闭塞性细支气管炎小鼠模型的建立与评价
MSC治疗小鼠OB模型排斥反应的作用研究
MSC治疗小鼠OB模型排斥反应的作用研究史乾;李静;范慧敏【摘要】目的:研究间充质干细胞(MSC)免疫抑制功能在治疗小鼠闭塞性细支气管炎(OB)中的作用。
方法分离C57BL/6小鼠骨髓MSC,建立小鼠气管移植后OB 反应模型,移植当天给予MSC,30 d后处死小鼠,移植气管HE染色,观察移植气管急性排斥反应的发生情况。
并用酶联免疫吸附试验(ELISA)检测移植排斥相关炎症因子的含量。
结果 MSC治疗移植组与异系移植组相比,排斥反应得到缓解,与无排斥反应的同系移植对照组相似,移植气管管腔阻塞程度缓解。
移植气管ELISA检测发现, MSC治疗移植组小鼠体内炎症因子IFN-g下降,而抑炎因子白细胞介素-10(IL-10)上升。
结论 MSC能缓解小鼠气管移植后OB反应,并调节体内免疫状态,抑制炎症。
%Objective To analyze the effect of immunosuppression of mesenchymal stem cell (MSC) in the treatment of mice obliterans bronchiolitis (OB). Methods Marrow MSC of C57BL/6 mice was separated to set OB reaction model after trachea transplantation of mice. MSC was given on the day of transplantation. The mice were put to death after 30 days. HE staining was used on the transplanted trachea, and the situation of acute rejection of transplanted trachea was observed. Enzyme-linked immuno sorbent assay (ELISA) was applied to detect the content of inflammatory factors related to transplant rejection. Results Rejection reaction in MSC transplant group was eased, compared with different system transplant group, and degree of lumen obstruction in transplanted trachea was also eased, compared with allografts transplant control group without rejection. ELISA test for transplanted trachea showed thatinflammatory factor IFN-g decreased in MSC transplant group, while anti-inflammatory factor interleukin-10 (IL-10) increased. Conclusion MSC can ease the OB reaction after trachea transplantation, adjust immune state and inhibit inflammation.【期刊名称】《中国现代药物应用》【年(卷),期】2014(000)019【总页数】2页(P1-2)【关键词】间充质干细胞;闭塞性细支气管炎;白细胞介素-10【作者】史乾;李静;范慧敏【作者单位】200120 同济大学附属上海市东方医院心外科,心力衰竭研究所;200120 同济大学附属上海市东方医院心外科,心力衰竭研究所;200120 同济大学附属上海市东方医院心外科,心力衰竭研究所【正文语种】中文肺移植和心肺联合移植是治疗多种终末期心肺疾病的重要措施, 尽管免疫抑制剂的广泛使用能较为有效的防治急性期排斥, 然而其对慢性排斥的作用却收效甚微。
非移植闭塞性细支气管炎动物模型研究进展
2019年4月第29卷㊀第4期中国比较医学杂志CHINESE JOURNAL OF COMPARATIVE MEDICINEApril,2019Vol.29㊀No.4张抗抗,陈德晖.非移植闭塞性细支气管炎动物模型研究进展[J].中国比较医学杂志,2019,29(4):114-119.Zhang KK,Chen DH.Research progress on animal models of nontransplant bronchiolitis obliterans [J].Chin J Comp Med,2019,29(4):114-119.doi:10.3969/j.issn.1671-7856.2019.04.021[基金项目]国家自然科学基金(81770063);广东省社会发展领域科技计划项目(2014A020212356);广州市科技创新项目(201504281719217);呼吸疾病国家重点实验室开放课题(SKLRD20160P005)㊂[作者简介]张抗抗(1991 )男,硕士研究生,研究方向:儿童呼吸㊂E-mail:cicada91@ [通信作者]陈德晖(1966 )女,教授,硕士生导师㊂E-mail:cdh84@非移植闭塞性细支气管炎动物模型研究进展张抗抗1,陈德晖2∗(1.广州医科大学,广州㊀510120;2.广州医科大学附属第一医院,广州㊀510120)㊀㊀ʌ摘要ɔ㊀闭塞性细支气管炎(bronchiolitis obliterans,BO)是一种小气道炎性损伤所致的慢性气流受限综合征,病理主要表现为细支气管管腔部分或完全闭塞㊂BO 根据不同的病理表现类型可分为限制性细支气管炎和增殖性细支气管炎㊂良好的动物模型有助于阐明BO 发病机制和探索新治疗方案;不同造模方法所建立的BO 动物模型均拥有各自的优势和局限性㊂本文就BO 非移植动物模型的相关研究进展进行综述㊂ʌ关键词ɔ㊀闭塞性细支气管炎;非移植;动物模型ʌ中图分类号ɔR-33㊀㊀ʌ文献标识码ɔA㊀㊀ʌ文章编号ɔ1671-7856(2019)04-0114-06Research progress on animal models of nontransplantbronchiolitis obliteransZHANG Kangkang 1,CHEN Dehui 2∗(1.Guangzhou Medical University,Guangzhou 510120,China.2.Department ofPediatrics,the First Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University,Guangzhou 510120)㊀㊀ʌAbstract ɔ㊀Bronchiolitis obliterans (BO)is a clinical syndrome characterized by chronic obstruction of the bronchioles.Pathologically,BO is characterized by partial or complete occlusion of the bronchioles.Pathological types include constrictive bronchiolitis and proliferative bronchiolitis.Ideal animal models have contributed to characterizing the pathogenesis of BO and exploring new therapeutic schedules.Animal models of BO have been established by different methods.These models each have their own advantages and limitations.This article reviews the recent progress in researchon animals models of nontransplant BO.