愈伤组织诱导及观察

实验二愈伤组织诱导及观察

. 实验目的

通过愈伤组织诱导的操作，使同学们了解进行植物组织培养时的一些关键操作技术和方法，如外植体的选择、培养基母液配制、使用液配制、分装灭菌、外植体表面消毒、接种、培养、愈伤组织诱导原理和方法以及接种后污染率，愈伤组织诱导率的统计与观察。使同学们能够亲身体会、了解激素对外植体的作用，还使同学们了解无菌培养的无菌操作，清楚植物体的带菌部位等。

二. 实验内容

（一）、实验原理

植物组织培养是指在无菌条件下，对离体植物组织（器官或细胞）分离并在培养基中培养，使其能够继续生长，甚至分化发育成一完整的植株的一门实验技

术。组织培养的理论依据是植物细胞的全能性，即植物体的每个细胞携带着一套完整的基因组，因此具有发育成完整植株的潜在能力。植物组织当中原本已经分化的细胞，一旦脱离原有的机体环境，成为离体状态，在适宜的营养和外界条件

下，就会表现出全能性，从已经分化定型的细胞，脱分化，成为恢复分裂能力的细胞，并能重新生长发育成完整的植株。愈伤组织就是指一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化不断分裂、增生子细胞，这些细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明，逐渐形成了无序结构的一团细胞。在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。

愈伤组织的形成

从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期

起动期是指细胞准备进行分裂的时期。用于接种的外植体的细胞，通常都是

成熟细胞，处在静止状态。起动期是通过一些刺激因素（如机械损伤、改变光照强度、增加氧等）和激素的诱导作用，使外植体细胞的合成代谢活动加强，迅速进行蛋白质和核酸的合成。机械损伤能诱导植物体细胞开始分裂，如伤口上会出现愈伤组织。在植物组织培养中沿用了愈伤组织这一名词，但是植物组织培养中诱导外植体细胞分裂形成的愈伤组织，大都不是损伤的结果。外源的生长素类物质对诱导细胞开始分裂效果很好，因此生长素类物质在植物组织培养中得到广泛应用，常用的有2，4- 二氯苯氧乙酸、萘乙酸、吲哚乙酸和细胞分裂素等。

分裂期是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。处于分裂期的愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。外植体的脱分化因植物种类、器官来源及其生理状况的不同而有很大差别。例如，烟草、胡萝卜等植物的脱分化比较容易，禾本科植物的脱分化比较难；花的脱分化比较容易，茎、叶的脱分化比较难；幼嫩组织的脱分化比较容易，成熟的老组织脱分化比较难。

分化期是指在分裂期的末期，细胞内开始出现一系列形态和生理上的变化，从而使愈伤组织内产生不同形态和功能的细胞。这些细胞类型有薄壁细胞、分生细胞、色素细胞、纤维细胞，等等。外植体的细胞经过起动、分裂和分化等一系列变化，形成了无序结构的愈伤组织。如果在原来的培养基上继续培养愈伤组织，会由于培养基中营养不足或有毒代谢物的积累，导致愈伤组织停止生长，甚至老化变黑、死亡。如果要让愈伤组织继续生长增殖，必须定期地（如2〜4周）将它们分成小块，接种到新鲜的培养基上，这样愈伤组织就可以长期保持旺盛的生长。

愈伤组织的形态发生方式

经过起动、分裂和分化期产生的愈伤组织，其中虽然发生了细胞分化，但是并没有器官发生。只有满足某些条件，愈伤组织的细胞才会发生再分化，产生芽和根，进而发育成完整植株。愈伤组织的形态发生方式主要有不定芽方式和胚状体方式两种。不定芽方式是在某些条件下，愈伤组织中的分生细胞发生分化，形成不同的器官原基，再逐渐形成芽和根。胚状体方式是由愈伤组织细胞诱导分化

