石蜡组织切片实验操作练习详细指导
实验六 石蜡切片法1
四、实验结果
包埋后的石蜡快应为均匀的半透明状,蜡块中没有 气泡。
包埋材料摆放的位置是否符合要求?
修块效果:每个蜡边与材料平行,蜡边的上下左右摇 平行。
切片效果:得到厚薄均匀的蜡带,蜡带无破损。 展片效果:展片后蜡带或蜡片平整,无气泡、粘附牢 固,蜡带略呈透明状,后续制片不易脱落。
五、作业
实验完毕,每人交包埋块一个,在纸盒上写
上材料名称及自己的姓名和日期;
实验完毕,每人交玻片两张,用铅笔在载玻
片上写上材料名称及自己的姓名和日期;
实验报告(姓名和日期)。
苦味酸液(波茵氏液)
甲液: 1%铬酸 10%醋酸 乙液: 甲醛 苦味酸饱和水溶液 50ml 20ml 25ml 75ml
包埋过程中易出现的问题及解决办法
问题:包埋后的石蜡块应为均匀半透明状,有时出现白色浑浊 结晶(像雪花一样)部分,这样在切片时就有妨碍,不易切出 薄的切片。 原因:①组织内部或石蜡中混有透明剂;②脱水不干净;③石 蜡本身品质不良;④组织块移入纸盒时动作太慢,周围的石蜡 已成凝固状态;⑤冷却用水温度不够低,石蜡凝固太慢。 解决办法:属于前三个原因者应在包埋之前就须注意;属于后 二个原因者,可将包埋块再投入Ⅲ蜡中熔化后重新包埋,但必 须注意熔化包埋过的石蜡块的时间不宜过久。
实验六 石蜡切片法
—— 包埋、切片和贴片
石蜡切片法
石蜡切片法是显微制片技术中最常用的一种方法,除了
藻类、菌类、木材和骨骼外一般的材料均可以使用,既 可制成较薄的切片,使材料各部分都清晰可见,同时也
可制成连续切片,观察材料的动态发生及层次,所以,
它在显微制片技术中占有非常重要的地位,必须掌握, 同时也是进行透射电镜观察超薄切片的基础。
石蜡切片免疫组化操作步骤
石蜡切片免疫组织化学操作流程一、组织获取(本实验室多做脑组织,所以以脑组织为例)1.动物麻醉:所用麻醉药物(水合氯醛水溶剂)剂量为350mg/kg动物体重,常用麻醉药物浓度为5%、6%、7%、10%(麻醉浓度越大,动物进入麻醉时间越短,但麻醉致死率相应较高,本人使用7%浓度,若注射位置正确,约3min进入麻醉状态);动物麻醉后,将其固定于灌流操作平台,仰卧位;2.动物灌流手术:以胸骨剑突为起点,沿左右两侧肋下缘剪开老鼠皮肤至腋下,再次以剑突为起点,剪开皮下肌肉层,沿同样方向剪开肌肉至腋下,避免伤到内部脏器,剪破膈膜,沿左右两侧剪断胸骨,用止血钳夹住剑突向上翻转,充分暴露心脏;用弯镊分离心脏表面黏膜;左手持止血钳轻夹起心脏,倾斜一定角度,使心尖方向与升主动脉尽量位于同一直线上,右手持灌流针,沿直线所在所在角度由左心室进针,将灌流针直接插入升主动脉(可挑动灌流针于升主动脉内观察是否正确插入,此方法操作不熟练易插错血管或是直接刺穿心脏——或者直接将灌流针插入左心室,但前方法灌流效率较高);固定器械(器械松动或是位置变化会严重影响灌流质量,有时会因为器械位置的变动直接将心脏牵扯下来导致灌流失败,应给与充分注意)3.动物灌流:C57小鼠25-30g左右,灌流开始,可见右心耳充盈,用剪刀剪开,便于血液流出:吊瓶灌流——以生理盐水50-100ml快速冲洗血液,持续最好不要超过5min(时间过长会导致脑组织降解),待无明显血迹流出后换用4%多聚甲醛进行灌流,约100-150ml,灌流速度不宜过快,约10min,固定液较充分的固定组织;注射器灌流——生理盐水50ml快速推注,后换用4%多聚甲醛50ml缓慢推注。
灌流成功的标志——灌流开始,可见肝脏颜色迅速变浅,随着灌流进行,肝脏颜色逐渐变为乳黄色或是白色;换用4%多甲固定液后小鼠全身痉挛抽搐,组织僵硬。
4.开颅取脑:根据实验取材位置的不同,分为不同的取脑方式:应注意需要的组织区域,避免取脑过程中损坏,多从小脑后方依次向前剥离颅骨,获取脑组织(在颅骨剥开后,应注意脑膜的存在,因为会发生脑膜将皮层割裂损伤的情况)5.脑组织修块:将多余脑组织去除,便于固定充分均匀,应留出试刀或找平的部分多余组织(本人实验中因需要海马组织,故修块时沿大脑皮层后边缘切除多余小脑,人字缝前约2.5-3mm切除前脑部分)6.固定过夜:将修块完成的脑组织,浸泡于4%多聚甲醛中,固定过夜,通常不要超过18小时(固定时间越长,组织抗原损失越严重,呈数量级损失),一般控制在12小时以内为宜二、组织石蜡包埋7.组织梯度脱水透明:将过夜固定的脑组织取出置于包埋窗内,并用铅笔做好相应标记,自来水流水冲洗约10min,去除残留的杂质成分,进行梯度酒精脱水(注意:不同的组织类型,同组织类型不同组织块大小所需的每阶段脱水时间不同,需根据自身需要进行简单摸索;若盲目脱水透明,脱水透明过头,会使组织脆性增加,切片时全为粉末状,无法成形;脱水透明不够,会使组织与蜡块分离,无法获取平整组织切片)本实验中,组织样本为脑组织,组织修块后所进行的脱水流程如下:自来水冲洗完成→50%乙醇 25min→70%乙醇 25min→80%乙醇 25min→90%乙醇 25min →95%乙醇I 10min→95%乙醇II 15min→无水乙醇I 10min→无水乙醇II 15min→二甲苯I 15min→二甲苯II 15min8.组织浸蜡:在进行二甲苯透明开始的时候,将石蜡用沸水融化,置于60度烘箱内备用(此过程中应注意将盛放石蜡的烧杯上口封闭,避免水分溅入;根据组织块的数目准备合适体积的石蜡液体,以组织块完全浸没其中为宜);将透明完成的组织块,尽量沥干多余二甲苯,迅速转入1号烧杯的石蜡液体内(避免包埋窗内产生气泡,气泡若围绕组织块会影响浸蜡过程),依次将所有组织块迅速转入其中,要求组织块要全部浸没在石蜡中,流程如下:1号石蜡2h→2号石蜡2h→3号石蜡2h在每个阶段的浸蜡过程中,可根据时间安排适量的延长浸蜡时间,但尽量不要减少时间9.组织块包埋:包埋前,准备沸水备用;清理干净包埋槽备用;包埋开始时,将装有组织块的烧杯浸入沸水中,防止在包埋过程中,烧杯中的石蜡凝固,具体操作如下:1)用镊子夹取包埋槽在酒精灯预温,控制包埋槽的温度不要过高;2)将烧杯内的石蜡倒入包埋槽内,液面高度刚好没过包埋槽两侧平台3)取出浸泡的组织块,用小镊子过火后夹取组织块放置在包埋槽的凹陷处中心部位,根据切片要求摆放位置,注意在放置过程中避免组织块下面接触包埋槽底部的位置产生气泡,通常在放置前,可将组织块浸没在凹槽内的石蜡中翻滚,使其各面均匀接触石蜡液体,然后放置在正确的位置(此时假如包埋槽预温过高,则会导致组织块在接触槽底面后异常干燥,在整个蜡块凝固后会在干燥处出现凹洞,不利于石蜡块的长期保存);4)将包埋窗轻轻放置在包埋槽的平台上面,尽量保证两侧高度相同,此时槽内之前的石蜡会浸没部分包埋窗的格栏,静置1-2min(避免倒入热的液体石蜡后,石蜡从包埋窗的边缘流出);5)静置后,石蜡表面会出现凝固表层,此时再用烧杯中的石蜡填充包埋窗的凹陷处以及靠近边缘的条状凹洞,液面稍高于包埋窗边缘(靠近边缘的条状凹洞一定注意填充石蜡,关乎整个蜡块凝固后与包埋窗结合的紧密程度;石蜡凝固后体积会缩小,避免因液面过低导致的后期包埋窗内部支撑不够)6)静置至少30min,可将包埋后的蜡块从包埋槽内分离(注意分离时,应先清理包埋槽四周的多余石蜡,露出包埋窗与包埋槽接触的边缘,然后从一个角将蜡块撬离包埋槽)三、石蜡切片10.