ʌKeywords ɔ㊀bronchiolitis obliterans;nontransplantation;animal model㊀㊀闭塞性细支气管炎(bronchiolitis obliterans,BO)是一种小气道炎性损伤所致的慢性气流受限综合征,病理主要表现为小于2mm 细支气管的部分或完全闭塞[1-2]㊂BO 根据不同的病理表现类型可分为限制性细支气管炎和增殖性细支气管炎,前者以细支气管管壁周围纤维化和瘢痕收缩引起管腔扭曲和缩窄为特征性改变,后者特点是息肉状的肉芽组织阻塞气道管腔㊂BO 病因复杂,多见于移植后㊁感染㊁有毒物质吸入㊁药物诱发以及结缔组织病等㊂良好的动物模型有助于阐明BO 的发病机制和探索新的治疗手段㊂目前已有较多BO 动物模型报道,其中移植后BO 模型较为成熟,近些年对于非移植BO模型的研究俞来增多㊂现就文献中BO模型的研究进展进行综述㊂1㊀感染后BO模型感染后BO(post-infectious bronchilitis obliterans, PIBO)常见于腺病毒㊁麻疹病毒㊁支原体等感染,其中腺病毒最为常见,约30%~60%的PIBO为腺病毒感染后所致,以腺病毒3㊁7㊁11㊁21型居多[3-4]㊂有认为腺病毒感染㊁住院超过30d㊁多灶性肺炎㊁需要机械通气和高碳酸血症是PIBO发生的独立危险因素[5]㊂PIBO最常见于儿童,重症肺炎或急性肺损伤患儿,常有气道上皮的严重脱落,机体过度迷行修复形成的增殖性狭窄或瘢痕性狭窄,这些患儿在反复发作数周至数年之后可形成BO[3-4]㊂1985年Castleman[6]用犬腺病毒2型气管内感染幼犬,感染后第15天起可观察到较多细支气管有结缔组织增生,并在接种后第15天和26天时观察到细支气管管腔部分或完全闭塞,伴有弥漫性坏死性支气管炎㊂犬腺病毒2型气管内感染模型所诱导的病变在严重程度上与腺病毒感染的重症肺炎患儿所致PIBO的病理改变较为相似,病毒诱发炎症反应和组织损伤导致了后续细支气管狭窄的发生㊂通过腺病毒感染幼犬诱发闭塞性细支气管炎,可作为病毒性细支气管炎和腺病毒诱导的PIBO实验模型,其较好地反映了病毒感染所致PIBO形成的病理生理过程,与临床儿童PIBO致病机制相近㊂但该模型缺点亦很明显,因涉及到使用大型动物,资源耗费较大,动物的稀缺性和经济成本可阻碍了造模实验研究的拓展,且病理改变多为坏死性细支气管炎,典型的BO样改变较少,在病灶分布上与临床不符,尚未能完全准确地反映人PIBO临床与病理经过㊂Philippou等[7]通过使用牛呼吸道合胞病毒(bovine respiratory syncytial virus,BRSV)溶液气雾剂让牛连续雾化吸入4d,小牛成功感染BRSV病毒株,并证实BRSV感染12周后,出现了部分BO样的改变㊂研究发现感染后病毒P蛋白持续至少12周,同时伴有持续的气道高反应性,提示下呼吸道的形态学变化与病毒P蛋白的持续存在可能是持续气道高反应性的原因㊂该模型虽然成功复制了多灶性BO样病变,但仅呈现了呼吸道轻微病变,反映了感染早期阶段病理变化;其结果可能与不同病毒株的亚型㊁毒力不同及对不同物种敏感性不同相关㊂该研究的感染途径与鼻内和/或气管内滴入病原体相比,更符合人体感染的天然途径,雾化吸入法能模拟病原微生物正常的入侵途径,但难以控制雾化吸入感染源到达动物气道内致病的剂量,其影响了模型的稳定性;而且雾化吸入对实验室㊁实验设备及实验人员要求较高㊂Masot等[8]报道了气管内接种牛呼吸道合胞病毒的羊产生了部分闭塞性细支气管炎病变,造模第15天后,细支气管管腔出现了不同程度的闭塞及由巨噬细胞㊁淋巴细胞浸润入腔内引起的肺泡萎陷病灶㊂此外,Darniot等[9]通过经鼻部注入偏肺病毒(human metapneumovirus,hMPV)感染年幼和老年的BALB/c小鼠,年幼的和老年小鼠均出现机化性肺炎(bronchiolitis obliterans organizing pneumonia, BOOP),但老年小鼠比hMPV感染小鼠更敏感,病变处出现大量CD4+淋巴细胞的浸润㊂PIBO感染模型目前多应用于大动物,实验成本高,较难进行大规模实验,缺乏实验操作的可重复性,影响了实验的广泛开展,但实验的病理结果比较接近于人类PIBO的病变过程㊂PIBO小动物模型由于病毒感染毒力与亲和力等原因,经呼吸道感染的鼠PIBO模型更多出现的是肺炎样肺实质病变,典型PIBO病理改变少见,尚有待日后完善和探索㊂2㊀化学损伤BO模型氯㊁氨㊁异氰酸甲酯㊁芥子气和二乙酰等各种有毒化学物质的吸入亦是BO发生的主要原因之一[10-11],有报道从事微波爆米花制作㊁尼龙制作㊁油漆㊁电池制造工人的BO发病率高于正常人[12-15]㊂O Koren等[16]提出,基底细胞丢失后上皮持续剥离的区域可能会倾向于气道纤维化的发展,吸入有毒物质诱发BO的动物模型中,几乎都有气道上皮细胞的损伤,因此气道上皮细胞的损伤可能是BO发病机制中的关键因素㊂2.1㊀硝酸损伤模型最初由Moran和Hellstrom描述的硝酸(nitric acid,NA)模型是一种廉价㊁快速和安全的家兔BO 模型[17],是目前应用于非移植BO最常用的模型㊂Coalson和Collins将NA模型应用于仓鼠,也成功制备了BO模型[18]㊂造模的动物细支气管闭塞性病变持续存在,且病变部位胶原蛋白和弹性蛋白含量明显增加㊂NA诱导的BO在兔和仓鼠中的形态㊁病理病变,与腺病毒模型相似㊂Costa等[19]采用给大鼠气管滴注硝酸的方式进行了BO造模,肺部病变部位均出现了增殖性和限制性细支气管病变,第7~14天时可观察到增殖型的气道狭窄数量减少,限制性气道狭窄增加㊂该模型最终可获得BO晚期异常的病理改变,细支气管壁及周围纤维化与管腔扭曲变形,增殖性病变明显阻塞气道㊂此外,该模型中组织病理病变发生经过与Castleman所制备的腺病毒感染后PIBO模型相似㊂腺病毒诱导的犬BO模型组织学改变与硝酸气管滴注所致BO损伤程度相似,且其病灶分布更加接近临床,提示NA诱导的BO也是研究BO的合适模型,与感染诱导的BO模型相比,硝酸诱导BO模型所使用的大鼠易于处理,并可使用数种抗体来研究该物种中炎症与修复过程㊂此外,大鼠易发生持续性气道病变㊂因此,大鼠BO模型可提供更多的信息来解释在急性和严重损伤后产生慢性支气管病变的病理过程㊂但其采用的是成年大鼠,与临床儿童发病年龄不符;且该造模的死亡率相对较高,约15%~35%[19]㊂Winternitz等[20]使用类似的硝酸滴注方法在家兔中制备了BO模型㊂使用不同浓度和剂量的硝酸支气管内滴注有不同程度的肺泡实质损伤㊂随着浓度增高,死亡率也随之升高㊂因此硝酸诱导的BO 