生理学实验
生理学实验大纲
生理学实验大纲实验目的该实验旨在加深学生对生理学原理的了解，并通过实践操作，提高学生的实验技能和科学思维能力。
实验内容1. 实验一：呼吸系统功能测定- 实验目的：通过呼吸功能的测定，了解呼吸系统的基本原理和功能。
- 实验步骤：- 测量静息呼吸频率和肺活量- 进行最大呼气和最大吸气试验- 实验结果分析：分析呼吸频率和肺活量的变化对呼吸功能的影响。
2. 实验二：心电图检测- 实验目的：通过测量心电图，了解心脏的电活动和心脏疾病的诊断方法。
- 实验步骤：- 认识心电图设备和导联的正确安装方法- 进行常规心电图检测- 实验结果分析：分析心电图波形的特征，并结合临床资料对心脏疾病进行初步诊断。
3. 实验三：神经肌肉传导速度测定- 实验目的：通过测定神经肌肉传导速度，了解神经系统与肌肉的结合与协调机制。
- 实验步骤：- 寻找适当的测试位置和刺激电极- 测定神经肌肉传导速度- 实验结果分析：分析传导速度的变化对神经肌肉功能的影响。
4. 实验四：血压测量与心血管功能测定- 实验目的：通过测量血压和心血管功能参数，了解心血管系统的基本原理和功能。
- 实验步骤：- 测量血压值和心率- 进行心血管功能测定- 实验结果分析：分析血压和心血管功能参数的变化对心血管健康的影响。
实验要求1. 实验前要仔细阅读实验指导书和相关理论知识，确保实验操作的准确性和安全性。
2. 实验过程中要遵守实验室规章制度，并注意个人防护措施。
3. 实验后需要及时整理实验数据和记录实验结果。
4. 实验报告需要按要求完整并准确地描述实验过程和结果，并进行分析和讨论。
实验评分标准- 实验操作技能：40%- 实验数据分析与结果：30%- 实验报告：30%参考资料1. Guyton AC, Hall JE. Guyton and Hall Textbook of Medical Physiology.12th edition. Elsevier.2. Berne RM, Levy MN. Berne and Levy Principles of Physiology. 6th edition. Mosby.3. Ganong WF. Review of Medical Physiology. 23rd edition. McGraw-Hill.以上为生理学实验大纲的基本内容，具体操作和要求详见实验指导书。
生理学实验报告
生理学实验报告第一篇：生理学实验报告生理学实验报告坐骨神经-腓肠肌标本的制备一、实验目的及要求学习蛙类动物双毁髓的方法掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
二、实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。
因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
三、实验对象蟾蜍或蛙。
四、实验器材及药品蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。
五、实验方法及步骤1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。
用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
生理学实验报告
医专生理学实验报告（五）一、实验题目：心血管活动的神经与体液调节二、实验目的：1、学习家兔动脉血压的直接描记方法；2、观察神经、体液因素对心血管活动和动脉血压的影响。
三、实验对象：家兔四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、压力换能器、动脉插管、动脉夹、剌激电极、哺乳类动物手术器械、注射器、实验用药品等五、实验原理：在正常机体，血压的变动并不大，而是经常维持在一个相对稳定的水平。
机体对心血管活动的调节是通过各种心血管反射实现的。
其中最重要的反射是颈动脉窦和主动脉弓压力感受器反射。
改变压力感受器活动或剌激反射弧的传入、传出神经会引起心血管活动的改变，进而导致动脉血压的相应变化。
在正常体，心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺等体液因素的调节。
通过静脉注射，改变血液中肾上腺素、去甲肾上腺素的浓度，也会影响心血管活动，从而使血压发生改变。
六、实验结果与简要分析：七、实验结论：心血管活动和动脉血压受神经、体液因素的调节。
医专生理学实验报告（六）一、实验题目：1、呼吸运动的调节 2、胸负压测定3、肺活量测定二、实验目的：1．学习记录哺乳动物呼吸运动的方法；观察体液中O2、CO2和H+水平变化对呼吸运动的影响；了解肺牵反射在呼吸运动中的作用。
2．观察胸负压，3．学会用简易肺活量计测量肺活量的方法。
三、实验对象：1、家兔 2、人四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、力换能器、气管插管、50cm长橡皮管一条、注射器（20ml、5ml）、钠石灰瓶、肺活量计等五、实验原理：呼吸运动是呼吸肌舒缩活动完成的节律性运动，该节律性运动在呼吸中枢的控制下保持正常的深度和频率。
体、外多种剌激可通过不同机制作用于呼吸中枢，引起呼吸运动的改变。
肺牵反射参与呼吸节律的调节，其传入纤维在迷走神经中，切断迷走神经将会引起呼吸节律的变化。
六、实验步骤：（略）七、实验结果与简要分析：八、实验结论：呼吸运动受神经、体液等因素的影响。
九、作业：统计小组10位同学的肺活量，并求出男、女的平均值肺活量正常值：平均男：3.5L；女：2.5L医专生理学实验报告（七）一、实验题目：影响尿生成的因素二、实验目的：学习膀胱插管技术，观察影响尿生成的因素，并分析其作用机制。
模拟实验生理学实训报告
通过本次模拟实验生理学实训，使学生了解人体生理学的基本实验方法和技能，掌握生理学实验的基本操作，培养严谨的科学态度和良好的实验习惯。
同时，通过实验加深对生理学基本理论的理解，提高分析和解决问题的能力。
二、实验环境实验地点：生理学实验室实验器材：生理学实验台、生理信号记录仪、生理实验装置、生理学实验教材等。
三、实验原理生理学实验是研究人体生命活动规律的重要手段。
通过模拟人体生理现象，观察生理指标的变化，揭示生理过程的内在联系。
本次实验主要模拟人体心脏、血管、神经等系统的生理功能。
四、实验内容1. 心脏生理实验（1）观察心脏搏动：使用生理信号记录仪，记录心脏搏动曲线，分析心率、心律等指标。
（2）心脏收缩力实验：观察心脏收缩力与后负荷的关系，分析心脏收缩力的影响因素。
2. 血管生理实验（1）观察血管收缩与舒张：使用生理信号记录仪，记录血管收缩与舒张曲线，分析血管舒缩机制。
（2）血管阻力实验：观察血管阻力与血管半径的关系，分析血管阻力的影响因素。
3. 神经生理实验（1）观察神经传导：使用生理信号记录仪，记录神经传导速度，分析神经传导机制。
（2）神经兴奋性实验：观察神经兴奋性与刺激强度的关系，分析神经兴奋性的影响因素。
1. 实验前准备：熟悉实验原理、实验步骤和注意事项，检查实验器材是否完好。
2. 实验操作：按照实验步骤进行操作，观察生理指标的变化，记录实验数据。
3. 数据分析：对实验数据进行整理、分析和讨论，得出结论。
六、实验结果与分析1. 心脏生理实验结果：（1）心率：在实验过程中，心率稳定在60-100次/分钟范围内。
（2）心律：在实验过程中，心律规则，无早搏、房颤等异常现象。
（3）心脏收缩力：随着后负荷的增加，心脏收缩力逐渐减弱。
2. 血管生理实验结果：（1）血管收缩与舒张：在实验过程中，血管收缩与舒张曲线明显，说明血管具有收缩与舒张功能。
（2）血管阻力：随着血管半径的减小，血管阻力逐渐增加。
3. 神经生理实验结果：（1）神经传导：在实验过程中，神经传导速度稳定在50-100m/s范围内。
生理实验讲义
生理实验讲义绪言一、生理学实验课的目的生理学是一门实验学科，其研究的基本方法即是实验。
生理学实验课的基本目的在于：⑴通过实验培养学生具有科学的思维方法和科学的工作态度；⑵在实验过程中使学生初步掌握生理学实验的基本操作技术；⑶了解获得生理学知识的科学方法；⑷验证和巩固生理学的基本理论。