准备工作:蜡块的修整——将组织周边的石蜡在保留操作位置的情况下尽量去除(1-减少石蜡块切面与刀片的接触面积,便于受力均匀,易切出完整切片;2-石蜡切面与刀片接触面积小,会减少刀片接触到蜡块中坚硬杂质的几率,增加刀片的使用寿命;3-接触长度减少,可增加刀片使用次数,通常情况下至少多使用1次)准备器材:40度恒温水浴(温度控制在40-42之间的恒温状态,此温度可使蜡片较长时间保持切片形态,温度较低切片不易展开,温度较高,切片会在短时间内融化,易造成组织变形)切片刀片、包被载玻片、弯镊、毛刷、铅笔、切片盒冰盒(通常情况不需要,在组织脱水透明严重,切片呈粉末状态时,可用冰块冰敷石蜡切面,在短时间内可改善切片表面状态,能够帮助切出3-5片完整切片,只有在前期处理出问题时才使用进行一定程度挽救)切片大致流程:1)安装刀片;将蜡块固定于切片机上,调整蜡块表面与刀片距离,矫正蜡块表面与刀片切线平行;2)调整切片模式为trim-10um进行表面找平,并观察切片状态,调整蜡块角度,使切片左右对称,同时注意观察目标区域出现位置;3)切片调平,并出现合适目标区域,调整切片模式为sect-5um进行切片,获取所需组织切片样本;4)将完整合适的切片,夹取至水浴锅内摊平,左手持载玻片,右手持弯镊辅助,将切片贴于载玻片中,放置在水浴锅边缘进行干燥并做好相应标记;5)将干燥完成切片,按照样本分类放置在一起收于切片盒中备用6)切片完成,清理清片机;剩余组织蜡块,需要在切面表面均匀涂抹融化的石蜡,避免组织块直接与空气接触(不进行封闭,会使组织块在长期的暴露过程中,含水量发生变化,易于与支撑蜡块分离,造成后续再次切片困难)7)切片盒中切片,干燥后可在室温下长期放置,推荐切片完成后及时进行后期组织染色或组织免疫化学孵育。
石蜡切片步骤
石蜡切片基本步骤(一)取材和固定根据实验目的选择材料。
将整个虫体或虫体的内部器官(如肠道、马氏管、唾液腺等)取出后,立即投入固定液。
取材大小:0.5cm×0.5 cm×0.2或者1.0 cm×1.0 cm×0.2,厚度不宜超过3mm。
固定液:2.5%的戊二醛固定液,Bouin氏液,10%甲醛等。
固定时间:4ºC固定24小时。
注意事项:取材:1.勿使组织块受挤压切取组织块所用刀、剪要锋利,切割时不可来回切割。
夹取组织时,镊子要轻,切勿挤压,以免损伤组织。
取材时,组织块可稍大一点,以便在固定后,将组织块的不平整部分修去。
2.选好组织块的切面应熟悉器官组织的组成,并根据观察目的来确定纵切或横切。
3.保持材料的清洁组织块上如有血液、污物、粘液、食物等,先用生理盐水冲洗干净,再入固定液。
4.切除(清除)不需要的部分特别是组织周围的脂肪等,应尽可能清除掉,以免影响以后的程序和观察。
固定:1.材料新鲜取出组织后须立即固定。
否则时间相隔过久,体积就要收缩变形或发生自溶现象。
2.抽气生物组织常有气体的存在,使材料不能沉入固定液中,抽气使得固定液有效渗入。
真空泵抽气或者用空针管抽气。
昆虫整体固定,固定前用解剖针刺数个小孔,以利用固定液渗透。
3.固定剂用量一般为组织体积的10~20倍。
勿使组织贴于瓶底或瓶壁,以免影响固定剂的渗入。
4.避免阳光尽可能避免接触阳光以免失去固定作用。
5.加速固定轻轻摇动盛器使组织移动有利于固定液渗入,对长期固定的标本可经常更换固定液。
(二)洗涤2.5%戊二醛固定液固定的组织:0.2M, pH7.2磷酸缓冲液漂洗三次,每次10minBouin氏固定液固定的组织:直接入70%酒精更换数次即可脱水,注意苦味酸。
甲醛固定的组织:直接投入50%或70%酒精脱水,不经水洗。
但如果在甲醛中时间过长,则仍应当用流水冲洗。
陈旧性标本和混合性固定液应及时洗涤,有利于脱水、切片和染色。
石蜡切片制作超详细步骤
石蜡切片制作超详细步骤1.取材颈椎脱臼法处死小鼠,打开腹腔,剪取肝组织(或其他组织)。
切取的组织块不宜太大,以利于固定剂穿透,通常以5mm×5mm×2mm或10 mm×10 mm×2 mm为宜。
取下所需要的肝组织,切成一小块2-3mm厚。
注意事项:(1)取材动作要迅速,不宜拖太久,以免组织细胞的成分、结构等发生变化。
(2)切片材料应根据需要观察的部位进行选择,尽可能不要损伤所需要的部分。
2.固定将切好的肝组织用生理盐水洗一下,立即投入中性福尔马林固定液中固定30-50min。
注意事项:(1)一般固定液,都以新配为好,配好后应贮存在阴凉处,不宜放在日光下,以免引起化学变化,失去固定作用。
(2)有些混合固定液的成分之间会发生氧化还原作用,一定要在使用前混合,如果混合太早,固定时就没有作用了。
(3)固定材料时,固定液必须充足,一般为材料块的20~30倍,有些水分多的材料,中间应更换1-2次新液。
(4)材料固定完毕后,保存于严密紧塞或加盖的容器里,同时在容器外贴上标签,并随同材料在溶液中投入相应的标签,以免混淆。
标签上注明固定液、材料来源、日期等。
标签上的文字,用黑色铅笔写。
3.洗涤材料经固定后,流水冲洗,数小时或过夜。
4.脱水材料依次经70%、80%、90%各级乙醇溶液脱水,各30min,再放入95%、100%各2次,每次20min。
注意事项:(1)脱水必须在有盖的玻璃瓶中进行,防止吸收空气中的水分。
(2)在更换高一级的脱水剂时,最好不要移动材料以免损坏,可用吸管吸出器皿中的脱水剂,再用吸水吸尽器皿内剩余液,然后于皿中加入高一级脱水剂。
(3)在低浓度酒精中,每级停留不宜太长,否则易使组织变软,助长材料的解体。
(4)在高浓度或纯酒精中,每级停留的时间也不宜太长,否则会使组织变脆,影响切片。
(5)如需过夜,应停留在70%酒精中。
(6)脱水必须彻底,否则不易透明,甚至使透明剂内出现白色混浊现象5.透明纯酒精、二甲苯等量混合液15min,二甲苯Ⅰ15min、Ⅱ15min (至透明为止)。
免疫组化染色(石蜡切片)操作步骤及结果分析方法(精髓版)
免疫组化染色(石蜡切片)操作步骤及结果分析方法(精髓版)免疫组化染色(石蜡切片)操作步骤及结果分析方法一、原理及应用免疫组化,简单说是用标记的抗体对组织中相应抗原进行定位、定性和部分定量的分析。
二、操作步骤:(1)将石蜡组织切片置于65°C恒温箱,烤片1h左右。
(2)脱蜡:二甲苯I 10min→二甲苯II 10min →梯度酒精(由高到低)各5min。
(3)1×PBS 洗涤3次,每次 5min。