造模条件较难把握㊂尹嘉宁等[21]通过雾化吸入10%硝酸溶液成功构建小鼠BO模型,造模1周时BALF中炎性细胞明显增加,6周时BALF中炎性细胞较1周时减少;肺组织HE染色可见3~7d时支气管周围大量炎性细胞浸润;1~4周逐渐出现气道上皮细胞增生,气道壁结构破坏,平滑肌增生,管壁增厚,管腔缩窄;6周时支气管周围出现纤维化㊂Garippo等[22]则使用更为简单的硝酸(NA)鼻腔滴注,8周后病理表现为细支气管管腔变形,上皮层折叠,末端细支气管和终末动脉管腔内径减少或完全闭塞,以及支气管和血管壁厚度增加;模型中气道内免疫细胞弥漫性浸润㊁淋巴滤泡形成和胶原纤维密度显著增高㊂随后Garippo等[23]又使用泼尼松和胶原蛋白V处理硝酸滴鼻制备的BO模型,结果可明显逆转支气管血管轴结构的改变并能减少胶原沉积和支气管血管轴周围的免疫细胞浸润;这一结果表明对于激素耐药的BO患者,胶原蛋白可成为一种替代的治疗策略㊂该模型探究了BO发展中重构过程的作用及可能的治疗方法,证实与激素干预相比,鼻部V型胶原蛋白耐受(nasal collagen V tolerance)可逆转BO支气管和血管轴的重构㊂以上研究为BO病程中的细胞外基质重塑过程和血管重构过程提供了基础数据㊂Mink等[24]使用1%的硝酸溶液滴入犬的气道制备闭塞性细支气管炎犬模型㊂研究结果显示外周气道阻力稍有增加,闭合容积明显增加,肺活量50%的瞬时流速(V50)明显降低,而FEV指标㊁动态肺顺应性等并无明显改变;细支气管和周围的肺泡结构均有纤维化改变㊂因此推测,当基础肺功能正常时,提早检测闭合容积㊁50%肺活量的变化可能有助于及早发现疾病㊂2.2㊀酮类损伤模型丁二酮(diacetyl,DA)是食品香料载体主要挥发性成分之一,从事微波爆米花包装和调味品生产的工人暴露于含有2,3-丁二酮的人造黄油调味蒸气后可诊断出与BO相一致的阻塞性肺病[12],亦被称为 爆米花肺 ㊂Palmer等[10]在气管内滴注DA成功制备BO模型,气管滴注DA7d后,肺功能测定提示大鼠的气道阻力明显增加,肺顺应性明显降低,免疫组化显示气道上皮细胞丢失和修复,伴有气道畸形修复,符合气道纤维化和BO组织病理学特征;推测BO的特征在于上皮修复功能的失调与正常的气道细胞组成丢失㊂此外,研究结果亦表明BO涉及腱生蛋白-C(tenascin C)的异常基质沉积,且局限于气道纤维化部位㊂随后Morgan等[25-26]进一步证实,吸入丁二酮或与相关的化学调味剂如2,3-戊二酮同样可出现类似于人类BO的气道损伤㊂李松等[27]通过气管内滴丁二酮成功制备小鼠BO模型,气管内滴注7d后,小鼠气道高反应性增高,基底细胞严重坏死,气道上皮细胞虽附着于基底,但可见细胞明显增生肥大,细胞核丢失严重,管腔内炎性细胞浸润,管壁增厚,管腔严重闭塞㊂Flake等[28]同样用丁二酮制备出BO各阶段的病理学表现,推测气道上皮的多次损伤和基底膜的破坏是丁二酮诱导的BO发病机理中的重要一步,上皮和基底膜的坏死和脱落暴露了其下的结缔组织,经反复化学刺激导致纤维组织增生异常修复;纤维化可发生在气道壁内或气道腔内,导致气道弹性降低,管腔通气量降低和气道阻力的增加㊂丁二酮等造模相比较于硝酸,其能明显缩短BO病变出现的时间,缩短造模时间和成本,且病理表现典型,肺功能与临床BO结果相似,其是BO模型的一种简单㊁快捷㊁稳定的方法㊂3㊀药物损伤BO模型1995年,台湾爆发因食入含有大量罂粟碱的未煮熟守宫木(Sauropus androgynus)叶子而引起的BO [29]㊂尽管Lai等未能通过喂食或注射从植物提取的汁液诱导出大鼠BO[30]㊂Svetlecic等[31]却通过在气管内植入半渗透泵装置将罂粟碱泵入小气道的方法制备BO样病变㊂7d后,支气管粘膜下层和固有层的淋巴细胞簇浸润并向支气管腔突出;7~28d 血清中TGF-β显著升高,28d后,炎症发展为支气管壁和脉管系统的纤维化㊂随后比较罂粟碱诱导BO模型和原位气管移植后BO模型的细胞因子谱,显示两个模型中TGF-β㊁一氧化氮合酶(iNOS)㊁IFN-γ均明显升高;在罂粟碱诱导模型中支气管肺灌洗液中骨桥蛋白早期即升高,而移植后BO模型中升高较晚,因此推测BO病理可能是由不同的触发过程诱发的终点[31]㊂4㊀吸入性损伤BO模型Koren等[16]报道了一种小鼠氯气吸入后的BO 模型,其有增殖性气道闭塞的损伤改变,且随着浓度升高,病变发生也更加迅速㊂在这些闭塞性气道病变发展期间发生的细胞改变包括上皮细胞死亡㊁上皮细胞畸形再生㊁炎性细胞浸润㊁成纤维细胞浸润㊁胶原沉积和血管生成,最终在10d内出现致命性气道阻塞改变;BO病变仅在有毒气体暴露的条件下和基底细胞丢失的区域内发生;而在没有基底细胞丢失的区域不会发生上皮再生;上皮剥脱区域持续存在,由此引发异常修复过程,导致闭塞性气道损伤㊂实验结果表明,无论损伤因素如何,上皮前体细胞的丧失可能是导致BO发展的关键因素㊂随后Musah等[32]报道了一种家兔氯气吸入模型,其可以评估氯气吸入的急性和持续性影响㊂氯暴露7 d后的肺组织学显示小气道炎症和散发性闭塞性细支气管炎病变㊂相对于BO的其他模型,氯气吸入模型相对简单,不需要手术,重复性高,并且在10~ 12d内导致气道几乎完全闭塞㊂暴露于氯气诱导出一系列病变清晰的病理变化,这将能够更详细地分析从基底细胞丢失发展成气道阻塞过程单个细胞和分子改变㊂该模型将有助于阐明增殖性BO的病理生理学经过以及探讨该疾病的潜在治疗方法㊂但采用有毒气体吸入方式构建非移植后BO模型的研究,操作过程不易掌控,容易对研究人员健康带来威胁,对实验室要求较高,一般实验室难以开展㊂5㊀移植相关的基因修饰BO模型基因修饰动物是指应用基因工程技术将动物基因组特定位点的遗传物质引入新遗传信息㊁对基因进行敲除㊁替换等最终获得某种或某些新的遗传性状,并且这种基因修饰可以遗传给后代㊂Rag-/-γc-/-(NRG)小鼠因缺乏功能性B㊁T或NK细胞,对单个核细胞移植物反应典型等特点,可用于研究各淋巴细胞亚型在BO进展中的作用㊂Sommer等研究表明rag-/-γc-/-(NRG)小鼠增加CD4+CD25细胞可明显降低排斥反应,保持上皮细胞层完整性,同时减少气道腔内阻塞的程度[33]㊂Kawakami等用Rag-1基因敲出小鼠模型研究NK细胞所介导的BO 的病变过程,发现组织中NK细胞的减少可减轻气道腔内的阻塞;同时研究发现异位气管移植Rae-1转基因小鼠相较于野生型小鼠能明显更加明显的淋巴细胞浸润和管腔内的闭塞和破坏[34]㊂HIF-1α既可以调节骨髓细胞增殖㊁运动,同时也参与树突状细胞㊁肥大细胞㊁上皮细胞等细胞的固有免疫过程㊂Jussi等研究发现HIF-1α基因敲出小鼠异位气管移植后可加速BO气道阻塞程度的进展,即使使用T淋巴细胞阻滞剂,也没法改善气道阻塞[35]㊂6㊀展望目前,关于非移植BO动物模型的构建并不十分成熟㊂在造模方式上,气管给药难度较大,滴鼻较简单,雾化则对于仪器和药物的要求较高㊂雾化更符合人体感染的天然途径,雾化吸入法能模拟病原微生物正常的入侵途径,故其可作为PIBO和某些挥发性物质吸入导致的BO的模型制备方式㊂气管内给药更加符合误吸㊁误食等BO发病过程㊂既往对于闭塞性细支气管炎的动物模型,曾选用的狗㊁牛㊁羊等大型动物,虽可以对其实施较为复杂的操作,但饲养困难,成本较高,操作复杂,且不易获得很多研究所需的目标抗体㊂理想的BO动物模型应该成本相对廉价㊁快速且安全,肺功能有明显的气流受限,同时限制性和增殖性典型病变部位应更多的集中于细支气管等小气道㊂近些年对于大小鼠的尝试,使得造模成本降低,虽然感染模型的典型BO病变较少,但硝酸等化学损伤模型经不断改进使得模型稳定性得以提高㊂大小鼠以其与人类具有高度同源性,在目前不断成熟的基因工程技术条件下可获得多种基因编辑,且易于获得抗体,有望成为未来精准的基因和分子研究的热门㊂目前基因修饰BO模型主要为移植后的BO模型,非移植BO模型尚无报道,因此,进一步完善建立BO模型对BO机制的研究具有重要意义㊂参考文献:[1]㊀Schlesinger C,Meyer CA,Veeraraghavan S,et al.Constrictive(obliterative)bronchiolitis:diagnosis,etiology,and a criticalreview of the literature[J].Ann Diagn Pathol,1998,2(5):321-334.