小鼠-缺氧实验指导(2020)
机能小鼠缺氧实验报告
一、实验目的1. 复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化。
3. 了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 实验器材：缺氧瓶、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、刻度吸管、注射器、剪刀、镊子等3. 实验药品：钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水等四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验1. 将小白鼠放入缺氧瓶中，用钠石灰吸收瓶中的氧气。
2. 观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验1. 将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
3. 亚硝酸中毒性缺氧实验1. 将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠，观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧实验- 实验组小鼠在缺氧瓶中存活时间为90分钟，与对照组相比，呼吸频率明显加快，黏膜和血液颜色呈紫绀。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 实验组小鼠在吸入一氧化碳后，迅速出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
3. 亚硝酸中毒性缺氧实验- 实验组小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠后，出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
六、实验分析1. 缺氧对小鼠的影响主要体现在呼吸系统和中枢神经系统。
2. 乏氧性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧会导致小鼠迅速死亡，亚硝酸中毒性缺氧会导致小鼠出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
3. 影响缺氧耐受性的因素包括缺氧程度、缺氧速度、小鼠个体差异、缺氧瓶的密闭性、钠石灰的吸附能力等。
七、实验结论1. 缺氧会对小鼠的呼吸系统和中枢神经系统造成严重影响，甚至导致死亡。
2. 乏氧性缺氧、一氧化碳中毒性缺氧和亚硝酸中毒性缺氧均可导致小鼠死亡。
小鼠缺氧抢救实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理机能的影响。
2. 探究不同抢救措施对小鼠缺氧状态的影响。
3. 评估不同抢救方法的疗效，为临床抢救提供理论依据。
二、实验原理缺氧是指机体组织因氧供应不足或利用障碍，导致细胞代谢障碍、器官功能损害的一种病理状态。
本实验通过复制小鼠缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理机能的影响，并探究不同抢救措施对小鼠缺氧状态的影响，以期为临床抢救提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：清洁级昆明小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 实验仪器：动物呼吸机、动物血压计、动物心电图仪、显微镜、电子天平等。
3. 实验试剂：生理盐水、氨茶碱、吸氧面罩、氧气瓶等。
四、实验方法1. 将小鼠随机分为A、B、C、D四组，每组10只。
2. A组为缺氧组，将小鼠置于缺氧瓶中，模拟人体高原缺氧环境，观察小鼠生理指标变化。
3. B组为吸氧组，在缺氧状态下给予小鼠吸氧面罩，观察小鼠生理指标变化。
4. C组为氨茶碱组，在缺氧状态下给予小鼠氨茶碱，观察小鼠生理指标变化。
5. D组为对照组，正常饲养，观察小鼠生理指标变化。
6. 每组小鼠分别记录呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标，并进行统计分析。
五、实验结果1. 缺氧组小鼠呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标均明显低于对照组（P<0.05）。
2. 吸氧组小鼠呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标较缺氧组明显改善（P<0.05）。
3. 氨茶碱组小鼠呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标较缺氧组明显改善（P<0.05）。
4. 吸氧组和氨茶碱组小鼠存活率明显高于缺氧组（P<0.05）。
六、讨论1. 缺氧状态下，小鼠生理指标明显下降，表明缺氧对小鼠生理机能造成严重影响。
2. 吸氧和氨茶碱均可有效改善小鼠缺氧状态，提高小鼠存活率。
3. 吸氧通过提高血氧饱和度，缓解缺氧对组织细胞的损伤；氨茶碱通过扩张支气管、缓解平滑肌痉挛，改善通气功能，从而缓解缺氧。
缺氧小鼠观察实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理、行为的影响。
2. 掌握缺氧小鼠的观察方法及实验操作技能。
3. 分析缺氧对小鼠生理、行为的影响，为缺氧相关疾病的研究提供实验依据。
二、实验原理缺氧是指组织、细胞因供氧不足而发生的生理、生化反应。
缺氧小鼠实验是通过人为制造缺氧环境，观察缺氧对小鼠生理、行为的影响，从而了解缺氧对生物体的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄不限。
2. 仪器：缺氧箱、天平、显微镜、解剖镜、记号笔、记录纸等。
3. 药品与试剂：生理盐水、福尔马林固定液、苏木精-伊红染色液等。
四、实验方法1. 实验分组：将小鼠随机分为缺氧组和对照组，每组10只。
2. 缺氧处理：将缺氧组小鼠放入缺氧箱中，箱内氧浓度为5%左右，持续4小时。
3. 对照组小鼠正常饲养。
4. 观察指标：（1）生理指标：观察小鼠呼吸、心率、体温等生理指标。
（2）行为指标：观察小鼠活动能力、运动协调性、睡眠等行为表现。
（3）组织学观察：取小鼠大脑、心脏、肝脏等组织，进行苏木精-伊红染色，观察细胞结构变化。
5. 数据记录与分析：对观察到的指标进行记录，并进行统计学分析。
五、实验结果1. 生理指标：缺氧组小鼠呼吸频率、心率、体温均低于对照组，且有显著性差异（P<0.05）。