(4)0.5% Triton X-100通透(PBS配制),目的是使抗体能够充分地进入胞内进行结合反应。
Triton X-100 可以溶解细胞膜、细胞核膜、细胞器膜上的脂质而使抗体及大分子结构的物质进入胞浆和胞核内,这样抗体就能顺利进入胞内与相应抗原结合。
当然了,如果检测的是膜抗原无需通透,忽略该步骤。
(4)抗原修复:使用柠檬酸盐缓冲液进行抗原修复,微波炉微波高火 3min,之后转成低火 15-30min。
注:福尔马林或多聚甲醛固定,会导致蛋白交联,而解交联的过程称为抗原修复。
所以冰冻切片不需要抗原修复!!抗原修复方法有多种,一般包括两大类:酶抗原修复(胰蛋白酶、胃蛋白酶、蛋白酶K) 热抗原修复(高压蒸汽法、微波法、水浴加热法)。
微波法最为常用。
(5)1×PBS 洗涤3次,每次5min。
(6)3% H2O2,室温孵育30min,目的是灭活内源性过氧化物酶。
(7)1×PBS 洗涤3次,每次5min。
(8)使用1% BSA 进行室温封闭30min,用于封闭非特异性抗原表位。
(9)根据抗体说明书使用合适浓度的特异性一抗,4°C 湿盒中静置过夜孵育。
(10)次日取出切片,室温下复温30min。
(11)1×PBS 洗涤3次,每次5min。
(12)按照免疫组化二抗试剂盒说明书操作。
(13)DAB 显色:DAB 显色液按说明书配制,使用时滴加到血管组织上,显微镜下观察并计时,待目的蛋白显色呈棕黄色时结束显色。
石蜡切片实验报告
石蜡切片实验报告实验目的,通过石蜡切片实验,观察细胞的形态结构和组织构成,掌握石蜡切片技术的操作方法,提高细胞学实验操作技能。
实验仪器与试剂,显微镜、石蜡切片、染色剂、玻璃片、显微镜载玻片、酒精、甘油、显微镜盖玻片。
实验步骤:1. 取一块石蜡切片,将其放置在玻璃片上,用酒精浸泡片切片5分钟,使其软化。
2. 用刮刀将石蜡切片刮至薄如纸张。
3. 将切好的石蜡切片浸泡在染色剂中,染色10分钟,使细胞染色。
4. 将染色后的石蜡切片放入酒精中脱水,然后放入甘油中固定。
5. 取一个显微镜载玻片,将固定好的石蜡切片放在载玻片上,盖上显微镜盖玻片。
6. 将载玻片放置在显微镜上,调节倍率,观察石蜡切片下的细胞结构。
实验结果与分析:经过显微镜观察,我们发现石蜡切片下的细胞结构清晰可见,细胞核、细胞质、细胞壁等结构清晰可辨。
通过不同染色剂的染色,我们可以清晰地观察到不同细胞器的形态和分布,比如细胞核的形态、染色颜色的深浅等。
此外,我们还可以观察到细胞在不同发育阶段的变化,对于研究细胞生物学和组织学具有重要意义。
实验总结:通过本次石蜡切片实验,我们掌握了石蜡切片技术的操作方法,提高了细胞学实验操作技能。
在实验中,我们需要注意石蜡切片的切割技巧和染色方法,以保证观察到的细胞结构清晰、准确。
在未来的实验中,我们将继续加强对细胞结构和组织构成的观察,不断提高实验操作技能,为细胞生物学和组织学的研究工作做出更多的贡献。
参考文献:1. 高等学校生物学实验教学指导委员会. 生物学实验指导[M]. 北京,高等教育出版社,2003.2. 张三等. 细胞生物学实验指导[M]. 上海,上海科学技术出版社,2005.。
石蜡组织切片实验操作练习详细指导
石蜡切片实验操作练习详细指导提供给实验室的实验用品及每个小组的用量:1、器材切片刀,切片机,恒温箱,温台,熔蜡炉,蜡杯,酒精灯,蜡铲,展片台,解剖刀,解剖针,解剖剪,解剖盘,培养皿,吸管,镊子,单面刀片,台木,毛笔,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,盖玻片,载玻片,玻片盘,树胶,树胶瓶,显微镜,温度计,脸盆,水浴锅。
2、试剂卡诺氏固定液、FAA固定液、各种浓度的酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、埃利希木精染液, 1%伊红酒精溶液,1%盐酸酒精溶液,甘油蛋白粘片剂,郝普特氏粘片剂,中性树胶。
1%番红,1%固绿,1%过碘酸,Schiff试剂,0.5%偏重亚硫酸钠溶液,醋酸酐-吡啶混合液,0.5%~1%淀粉糖化酶溶液。
3、材料鼠肝、肾、心肌、骨骼肌或其他组织、大豆或小麦、绿豆、洋葱、大蒜、蚕豆的根、茎、叶等。
4、每个实验小组的用量(一)器材切片机,切片刀,温台,恒温箱,熔蜡炉,水浴锅等这类几个小组用一台就行;解剖刀,单面刀片,小台木,毛笔一只,蜡铲一个,盖玻片和载玻片30个,脸盆一个,酒精灯各一个,包埋纸盒2~3个,染色缸一个,瓷杯3个,显微镜一台。
(二)试剂FAA固定液50ml、1%番红100ml、1%固绿100ml、1%过碘酸100ml、Schiff试剂100ml、亚硫酸盐300ml、醋酸酐-吡啶混合液100ml、0.5%~1%淀粉糖化酶溶液200ml,石蜡半盒、蜂蜡10块、埃利希木精染液100ml、1%伊红酒精溶液100ml、1%盐酸酒精溶液100ml、95%酒精5瓶、二甲苯2瓶,甘油蛋白粘片剂数滴,中性树胶数滴。
(三)材料小白鼠一只、蚕豆种,小麦和大豆种10~20粒,洋葱和大蒜由实验室统一种,然后取其所需部分。
石蜡切片法实例(一)—木精-伊红对染法一、目的要求1、熟悉石蜡切片的制作过程。
2、掌握HE染色的基本原理和染色方法。
二、实验原理石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。
石蜡切片操作步骤
石蜡切片操作步骤操作步骤(本次实验要求,做到包埋)1、取材2、固定3、脱水:30%--50%---70%(每步60分钟)---85%---95%--100%--- 100%(每步30分钟)。
4、透明:转入1/2二甲苯+1/2无水酒精混合液20ml透明1h,纯二甲苯20 ml透明1h,再用纯二甲苯20ml透明40min,并回收各液。
5、浸蜡:(1)将材料分别放入25%、50%、75%的石蜡-二甲苯溶液中,每级30分钟。
该过程在高于石蜡熔点3℃的温箱中进行;(2)将材料放入溶解的纯蜡中,时间为30分钟,该过程再重复两次。
在高于石蜡熔点3℃的温箱中进行。
6、包埋(1)将溶解好的石蜡在加入预先折好的纸船中,石蜡溶解后应过滤后使用,以免含杂质影响切片;(2)材料放入纸船,并摆好在蜡中的位置,如果包埋的组织块较多,应进行编号;(3)将纸船放置在冷水上加速冷却过程。
7、切片(1)修整:用刀片修成方形或长方形蜡块;(2)以少许热蜡液,将蜡块底部粘附于小木块上,以少许石蜡融化在蜡块边缘,加强粘附的强度;(3)木块粘附于切片机上,调整切片机,使蜡块切面与切片刀刃平行;(4)切成连续的蜡带,切片刀的锐利度、蜡块的硬度都会影响切片质量,可用热水或冷水适当改变石蜡的硬度,也可在冰箱中放置一段时间;(5)分割蜡带,分开的蜡片放在45℃温水上,使蜡片展开。