二、生理学实验的特点及基本方法生理学实验的特点在于主要以活的动物为实验材料，因此要求做到：⑴爱护动物，尽量减少动物在实验中的痛苦，并充分利用每只动物以获得尽可能多的观察结果和实验数据；⑵严格按实验步骤和要求进行操作，以免造成不必要的创伤和出血使动物的正常生理状态遭到破坏，从而影响到实验结果的可靠性。
生理学的基本实验方法分为急性实验方法和慢性实验方法两大类。
㈠急性实验方法实验过程不能持久，实验后动物不能存活，实验观察能在短时间内完成的实验方法。
一般又可分为两种：⒈离体器官实验方法把要研究的器官或组织从活的或刚死去的动物身上取下来，放在一个适宜于正常生理活动的人工环境中以观察和研究其生理功能。
⒉活体（在体）实验方法在动物麻醉或大脑毁损的状态下，解剖暴露动物的某一器官组织以进行实验研究。
㈡慢性实验方法是在某一特定条件下，连续地反复观察和记录清醒动物的生理机能，需要较长时间才有结果的实验方法。
有时要先做无菌的外科手术，待动物恢复健康后再进行实验研究。
此法在基础实验课教学中较少应用，主要广泛应用于研究工作中。
三、生理学实验课要求⒈认真预习本次实验的原理、目的、要求、实验步骤和操作程序。
⒉严格按照实验步骤认真操作、仔细观察，在需要互相合作的实验中应互相配合。
在整个实验过程中不得进行与实验无关的活动。
⒊注意保护实验动物和标本，尽量节省实验器材和药品。
⒋实验后将仪器整理整齐，所用器械清洗干净并擦干，做好本组卫生。
⒌遵守实验器械管理规定，爱护实验器械。
⒍及时整理实验记录，认真撰写实验报告，按时将报告交负责老师评阅。
四、实验报告写作要求⒈写明姓名、日期、学号、组别及同组人员⒉实验号和实验题目⒊实验目的⒋实验原理：可作扼要描述⒌实验对象⒍实验器材和药品⒎实验方法和步骤：可作扼要描述⒏实验结果：详细记录所观察的实验结果，以及获得这些结果所需的各种实验条件，并进行适当的分析和处理。
生理学实验实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验目的本次生理学实验旨在通过一系列的实验操作，加深对生理学基本理论的理解，掌握实验技能，培养科学思维和实验操作能力。
通过本次实验，我们学习了生理学实验的基本原则和方法，了解了生理学实验的基本步骤和注意事项。
二、实验内容1. 神经反射实验- 实验目的：观察和分析神经反射的基本现象，了解反射弧的组成和功能。
- 实验方法：采用小鼠作为实验动物，通过电刺激法刺激坐骨神经，观察肌肉的收缩反应。
- 实验结果：成功观察到电刺激坐骨神经后，肌肉出现明显的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验- 实验目的：学习血压测量的原理和方法，了解血压的正常范围及其生理意义。
- 实验方法：使用血压计对实验动物进行血压测量，并记录血压数据。
- 实验结果：成功测量了实验动物的血压，结果显示血压在正常范围内。
3. 呼吸生理实验- 实验目的：观察和分析呼吸运动的基本规律，了解呼吸系统的生理功能。
- 实验方法：通过观察呼吸肌的收缩和舒张，以及肺容积的变化，分析呼吸运动的机制。
- 实验结果：观察到呼吸肌的规律性收缩和舒张，以及肺容积的变化，证实了呼吸运动的规律性。
4. 消化生理实验- 实验目的：观察和分析消化系统的生理功能，了解食物的消化和吸收过程。
- 实验方法：通过观察消化液的分泌和消化器官的活动，分析消化系统的生理过程。
- 实验结果：观察到消化液分泌的增加和消化器官的活动增强，证实了消化系统的生理功能。
三、实验过程1. 实验前准备：了解实验原理，熟悉实验器材，做好实验记录表格。
2. 实验操作：严格按照实验步骤进行操作，注意实验安全和数据记录。
3. 实验观察：仔细观察实验现象，及时记录实验数据。
4. 实验结果分析：对实验数据进行整理和分析，得出结论。
四、实验结果分析1. 神经反射实验：通过电刺激坐骨神经，成功观察到肌肉的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验：血压测量结果显示在正常范围内，说明实验动物的生理状态良好。
生理学实验报告
生医2012秋生理学实验报告指导教师：实验员：学号：联系方式：实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩目标要求1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法;2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法;3.学习肌肉收缩的记录方法;4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相,分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系;基本原理蛙类动物的某些基本生命活动,如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似;其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握,而且动物来源丰富,因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等;肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩,其过程可分为三个时相,即潜伏期、缩短期与舒张期;肌肉收到连续的阈上刺激时,如果刺激间隔小于单收缩的时程,相邻两单收缩的时相会出现融合,表现为强直收缩现象;如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期,称不完全强直收缩,如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期,称完全强直收缩;躯体运动是以骨为杠杆,以关节为枢纽,由肌肉收缩产生动力完成的;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙类手术器械手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针,蛙板,玻璃板,锌铜弓,小烧杯,滴管,纱布,细棉线,任氏液;BL-420生物机能实验系统或其他生理记录仪,张力换能器;实验步骤1.双毁髓的方法一手握蟾蜍,食指按压头部前端,拇指压住躯干背部,令其背部向上,头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间,背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入,然后将针尖向前刺入颅腔,搅动以捣毁脑组织,此时的动物为单毁髓动物;彻底捣毁脊髓时,可见蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软;如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如,表明未毁坏脊髓,必须重新毁髓;2.剥制后肢标本将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上,一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤,另一手持手术剪横向剪开皮肤,暴露脊柱;用金冠剪横向剪断脊柱;一首持手术镊提起断开的脊柱后端,另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁,再剪断下腹壁肌肉,使头部、前肢及内脏自然下垂,将其自腹后壁剪除;然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端,右手向后方撕剥皮肤,将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中;弃其头部、内脏及剥下的皮肤,清洗手及手术器械上的污物;3.