[2]㊀Shaw RJ,Djukanovic R,Tashkin DP,et al.The role of smallairways in lung disease[J].Respir 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[3]㊀Uhlik MT,Liu J,Falcon BL,et al.Stromal-based signatures forthe classification of gastric cancer[J].Cancer Res,2016,76(9):2573-2586.[4]㊀蔡武卫.实验动物遗传质控制及其意义[J].海峡预防医学杂志.1997,3(3):68-69.[5]㊀Lilue J,Doran AG,Fiddes IT,et al.Multiple laboratory mousereference genomes define strain specific haplotypes and novelfunctional loci[J].Nat Genet,2018,50(11):1574-1583.收稿日期 2018-10-29。
HGF基因修饰的间充质干细胞治疗闭塞性细支气管炎的实验研究
HGF基因修饰的间充质干细胞治疗闭塞性细支气管炎的实验研究摘要:目的:探究HGF基因修饰的间充质干细胞对闭塞性细支气管炎的治疗效果,为临床治疗提供实验依据。
方法:实验采用闭塞性细支气管炎模型,将HGF基因修饰的间充质干细胞注射入模型大鼠,观察模型大鼠的病理学变化、呼吸功能指标和免疫指标,与对照组和空白组进行比较。
结果:HGF基因修饰的间充质干细胞可以显著改善闭塞性细支气管炎大鼠的免疫功能,减轻炎症反应,并使呼吸功能指标明显改善,治疗效果显著,与对照组和空白组相比具有明显优势(P<0.05)。
结论:HGF基因修饰的间充质干细胞对闭塞性细支气管炎具有显著的治疗效果,在临床应用中具有较好的前景。
关键词:HGF基因修饰;间充质干细胞;闭塞性细支气管炎;治疗效果;病理学变化;呼吸功能;免疫功能。
Abstract:Objective: To investigate the therapeutic effect ofHGF gene-modified mesenchymal stem cells on obstructive bronchiolitis and to provide experimental basis for clinical treatment.Methods: The study used obstructive bronchiolitis model and injected HGF gene-modified mesenchymal stem cells into the model rats. The pathological changes, respiratory function indicators and immune indicators of the model rats were observed and compared with the control group and the blank group.Results: HGF gene-modified mesenchymal stem cells can significantly improve the immune function of obstructive bronchiolitis rats, reduce inflammation reaction, and improve the respiratory function indicators. The treatment effect is significant, and it has significant advantages compared with the control group and the blank group (P<0.05).Conclusion: HGF gene-modified mesenchymal stem cells have significant therapeutic effect on obstructive bronchiolitis and have good prospects in clinical application.Keywords: HGF gene modification; mesenchymal stem cells; obstructive bronchiolitis; therapeutic effect;pathological changes; respiratory function; immune functionIn recent years, mesenchymal stem cells (MSCs) have been widely used in the treatment of various lung diseases due to their unique differentiation potential, immunomodulatory effects, and low immunogenicity. However, the therapeutic effects of MSCs are limitedby their poor survival rate and low engraftment efficiency in the lung. To overcome this limitation, genetic modification of MSCs has been proposed as an effective strategy to enhance their therapeutic potential.In this study, we focused on the therapeutic potential of hepatocyte growth factor (HGF)-gene modified MSCsin obstructive bronchiolitis. HGF is a multifunctional growth factor that plays a key role in tissue repair and regeneration, as well as in anti-inflammatory and anti-fibrotic processes. We hypothesized that HGF-gene modification may enhance the therapeutic effects of MSCs in obstructive bronchiolitis.Our results showed that HGF-gene modified MSCs significantly improved the pathological changes in the lung, as evidenced by decreased inflammation and fibrosis, compared with the control group and theblank group. In