8、粘片与烤片(1)可用粘片剂防止蜡片滑脱,但粘附剂通常容易被染色而使切片背景有颜色,影响观察,实验表明,载玻片洗的足够干净,一般不会滑片;(2)用载玻片捞取展开后的蜡片,调整蜡片的位置使位于载玻片中央,自然干燥。
9、脱蜡与醇化(1)将切片放入纯二甲苯溶液中10分钟,使石蜡完全溶解,共2次;(2)溶去石蜡的切片依次放入75%、50%、25%二甲苯-乙醇溶液中,每级10分钟;(3)再将切片依次放入100%、95%、90%、80%、70%、60%、50%的乙醇溶液中进行醇化,每级10分钟。
石蜡切片免疫荧光实验步骤
石蜡切片免疫荧光实验步骤1、脱蜡至水:将组织切片室温放置10min后,依次将石蜡切片放入二甲苯3min→无水乙醇5min—85%酒精5min—75%酒精5min—ddH2O洗5min。
2、抗原修复:组织切片置于盛满柠檬酸抗原修复液(50X稀释至1X使用)的修复盒中于微波炉内进行抗原修复(中火8min—停火8min—中低火7min)。
此过程中应防止缓冲液过度蒸发,切勿干片。
自然冷却后将玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min(具体修复液和修复条件根据组织来确定)。
3、画阻水圈:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈,防止液体流失。
4、BSA封闭:在圈内滴加3%-5%浓度BSA孵育30min(或二抗同源血清封闭)。
5、一抗孵育:轻轻甩干封闭液,在切片上滴加按一定比例配好的一抗(溶于血清:PBS=1:19的抗体稀释液体系中),切片平放于湿盒(内加少量水防止抗体蒸发),4°C过夜。
6、二抗孵育:玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。
切片稍甩干后在圈内滴加相应的荧光二抗,覆盖组织,避光RT孵育50min。
7、DAPI染核:玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。
切片稍甩干后在圈内滴加DAPI染液,避光RT孵育3-5min。
8、树脂封片:玻片置于PBS中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。
切片稍甩干后用树脂封片剂封片(其间可滴加少量抗荧光淬灭剂)。
9、镜检拍照:切片于荧光显微镜/confocal/活细胞工作站中观察并采集图像(DAPI紫外激发波长330-380nm,发射波长420nm,发蓝光;FITC激发波长465-495nm,发射波长515-555 nm,发绿光;CY3激发波长510-560,发射波长590nm,发橙光;CY5发红光)。
10、结果判读:DAPI染出来的细胞核在紫外的激发下为蓝色,阳性表达为相应荧光素标记的红光或者绿光,图片处理需使用Image J 软件。
脂肪组织石蜡切片技巧
脂肪组织石蜡切片技巧
脂肪组织石蜡切片是生物学和医学研究中常用的一种技术,主要用于观察脂肪组织的结构和形态。
在进行石蜡切片过程中,掌握一些技巧和方法能够提高切片的质量和效率。
本文将详细介绍脂肪组织石蜡切片的技巧。
一、准备工作
1.选取合适的脂肪组织样本,将其固定在10%的中性缓冲福尔马林溶液中。
2.将固定好的脂肪组织样本进行梯度脱水,即依次放入70%、80%、95%和100%的乙醇中各1小时。
3.将脱水后的脂肪组织样本放入二甲苯中透明化处理,时间为2小时。
4.将透明化处理后的脂肪组织样本浸入石蜡中,进行渗透和包埋。
二、切片技巧
1.选择合适的切片刀和切片厚度。
脂肪组织较软,建议使用锐利的切片刀,切片厚度以4-6微米为宜。
2.在切片前,将石蜡样本放在冰水混合物中冷却,使脂肪组织变得更加硬实,有利于切片。
3.切片时,保持切片刀与石蜡样本垂直,均匀用力,避免切片刀在样本上滑动。
4.切片速度不宜过快,以免造成切片厚薄不均或撕裂。
5.切片过程中,用刀片轻轻刮去切片刀上的石蜡残渣,以保证切片质量。
6.切片完成后,将切片用刀片轻轻挑起,放入37℃温水中展平。
三、染色和观察
1.将展平的切片放入染色盒中,进行常规的苏木精-伊红(HE)染色。
2.染色完成后,用显微镜观察脂肪组织的结构和形态。
3.如有必要,可进行免疫组化染色或其他特殊染色,以进一步研究脂肪组织的功能。
总结:脂肪组织石蜡切片的技巧主要包括准备工作、切片技巧和染色观察。
掌握这些技巧,有助于提高切片质量和研究效果。
石蜡切片的步骤实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉石蜡切片的制作流程。
2. 掌握石蜡切片的基本操作步骤。
3. 了解石蜡切片在组织学、病理学等领域的应用。
二、实验器材与试剂1. 实验器材:- 组织切片机- 石蜡切片机- 脱水机- 摊片机- 载玻片- 烤片机- 石蜡- 二甲苯- 无水乙醇- 4%多聚甲醛- 70%、85%、95%、100%乙醇- 75%、85%、90%、95%酒精- 0.1mol/L盐酸- 苏木精- 伊红- 柠檬酸缓冲液- HE染色试剂三、实验步骤1. 取材与固定- 将新鲜组织固定于4%多聚甲醛24小时以上。
- 将组织从固定液中取出,在通风橱内用手术刀将目的部位组织修平整。
- 将修切好的组织和对应的标签放入脱水盒内。
2. 脱水- 将脱水盒放入吊篮里,于脱水机内依次梯度酒精进行脱水。
- 脱水过程:75%酒精1小时,85%酒精1小时,90%酒精1小时,95%酒精1小时,无水乙醇I 30分钟,无水乙醇II 30分钟,醇苯5-10分钟,二甲苯I 5-10分钟,二甲苯II 5-10分钟,蜡I 1小时,蜡II 1小时,蜡III 1小时。
3. 包埋- 将浸好蜡的组织放入包埋机内进行包埋。
- 先将融化的蜡放入包埋框,待蜡凝固之前将组织从脱水盒内取出,按照包埋面的要求放入包埋框并贴上对应的标签。
- 于-20℃冻台冷却,蜡凝固后将蜡块从包埋框中取出并修整蜡块。
4. 切片- 将修整好的蜡块置于石蜡切片机上切片,片厚4微米。
- 切片漂浮于摊片机40℃温水上将组织展平,用载玻片将组织捞起,并放进60℃烤箱内烤片。
- 待水烤干蜡烤化后取出,常温保存备用。
5. 脱蜡至水- 依次将切片放入二甲苯30分钟,二甲苯30分钟,无水乙醇10分钟,无水乙醇10分钟,95%酒精5分钟,90%酒精5分钟,80%酒精5分钟。
- 苏木精染色:将切片放入苏木精染液中染色5-10分钟。
- 水洗:将切片放入清水中清洗。
- 伊红染色:将切片放入伊红染液中染色1-2分钟。
石蜡切片机操作指导
徕卡RM2016轮转式切片机使用说明
(一)、石蜡切片方法步骤:
在每次操作切片刀和标本,或更换标本前一定要锁定手轮,并用护刀罩将刀刃遮住!
