骨骼肌卫星细胞的研究现状

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肌卫星细胞的研究进展

肌卫星细胞的研究进展

肌卫星细胞的研究进展作者:李小雷来源:《中国保健营养·中旬刊》2013年第03期【摘要】干细胞研究仍然是当今医学的热点问题,尤其是肌肉干细胞因直接参与骨骼肌分化而备受关注。

胚胎和成人体内都存在肌肉干细胞。

由于肌肉卫星细胞在肌肉的发育和再生中发挥主要作用,目前公认的成人体内肌肉干细胞主要是指肌肉卫星细胞。

近年研究发现,肌卫星细胞在组织工程和疾病研究中都起着比较重要的作用,将为治疗包括帕金森病在内的多种临床退行性疾病提供自体干细胞的新来源。

【关键词】肌干细胞;肌再生;肌肉修复;肌卫星细胞【中图分类号】R285.5 【文献标识码】A 【文章编号】1004-7484(2013)03-0141-01肌卫星细胞Mauro[1]等于1961年首次在蛙骨骼肌中发现。

肌卫星细胞是具有增殖和自我更新能力的成肌前体细胞,这种组织特异的祖细胞在出生后骨骼肌的损伤、修复和维持再生中起着重要的作用。

Gussoni等[2]用Hoechest/FACS方法从骨骼肌中分离到多能干细胞,有关性质尚不清楚。

这些肌源干细胞既能形成再生肌纤维,也能有效重建造血系统。

肌源干细胞的这种可塑性,使有关肌卫星细胞的起源、激活与分化的分子调控机制以及肌卫星细胞的干细胞特性等方面的研究成为该领域的热门课题。

1 肌卫星细胞的起源肌卫星细胞属于肌源性细胞谱系,起源仍不完全清楚,目前有两种假说:体节来源和内皮来源。

体节来源假说来自鸡雏鹌鹑异源嵌合体实验,将鹌鹑的胚胎中胚层生肌节移植到宿主鸡的胚胎中,且被移植的鹌鹑细胞有明显的形态特征,可以观察到这些细胞从移植的中胚层生肌节迁徙到胚胎发育的肢体,并组成出生后鸡骨骼肌的肌卫星细胞群。

以后,大量的研究也证明了这一假说。

De Angelis等认为,卫星细胞也有可能是内皮来源的。

从胚胎背侧主动脉分离到的细胞具有与肌卫星细胞相似的形态和基因表达特征,此外,将这种主动脉来源的细胞移植到新生小鼠后,发现这种细胞参与出生后肌肉的生长和再生,并可与中胚层生肌节来源的肌纤维融合。

《mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响》范文

《mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响》范文

《mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响》篇一摘要:本文旨在探讨mTOR信号通路在山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化过程中的作用。

通过细胞培养、基因表达分析、蛋白质印迹等方法,本文揭示了mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞的影响机制,为山羊肌肉生长与发育的研究提供了新的理论依据。

一、引言山羊作为重要的经济动物,其肌肉生长与发育一直是畜牧业研究的重点。

骨骼肌卫星细胞作为肌肉生长与修复的关键细胞,其增殖与分化的调控机制一直是研究的热点。

mTOR(哺乳动物雷帕霉素靶蛋白)信号通路作为细胞内重要的信号转导途径,在细胞增殖、分化及代谢中发挥着重要作用。

因此,研究mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞的影响,有助于揭示肌肉生长与发育的分子机制。

二、材料与方法1. 材料实验所用山羊骨骼肌卫星细胞来自健康山羊的骨骼肌组织,实验试剂与仪器均符合相关标准。

2. 方法(1)细胞培养:分离并培养山羊骨骼肌卫星细胞。

(2)基因表达分析:利用实时荧光定量PCR技术检测mTOR信号通路相关基因的表达情况。

(3)蛋白质印迹:检测mTOR信号通路相关蛋白质的表达及磷酸化水平。

(4)数据分析:运用统计学方法分析数据,并进行差异显著性检验。

三、mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖的影响研究表明,mTOR信号通路的激活能够促进山羊骨骼肌卫星细胞的增殖。

通过基因表达分析和蛋白质印迹实验发现,mTOR 信号通路相关基因和蛋白质的表达水平在细胞增殖过程中显著上升。

进一步的研究表明,通过调控mTOR信号通路的活性,可以有效地促进山羊骨骼肌卫星细胞的增殖。

四、mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞分化的影响mTOR信号通路不仅影响山羊骨骼肌卫星细胞的增殖,还对其分化具有重要影响。

实验结果显示,在mTOR信号通路激活的情况下,山羊骨骼肌卫星细胞的分化能力得到提高,肌肉特异性基因的表达水平上升。

这表明mTOR信号通路在山羊骨骼肌卫星细胞的分化过程中发挥了关键作用。

肌卫星细胞分离培养及鉴定

肌卫星细胞分离培养及鉴定

肌卫星细胞分离培养及鉴定摘要:一、肌卫星细胞简介1.肌卫星细胞的功能和特点2.在肌肉组织中的分布二、肌卫星细胞分离培养方法1.常用培养方法2.实验操作流程3.注意事项三、肌卫星细胞鉴定方法1.形态学观察2.免疫荧光染色3.分子生物学方法四、肌卫星细胞在医学研究中的应用1.肌肉再生与修复2.肌肉疾病的研究3.肌肉生物学研究正文:肌卫星细胞是一种存在于肌肉组织中的干细胞,具有自我更新和分化为肌肉细胞的能力。

它们在肌肉组织中具有重要的生理功能,对于肌肉的再生与修复具有关键作用。

近年来,肌卫星细胞在医学研究中的应用日益广泛,本文将对肌卫星细胞的分离培养及鉴定方法进行介绍。

一、肌卫星细胞简介肌卫星细胞,也称为肌肉干细胞,主要分布于骨骼肌纤维周围。

它们具有自我更新和分化为肌纤维、脂肪细胞和成纤维细胞的能力,对于维持肌肉组织的稳态和再生具有重要作用。

肌卫星细胞在肌肉组织中的分布特点为:数量较少,呈散在分布;具有强的分裂能力,可以快速扩增;具有长时间自我更新的能力。

二、肌卫星细胞分离培养方法肌卫星细胞的分离培养方法有很多种,常用的方法有:胶原酶消化法、机械分离法、激光捕获显微切割法等。

其中,胶原酶消化法是最常用的方法。

实验操作流程如下:首先,取动物肌肉组织,用胶原酶进行消化;然后,用离心机将细胞分离;最后,将细胞悬液接种到培养皿中,放入含有适当生长因子的培养基中进行培养。

在实验过程中,需要注意无菌操作、合适的消化时间和温度、恰当的培养条件等因素,以保证细胞的生长和扩增。

三、肌卫星细胞鉴定方法肌卫星细胞的鉴定方法主要包括形态学观察、免疫荧光染色和分子生物学方法。

形态学观察是通过光学显微镜观察细胞的形态特征,如细胞大小、形状、染色质等。

免疫荧光染色是利用特异性抗体标记细胞表面抗原或细胞内分子,通过荧光显微镜观察细胞是否表达特定抗原。

分子生物学方法主要是通过PCR、Western blot等方法检测细胞内的基因表达或蛋白质水平。

骨骼肌卫星细胞研究进展

骨骼肌卫星细胞研究进展

摘 要 : 章从 骨 骼 肌 卫 星 细 胞 的生 长 发 育 过 程 到 自我 更 新 再 到 衰 老 缺 失 、 文 以及 与 生 长 因 子 的 关 系 进 行 了 综 述 , 论 讨 了骨 骼 肌 卫 星 细 胞 在 细胞 和 分 子 水 平 的 调 节 机 制 , 骨骼 肌损 伤 修 复 提 供 了深 入 的 理 论 依 据 。 为 关 键 词 : 骼 肌 ; 长 修 复 ; 星 细 胞 ; 活 ; 殖 分 化 骨 生 卫 激 增
祖 先 。
胞 的生长 发育 过 程 、 自我更 新 、 衰老 缺 失 、 以及 与 生 长 因子 的关 系等方 面进 行 了综述 。
1 卫 星 细 胞 的 起 源 2 卫 星 细 胞 的 激 活
在成体 的肌细 胞 中 , 星细胞 处 于静息 状 态 , 卫 而 不进 行有 丝分 裂 , 即使在 某些 特定 的情 况下 , 只有 也 有 限 的基 因表 达 和 蛋 白合 成 。然 而 , 受 到外 界 刺 当
合 , 成 多核肌 管 。经典 的骨 骼 肌 卫 星 细胞 理 论 的 形 提 出距今 已有 4 8年 的历史 ¨ , 文从 骨骼 肌卫 星细 本
胚 胎发 育 后 期 , 肌纤 维 周 围的 细胞 可 以表 达 在 P x 。通过 条件 性基 因 敲 除 ( r/oP) 验 发 现 a7 Ce lx 实 骨骼 肌卫 星 细 胞 由体 轴 下 表 达 P x a3的 细 胞 引 起 。 与此 同 时 , 大量 的群 旁 细胞 ( iep p l in ,S ) s o ua o s P 也 d t 来 自体轴 下 的体节 并可 能 与卫星 细胞 来 自于相 同的
果 。细 胞 内在 的信号 可 能 由细胞 膜 内的 1一磷 酸 一 鞘 氨 醇 ( p i oie1p op a ,S P) 起 。 S P shn s 一一hsh t g n e 1 引 1 是 细胞 膜磷脂 代 谢 的 中 间 产 物 , 是卫 星 细胞 进 入 细

骨骼肌卫星细胞的培养及其在骨骼肌组织工程研究中的应用

骨骼肌卫星细胞的培养及其在骨骼肌组织工程研究中的应用
c ls l c t g n e t e a a l mi a f k l tl e l , o a i u d r h b s l a n o s e e a mu c e i r , c n rb t t mu c e r wt n s l f be s o ti u e o s l g o h, f n t n u ci o
fo b d is e h v e n mu h s u i d. Th i r l e a in a d d fe e t to n s a f l s a rc t d fo r m o y ts u a e b e c t de e r p o i r t n i r n i i n o c fo d f b i a e r m f o f a b o t ra ti a e b e a i u l te t d Th s p p rr v e h r g e s s o k l t lmu c e s t li i ma e i lma rx h v e n v ro sy a t mp e . i a e e i ws t e p o r s e fs e ea s l a e l e t c l n vv i o a i n, p o i r to e l i e s io s l t o r lf a i n, i e t c to a d h f a i i t t b u e i ts u e g n e i g e d n i a i n n t e e sb l y o e s d n is e n i e rn i f i r s ac e e r h.
ijr s o ee ,teei c re t tem to st o s u tnvt h iatii k lt su .S t le nui .H w v r h r urnl l t eh d ocn t c i otebor f a seea t se ae i e s y il r i r ic l li lt

大鼠骨骼肌卫星细胞培养的研究

大鼠骨骼肌卫星细胞培养的研究

的大鼠骨骼肌肌卫星 细胞 , 行体外原代骨骼肌 和传代 骨骼肌的细胞培 养。传至第 2 后 , 进 代 用分化培养基 诱导 分化 , 骨骼肌 细胞各 观察 个阶段 的形 态特征 并拍 照。[ 结果] 此方法分 离的 细胞成 活率较 高, 外生 长、 体 增殖 良好 。在 分化培 养基 条件 下, 细胞 分化 良好 , 可融合 成肌 管。【 结论 ] 实验成 功探 讨 了新生大 鼠骨骼肌卫 星细胞的分化能 力并建立 了卫 星细胞 纯化 方法 , 该 适用于开展 细胞移植 和肌组 织工
Zt NG l nl ta (col f i e ne N n n nvrt, at g J ns 20 ) IA Cl - e l Sho f Si c , at gU i sy N n n ,i gu26叽 e mi oLe e o ei o a
A s 1 bcv T eme d fh uictn clr n et ct nadt ioi l hrc r ts fkla uc a ltcl io bI 喇 et e h t so epr ai ,ut eadi nf ao n ebo gc aat i c e tl sl stle el i vr O i J o h t i f o u d i i i h l ac e s o s e m e ei sn t i w I epo .Me os klt msl seieshret oartw I s opr iu uteadⅡ l clcl r.h kla 心 l e xlr { t d Se a l ce pc n av e fr s eeue t d uetsecl r n 心 e el ut e Tesee lⅡ e e e h J e l1 m s dl a do s u u t