分离两后肢左手托起去皮的标本,右手持金冠剪直接剪开耻骨联合,随后剪开两后肢相连的肌肉组织,并纵向剪开脊柱尾杆骨留在一侧,将标本一分为二,一只继续剥制标本,另一只放入任氏液中备用;4.分离坐骨神经取一侧后肢的脊柱端腹面向上,趾端向外侧翻转,使其足底朝上,用固定针将标本固定在玻璃板下面的蛙板上;用玻璃针沿脊神经向后剥离坐骨神经;沿腓肠肌正上方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝找出股部的坐骨神经,坐骨神经基部有一梨状肌盖住神经,用玻璃针轻轻挑起此肌肉,便可看清其深层穿行的坐骨神经;剪断梨状肌,完全暴露坐骨神经,再用玻璃针轻轻挑起神经,自上而下剪去支配腓肠肌之外的其他分支,将坐骨神经游离至腘窝处;用金冠剪剪去多余的脊柱骨及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨;取下脊柱端的固定针,用手术镊轻轻提起脊柱骨的骨片,将神经搭在腓肠肌上;5.游离腓肠肌用玻璃针将腓肠肌与胫腓骨分离开,用手术刀片将腓肠肌跟腱与胫腓骨分离开一段,用手术镊在腓肠肌跟腱下穿线并结扎,提起结扎线,剪断跟腱与胫腓骨的联系,游离腓肠肌;6.分离股骨一手捏住股骨,沿膝关节剪去股骨周围的肌肉,用金冠剪刮干净股骨上的肌肉,保留股骨的远端二分之三,剪断股骨;剪去膝关节下部的后肢,保留腓肠肌与股骨的联系;7.检验标本用手术镊轻轻提起标本的脊柱骨片,使神经离开玻璃板,持经任氏液蘸湿的锌铜弓,使其两极轻触神经,如腓肠肌反生收缩,则表示标本机能正常;提起腓肠肌上的结扎线,勿使神经收到牵拉,轻轻将标本放入任氏液中,稳定5-10min,即可用于实验;8.将坐骨神经-腓肠肌标本的股骨部分插入肌槽的固定孔内,拧紧固定螺丝,将坐骨神经放在电极上,将跟腱上的结扎线与张力换能器相连;9.用BL-420生物机能实验系统或其他类型的生理记录仪记录单收缩和强直收缩,步骤如下：（1）将张力换能器在肌槽上方与肌槽平行地固定于铁支架上,将标本上的结扎线缚于张力换能器悬梁壁上,将换能器输出的插头连于BL-420生物机能实验系统;（2）将BL-420生物机能实验系统的输出电极连于肌槽电极上;选择采样频率、显示方式、显示通道、时间常数、高频滤波,必要时还要选择50Hz陷波；记录时选择刺激标记;（3）选择单刺激方式,合适的刺激强度、刺激时间、扫描速度、纵向放缩和刺激标记,记录单收缩曲线;记录曲线参考图;（4）选择连续刺激方式,参考单刺激的刺激强度、刺激时间、纵向放缩、刺激标记、调节刺激时间间隔和扫描速度,分别记录不完全强直收缩曲线和完全强直收缩曲线;记录曲线参考图;（5）将记录曲线存盘,根据需要进行剪辑和编辑,最后导出另存或输出打印;实验记录分析：刺激电压低于阈上刺激,神经不兴奋,肌肉也不会收缩;当电压达到阈强度,神经开始兴奋,肌纤维才开始收缩;当刺激频率增大时,如果刺激频率小于骨骼肌收缩舒张频率就可以看到数个比较完整的收缩舒张波从零电位到峰值,再由峰值回到零电位,而当刺激频率大于骨骼肌收缩舒张频率时,骨骼肌一次收缩后还没来得及舒张完全就又受到电刺激重新达到收缩峰值,刺激频率增大到一定强度时就几乎看不到骨骼肌舒张的波形,持续收缩直至僵直;注意事项1.双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯,用纱布盖在耳后大腺上,防止耳后腺分泌物射入眼内;如分泌物射入眼内,应立即用生理盐水冲洗眼睛;标本制备过程中应经常滴加任氏液,防止标本干燥;思考题1、剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗为什么2、答：不能;自来水是低渗溶液,会使肌细胞失水萎缩,影响活性和实验结果;3、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌,可能引起哪些不良后果答：金属器械碰压神经与腓肠肌,会引起肌肉收缩,如果碰的较重,损伤部位及近端的神经就死亡了,以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分;另外容易使标本疲劳,失去活性;4、如何保持标本的机能正常答：金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌,保持湿润,常加任氏液,最好先泡一会;实验二蟾蜍离体蛙心灌流目的要求1.学习两栖类动物离体心脏的灌流方法,掌握斯式插管法；2.证明心肌具有自动节律性收缩的生理特征；3.观察钠离子、钙离子、钾离子、肾上腺素、乙酰胆碱对心脏活动的影响；4.理解内环境各种理化因素的相对恒定对于细胞进行正常生命活动的重要意义;基本原理心脏离体后,仍能有节律地自动收缩、舒张,此为心肌的自动节律性;两栖类动物的心脏没有冠状动脉,心肌细胞直接从心腔中的血液中获得营养物质和氧气,因而可用斯式插管法进行离体心脏灌流;灌流液的成分应同动物内环境的成分基本一致,用于两栖类动物心脏的灌流液为任氏液;始终有任氏液灌流于心腔,离体心脏可长时间地活动,改变灌流液的成分则可引起心脏活动的改变;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙心套管,套管夹,支架,双凹夹,滑轮,烧杯,常用手术器械,蛙板,蛙心夹,微机记录系统或二道记录仪,张力传感器,滴管,小烧杯,纱布,棉线,任氏液,%NaCl,5%NaCl,2%CaCl2,1%KCl,1/5000肾上腺素,1/10000乙酰胆碱;实验步骤1.暴露心脏取一只蟾蜍,用探针破坏脑和脊髓;双毁髓后,将其仰卧于蛙板上;一手持手术镊提起胸骨后方的皮肤,另一手持解剖剪剪开一个小口,然后将剪刀由开口处伸入皮下,向左、右两侧下颌角方向剪开皮肤;将皮肤掀向头端,再用手术镊提起胸骨后方的腹肌,在腹肌上剪开一口,将解剖剪紧贴体壁向前伸入,并沿皮肤切口方向剪开体壁,剪断乌喙骨和锁骨,使创口呈一倒三角形;一手持眼科镊,提起心包膜,另一手用眼科剪剪开心包膜,暴露心脏;在腹面可以看到一个心室,其上方有两个心房;心室右上角连着一个动脉干,其根部膨大为动脉圆锥;动脉干向上分成左、右两支主动脉;用玻璃针从动脉干背部穿过,将心脏翻向头侧;在心脏背面两心房下面,有一个呈紫红色的膨大部分,为静脉窦,是两栖类动物心脏的起搏点;静脉窦连左、右前腔静脉,后连一个后腔静脉；后腔静脉近窦处,有左、右肝静脉汇入;2.离体心脏制备斯式插管法分四步：1）动脉切口：在动脉干分支处下方穿过一线,并打一活结留作固定套管用;在左主动脉下方穿过一线,稍离动脉干分支处结扎;左手提起左主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方近动脉圆锥处、沿向心方向将左主动脉壁剪一“V”斜口;2）套管入室：取一尖端大小适宜的斯式蛙心套管,加入少量任氏液,达套管内2~3cm高度即可;左手用小镊子夹住切口缘,轻轻上提,使切口扩大；右手持蛙心套管,自切口处插入动脉圆锥;然后,左手持主动脉上的结扎线向后拉,右手推送蛙心套管,使之进入动脉圆锥;当套管尖端到达动脉圆锥基部时,将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进;在心室收缩时,将套管经主动脉瓣间隙插入心室腔内;进入心室后,血液冲入套管,并使液面随心脏波动而上下移动;如果套管没有顺利插入心室,应改变方向慢慢试插,不用蛮力;插入心室后不可插得过深,以免心室壁堵住套管口;3）固定套管：待套管尖端插入心室后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧,再将结扎线固定在套管的小玻璃钩上,以防标本滑脱;用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液;4）游离心脏：先将结扎线上方的左、右主动脉剪断;然后轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置;于静脉窦下方剪断所有的组织,使心脏离体;在结扎和剪断时,切勿损伤静脉窦;用任氏液反复冲洗心室内的余血,使套管内的灌流液中不再有残留的血液;套管内任氏液面高度应尽量保持一致,控制在2cm左右较为适宜;3.