出具有胚芽、胚根、胚轴的胚状结构，进而长成完整植株。这种由愈伤组织中的薄壁细胞不经过有性生殖过程，直接产生类似于胚的结构，叫做胚状体。在植物组织培养中，不定芽方式和胚状体方式是愈伤组织形态发生的两种最常见和最重要的方式。胚状体方式比不定芽方式有更多的优点，如胚状体产生的数量比不定芽多，胚状体可以制成人工种子，等等。

（二）实验材料和用具

1 植物材料

银杏种子

2 实验仪器和试剂

1）仪器设备超净工作台、高压灭菌锅、微波炉、人工气候箱、电子天平、移液器、恒温磁力搅拌器、酸度计、手术刀、手术剪、称量纸、皮筋、封口膜、三角瓶、量筒、烧杯（1000ml）、试剂瓶（1000ml、100ml）、长镊子、记号笔（或标签纸）、培养皿、酒精灯等。

2）试剂

75% 酒精、氯化汞、植物生长激素（NAA BA1）、蔗糖、琼脂粉、HCI、NaOH WS母液配方见表1。

（三）实验方法

1 培养基配制

1 ）. 培养基的选择植物组织培养中应用的培养基，一般由无机营养物、碳源、维生素、生长调节剂和有机附加物等五类物质组成。无机营养物包括大量元素和微量元素。大量元素：C、H、O N、P、S、K、Ca Na Mg等，微量元素：Mn Zn、Cu B Mo

Fe 等。碳源一般为蔗糖。维生素中只有硫胺素是必需的，而烟酸、维生素B6 和肌醇对生长之起促进作用。常用的生长调节剂有IAA （吲哚乙酸）、IBA （吲哚-3- 丁酸）、NAA （萘乙酸）、NOA（萘氧乙酸）、P-CPA （对氯苯氧乙酸）、2，4-D （二氯苯氧乙酸）、2, 4, 5-T （三氯苯氧乙酸）；BA P （苄氨基嘌呤）、6-BA

（苄基腺嘌呤）、2-Zi （异戊烯氨基嘌呤）、KT （激动素

）等。有机附加物是指甘氨酸、水解酪蛋白、椰子乳等，可促进分化，但如培养基配方适当，则大多数组织是不需要的。培养基的种类、成份直接影响到培养材料的生长发育，故应根据培养植物的种类和部位，选择适宜的培养基。

2 ）. 培养基的配制

①先按表1配制wst养基贮液。

②再将贮液与其他成分按比例混合。

③加入3%勺蔗糖作为碳源，起支持作用的琼脂粉8 g/L ,愈伤组织培养基配方为WS培养基+NAA1 mg/L +BA1 mg/L。

④将上述培养基加热溶解后，加蒸馏水使培养基达到终体积。

⑤再用O.1mol/L NaOH或0.1mol/L HCI 调节培养基的pH值至56-5.8。

⑥分装至三角瓶内，封口膜封口，等待灭菌后使用。

2 灭菌

1 ）．培养基及器具灭菌培养基、无菌水需要在高压灭菌锅中灭菌。灭菌作用取决于

温度，常用的灭

菌温度为121C，所需时间20分钟，灭菌结束后待温度下降到50C以下，才能取出已灭菌的培养基。

可用同样方法对器具同时进行灭菌，包括：培养皿、解剖刀、剪子、滤纸、镊子等。

2）．工作环境灭菌

接种前1 h打开超净工作台和棚面的紫外灯照射40mi n。杀菌结束后，先关掉棚面的紫外灯，再打开风机，最后关掉超净工作台上的紫外灯。在接种后休息

时，要先打开台面的紫外灯，再关风机，最后打开棚面紫外灯。不能将风机与台面上的紫外灯同时关闭或先关闭风机再开紫外灯。

3）. 植物材料的灭菌

植株各部分的表面携带着各种微生物，他们是植物组培的污染源，所以在接

种培养前必须进行彻底的表面消毒；组织内部侵染的真菌或细菌很难消除，这些

组织一般淘汰不用。消毒前需用流水清洗植物材料表面污垢，再用无菌洁净滤纸

吸干水分。