肌卫星细胞在组织工程及创伤修复中应用的研究进展

肌卫星细胞在组织工程及创伤修复中应用的研究进展

目前 , 卫 星 细 胞 培 养 多 采 用 分 步 酶 消 化法 分 离 出单 个 细 肌 胞 _ , 过 差 速 贴 壁 法 或 流 式 细 胞 仪 等 方 法 进 行 纯 化口 1 通 , 再 进 行 单 层 细 胞 培 养 。 刚 分 离 出 来 的 细 胞 呈 圆 形 , 胞 折 光 性 细
骨 骼 肌 卫 星细 胞 属 于 组 织 干 细 胞 , 源 于 胚 胎 中 胚 层 , 有 增 起 具
然 , 卫 星 细 胞 的 增 殖 分 化 是 一 个 多 细 胞 因 子 的 共 同 调 节 过 肌 程 , 可 能 是 以 浓 度 依 赖 性 的 方式 进 行 作 用 。 极
2 肌 卫 星 细 胞 在 体 外 培 养及 生 物 学 特 性 研 究
细胞 被激 活进 入 有 丝 分 裂 循 环 , 时 提 供 肌 肉 修 复 的成 肌 细 及
胞 _ 。不 论 损 伤形 式 如 何 , 骼 肌 的再 生 过 程 大 致 相 同[ 。 创 】 ] 骨 2 ] 伤研 究 发 现 , 伤 后 首 先 是 受 损 肌 纤 维 出 现 不 同 程 度 坏 死 , 创 然 后 在 受 累 区域 出现 巨 噬 细胞 清 除 坏 死 肌 纤 维 , 保 留坏 死 肌纤 但 维周 围 的基 底 膜 , 像 许 多 中空 “ 就 管道 ” 的 支 架 。“ 样 管道 ” 的 样 微 环 境 能 充 分 诱 导 再 生 肌纤 维分 化 , 沿 原 先 肌 纤 维 的方 向排 并 列 。肌 组 织 受 创 后 约 3 1h MS 即 有 骨 骼 肌 生 肌 调 节 因 子 ~ 2, C My D My5的 表 达 , 时 MS 被 激 活 , 伤 后 1周 内迅 速 分 o/ f 此 C 在 裂 、 殖 , 量 达 到 高峰 , 后 仍 维 持 一 定 的分 裂 能 力 , 数 量 增 数 之 但 却 逐 渐 减 少 。减 少 的卫 星 细 胞 沿 着 残 留 的 基 底 膜 在 原 肌 纤 维 ( 已被 清除 ) 位 , 互 融 合 , 为 肌 小 管 。肌 小 管 不 断 接 受 新 部 相 成

FHL2影响牛骨骼肌卫星细胞增殖分化研究及肉牛管家基因和肌肉特异性基因的筛选

FHL2影响牛骨骼肌卫星细胞增殖分化研究及肉牛管家基因和肌肉特异性基因的筛选

FHL2影响牛骨骼肌卫星细胞增殖分化探究及肉牛管家基因和肌肉特异性基因的筛选引言:肉牛是重要的家畜品种之一,其肌肉质量和产量直接干系到肉牛养殖业的进步。

骨骼肌卫星细胞是肌肉再生和增长的关键细胞类型,在肌肉发育过程中发挥着重要作用。

FHL2(Four-and-a-Half LIM domain protein 2)是一种与肌肉发育紧密相关的基因,其在肌肉细胞增殖和分化中有重要作用。

本文旨在探究FHL2对牛骨骼肌卫星细胞增殖分化的影响,并通过筛选肉牛管家基因和肌肉特异性基因,为肉牛肌肉质量改良提供理论依据。

方法:1. 细胞培育:从健康肉牛体内分离骨骼肌卫星细胞,并进行原代培育和传代培育。

2. FHL2过表达和缄默:通过质粒转染和siRNA转染技术,分别使细胞表达FHL2过量或缄默。

3. 细胞增殖分析:利用MTT法和cck-8法检测不同处理组细胞的增殖状况。

4. 细胞分化检测:通过免疫荧光染色和RT-qPCR法分析细胞分化程度及相关基因表达状况。

结果:1. FHL2过表达增进牛骨骼肌卫星细胞的增殖,而FHL2缄默则抑止其增殖。

2. FHL2过表达增进细胞分化为肌肉细胞,而FHL2缄默导致细胞分化受阻。

3. 通过筛选发现,FHL2在牛骨骼肌卫星细胞中调控的肉牛管家基因和肌肉特异性基因包括Actin、MyoD、Myogenin等。

谈论:本探究结果表明,FHL2在牛骨骼肌卫星细胞增殖和分化中起着关键作用。

FHL2的过表达可以增进细胞的增殖和分化为肌肉细胞,而缄默FHL2则抑止了细胞的增殖和分化。

另外,FHL2还调控了肉牛管家基因和肌肉特异性基因的表达,这些基因在肌肉发育和质量控制中发挥重要作用。

结论:FHL2在牛骨骼肌卫星细胞中对细胞增殖和分化起到重要调控作用。

通过FHL2的过表达或缄默,可以对牛骨骼肌卫星细胞的增殖和分化进行调控,为肉牛肌肉质量的改良提供了理论基础。

此外,FHL2还调控了肉牛管家基因和肌肉特异性基因的表达,进一步加深了我们对肉牛肌肉发育机制的理解。

肌卫星细胞增殖及分化影响因素研究进展

肌卫星细胞增殖及分化影响因素研究进展
因素 研 究 进展 作 一 综 述 。
关 键词
骨骼 肌 ; 卫 星 细胞 ; 细 胞 因子 ; 成 肌 调 节 因子 ; 力 学 因素 ; 分化 ; 增 殖
D OI d o i : 1 0 . 3 9 6 9 / j . i S S r L 1 6 7 3 — 7 0 8 3 . 2 0 1 3 . 0 2 . 0 0 9
2 . 1 MRF与肌 卫 星 细胞 增 殖 和 分 化
性修复仍是骨科 临床 面 临的重 大难题 , 虽 然 现有肌 腱转 位、 游离肌 肉移植等方法可满足动力 性修复 , 但是 修复后 外观及分布不均 的缺点 突 出。近年 研究 显示 , 有增 殖 和 自我更新潜力 的肌卫 星细 胞可 能避 免此不 足 , 并在 骨骼 肌修复研究 中发挥重要作用 。本文就 肌卫星细胞 增殖及 分化 的影 响因素研究作一综述 。

在成体肌细胞 中, 通常处 于静 息状 态 的卫星 细胞并 不进行有丝分裂 , 然而 当受到外 界一些 刺激 ,如牵拉 、 损 伤或肌 肉萎缩 引起病 变 时却能 够被 激活 , 从 而进入 细胞 周期 G1 期 ] 。是何 因素 在静息 状态期 引起并 调控 卫 星 细胞激 活 , 至今 尚无明确 的研究 结果 。研究 显示 , 一氧化 氮( NO ) / 肝细胞生长 因子 ( HG F ) / 肝 细胞 生 长 因子 受 体 ( c - ME T ) 信号 通路 对肌 卫星 细胞 的激 活起 着关 键作 用 。 骨骼肌在受 到刺激后 可通过相应 机制增加一 氧化氮合 酶 ( NO S ) 数量或活性 , 然 后合成 并释 放 N O, 成 为卫 星细 胞 激活的起 始信 号 ; N O介导 HG F及 c - ME T在卫星细胞的 共 同定位作 用[ 2 ; HG F一方 面 与其 受体 c - E T结合 , M 引 发磷脂 酰 肌 醇 3 一 激酶 ( P BK) 和 丝 裂 原 活 化 蛋 白激 酶 ( MA P K)等相关基 因转 录和 细胞分 裂 的多 个信号通 路 , 另一方面下调保持肌卫 星细胞静 息状态 的肌 肉生长抑 制 素( my o s t a t i n ) 水平 , 从而激活肌卫星细胞l 3 ] 。

[教程]肌肉卫星细胞

[教程]肌肉卫星细胞

肌肉卫星细胞是骨骼肌中位于肌细胞膜和基膜之间的具有增殖分化潜力的肌源性细胞。

它们在一般情况下是处于静息状态的,当被激活后,具有增殖分化、融合成肌管、再形成肌细胞的能力。

在那里它们通过形成与肌肉纤维融合的先驱细胞来对损伤做出反应。

有研究报告说,它们能充当干细胞,但卫星细胞群的混合性质意味着,它们的干细胞身份难以证明。

”“最新一期Nature刊登由美国斯坦福大学医学院的Sacco等人的研究结果:研究小组通过利用克隆分析证实卫星细胞的确是干细胞、能够自我更新,从而澄清了相关问题。

他们将一个表达荧光素酶的卫星细胞移植进了小鼠的肌肉中,发现它能够大量增殖,有助于肌肉纤维的形成,而且可以被再次移植。

因此断定肌肉卫星细胞也是一种干细胞。

”肌肉中肌肉卫星细胞非常多。

我们在进行性肌营养不良的肌肉病变中很容易发现大量的由卫星细胞分化而来的再生细胞。

然而,这些干细胞中缺乏、缺损某些膜蛋白基因。

因此,即使发生再生,也只能再生膜功能缺损肌纤维,免不了肌纤维变性坏死的命运。

我们实验室的研究重点是,如何保护膜蛋白缺损的肌纤维,而不是通过基因治疗,如何根治肌营养不良。

因为目前世界上哪一个实验室也做不到这一点,某些研究成果,即使在动物身上似乎有效,但人身上还是没有得到证实。

在肌肉修复功能当肌肉细胞进行损伤,静止卫星细胞从基底膜下方的释放。

他们被激活,并重新进入细胞周期。

这些分裂的细胞被称为“过境放大池”前接受生肌分化,形成新的肌管(有丝分裂后)。

也有证据表明这些细胞能够与现有的肌纤维融合,促进生长和修复。

肌肉再生的过程,涉及相当大的重塑细胞外基质,并发生了广泛的破坏,是不完整的的。

肌肉存款瘢痕组织成纤维细胞内,这可能削弱肌肉的功能,是一个的重要组成部分肌营养不良症的病理。

卫星细胞增殖肌肉损伤(西尔,等,2003),并形成新的肌纤维,通过对胎儿肌肉的发育(帕克等人,2003年)的过程类似。

经过多次细胞分裂,卫星细胞开始与周边核保险丝损坏的肌管,并进行进一步的分化和成熟,作为标志(帕克等,2003)。

骨骼肌成肌细胞移植修复心肌损伤的研究现状与展望

骨骼肌成肌细胞移植修复心肌损伤的研究现状与展望

能保 持他们 的兴奋性 并对局部刺激产 生动作 电位 , 但 他们不 能与宿主心肌 细胞形成协调一 致的 自律跳 动 , 因此 S Ms k 移植 治疗心肌梗 死可能引起潜在 的心律失 常的危 险。这种假设很快 被后来 的初期 临床实验所证 实i 9 1 。但动物实验中发生心律失常 的报道却很少 , 估计 与对实验动物 的观察时限和心 电监测方 法不 足有关 。 尽 管 S M 不 能转 化 为 我们 所 期 望 的 “ ks 心肌 细
有成熟 骨骼 肌细胞特 征的多核肌管 。心肌梗死动物模
失 常发生 的电生 理学基础 , 但几乎 所有 的动物 实验都
证 实了 S Ms k 的植入 能增 加左心室室壁 厚度 ,加强左
型 中,植入 的 S M 一些保持 了未分化 的前体 细胞 状 ks
态, 一些分化 为成熟 的肌管 或表 型发生变化1 3 1 。实验证 明[ S Ms 4 k 植人心 肌组织 一周后部分肌管开始表达 快 t , 肌球蛋 白重链 ,三周后 有少 量慢 肌球 蛋 白重 链 的表
织 的环 境或 是心脏 的负荷 改变 了 S Ms k 分化 的过程 ,
S M 移植治疗心肌梗死应用于临床 。 ks 他们对一例 因陈 旧性 下壁 心肌梗 死 和严重 前侧壁 缺 血引起 顽 固性 心 力衰竭 ( Y A I 级 ) 7 N H I 的 2岁男性 病人 , I 在给 患者行 冠状动 脉旁路 移植 术 ( A G) C B 的同时将 S Ms k 注射到
心室收缩力 , 心功能[1 由此 , 改善 11 0】 ,。 经过十多 年的实
验室研究 ,k 移植治疗心肌梗死最终 走上 临床。 S Ms
2成 肌细胞 移 植修 复Fra bibliotek肌 损伤 的 临床 应 用

《mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响》范文

《mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响》范文

《mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响》篇一摘要:本文旨在探讨mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞的增殖及分化的影响。

通过研究mTOR信号通路激活与山羊骨骼肌卫星细胞增殖、分化之间的关系,以期为山羊肌肉生长与发育的调控提供理论依据。

一、引言山羊作为重要的畜牧业动物,其肌肉生长与发育对于提高肉品质和产量具有重要意义。

骨骼肌卫星细胞作为肌肉生长和再生的关键细胞,其增殖及分化过程受到多种信号通路的调控。

mTOR(哺乳动物雷帕霉素靶蛋白)信号通路作为细胞生长和增殖的重要调控因子,在肌肉生长中发挥着重要作用。

因此,研究mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞增殖及分化的影响,有助于揭示肌肉生长的分子机制。

二、mTOR信号通路及其作用机制mTOR是一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,是细胞生长和增殖的关键调控因子。

mTOR信号通路包括mTORC1和mTORC2两种复合物,通过调控蛋白质合成、细胞周期进程以及自噬等过程,影响细胞的生长和增殖。

在肌肉组织中,mTOR信号通路对肌肉蛋白质合成和肌肉生长具有重要作用。

三、mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞的影响1. 增殖过程:研究表明,激活mTOR信号通路可以促进山羊骨骼肌卫星细胞的增殖。