2. 行为指标：缺氧组小鼠活动能力、运动协调性明显下降，睡眠时间延长，与对照组相比有显著性差异（P<0.05）。
3. 组织学观察：缺氧组小鼠大脑、心脏、肝脏等组织细胞出现肿胀、空泡变性、核固缩等细胞损伤现象，与对照组相比有显著性差异（P<0.05）。
六、讨论1. 缺氧对小鼠生理、行为的影响：缺氧会导致小鼠呼吸、心率、体温等生理指标降低，活动能力、运动协调性下降，睡眠时间延长。
这说明缺氧对小鼠生理、行为有显著影响。
2. 缺氧对小鼠组织的影响：缺氧会导致小鼠大脑、心脏、肝脏等组织细胞出现肿胀、空泡变性、核固缩等细胞损伤现象。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告一、实验目的本次实验旨在通过对小鼠进行不同类型的缺氧处理，观察和记录小鼠在缺氧环境中的生理反应和行为变化，深入了解缺氧对生物体的影响机制。
二、实验材料1、实验动物：健康昆明种小鼠若干只，体重 18 22g，雌雄不拘。
2、实验器材：密闭广口瓶、钠石灰、测氧仪、计时器、解剖器械等。
3、实验药品：生理盐水。
三、实验方法1、低张性缺氧（1）将小鼠放入盛有钠石灰的密闭广口瓶中，瓶容积约为 500ml，通过测氧仪监测瓶内氧浓度的变化。
（2）观察并记录小鼠的呼吸频率、深度、行为表现（如活动情况、精神状态）以及存活时间。
2、血液性缺氧（1）给部分小鼠腹腔注射亚硝酸盐溶液，剂量为 01ml/10g，建立血液性缺氧模型。
（2）观察注射后小鼠的皮肤黏膜颜色变化、呼吸状态和行为表现，并记录存活时间。
3、组织性缺氧（1）给另一部分小鼠腹腔注射氰化物溶液，剂量为 01ml/10g，造成组织性缺氧。
（2）同样观察并记录小鼠的各项生理指标和存活时间。
四、实验结果1、低张性缺氧（1）随着瓶内氧气逐渐减少，小鼠呼吸频率加快，深度加深，活动逐渐减少，精神状态变差。
（2）小鼠的存活时间个体之间存在一定差异，平均存活时间约为_____分钟。
2、血液性缺氧（1）注射亚硝酸盐溶液后，小鼠皮肤黏膜呈现青紫色，呼吸变得急促但浅弱。
（2）存活时间相对较短，平均约为_____分钟。
3、组织性缺氧（1）注射氰化物溶液后，小鼠很快出现呼吸困难，痉挛等症状。
（2）存活时间最短，平均仅为_____分钟。
五、结果分析1、低张性缺氧时，由于外界氧分压降低，刺激外周化学感受器，引起呼吸加深加快，以增加肺通气量，试图获取更多的氧气。
但随着缺氧时间延长，机体能量供应不足，导致活动减少和精神萎靡，最终因严重缺氧而死亡。
2、血液性缺氧是由于血红蛋白的性质改变，使其携氧能力下降，导致组织缺氧。
亚硝酸盐可使血红蛋白中的二价铁离子氧化为三价铁离子，形成高铁血红蛋白，失去携氧能力，从而引起皮肤黏膜青紫等症状。
小鼠 缺氧实验指导
【实验目得】
１。掌握各型(低张性与血液性)缺氧动物模型复制得方法,了解缺氧得分类。
2。观察不同类型缺氧时机体得变化(活动状况、呼吸、粘膜及肝脏得颜色)及存活时间;
３.观察不同年龄与中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性得影响,理解条件因素在缺氧发病中得重要性。
４.掌握各型缺氧得发生机制及特点、
５。了解常见血液性缺氧得解救措施。
【实验步骤】
1。低张性缺氧
(１)取体重接近得成年小鼠２只,称重后分别放入盛有钠石灰(大约４～5 g,以双层纱布包裹)得两个缺氧瓶(A瓶与B瓶)中,Ａ瓶不盖胶塞,暴露于空气中,B瓶用胶塞塞紧瓶口。
(２)比较观察2只小鼠得活动状况、皮肤(口唇)黏膜与肝脏颜色、呼吸频率(次数/10ｓ)与深度,记录小鼠出现抽搐得时间及存活时间。
(3)比较观察3只小鼠得活动状况、皮肤(口唇)黏膜与呼吸频率(次数/1０ｓ)与深度,记录小鼠出现抽搐得时间及存活时间。
表二、不同中枢状态对低张性缺氧耐受性得影响
分组
缺氧前活动状况、
呼吸、唇色
缺氧时活动状况、
呼吸、唇色
出现抽搐得时间
(ｓ)
存活时间
(ｓ)
尼可刹米组
氯丙嗪组
生理盐水组
4。CＯ中毒性缺氧
(１)取草酸3ｍl加入ＣＯ发生装置试管内,再加入浓硫酸2~3ml,塞紧试管。点燃酒精灯置试管下缓慢加热可见试管内有气泡产生即可,将CO发生装置连接气囊袋收集产生得CO备用、
(4)解剖CO中毒小鼠得肝脏,观察记录其颜色变化、
2.亚硝酸钠中毒性缺氧
(1)取成年小鼠2只,称重,观察其正常表现后,腹腔均注射5％亚硝酸钠溶液０。1ml／10ｇ后,一只小鼠立即腹腔注射1%亚甲兰0、1 mｌ／10g,另一小鼠立即腹腔注射生理盐水０。１ml／1０g。
小鼠的缺氧实验报告
小鼠的缺氧实验报告实验报告：小鼠的缺氧实验一、实验目的本次实验旨在研究小鼠在缺氧状态下的生理变化及其对身体的影响。
二、实验材料和方法1. 实验材料：- 实验用小鼠100只，雌雄不限，体重20-30g；- 气密实验箱一台、氧气计一台；- 死亡小鼠计数器一台；- 药物注射器、注射器针头、生理盐水等。
2. 实验方法：(1) 实验用小鼠随机分为四组，每组25只。
(2) 一组为正常对照组，另三组分别为缺氧组，缺氧+对照药组和缺氧+实验药组。
(3) 实验用小鼠放置于气密实验箱内，实验开始时给予缺氧气体（氧气浓度<10%），缺氧持续60分钟。
(4) 对照组仅给予常规生理盐水（0.9%NaCl），另外两组分别注射对照药和实验药。
(5) 观察小鼠在缺氧状态下的生理变化，如呼吸率、心率、体温等，测定血氧含量。
(6) 实验结束后记录存活率和死亡小鼠数量。
三、实验结果（1）生理变化：在缺氧状态下，实验用小鼠呼吸加快、心率加快、体温下降。
观察到缺氧组小鼠表现出明显的缺氧症状，如昏迷、翻滚、抽搐等，对照组和实验药组中未观察到明显症状。
（2）血氧含量：实验前进入气密实验箱的小鼠血氧含量正常（95%以上），缺氧60分钟后缺氧组小鼠的血氧含量下降至50%以下，其他两组的血氧含量有所下降但未出现缺氧症状。
（3）存活率：缺氧组小鼠存活率仅为20%，对照组和实验药组存活率分别为80%和60%。
四、实验分析通过本次实验，我们发现小鼠在缺氧状态下会出现生理变化以及严重的缺氧症状，同时血氧含量也会明显下降。
对照组和实验药组中未出现明显症状的小鼠存活率高于缺氧组，说明药物可以缓解缺氧引起的损伤。
五、结论小鼠在缺氧状态下会出现严重的生理变化和缺氧症状，引起死亡风险较高。
对照药和实验药可以缓解这种状况，提高小鼠的存活率，为缺氧症状的治疗提供了一定的参考。