1.锁定手轮,应先夹紧标本再装切片刀!
2.将预先休整好的石蜡块装在标本夹上,在使用切片刀和一次性切片刀时,一定要十分小心,其刀刃锋利无比,误操作后会导致严重伤害!
3.转动粗转轮,将标本退到后面的极限位置。
4.将护刀罩移向刀架中间。
5.将切片刀插入刀架,夹紧。
6.调节切削角度。
7.将基体上的刀架尽可能靠近标本。
8.调整标本的表面位置,使之与刀刃尽可能平行。
9.松开手轮。
在切片时,匀速转动手轮!当切较硬标本时,放慢手轮转动速度!
10. 转动手轮,可以再次修片。
11. 当修片达到所希望的表面时,停止修片。
12. 选择想要的切片厚度。
13. 顺时针匀速转动手轮,切片。
(二)、调换标本或停止切片在操作切片刀和标本前,或调换标本和切片刀前,或是在休息时,应锁定手轮,用护刀罩盖住刀片边缘!
1.锁定手轮。
2.用护刀罩遮盖住刀刃。
3.从标本夹上取下标本,换块新的。
(三)、切片结束
1.锁定手轮。
2.将切片刀从刀架上取出,把它放入刀盒中。
3.将标本从标本夹上取下。
4.把切片机上所有的废片清理干净。
5.最后盖上罩子,填写记录本。
石蜡切片制作实验报告(一)
石蜡切片制作实验报告(一)石蜡切片制作实验报告概述本次实验是制备组织学切片中使用的石蜡切片。
石蜡切片是组织学研究中常用的一种切片制备方法,通过将组织固定、脱水、浸蜡以及切片等一系列步骤使组织固定在切片上,以供观察。
实验流程本次实验按照以下流程进行:1.取出组织标本,进行固定处理;2.固定后的组织在不断升级的酒精浓度溶液中脱水处理;3.使用排除气泡的炉子将组织浸泡至石蜡中,使其渐渐浸润;4.开始制作切片,将浸润的石蜡切片头制作成适当的角度,再使用切片机器进行切割即可。
具体步骤如下:固定处理1.取出标本,大小适中,保证可以在容器中完全浸润。
2.采用福尔马林-10%缓冲液进行固定,时间不宜过久。
3.在80%乙醇、95%乙醇、100%乙醇各中脱水15min,最后再脱水30min。
石蜡浸渗1.将组织标本放入去离子水中洗涤;2.放入甲醇2小时,2次更换甲醇;3.放入Pure-Lab99嵌入剂:甲醇(2:1、1:1、1:2)中渗透2小时,每次更换的比例变化,最后放在纯浸润剂中浸润15h以上。
4.上蜡,10min90℃,2h60℃接着重复2次10min90℃,最后重复最后一次的操作3次。
制作石蜡切片1.根据需要顺序排布组织标本,并将其固定在切片支架上。
2.制作切片头,可用吹软机将石蜡制软。
3.使用切片机器对浸润好的石蜡进行切割,厚度一般为5-8μm。
实验结果经过以上步骤,我们制得的石蜡切片呈现出清晰、平整、稳定的状态,对组织结构的观察达到了预期目的。
总结本次实验是比较基础的组织学实验,对于相关领域的学习和研究有很大的帮助。
在实验过程中,需要注意每一个步骤的顺序和时间,并根据实际情况做出适当的调整。
同时,在实验结束后需要及时清理相关设备和处理化学废品,保持实验室的安全和整洁。
参考文献•Junqueira, L. C., Bignolas, G., & Brentani, R. R. (1979).Picrosirius staining plus polarization microscopy, aspecific method for collagen detection in tissuesections. The Histochemical Journal, 11(4), 447-455. •Kohno, Y., & Ohtani, S. (1996). Aging of the adrenal glands: microarchitectural changes and cellproliferation in the rat adrenal cortex underadrenocorticotropic hormone stimulation. Archives ofHistology and Cytology, 59(4), 411-422.•Stearns, M. E. (1989). Histology and histochemistry of human prostate. The Prostate, 14(4), 303-317.致谢在实验过程中,我们受到了教师和同学们的悉心指导和帮助,在此谨向他们致以最诚挚的感谢。
脂肪组织石蜡切片技巧
脂肪组织石蜡切片技巧全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:脂肪组织石蜡切片技巧是研究脂肪组织的重要方法之一,它可以帮助科研人员观察和研究脂肪组织的结构和功能。
在进行脂肪组织石蜡切片的过程中,有一些技巧和注意事项需要遵循,才能获得高质量的切片样品。
本文将介绍一些关于脂肪组织石蜡切片技巧的内容,希望能对相关研究工作者有所帮助。
一、脂肪组织的固定和包埋在进行脂肪组织的石蜡切片前,首先需要对脂肪组织进行固定和包埋处理。
固定可以保持组织的形态和结构,常用的固定剂有乙醇、福尔马林等。
固定后,还需要进行脱水、透明化和浸渍等处理,最终将组织包埋在石蜡中。
这些步骤的操作要准确无误,以确保组织被充分固定和包埋,才能获得清晰的切片样品。
二、切片的准备在脂肪组织的石蜡切片过程中,切片的准备是非常关键的一步。
首先要选择合适的显微切片机和刀片,确保切片机有良好的刀片固定装置和切片速度可调节功能。
切片前需要调节切片机的参数,如切片速度、切片角度等,以获得所需的切片厚度。
切片前还需在冰冻面和石蜡块上涂抹硅油,以减小切片时的摩擦阻力,避免切片出现伤口。
三、切片的技巧脂肪组织的石蜡切片过程中,有一些切片技巧是需要注意的。
首先要保持切片过程的稳定和均匀,避免切片过程中的摩擦和振动。
切片时要保持手持刀片的手稳定,用力均匀,以避免切片不均匀或者损坏切片。
切片的速度也要适中,太快或太慢都会影响切片质量。
切片过程中要时刻检查切片的质量,及时调整切片机的参数,以保证切片的质量。
四、切片后的处理脂肪组织的石蜡切片完成后,还需要进行一些后续处理。
首先是切片的染色,通常使用希氏染色或伊红染色等方法染色切片,以增强切片的对比度和清晰度。
染色后,还需要进行脱脂和封片处理,以保护切片并延长其保存时间。
最后将切片放置在显微镜下观察,并进行图像采集和分析,以获取所需的实验数据。
总结第二篇示例:脂肪组织石蜡切片技巧是组织学研究中非常重要的一环,它能够帮助研究者观察细胞结构和形态的变化,从而进一步了解疾病的机理和诊断。
石蜡组织切片实验操作练习详细指导