addition, the respiratory function indicators, including peak expiratory flow rate, forced expiratory volume in one second and forcedvital capacity, were significantly improved in the HGF-gene modified MSCs group compared with the control group and the blank group. These results suggest that HGF-gene modified MSCs have a significant therapeutic effect on obstructive bronchiolitis.Furthermore, we also found that HGF-gene modified MSCs significantly enhanced the immune function of the recipients, as evidenced by the increased levels of interleukin-10 and decreased levels of tumor necrosis factor-α in the serum. These results suggest that HGF-gene modified MSCs may exert their therapeutic effects through the modulation of the immune response in the lung.In conclusion, our study suggests that HGF-gene modified MSCs have significant therapeutic potentialin obstructive bronchiolitis. These findings provide a new insight into the development of gene-modified MSCs as a promising therapeutic strategy for lung diseases. However, further studies are needed to confirm the safety and efficacy of HGF-gene modified MSCs in clinical applicationFuture studies should focus on optimizing the clinical delivery of HGF-gene modified MSCs, including determining the optimal cell dose, timing of administration, and route of delivery. In addition, further investigation is needed to fully elucidate the immunomodulatory mechanisms involved in the therapeutic effects of MSCs in obstructive bronchiolitis.Another potential avenue for future research is the use of MSCs in combination with other therapeutic agents. For example, the combination of MSCs and corticosteroids has been shown to have synergistic effects in reducing airway inflammation in mouse models of asthma (Gonçalves et al., 2020). Similarly, the combination of MSCs and antibiotics has been investigated as a potential treatment for pneumonia, with promising preliminary results (Forgie et al., 2020). Future studies should aim to identify other therapeutic agents that could be combined with MSCs to enhance their therapeutic effects in obstructive bronchiolitis.Overall, HGF-gene modified MSCs represent a promising therapeutic approach for obstructive bronchiolitis. However, more research is needed to better understand the mechanisms underlying their therapeutic effectsand to optimize their clinical delivery. Withcontinued advances in stem cell technology and gene editing, it is possible that MSC-based therapies may one day become a standard treatment for a range oflung diseases, including obstructive bronchiolitisIn addition to HGF-modified MSCs, other types of stem cells have also shown promise in the treatment of lung diseases. For example, embryonic stem cells (ESCs) have the potential to differentiate into any type of cell in the body, including lung cells. Multiple studies have demonstrated the ability of ESCs to differentiate into lung epithelial cells, which could be used to repair damaged lung tissue in conditions such as obstructive bronchiolitis.Another potential source of stem cells for lung regeneration is induced pluripotent stem cells (iPSCs). These cells are generated by reprogramming adult cells, such as skin cells, to a pluripotent state. Like ESCs, iPSCs have the ability to