六、参考文献1. 刘建民. 缺氧再灌注损伤的中药防治机制与研究方法[M].科学出版社, 2005.2. Ohta Y, Kitamura N, Okamoto Y, et al. Exercise training interventions for patients with chronic obstructive pulmonary disease[J]. J Phys Ther Sci, 2015, 27(10): 3213-9.3. Weir J, Wilcox J, Albert-Rosenberg R, et al. Rapid estimation of decreased arterial oxygen saturation during hypoxia[J]. Respir Artifial Organs, 2017, 40(2): 126-30.4. Xie H, Su W, Xie J, et al. Effect of hOx1r-rscFv-adriamycin fusion protein on the prevention of hypoxia-induced apoptosis in H9c2 cells[J]. J Cardiovasc Thorac Res, 2014, 6(1): 31-7.。
小鼠缺氧病理实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠缺氧模型，了解缺氧对机体的影响。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统及血液的影响。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体在供氧不足的情况下，组织细胞无法获得足够的氧气进行代谢，导致能量代谢障碍，引起一系列生理和病理变化。
本实验通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，以期为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠10只，体重20-25克。
2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、显微镜、离心机、电子天平等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠、氰化钾、钠石灰等。
四、实验方法1. 缺氧模型制备（1）低张性缺氧：将小白鼠放入缺氧箱中，箱内氧气浓度控制在5%以下，持续30分钟。
（2）一氧化碳中毒性缺氧：将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，持续吸入一氧化碳30分钟。
（3）氰化钾中毒性缺氧：将小白鼠腹腔注射氰化钾50mg/kg，观察动物中毒症状。
2. 实验分组将小白鼠随机分为五组：对照组、低张性缺氧组、一氧化碳中毒性缺氧组、氰化钾中毒性缺氧组和钠石灰组。
3. 指标检测（1）呼吸频率：观察并记录实验前后小鼠的呼吸频率。
（2）中枢神经系统功能：观察并记录小鼠的行为变化，如兴奋、抑制、抽搐等。
（3）血液指标：检测小鼠血红蛋白、血氧饱和度等指标。
（4）组织学观察：取小鼠脑组织、肺组织等，进行光镜和电镜观察。
五、实验结果1. 低张性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，表现为呼吸困难。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现兴奋、抑制等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：脑组织出现水肿、神经元变性等。
2. 一氧化碳中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现昏迷、抽搐等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：肺组织出现水肿、肺泡出血等。
3. 氰化钾中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
小鼠缺氧实验报告步骤
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 掌握缺氧实验的操作方法。
3. 分析缺氧对小鼠生理指标的影响。
二、实验原理缺氧是指机体在一定时间内，由于供氧不足而导致的生理功能障碍。
本实验通过建立小鼠缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理指标的影响，从而了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：昆明种小鼠，体重18-22g，雌雄不限。
2. 仪器设备：缺氧箱、电子秤、离心机、显微镜、酶标仪等。
3. 试剂：生理盐水、血红蛋白测定试剂盒、血糖测定试剂盒、乳酸测定试剂盒等。
四、实验步骤1. 实验动物分组将昆明种小鼠随机分为三组，每组10只，分别为正常对照组、缺氧模型组和缺氧干预组。
2. 缺氧模型建立（1）将缺氧箱内氧气浓度调至10%。
（2）将缺氧模型组小鼠放入缺氧箱内，保持箱内氧气浓度为10%，持续2小时。
（3）缺氧干预组小鼠在缺氧箱内放入时，给予氧气吸入，保持氧气浓度为21%，持续2小时。
3. 实验指标检测（1）血红蛋白测定：采用比色法，测定各组小鼠血红蛋白含量。
（2）血糖测定：采用葡萄糖氧化酶法，测定各组小鼠血糖水平。
（3）乳酸测定：采用乳酸脱氢酶法，测定各组小鼠乳酸水平。
（4）组织切片：取小鼠肝脏组织，进行HE染色，观察组织形态学变化。
4. 数据分析采用SPSS软件对实验数据进行统计分析，比较各组小鼠血红蛋白、血糖、乳酸水平及肝脏组织形态学差异。
五、实验结果1. 血红蛋白水平：缺氧模型组小鼠血红蛋白水平显著低于正常对照组和缺氧干预组（P<0.05）。
2. 血糖水平：缺氧模型组小鼠血糖水平显著高于正常对照组和缺氧干预组（P<0.05）。
3. 乳酸水平：缺氧模型组小鼠乳酸水平显著高于正常对照组和缺氧干预组（P<0.05）。
4. 肝脏组织形态学：缺氧模型组小鼠肝脏组织出现明显水肿、脂肪变性，缺氧干预组小鼠肝脏组织形态学改善。
六、实验结论1. 缺氧可导致小鼠血红蛋白、血糖、乳酸水平升高，提示缺氧对小鼠生理功能有显著影响。
小鼠缺氧实验报告结论
一、实验背景缺氧是生物体在氧气供应不足的情况下出现的一种生理状态，它会对生物体的生命活动产生严重影响。
为了研究缺氧对小鼠生理机能的影响，本实验采用模拟缺氧环境，观察小鼠在不同缺氧条件下的生理反应，探讨缺氧对小鼠的影响。
二、实验目的1. 观察小鼠在缺氧环境下的生理反应；2. 探讨缺氧对小鼠生理机能的影响；3. 为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料与方法1. 实验动物：健康成年雄性小鼠，体重（20±2）g，共40只。
2. 实验设备：缺氧箱、生理记录仪、电子天平、解剖显微镜等。
3. 实验方法：（1）将40只小鼠随机分为4组，每组10只，分别标记为A组、B组、C组和D组。
（2）A组为对照组，正常饲养，不进行缺氧处理。
（3）B组为轻度缺氧组，将小鼠放入缺氧箱中，模拟海拔3000m的缺氧环境，持续处理2小时。
（4）C组为中度缺氧组，将小鼠放入缺氧箱中，模拟海拔5000m的缺氧环境，持续处理2小时。