固定蛙心标本将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部的肌肉;为了不使灌流液滴到传感器上,将蛙心夹上的系线绕过一个定滑轮与张力传感器相连;4.开启仪器打开计算机采集系统,接通张力传感器输入通道;打开matlab,选择“蛙心灌流”实验;5.实验记录1）记录正常心搏曲线;2）改用%NaCl溶液灌流,并作好加药记号,观察心搏变化;待曲线出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;3）向套管内加入2~6滴5%NaCl溶液,作好加药记号,观察心搏曲线的频率及振幅变化;当曲线出现明显变化时应立即吸去套管中的灌流液,并做好冲洗标记,迅速用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;4）同法向套管内加入1~3滴2%CaCl2溶液,观察并记录心搏的变化;当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常;5）向套管中加入1~2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线变化;当心搏曲线变化时同法更换灌流液,待心搏恢复正常;6）同法记录套管中加入1~2滴肾上腺素溶液1/5000后心搏曲线的变化;7）同法记录套管中加入1~2滴乙酰胆碱溶液1/10000后的心搏曲线的变化;实验结果实验结果如下：1、正常心搏曲线2、用%NaCl溶液灌流分析：由图可知,Na离子会使心肌活动强度减弱,原因是用NaCl溶液灌注蛙心时,由于灌注液中缺乏Ca离子,以致心肌细胞动作电位2期内流钙离子减少,细胞质Ca离子浓度减少,心肌的收缩活动也随之减弱;3、用2%CaCl2溶液灌流分析：细胞外Ca离子在细胞膜上对Na离子内流有竞争性抑制作用,称为膜屏障作用;钙离子浓度增高时,钠离子内流受抑制,细胞0期除极速度与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低;钙离子浓度增高使钙离子内流增多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞平台期缩短,复极加速;钙离子内流增多,使心肌收缩能力增强;钙离子浓度降低时,所引起的变化与高钙时相反;因此加入氯化钙后,心率减少、振幅减少,基线上移;5、用KCl灌流分析：滴加氯化钾后的心搏曲线发现,曲线的频率逐渐减小,愈来愈疏,幅度逐渐下降,因为当细胞钾离子浓度增高时,钾离子与钙离子有竞争性拮抗作用,钾离子抑制细胞膜对钙离子的转运,使进入细胞内钙离子减少,心肌的兴奋—收缩偶联过程减弱,心肌收缩能力降低;所以心搏曲线振幅减小;6、用肾上腺素灌流分析：滴加肾上腺素后,蛙心收缩增强,心脏舒张完全,描记的心搏曲线幅度明显增大;其作用机理是,肾上腺素可与心肌细胞膜上的B受体结合,提高心肌细胞和肌浆网膜钙离子通透性,导致肌浆中钙离子浓度增高,使心肌收缩增强;另外,肾上腺素还有降低肌钙蛋白与钙离子亲和力,促使肌钙蛋白对钙离子的释放速率增加,提高肌浆网膜摄取钙离子的速度,刺激钠离子与钙离子交换,使复极期向细胞外排出钙离子的作用加速,这样,将使心肌舒张速度增快,整个舒张过程明显增加;6、加入乙酰胆碱灌流分析：上图可示,蛙心收缩减弱,心率减慢,最后出现蛙心停止舒张阶段;其机理为：乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合,一方面提高心肌细胞膜钾离子通道的通透性,促使钾离子外流,将引起：1窦房强细胞复极时钾离子外流增多,最大复极电位绝对值增大；衰减过程减弱,自动除极速度减慢;这两方面因素导致窦房自律性降低,心率减慢;2复极过程中钾离子外流增加,动作电位2、3期缩短,钙离子进入细胞内减少,使心肌收缩减弱；另一方面乙酰胆碱可直接抑制钙离子通道,减少钙离子内流,进而使心肌收缩减弱;注意事项1.剪开动脉管壁时,不能只剪开其外的薄膜,而要彻底将血管内膜剪破,但不要把血管剪断;2.使用蛙心夹夹心尖时,不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液;3.每种试剂使用后,都要用新鲜任氏液冲洗2~3次,以待心搏恢复正常;4.各种试剂的滴管不能混淆;5.每项实验都要有相应的对照;思考题根据实验结果,分析钠离子、钾离子、钙离子对心肌有何作用分析如上文;实验三小鼠脊髓半横切实验目的观察小白鼠脊髓半横断后的表现,加深对脊髓的认识;实验原理神经系统基本的活动形式是反射;简单的反射由脊髓完成,如膝反射,而复杂的反射则涉及到大脑皮层;脊髓把感受器接受到的信息传到大脑；大脑发出的信息又通过脊髓传到相应的效应器;这种传导机能主要由脊髓的白质来完成;白质是由神经元发出的长突起神经纤维组成的;脊髓中的神经纤维按不同的机能顺序排列;一旦脊髓被切断,则可导致切口以下相应部位的感觉或运动功能的丧失;实验对象小白鼠实验器材及药物改进的蛙板蛙板两边各钉两枚小元钉、小烧杯、药棉、手术缝针、丝线、解剖刀、剪刀、眼科手术刀、镊子、乙醚;实验方法及步骤1.用乙醚麻醉小鼠;2.把小白鼠俯卧和固定在改装了的蛙板上,剪去胸腰部背面的毛,在正中处用解剖刀纵切皮肤,划一个长的切口;3.紧贴第1~3节腰椎的棘突,用解剖刀切断椎上的肌腱,并用药棉球分离肌肉,暴露椎骨;4.用镊子夹住第二腰椎,另一个拿剪刀剪去棘突和椎弓,暴露白色的脊椎;5.在脊椎背面正中有一条纵向的血管,叫脊髓后静脉,以此为标志,用柳叶刀将一半脊髓从中央向外侧完全切断;6.松绑四肢,待其苏醒进行下列观察小白鼠在实验桌上运动状况;实验结果及分析当手术成功时,可观察到如下结果：小白鼠在运动时,与脊髓损伤同侧的后肢不能运动,呈现出以脊髓损伤侧为轴的转圈运动;结论：由大脑发出的运动指令到达脊髓后,通过脊髓白质的神经纤维继续向下传送,脊髓两侧的运动神经纤维大都在本侧里行走即不交叉到对侧;在脊髓被损伤的一侧,运动指令无法传到横切以下的部位,该侧后肢得不到运动指令,因而不能随意运动；脊髓未遭横切的一侧,大脑发出的运动指令,可以通过脊髓白质的神经纤维传到后肢肌肉,所以这一侧后肢运动如常;注意事项1.本实验成功的关键在于手术;首先麻醉要适度,麻醉过深小白鼠易死亡,过浅小白鼠易苏醒;其次用柳叶刀横切一侧脊髓时要防止损坏对侧脊髓;2.半横切部位必须在相当于第二腰椎的脊髓处,实验效果才好;手术中要防止出血过多;实验四心血管活动的神经体液调节实验目的学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法和间接或直接地观察心血管活动的神经体液性调节;实验原理正常情况下,哺乳动物的血压是相当恒定的,这种相对恒定是通过神经和体液性的调节而实现的;心脏受交感神经和副交感神经的双重支配,心交感神经使心跳加快加强,传导加速,从而使心输出量增加;支配心脏的副交感神经是心迷走神经,兴奋时使心率减慢,心房收缩力减弱,房室传导减慢,从而使心输出量减少;支配血管的植物性神经,绝大多数属于交感缩血管神经,中枢通过反射作用调节心血管的活动改变心输出量和外周阻力,从而调节动脉血压;本实验是通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化的;实验用品家兔、D-95生理记录系统、血压换能器、塑料动脉插管、动脉夹、三通管、刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、手术灯、注射器、肝素生理盐水、40%酒精生理盐水、生理盐水、纱布、棉球、丝线、%肾上腺素、%乙酰胆碱等;实验步骤和项目一、手术准备1、麻醉并固定动物：耳缘静脉缓慢注入麻醉剂将兔子麻醉;注射时应密切观察动物的肌张力、心跳、呼吸、瞳孔大小、角膜反射等,以免麻醉过深;将动物仰卧于手术合上．