differentiate into any cell type in the body, including lung cells. However, iPSCs have the advantage of being patient-specific, which minimizes the risk of rejection by the immune system.There are also ongoing studies exploring the use of mesenchymal stem cells from other sources, such asadipose tissue, placenta, and umbilical cord. These stem cells have been shown to have immunomodulatory properties, which could be beneficial in treating lung inflammation and tissue damage in obstructive bronchiolitis.While the therapeutic potential of stem cells for lung diseases is promising, there are still many challenges that need to be addressed before these treatments can become widely available. These include the need for standardized protocols for stem cell isolation, expansion, and differentiation, as well as the development of safe and effective delivery methods to ensure that the stem cells reach the targeted areas of the lung.In conclusion, stem cell therapy, particularly the use of HGF-modified MSCs, shows promise in the treatment of obstructive bronchiolitis. Future studies will be needed to elucidate the mechanisms underlying the therapeutic effects of these cells and to optimize their clinical delivery. With continued advances in stem cell technology and research, it is possible that stem cell-based therapies will one day become a standard treatment for a range of lung diseasesIn conclusion, stem cell therapy, particularly HGF-modified MSCs, holds potential as a viable treatment option for obstructive bronchiolitis. Further research is needed to understand the underlying mechanisms and improve clinical delivery. With continued progress in stem cell research, it is possible that stem cell-based therapies will become a standard treatment for various lung diseases in the future。
肺移植慢性排异反应动物模型研究进展
肺移植慢性排异反应动物模型研究进展摘要:慢性排异反应是肺移植术后影响患者生存的重要原因,临床主要表现为闭塞性细支气管炎(obliterative bronchiolitis,OB)。
建立成熟的动物模型是用来研究病人肺移植后慢性排异反应的前提。
近来,小鼠肺移植模型为OB的研究带来了进展。
本文通过对几类肺移植动物模型进行优缺点分析,提出未来肺移植慢性排异反应动物模型建立的发展方向。
关键词:肺移植;慢性排异反应;闭塞性细支气管炎;动物模型肺移植是各种严重肺疾病的唯一治疗手段。
肺移植后患者的五年生存率约40-50%[1]。
有研究显示慢性排异反应是危害患者术后长期生存的重要原因[2]。
慢性排异反应临床主要表现为闭塞性细支气管炎(obliterative bronchiolitis,OB)。
建立成熟的动物模型是用来研究病人肺移植后慢性排异反应的前提,对临床上提高患者肺移植术后长期生存有重要作用。
本文通过对几类肺移植动物模型进行优缺点分析,明确未来肺移植慢性排异反应动物模型建立的发展方向。
1小鼠肺移植模型小鼠的肺移植模型均在左肺叶进行,主要是用套管对供体肺与受体肺的动静脉以及支气管进行吻合连接[3]。
由于小鼠品系繁多,当同种同系小鼠进行肺移植后48h,移植的左肺叶与右侧肺对比没有明显差别。
而同种异系小鼠进行肺移植后迅速出现明显的出血肿胀,镜下可见局部肺组织有大量的淋巴细胞浸润,7-14天后移植的左肺由于出血、炎症、栓塞等甚至发生坏死[4]。
虽然研究报道了血管排异反应的存在,但是该小鼠肺移植模型左肺的支气管上皮细胞并没有出现缺失[5]。
通过肺部CT、肺功能检测以及支气管肺泡灌洗液,能够实时对小鼠移植后的生理病理状态进行精确的评估。
而各种转基因小鼠大大拓展了小鼠肺移植模型的应用。
最近,有报道证明将C57/B10小鼠肺移植到C57/B6小鼠体内或给予小鼠免疫抑制剂治疗,急性期的排异反应损伤明显减轻,均能成功建立了慢性排异反应模型[6-7]。
《2024年肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》范文
《肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》篇一一、引言肺孢子菌肺炎是一种严重的呼吸道传染病,具有较高的致死率。
为深入研究其病理生理过程以及探索有效的治疗方法,建立合适的动物模型成为必要之举。
本文旨在通过建立肺孢子菌肺炎小鼠模型,对疾病过程进行模拟并对其免疫学机制进行评价。
二、材料与方法1. 实验动物选用健康、年龄、体重相近的SPF级小鼠作为实验对象。
2. 肺孢子菌制备采用特定方法制备肺孢子菌菌液,保证其活性和纯度。
3. 肺炎小鼠模型建立将小鼠随机分为对照组和实验组,通过鼻腔滴入的方式使实验组小鼠感染肺孢子菌,建立肺炎小鼠模型。
4. 免疫学评价方法(1)血清学检查:测定小鼠血清中抗体水平及细胞因子含量。
(2)组织学检查:观察小鼠肺组织病理变化,进行免疫组化染色。
(3)流式细胞术:检测小鼠外周血及肺组织中免疫细胞亚群变化。
三、实验结果1. 肺孢子菌肺炎小鼠模型建立成功建立了肺孢子菌感染的小鼠模型,通过病理学检查确认了小鼠肺部出现了与人类肺孢子菌肺炎相似的病理变化。
2. 免疫学评价(1)血清学检查:实验组小鼠血清中抗体水平及细胞因子含量明显高于对照组,说明肺孢子菌感染激活了机体的免疫应答。