（5）D组为重度缺氧组，将小鼠放入缺氧箱中，模拟海拔8000m的缺氧环境，持续处理2小时。
（6）在缺氧处理前后，分别记录各组小鼠的体重、心率、呼吸频率、血氧饱和度等生理指标。
四、实验结果1. 体重变化：在缺氧处理后，各组小鼠体重均出现下降趋势，且随缺氧程度加重，体重下降幅度越大。
2. 心率变化：在缺氧处理后，各组小鼠心率均出现升高趋势，且随缺氧程度加重，心率升高幅度越大。
3. 呼吸频率变化：在缺氧处理后，各组小鼠呼吸频率均出现升高趋势，且随缺氧程度加重，呼吸频率升高幅度越大。
4. 血氧饱和度变化：在缺氧处理后，各组小鼠血氧饱和度均出现下降趋势，且随缺氧程度加重，血氧饱和度下降幅度越大。
五、实验结论1. 缺氧会对小鼠的生理机能产生显著影响，表现为体重下降、心率升高、呼吸频率升高和血氧饱和度下降。
2. 随着缺氧程度的加重，小鼠的生理反应越明显，说明缺氧对小鼠的生理机能损害程度越大。
3. 本实验为临床治疗缺氧相关疾病提供了理论依据，提示在缺氧环境下，应采取有效措施保障人体生理机能的稳定。
小鼠-缺氧实验指导（2020）
⼩⿏-缺氧实验指导（2020）实验三实验性缺氧【实验⽬的】1.掌握各型（低张性和⾎液性）缺氧动物模型复制的⽅法，了解缺氧的分类。
2.观察不同类型缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜⾊）及存活时间；3.观察不同年龄和中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性的影响，理解条件因素在缺氧发病中的重要性。
4.掌握各型缺氧的发⽣机制及特点。
5.了解常见⾎液性缺氧的解救措施。
【实验原理】导致低张性缺氧最常见的原因包括吸⼊⽓氧分压过低和外呼吸功能障碍。
本实验将⼩⿏放置于加⼊钠⽯灰的密闭⼴⼝瓶内，随着⼩⿏的呼吸消耗，⼴⼝瓶中氧⽓含量逐渐降低，模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。
观察低张性缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜⾊）及存活时间。
影响机体对缺氧耐受性的因素很多，除缺氧时间、速度、类型和程度外，还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。
本实验通过应⽤药物改变⼩⿏的中枢兴奋状态及选择不同年龄的⼩⿏，观察不同条件下低张性缺氧⼩⿏的活动状况和存活时间。
⾎液性缺氧是由于⾎红蛋⽩的数量减少或性质改变从⽽降低⾎液携氧能⼒或⾎红蛋⽩结合的氧不易释出所引起的缺氧。
本实验将复制两种常见⾎液性缺氧模型：⼀氧化碳中毒和亚硝酸盐中毒引起的⾎液性缺氧。
⼀氧化碳可与⾎红蛋⽩结合，形成碳氧⾎红蛋⽩⽽失去结合氧的能⼒，从⽽导致⾎液携氧能⼒降低⽽引起机体缺氧。
亚硝酸钠是强氧化剂，可使⾎红蛋⽩分⼦内⼆价Fe2+氧化成为三价Fe3+⽽形成⾼铁⾎红蛋⽩，⾼铁⾎红蛋⽩同样失去携氧能⼒⽽引起⾎液性缺氧。
【实验对象】成年⼩⿏（性别、年龄、体重近似、雌雄不拘）、新⽣⼩⿏【实验药品和器材】3.75%尼可刹⽶、0.25%氯丙嗪、⽣理盐⽔、钠⽯灰、5%亚硝酸钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。
缺氧瓶带⽓压平衡装置、耗氧量测定装置（图1）、1 ml注射器、5 ml注射器、电⼦天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、⼩烧杯、酒精灯、⽕柴、CO发⽣装置（图2）、⽓囊袋。
机能实验报告小鼠缺氧
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 掌握缺氧实验的基本操作方法。
3. 分析缺氧条件下小鼠生理指标的变化。
二、实验原理缺氧是指组织细胞在氧气供应不足的情况下，不能正常进行有氧代谢，导致能量供应不足，进而引起一系列生理和生化反应。
本实验通过人为制造缺氧环境，观察小鼠在缺氧条件下的生理反应，以探讨缺氧对小鼠生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄不限。
2. 实验仪器：缺氧装置、电子天平、氧气传感器、显微镜、酶标仪等。
3. 实验试剂：生理盐水、碘酊、酒精、NaOH等。
四、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 缺氧处理：将实验组小鼠放入缺氧装置中，进行缺氧处理，时间为2小时。
对照组小鼠在正常环境中饲养。
3. 样本采集：缺氧处理结束后，分别采集实验组和对照组小鼠的血液、肝脏、肾脏、大脑等组织样本。
4. 生理指标检测：采用酶标仪检测小鼠血液中的血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性等指标；采用显微镜观察小鼠组织切片，观察细胞形态变化；采用氧气传感器检测小鼠呼吸频率和呼吸幅度。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标差异。
五、实验结果1. 血液指标：实验组小鼠血红蛋白含量显著低于对照组，乳酸脱氢酶活性显著高于对照组。
2. 组织切片观察：实验组小鼠肝脏、肾脏、大脑等组织切片显示细胞肿胀、空泡化等病理变化，对照组细胞形态正常。
3. 呼吸指标：实验组小鼠呼吸频率和呼吸幅度均显著低于对照组。
六、实验讨论1. 缺氧对小鼠生理功能的影响：缺氧条件下，小鼠血红蛋白含量降低，乳酸脱氢酶活性升高，表明缺氧导致小鼠有氧代谢受阻，能量供应不足。
同时，组织切片观察发现细胞出现肿胀、空泡化等病理变化，进一步证实缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 缺氧处理时间的选择：本实验中缺氧处理时间为2小时，根据实验结果，缺氧时间过长可能导致小鼠死亡。
小鼠缺氧实验实验报告
1. 观察小鼠在缺氧条件下的生理反应；2. 探讨缺氧对小鼠生理功能的影响；3. 为临床医学研究提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：健康昆明小鼠10只，体重（20±2）g；2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、生理记录仪、电子天平、手术器械等；3. 实验试剂：生理盐水、麻醉剂等。
三、实验方法1. 实验分组：将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组；2. 缺氧处理：将A组小鼠放入缺氧箱中，模拟缺氧环境，B组小鼠作为对照组，置于正常环境中；3. 实验时间：缺氧处理时间为2小时；4. 数据收集：在缺氧处理前后，记录小鼠的体重、呼吸频率、心率、血氧饱和度等生理指标；5. 数据分析：对实验数据进行统计学分析，比较A组和B组小鼠的生理指标差异。