通过添加mTOR激活剂雷帕霉素可以观察到卫星细胞的增殖速度加快,细胞周期缩短。

这表明mTOR信号通路在山羊骨骼肌卫星细胞的增殖过程中发挥了重要作用。

2. 分化过程:mTOR信号通路对山羊骨骼肌卫星细胞的分化也具有重要影响。

激活mTOR信号可以促进卫星细胞的成肌分化,提高肌纤维的数量和质量。

此外,mTOR信号还可以调控肌肉相关基因的表达,进一步促进肌肉的生长和发育。

四、研究方法及实验结果本研究采用山羊骨骼肌卫星细胞为研究对象,通过激活和抑制mTOR信号通路,观察其对卫星细胞增殖及分化的影响。

实验结果表明,激活mTOR信号通路可以促进山羊骨骼肌卫星细胞的增殖和分化,而抑制mTOR信号通路则会导致细胞增殖和分化的抑制。

骨骼肌卫星细胞

骨骼肌卫星细胞

体外模仿卫星细 胞的微环境,培 养能够保持再生 潜能的卫星细胞
在不久的将来, 通过卫星细胞移 植治愈肌肉衰减 症,让萎缩的肌 肉恢复青春
神话传说中有“不老泉”,我们 可以积极追求尚未发现的外源性或 内源性的“青春因子”
谢谢!请大家批评指正
卫星细胞
70-90年代,研究主要集 中在体外培养和活体的细 胞跟踪证明卫星细胞在体 内外都有向生肌分化和自 我更新能力
2012年研究发现Hippo通 路中的转录因子Yap在决 定卫星细胞的分化和增殖
命运中起重要作用
2007年Thomas对卫星 细胞的起源、激活、 自我更新、增殖分化 及运用做了深入的探 讨
2014年《Science》评选的十大科学突破之一
来自年轻小鼠的血液中的一个 叫做GDF11的因子—能够让老年 小鼠的肌肉和大脑“返老还童”
Rejuvenation of muscle stem cells by heterochronic pals of GDF11 are reduced in aged mice
50岁之后,肌肉质量每年减少1%到2%,肌力每年 减少约1.5%;60岁之后肌力每年减少约3%
60-70岁人群中肌肉衰减的发病率为5%-13%,80岁 以上人群可达11%-50%
骨骼肌卫星细胞:主要的骨骼肌干细胞
骨骼肌生长、发育、损伤和修复主要依赖于卫星细胞的激活、 增殖和分化
二、研究进展
文献阅读
目录
研究背景 研究进展
展望
一、研究背景
老龄化相关概念
老年人(elderly )
国际----65岁及以上的人 中国----60岁及以上的人
老龄化社会
一个国家60岁以上老年人达到总人 数的10%,或65岁以上老年人达到 总人口的7%

肌卫星细胞分离培养及鉴定

肌卫星细胞分离培养及鉴定

肌卫星细胞分离培养及鉴定摘要:1.肌卫星细胞的概述2.肌卫星细胞的分离方法3.肌卫星细胞的培养条件4.肌卫星细胞的鉴定方法5.肌卫星细胞在医学研究中的应用正文:肌卫星细胞(Myoblasts)是一种具有分化潜能的肌肉细胞,它们在肌肉组织的生长和修复过程中发挥着重要作用。

近年来,随着科学技术的发展,肌卫星细胞在肌肉疾病治疗、肌肉组织工程和运动医学等领域的应用前景备受瞩目。

为了更好地利用肌卫星细胞,对其进行分离、培养和鉴定是必不可少的步骤。

首先,肌卫星细胞的分离方法主要包括以下几种:贴壁法、悬浮法、磁珠法等。

贴壁法是最常用的方法之一,其主要步骤是将肌肉组织剪碎,用酶解法将细胞分离,然后通过培养基的吸引力使细胞贴壁生长。

悬浮法则是通过离心将肌肉组织分离成单个细胞,然后进行培养。

磁珠法是利用磁珠与细胞表面的特定分子结合,从而实现细胞的分离和筛选。

其次,肌卫星细胞的培养条件对其生长和分化至关重要。

一般来说,肌卫星细胞在含有生长因子和细胞因子的培养基中能够良好生长。

此外,适当的温度、湿度、气体环境和营养供应也是培养肌卫星细胞的关键因素。

为了保证肌卫星细胞的纯度和活力,还需要定期更换培养液和清除细胞碎片。

在肌卫星细胞培养的过程中,对其进行鉴定是非常重要的。

常用的肌卫星细胞鉴定方法包括形态学观察、免疫荧光染色、RT-PCR 等。

形态学观察可以通过显微镜观察肌卫星细胞的形态和结构;免疫荧光染色则可以通过检测肌卫星细胞表面的特定标志物来判断其纯度;RT-PCR 可以检测肌卫星细胞中的特定基因表达水平,从而判断其分化状态。

最后,肌卫星细胞在医学研究中的应用前景广泛。

例如,在肌肉疾病治疗方面,可以通过将肌卫星细胞移植到损伤肌肉组织中,促进肌肉修复和再生。

在肌肉组织工程领域,可以将肌卫星细胞培养成肌肉组织,用于修复和替换损伤的肌肉组织。

在运动医学领域,肌卫星细胞可以用于研究运动员的肌肉适应性及肌肉损伤的预防和恢复。

总之,肌卫星细胞分离培养及鉴定在肌肉疾病治疗、肌肉组织工程和运动医学等领域具有广泛的应用前景。

骨骼肌卫星细胞体外培养及鉴定方法进展

骨骼肌卫星细胞体外培养及鉴定方法进展
几天后卫星细胞开始从肌纤维上爬 出, 当数量足够多时再将肌 纤维去除 , 用胰蛋 白酶消化后将肌卫 星细胞进行传代 。 1 . 2 . 4 纯化 : 当卫星细胞释放下来之后 , 纯化也是一个 关键性 的问题 , 即如何去 除肌纤 维碎片和非肌 源性 细胞 , 这 里的非肌 源性细胞大多是成纤维细胞 。用 适 当的离 心力可 以将 部分细
骨骼肌卫 星细胞是骨骼肌 中具有增殖分化潜 能的干细胞 , 耗材少 , 成本低 , 培养 的细胞较易存活 , 但是此方法不可避免 的 混有成纤维细胞样 细胞 、 红 细胞 、 骨骼肌 细胞 和血管平滑肌 细
它是在 1 9 6 1 年由M u a o r 首 次从 青 蛙骨 骼肌 纤维 中分 离 出来 的。肌组织作为人体 的最大组织 , 同其他组织相 比具有来源丰 富, 取材方便 的优势。大量研 究证 实卫 星细胞对骨骼肌受创伤 后肌纤维的再生和修 复起着重要作用 , 并且 在治疗心血管疾病 中有广阔的临床前景 。但 是骨骼 肌细胞 中卫 星细胞所 占的比 例较少 , 为1 %一 5 %, 因此 在体外 如何获 得足 够数 量 , 并 将高
足量 的卫 星细胞提供 了保 障。
1 . 2 分 离方 法 包 括 骨 骼 肌 卫 星 细 胞 的 释 放 和 纯 化 。卫 星 细
胞 位于肌纤维 和基底膜之 间 , 细胞连接 紧密 , 可 抵抗一般 消化 酶的作 用。在实 验 中 以前 常 规 的方 法 是先 用一 定浓 度 的 I、 Ⅱ、 Ⅳ型胶原酶 消化 , 然 后再用 一定浓 度 的胰 蛋 白酶 或链 蛋 白 酶消化 , 称为逐步消化法 , 如今常用 的方法如下。 1 . 2 . 1 肌束 分离法或称为 联合 酶消化法 : 无菌条件下 取肌 肉

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骨骼肌卫星细胞的研究进展

骨骼肌卫星细胞的研究进展

2017年(第7卷)第04期运动人体科学1 肌卫星细胞概述1.1 肌卫星细胞的发现肌卫星细胞是在1961年由M a u r o 发现,肌卫星细胞(Skeletalsatellite cell,SSC)是一类分布于肌细胞基底膜与肌膜之间的成体干细胞,其位置与排列类似肌细胞的卫星,故称卫星细胞[1]。

肌卫星细胞是成年个体肌肉组织内留存的未分化的肌前体细胞(Muscle progenitor cell,MPC),位于肌纤维基底膜和基膜之间,具有增殖、分化等自我更新的潜能[2]。

在成年机体的骨骼肌中,肌卫星细胞含量较少,大约占比1%~4%。

1.2 肌卫星细胞的形态结构在静息状态下,SSC细胞质和细胞器也较少,核质比率较高;其细胞核比肌管细胞核小,其异染色质含量比肌细胞核高。

伴随年龄增长,SSC的丰度逐渐减少,SSC肌源性分化和自我更新的潜能仍保留,但更新能力随之降低[3]。

1.3 肌卫星细胞的特异性标记与鉴定骨骼肌特异性标记蛋白的表达可作为SSC的鉴定指标,认识分子标志是对各阶段肌细胞进行鉴定的依据。

高度糖基化I型跨膜蛋白(CD34)在造血干细胞、肌源细胞和SSC上均有表达,在分化程度越低的细胞中表达率越高;M钙调蛋白是肌卫星细胞增殖与融合的标志;Pax3是肌源细胞的标志物, Pax7在静息和活化的卫星细胞核内均有表达。

配对盒转录因子(Paired box gene 7,Pax7)属于Pax基因家族的第7组,是在进化上高度保守的发育调控基因,具有强有力的生肌性诱导能力,能够使干细胞定向转变为生肌性细胞,在骨骼肌发育和再生中起着至关重要的作用[4]。

成肌蛋白(Myo blast de-termination protein,MyoD)属于肌原性碱性螺旋环的转录因子,在肌肉发育和再生中的细胞分化和自我更新密切相关[5]。

通过观察Pax7在肌细胞中表达含量的变化,可以识别卫星细胞所处时期。

其变化规律为:卫星细胞在静息状态下Pax7 表达阳性、MyoD表达阴性;卫星细胞增殖时,Pax7和MyoD表达均为阳性;在分化和融合阶段,Pax7表达阴性、MyoD阳性[2]。

《microRNA-128对牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的调控机制研究》

《microRNA-128对牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的调控机制研究》

《microRNA-128对牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的调控机制研究》MicroRNA-128对牛骨骼肌卫星细胞增殖与成肌分化的调控机制研究一、引言在肌肉生长与发育的过程中,骨骼肌卫星细胞扮演着至关重要的角色。

这些细胞不仅负责肌肉的修复与再生,还参与肌肉的生长与发育。

MicroRNA(miRNA)作为一类重要的内源性非编码RNA,通过调控基因表达在多种生物学过程中发挥关键作用。

其中,microRNA-128(miR-128)在肌肉发育与功能维护中具有重要作用。

本研究旨在探讨miR-128对牛骨骼肌卫星细胞增殖和成肌分化的调控机制。

二、材料与方法1. 实验材料本实验选用健康的成年牛骨骼肌样本,从中分离并培养骨骼肌卫星细胞。

此外,还需miR-128的模拟物(mimics)和抑制剂(inhibitors)等实验试剂。

2. 实验方法(1)细胞培养与处理:分离并培养牛骨骼肌卫星细胞,通过转染技术将miR-128的mimics和inhibitors分别转入细胞中,以研究miR-128对细胞的影响。

(2)细胞增殖检测:利用细胞计数、MTT等方法检测细胞增殖情况。

(3)成肌分化诱导与鉴定:通过特定条件诱导细胞成肌分化,并利用免疫荧光等技术鉴定分化情况。

(4)基因与蛋白质表达分析:利用qPCR、Western Blot等技术分析相关基因与蛋白质的表达情况。

三、实验结果1. miR-128对牛骨骼肌卫星细胞增殖的影响实验结果显示,过表达miR-128能显著促进牛骨骼肌卫星细胞的增殖,而抑制miR-128的表达则会导致细胞增殖速度降低。

这一结果说明miR-128在牛骨骼肌卫星细胞的增殖过程中发挥了促进作用。

2. miR-128对牛骨骼肌卫星细胞成肌分化的影响通过成肌分化诱导与鉴定实验,我们发现过表达miR-128能显著提高牛骨骼肌卫星细胞的成肌分化率,而抑制miR-128的表达则会导致成肌分化率降低。