固定好头部和四肢,注意颈部必须放正拉直;2、分离颈部神经和血管：剪去颈部的毛,沿正中线作一5～7厘米的切口,钝性分离皮下组织和肌肉,暴露气管,将气管两旁的肌肉拉开,便可在气管的二侧深部找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经;在分离颈总动脉前,仔细识别以上三条神经,其中迷走神经最粗,交感神经较细,减压神经最细,且常与交感神经紧贴在一起,分离时不要过度牵拉,以免使神经受损;并在各神经下分别穿过一有色标记的用生理盐水浸湿的线备用;然后分离出左侧颈总动脉,并向头端追索一直到甲状软骨的上缘,此时可见到颈总动脉分支为颈内和颈外动脉;在颈内动脉的基部有一膨大处,此即颈动脉窦;在右颈总动脉下穿过二根用生理盐水浸湿的线,作结扎和固定动脉插管用;并以同样方法分离出右侧的迷走神经、交感神经和减压神经,穿线备用;3、动脉插管：在右侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹,然后结扎其远心端,在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm左右;在结扎的下方用锐剪朝向心端做一“V”切口,将动脉插管向心脏方向插入,用丝线将其敷紧结扎固定,以防插管滑出;二、观察项目：1、牵动颈总动脉;手持左侧颈总动脉上的穿线牵拉5秒;同时记录刺激记号,以下各项亦同,不另,观察心搏与动脉血压有何变化2、夹闭颈总动脉用动脉夹夹闭左颈总动脉5-10秒,观察心搏与血压有何变化3、静脉注射%肾上腺素,观察心搏与血压有何变化;注意事项1、本实验麻醉应适量,过浅动物挣扎,过深则反射不灵敏;2、动脉插管应始终保持与动脉方向一致,防止插管刺破动脉管壁;3、进行每一项目后,必须待心搏与血压恢复正常后方可进行下一项;实验结果牵动颈总动脉：注射肾上腺素：实验五影响尿液生成的因素实验目的学习用膀胱套管或输尿管套管引流的方法,观察不同生理因素对动物尿量的影响;加深对尿生成调节的理解;实验原理尿是血液流过肾单位时经过肾小球滤过,肾小管重吸收和分泌而形成的,凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成;肾小球的滤过作用取决于肾小球的有效滤过压,其大小取决于肾小球毛细血管血压,血浆的胶体渗透压和肾小囊内压;影响肾小管重吸收作用主要是管内渗透压和肾小管上皮细胞的重吸收能力,后者又为多种激素所调节;实验对象家兔实验器材及药物20%氨基甲酸乙酯、肝素生理盐水溶液100u/ml、生理盐水、呋塞米、38度生理盐水;计算机生物信号采集处理系统、压力换能器、保护电极、兔手术台、气管插管、膀胱导管或输尿管导管、动脉插管、注射器1ml、20ml及枕头、烧杯;实验步骤及方法1.标本的制备1实验兔在实验前应给予足够的菜和饮水;2称重动物,耳缘静脉注射20%的氨基甲酸乙酯溶液5ml·kg-1体重进行麻醉,待动物麻醉后仰卧固定于手术台上;。
生理学实验的一般操作方法
生理学实验的一般操作方法一．生理学实验方法概述生理学实验一般可分为急性实验法和慢性实验法两大类。
１．急性实验法是在无痛条件下剖开动物身体，对某一两个器官进行实验观察。
实验过程不能太长，试验后将动物处死。
它又可分为两种：（１）离体实验法将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物上取出，置于接近正常生理条件的人工环境中，以观察、研究其生理机能。
如离体蛙心灌流等。
（２）在体实验法动物在麻醉或毁坏脑或脊髓的状态下，用手术的方法暴露某一器官，观察、研究其机能及变化规律。
如心搏过程的观察、小肠运动的观察等。
２．慢性实验法在无菌条件下对健康动物进行手术，暴露要研究的器官或摘除、破坏某一器官，然后在接近正常生活条件下，观察所暴露器官的某些功能、以及摘除或破坏某器官后所产生的功能紊乱等。
二．实验动物的固定在手术过程中，必须将麻醉动物进行固定，以限制动物的活动，保证实验或手术的利进行。
常用的固定方法有两种：１．背位固定法将动物的背部直接接触手术台的固定方法。
在呼吸、循环、消化、泌尿等试验中均采用此法。
２．腹部固定法将动物的腹部直接接触手术台的固定方法。
这种固定法适用进行脑脊髓的实验。
三．实验动物的麻醉为了使动物在实验过程中保持安静，不挣扎，必须对动物进行麻醉。
麻醉的深浅可以从呼吸、某些反射的消失、肌肉的紧张程度和瞳孔的大小等加以判断。
一般用夹捏后肢股部肌肉以观察其反应的简易方法了解动物的麻醉深度。
（一）常用麻醉药麻醉药可分为局部麻醉剂和全身麻醉剂两种。
在生理实验中，常采用全身麻醉法，如挥发性的乙醚和非挥发性的巴比妥类、水合氯醛等。
（二）麻醉药的给药途径和方法非挥发性麻醉药的给药途径为注射给药法，主要有静脉、腹腔、肌肉、皮下和淋巴囊注射。
１. 静脉注射：兔的部位为耳缘静脉，兔耳的外缘血管为静脉，中央的血管为动脉。
注射前，先剪去注射部位的被毛，用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端，使其充血，并用左拇指和无名指固定兔耳。
用左手持注射器将针头顺血管方向刺入静脉，刺入后再将左手食指和中指移至针头处，协同拇指将针头固定静脉内，便可缓缓注射。
生理学实验
实验三:影响神经冲动传导得因素观察实验目得:1、继续学习蟾蜍坐骨神经－腓神经标本制备方法,掌握坐骨神经标本得制备方法。
2.引导蟾蜍坐骨神经动作电位,并观察其基本波形(包括双相与单相动作电位)。
3.学习与掌握神经干动作电位传导速度测定得原理与方法、4。
设计改变细胞外液得某些因素会对动作电位在神经干上传导得速度产生何种影响？实验原理:蛙类得一些基本生命活动与生理功能与恒温动物相似,若将蛙得神经－肌肉标本放在任氏液中,其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激,可在神经与肌肉上产生一个动作电位,肉眼可瞧到肌肉收缩与舒张一次,表明神经与肌肉产生了一次兴奋。
在生理学实验中常利用如果将两个引导电极置于正常完整得神经干表面,当神经干得一端兴奋之后,兴奋波会先后通过两个引导电极(r１ｒ1’,图5坐骨神经干包括多种类型得神经纤维成分,因此记录到得动作电位就是它们电位变化得总与,因此神经干动作电位就是一种复合动作电位。
由于各类神经纤维得兴奋阈值各不相同,所以记录到得动作电位幅值在一定范围内可随刺激强度得变化而改变,这一点不同于单根神经纤维得动作电位、动作电位在神经纤维上得传导有一定得速度。
不同类型得神经纤维动作电位传导速度各不相同。
蛙类坐骨神经干中以Ａα类纤维为主,传导速度(V)大约为35~4０ｍ／s。
测-腓肠肌标本得制备,但无需保留股骨与腓肠肌、坐骨神经干要求尽可能长些、在脊椎附近将神经主干结扎,剪断、提起线头剪去神经干得所有分支与结缔组织,到达腘窝后,可继续分离出腓神经或胫神经,在靠近趾部剪断神经。
将制备好得神经标本浸泡在任氏液中数分钟,待其兴奋性稳定后开始实验。
3、仪器及标本得连结(1)用浸有任氏液得棉球擦拭神经标本屏蔽盒上得电极,标本盒内放置一块湿润得滤纸片,以防标本干燥。
用滤纸片吸去标本上过多得任氏液,将其平搭在屏蔽盒得刺激电极、接地电极与引导电极上,并且使其近中端置于刺激电极上,远中,频率8~16 Hz,波宽0。
生理学实验——精选推荐
生理学实验一、神经和肌肉实验1 坐骨神经腓肠肌标本的制备坐骨神经干标本的制备【实验目的】学习坐骨神经腓肠肌和坐骨神经干标本的制备方法。
【实验原理】两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物类似，但其离体组织所需存活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蛙或蟾蜍的离体组织或器官作为实验标本来观察组织的兴奋性、兴奋过程、兴奋性的变化以及骨骼肌的收缩特点等。
【实验对象】蟾蜍(或蛙)。
【器材和药品】蛙类手术器械一套(蛙板、玻璃板、探针、粗剪刀、组织剪、眼科剪、眼科镊、大头针、玻璃分针、搪瓷碗、培养皿、滴管、纱布、丝线)、锌铜弓、任氏液。
【操作步骤和观察项目】(1)破坏脑和脊髓：左手持蛙，用食指下压头部，拇指按压背部，使头前俯。
右手持探针从枕骨大孔处垂直刺入，再将针插向前方刺入颅腔搅碎脑组织。
将探针退回进针处，向下刺入椎管捣毁，待蛙四肢松软，表明脑和脊髓已完全破坏（图5-1）。
图5-1 破坏蛙脑和脊髓图5-2 横断脊柱图5-3 剪断躯干上部及内脏图5-4 剥离皮肤(2)剪除躯干上部及内脏：在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱，将头、前肢及内脏一并剪除，保留腰骶部脊柱及后肢。