四、实验结果1. 体重变化：缺氧处理后，A组小鼠体重明显下降，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）；2. 呼吸频率：缺氧处理后，A组小鼠呼吸频率明显增加，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）；3. 心率：缺氧处理后，A组小鼠心率明显加快，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）；4. 血氧饱和度：缺氧处理后，A组小鼠血氧饱和度明显下降，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
1. 缺氧对小鼠生理功能的影响：本实验结果显示，缺氧处理后，小鼠的体重、呼吸频率、心率和血氧饱和度等生理指标均发生了明显变化。
这表明缺氧对小鼠的生理功能产生了显著影响；2. 缺氧机制探讨：缺氧导致小鼠体内氧气供应不足，进而影响细胞的能量代谢和功能。
缺氧时，细胞内乳酸堆积，导致细胞内酸中毒，进而影响细胞功能和生命活动；3. 临床意义：本实验为临床医学研究提供了实验依据。
在临床工作中，了解缺氧对机体的影响，有助于预防和治疗因缺氧引起的疾病。
六、实验结论本实验结果表明，缺氧对小鼠的生理功能产生了显著影响，表现为体重下降、呼吸频率增加、心率加快和血氧饱和度下降。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告一、实验目的本次实验旨在研究小鼠在不同缺氧条件下的生理反应和耐受性，以深入了解缺氧对生物体的影响机制。
二、实验原理缺氧是指组织或细胞得不到足够的氧供应或不能充分利用氧的情况。
当机体处于缺氧状态时，会通过一系列生理调节机制来维持生命活动，但如果缺氧程度严重或持续时间过长，可能会导致细胞损伤甚至死亡。
三、实验材料1、实验动物：健康成年小鼠若干只。
2、实验器材：密闭容器（如广口瓶）、测氧仪、计时器、解剖器械等。
3、实验药品：生理盐水。
四、实验方法1、低氧环境模拟（1）将小鼠分别放入装有一定量氮气和氧气混合气体的密闭容器中，通过调节氮气和氧气的比例来模拟不同程度的低氧环境。
（2）使用测氧仪监测容器内的氧气浓度，确保达到预定的低氧水平。
2、观察指标（1）在实验过程中，密切观察小鼠的行为表现，如活动情况、呼吸频率、精神状态等。
（2）每隔一定时间记录小鼠的存活时间。
3、实验分组（1）设立正常对照组，小鼠置于正常氧气环境中。
（2）设置不同程度低氧组，如轻度低氧组、中度低氧组和重度低氧组。
4、实验操作（1）将小鼠轻轻放入实验容器中，迅速封闭容器，开始计时。
（2）观察并记录小鼠在不同缺氧条件下的各项指标。
五、实验结果1、正常对照组小鼠在正常氧气环境中表现活跃，呼吸平稳，精神状态良好。
2、轻度低氧组小鼠在开始阶段活动略有减少，但仍能保持相对正常的状态，存活时间较长。
3、中度低氧组小鼠活动明显减少，呼吸频率加快，出现焦虑不安的表现，存活时间较轻度低氧组缩短。
4、重度低氧组小鼠很快出现呼吸困难、抽搐等症状，存活时间最短。
六、实验分析1、从行为表现来看，随着缺氧程度的加重，小鼠的活动能力和精神状态逐渐变差。
这是因为缺氧导致细胞能量代谢障碍，影响了神经系统和肌肉的功能。
2、呼吸频率的变化反映了小鼠对缺氧的代偿反应。
在轻度低氧时，呼吸频率可能会有所增加，以获取更多的氧气。
但在重度低氧时，呼吸功能严重受损，无法有效代偿。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告缺氧是指机体在一定时间内供氧不足的状态，可以导致多种疾病的发生和发展。
为了探究缺氧对机体的影响以及相关的生理和病理机制，科学家常常使用小鼠进行缺氧实验。
一、实验目的本次实验旨在观察小鼠在缺氧条件下的生理和行为变化，进一步了解缺氧对机体的影响，以期为进一步研究缺氧相关疾病的治疗提供依据。
二、实验方法1.动物准备：使用健康正常的小鼠，同龄、同性别、同营养状况的小鼠群体进行实验。
2.实验装置：使用专门的缺氧实验箱，箱内参数可调节，符合实验要求。
3.实验组和对照组设立：将小鼠随机分为实验组和对照组，实验组暴露在缺氧条件下，对照组在正常氧浓度的环境中进行实验。
4.数据收集：观察记录小鼠的行为表现，包括活动性、进食量等。
并根据实验设定时间点，收集相关生理指标，如血氧饱和度、血流动力学参数等。
三、实验结果1.行为表现：实验组的小鼠在缺氧条件下表现出不同程度的活动减少，显得较为呆滞。
进食量明显下降，体重也出现了一定程度的减少。
2.生理指标：实验组小鼠的血氧饱和度明显下降，与对照组相比存在显著差异。
血流动力学参数中，心率和体温明显上升，而血压则有所下降。
3.组织损伤：进一步观察了实验组小鼠的组织切片，发现缺氧条件下，肺组织受损较为明显，包括气道炎症反应、肺泡壁增厚等病理变化。
四、实验讨论1.生理适应：小鼠暴露在缺氧环境下，由于机体的生理适应能力，能通过一系列生化反应调节呼吸、心血管等系统，以保持组织器官的氧供应。
然而，长期或重度的缺氧仍然会对机体功能产生较大影响。
2.氧感受器：缺氧条件下，机体会通过氧感受器激活一系列信号通路，以调节呼吸和心血管系统。
进而影响中枢神经系统和其它器官的功能。
3.炎症反应：缺氧会导致细胞一氧化氮合成途径骤增，并激活炎症反应。
在实验中观察到的肺组织病理变化正是炎症反应的表现之一。
4.缺氧相关疾病：缺氧是多种疾病的共同特征，如慢性阻塞性肺疾病、顽固性高血压等。
本实验结果对进一步研究上述疾病的发病机制和治疗方法具有一定的指导意义。
小鼠缺氧实验的实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理和生化指标的影响。
2. 探讨缺氧对小鼠呼吸、循环和神经系统的作用。
3. 为进一步研究缺氧对生物体的生理影响提供实验依据。
二、实验原理缺氧是指机体在供氧不足的情况下，组织细胞不能正常进行有氧代谢，导致能量产生不足，进而影响细胞功能。
本实验通过模拟缺氧环境，观察小鼠在缺氧条件下的生理和生化指标变化，以期为缺氧对生物体的研究提供实验依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年小鼠10只，体重20-25g。
2. 仪器设备：动物呼吸机、血气分析仪、显微镜、离心机、酶标仪等。
3. 试剂：血红蛋白测定试剂盒、血清乳酸测定试剂盒、血清肌酸激酶测定试剂盒等。
四、实验方法1. 将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组。
2. A组为缺氧组，B组为对照组。
3. 缺氧组小鼠通过动物呼吸机模拟缺氧环境，将氧浓度降低至10%以下，持续2小时；对照组小鼠在正常氧浓度下进行相同时间段的观察。