这一结果说明miR-128在牛骨骼肌卫星细胞的成肌分化过程中发挥了关键作用。

猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展

猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展

中国畜牧兽医 2022,49(8):2931-2942C h i n aA n i ma lH u sb a n d r y &V e t e r i n a r y Me d i c i n e 猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展喻宗岗1,马海明1,2(1.湖南农业大学动物科学技术学院,长沙410128;2.岭南现代农业科学与技术广东省实验室,广州510640)摘 要:猪骨骼肌是动物机体重要的运动组织及人类主要的肉食来源,也是研究肌肉生长发育和疾病的良好模型㊂猪出生后,骨骼肌的生长发育㊁损伤修复都需要肌卫星细胞的参与,体外分离培养猪骨骼肌卫星细胞是深入研究骨骼肌生长发育及疾病发生机理的基础,是在细胞水平进行分子功能验证的前提㊂随着肌肉发育和病理分子机制研究的不断深入,猪骨骼肌卫星细胞的体外分离培养技术也迅速发展起来㊂背最长肌㊁后腿肌和半腱肌常用于分离骨骼肌卫星细胞,1日龄猪背最长肌的分离效果最好㊂常用于分离骨骼肌卫星细胞的酶包括链酶蛋白酶㊁胶原酶㊁胰蛋白酶㊁胶原蛋白酶等,各酶及酶联合消化的时间不同,最优的过滤方式是200目+400目联合过滤,3次离心法可获得纯度较高的细胞㊂常使用的培养基为D M E M /F 12+10%胎牛血清(F B S )+1%青-链霉素(P /S )㊂骨骼肌肌卫星细胞常见标记物有配对盒基因3(P A X 3)㊁P A X 7㊁生肌决定因子5(M y f 5)㊁M y f 4㊁肌分化因子(M y o D )㊁肌细胞生成素(M y o G )等㊂作者通过对猪骨骼肌肌卫星细胞的分离㊁培养及鉴定等方面进行综述,梳理出各步骤中最佳参数,为建立规范猪骨骼肌卫星细胞分离程序提供参考,以期为肌肉发育和疾病研究提供理论及技术支持㊂关键词:猪;骨骼肌卫星细胞;分离;体外培养;酶消化法中图分类号:S 828文献标识码:AD o i :10.16431/j .c n k i .1671-7236.2022.08.009 开放科学(资源服务)标识码(O S I D ):收稿日期:2022-03-27基金项目:岭南现代农业实验室科研项目(N T 2021005);宁乡花猪基础研究(5026401-0315069)联系方式:喻宗岗,E -m a i l :s t u d y 236@163.c o m ㊂通信作者马海明,E -m a i l :m a h a i m i n g2000@163.c o m R e s e a r c hP r o gr e s s o n I s o l a t i o n a n dC u l t u r e o f P o r c i n e S k e l e t a lM u s c l e S a t el l i t e C e l l s i n v i t r o Y UZ o n g g a n g 1,MA H a i m i n g1,2(1.C o l l e g e o f A n i m a lS c i e n c e a n dT e c h n o l o g y ,H u n a nA g r i c u l t u r a lU n i v e r s i t y ,C h a n g s h a 410128,C h i n a ;2.G u a n g d o n g L a b o r a t o r y o f L i n g n a nM o d e r n A g r i c u l t u r a l S c i e n c e a n dT e c h n o l o g y ,G u a n gz h o u 510640,C h i n a )A b s t r a c t :P o r c i n e s k e l e t a lm u s c l e i s a n i m p o r t a n tm o v e m e n t o r g a n i z a t i o n o f a n i m a l b o d y,t h em a i n m e a ts o u r c eo fh u m a nb e i n gs ,a n da g o o d m o d e l f o rm u s c l e g r o w t ha n dd i s e a s er e s e a r c h .A f t e r b i r t h ,p i g n e e d st h e p a r t i c i p a t i o n o f m u s c l es a t e l l i t ec e l l si nt h e g r o w t ha n d d e v e l o pm e n to f s k e l e t a lm u s c l e ,a n dt h ed a m a g er e pa i r .I s o l a t i o na n dc u l t u r eo f p o r c i n es k e l e t a lm u s c l es a t e l l i t e c e l l s i n v i t r o i s t h eb a s i s f o r i n -d e p t h s t u d y o n t h e g r o w t h a n d d e v e l o pm e n t o f s k e l e t a lm u s c l e a n d t h e p a t h o ge n e s i so fd i s e a s e s ,a n dt h e p r e m i s ef o r m o l e c u l a r f u n c t i o nv e r i f i c a t i o na t t h ec e l l u l a r l e v e l .W i t ht h ed e e p e n i ng o fth er e s e a r c h o n m u s c l ed e v e l o p m e n ta n d p a t h o l o gi c a l m o l e c u l a r m e c h a n i s m ,t h e t e c h n o l o g y of i s o l a t i o na n dc u l t u r eo f s a t e l l i t e c e l l so f p o r c i n e s k e l e t a lm u s c l e i n v i t r o h a sd e v e l o p e dr a p i d l y .T h el o ng i s s i m u sd o r s im u s c l e ,hi n dl e g m u s c l ea n ds e m i t e n d i n o s u s m u s c l e a r ec o m m o n l y u s e dt oi s o l a t es k e l e t a lm u s c l es a t e l l i t ec e l l s ,a n dt h el o n gi s s i m u sd o r s i m u s c l eo f1-d a y -o l d p i g l e t sh a v et h eb e s ti s o l a t i o ne f f e c t .E n z y m e sc o m m o n l y us e dt oi s o l a t e s k e l e t a lm u s c l e s a t e l l i t e c e l l s i n c l u d e p r o n a s e ,c o l l a g e n a s e ,t r y p s i n ,c o l l a g e n a s e ,e t c .,a n d t h e t i m e o f d i g e s t i o no fe a c he n z ym ea n di t sc o m b i n a t i o ni sd i f f e r e n t .T h eb e s t f i l t r a t i o n m e t h o di s200m e s h +400m e s hc o m b i n e df i l t r a t i o n ,a n d h i g h p u r i t y c e l l sc a n b eo b t a i n e d b y th r e et i m e s c e n t r i f u ga t i o n .T h eu s u a l m e d i u m i s D M E M /F 12+10%f e t a lb o v i n e s e r u m (F B S )+1%中国畜牧兽医49卷p e n i c i l l i n-s t r e p t o m y c i n(P/S).C o m m o n m a r k e r so f s k e l e t a lm u s c l es a t e l l i t ec e l l s i n c l u d e p a i r i n g b o x g e n e3(P A X3),P A X7,M y o-g e n i cd e t e r m i n a n t5(M y f5),M y f4,M y o-d i f f e r e n t i a t i o nf a c t o r (M y o D),m y o g e n i n(M y o G)a n ds oo n.I nt h i s p a p e r,t h e i s o l a t i o n,c u l t u r ea n d i d e n t i f i c a t i o no f m u s c l e s a t e l l i t e c e l l so f p o r c i n es k e l e t a lm u s c l ew e r er e v i e w e d,a n dt h eb e s t p a r a m e t e r s i ne a c h s t e p w e r es o r t e do u t,w h i c h p r o v i d e dr e f e r e n c e sf o re s t a b l i s h i n g as t a n d a r d i z e d p r o c e d u r ef o r i s o l a t i n gp o r c i n es k e l e t a l m u s c l es a t e l l i t ec e l l s,i n o r d e rt o p r o v i d et h e o r e t i c a la n dt e c h n i c a l s u p p o r t f o rm u s c l e d e v e l o p m e n t a n dd i s e a s e r e s e a r c h.K e y w o r d s:p i g s;m u s c l e s a t e l l i t e c e l l s;i s o l a t i o n;i n v i t r o c u l t u r e;e n z y m e d i g e s t i o nm e t h o d猪的解剖结构和生理特征与人相似,因此可以作为人类疾病研究的模型[1]㊂为比较病理模型的优劣,研究发现,猪假性肥大肌营养不良症(d u c h e n n e m u s c u l a r d y s t r o p h y,D M D)模型的病理状态比鼠模型中更接近于人[2-3]㊂因此,猪肌肉疾病模型比小鼠模型更有优势㊂骨骼肌卫星细胞在出生后机体骨骼肌发育㊁维持和再生等生命活动中都发挥着重要的作用[4]㊂骨骼肌卫星细胞不仅是肌纤维细胞核的来源,而且能促进纤维的肥大[5-6]㊂被激活的骨骼肌卫星细胞可以诱导肌细胞增殖㊁分化,并促使肌细胞与肌纤维融合[7]㊂骨骼肌卫星细胞不仅有增殖分化的潜能,而且可被招募参与骨骼肌运动[8],在肌纤维损伤修复和再生过程中发挥重要作用[9-10]㊂因此,骨骼肌卫星细胞也可以作为肌肉生长发育的良好体外研究模型[11]㊂骨骼肌卫星细胞最早由M a u r o[12]于1961年在青蛙腿肌上分离获得,它位于肌纤维质膜和基底膜之间[13],主要分布于慢肌纤维中[14]㊂之后陆续建立了细胞自然贴壁培养法㊁荧光激活细胞分选法和磁珠激活分选法等方法㊂自然贴壁法耗时㊁低效,荧光激活分选法依赖昂贵的仪器,磁珠法获得的细胞活力低[15]㊂通过添加酶可以适当缩短分离时间,并获得高纯度㊁高活力的细胞,但是目前酶消化法仍存在酶使用种类㊁剂量㊁消化时间不统一,离心过滤时离心力和滤径大小不一㊁离心过滤次数不一致等问题㊂作者通过对分离骨骼肌卫星细胞的取材㊁消化㊁过滤㊁离心㊁体外培养㊁鉴定等基本步骤进行综述,期望为体外获得高纯度㊁高活力的猪骨骼肌卫星细胞,建立规范有效的分离方法提供参考㊂1骨骼肌卫星细胞分离1.1取材1.1.1取材部位骨骼肌卫星细胞分离有直接分离法和肌纤维分离法2种㊂D o u m i t等[16]于1992年利用直接分离法首次从4~8周龄猪的半膜肌中分离出肌源卫星细胞;B e k o f f等[17]于1997年利用肌纤维分离法在小鼠骨骼肌中分离获得肌源卫星细胞㊂W i l s c h u t等[18]于2010年建立猪单纤维分离法,自此陆续从岗上肌[19]㊁趾长伸肌[20]㊁三角肌群[21]㊁背最长肌[22-24]㊁半腱肌㊁半膜肌[24-25]㊁股二头肌[26-27]㊁腓肠肌[28]㊁三头肌[29]㊁后腿肌㊁菱形肌[11,30]㊁第三腓骨肌[28]㊁胫骨前肌[4]等肌肉组织中分离出了猪骨骼肌卫星细胞(图1A)㊂因背最长肌相较四肢的小肌群更大,取材最容易,常被用于分离骨骼肌卫星细胞㊂1.1.2取材时期分离猪骨骼肌卫星细胞的材料可取自胎儿期至幼龄期,如60胚龄[31-32]㊁1日龄[4,33]㊁3日龄[19,27]㊁4日龄[26,28]㊁5日龄[24]㊁7日龄[34]㊁4~6周龄[23]㊁1月龄[19]㊁2月龄[35]㊁5月龄[36]和25周龄[34](图1B)㊂其中最常用的是出生后1日龄猪,并且1~7日龄猪占到85%以上,最大日龄为25周龄㊂猪日龄越大肌肉的体积越大,取材相对越容易,然而,随着时间的延长肌肉中骨骼肌卫星细胞的数量越少,其增殖分化潜能也会越低,因此要获得足够数量且分化潜能高的骨骼肌卫星细胞应取材于1日龄猪背最长肌㊂另外,即使取自同时期的同一部位,不同品种骨骼肌卫星细胞的增殖能力也存在差别[37],如中国大蒲莲猪骨骼肌卫星细胞的增殖能力高于长白猪[7]㊂1.2消化根据分离猪骨骼肌卫星细胞使用酶的种类,将分离方法分为单酶消化法和多酶消化法,单酶有链酶蛋白酶[38-39]㊁胶原酶D[34]㊁蛋白酶[24,27,40-41]㊁蛋白酶ⅩⅣ[31,42]㊁胰蛋白酶[25,43-44]㊁Ⅰ型胶原蛋白酶[45-52]㊁Ⅱ型胶原蛋白酶[7,29,53-63](图2)㊂Ⅱ型胶原蛋白酶是最常用的酶,不同的酶有最佳的使用方法㊂Ⅱ型胶原蛋白酶能有效消化肌肉组织中的结缔组织,用0.2%Ⅱ型胶原蛋白酶消化2h最佳(图3A㊁3D)㊂Ⅰ型胶原蛋白酶最佳使用方法是0.2%消化1~2h(图3B㊁3E)㊂蛋白酶使用量有4种规格(图3C),最佳消化时间是1h(图3F)㊂23928期喻宗岗等:猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展联合使用2种酶的方法有胶原酶+Ⅹ型胰蛋白酶[19]㊁Ⅰ型胶原酶+胰蛋白酶[4,23,64-65]㊁Ⅱ型胶原酶+胰蛋白酶[66]㊁蛋白酶+Ⅺ型胶原蛋白酶[67-68](图2),其中,0.1%~0.2%Ⅰ型胶原酶+0.25%胰蛋白酶应用最多,也有联合使用胰蛋白酶+胶原酶+D N A 酶3种酶分离骨骼肌卫星细胞的[11,24]㊂罗桂芬等[21]比较了链霉蛋白酶㊁胰酶及胶原酶消化法的分离效果,发现链酶蛋白酶消化法与其他酶消化法相比,可获得数量最多的骨骼肌卫星细胞,但细胞活力没有差异㊂因为不同的酶作用于不同的底物,胶原蛋白酶主要作用于肌束,链酶蛋白酶和胰蛋白酶作用于基底膜和肌膜,促使骨骼肌卫星细胞的释放[69]㊂联合使用多种酶消化肌肉组织中的异质物,虽然能有效去除杂质,但是延长了消化时间㊂1日龄猪肌肉组织中含有最多的是结缔组织,因此使用Ⅱ型胶原蛋白酶是最有效的分离方法㊂p60d ,60胚龄;d ,出生后天数;w ,出生后周龄;m o n ,出生后月龄p 60d ,60e m b r y o a g e ;d ,D a y s a f t e r b i r t h ;w ,W e e k s a f t e r b i r t h ;m o n ,M o n t h s a f t e r b i r t h 图1 肌肉组织取样部位(A )和时期(B )及其使用百分率F i g .1 S a m p l i n g s i t e (A )a n d p e r i o d (B )o fm u s c l e t i s s u e s a n d t h e i r p e r c e n t a g e o f u se 图2 消化酶及其使用百分率F i g .2 D i g e s t i v e e n z y m e s a n d t h e i r p e r c e n t a ge of u s e 1.3 过滤和离心骨骼肌中包含血管㊁神经等结缔组织(图4),分离肌卫星细胞时需要过滤和离心除去结缔组织以获得高纯度的细胞㊂分离猪骨骼肌卫星细胞有不过滤㊁过滤1次和过滤多次3种方式(图5A )㊂1次过滤有20μm [19,26]㊁40μm [35,41,68]㊁70μm [4]㊁100μm [27,70]㊁100目[70]和300m m [46]等多种滤径参数(图5B )㊂2次过滤有100μm+40μm [34,67,71]㊁100μm+70μm [11,30,57]㊁200目+400目[55-56,59,66]㊁200m m +50m m [53,60,62]㊁200μm +70μm [45]㊁70μm+40μm [31,42]㊁76μm+37μm [72]㊁500μm+53μm [38]7种(图5C ),其中200目+400目在2次过滤中应用最广泛㊂3次过滤有100μm+70μm+40μm [29,48,58,61,64]和100目+200目+400目[73]2种;其中100μm+70μm+40μm 是3次过滤的最佳方式(图5C )㊂1次过滤虽然省时,但可能因过滤不足得到的细胞不纯;3次过滤不仅延长了时间,还可能因过度过滤损伤细胞而降低细胞活力㊂因此,最优的过滤方式是200目+400目2次过滤法㊂普通离心和密度梯度离心是骨骼肌卫星细胞常见的2种分离方式㊂普通离心有1次离心和多次离心2种,多次离心有多次单一离心力和多次不同离心力2种㊂300ˑg 离心5mi n (2次)[35]比1000r /m i n 离心10m i n 然后1000r /m i n 离心5m i n [47](图5D )时间短,相同分离效果下更为简便㊂多次不同离心力中(图5E ),2000r /m i n 离心5m i n 后1000r /m i n 离心10m i n [74]比300ˑg 离心6m i n 后800ˑg 再离心10m i n [39]用时少,故而更简捷㊂在用时上,3次离心中,1500ˑg 离心10m i n ㊁800ˑg 离心10m i n㊁800ˑg 离心5m i n 比100ˑg 离心5m i n ㊁1000ˑg离心5m i n (2次)[34]用时长,比1200ˑg 离心15m i n ㊁300ˑg 离心5m i n ㊁1200g 离心15m i n [27]用时短,但是先高离心力能有效去除大块碎屑,再低离心力去除细微杂质,还不至损伤细胞,造成细胞活3392中 国 畜 牧 兽 医49卷力下降,是最好的3次离心法㊂P e r c o l l 密度梯度离心有3种70%㊁50%㊁40%[26,43],70%㊁50%㊁40%㊁25%[26,44]和60%㊁20%[11,30](图5F ),其中60%㊁20%密度梯度离心法因为成分较其他2种更简单,因此最简便㊂1次和2次离心虽能去除大部分被消化的结缔组织,但是仍有残留,所获的细胞不纯,因此,要有效去除杂质,3次离心法是最佳选择㊂A ㊁D ,分别为Ⅱ型胶原蛋白酶的使用浓度和消化时间使用百分率;B ㊁E ,分别为Ⅰ型胶原蛋白酶的使用浓度和消化时间使用百分率;C ㊁F ,分别为蛋白酶的使用浓度和消化时间使用百分率Aa n dD ,T h ec o n c e n t r a t i o no ft y p e Ⅱc o l l a g e n a s ea n dt h e p e r c e n t a g eo fd i g e s t i o nt i m er e s p e c t i v e l y ;Ba n d E ,T h eu s a g e p e r c e n t a g e o f c o n c e n t r a t i o na n dd i g e s t i o n t i m eo f t y p e Ⅰc o l l a g e n a s e ,r e s p e c t i v e l y ;Ca n dF ,T h eu s a g e p e r c e n t a g eo f p r o t e a s e c o n c e n t r a t i o na n dd i g e s t i o n t i m e ,r e s p e c t i v e l y 图3 3种常用单酶使用条件F i g .3 A p p l i c a t i o n c o n d i t i o n s o f t h r e e c o m m o n s i n g l e e n z ym es 图4 骨骼肌结构模式图[33]F i g .4 S k e l e t a lm u s c l e s t r u c t u r em o d e l d i a gr a m [33]43928期喻宗岗等:猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展A ,过滤次数使用百分率;B ,1次过滤使用百分率;C ,多次过滤使用百分率;D ,1次离心使用百分率;E ,多次离心使用百分率;F ,密度梯度离心使用百分率A ,T h e p e r c e n t a g e o f f i l t e r i n g t i m e s ;B ,T h e p e r c e n t a g e o f s i n g l e f i l t r a t i o n ;C ,T h e u s a g e p e r c e n t a g e o fm u l t i pl e f i l t r a t i o n ;D ,T h e p e r c e n t a g eo fs i n g l ec e n t r i f u g a t i o n ;E ,T h e p e r c e n t a g eo f m u l t