同刺激条件下神经肌肉的收缩反应,可以了解神经肌肉的兴奋性和收缩特性。
三、实验材料1. 实验动物:蟾蜍;2. 实验器材:手术剪、手术镊、手术刀、眼科剪、眼科镊、毁髓针、蛙板、固定针、滴管、培养皿、玻璃分针、锌铜弓、污物缸、粗棉线、任氏液、生物信号采集处理系统、肌动器(肌槽)、刺激器;3. 实验药品:0.9%氯化钠溶液、0.1%盐酸肾上腺素、0.1%乙酰胆碱。
四、实验步骤1. 制备神经肌肉标本:按照实验指导书中的步骤,制备蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本,确保标本新鲜、完整。
2. 连接实验器材:将制备好的神经肌肉标本与生物信号采集处理系统、肌动器(肌槽)和刺激器连接好。
3. 测量基础参数:调整刺激器,以适宜的强度、频率和持续时间刺激神经肌肉标本,观察并记录肌肉的收缩情况,测量并记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等基础参数。
4. 观察不同刺激条件下的收缩反应:a. 改变刺激强度:逐渐增加刺激强度,观察肌肉收缩的变化,记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等参数;b. 改变刺激频率:调整刺激频率,观察肌肉收缩的变化,记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等参数;c. 改变刺激持续时间:调整刺激持续时间,观察肌肉收缩的变化,记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等参数。
5. 观察不同药物作用下的收缩反应:a. 加入0.9%氯化钠溶液:观察肌肉收缩的变化,记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等参数;b. 加入0.1%盐酸肾上腺素:观察肌肉收缩的变化,记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等参数;c. 加入0.1%乙酰胆碱:观察肌肉收缩的变化,记录收缩幅度、收缩频率和持续时间等参数。
实验三 神经-肌肉标本的制备与肌肉收缩的观察
3)分离两后肢
将去皮的两后肢纵向剪开脊柱,并在
耻骨联合处剪开耻骨及相连的肌肉组织,
使两后肢完全分离,放入任氏液中备用。
4)分离坐骨神经
梨状肌
腓肠肌
肱二头肌和半膜 肌间的神经沟
5)游离腓肠肌
一手捏住趾端,另一手用手术镊在
腓肠肌跟腱下面穿线,打结扎进,提起
结线,游离腓肠肌。
6)分离股骨头或胫腓骨头
2、坐骨神经-腓肠肌标本制备
1)剥制后肢标本
左手提住蟾蜍脊柱,右手持剪刀在骶髂关节水平之 上0.5~1.0cm处用粗剪刀横断脊柱。然后用左手握住 蟾蜍的后肢并以拇指压住骶骨,使其头和后肢自然 下垂,右手持粗剪刀,沿脊柱两侧剪掉蟾蜍的一切 内脏及头、胸部。
2)剥皮
用蘸有任氏液的拇指和食指捏住断开 的脊柱后端,另一手向后撕破皮肤并除去两 后肢皮肤。将剥干净的后肢放入任氏液中, 清洗手及用过的器械。
实验一 神经-肌肉标本的制备与 肌肉收缩的观察
一、实验目的 1.掌握解剖生理学实验常用手术器械的使用。 2.学习蛙类动物单毁髓和双毁髓的实验方法。 3.掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本。 4.熟悉生物信号采集系统(MD3000)软件的操作。 4、掌握描记骨骼肌单收缩及强直收缩曲线的方法
二、基本原理
蟾蜍的某些基本生命活动,
根据动物个体大小,可以选择分离股骨或胫腓
骨。方法就是选择好骨头后,沿膝关节保留1cm
左右长的骨头,刮干净骨头上的肌肉,然后剪去
其它部位的肌肉和骨头,仅保留腓肠肌与股骨或 胫腓骨的联系。
3、标本活性检查
检验标本
4、固定标本,连接仪器
将标本固定于生理肌槽,跟腱上的扎线
与张力换能器相连。
5、用MD3000生物信号采集系统记录单 收缩和强直收缩 先后进行单刺激和连续刺激(刺激 频率由低到高),依次记录单收缩、不 完全收缩和完全收缩曲线,并剪辑、打 印。
神经肌肉实验实验报告
一、实验目的1. 了解神经肌肉的基本结构和功能。
2. 掌握神经肌肉兴奋性的测量方法。
3. 研究不同刺激频率对肌肉收缩的影响。
二、实验原理神经肌肉兴奋性是指肌肉对刺激产生反应的能力。
当神经受到刺激时,会产生动作电位,进而引起肌肉收缩。
刺激频率不同,肌肉收缩的形式也会有所不同。
当刺激频率较低时,肌肉表现为一连串的单收缩;当刺激频率增加时,肌肉会产生不完全强直收缩;当刺激频率继续增加时,肌肉产生完全强直收缩。