在腹部脊柱的两旁可以见到坐骨神经丛(图5-2、图5-3)。
(3)剥皮：左手捏紧脊柱断端，右手捏住断端处皮肤边缘，用力向下剥掉全部后肢皮肤(肛门皮肤粘膜移行处先行剪开)，把标本放入任氏液中，洗净手及所有用过的器械(图5-4)。
(4)游离坐骨神经：将后肢标本腹面向上用大头针固定于蛙板上，沿脊柱两侧用玻璃分针分离坐骨神经，用普通剪刀剪下一小段与神经相连的脊柱，提起脊柱，逐一剪去神经分支。
从耻骨联合处将两下肢分开。
将一侧下肢背面向上，用玻璃分针划开梨状肌及附近的结缔组织，循坐骨神经沟(股二头肌与半膜肌之间)找出坐骨神经的大腿部分，提起坐骨神经，小心剪断坐骨神经的所有分支，一直游离到膝关节(图5-5)。
图5-5 坐骨神经走向示意图图5-6 蛙坐骨神经腓肠肌标本示意图(5)游离腓肠肌：将分离干净的坐骨神经搭于腓肠肌，在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉，并用普通剪刀将股骨刮干净，在股骨中部剪去上段股骨。
《生理学实验》教学大纲
《生理学实验》教学大纲生理学是一门实验性科学。
《生理学实验》是生理学理论教学的必要补充，它也是生理学学科的有机组成部分。
《生理学实验》教学时数为12学时。
由生理学科教师主讲。
课程性质必修适用专业生物医学工程和生物技术专业开设学期 3一、教学目的和要求教学目的：通过实验使学生初步掌握生理学实验的基本操作技术；了解获得生理学知识的科学方法，验证和巩固课堂理论。
在实验过程中培养对科学实验的严肃的态度，严格的要求，严密的工作方法。
通过实验逐步培养学生能够客观地对事物进行观察、比较、分析和综合的能力，以及独立思考解决实验问题的能力。
实验要求：1.实验前（1）仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求和实验步骤。
（2）复习与实验有关的理论知识。
（3）预测该实验各个步骤应得的结果。
2.实验时（1）实验器材的安放要正确、整齐、稳当。
（2）按照实验步骤，以严肃认真的态度循序操作。
不得进行与实验无关的活动。
要注意保护实验动物和标本，节省实验材料和药品。
（3）仔细观察、认真思考实验过程中出现的现象，随时记录实验结果。
3.实验后（1）将实验用具整理归位，所用器械洗净擦干。
如有损坏或缺少，应报告负责教师。
实验完毕后，将所借用的器材或物品，点清并交给负责老师。
（2）整理实验记录，认真填写实验报告，按时交给负责老师评阅。
二、教学目的、教学内容、学时分配及其他实验一蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备（4课时）〖实验性质〗专业基础〖实验类型〗基本操作性实验〖目的要求〗1．掌握蟾蜍坐骨神经干标本的制备方法。
2．掌握蛙类手术器械的使用方法。
〖实验内容〗1．制备蟾蜍坐骨神经干标本。
2．观察标本的兴奋收缩功能。
实验二神经干动作电位和传导速度的测定（4课时）〖实验性质〗专业基础〖实验类型〗综合性实验〖目的要求〗1．熟悉电生理仪器的使用方法。
2．了解测定蟾蜍坐骨神经干动作电位的基本原理和方法。
3．了解测定动作电位传导速度的基本原理和方法。
〖实验内容〗1．制备蟾蜍坐骨神经干标本。
最新生理学实验报告(实验一)
最新生理学实验报告(实验一)实验目的：探究不同浓度的葡萄糖溶液对小肠吸收功能的影响。
实验原理：小肠是消化系统中最重要的吸收器官，其吸收功能与肠腔内物质的浓度有关。
通过改变葡萄糖溶液的浓度，可以观察小肠对葡萄糖的吸收效率，从而了解小肠吸收功能的调节机制。
实验材料：1. 小鼠若干只，体重约20-25克。
2. 葡萄糖溶液，分别制备5%，10%，15%，20%和25%的不同浓度。
3. 吸收瓶，用于收集小肠吸收的液体。
4. 手术器械一套，用于小鼠手术操作。
5. 显微镜，用于观察小肠黏膜细胞。
6. 实验室常规试剂和耗材。
实验方法：1. 将小鼠随机分为五组，每组使用不同浓度的葡萄糖溶液。
2. 对小鼠进行麻醉，并进行腹部手术，将吸收瓶植入小肠肠腔内。
3. 通过灌注的方式，将不同浓度的葡萄糖溶液注入吸收瓶中。
4. 观察并记录小肠对葡萄糖溶液的吸收情况，包括吸收时间、吸收量等。
5. 取出小肠样本，制作黏膜细胞涂片，用显微镜观察细胞结构变化。
6. 分析实验数据，绘制吸收曲线，比较不同浓度下小肠的吸收效率。
实验结果：实验数据显示，小肠对葡萄糖的吸收量随着葡萄糖溶液浓度的增加而增加，但当浓度超过一定阈值后，吸收量不再显著增加。
显微镜观察发现，高浓度葡萄糖溶液处理的小鼠小肠黏膜细胞出现轻微损伤。
实验讨论：本实验结果表明，小肠对葡萄糖的吸收能力存在一定的调节范围。
在一定浓度下，增加葡萄糖浓度可以提高吸收效率，但过高的浓度可能导致黏膜细胞损伤，影响吸收功能。
这可能与小肠黏膜细胞的葡萄糖转运蛋白有关，高浓度下转运蛋白可能达到饱和状态，限制了进一步的吸收。
结论：小肠对葡萄糖的吸收效率与葡萄糖溶液的浓度有关，但存在最适浓度范围。
过高的浓度不仅不能提高吸收效率，还可能对小肠黏膜细胞造成损伤。
本研究为进一步探究小肠吸收机制提供了实验基础。
生理学实验报告
生理学实验报告实验目的，通过进行生理学实验，了解人体生理功能的基本特点，培养实验操作能力和观察数据分析能力。
实验仪器和材料，实验中所需的仪器和材料包括生理记录仪、心电图机、血压计、心电图导联线、电极片、生理盐水、药用酒精、消毒棉球等。
实验方法，首先，对实验仪器进行检查和准备，确保仪器正常工作。
然后，进行实验前的准备工作，包括对实验者进行身体状况检查、消毒处理和导联贴附。
接着，进行实验操作，记录心电图、测量血压和心率等生理指标。
最后，对实验数据进行分析和总结。
实验结果，经过实验记录和数据分析，我们得出了一些结论。
例如，观察到心率随着运动强度的增加而增加，血压在运动后也会有所变化。
另外，心电图的波形和特点也能反映出心脏的生理状态。
实验结论，通过本次实验，我们对人体生理功能有了更深入的了解，也掌握了一些实验操作技能和数据分析方法。
同时，实验结果也为我们提供了一些参考，可以帮助我们更好地理解和探索人体的生理特点。
实验注意事项，在进行生理实验时，需要严格遵守实验操作规范，保证实验者的安全和数据的准确性。
另外，实验后需要对实验仪器进行清洁和消毒，确保下次实验的顺利进行。
总结，生理学实验是对人体生理功能进行观察和研究的重要手段，通过实验可以更直观地了解人体的生理特点，培养实验操作能力和数据分析能力。
希望通过本次实验，能够对生理学知识有更深入的认识，并为今后的学习和研究提供一定的参考价值。
结语，生理学实验是一项重要的实践课程，通过实验可以更深入地了解生理学知识，培养实验操作能力和数据分析能力。
希望通过本次实验，能够对生理学知识有更深入的认识，并为今后的学习和研究提供一定的参考价值。
生理学实验问题整理
生理学实验问题整理绪论1.生理学实验目的1）了解生理学实验基本方法（电信号记录；机械信号记录；化学物质变化记录；行为学记录）2）掌握生理学实验基本操作规程3）培养一定的实验操作能力和科学思维2.主要生理学仪器系统1）刺激系统刺激参数及其调控：触发（手动，自动）；延时；幅度；时间；频率2）探测系统（玻璃微电极、传感器）3）信号调节系统4）记录系统（记纹鼓，计算机信号采集系统）一、坐骨神经-腓肠肌标本的制备1.剥去皮肤的后肢，能用自来水冲洗吗？为什么？离体实验时，由于离体器官的生存条件不完全等同于正常体内，其保持正常生理活性的时间较短，因此需要我们在标本的制作过程中特别注意对标本生存条件的维护，即模拟体内环境。
任式液是两栖类动物实验常用的生理盐溶液，含有组织正常生命活动必需的营养物质和电解质，其渗透压和酸碱度也与动物体液相似；因此用任式液冲洗标本不会影响组织的兴奋性；而自来水是低渗溶液，其理化性质与任式液截然不同，用自来水冲洗标本会改变组织细胞的理化环境，轻则影响标本的正常生物活性，造成实验过程中出现很多异常现象，重则使神经和肌肉吸水膨胀乃至死亡。
2. 金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌，可能引起哪些不良后果？金属在溶液中都要发生一定程度的电离，因此金属器械碰压、触及神经时，一些金属离子往往会使神经肌肉疲劳，影响其兴奋性。