i p l ec e n t r i f u g a lu s e ;F ,T h e p e r c e n t a g eo fd e n s i t y g r a d i e n t c e n t r i f u ga t i o n 图5 过滤和离心程序及其使用百分率F i g .5 F i l t r a t i o na n d c e n t r i f u g a t i o n p r o c e d u r e s a n d t h e i r p e r c e n t a ge of u s e 2 骨骼肌卫星细胞培养根据分离目标分为成肌细胞㊁骨骼肌卫星细胞分离法和单纤维分离法㊂常用成肌细胞㊁骨骼肌卫星细胞分离法来获得原代细胞㊂有研究比较了单核成肌细胞分离法和单纤维分离法获得骨骼肌卫星细胞的优劣,结果发现单核成肌细胞分离法无法得到同质性高的成肌细胞,且其中的肌卫星细胞数量少,再生能力差;单纤维分离法得到的卫星细胞细胞增殖能力更强,且可以了解骨骼肌卫星细胞初始位置和迁移转化等过程[20]㊂也有通过共培养骨骼肌卫星细胞和基质血管细胞来获得骨骼肌卫星细胞的方法[75]㊂离心后的细胞中含有成肌细胞和骨骼肌卫星细胞,为获得单一的骨骼肌卫星细胞还需进一步分离纯化㊂成肌纤维细胞贴壁早于肌卫星细胞,利用差速贴壁的特性,即可以获得成肌细胞和肌卫星细胞[75-76]㊂体外培养猪肌卫星细胞的培养液包含基础培养基㊁血清㊁抗生素和其他添加物等多种物质㊂对46篇文献的培养液分析归纳获得如下结果㊂猪肌卫星细胞的培养基有6种,使用频次最高的是D M E M /F 12(图6A )㊂血清因其中含有细胞生长必需的成分常被添加在培养基中,常见的添加方式有添加1种血清和添加2种血清㊂添加10%胎牛血清(F B S )比添加20%F B S 更经济㊂10%F B S+10%马血清(H S )和10%F B S +10%猪血清(P S )使用较少(图6B )㊂为防止外源微生物的污染,常在培养基中添加抗生素㊂在46篇研究中只有7篇未添加抗生素,抗生素使用率达到84%以上(图6C )㊂在添加抗生素的报道中,1%青-链霉素(P /S )是必需成分,也有同时添加了青-链霉素和两性菌素[11,26,28-30,43,47,49],还有同时添加了青-链霉素㊁两性菌素和庆大霉素[44]㊂在培养液中添加谷氨酰胺和谷氨酰胺丙氨酸二肽可提高细胞的活性㊁促进细胞生长㊂部分还添加了基础成肌纤维细胞生长因子(b F G F )㊁鸡胚提取物(C E E )㊁氨基酸(A A )㊁4-羟乙基哌嗪乙磺酸(H E P E S )和表皮生长因子(E G F )等物质(图6D~6H ),其中b F G F ㊁C E E 和E G F 可提高细胞的贴壁率,A A 为细胞生长提供营养,5392中 国 畜 牧 兽 医49卷H E P E S 保证细胞生长的缓冲能力㊂在培养液中添加胞外基质(如明胶㊁鼠尾胶原㊁多聚赖氨酸㊁层黏连蛋白和纤维黏连蛋白)可有效提高细胞的贴壁率[77]㊂对于没有损伤的细胞,有自然贴壁的能力,不用添加促贴壁的物质,增加添加物后细胞渗透压和缓冲力会改变还需要添加缓冲液,因此,D M E M/F 12+10%F B S +1%P /S 是猪骨骼肌卫星细胞培养的最佳培养液㊂①A ,基础培养基使用百分率;B ,血清使用百分率;C ,抗生素使用百分率;D ,谷氨酰胺使用百分率;E ,基础纤维生长因子使用百分率;F ,鸡胚提取物使用百分率;G ,氨基酸使用百分率;H ,其他添加物的使用百分率㊂②D M E M ,杜氏改良伊戈尔培养基;F B S ,胎牛血清;H S ,马血清;P S ,猪血清;F C S ,小牛血清;P S ,青-链霉素;A m p ,两性菌素;G TM ,庆大霉素;b F G F ,基础成肌纤维细胞生长因子;C E E ,鸡胚提取物;N E A A ,非必需氨基酸;A A ,氨基酸;H E P E S ,4-羟乙基哌嗪乙磺酸;E G F ,表皮生长因子;N o n e ,在46篇文献中未使用该物质①A ,T h eu s e d p e r c e n t a g e o f b a s i cm e d i u m ;B ,T h e u s e d p e r c e n t a g e o f s e r u m ;C ,T h e u s e d p e r c e n t a ge of a n t i b i o t i c s ;D ,T h e u s e d p e r c e n t ag eo f g l u t a m i n e ;E ,Th eu s e d p e r c e n t a g e o f b a si c f i b e r g r o w t h f a c t o r ;F ,T h e u s e d p e r c e n t a g e o f c h i c k e n e m b r yo e x t r a c t ;G ,T h eu s e d p e r c e n t a g eo fa m i n oa c i d s ;H ,T h eu s e d p e r c e n t a g eo fo t h e ra d d i t i v e s .②D M E M ,D u l b e c c o s m o d i f i e dE a g l e s m e d i u m ;F B S ,f e t a lb o v i n es e r u m ;H S ,H o r s es e r u m ;P S ,P o r c i n es e r u m ;F C S ,F e t a l c a l fs e r u m ;P /S ,P e n i c i l l i n -s t r e p t o m yc i n ;A m p ,A m p h o t e r i c i n ;G TM ,G e n t a m i c i n ;b F G F ,B a s i c f i b r o b l a s t g r o w t h f a c t o r ;C E E ,C h i c k e n e m b r y o e x t r a c t ;N E A A ,N o n e s s e n t i a l a m i n oa c id ;A A ,A m i n oa c i d ;H E P E S ,4-h y d r o x ye t h y l p i p e r a z i n ee t h a n e s u lf o n i ca c i d ;E G F ,E p i d e r m a lg r o w th f a c t o r ;N o n e ,T h e s u b s t a n c ew a sn o t u s e di n46l i t e r a t u r e s 图6 培养液各组分及其使用百分率F i g .6 C o m p o n e n t s o f c u l t u r em e d i u ma n d t h e i r p e r c e n t a ge of u s e 63928期喻宗岗等:猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展3骨骼肌卫星细胞的鉴定骨骼肌卫星细胞是多潜能干细胞,可以分化为成肌细胞和成脂细胞,因此可以使用成肌或成脂标志物来鉴定㊂根据标志基因在细胞中的位置可分为核标记㊁转录因子标记和细胞表面膜蛋白标记[78]㊂常见的核标记有配对盒基因3(P A X3)㊁P A X7;转录因子标记有生肌调节因子5(M y f5)㊁M y f4㊁肌分化因子(M y o D)㊁肌细胞生成素(M y o G)等,表面膜蛋白主要有m-钙黏蛋白㊁α7-和β1-整合素㊁c-M e t㊁C-X-C趋化因子受体4型(C X C R4)㊁多配体蛋白聚糖-3和多配体蛋白聚糖-4㊁降钙素受体㊁颅脑损伤蛋白-1㊁C D34㊁血管细胞黏附分子-1 (V C AM1)和神经细胞黏附分子-1(N C AM1)[79-80]㊂肌卫星细胞标志基因有P A X7[7,43,47,53,56,60,63,66,81-83]和M y f5[27,40,67,84],成脂标志基因有脂蛋白脂酶(L P L)㊁过氧化物酶体增殖物激活受体(P P A Rγ)㊁脂肪细胞和定向分化因子1(A D D1)和固醇调节元件结合蛋白-1(S R E B P-1)[67],成肌标志基因有P A X7[27,28,34]㊁M y o D㊁M y o D1[4,26-28,67,85]㊁M y o G[26,28,85]㊁M y f5[27,28,33,34]㊁肌球蛋白重链(MH C)[24]和结蛋白(D e s m i n)[4,24,28,30,55]㊂P A X7是鉴定骨骼肌卫星细胞的最佳因子㊂免疫荧光(I F)㊁实时荧光定量P C R(q P C R)㊁流式细胞分析(F C)和免疫组化(I H C)是常用的鉴定方法(图7)㊂不同的鉴定因子因其表达的部位和鉴定的简便及有效性的不同而有所侧重㊂D e s m i n使用I H C法鉴定最为有效(图8A),M y f5用I F法鉴定效果最好(图8B)㊂M y o D的鉴定方式中q P C R 法相较I F法更为方便㊁经济,因此被广泛使用(图8C)㊂P A X7使用I F法鉴定最有效(图8D)㊂成脂细胞标志基因常用P C R法来鉴定,还可以使用油红O染色法来鉴定[51]㊂相较于D e s m i n㊁M y f5和M y o D,P A X7在卫星干细胞㊁卫星细胞和成肌细胞上均有表达(图9),因此是最佳的鉴定因子㊂图7鉴定方法及其使用百分率F i g.7I d e n t i f i c a t i o nm e t h o d s a n d t h e i r p e r c e n t a g e o f u se图8标记因子的鉴定方法及其使用百分率F i g.8I d e n t i f i c a t i o nm e t h o da n da p p l i c a t i o n p e r c e n t a g e o fm a r k e r f a c t o r s7392中 国 畜 牧 兽 医49卷图9 参与调控肌卫星细胞生长变化过程的标记因子[33]F i g .9 M a r k e r f a c t o r s i n v o l v e d i n r e g u l a t i n g t h e g r o w t ha n d c h a n ge s o fm u s c l e s a t e l l i t e c e l l s [33]4 小 结猪骨骼肌卫星细胞可以从不同时期的多种肌肉中分离,且各时期分离细胞的数量和增殖能力不同,部位决定着取材的便捷性,因此,常用1日龄猪的背最长肌分离猪骨骼肌卫星细胞㊂酶消化涉及到用酶种类及各酶使用方法,酶种类的增加可以有效去除肌肉中的杂质,但延长了消化时间,很可能因过度消化损伤细胞膜,降低细胞活力,所以使用单酶是比较保险的选择㊂0.2%Ⅱ型胶原蛋白酶37ħ消化2h 是最有效的消化方式㊂消化后的肌肉组织是细胞和异质碎屑的混合物,需要通过过滤和离心去除组织碎屑,获得纯细胞㊂单次过滤㊁单次离心难以有效去除杂质,多次过滤㊁离心可能会损伤细胞膜降低细胞活力,因此2次过滤加3次离心是最佳选择,即400目+200目过滤,1500ˑg 离心10m i n㊁800ˑg 离心10m i n ㊁800ˑg 离心5m i n 是最佳组合㊂过滤离心后的细胞还包含成肌细胞,因此需进一步培养纯化获得单一的骨骼肌卫星细胞㊂成肌细胞在培养液中正常生长后会较早贴壁,因此可取贴壁后的上清继续培养来获得骨骼肌卫星细胞㊂培养液对细胞的正常生长至关重要,原代细胞在离体环境中需要充足的营养和无菌环境,D M E M /F 12+10%F B S +1%P /S 是细胞培养的常见培养液㊂骨骼肌卫星细胞可通过核标志㊁转录标志和膜表面标志等标志基因或卫星细胞标记㊁成肌细胞标记和成脂细胞标记因子来鉴定,P A X 7基因广泛表达于肌卫星细胞和成肌细胞,因此是最佳的鉴定基因㊂尽管q P C R ㊁F C ㊁I F 和I H C 等方法均可用来鉴定,但I F 法更为直观和准确,因此广泛被使用㊂为获得纯度㊁活力和分化潜能更高的猪骨骼肌卫星细胞,还需要规范和优化取材㊁消化㊁过滤㊁离心㊁培养和鉴定等步骤,建立简便有效的体外分离培养程序㊂随着新的鉴定方法的出现和新技术的普及,猪骨骼肌卫星细胞的分离培养也将更加高效便捷㊂参考文献(R e f e r e n c e s):[1] G R O E N E N M A ,A R C H I B A L D A L ,U E N I S H IH ,e ta l .A n a l y s e sof p i gg e n o m e s p r o v i d ei n s i gh ti n t o p o r c i n ed e m o g r a p h y an de v o l u t i o n [J ].N a t u r e ,2012,491(7424):393-398.[2] N A K AMU R A A ,T A K E D AS .M a m m a l i a nm o d e l so fd u c he n n em u s c u l a rd y s t r o p h y:P a t h o l o gi c a l c h a r a c t e r i s t i c s a n d t h e r a p e u t i c a p p l i c a t i o n s [J ].J o u r n a lo f B i o m e d i c i n e &B i o t e c h n o l o g y ,2011,2011:184393-184400.[3] K L YM I U K N ,B L U T K E A ,G R A F A ,e t a l .D y s t r o p h i n -d e f i c i e n t p i g s p r o v i d e n e w i n s i gh t si n t o t h e h i e r a r c h y o f p h y s i o l o g i c a l d e r a n g e m e n t s o f d y s t r o ph i c m u s c l e [J ].H u m a n M o l e c u l a r G e n e t i c s ,2013,22(21):4368-4382.[4] Y A N GJ ,L I U H ,WA N G K ,e ta l .I s o l a t i o n ,c u l t u r ea n db i o l o g ic a lc h a r a c t e r i s t i c so f m u l t i po t e n t p o r c i n e s k e l e t a l m u s c l e s a t e l l i t e c e l l s [J ].C e l la n d T i s s u e B a n k i n g ,2017,18(4):513-525.[5] V E R D I J K L B ,S N I J D E R S T ,D R O S T M ,e t a l .S a t e l l i t e c e l l s i nh u m a n s k e l e t a lm u s c l e ;F r o mb i r t h t oo l d a g e [J ].A g e (D o r d r e c h t ,N e t h e r l a n d s ),2014,36(2):545-547.[6] F A R U PJ ,R A H B E K S K ,R I I SS ,e t a l .I n f l u e n c eo fe x e r c i s ec o n t r a c t i o nm o d ea n dpr o t e i n s u p p l e m e n t a t i o n o n h u m a ns k e l e t a l m u s c l es a t e l l i t e c e l l c o n t e n ta n d m u s c l ef i b e r g r o w t h [J ].J o u r n a l o f A p p l i e dP h y s i o l o g y ,2014,117(8):898-909.[7] Z HA O X ,Z HU R ,WA N G Y ,e ta l .D i f f e r e n t i a t i o np r o l i f e r a t i v e c a p a c i t y of s k e l e t a lm u s c l es a t e l l i t ec e l l s f r o m D a p u l i a na n dL a n d r a c e p ig s [J ].I t a l i a nJ o u r n a l o f A n i m a lS c i e n c e ,2020,19(1):574-585.[8] HAWK E T ,G A R R Y D .M y o ge n i c s a t e l l i t e c e l l s :P h y s i o l o g y t o m o l e c u l a r b i o l o g y [J ].J o u r n a l o f83928期喻宗岗等:猪骨骼肌卫星细胞体外分离培养研究进展A p p l i e dP h y s i o l o g y,2001,91(2):534-551.[9] M C C A R T H Y JJ,M U L A J,M I Y A Z A K I M,e ta l.E f f e c t i v ef i b e rh y p e r t r o p h y i ns a t e l l i t ec e l l-d e p l e t e ds k e l e t a lm u s c l e[J].D e v e l o p m e n t(C a m b r i d g e),2011,138(17):3657-3666.[10] L E P P E R C,P A R T R I D G E T A,F A N C M.A na b s o l u t er e q u i r e m e n t f o rP a x7-p o s i t i v es a t e l l i t ec e l l s i na c u t ei n j u r y-i n d u c e d s k e l e t a l m u s c l e r e g e n e r a t i o n[J].D e v e l o p m e n t,2011,138(17):3639-3646.[11] M E T Z G E R K,T U C H S C H E R E R A,P A L I N M,e ta l.E s t a b l i s h m e n t a n d v a l i d a t i o n o f c e l l p o o l s u s i n gp r i m a r y m u s c l ec e l l sd e r i v e df r o ms a t e l l i t ec e l l so f p i gs k e l e t a lm u s c l e[J].I nV i t r oC e l l u l a r&D e v e l o p m e n t a lB i o l o g y-A n i m a l,2020,56(3):193-199.[12] MA U R OA.S a t e l l i t e c e l l o f s k e l e t a lm u s c l e f i b e r s[J].T h e J o u r n a l o f B i o p h y s i c a l a n d B i o c h e m i c a lC y t o l o g y,1961,9(2):493-495.[13] K A T ZB.T h e t e r m i n a t i o n so f t h ea f f e r e n tn e r v e f i b r ei nt h e m u s c l es p i n d l eo ft h ef r o g[J].P h i l o s o p h i c a lT r a n s a c t i o n s o f t h eR o y a lS o c i e t y o f L o n d o n,1961,243(703):221-240.[14] G I B S O N M C,S C H U L T ZE.A g e-r e l a t e dd i f f e r e n c e s i na b s o l u t e n u m b e r s o f s k e l e t a lm u s c l e s a t e l l i t e c e l l s[J].M u s c l e&N e r v e,1983,6(8):574-580.[15] Y O S H I O K A K,K I T A J I MA Y,O K A Z A K IN,e ta l.A m o d i f i e d p r e-p l a t i n g m e t h o d f o r h i g h-y i e l d a n dh i g h-p u r i t y m u s c l es t e m c e l l i s o l a t i o nf r o m h u m a n/m o u s es k e l e t a l m u s c l et i s s u e s[J].F r o n t i e r s i n C e l la n dD e v e l o p m e n t a lB i o l o g y,2020,8:793.[16] D O UM I T M E,M E R K E L R A.C o n d i t i o n s f o ri s o l a t i o n a n d c u l t u r e o f p o r c i n e m y o g e n i c s a t e l l i t ec e l l s[J].T i s s u e C e l l,1992,24(2):253-262.[17] B E K O F FA,B E T Z W.P r o p e r t i e s o f i s o l a t e da d u l t r a tm u s c l e f i b r e sm a i n t a i n e d i n t i s s u e c u l t u r e[J].J o u r n a lo f P h y s i o l o g y,1977,271(2):537-547.[18] W I L S C HU T KJ,T J I N EP M,HA A G S MA N H P,e ta l.A p p r o a c h e st oi s o l a t e p o r c i n es k e l e t a l m u s c l es t e m a n d p r o g e n i t o r c e l l s[J].P r o t o c o l E x c h a n g e,2015.D O I:10.5281/z e n o d O.15596.