最全浮游藻类的分类

样品计数（显微镜）
显微镜的校准
将目（测微）尺放入10倍目镜内，应使用刻度清晰成像 （一般刻度面应朝下），将台（测微）尺当作显微玻片标本， 用20倍物镜进行观察，使台尺刻度清晰成像。台尺的刻度代 表标尺上的实际长度，一般每小格0.01mm。转动目镜并移 动载物台，使目尺与台尺平行，并且目尺的边沿刻度与台尺 的0点刻度重合，然后数出目尺10格相当于台尺多少格，用 这个格数去乘0.01mm，其积表示目尺10格代表标本上的长 度多少。用台尺测出视野的直径，按πr2计算视野面积。
多样性指数
Goodnight修订指数（GBI） Shannon-wiener多样性指数（H’） 生物学污染指数（BPI） 硅藻指数 Margelef指数
群落结构演替
演替是一个群落为另一个群落所取代的过程，它是群落 动态的一个最重要的特征。主要是由于藻类之间和藻类与环 境之间的相互作用，以及这种相互作用的不断变化而引起的 自然演替过程。主要包括季节动态和年变化。
样品计数（显微镜）
计数方法
计数单位：一个单细胞生物，一个自然群体，都看作一个 单位。藻类个体数亦有以细胞数计。 视野计数法：在显微镜（400 ～ 600倍）下观察100个或 200个视野，一般计数两片。 长条计数法：选取两相邻刻度从计数框的左边一直计数到 计数框的右边成为一个长条。一般计数三条，即第2、5、8条。
另外，藻类的种群结构和污染指示种是湖泊营养型评价 的重要参数，尤其是那些在某种特定的环境(营养)条件下能 大量生存的藻类，即污染指示藻类的种类和数量，在一定程 度上可直接反映出环境条件的改变和水体的营养状况。
优势种
优势种，是指群落中占优势的种类，它包括群落每层中在数量、体 积上最大、对生境影响最大的种类。藻类学家在“指示种类”方法的基 础上，提出了用整个藻类群落的种类组成和优势种群的变化来评价污染 的方法。 Fjerdingstad（1964）年用群落中的优势种来划分污染带，在 污水生物系统的基础上，根据受生活污水污染的水体中优势生物种类的 不同，划分为9个污水带。
浮游藻类的基本特征
基本定义：浮游藻类是指所有生活在水中营浮游生活方式 的微小植物。 基本特征：具有光合色素，能进行光合作用，营自养生活； 植物体没有真正的根、茎、叶分化；生殖器官是单细胞的，用 单细胞的孢子或合子进行生殖。
浮游藻类的细胞结构
细胞壁 色素和色素体 贮藏物质 液泡和鞭毛
植物
多污带
α－中污带
β－中污带
无硅藻、绿藻、 藻类大量出现， 硅藻、绿藻、结
结合藻以及高 有蓝藻、绿藻、 合藻的许多种类
等植物
结合藻和硅藻 出现；此带为鼓
藻类主要分布区
寡污带
水中藻类少， 着生藻类多
指示种
狭义的“指示生物”即以某些种类的存在或消失作为监 测指标。公认的“指示种类”应用的鼻祖是Kolkwitz 和 Marrson ，他们不仅提出河流有机污染的污水生物系统，还 为各个不同污染带举出了不同的指示生物，而后被许多研究 者（Patrick 1949; Liebmann 2019; Fjerdingstad 1964; Sladecek 1973）不断的修改和补充提出各种污染带中更为 详细的指示生物名录。1969年Palmer对许多忍受有机污染 的藻类作了综合分析，并对这些藻类的指示作用作了评分。
黄藻门
硅藻门
隐藻门
金藻门 蓝藻门
甲藻门绿藻门ຫໍສະໝຸດ 裸藻门浮游藻类的分门
藻类的分类有不同的看法，主要在分类地位， 分类依据等方面。
目前国内大多学者把常见淡水藻类分成11-13个 门（即蓝藻门、隐藻门、甲藻门、金藻门、黄藻门、 硅藻门、裸藻门、绿藻门、红藻门、褐藻门、轮藻 门）。
注： 红藻门、褐藻门不常见，轮藻门多为着生藻类（现 已归并成绿藻门的一个纲），本课件不展开讨论。
分类计数必须在200个藻体以上，否则需全片或浓缩计数。 硅藻破壳不计数，藻类计数用画“正”的方式进行。 两片的数值与其平均值之差大于±15%，需进行第三片计数。
样品计数（显微镜）