三、实验材料1. 实验动物:蟾蜍2. 实验工具:蛙板、手术剪、手术镊、手术刀、眼科剪、眼科镊、毁髓针、蛙钉、玻璃分针、任氏液、刺激电极、张力换能器、生物信号采集处理系统、计算机等。
四、实验步骤1. 制备坐骨神经腓肠肌标本:取蟾蜍一只,毁髓剥制后肢,分离坐骨神经和腓肠肌,用蛙钉固定在蛙板上。
2. 激活标本:将刺激电极与坐骨神经相连,用毁髓针在坐骨神经上产生刺激,观察肌肉收缩情况。
3. 测量阈强度:逐渐增加刺激强度,观察肌肉收缩情况,当肌肉开始收缩时,记录此时的刺激强度为阈强度。
4. 测量刺激频率对肌肉收缩的影响:在一定刺激强度下,逐渐增加刺激频率,观察肌肉收缩情况,记录不同频率下肌肉收缩的特点。
5. 分析数据:将实验数据输入计算机,利用生物信号采集处理系统进行分析。
五、实验结果1. 阈强度:实验测得阈强度为XX mV。
2. 刺激频率对肌肉收缩的影响:(1)刺激频率为XX Hz时,肌肉表现为一连串的单收缩;(2)刺激频率为XX Hz时,肌肉产生不完全强直收缩;(3)刺激频率为XX Hz时,肌肉产生完全强直收缩。
六、实验讨论1. 本实验通过制备坐骨神经腓肠肌标本,成功观察到了神经肌肉的兴奋性和刺激与反应的规律。
2. 实验结果表明,不同刺激频率对肌肉收缩的影响显著,阈强度、不完全强直收缩和完全强直收缩是肌肉收缩的三个阶段。
3. 本实验为神经肌肉生理学研究提供了实验依据,有助于深入了解神经肌肉系统的生理机制。
神经肌肉标本制备
神经肌肉标本制备神经干的复合动作电位分析一、蛙坐骨神经—腓肠肌标本制备(一)目的原理:学习神经肌肉标本的制备方法。
(二)材料:蛙、手术器械、探针、培养皿、竹针、锌铜弓、棉线、瓷盘、任氏液。
(三)方法:1、蛙洗净,双毁髓。
2、除去腹部以下皮肤,打开腹腔,将内脏向上翻,用粗剪刀剪去上半侧躯体,沿脊椎正中将下肢标本一分为二,放入培养皿中,加任氏液润湿。
3、从脊椎开始分离坐骨神经至膝关节处,注意不能使神经干燥,不牵拉神经,尽量少用金属触碰神经。
4、分离股骨,保留靠近膝关节端股骨1cm。
5、分离腓肠肌,在肌腱处扎棉线后提起线,剪去膝关节下部其余部分。
(四)标本活性检测:标本活性测定:将润湿的锌铜弓搭在神经干上,观察肌肉是否收缩。
将制备好的标本放在任氏液里备用。
清洗器械,晾干;垃圾丢入袋中。
二、神经干的复合动作电位分析(一)目的原理:观察蛙坐骨神经干的双向动作电位,测定神经兴奋的传导速度。
(二)材料:蛙、手术器械、任氏液、屏蔽盒、RM6240B系统、导线。
(三)方法:1、制备蛙坐骨神经干标本,放入任氏液中备用。
2、打开RM6240B系统,连接导线后,将坐骨神经干搭在银丝电极上。
3、“神经干复合动作电位”测定:点击“实验”→“肌肉神经”→“神经干动作电位”。
刺激器中选“同步触发”,点击“开始刺激”,即出现一个双相动作电位波形。
测出阈刺激强度,将最大动作电位波形复制到文档中保存。
复制方法:刺激器退出→图形复制(鼠标捕捉)→在所需图片左上角及右下角各点击一次→Ctrl+C(复制)→打开Word 文档→Ctrl+V(粘贴)。
4、“动作电位传导速度”测定:点击“实验”→“肌肉神经”→“神经干兴奋传导速度测定”。
刺激器中选“同步触发”,点击“开始刺激”,即在两个通道中出现两个动作电位波形。
退出刺激器→点击“分析”→“传导速度测量”→按提示输入数据,得出结果。
将图形复制到文档中保存。
5、结果打印:将图形整理→放入桌面的“共享文件夹”内→到1号机“网上邻居”中“邻近的计算机”上找到本组机号→找到文件→打印。
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实验报告
班级
科学教育121
学号
12138123
姓名
王雪
绍兴文理学院生命科学学院
2014-2
序号
实验内容
成绩
总评成绩
分数
等级
1
生理学实验介绍
神经肌肉标本制备
2
刺激强度与肌肉收缩反应的关系
骨骼肌的单收缩和复合收缩
3
神经干动作电位的引导和观察
动作电位传导速度的测定4来自反射弧的分析反射时的测定
5
猪心脏解剖
4、下面的“替换这里”字体底纹在完成后去除;
实验名称:生理学实验介绍/神经肌肉标本制备
同组姓名:崔璐丹、丁雨巧实验日期:2014.3.10
室温:12℃气压:替换这里
成绩:教师:
一、实验结果
坐骨神经-腓肠肌标本制备:
二、分析与讨论
替换这里
蛙类心脏起搏点分析
蟾蜍心室不应期、期外收缩和代偿间歇
6
胰岛素致低血糖效应
肾上腺素和促黑激素对皮肤色素细胞的影响
7
8
9
10
11
12
姓名:
王雪
学号:
12138123
实验报告
说明:1、实验报告务必独完成,对抄袭者将按不及格处理;
2、实验报告的格式请按下面的各项要求来填写,不要改动;
3、正文字体统一用“仿宋-GB2312”、,小四号,1.5倍行距,小标题加黑;