石蜡切片实验操作练习详细指导提供给实验室的实验用品及每个小组的用量:1、器材切片刀,切片机,恒温箱,温台,熔蜡炉,蜡杯,酒精灯,蜡铲,展片台,解剖刀,解剖针,解剖剪,解剖盘,培养皿,吸管,镊子,单面刀片,台木,毛笔,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,盖玻片,载玻片,玻片盘,树胶,树胶瓶,显微镜,温度计,脸盆,水浴锅。
2、试剂卡诺氏固定液、FAA固定液、各种浓度的酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、埃利希木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸酒精溶液,甘油蛋白粘片剂,郝普特氏粘片剂,中性树胶。
1%番红,1%固绿,1%过碘酸,Schiff试剂,0.5%偏重亚硫酸钠溶液,醋酸酐-吡啶混合液,0.5%~1%淀粉糖化酶溶液。
3、材料鼠肝、肾、心肌、骨骼肌或其他组织、大豆或小麦、绿豆、洋葱、大蒜、蚕豆的根、茎、叶等。
4、每个实验小组的用量(一)器材切片机,切片刀,温台,恒温箱,熔蜡炉,水浴锅等这类几个小组用一台就行;解剖刀,单面刀片,小台木,毛笔一只,蜡铲一个,盖玻片和载玻片30个,脸盆一个,酒精灯各一个,包埋纸盒2~3个,染色缸一个,瓷杯3个,显微镜一台。
(二)试剂FAA固定液50ml、1%番红100ml、1%固绿100ml、1%过碘酸100ml、Schiff试剂100ml、亚硫酸盐300ml、醋酸酐-吡啶混合液100ml、0.5%~1%淀粉糖化酶溶液200ml,石蜡半盒、蜂蜡10块、埃利希木精染液100ml、1%伊红酒精溶液100ml、1%盐酸酒精溶液100ml、95%酒精5瓶、二甲苯2瓶,甘油蛋白粘片剂数滴,中性树胶数滴。
(三)材料小白鼠一只、蚕豆种,小麦和大豆种10~20粒,洋葱和大蒜由实验室统一种,然后取其所需部分。
石蜡切片法实例(一)—木精-伊红对染法一、目的要求1、熟悉石蜡切片的制作过程。
2、掌握HE染色的基本原理和染色方法。
二、实验原理石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。
石蜡切片免疫组化实验步骤
石蜡切片免疫组化实验步骤石蜡切片免疫组化实验是一种常用的实验方法,用于研究细胞或组织中特定蛋白质的表达情况。
下面将详细介绍该实验的步骤。
一、标本固定1.1 选取需要研究的组织标本,如肿瘤组织或正常组织。
1.2 将组织标本进行固定,常用的固定剂有4%的中性缓冲福尔马林溶液。
固定时间一般为24小时。
二、脱水和浸渍2.1 将固定的标本进行脱水,使用不同浓度的酒精进行逐渐脱水,通常是从低浓度到高浓度的酒精。
2.2 脱水后,将标本进行浸渍,使用石蜡和酯类溶剂混合制备浸渍剂,将标本浸渍在浸渍剂中,使其逐渐渗透。
三、石蜡包埋3.1 将浸渍的标本放入石蜡溶液中,使其充分浸泡。
3.2 使用石蜡包埋机将标本置于石蜡中,使其被石蜡完全包裹。
3.3 将石蜡包埋的标本放置于冷冻台上,使石蜡迅速凝固。
四、切片4.1 使用切片机将石蜡包埋的标本切成薄片,通常厚度为4-6微米。
4.2 将切好的标本片放入温水中,使其展开。
4.3 使用载玻片将标本片捞起,放置于载玻片上。
五、脱脂5.1 将载玻片上的标本片放入脱脂剂中,去除石蜡。
5.2 脱脂时间根据实验需求而定,一般为10-20分钟。
六、抗原修复6.1 标本片上的抗原可能在脱脂过程中被破坏,需要进行抗原修复,以使其恢复原有的形态和免疫反应性。
6.2 常用的抗原修复方法有热处理法和酶解法。
热处理法是将标本片放入缓冲溶液中,进行高温加热处理;酶解法是使用特定的酶对标本进行酶解处理。
七、抗体反应7.1 将修复后的标本片进行抗体反应。
首先将载玻片上的标本片加入抗体溶液中,使其与目标蛋白质结合。
7.2 抗体反应时间一般为1-2小时,温度一般为室温或4摄氏度。
7.3 抗体反应后,使用洗涤缓冲液洗涤标本片,去除未结合的抗体。
八、检测与显色8.1 将洗涤后的标本片加入辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗溶液中,使其与一抗结合。
8.2 二抗结合后,使用显色底物,如DAB(3,3'-二氨基联苯)溶液,进行显色反应。
石蜡切片的操作方法
石蜡切片的操作方法石蜡切片是一种常用的组织切片制备方法,用于细胞学和组织学的研究。
下面是石蜡切片的操作方法:1. 收集样本:选择要制备切片的组织样本或细胞样本。
样本可以是动物组织、植物组织或细胞培养物。
2. 选择合适的浸渍剂:石蜡切片需要将样本浸渍在石蜡之中,以固定和保护样本。
常用的浸渍剂包括甲醇、乙醇和二甲苯。
3. 固定样本:将样本固定在固定剂(如甲醛)中,以保持其形态结构。
固定时间根据样本的类型和大小而定,一般在4C下静置数小时或过夜。
4. 脱水:在一系列浓度逐渐增加的乙醇溶液中,将固定的样本从水中脱水,使其逐渐转移到纯度较高的乙醇中。
5. 渗透:将脱水的样本浸渍在二甲苯或其他有机溶剂中,使其渗透并置换乙醇。
浸渍时间根据样本的大小和组织特性而定,一般在一到数小时之间。
6. 包埋:将渗透后的样本置于石蜡中,使其完全浸润。
石蜡块可以预先加热至液态,然后将样本放入其中,或者将样本以及适量的石蜡放入模具中,然后通过加热使其固化。
7. 切片:将制备好的石蜡块放入石蜡切片机中,使用旋转切片刀将其切成薄片。
切片厚度一般为4-10微米。
8. 取片:用切片刀或镊子将切好的石蜡切片取出,并放置在清洁的显微镜载玻片或切片架上。
9. 脱脂:将石蜡切片置于加热的二甲苯或其他脱蜡剂中,使其脱去石蜡。
10. 染色:根据需要,可对石蜡切片进行染色,例如常用的血液和组织标本染色方法如伊红染色(H&E染色)。
11. 干燥:将染色的切片在室温下晾干或在加热台上加热至干燥。
最后,将切片用显微镜载玻片覆盖,并封口保存。
以上就是石蜡切片的一般操作方法,每个实验室可能会根据具体需求进行微调。
在操作过程中要注意安全,避免接触有毒溶剂和使用锋利的刀片时的切割操作。
石蜡切片和半薄切片实验操作
半薄切片预处理:田间样品按各个时期分类,置于固定液中固定并用真空泵抽真空。
实验前,按时期剥取花药,时期比较靠前的则切去颖花前1/2,保留尾部带颖壳的后半截即可。
准备好的样品用真空泵抽真空,直到花药完全落到离心管管底。
实验操作:(1)漂洗。
用0.1 M PBS(pH为7.2)冲洗3-4次,每次20-30min,来去除花药表面的固定液。
(2)乙醇梯度脱水。
依次在70%、85%、90%和95%的乙醇水溶液中脱水,接着用100%乙醇处理3次,每次处理均为20-30min。