4. 缺氧和对照组小鼠在实验前后分别进行以下指标的检测：a. 血红蛋白含量测定b. 血清乳酸含量测定c. 血清肌酸激酶含量测定d. 呼吸频率、心率、血压等生理指标观察e. 神经系统功能观察五、实验结果1. 血红蛋白含量：缺氧组小鼠血红蛋白含量较对照组显著降低（P<0.05）。
2. 血清乳酸含量：缺氧组小鼠血清乳酸含量较对照组显著升高（P<0.05）。
3. 血清肌酸激酶含量：缺氧组小鼠血清肌酸激酶含量较对照组显著升高（P<0.05）。
4. 生理指标：缺氧组小鼠呼吸频率、心率、血压等生理指标较对照组显著升高（P<0.05）。
5. 神经系统功能：缺氧组小鼠出现步态不稳、反应迟钝等神经系统功能障碍。
六、实验讨论1. 缺氧对小鼠血红蛋白含量的影响：血红蛋白是氧的载体，缺氧环境下血红蛋白含量降低，可能导致机体氧输送能力下降。
2. 缺氧对小鼠血清乳酸含量的影响：缺氧环境下，机体无法进行正常的有氧代谢，导致无氧酵解增强，乳酸生成增多。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告缺氧是指由于各种原因使人体内氧气供应不足的情况，一定程度上有害于生命健康。
在科学研究中，通过对小鼠进行缺氧实验，可以更好地了解缺氧的生理学效应以及应对方法。
本文将介绍一个小鼠缺氧实验的基本流程和结果分析。
实验方法1. 实验动物本实验使用12只2-3月龄的小鼠，体重在20-25g之间。
小鼠是实验动物中最为常用的种类之一，其生理特征与人体较为接近，这也是选择小鼠作为实验动物的原因之一。
2. 组织样本制备将小鼠放置在缺氧室中，实行8小时长期缺氧训练，然后立即用三氯乙酸酚麻醉动物。
随后，取出小鼠大脑、心脏和肝脏等器官，将其冰冻保存，以备后续组织样本制备。
3. RT-PCR分析通过RT-PCR反应体系，提取所需组织样本中的RNA。
随后运用高保真度反转录酶进行反转录，获得相应的cDNA模板。
根据所需基因及其引物调整试剂体系，进行PCR扩增反应。
扩增结束后，取样本进行凝胶电泳检测，分析其PCR扩增产物的特征和大小，以判断该基因的表达情况。
实验结果1. 缺氧训练引起小鼠组织缺氧损伤缺氧训练后，小鼠被发现缺氧受损明显，心脏等器官出现不同程度的缺氧损伤，包括细胞膜破损，线粒体肿胀、减少和形态改变等。
同时，高浓度染料染色显示，组织细胞核周围空隙的体积显著增大，这也表明缺氧训练引起了细胞凋亡和坏死。
2. 缺氧训练重构小鼠的基因表达谱RT-PCR分析结果显示，在缺氧训练后，小鼠的基因表达谱出现了显著变化。
在实验中选择的神经元特异性烯化酶（NeuN）和中性粒细胞介素-1β（IL-1β）基因的表达水平均有所变化。
其表达水平明显下降，表明大脑和心脏细胞缺氧损伤后，神经元的表达产物发生异常变化，进而影响了细胞内环境进一步发生的改变。
3. 缺氧训练影响小鼠免疫系统实验后，采用血清免疫学试验探究缺氧训练对小鼠免疫系统的影响，结果表明，缺氧训练对小鼠免疫系统造成了一定程度的负面影响，如分泌免疫球蛋白（IgG）的水平显著下降。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告小鼠缺氧实验实验报告引言：缺氧是指细胞或组织在供氧不足的条件下进行代谢活动。
缺氧对生物体的影响巨大，不仅会导致细胞功能紊乱，还可能引发疾病的发生和发展。
因此，研究缺氧对生物体的影响，对于深入了解细胞生理学和疾病机制具有重要意义。
本实验旨在通过小鼠缺氧实验，探究缺氧对小鼠的生理和生化指标的影响，为进一步研究缺氧相关疾病提供实验基础。
材料与方法：1. 实验动物：选用健康雄性小鼠，体重在20-30g之间。
2. 实验组与对照组：将小鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
3. 缺氧处理：实验组小鼠置于缺氧箱中，通过控制氧气浓度为10%来模拟缺氧环境，持续24小时。
4. 对照组处理：对照组小鼠置于普通环境中，正常呼吸空气，持续24小时。
5. 检测指标：在实验结束后，采集小鼠血液和组织样本，进行相关指标的检测。
结果与讨论：1. 血氧饱和度：实验组小鼠的血氧饱和度明显降低，平均值为85%，而对照组小鼠的血氧饱和度为98%。
这表明实验组小鼠在缺氧环境下无法获得足够的氧气供应，导致血氧饱和度下降。
2. 血液指标：实验组小鼠的红细胞计数、血红蛋白浓度和红细胞比容均显著增加，而白细胞计数则有所下降。
这可能是机体对缺氧的适应性反应，通过增加红细胞数量和血红蛋白浓度来提高氧气的运输能力。
3. 组织指标：实验组小鼠的心肌组织中乳酸脱氢酶（LDH）活性明显升高，而丙氨酸氨基转移酶（ALT）和天门冬氨酸氨基转移酶（AST）活性无明显变化。
这表明缺氧引起了心肌细胞的损伤，并导致乳酸蓄积。
结论：通过小鼠缺氧实验，我们发现缺氧对小鼠的生理和生化指标产生了明显影响。
缺氧导致血氧饱和度下降，红细胞计数和血红蛋白浓度增加，白细胞计数下降。
此外，心肌组织中LDH活性升高，提示心肌细胞受到缺氧的损伤。
这些结果表明缺氧对生物体的影响是多方面的，涉及到细胞代谢、免疫调节和组织损伤等方面。
进一步研究缺氧对生物体的影响机制，有助于揭示缺氧相关疾病的发生和发展机制，为预防和治疗这些疾病提供新的思路和方法。
小鼠缺氧的实验报告
小鼠缺氧的实验报告小鼠缺氧的实验报告引言：缺氧是指细胞或组织在供氧不足的情况下所处的状态。
缺氧对生物体的生理功能和代谢过程产生了重要影响，因此，研究缺氧对生物体的影响具有重要意义。
本实验旨在通过对小鼠进行缺氧处理，观察其生理和行为的变化，以探究缺氧对小鼠的影响。
材料与方法：1. 实验动物：使用12只健康的雄性小鼠，体重在20-25克之间。
2. 实验设备：缺氧箱、氧气浓度检测仪、行为观察系统。
3. 实验组与对照组：随机将小鼠分为实验组和对照组，每组6只。
4. 实验过程：a. 实验组：将6只小鼠置于缺氧箱中，控制氧气浓度在8%左右，连续缺氧6小时。
b. 对照组：将6只小鼠置于正常氧气浓度的环境中，作为对照组，与实验组同时进行。
c. 观测指标：记录小鼠的行为变化、体重变化和呼吸频率。
结果与讨论：1. 行为观察：a. 实验组小鼠在缺氧处理后表现出明显的行为异常，包括活动减少、运动迟缓、食欲减退等。
b. 对照组小鼠的行为表现正常，没有明显的异常现象。
2. 体重变化：a. 实验组小鼠在缺氧处理后体重明显下降，平均下降了10%左右。
b. 对照组小鼠的体重变化不明显，与实验组相比差异不大。
3. 呼吸频率：a. 实验组小鼠在缺氧处理后呼吸频率明显增加，平均增加了30%左右。
b. 对照组小鼠的呼吸频率变化不明显，与实验组相比差异不大。
通过对实验结果的分析，可以得出以下结论：1. 缺氧对小鼠的生理和行为产生了显著影响，包括活动减少、食欲减退、体重下降和呼吸频率增加等。
2. 缺氧导致小鼠的能量代谢减弱，进而导致体重下降和行为异常。
3. 呼吸频率的增加可能是小鼠在缺氧状态下为了增加氧气摄入量而做出的调节反应。