结果换算
计算公式：N=[(A/Ac)×(Vw/V)]n 式中： N—每升原水样中浮游植物的数量（个/L）； A—计数框面积（mm2）； Ac—计数面积（mm2）； Vw—原样定容的体积（ml）； V—计数框体积（ml）； n—计数所得的藻类的个数或细胞数。
采样频次
采样频率一般2～4次/年； 时间以夏秋两季为宜； 有些湖泊可按丰枯水期采样； 根据排污或藻类爆发（如蓝藻爆发状况，水交换频繁 的湖泊，可随时增加采样次数。）
采样层次
≤2m
0.5m左右深处采集亚表层水样 若透明度很小，下层加取，制成混合样
≤5m 水表面以下0.5、1、2、3和4m等五个水层采样，取定量水样，制混合样
粪生带：无藻类优势群落,基本无藻类。 甲型多污带：无藻类优势群落,基本无藻类。 乙型多污带：裸藻群落，优势种为绿裸藻和静裸藻。 丙型多污带：绿色颤藻群落。 甲型中污带：环丝藻群落或底生颤藻群落或小毛枝群落。 乙型中污带：脆弱刚毛藻或席藻群落（包括蜂巢席藻、韧氏席藻）。 丙型中污带：红藻群落，优势种群为串珠藻；或者绿藻群落，优势 种团刚毛藻或环丝藻。 寡污带：绿藻群落，优势种为簇生竹枝藻；或环状扇形藻等。 清水带：绿藻群落，优势种为羽状竹枝藻，或蓝藻群落眉藻属。
定性样品
用25#浮游生物网在表层至0.5m深处以20～30cm/s的速 度作∞形循回拖动约1～3min。
样品固定
定量样品 测定藻类用的水样采样后应立即加以固定以免时间延长样
品变质。固定剂用鲁哥氏液，一般用量为1L水样中加15ml鲁 哥氏液，使水样摇匀即可。
定性样品 定性样品一般采样量为20ml（指管容积），加福尔马林
细胞壁
大多数藻类细胞都有细胞壁（除裸藻、部分甲藻、金藻及生 殖细胞[即动孢子、配子等不具细胞壁）。 细胞壁一般分内外两层、内层较坚硬，外层较柔软，成分为 纤维素、果胶质、二氧化硅、碳酸等。 藻类细胞壁大多平滑，也有具有各种花纹、刺、棘或突起等。
色素和色素体
藻类含有的色素组成极为复杂，大致可分为叶绿素（a、b、 c、d、e）、胡萝卜素（α，β，r，ε）、藻胆素（藻蓝素、别藻蓝 素、藻红素）、叶黄素（二十来种）四大类。 不同的色素组成标志着进化的不同方向，是分门的主要依据。 藻类细胞中的色素载体叫色素体，其形状有盘状、板状、杯 状、带状、螺旋状等；位于细胞中心或中轴的称轴生，位于细胞 周围、靠近细胞壁的称周生。 色素体在藻类细胞中的数量、形状和不同位置都是分类鉴定 时的重要依据。
浮游藻类监测与分类
翁建中
提纲
一 浮游藻类监测 二 浮游藻类分类
一、浮游藻类的监测
浮游藻类 监测
监测 方法
评价 方法
断面布设原则
断面布设的代表性
污染源附近；排污口下游；敏感区域（水源地等）
与水化学监测断面布设的一致性
同步采样；数据对比；全面评价
断面布设要考虑水体环境的整体性
对照断面；污染断面；观察断面
样品计数（仪器法）
目前有多种藻类监测仪器可对水样进 行藻类细胞数量的测定，一般计数单位为 细胞数/升。
评价方法
污水生物系统 指示种 优势种 群落结构演替 多样性指数 生物密度
污水生物系统
污水生物系统：水体受污染后形成的特有生物群落，可以用来进行水污染 生物学评价。污水生物系统是德国学者Kolkwitz 和Marrson于20世纪初提出的。 其理论基础是河流受到有机物污染后，在污染源下游的一段流程里，会产生自 净过程，即随河水污染程度的逐渐减轻，生物种类也发生变化，在不同的河段 出现不同的生物种。据此,可将河流依次划为4个带：多污带、 α－中污带、β－ 中污带（即甲型、乙型中污带）和寡污带，每个带都有自己的物理、化学和生 物学特征。50年代以后，一些学者经过深入研究，补充了污染带的种类名录， 增加了指示种的生理学和生态学描述。1964年日本学者津田松苗编制了污水生 物系统各带的化学和生物特征表。
断面布设的经济性
优化验证；样品及时运输
断面布设的连续性
长期、连续、可比性数据
断面布设方法
河流
平原水网地区一般不布设浮游藻类断面，建议采集着生藻类。