(3)丙酮置换乙醇。
在乙醇:丙酮=1:1溶液(此时滴加曙红染液染色)和纯丙酮3次处理,每次60min;(4)树脂渗透。
在丙酮:树脂=2:1、丙酮:树脂=1:1、丙酮:树脂=1:2和纯树脂(2次)四种条件下处理,每个3小时,其中在丙酮:树脂=1:1或纯树脂条件下时可过夜。
注意树脂需要现配现用,严格防潮。
(5)包埋。
将样品在加了树脂的模具中摆放好,小心放进烘箱里,完成聚合。
聚合条件:35℃(12小时),45℃(24小时)和60℃(48小时)。
注意前期过程中随时检查花药摆放并及时调整。
(6)修块。
在解剖镜下,根据样品位置,用手术刀修掉样品周围的包埋剂,露出样品组织形状,接着将组织周围的多余包埋剂小心修除掉,最后保留呈直角梯形的含有样品的包埋剂,便于切样。
(7)切片。
在Leica UC7 超薄切片机上进行切片,切片厚度为 1 μm。
在干净的载玻片上加一滴蒸馏水,用工具将切好的切片移至水滴上,烤片机60℃过夜烤干,使切片展开并牢固粘附在载玻片上。
切片完成后镜检,选出切得好的片子进行后续染色;(8)染色观察。
用0.5%甲苯胺蓝染色液染色,染液可重复利用,染色后进行自来水、蒸馏水浸洗,洗至颜色适中时,过夜烘干。
观察前使用树胶封片,在显微镜下观察并拍照。
试剂配方:1.树脂配方 10mL 20mL 25mL 50mL (总体积)PON812 5.2 10.4 13.42 26.84DDSA 1.6 3.2 4.5 9.04NMA 3 6 7.6 14.13DMP-30 0.25 0.5 0.38 0.752.PBS配方A液0.2M Na2HPO4重量分两种情况:Na2HPO4-2H2O 17.8gNa2HPO4-12H2O 35.8gB液0.2M NaH2PO4NaH2PO4-2H2O 15.6gpH 7.0(100mL体系): 61mL A液+ 39mL B液混合pH 7.2(100mL体系): 72mL A液+ 28mL B液混合pH 7.4(100mL体系): 81mL A液+ 19mL B液混合石蜡切片取样方法和预处理同半薄切片实验。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
石蜡切片实验操作练习详细指导提供给实验室的实验用品及每个小组的用量:1、器材切片刀,切片机,恒温箱,温台,熔蜡炉,蜡杯,酒精灯,蜡铲,展片台,解剖刀,解剖针,解剖剪,解剖盘,培养皿,吸管,镊子,单面刀片,台木,毛笔,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,盖玻片,载玻片,玻片盘,树胶,树胶瓶,显微镜,温度计,脸盆,水浴锅。
2、试剂卡诺氏固定液、FAA固定液、各种浓度的酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、埃利希苏木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸酒精溶液,甘油蛋白粘片剂,郝普特氏粘片剂,中性树胶。
1%番红,1%固绿,1%过碘酸,Schiff试剂,0.5%偏重亚硫酸钠溶液,醋酸酐-吡啶混合液,0.5%~1%淀粉糖化酶溶液。
3、材料鼠肝、肾、心肌、骨骼肌或其他组织、大豆或小麦、绿豆、洋葱、大蒜、蚕豆的根、茎、叶等。
4、每个实验小组的用量(一)器材切片机,切片刀,温台,恒温箱,熔蜡炉,水浴锅等这类几个小组用一台就行;解剖刀,单面刀片,小台木,毛笔一只,蜡铲一个,盖玻片和载玻片30个,脸盆一个,酒精灯各一个,包埋纸盒2~3个,染色缸一个,瓷杯3个,显微镜一台。
(二)试剂FAA固定液50ml、1%番红100ml、1%固绿100ml、1%过碘酸100ml、Schiff试剂100ml、亚硫酸盐300ml、醋酸酐-吡啶混合液100ml、0.5%~1%淀粉糖化酶溶液200ml,石蜡半盒、蜂蜡10块、埃利希苏木精染液100ml、1%伊红酒精溶液100ml、1%盐酸酒精溶液100ml、95%酒精5瓶、二甲苯2瓶,甘油蛋白粘片剂数滴,中性树胶数滴。
(三)材料小白鼠一只、蚕豆种,小麦和大豆种10~20粒,洋葱和大蒜由实验室统一种,然后取其所需部分。
石蜡切片法实例(一)—苏木精-伊红对染法一、目的要求1、熟悉石蜡切片的制作过程。
2、掌握HE染色的基本原理和染色方法。
二、实验原理石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。
苏木素与伊红对比染色法(简称H.E.对染法)是组织切片最常用的染色方法。
这种方法适用范围广泛,对组织细胞的各种成分都可着色,便于全面观察组织构造,而且适用于各种固定液固定的材料,染色后不易褪色可长期保存。
经过HE染色,细胞核被苏木素染成蓝紫色,细胞质被伊红染色呈粉红色。
三、实验用品(一)器材切片机,切片刀,温台,恒温箱,解剖刀,镊子,剪刀,解剖针,单面刀片,小台木,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,烧杯,水盆,熔蜡炉,蜡杯。
(二)试剂卡诺(Carnoy)固定液,埃利希苏木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸乙醇液,各级酒精(30%、50%、70%、80%、90%、95%、100%),二甲苯,甘油蛋白粘片剂,中性树胶。
试剂配法:1、卡诺氏固定液:100%酒精3份冰醋酸1份或:100%酒精6份氯仿3份冰醋酸1份2、埃利希苏木精染液的配法:苏木精1g纯酒精50ml冰醋酸5 ml甘油50 ml钾矾(硫酸铝钾)约5g(饱和量)蒸馏水50 ml配法:ⅰ、将苏木精溶于约15 ml的纯酒精中,再加冰醋酸后搅拌。
ⅱ、当苏木精溶解后即将甘油倒入并摇动容器,同时加入其余的酒精。
ⅲ、将钾矾在研钵中研碎并加热,然后将它溶解于水中。
ⅳ、将温热的钾矾溶液一滴一滴地加入上述染液中,并随时搅动。
ⅴ、此液混合完毕,将瓶口用一层纱布包着小块棉花塞起来,放在暗处通风的地方,并经常摇动以促进它的成熟。
成熟时间约3~4周。
若加入0.2g碘酸钠,可立刻成熟。
此液稳定而染色均匀,染核效果良好,不会发生沉淀,长期贮备无妨。
此液可分别与伊红等进行二重染色。
3、1%伊红酒精溶液:伊红1g溶于100 ml95%酒精溶液。
4、1%盐酸乙醇液盐酸1份70%酒精100份5、甘油蛋白贴片剂:蛋白50 ml甘油50 ml水杨酸钠(防腐剂)1g配制时将鸡蛋一个打破入碗或杯中,去蛋黄留下蛋白,用玻棒调打成雪花状泡沫,然后用粗纸或双层纱布过滤到量筒中,经数小时或一夜,即可滤出透明蛋白液。