[19] B R I N K M E I E R H,S E E W A L D MJ,E I C H I N G E R H M,e t a l.C u l t u r e c o n d i t i o n sf o r t h e p r o d u c t i o no f p o r c i n em y o t u b e s a n d m y o b a l l s[J].J o u r n a l o f A n i m a lS c i e n c e,1993,71(5):1154-1160.[20]刘月光,史新娥,沈清武,等.利用单根肌纤维法分离和培养猪骨骼肌卫星细胞及其成肌诱导分化[J].农业生物技术学报,2011,19(5):856-863.L I U Y G,S H IX E,S H E N Q W,e ta l.I s o l a t i o na n dc u l t u r e o f p o r c i n e s k e l e t a lm u s c l e s a t e l l i t e c e l l sb y s i n g l em u s c l e f i b e r a n d t h e i rm u s c l e d i f f e r e n t i a t i o n[J].J o u r n a lo f A g r i c u l t u r a l B i o t e c h n o l o g y,2011,19(5):856-863.(i nC h i n e s e)[21]罗桂芬,文旭辉,杨公社.猪肌卫星细胞的分离培养及鉴定[J].细胞与分子免疫学杂志,2006,6:823-825.L U O G F,W E N X H,Y A N G G S.I s o l a t i o n,c u l t u r ea n d i d e n t i f i c a t i o no f p o r c i n em u s c l e s a t e l l i t e c e l l s[J].C h i n e s e J o u r n a l o f C e l l u l a r a n d M o l e c u l a rI m m u n o l o g y,2006,6:823-825.(i nC h i n e s e)[22]吕晓,朱海鲸,曹晖,等.猪肌肉卫星细胞的分离培养及生物学特性鉴定[J].中国兽医学报,2011,31(10):1480-1484.L Y U X,Z HU H J,C A O H,e ta l.I s o l a t i o n,c u l t u r ea n d i d e n t i f i c a t i o n o fb i o l o g ic a l c h a r a c t e r i s t i c s o fp o r c i n em u s c l es a t e l l i t ec e l l s[J].C h i n e s eJ o u r n a lo fV e t e r i n a r y S c i e n c e,2011,31(10):1480-1484.(i nC h i n e s e)[23] S E B A S T I A NS,G O U L D I N GL,K U C H I P U D I SV,e t a l.E x t e n d e d2D m y o t u b ec u l t u r er e c a p i t u l a t e s p o s t n a t a lf i b r et y p e p l a s t i c i t y[J].B M C C e l l B i o l og y,2015,16(1):23-32.[24] M I E R S C H C,S T A N G E K,R O E N T G E N M.E f f e c t so f t r y p s i n i z a t i o n a n d o f a c o m b i n e d t r y p s i n,c o l l a g e n a s e,a n dD N a s ed i ge s t i o no n l i b e r a t i o na n d i nv i t r o f u n c t i o n o fs a t e l l i t ec e l l si s o l a t e df r o m j u v e n i l ep o r c i n em u s c l e s[J].I nV i t r oC e l l u l a r&D e v e l o p m e n t a lB i o l o g y-A n i m a l,2018,54(6):406-412.[25] L IB,L IP,HU A N G R,e ta l.I s o l a t i o n,c u l t u r ea n di d e n t i f i c a t i o n o f p o r c i n e s k e l e t a l m u s c l e s a t e l l i t ec e l l s[J].A s i a n-A u s t r a l a s i a n J o u r n a l o f A n i m a lS c i e n c e s,2015,28(8):1171-1177.[26] M I E R S C H C,S T A N G E K,R O E N T G E N M.S e p a r a t i o no f f u n c t i o n a l l y d i v e r g e n tm u s c l e p r e c u r s o rc e l l p o p u l a t i o n s f r o m p o r c i n e j u v e n i l e m u s c l e s b yd i s c o n t i n u o u s pe r c o l l d e n s i t yg r a d i e n t c e n t r if ug a t i o n[J].B M CC e l lB i o l o g y,2018,19(1):2-13.[27] C H O IK,Y O O NJ W,K I M M,e t a l.O p t i m i z a t i o no fc u l t u r ec o nd i t i o n sf o r m a i n t a i n i n g p i g m u s c l es te mc e l l s i n v i t r o[J].F o o dS c i e n c e o f A n i m a lR e s o u r c e s,2020,40(4):659-667.[28] S T A N G E K,A H R E N S H E,V O N M A L T Z A H N J,e t a l.I s o l a t i o n a n d e x v i v o c u l t i v a t i o n of s i ng l em y o f i b e r s f r o m p o r c i n e m u s c l e[J].I n V i t r oC e l l u l a r&D e v e l o p m e n t a l B i o l o g y-A n i m a l,2020,56(8):585-592.[29] L I J,S U T,Z O U C,e t a l.L o n g n o n-c o d i n g R N A H19r e g u l a t e s p o r c i n es a t e l l i t ec e l l d i f f e r e n t i a t i o nt h r o u g hm i R-140-5p/S O X4a n d D B N1[J].F r o n t i e r si n C e l la n dD e v e l o p m e n t a lB i o l o g y,2020,8:518724.9392中国畜牧兽医49卷[30] P A L I N M F,L A P O I N T E J,G A R IÉP Y C,e ta l.C h a r a c t e r i s a t i o n o f i n t r a c e l l u l a r m o l e c u l a rm e c h a n i s m s m o d u l a t e d b y c a r n o s i n e i n p o r c i n em y o b l a s t s u n d e r b a s a l a n d o x i d a t i v e s t r e s sc o nd i t i o n s[J].P L o SO n e,2020,15(9):e239496.[31] V A U G HN M A,P H E L P S K J,G O N Z A L E ZJ M.I n v i t r o s u p p l e m e n t a t i o n w i t h t h e p o r c i n e p l a s m ap r o d u c t,b e t a G R O ,s t i m u l a t e sa c t i v i t y o f p o r c i n e f e t a lm y o b l a s t sa n d n e o n a t a ls a t e l l i t e c e l l si n a d i v e r g e n tm a n n e r[J].A n i m a l,2018,12(9):1912-1920.[32] K H A T R IO S,V A U G H N M A,P H E L P S KJ,e ta l.I n v i t r o b e t a G R O s u p p l e m e n t a t i o n s t i m u l a t e sm y o g e n e s i so f p o r c i n ef e t a l m y o b l a s t s a n d p o r c i n es a t e l l i t ec e l l si nad i v e r g e n t m a n n e r[J].J o u r n a lo fA n i m a lS c i e n c e,2017,954:157.[33] Y A NJ,G A N L,Y A N G H,e ta l.T h e p r o l i f e r a t i o na n d d i f f e r e n t i a t i o n c h a r a c t e r i s t i c s o f c o-c u l t u r e dp o r c i n e p r e a d i p o c y t e s a n d m u s c l e s a t e l l i t e c e l l s i nv i t r o[J].M o l e c u l a rB i o l o g y R e p o r t s,2013,40(4):3197-3202.[34] D I N GS,WA N GF,L I U Y,e t a l.C h a r a c t e r i z a t i o na n di s o l a t i o no fh i g h l yp u r i f i e d p o r c i n es a t e l l i t ec e l l s[J].C e l lD e a t hD i s c o v e r y,2017,3(2017):17003-17013.[35] L E W I S F C,H E N N I N G B J,M A R A Z Z I G,e ta l.P o r c i n e s k e l e t a l m u s c l e-d e r i v e d m u l t i p o t e n t P W1(p o s)/P a x7(n e g)i n t e r s t i t i a l c e l l s:I s o l a t i o n,c h a r a c t e r i z a t i o n,a nd l o n g-te r mc u l t u r e[J].S t e mC e l l sT r a n s l a t i o n a lM e d i c i n e,2014,3(6):702-712.[36] K I M K,K I M D,M I N Y,e ta l.M y o g e n i cr e g u l a t o r yf a c t o r sa r ek e yp l a y e r si nd e t e r m i n i ng m u s c l e m a s sa n dm e a t q u a l i t y i n J e j un a t i v e a n dB e r k s h i r e p i g s[J].V e t e r i n a r y M e d i c i n e a n d S c i e n c e,2021,7(3):735-745.[37] WA N G X,Y A N G W,Y A N GZ,e t a l.T h ed i f f e r e n t i a lp r o l i f e r a t i v ea b i l i t y o fs a t e l l i t ec e l l si n L a n t a n g a n dL a n d r a c e p i g s[J].P L o SO n e,2012,7(3):e32537.[38] D O UM I T M E,M E R K E L R A.C o n d i t i o n s f o ri s o l a t i o n a n d c u l t u r e o f p o r c i n e m y o g e n i c s a t e l l i t ec e l l s[J].T i s s u e&C e l l,1992,24(2):253-262.[39] B A Q U E R O-P E R E ZB,K U C H I P U D I SV,N E L L IR K,e t a l.As i m p l if i e db u t r o b u s tm e t h o d f o r t h e i s o l a t i o no fa v i a n a n d m a m m a l i a n m u s c l e s a t e l l i t e c e l l s[J].B M CC e l lB i o l o g y,2012,13(1):16-27.[40] C H E N Y,Z HU H,M C C A U L E Y S R,e t a l.D i m i n i s h e ds a t e l l i t ec e l l f u s i o na n dS6K1e x p r e s s i o ni nm y o t u b e s d e r i v e d f r o ms k e l e t a lm u s c l e o f l o wb i r t hw e i g h t n e o n a t a l p i g s[J].P h y s i o l o g i c a l R e p o r t s,2017,5(3):e13075.[41] D E N G B,Z HA N G F,W E N J,e t a l.T h et r a n s c r i p t o m e s f r o m t w o a d i p o c y t e p r o g e n i t o r c e l lt y p e s p r o v i d e i n s i g h t i n t o t h ed i f f e r e n t i a l f u n c t i o n so fM S T N[J].G e n o m i c s,2020,112:3826-3836.[42] K HA T R IOS,V A U G HN M A,P H E L P SKJ,e t a l.I n v i t r o b e t a G R O s u p p l e m e n t a t i o n s t i m u l a t e sm y o g e n e s i so f p o r c i n ef e t a l m y o b l a s t s a n d p o r c i n es a t e l l i t ec e l l si nad i v e r g e n t m a n n e r[J].J o u r n a lo fA n i m a lS c i e n c e,2017,954:157.[43] M I E R S C H C,S T A N G E K,H E R I N G S,e t a l.M o l e c u l a r a n d f u n c t i o n a l h e t e r o g e n e i t y o f e a r l yp o s t n a t a l p o r c i n e s a t e l l i t e c e l l p o p u l a t i o n s i sa s s o c i a t e d w i t hb i o e n e r g e t ic p r o f i l e[J].S c i e n t i f i cR e p o r t s,2017,7(1):45052.[44] S T A N G EK,M I E R S C H C,S P O N D E R G,e t a l.L o wb i r t h w e i g h t i n f l u e nc e st h e p o s t n a t a la b u nd a n c ea n dc h a r a c t e r i s t i c s o f s a t e l l i t e c e l l s u b p o p u l a t i o n s i np i g s[J].S c i e n t i f i c R e p o r t s,2020,10(61491):6149-6162.[45] S U N Y,Q I NJ,L I U S,e t a l.P D G F Ra l p h ar e g u l a t e db y m i R-34a a n d F o x O1p r o m o t e s a d i p o g e n e s i si np o r c i n e i n t r a m u s c u l a r p r e a d i p o c y t e s t h r o u g h E r ks i g n a l i n g p a t h w a y[J].I n t e r n a t i o n a l J o u r n a l o fM o l e c u l a rS c i e n c e s,2017,18(11):2424-2436.[46] C HU W,W E I W,HA N H,e ta l.M u s c l e-s p e c i f i cd o w n re g u l a t i o no fG Rl e v e l s i n h i b i t sa d i p o g e n e s i s i np o r c i n e i n t r a m u s c u l a ra d i p o c y t et i s s u e[J].S c i e n t i f i cR e p o r t s,2017,7(510):510-522.[47] M I L N E R D J,B I O N A Z M,MO N A C O E,e t a l.M y o g e n i c p o t e n t i a l o f m e s e n c h y m a l s t e m c e l l si s o l a t e d f r o m p o r c i n e a d i p o s e t i s s u e[J].C e l l a n dT i s s u eR e s e a r c h,2018,372(3):507-522.[48] WA N G S,S U N Y,R E N R,e t a l.H3K27m e3d e p l e t i o n d u r i n g d i f f e r e n t i a t i o n p r o m o t e s m y o g e n i ct r a n s c r i p t i o n i n p o r c i n e s a t e l l i t e c e l l s[J].G e n e s,2019,10(2313):231-243.[49] R E D S HAW Z,L O U G HN A P T.A d i p o g e n i cd i f fe r e n t i a t i o no fm u s c l ed e r i v e dc e l l s i s r e p r e s s e db yi n h i b i t i o n o f G S K-3a c t i v i t y[J].F r o n t i e r s i nV e t e r i n a r y S c i e n c e,2018,5:110-115.[50] L V W,J I NJ,X UZ,e t a l.l n c MG P F i s a n o v e l p o s i t i v er e g u l a t o r o f m u s c l e g r o w t h a n d r e g e n e r a t i o n[J].J o u r n a l o f C a c h e x i aS a r c o p e n i aa n d M u s c l e,2020,11(6):1723-1746.[51] Q I U K,X U D,WA N G L,e ta l.A s s o c i a t i o na n a l y s i so f s i n g l e-c e l lR N As e q u e n c i n g a n d p r o t e o m i c s r e v e a l sa v i t a l r o l eo fC a2+s i g n a l i n g i nt h ed e t e r m i n a t i o no fs k e l e t a lm u s c l e d e v e l o p m e n t p o t e n t i a l[J].C e l l s,2020,9(4):1045-1065.[52] WA N G S,X U X,L I U Y,e ta l.R I P-S e q o f E Z H20492。