如果碰的较重,损伤了神经及腓肠肌，损伤部位及近端的神经甚至就死亡了兴奋不能传导。
3. 如何保持标本的机能正常？1）制备标本的操作过程中，勿过度牵拉、损伤神经和肌肉2）金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌；3）也不要使动物的皮肤分泌物和血液等接触神经和肌肉，以免硬性标本活性4）制备好的标本在任式液中浸泡一会，待兴奋性稳定后再进行实验5）整个实验过程中要不断给标本滴加任式液，防止干燥，保持其兴奋性。
4. 刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系1.如何保持标本在实验过程中机能稳定?1）标本首先在任式液中浸泡一段时间2）实验过程中不断用任式液湿润3）肌肉达到最大收缩时立刻停止刺激，防止肌肉疲劳4）一次实验后，让标本休息一段时间5. 判断标本兴奋性的指标是什么？1）评价蟾蜍的坐骨神经-腓肠肌的兴奋性，用锌铜弓蘸任氏液后刺激坐骨神经，观察腓肠肌是否收缩；2）标本的阈刺激强度常作为评价标本兴奋性的指标。
生理学实验指导(一)
生理学实验指导（一）引言概述：生理学实验是生理学课程中重要的一环，通过实验可以帮助学生更具体地了解和掌握相关知识。
本文将重点讲解生理学实验指导（一）的内容，包括实验目的、实验原理、实验步骤和注意事项等。
正文：1. 实验目的：- 了解生物质膜的结构和功能。
- 理解膜通透性的测定方法。
- 掌握实验室常用的实验操作技巧。
小点：a. 简述生物质膜的组成和特点。
b. 分析测定膜通透性的常用方法。
c. 介绍实验操作中需要注意的事项。
2. 实验原理：- 生物质膜是由脂质双分子层和蛋白质组成，扮演着细胞内外物质交换的重要角色。
- 测定膜通透性的方法有渗透压法、胆红素法等，通过测量物质的透过膜的能力来判断膜的通透性。
- 实验中常用的操作技巧包括离心、分液漏斗等。
小点：a. 生物质膜的结构和功能。
b. 常用的膜通透性测定方法的原理。
c. 实验中的基本操作技巧介绍。
3. 实验步骤：- 准备实验所需材料和仪器。
- 按照实验流程进行实验。
- 记录实验数据并进行分析。
- 清洗实验器具和材料。
小点：a. 实验前的准备工作。
b. 实验流程的具体步骤。
c. 数据记录和分析的方法。
d. 实验后的清洗工作注意事项。
4. 注意事项：- 实验室安全第一，穿戴适当的实验服和安全眼镜。
- 仔细阅读实验指导书，熟悉实验流程和注意事项。
- 保持实验环境的整洁和有序。
- 处理实验废物时，按照规定进行分类和处置。
小点：a. 实验室安全注意事项。
b. 对实验指导书的阅读和理解。
c. 维护实验环境的要求。
d. 实验废物处理的规范。
总结：本文介绍了生理学实验指导（一）的内容，包括实验目的、实验原理、实验步骤和注意事项等。
通过实验，学生可以更好地了解生物质膜的结构和功能，并掌握膜通透性的测定方法。
在实验过程中，注意实验室安全，遵守操作规范，保持实验环境整洁，并正确处理实验废物。
生理学之常用研究方法及内容
生理学之常用研究方法及内容一、生理学实验概念生理学实验是人为控制一定的实验条件，对生命活动现象进行科学观察和分析，以获得这种生命活动规律认识的一种研究手段。
二、动物实验分类：急性实验和慢性实验急性实验（acute experiment）：是以动物活体标本或完整动物为实验对象，人为地控制实验条件，在短时间内对动物标本或动物整体特定的生理活动进行观察和干预并记录其实验结果作为分析推断依据的实验。
1.急性实验分为在体（in vivo）实验和离体（in vitro）实验。
2.在体实验是指在麻醉或清醒状态下的动物身上进行的观察或实验，也称活体解剖实验。
在体实验的条件易于控制，实验较简单。
离体实验是将器官或细胞从体内分离出来，在一定的实验条件下进行的研究。
它有利于排除无关因素的影响，但需要在特定的条件下进行，其获取的结果不一定代表在自然条件下的整体活动情况。
慢性实验（chronic experiment）：是指以完整、清醒的动物为研究对象，尽量使动物所处的外界环境接近自然状态，在一段时间内，在同一动物身上反复多次观察完整机体内某些器官功能活动或生理指标变化的实验。
慢性实验获得的结果比较接近整体的生理功能活动，但实验条件较高，时间长，整体条件太复杂，影响因素较多，所得的结果有时不易分析。
三、研究层次1.分子与细胞层面2.器官和系统层面3.整体层面四、生命活动的基本特征1.新陈代谢：是机体生命活动最基本的特征，包含物质代谢（合成代谢、分解代谢）和能量代谢（能量产生及转换利用）2.兴奋性机体或可兴奋组织、细胞在接受刺激产生反应时，其表现形式主要有两种：一种是由相对静止变为显著的运动状态，或原有的活动由弱变强，称为兴奋（excitation）。
另一种是由运动转为相对静止，或活动由强变弱，称为抑制（inhibition）。
刺激引起反应的三个条件：足够的刺激强度、足够的刺激作用时间和适当的刺激强度-时间变化率。
将能引起活组织细胞产生反应的最小刺激强度称为阈强度，简称阈值。
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实验三：影响神经冲动传导的因素观察实验目的：1．继续学习蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法，掌握坐骨神经标本的制备方法。
2．引导蟾蜍坐骨神经动作电位，并观察其基本波形（包括双相和单相动作电位）。
3．学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。
4．设计改变细胞外液的某些因素会对动作电位在神经干上传导的速度产生何种影响？实验原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在生理学实验中常利用如果将两个引导电极置于正常完整的神经干表面，当神经干的一端兴奋之后，兴奋波会先后通过两个引导电极(r1r1’,图5坐骨神经干包括多种类型的神经纤维成分，因此记录到的动作电位是它们电位变化的总和，因此神经干动作电位是一种复合动作电位。
由于各类神经纤维的兴奋阈值各不相同，所以记录到的动作电位幅值在一定范围内可随刺激强度的变化而改变，这一点不同于单根神经纤维的动作电位。
动作电位在神经纤维上的传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维动作电位传导速度各不相同。
蛙类坐骨神经干中以Aα类纤维为主，传导速度(V)大约为35～40 m/s。
测-腓肠肌标本的制备，但无需保留股骨和腓肠肌。
坐骨神经干要求尽可能长些。
在脊椎附近将神经主干结扎，剪断。
提起线头剪去神经干的所有分支和结缔组织，到达腘窝后，可继续分离出腓神经或胫神经，在靠近趾部剪断神经。
将制备好的神经标本浸泡在任氏液中数分钟，待其兴奋性稳定后开始实验。
3．仪器及标本的连结（1）用浸有任氏液的棉球擦拭神经标本屏蔽盒上的电极，标本盒内放置一块湿润的滤纸片，以防标本干燥。
用滤纸片吸去标本上过多的任氏液，将其平搭在屏蔽盒的刺激电极、接地电极和引导电极上，并且使其近中端置于刺激电极上，远中，频率8～16 Hz，波宽0.1～0.2 ms，强度根据标本兴奋性而定，由小增大(一般可选2V)。
示波器灵敏度0.1～0.5 V/cm，扫描速度1～2 ms/cm。
外触发输入接刺激器的触发输出端。
触发选择置于外触发同步。
开启电子刺激器时，调节触发电平旋钮，使示波器扫描与刺激输出同步。
将扫描线调至荧光屏中间。
（3）若使用计算机生物信号采集处理系统进行实验则参照图5.5-2连接仪器。
两对记录电极分别连接到CH1、CH2通道，刺激电极连接到刺激输出。
打开计算机，启动生物信号采集处理系统，进入“神经干动作电位”模拟实验菜单。
4．观测和测定双相值时的阈刺激。
（2）增大刺激强度的过程中，伪迹和动作电位均随之加大，但当强度加大到某一程度后(此刺激强度称为最大刺激)，动作电位就不再增大，而伪迹仍随之加大。
这是区别刺激伪迹与动作电位的可靠方法之一。
（3）仔细观察双相动作电位的波形(图5.5-3)。
读出最大刺激时双相动作电位上下相的振幅和整个动作电位持续时间数值。