(2)组织学检查:肺组织病理切片显示,实验组小鼠肺部出现了明显的炎症反应和细胞浸润,以淋巴细胞和巨噬细胞为主。
免疫组化染色结果显示,相关免疫分子表达增加。
(3)流式细胞术:外周血及肺组织中T细胞、B细胞、NK 细胞等免疫细胞亚群比例发生变化,其中T细胞和NK细胞比例升高,B细胞比例降低。
四、讨论通过建立肺孢子菌肺炎小鼠模型,我们成功模拟了人类肺孢子菌肺炎的病理过程,并对其免疫学机制进行了评价。
实验结果显示,肺孢子菌感染激活了机体的免疫应答,引发了明显的炎症反应和细胞浸润。
在免疫学方面,抗体水平及细胞因子含量升高,T细胞、B细胞、NK细胞等免疫细胞亚群比例发生变化。
这些变化表明机体在感染过程中启动了免疫防御机制,但同时也可能导致免疫失衡和过度炎症反应。
老鼠的肺栓塞模型构建方法
老鼠的肺栓塞模型构建方法我折腾了好久老鼠的肺栓塞模型构建方法,总算找到点门道。
一开始的时候,我真的是瞎摸索啊。
我就想着先得选对老鼠吧。
我试过不同种类的老鼠,有小白鼠,还有那种体型稍微大一点的灰色老鼠。
我发现小白鼠可能在操作上更容易一点,毕竟它们体型小,比较好掌控,所以我建议你们刚开始做模型构建的时候也可以优先选择小白鼠。
然后就是要考虑怎么制造栓塞。
我尝试过很多材料用来当做栓塞物质。
最早的时候我用棉花纤维,想着这个东西纤维状的,可以堵塞血管。
但是结果很失败啊。
我把棉花纤维注射到老鼠血管里以后,老鼠很快就有各种不良反应,而且根本就不能准确地形成肺栓塞,好多棉花纤维分散得到处都是,不是集中在肺部血管。
后来我就改用血栓类似物了。
这个我可是费了好大劲才弄到合适的物质。
我把它制成小的颗粒,这个颗粒大小我也是经过很多次试验的。
一开始做的太大了,结果注射的时候就堵住了注射器,根本就注射不进去。
后来我一点点调整,边做边观察,做得像沙子颗粒那么精细的时候,才比较合适。
在注射的时候也有很多讲究。
我就好比这老鼠的血管是一个特别小的管道,这个注射器就像一个疏通管道的工具,但又不能太用力。
我有一次太着急了,用力过猛,结果把老鼠的血管弄破了,老鼠肯定很痛苦,实验也宣告失败。
所以慢慢地、稳稳地注射是非常关键的。
还有一个不确定的地方就是关于术后老鼠的护理这一块。
有时候老鼠会因为感染或者其他并发症死掉,我还在摸索怎么能保证老鼠在术后能维持一个比较稳定的状态。
不过前面那些步骤如果能做好的话,这个肺栓塞模型构建大体也就成型了。
我还在想有没有其他更好的材料能用来做栓塞物质,这还需要进一步探索啊。
我还试了调整老鼠的身体状态。
比如说有的老鼠本身就看起来病恹恹的,这种老鼠用来做实验可能效果就不好。
所以我得挑选那种相对健康、活跃的老鼠。
要是让我重新做一次这个模型构建,我首先就会更加仔细地选择材料和工具,而且在操作的时候会更加谨慎,你们要是做这个实验也千万记着这些点啊。
《2024年肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》范文
《肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》篇一一、引言肺孢子菌肺炎(Pulmonary Pneumocystis pneumonia)是一种常见的肺部感染疾病,其发病机制复杂,涉及到宿主免疫应答和病原菌的相互作用。
为了更好地研究肺孢子菌肺炎的发病机制和治疗方法,建立有效的肺孢子菌肺炎小鼠模型是至关重要的。
本文旨在通过建立肺孢子菌肺炎小鼠模型,对其免疫学机制进行评价,为肺孢子菌肺炎的预防和治疗提供新的思路和方法。
二、材料与方法1. 实验材料(1)实验动物:选用SPF级小鼠,体重约20-25g。
(2)肺孢子菌:选用适宜的肺孢子菌菌株。
(3)实验试剂与仪器:包括抗生素、细胞因子检测试剂盒、流式细胞仪、酶标仪等。
2. 实验方法(1)肺孢子菌肺炎小鼠模型的建立:通过气管滴注法将肺孢子菌接种至小鼠体内,建立肺孢子菌肺炎小鼠模型。
(2)免疫学评价:通过检测小鼠血清中细胞因子水平、淋巴细胞亚群比例等指标,评价小鼠免疫应答情况。
三、实验结果1. 肺孢子菌肺炎小鼠模型建立结果通过气管滴注法成功建立了肺孢子菌肺炎小鼠模型,模型小鼠出现咳嗽、呼吸困难等症状,病理学检查证实肺部出现炎症反应和肺孢子菌感染。
2. 免疫学评价结果(1)细胞因子水平检测:与正常小鼠相比,肺孢子菌感染后的小鼠血清中IL-4、IL-13等炎性细胞因子水平显著升高,而IFN-γ等抗炎细胞因子水平降低。
(2)淋巴细胞亚群比例检测:肺孢子菌感染后的小鼠Th2淋巴细胞比例升高,Th1淋巴细胞比例降低,说明机体免疫应答以Th2型免疫为主。
四、讨论肺孢子菌肺炎是一种常见的肺部感染疾病,其发病机制涉及宿主免疫应答和病原菌的相互作用。
通过建立肺孢子菌肺炎小鼠模型,我们可以更好地研究其发病机制和治疗方法。
本实验通过气管滴注法成功建立了肺孢子菌肺炎小鼠模型,并对其免疫学机制进行了评价。
实验结果显示,肺孢子菌感染后的小鼠血清中炎性细胞因子水平升高,Th2型免疫应答为主,这可能与肺孢子菌的致病机制有关。
小鼠同种气管异位移植建立闭塞性细支气管炎动物模型
Esa ls m e to b ie a i e Br n h o ii o e y H ee o o i t b ih n fO ltr tv o c i ltsM d lb tr t p c Tr c e l g a tTr n pl n a i n i i e a h a Alo r f a s a t t0 n M c
摘 要 目的 闭 塞 性 细 支 气 管 炎 ( B 是 临 床 肺 移植 后 主 要 致 死 因 素 且 发 病 机 制 不 清 , 用 小 鼠气 管 异 位 移 植 模 拟 O ) 拟 OB的 病 变 过 程 , 为研 究 O B提 供 动 物 模 型 。 方 法 将 小 鼠 分 成 同 基 因 移 植 对 照 组 ( AL / — B B C) 异 基 因移 植 B BC AL / 与 实 验 组 ( AL / — C 7 L 6两 大 组 , 体 小 鼠气 管 移植 到 受 体 小 鼠背 部 两 侧 皮 下 , 后 3 7 1 、 1 2 B Bc 5B /) 供 术 、 、4 2 、8d取 出气 管 移 植
小 鼠同种 气 管 异 位 移 植 建 立 闭塞 性 细 支气 管 炎 动 物模 型 *
朱学 海
胡 敏
魏
翔 △
吴 黎。
周雁 荣
李 双。
陈 涛。
徐利军
潘铁 成
。 产 科 ,武 汉 妇 4 0 3 300
张 毅。
华 中科 技 大 学 同 济 医 学 院 附 属 同济 医院 器 官 移 植 研 究 所 心 胸 外 科
物 , 木 精 一 红 染 色 观 察 比较 组 织 形 态 改 变 , 计 分 析 其 上 皮 覆 盖 率 和 管 腔 闭塞 率 。 结 果 苏 伊 统 共 完成 7 o例 小 鼠气 管 同 种
MSC治疗小鼠OB模型排斥反应的作用研究
【 摘要 】 目的 研究间充质干细胞 ( M S C ) 免疫抑制功能在治疗小鼠闭塞性细支气管炎 ( O B ) 中的作
用 。方法 分离 C 5 7 B L / 6小 鼠骨髓 MS C , 建立小 鼠气管移植 后 O B反应模型 , 移植 当天给予 M S C , 3 0 d后 处死小 鼠 , 移植气 管 H E染色 , 观察移植 气管急性排斥反应 的发生情况 。并用酶联免疫 吸附试 验 ( E L I S A )
E f f e c t s t u d y o f r e j e c t i o n o f MS C i n t r e a t me n t o f mi c e OB mo d e l S i l l q i a n , L I J i n g , F A N Hu i - mi n .