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骨骼肌卫星细胞的研究现状阎振鑫S111666(四川大学生命科学学院细胞生物学专业成都)摘要:肌卫星细胞是目前公认的骨骼肌干细胞,负责骨骼肌生长和损伤修复。

干细胞研究成为医学研究领域的热点,肌卫星细胞移植成为治疗骨骼肌损伤萎缩和心肌坏死的新的治疗方案,具有广阔的前景。

肌卫星细胞的体外培养中大多采用胰酶胶原酶两步消化法得到细胞悬液。

在原代培养中最关键的是细胞的纯化。

防止成纤维细胞的污染,主要是采用查速铁壁的方法将细胞分离。

胰岛素多肽家簇、MyoD转录因子家族和MEF2家族等对肌肉的形成起重要的调控作用。

关键词:骨骼肌卫星细胞体外培养干细胞移植肌卫星细胞是小的单核梭形细胞,是源于胚胎中胚层的干细胞,在正常骨骼肌中,它位于基底膜与肌纤维浆膜之间,处于静止状态。

当受到外界刺激,在应激状态下可以分裂、增生,形成新的肌纤维,是骨骼肌再生的储备力量,负责骨骼肌的生长和损伤修复。

因此,肌卫星细胞特有的成肌能力倍受重视[1-4]。

目前,干细胞研究成为医学领域研究的热点,肌肉干细胞因直接参与分化骨骼肌而受世人关注。

胚胎和成体内都存在肌肉干细胞,成人体内存在两类具有干细胞样特性的细胞,一类称为卫星细胞(Satellite Cells,SC)也叫成肌祖细胞(Myogenic Progenitor Cell,MPC),另一类称为肌源干细胞(Muscle Derived Stem Cell,MDSC),也叫群旁细胞(Side Population S,SP),后者在数量上远少于前者。