结论：本实验通过对小鼠进行缺氧处理，观察了缺氧对小鼠生理和行为的影响。
实验结果表明，缺氧对小鼠的生理功能和行为产生了显著影响，包括活动减少、食欲减退、体重下降和呼吸频率增加等。
这些结果对于深入研究缺氧对生物体的影响，以及缺氧相关疾病的治疗和预防具有重要意义。
小鼠缺氧的实验报告
一、实验目的1. 观察小鼠在缺氧环境下的生理反应。
2. 探讨缺氧对小鼠呼吸系统、循环系统等器官功能的影响。
3. 为进一步研究缺氧条件下生物体的适应机制提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠10只，体重20-25g。
2. 实验设备：缺氧箱、电子天平、呼吸监测仪、血氧饱和度监测仪、生理盐水、注射器等。
3. 实验试剂：戊巴比妥钠、生理盐水、肝素钠等。
三、实验方法1. 将10只昆明小鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组。
2. A组为缺氧组，B组为对照组。
3. 将A组小鼠放入缺氧箱中，保持缺氧状态，缺氧箱内氧浓度为5%。
4. B组小鼠置于正常环境中，保持正常呼吸。
5. 每隔2小时对两组小鼠进行体重、呼吸频率、血氧饱和度等指标的监测。
6. 实验持续8小时，观察小鼠在缺氧环境下的生理反应。
7. 实验结束后，对A组小鼠进行安乐死，解剖观察呼吸系统、循环系统等器官的变化。
四、实验结果1. 体重变化：实验开始时，A组与B组小鼠体重无显著差异（P>0.05）。
实验过程中，A组小鼠体重逐渐下降，而B组小鼠体重无明显变化。
2. 呼吸频率：实验开始时，A组与B组小鼠呼吸频率无显著差异（P>0.05）。
实验过程中，A组小鼠呼吸频率逐渐升高，而B组小鼠呼吸频率无明显变化。
3. 血氧饱和度：实验开始时，A组与B组小鼠血氧饱和度无显著差异（P>0.05）。
实验过程中，A组小鼠血氧饱和度逐渐下降，而B组小鼠血氧饱和度无明显变化。
4. 器官观察：A组小鼠解剖后，发现肺组织出现充血、水肿、出血等病理变化；心脏出现心肌细胞变性、坏死等病变；肝脏出现脂肪变性、坏死等病变。
五、讨论与分析1. 缺氧对小鼠生理的影响：本实验结果显示，缺氧条件下，小鼠体重、呼吸频率、血氧饱和度等生理指标发生明显变化，说明缺氧对小鼠生理产生了显著影响。
2. 缺氧对器官的影响：本实验结果显示，缺氧条件下，小鼠呼吸系统、循环系统等器官出现明显病变，提示缺氧可能对器官功能产生损害。
小鼠缺氧实验实验报告(2024)
引言概述:小鼠缺氧实验是一种常用的实验方法，用来研究缺氧对生物体的影响和机制。
本实验报告（二）旨在进一步探讨小鼠缺氧实验的具体步骤、结果和讨论，以及对实验结果的解释和意义。
正文内容:第一大点:实验设计和方法1.1小鼠选择和养护条件1.2缺氧处理组和对照组的设置1.3缺氧处理的具体方法和惯例1.4缺氧处理前后的小鼠体重和健康状况监测1.5实验所使用的设备和试剂第二大点:实验结果分析2.1缺氧处理组和对照组的比较2.2小鼠生理指标的变化（如体重、呼吸、血液参数等）2.3组织样本的采集和处理方法2.4组织病理学和免疫组化的结果分析第三大点:实验结果解释和意义3.1缺氧对小鼠生理和行为的影响3.2缺氧对组织结构和功能的影响3.3缺氧对相关生物分子的表达和信号通路的调控3.4缺氧实验的局限性和改进方法3.5缺氧实验结果的临床意义和应用前景第四大点:讨论和比较4.1与其他缺氧实验方法的比较4.2相关研究领域的进展和发展方向4.3缺氧实验结果的一致性和复现性4.4实验结果与预期的差异和可能的原因4.5实验结果对相关疾病的认识和治疗的启示第五大点:实验的局限性和展望5.1实验过程中的潜在误差和限制5.2缺氧实验的技术创新和改进方向5.3更广泛应用缺氧实验的可能性和挑战5.4研究中存在的问题和需要进一步解决的难题5.5基于实验结果的未来研究方向的建议总结:通过本次小鼠缺氧实验，我们对缺氧的影响和机制有了更全面和深入的认识。
实验结果表明，缺氧会对小鼠的生理和行为造成明显的影响，并且相关的组织结构和功能也会发生改变。
缺氧还可以调控多种生物分子的表达和相关信号通路的活性。
本实验还存在一些局限性和需要改进的地方，例如实验步骤的细节和设备的稳定性等。
未来的研究应该继续探索缺氧对生物体的影响，并提出新的实验方法和模型来解决实验中存在的问题。
这些研究对于深入理解缺氧机制、发展相关疾病的治疗策略具有重要的意义。
引言概述：小鼠缺氧实验是一种常用的实验模型，用于研究缺氧对小鼠生理和病理的影响，以及缺氧对疾病发生和发展的作用机制。
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实验三实验性缺氧
【实验目的】
1.掌握各型（低张性和血液性）缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。
2.观察不同类型缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色）及存活时间；
3.观察不同年龄和中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性的影响，理解条件因素在缺氧发病中的重要性。
4.掌握各型缺氧的发生机制及特点。
5.了解常见血液性缺氧的解救措施。
【实验原理】
导致低张性缺氧最常见的原因包括吸入气氧分压过低和外呼吸功能障碍。
本实验将小鼠放置于加入钠石灰的密闭广口瓶内，随着小鼠的呼吸消耗，广口瓶中氧气含量逐渐降低，模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。
观察低张性缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色）及存活时间。
影响机体对缺氧耐受性的因素很多，除缺氧时间、速度、类型和程度外，还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。
本实验通过应用药物改变小鼠的中枢兴奋状态及选择不同年龄的小鼠，观察不同条件下低张性缺氧小鼠的活动状况和存活时间。
血液性缺氧是由于血红蛋白的数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力或血红蛋白结合的氧不易释出所引起的缺氧。
本实验将复制两种常见血液性缺氧模型：一氧化碳中毒和亚硝酸盐中毒引起的血液性缺氧。
一氧化碳可与血红蛋白结合，形成碳氧血红蛋白而失去结合氧的能力，从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。
亚硝酸钠是强氧化剂，可使血红蛋白分子内二价Fe2+氧化成为三价Fe3+而形成高铁血红蛋白，高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧。
【实验对象】
成年小鼠（性别、年龄、体重近似、雌雄不拘）、新生小鼠