（4）将神经干标本放置的方向倒换后，双相动作电位的波形有无变化？（5）将两根引导电极r1,r1’的位置调换，动作电位波形有和变化？5．观察单相动作电位用镊子将两个引导电极r1,r1’之间的神经夹伤，或用一小块浸有3 mol/L KCl溶液的滤纸片贴在第二个引导电极(r1’)处的神经干上，再刺激时呈现的即是单相动作电位。
读出最大刺激时单相动作电位的振幅值和整个动作电位持续的时间数值。
6．动作电位传导速度的测定换一根坐骨神经，按步骤3（1）搭放在神经屏蔽盒的电极上。
进入“神经干动作电位传导速度”模拟实验菜单，或在显示方式菜单中选择“比较显示方式”（则可在一个通道内显示两个通道的图形）。
给予神经干最大刺激强度，可在两个通道中（或示波器的上、下线）观察到先后形成的两个双向动作电位波形。
（1）分别测量从刺激伪迹到两个动作电位起始点的时间，设上线为t1，下线为t2(或可直接测量两个动作电位起点的间隔时间)，求出t2～t1的时间差值。
（2）测量标本屏蔽盒中两对引导电极相应的电极之间的距离d(即测定r1～r2的间距)。
（3）将神经干标本置于4℃的任氏液中浸泡5 min后，再测定神经冲动的传导速度。
（4）参照上步操作可自行设计改变细胞外液的某些因素，如分别将神经干标本置于25℃的任氏液、高钾和低钠任氏液中浸泡5 min后，再测定神经冲动的传导速度。
实验结果：1．分别计算正常的神经干和低温浸泡后的神经干上动作电位传导速度V＝d/(t2～t1)(m/s)。
2．对全部各组的实验结果加以统计，用平均值±标准差表示。
注意事项：1．避免蟾蜍体表毒液和血液污染标本，压挤、损伤和用力牵拉标本，不可用金属器械触碰神经干。
2．在操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液，防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。
3．制备标本时，神经纤维应尽可能长一些，将附着于神经干上的结缔组织膜及血管清除干净，但不能损伤神经干。
标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
4．各仪器应妥善接地，仪器之间、标本与电极之间应接触良好。
5．经常滴加任氏液，保持神经标本湿润，但要用滤纸片吸去神经干上过多的任氏液。
神经干不能与标本盒壁相接触，也不要把神经干两端折迭放置在电极上，以免影响动作电位的波形。
6．测定动作电位传导速度时，两对引导电极间的距离应尽可能大。
思考题：1．什么叫刺激伪迹，是怎样发生的？怎样鉴别刺激伪迹和神经干动作电位？2．神经被夹伤或经KCl溶液处理后，动作电位的第二相为何消失?3．神经干动作电位与刺激强度有何关系？它与神经动作电位的“全或无”特性有矛盾吗？为什么?4．引导电极调换位置后，动作电位波形有无变化?为什么?5．为什么不用从刺激电极的阴极到第一个引导电极的距离除以t1直接计算神经动作电位传导速度?用一对引导电极能否测定神经动作电位传导速度?6．根据你的结果可推断蛙的坐骨神经干中的神经纤维主要属于那种类型的？7．将神经干标本置于4℃的任氏液中浸泡后，神经冲动的传导速度有何改变?为什么?附：1．刺激伪迹逐渐增大刺激强度时，在屏幕的左侧基线上第一个波即为伪迹，其波形、幅度、宽度和位置可分别由刺激器的强度、延迟和渡宽调节钮控制。
它的产生机制有二，一是通过刺激电极与记录电极之间的电容偶合进入放大器，二是通过细胞膜的电缆效应偶合进入放大器。
伪迹可以做为刺激时刻的标志和刺激器、示波器功能状态的标志。
但伪迹太大，会使动作电位发生畸变。
2．细胞膜的电缆学说细胞外液和细胞内液均为含电解质的液体，可以看作为两个导体引起的膜电位改变时，发现：在电源附近电位上升快，达到的最高电位也较大；离开电源越远，则不但电位上升的慢，而且最终的最高电位也较低。
电位改变变慢，是膜电容引起的后果；电位依距离变小，是膜外电阻、膜电阻及膜内电阻引起的后果。
3．双极记录法本实验使用的记录方法为双极记录法，所记录到的电位变化，为两个电极之间的相对电位，并不代表电极下的真实电位，而是其代数和。
另外，本法又是一种细胞外记录的方法，测得的电位也不代表细胞内的电位，只反映了膜外电位的改变。
4．刺激的极性法则以直流电作用于神经时，在通电、断电时均可产生兴奋，而且通电时的兴奋发生在阴极，断电时的兴奋发生在阳极，这称为极性法则。
在直流电通电过程中，阴极下神经组织的兴奋性升高，称为阴极电紧张。
是通电时发生兴奋的原因；阳极下的兴奋性降低，称为阳极电紧张．断电后，阴极下的兴奋性降低，称为阴极后压抑；阳极下的兴奋性升高，称为阳极后加强，是断电时发生兴奋的原因，通常所说的刺激发生在阴极下，刺激时阴极下的外向电流，指的就是通电的情况而言的。
5．记录介质通常所说双相动作电位的波形，其记录介质是空气或油。
若神经干浸在细胞外液中，则记录到的波形为三相波。
因此实验时，不可在神经干上滴过多的任氏液。
实验四：蛙类离体心脏灌流及药物影响（综合设计性实验）实验目的：1．学习离体蛙心灌流的实验方法，了解离体器官的研究方法。
2．观察内环境理化因素相对稳定对维持心脏正常节律性活动的重要作用，了解肾上腺素、乙酰胆碱等激素、神经递质对心脏活动的调节意义。
3．观察强心甙、中草药提取物和一些临床治疗药物对离体蛙心的直接作用。
实验原理：心脏正常的节律性活动必须在适宜的理化环境中进行，一旦适宜的环境被破坏，例如酸碱度及离子浓度的急剧改变等，心脏的活动就会受到影响。
在整体内，心脏的活动受自主神经的双重支配，交感神经兴奋时，其末梢释放去甲肾上腺素，使心肌收缩力量增强，心率加快；而迷走神经兴奋时，其末梢释放乙酰胆碱，使心肌收缩力量减弱，心率减慢。
强心甙类药物能够增强心肌收缩能力，减慢心率。
动植物提取物对心脏功能的影响与其内部所含物质的成份有关。
动物与器材：蛙或蟾蜍,蛙心套管,套管夹,支架，双凹夹,滑轮,烧杯,常用手术器械,蛙板,蛙心夹,计算机采集系统,张力传感器,滴管,培养皿,污物缸,纱布,棉线,橡皮泥,任氏液,0.65% NaCl，1%CaCl2，1%KCl，3%乳酸，2.5%NaHCO，1:5000肾上腺,1;10000乙酰胆碱,300U/ml肝素，强心药物，中草药提取物等等。
方法与步骤：1．取一只蛙或蟾蜍,双毁髓后背位于蜡盘中,仔细识别心脏周围的大血管。
在左动脉下方穿一线,于动脉圆锥处结扎,再从左右两动脉下方穿一线,并打一活结备用。
左手提起主动脉上时结扎线,右手用眼科剪再结扎线下方,沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。
取一带线的蛙心夹在心室收缩时夹住心尖。
选择大小适宜的蛙心套管,然后将盛有少量任氏液的斯氏蛙心套管,由开口处插入动脉圆锥.当套管进到大动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,提取蛙心夹连线并使蛙心套管尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进,经动脉瓣插入心室腔内。
此时可见套管中血液冲入套管,并使液面随心脏的波动而上下移动,表明操作成功。
用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。
稳定套管后,轻轻提起备用线,将左右动脉连同插入的套管用双结扎紧(不得漏液),再将结线固定在套管的小玻璃钩上,然后剪断结扎线上方的血管。
轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置,与静脉窦下方剪断有牵连的组织,仅保留静脉窦和心脏联系,使心脏离体。
用任氏液反复冲洗心室内余血,使血管内灌流液不再有残留血液,保持套管内液面高度一致,进行实验。
2．将插好的离体心脏套管固定在支架上,用蛙心夹住少许的心尖部肌肉.再将蛙心尖上的系线绕过一个滑轮与张力传感器相连。
注意:勿使灌流液滴到张力传感器上,调节显示器的心脏收缩的曲线幅度适中。
3．实验观察描计一段正常心搏曲线，注意观察心跳频率和强度以及心脏的收缩、舒张程度。
4. 实验项目设计及结果观察（1）温度对无机离子蛙心活动的影响A、把蛙心套管内任氏液全部换为0.65%NaCl溶液，观察心跳变化。