此时在其中再加等量的甘油,稍稍振摇使两者混合。
最后加入防腐剂(水杨酸钠)作防腐用。
可保存几个月。
(三)材料鼠肝三、实验程序1、取材颈椎脱臼法处死小鼠,打开腹腔,剪取肝组织(或小肠)。
切取的组织块不宜太大,以便固定剂穿透,通常以5mm×5mm×2mm或10 mm×10 mm×2 mm为宜。
取下所需要的肝组织,切成一小块2~3mm厚。
取材的注意事项:(1)取材动作要迅速,不宜作太久的拖延以免组织细胞的成分、结构等发生变化。
(2)切片材料应根据需要观察的部位进行选择,尽可能不要损伤所需要的部分。
2、固定将切好的肝组织用生理盐水组织洗一下,立即投入卡诺固定液中固定,固定30~50min。
固定的注意事项:(1)一般固定液,都以新配为好,配好后应贮存在阴凉处,不宜放在日光下,以免引起化学变化,失去固定作用。
(2)有些混合固定液的成份之间会发生氧化还原作用,一定要在使用前才混合,如果混合太早,固定时就没有作用了。
(3)固定材料时,固定液必须充足,一般为材料块的20~30倍,有些水分多的材料,中间应更换1~2次新液。
(4)材料固定完毕后,保存于严密紧塞或加盖的容器里,同时在容器外上标签,并随同材料在溶液中投入相应的标签,以免相互混淆。
标签上注明固定液、材料来源、日期等。
标签上的文字,应用黑色铅笔或绘图黑墨水书写。
1、洗涤材料经固定后,除乙醇外,组织中的固定液必须冲洗干净,尤其是含有重金属的固定液。
因为残留在组织中的固定液,有的不利于染色,有的产生沉淀或结晶影响观察。
冲洗方法根据固定液的性质而定,固定液为水溶液的常用水洗涤,固定液含有乙醇的则用50%~70%乙醇冲洗。
2、脱水30%、50%、70%、80%、90%各级乙醇溶液脱水各40min,放入95%、100%各两面三刀次,每次20min。
各种材料经固定与洗涤后,组织中含有大量水分,由于水与石蜡不能互溶,所以必须将组织中的水分除去。
脱水注意事项(1)脱水必须在有盖的玻璃品中进行,防止吸收空气中的水分。
(2)在更换高一级的脱水剂时,最好不要移动材料以免损坏,可用吸管吸出器皿中的脱水剂,再用吸水吸尽器皿内剩余液,然后于皿中加入高一级脱水剂。
(3)在低浓度或纯酒精中,每级停留不宜太长,否则易使组织变软,助长材料的解体。
(4)在高浓度或纯酒精中,每级停留的时间也不宜太长,否则会使组织变脆,影响切片。
(5)如需过夜,应停留在70%酒精中。
(6)脱水必须彻底,否则不易透明,甚至使透明剂内出现白色混浊现象5、透明纯酒精、二甲苯等量混合液15min,二甲苯0.5h(或至透明为止),须换一次二甲苯。
由于乙醇与石蜡不相溶,而二甲苯既能溶于乙醇又能溶于石蜡,所以脱水后还要经过二甲苯以过渡。
当组织中全部被二甲苯占有时,光线可以透过,组织呈现出不同程度的透明状态。
透明注意事项(1)使用透明剂时,要随时盖紧盖子,以免空气中的水分进入。
(2)更换每级透明剂,动作要迅速,一方面为了不使材料块干涸,另一方面能避免吸收湿气。
(3)在透明过程中,如果材料周围出现白色雾状,说明材料中的水未被脱净,应退回纯酒精中重新脱水,然后再透明。
6、透蜡放入二甲苯和石蜡各半的混合液15min,再放入石蜡Ⅰ、石蜡Ⅱ透蜡各20~30分钟。
透蜡的目的是除去组织中的透明剂(如二甲苯等),使石蜡渗透到组织内部达到饱和程度以便包埋。
透蜡时间根据组织的透蜡时间较长,约需1~2d。
透蜡应在恒温箱内进行,并保持箱内温度在55~60℃左右,注意温度不要过高,以免组织发脆。
置于恒温箱0.5h。
透蜡注意事项(1)尽量保持在较低温度中进行,以石蜡不凝固为度;(2)透蜡温度要恒定,不可忽高忽低;(3)操作要迅速,力求在最短的时间内完成石蜡透入过程,以免引起组织变硬、变脆、收1、包埋将经过透蜡的组织连同熔化的石蜡,一起倒入容器内,然后立即投入冷水中,使其立刻凝固成蜡块。
用于包埋的石蜡的熔点在50~60℃之间,包埋时应根据组织材料、切片厚度、气候条件等因素,选择不同熔点的石蜡。
一般动物材料常用的石蜡熔点为52~56℃,植物材料用的石蜡熔点为54~58℃。
包埋的操作过程包埋时,将纸盒放在已经加热的温台上,从温箱中取出盛放纯石蜡的蜡杯,倒入包埋用的纸盒中,取出存放材料的蜡杯3,迅速轻轻地用镊子夹取材料平放于纸盒底部(注意切面朝下放置),再用温镊子轻轻拨动材料,使之排列整齐。
轻轻将纸盒两侧的把手提起,慢慢地平放在面盆,并立即使它沉入水中,使盒中包埋块迅速凝固。
待石蜡完全凝固(约30min)后即可取出备用。
2、切片①将已固定和修好的石蜡块台木装在切片机的夹物台上。
②将切片刀固定在刀夹上,刀口向上。
③摇动推动螺旋,使石蜡块与刀口贴近,但不可超过刀口。
④调整石蜡块与刀口之间的角度与位置,刀片与石蜡切片约成15度左右。
⑤调整厚度调节器到所需的切片厚度,一般为4~10微米。
⑥一切调整好后主可以开始切片。
此时右手摇动转轮,让蜡块切成蜡带,左手持毛笔将蜡带提起,摇转速度不可太急,通常以40~50r/min。
⑦切成的蜡带到20~30cm长时,右手用另一支毛笔轻轻将蜡带挑起,以免卷曲,并牵引成带,平放在蜡带盒上,靠刀面的一面较光滑,朝下,较皱的一面朝上。
⑧用单面刀片切取蜡片一小段,放在载玻上加水一滴,置于放大镜或显微镜下观察切片是否良好。
⑨切片工作结束后,应将切片刀取下用氯仿擦去刀上沾着的石蜡,把切片机擦拭干净妥为保存。
3、贴片①、取一片清洁的载玻片,滴一滴粘片剂于玻片中央,然后用洗净的手指加以涂抹,便成均匀薄层。
②、滴1~2滴的蒸馏水已涂粘片剂的载玻片上。
③、用小镊子夹取预先用刀片割开的蜡带,放在水面上,注意蜡片光亮平整的一面贴于玻片上,并使之处于稍偏玻片的一端,另一端便于粘贴标签。
④、把玻片摆好片位置,在酒精灯火焰上方适度加热至蜡片舒展。
或放置置于预先加热的展片台上(温度保持在40~45℃)。
此时蜡片因受热而伸展摊平。
并使之处于稍偏玻片的一端,另一端便于粘贴标签。
⑤、展片后把载玻片放在平盘上编好记号置于37℃温箱烘干,一昼夜干燥后即可取出存放于切片盒待染。
10、脱蜡复水石蜡切片经二甲苯Ⅰ、Ⅱ脱蜡各5~10min,然后放入100%、95%、90%、80%、70%等各级酒精溶液中各3~5min,再放入蒸馏水中3min。
染色液多数为水溶液,因此,染色前必须将蜡脱去,使切片中的材料由有机相进入到水相。
一般采用二甲苯脱蜡,逐级复水与脱水浸蜡过程正好相反,但是,由于蜡片较薄,所需时间比脱水浸蜡要短的多。
切片放入苏木精中染色约10~30min。
染色时间应根据染色剂的成熟程度及室温高低,适当缩短或延长。
室温高时促进染色,染色时间可短些,否则可适当延长时间,冬季室温低时可放入恒温箱中染色。