【实验药品和器材】
3.75%尼可刹米、0.25%氯丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚硝酸钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。
缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置（图1）、1 ml注射器、5 ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置（图2）、气囊袋。
【实验步骤】
1. 低张性缺氧
（1）取体重接近的成年小鼠2只，称重后分别放入盛有钠石灰（大约4~5 g，以双层纱布包裹）的两个缺氧瓶（A瓶和B瓶）中，A瓶不盖胶塞，暴露于空气中，B瓶用胶塞塞紧瓶口。
（2）比较观察2只小鼠的活动状况、皮肤（口唇）黏膜和肝脏颜色、呼吸频率（次数/10 s）和深度，记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。
（3）通过耗氧量测定装置测量低张性缺氧（B瓶）的小鼠耗氧量。
（4）计算耗氧率（计算方法见附录）。
（5）当B瓶小鼠死亡后，将A瓶中小鼠断颈处死，解剖2只小鼠腹腔，取出小鼠肝脏组织，置于标记的白色滤纸上，比较观察肝脏的颜色。
2. 不同年龄对缺氧耐受性的影响
(1) 取成年小鼠和新生幼鼠各1只，将2只小鼠分别放入缺氧瓶内（每瓶均放置
纱布包裹的钠石灰5 g），盖上胶塞。
(2) 观察小鼠的活动状况、皮肤（口唇）黏膜和肝脏颜色、呼吸频率（次数/10 s）
和深度，记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。
3. 不同中枢状态对缺氧耐受性的影响
(1) 取成年小鼠3只（A、B、C组），称重并标记编号后分别作如下处理：A组
小鼠腹腔注射3.75%尼可刹米溶液0.08 ml/10g；B组小鼠腹腔注射0.25%氯丙嗪溶液0.1 ml/10g；C组小鼠腹腔注射生理盐水0.1 ml/10g。
(2) 腹腔注射结束后迅速将3只小鼠放入缺氧瓶中（每瓶均放置纱布包裹的钠石
灰5 g），盖上胶塞；
(3) 比较观察3只小鼠的活动状况、皮肤（口唇）黏膜和呼吸频率（次数/10 s）
和深度，记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。
4. CO中毒性缺氧
（1）取草酸3 ml加入CO发生装置试管内，再加入浓硫酸2~3 ml，塞紧试管。
点燃酒精灯置试管下缓慢加热可见试管内有气泡产生即可，将CO发生装置连接气囊袋收集产生的CO备用。
（2）取成年小鼠2只，分别将其放入缺氧瓶（每瓶均放置纱布包裹的钠石灰5 g）中，观察其正常表现后，用注射器从气囊袋中抽取5 ml CO注入一缺氧瓶中，并迅速盖上胶塞，另一缺氧瓶不盖胶塞。
（3）观察小鼠的活动状况、皮肤（口唇）黏膜和呼吸频率（次数/10 s）和深度，当小鼠出现抽搐时立即取出小鼠（注意盖好胶塞）并迅速置通风处，观察小鼠各项指标是否恢复。
若指标恢复，继续将小鼠放回缺氧瓶中盖上胶塞直至死亡，记录存活时间。
（4）解剖CO中毒小鼠的肝脏，观察记录其颜色变化。
2. 亚硝酸钠中毒性缺氧
（1）取成年小鼠2只，称重，观察其正常表现后，腹腔均注射5%亚硝酸钠溶液
0.1ml/10g后，一只小鼠立即腹腔注射1%亚甲兰0.1 ml/10g，另一小鼠立即
腹腔注射生理盐水0.1 ml/10g。
（3）观察小鼠的活动状况、皮肤（口唇）黏膜和呼吸频率（次数/10 s）和深度，并记录小鼠存活时间。
（4）解剖亚硝酸盐中毒小鼠的肝脏，观察记录其颜色变化。
表三、血液性缺氧小鼠各项指标变化
【实验注意事项】
（1）复制低张性缺氧时，要求缺氧瓶必须密闭，必要时可在瓶口涂上凡士林达到密闭效果。
（2）各组小鼠体重要求接近，体重差不得超过4 g。
（3）小鼠腹腔注射时应从左下腹斜向上进针，以免导致肝脏损伤，同时也可避免将药液注入肠管、膀胱和血管内。
（4）复制CO中毒性缺氧时CO注射量不宜过多，以免动物迅速死亡而致血液颜色变化不明显，影响结果观察。
（5）给动物注射亚甲蓝的剂量要求适当，剂量过少达不到抢救NaNO2中毒的目的；剂量过大反而会加重NaNO2的中毒作用。
（6）CO是毒性较强的气体，实验过程中要注意防护。
建议实验室窗户打开通风。
【思考题】
（1）低张性缺氧时小鼠的呼吸、口唇皮肤粘膜颜色为什么会发生改变？其机制是什么？
（2）结合实验结果思考不同中枢功能状态对缺氧耐受性影响的机制。
（3）相同缺氧条件下为什么对新生鼠和成年鼠的存活时间不一致？
（4）不同类型缺氧对呼吸功能的影响有何异同？
（5）各种类型缺氧口唇、皮肤、血液颜色有何变化？产生这些变化的机制是什么？
（6）CO是通过什么机制降低血红蛋白的携氧能力的？
【附录】
1. CO产生原理
实验中应用CO发生装置产生CO是向草酸中加入一定比例的浓硫酸后，经适当加热而产生的。
其反应原理如下：
H2SO4
HCOOH CO+H2O
△
2. 钠石灰的作用
缺氧瓶内加入钠石灰的目的是吸收小鼠呼出的CO2，使瓶内环境为单纯性低张性缺氧。
试剂型钠石灰为粉红色颗粒状物质，其吸收CO2的反应式如下：
NaOH•CaO+ CO2→Na2CO3+H2O
3. 亚甲蓝的作用机制
亚甲蓝(mgthyene blue)又称美蓝或甲烯蓝，是一种碱性染料。
其氧化型呈蓝色，还原型为无色。
适当剂量亚甲蓝可作为亚硝酸盐中毒时的抢救药物。
机制是
当氧化型亚甲蓝进入机体后可接受还原性辅酶Ⅱ传递的氢离子而转变成为还原型无色亚甲蓝，而无色亚甲蓝能够迅速使高铁血红蛋白转化为正常血红蛋白，在此过程中，无色亚甲蓝又被氧化成为亚甲蓝，如此反复循环，达到解毒作用。
但必须指出，亚甲蓝本身是一种氧化剂，因此它也是高铁血红蛋白形成剂，如果应用剂量过大，还原性辅酶Ⅱ不能很快将其全部还原为无色亚甲蓝，那么氧化型亚甲蓝会促进更多高铁血红蛋白的形成而加重病情。
因此，应用亚甲蓝治疗抢救高铁血红蛋白血症时，使用剂量一定要适当，切忌大剂量应用。
4 .小鼠耗氧率的测定
（1）测定原理：在密闭缺氧瓶有限的空间内，小鼠不断消耗氧气和呼出CO2，后者被钠石灰吸收，随着氧分压的逐渐下降，使缺氧瓶内形成负压，当把缺氧瓶橡胶管与测氧装置的刻度移液管连通并打开螺旋夹后，移液管内液面因为瓶内负压吸引而上升，其液面从“0”参考点上升的毫升数既该小鼠消耗的氧量（见图1）。
（2）方法与步骤
1) 量筒内加入约2/3高度的水，插入刻度移液管，移液管一端与缺氧瓶连接胶管连通。
2) 当移液管中液体达到平衡位置时记下“0”参考点。
3) 测定时将缺氧瓶与移液管连通后，开启螺旋夹待移液管液面上升稳定后，从“0”参考点读出液面上升的毫升数，即为小鼠的总耗氧量，或称耗氧体积（ν）。
（3）耗氧率计算
根据小鼠体重（m）和存活时间（t），按下式计算小鼠耗氧率（R）：
R=v/m×t-1。