湖泊水库
入湖（库）口区 湖（库）中心区 湖（库）出口区 湖（库）特殊水区 沿湖（库）边排污口区 湖（库）相对清洁区
若水体是圆形或接近圆形，两岸设置两个相互垂直的采样；狭长 的水域则设置三个相互平行，间隔均匀的断面。
以太湖群落演替为例： 浮游藻类：近50年来，浮游藻类种类减少，生物量上升。 50-60年代优势种群以硅藻为主，80年代绿藻、硅藻和蓝藻 为优势种群，90年代优势种群以蓝藻为主。 有研究表明水草对藻类有明显的抑制作用，然而，由于 大量滤食性鱼类的放养，增加了对大型藻类的摄食压力，使 得小型藻类大量繁殖，呈现藻类小型化（陈立侨等，2019）。
＞5m
深水水体可按3～6m间距设置采样层次，变温层以下的水层可适当少采样； 对透明度较大的深水水体，可按表层、透明度0.5倍处、1倍处、1.5倍处、 2.5倍处、3倍处取样，制混合样
水华期间 表层0.2m、亚表层层0.5m和底层各采一定量水样，制混合样
备注 若需了解浮游植物垂直分布状况，可分层次分别采样，不需混合
生物密度
藻类个体数 划分标准： 贫营养型：<30万个/升 中营养型：30～100万个/升 富营养型：>100万个/升
藻类湿重 浮游藻类的比重近于1，其湿重相当于其体积。 划分标准： 贫营养型：<3mg/L 中营养型：3～5mg/L 富营养型：5～10mg/L 超富营养型：>10mg/L
二、浮游藻类的分类
用作测量和计数的其他镜头的每一种搭配，也都应作同 样的校准和记录。
样品计数（显微镜）
计数框及其使用
一般用容量0.1ml的计数框，计数框的实际长宽度 和每两相邻刻度之间的实际距离，应事先用测微尺准 确测量并记录。注液前，将盖玻片斜盖在计数框上， 将样品按左右平移的方式充分摇匀，迅速吸取0.1ml样 品到计数框中，将盖玻片平旋正位。计数框内应无气 泡，也不应有样品溢出。
25#浮游生物网（孔径为0.064mm，200孔/in，1in＝ 0.0254m）。
采样量
根据浮游藻类的密度和研究的需要量而定。
定量样品
一般以1～2L为宜，藻类密度高的采水量可少，密度 低的采水量则要多。
定性样品
一般水体中沿表层至0.5m拖滤1.5～5.0m3体积。
样品采集
定量样品
一般用有机玻璃采水器采样，采水器深入水中，根据刻 度采集不同水层的水样。
仪器和器具
显微镜、冰箱、有机玻璃采样器、25#浮游生物网、 烧杯、镊子、载玻片、盖玻片、刻度吸管、胶头滴管、 硅橡胶管、乳胶管、量筒50ml、采样瓶50ml和1000ml 若干等。
采样工具
定量样品
1000ml、1500ml、2000ml等各种容量和不同深度型 号的有机玻璃采水器。
定性样品
实验室要求
前处理室和镜检室两分开。 每间实验室面积不低于15平方米。 显微镜室需要防潮（湿度不超过85％，否则需要除 湿），防震（工作台振幅不大于2µm，最好加橡胶垫），防 酸雾；镜头需要单独避光、防潮、防尘、防震保存（棕色干 燥器）；需要醒目标志，加窗帘；需要通风设备。 实验室内需要配置相应的基础设施，购买相应的仪器 和器具。
溶液1ml、甘油2ml。为防止样品褪色，可在样品中加1、2滴 饱和硫酸铜溶液。
对于浮于水样表层的样品（如带气囊的微囊藻）可在 样品中加入适量皂液，以便沉降。

Lugols鲁哥氏液固定液：称取40g碘及60g碘化钾（分析纯），溶
于1000ml纯水中。
样品沉淀和浓缩
沉淀和浓缩可以在筒形分液漏斗或直接在采样瓶中进行， 因为一般浮游藻类的大小为几微米到几十微米，再经过碘液 固定后，下沉较快，所以静置沉淀时间一般需用24 ～ 48h。 然后用细小玻璃管加乳胶管或小橡皮管以虹吸方式缓慢 地吸去上层的清液，注意不能搅动或吸出浮在表面和沉淀的 藻类。 最后留下约20ml时，将沉淀物放入容积为50 ～100ml 的试剂瓶中，试剂瓶事先应精确的在30ml处做好标记，用吸 出的上层清液或蒸馏水冲洗分液漏斗或采样瓶2～3次，一起 放入试剂瓶中，在计数时定容到30ml（转移量大于30ml时可 多次虹吸。