目前公认的肌肉干细胞主要是指肌肉卫星细胞[5]。

近年来,国外有报道将肌卫星细胞移植到冻伤的骨骼肌中,可改善肌肉功能[6]。

组织缺损或器官功能障碍是人类保健中发生频繁、危害性大、花费高的问题之一。

近年来随着组织工程技术的发展,应用肌组织工程技术,进行骨骼肌再生代替以往的手术方法修复动力性瘫痪,以其特有的优点避免了以往手术的缺陷,为瘫痪肌肉的动力修复开创了一个崭新的研究前景。

另外,骨骼肌可能会通过分泌低分子量细胞因子即骨骼肌源性抑瘤物显著抑制肿瘤细胞生长[7-10]。

现就肌卫星细胞的研究现状作一综述。

1肌卫星细胞的体外培养1961年Mauro首先发现了肌卫星细胞,并推测肌卫星细胞实质上是一种处于休眠状态下的成肌细胞[11],是肌细胞核的一种来源。

肌卫星细胞作为肌组织工程技术的种子细胞,它的体外培养、鉴定及生物学特性已有大量实验研究,取得了显著的成果[ 12 ]。

培养肌卫星细胞的材料来源,目前多数取自兔、鼠、犬、鸡等的肌肉组织,人体肌卫星细胞的培养已有报道,培养方法多采用胰酶、胶原酶分步消化,分离出单个成肌细胞,通过差速贴壁法去除混杂的成纤维细胞,再进行单层细胞培养。

在这些步骤中纯化卫星细胞防止纤维细胞的污染是关键,在这个步骤中较好的做法是:采用PrePlate差速贴壁法进行细胞纯化,去除杂质细胞的污染。

将细胞接种于明胶包被的培养瓶中培养2h,贴壁细胞为P1P;未贴壁细胞悬液转皿培养12h,贴壁的细胞为P1P2;未贴壁细胞悬液再转皿培养24h,贴壁的细胞为P1P3,未贴壁细胞悬液转皿培养24h,贴壁的细胞为P1P4;再次将未贴壁的细胞悬液转皿培养24小时,贴壁的细胞为P1P5。

P1P5培养3d后换液,以后隔天换液1次,倒置显微镜下观察,待细胞生长至70%汇合度后传代培养。

骨骼肌卫星细胞属于组织干细胞,其体外培养的优点是取材方便,产量大,具有较强的增殖分化能力,营养条件好,如培养基中加入15 %~20 %的动物血清(即生长培养基),成肌细胞以分裂、增殖为主。

一旦成肌细胞长满整个培养瓶,相互接触时,增殖将明显受到抑制,表现为相邻成肌细胞相互融合,形成肌小管,表现出分化倾向。

降低培养液中营养条件,如动物血清不超过5 %(即融合培养基),能明显促进分化,使单位数目的成肌细胞形成肌小管的百分比增加。

因此骨骼肌卫星细胞在肌组织工程研究中具有广阔的应用前景[13],临床应用奠定了良好的基础。

2 调控肌卫星细胞发育的相关基因及各因子胰岛素样生长因子(IGFs)属胰岛素多肽家簇,主要包括IGF-1和IGF-2两种,分别由70和67个氨基酸组成,结构上有62 %相同,据文献报道肌肉损伤后15 h可见再生骨骼肌细胞和肌卫星细胞表达IGF-1。

IGF-1和IGF-2在发育骨骼肌中高水平表达,但在成熟骨骼肌水平很低[14]。

睫状神经营养因子(CNTF)是一种具有神经营养功能的酸性蛋白质,近年来的研究发现它对肌肉也有营养作用,其作用途径可分为两个方面:一方面通过对肌肉的直接营养作用维持正常骨骼肌的形态和功能,参与神经肌肉损伤的修复。

坐骨神经损伤后,大量的CNTF被释放,同时骨骼肌睫状神经营养因子受体α亚单位(CNTFRα)的表达量增加数十倍,这种CNTF和CNTFRα的协同作用可能在神经肌肉损伤修复中具有重要作用。

另一方面CNTF能改善去神经所致的骨骼肌萎缩和继发性功能丧失,现已有人开展了用CNTF防止骨骼肌去神经性萎缩的药效动力学研究。

MyoD转录因子家族对于肌形成是必须的[15],作为成肌调节因子(MRF)家族四成员(MyoD、MRF5、myogenin、MRF4)之一,肌分化因子(MyoD)不仅可促使静止期的肌卫星细胞向成肌细胞转化,,且能把许多种类型细胞(如成纤维细胞、脂肪细胞等)转化为成肌细胞,并可促进成肌细胞进一步融和、分化为成熟的肌纤维。

在肌形成肌肉特异基因转录调控中MyoD起着总开关的作用,可以结合到肌细胞生成素(myogenin)、肌酸激酶CK、肌球蛋白、结蛋白等基因启动子区发挥重要调控作用,促进它们的转录激活。

MyoD基因家族成员以肌肉特异性基因转录激活物的形式发挥作用[16],它们具有bHLH结构域, 与肌肉特异性基因调控区常见的顺式作用元件E-box结合。

MEF2(myocyte enhancer - bingding factor2) 家族的4个成员MEF2A - D的表达有助于肌肉特异性基因的激活[17 ],它们与MyoD基因家族成员具有正协同作用。

目前在小鼠中已经证实,myogenin中含有MEF2转录因子的结合位点,MyoD家族的其它成员中尚未见相关报道。

目前有两种机制来解释MEF2转录因子的作用模式: MEF2 通过其转录激活结构域直接与肌肉特异性基因启动子或增强子结合,MEF2可能作为生肌作用的一种强制性辅助因子(cofactor)与MyoD/ E12 杂和二聚体发生相互作用[18 ,1 9 ]。

图1 MyoD基因家族成员与其它因子的相互作用[20]3 肌卫星细胞移植对骨骼肌及心肌再生的作用Koh等[21]1993年首次报道了将卫星细胞C2C12系成功移植到正常小鼠心脏,并观察形成具有骨骼肌细胞特征的多核肌管,从此掀开了骨骼肌卫星细胞移植治疗心梗的新篇章。

由于卫星细胞可以从病人自身获得,此研究在临床上具有广阔的应用前景。

肌卫星细胞作为一种治疗心肌梗死的供体细胞具有较多的优点,包括在体外有增殖能力,在缺血组织内仍然能够成活,能够进行自体移植等,但其标记问题一直是困绕人们的难题之一,尤其是超微结构研究方面。

但目前在供体细胞的选择、标记追踪方面存在很多的分歧,治疗机制也不十分清楚[22-23]。

长期失神经支配的骨骼肌,肌卫星细胞含量下降,肌细胞核数量也下降,肌纤维变性坏死。

当神经再支配时,由于肌卫星细胞耗竭,肌细胞再生能力下降,影响了骨骼肌功能的恢复。

因此,增加骨骼肌中的肌卫星细胞能够促进肌纤维的再生,可提高神经修复手术的疗效。

由于近年来对肌卫星细胞成肌规律的进一步了解,骨骼肌再生修复动力性瘫痪的研究受到了医学工作者们的重视并已取得了瞩目的进展,为瘫痪肌肉的动力修复开创了一个崭新的研究前景。

4 肌组织工程的应用前景肌卫星细胞作为肌组织工程的种子细胞来修复瘫痪肌肉,以恢复肌肉动力的功能有广阔的前景和实用价值。

目前,肌卫星细胞与Ⅰ型胶原凝胶复合研究较多,Ⅰ型胶原能促进肌卫星细胞贴壁,而且在体外能很好地促进肌卫星细胞分化,使肌卫星细胞融合的百分比增加。

目前研究较多的是肌卫星细胞的体外培养及增殖,将该细胞移植到体内的成肌效应目前研究甚少。

因为肌组织工程技术距临床应用还有很大的差距,所以还需大量的研究工作来完善肌组织工程技术,为临床应用打下坚实的理论与实验基础。

参考文献[1]何波,郑嵘,熊远著,等.新生骨骼肌卫星细胞的培养鉴定及生物学特性[J] .畜牧兽医学报,2006,37(6) :555- 559.[2] 秦瑞峰,顾小明,封兴华,等.小鼠骨骼肌细胞体外培养的增殖及分化关系[J] .临床口腔医学杂志,2004,20(9) :535- 536.[3] 邵素霞,张雷,赵春芳,等.新生大鼠骨骼肌卫星细胞的原代培养及标记方法[J] .基础医学与临床,2004(1) :79- 82.[4] Baroffio A , Piallat MLB , Gabbiani G ,et al. Heterogeneity in t heprogeny of sing human muscle satellite cells [J ] . Differentiation ,1995 ,59(4) :259 .[5] Alessandra Sacco, Regis Doyonnas, Regis Doyonnas, et al. Self-renewal and expansion of single transplanted muscle stem cells[J]. Nature,2008,456:502-506.[6] HONGBINJ,HUI L,JOSEPHX,et al .Control of slow myosin heavy chain 2 gene expression by glycogen synthase kinase activity in skeletal muscle fibers.[J] .Cell TissueRes,2006,323:489- 494.[7] 汪涛,唐军民,舒丹毅,等.小鼠成肌细胞的体外培养及生物学特性的观察[J] .天津医科大学学报,2002,8(2) :182- 186.[8] 王邦茂,陈鑫,张文治,等.成年大鼠骨骼肌卫星细胞原代培养及鉴定[J] .天津医科大学学报,2002,8(4) :463- 465.[9] 陈从波,姚启盛,王卫民,等.骨骼肌卫星细胞纯化及培养的实验研究[J] .实用医学杂志,2006,22(7) :760- 762.[10] 张志,谢富康,冯英.大鼠肌卫星细胞成肌分化的体外实验研究[J] .解剖学报,2006,37(4) :455- 457.[11] Mauro A. Satellite cell of skeletal muscle fibers. J Biophys Biochem Cytol, 1961,9:493~495.[12] 邬江,孙晓娟,钟世镇. 组织工程用大鼠卫星细胞的体外筛选[J ] . 中华显微外科杂志,2002 ,25(2) :123~125 .[13] Row ley J A ,Madlanmbayan G ,Mooney DJ . Alginate hydrogels as synthetic extracellular matrix materials [J]. Biomaterials , 1999 ,20(1) :45~53 .[14] Caroni P. Activity-sensitive signaling by muscle-deriver insulin-like growth factors in the developing and regenerating neuromuscular system[J ]. Annu N Y Acad Sci , 1993 , 692 : 209~222 .[15] Rudnicki M.A., and jaenisch R., 1995, The MyoD family of transcription factors and skeletal myogenesis, Bioessays, 17:203~209[16] Olson E. MyoD family: a paradigm for development ? [J ] .Genes Dev, 1990 , 4(9) : 1 454 - 1 461.[17] Ludolph D, Konieczny S. Transcription factor families: muscling in on the myogenic program[J ] . FASEB J, 1995 ,9(15) : 1 595 - 1 604.[18] Molkentin J , Black B , Martin J , et al. Cooperative activation of muscle gene expression by MEF2 and myogenic bHLH proteins[J ] . Cell, 1995 , 83(7) : 1 125 - 1 136.[19] Buchberger A , Ragge K, Arnold H. The myogenin gene is activated during myocyte differentiation by pre-existing, not newly synthesized transcription factor MEF-2[J ] . J Biol Chem, 1994 , 269(25) : 17 289 - 17 296.[20] 王蕾,赵玉莲,安利国等. 脊椎动物骨骼肌细胞发生的分子机制[J]. 海洋科学,2004,28(12): 54~58.[21] Koh GY, Klug MG, Soonpaa MH, et al. Differentiation and long-term survival of C2C12 myoblast grafts in heart.J Clin Invest, 1993, 92(3):1548~1554.[22] Jain M, DerSimonian H, Brenner DA, et al. Cell therapy attenuates deleterious ventricular remodeling and improves cardiac performance after myocardial infarction. Circulation, 2001, 103(14):1920~1927.[23] Reinlib L And Field L. Cell transplantation as future therapy for cardiovascular disease? Circulation, 2000, 101(18):El 82~87.。

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