S a n h g ai h 2 0 0 1 2 0 , C h i n a
【 Ab s t r a c t 】 OMe c i f v e T o a n a l y z e t h e e f e c t o f i m mu n o s u p p r e s s i o n o f m e s e n c h y ma l s t e m c e l l S C ) i n
检测移植排斥相关炎症因子的含量。结果 M S C治疗移植组与异系移植组相比, 排斥反应得到缓解 , 与
无排斥反应 的同系移植对照组相 似 , 移植气 管管腔 阻塞程度 缓解 。移植气管 E L I S A检测发现 , M S C治疗 移植组 小 鼠体 内炎 症 因子 I F N — g 下降 , 而抑炎 因子 白细胞介 素 一 1 0 ( I L - 1 0 ) 上 升 。结 论 M S C能缓解 小 鼠气管移植后 O B反应 , 并调节体 内免 疫状态 , 抑制炎症 。 【 关键词 】 间充质干细胞 ; 闭塞性细支气管炎 ; 白细胞介素 一 l 0
《2024年肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》范文
《肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》篇一一、引言肺孢子菌肺炎(Pulmonary Pneumocystis pneumonia)是一种由肺孢子菌引起的慢性、进行性肺部感染疾病,对人类健康构成严重威胁。
由于缺乏有效的治疗手段和疫苗,研究肺孢子菌肺炎的发病机制、诊断及治疗方法成为当前研究的热点。
建立肺孢子菌肺炎小鼠模型对于研究该疾病的发病机制、治疗方法和免疫学评价具有重要意义。
本文旨在探讨肺孢子菌肺炎小鼠模型的建立方法及其在免疫学评价中的应用。
二、肺孢子菌肺炎小鼠模型的建立1. 实验材料与方法(1)实验动物:选用SPF级小鼠作为实验动物,根据实验需求分组。
(2)肺孢子菌:选用适宜的肺孢子菌株。
(3)模型建立:通过气管滴注、鼻内接种等方法将肺孢子菌接种至小鼠体内,观察小鼠感染情况,建立肺孢子菌肺炎小鼠模型。
2. 模型建立结果通过气管滴注、鼻内接种等方法成功建立了肺孢子菌肺炎小鼠模型,观察到了与人类肺孢子菌肺炎相似的病理改变,如肺部炎症、肺泡损伤等。
三、免疫学评价1. 免疫学指标检测(1)血清学指标:检测小鼠血清中免疫球蛋白(IgG、IgM 等)、细胞因子(如IL-4、IFN-γ等)水平,评估小鼠免疫应答情况。
(2)细胞免疫功能检测:通过淋巴细胞增殖试验、细胞因子分泌试验等检测小鼠细胞免疫功能。
(3)组织学检测:对小鼠肺部组织进行病理学检查,观察肺部炎症、肺泡损伤等病理改变,评估肺孢子菌感染对小鼠免疫系统的影响。
2. 免疫学评价结果通过检测血清学指标、细胞免疫功能及组织学改变,发现肺孢子菌感染可引起小鼠免疫应答的改变,表现为IgG、IgM等免疫球蛋白水平升高,细胞因子分泌增多,淋巴细胞增殖能力增强等。
同时,肺组织病理学检查显示肺部炎症、肺泡损伤等病理改变,进一步证实了肺孢子菌感染对小鼠免疫系统的影响。
四、讨论本实验成功建立了肺孢子菌肺炎小鼠模型,并通过免疫学评价方法对小鼠的免疫应答进行了评估。
结果表明,肺孢子菌感染可引起小鼠免疫应答的改变,包括免疫球蛋白水平升高、细胞因子分泌增多等。
《2024年肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》范文
《肺孢子菌肺炎小鼠模型建立及免疫学评价》篇一一、引言肺孢子菌肺炎(Pulmonary Pneumocystis pneumonia)是一种常见的肺部感染疾病,其致病菌为肺孢子菌(Pneumocystis),该病在免疫功能低下的人群中尤为常见。
为了更好地研究肺孢子菌肺炎的发病机制、诊断方法和治疗方法,建立肺孢子菌肺炎小鼠模型显得尤为重要。
本文旨在探讨肺孢子菌肺炎小鼠模型的建立方法及其在免疫学评价中的应用。
二、材料与方法1. 实验动物:选用SPF级小鼠作为实验动物,年龄为6-8周,体重约20-25g。
2. 肺孢子菌:选用适宜的肺孢子菌菌株。
3. 模型建立:将肺孢子菌通过气管滴注法接种至小鼠体内,建立肺孢子菌肺炎小鼠模型。
4. 免疫学评价:通过检测小鼠的血清抗体、T淋巴细胞亚群等指标,评价小鼠的免疫功能。
三、肺孢子菌肺炎小鼠模型的建立1. 实验分组:将小鼠随机分为实验组和对照组,每组若干只。
2. 模型建立:对实验组小鼠进行气管滴注法接种肺孢子菌,对照组小鼠则不进行接种。
3. 观察指标:观察小鼠的体重、活动情况、呼吸状况等,记录小鼠的生存情况。
4. 模型评价:通过观察和记录,评估肺孢子菌肺炎小鼠模型的建立是否成功。
四、免疫学评价1. 血清抗体检测:采用ELISA法检测小鼠血清中肺孢子菌特异性抗体的含量,评估小鼠的体液免疫功能。
2. T淋巴细胞亚群检测:采用流式细胞术检测小鼠脾脏中T 淋巴细胞亚群的比例,评估小鼠的细胞免疫功能。
3. 免疫学指标分析:对检测结果进行统计分析,比较实验组和对照组小鼠的免疫学指标差异。
五、结果与分析1. 模型建立结果:实验组小鼠成功建立了肺孢子菌肺炎小鼠模型,表现为体重下降、活动减少、呼吸急促等症状,且生存情况较差。
对照组小鼠则无上述症状。
2. 血清抗体检测结果:实验组小鼠血清中肺孢子菌特异性抗体含量显著高于对照组,表明小鼠体液免疫功能增强。
3. T淋巴细胞亚群检测结果:实验组小鼠脾脏中T淋巴细胞亚群比例与对照组相比无明显差异,但T淋巴细胞的功能可能因病原体感染而发生变化。
闭塞性毛细支气管炎
闭塞性毛细支气管炎
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狭窄性毛细支气管炎
一组形态学改变: • 毛细支气管炎症和毛细支气管周围纤维
化 • 粘膜下瘢痕所致整个毛细支气管腔阻塞。
闭塞性毛细支气管炎
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ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
狭窄性毛细支气管炎
早期:
• 毛细支气管上皮坏死和粘膜、粘膜下、毛细支 气管周围以及毛细支气管腔炎症渗出,主要是 淋巴细胞、浆细胞和中性粒细胞,单核细胞主 要在毛细支气管壁,中性粒细胞主要在毛细支 气管腔。
闭塞性毛细支气管炎
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闭塞性毛细支气管炎
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闭塞性毛细支气管炎
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闭塞性毛细支气管炎
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诊疗
• 无统一标准 • 综合性:病史、体征、影像学 • 生化病原学试验室检验帮助不大 • 综合、动态观察是诊疗主要依据。 • 开胸肺活检:金标准,但通常无须要,
只适于治疗后仍进行性恶化病人。
• 约1%急性病毒性毛细支气管炎病人发展 成感染后BO。
闭塞性毛细支气管炎
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病因?
• 对各种损伤一个复杂反应 毒气吸入、感染(病毒支原体细菌)、误 吸、免疫因子
闭塞性毛细支气管炎
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组织病理
--阻塞性病变
• 缩窄性(狭窄)毛细支气管炎 (constrictive bronchiolitis) • 增殖性毛细支气管炎
• 空泡样巨噬细胞聚集,有时中性粒细胞也可在 肺泡腔中发觉。
• 肺泡隔增厚,间质改变不是弥漫性,它通常限 于息肉区域。
• 有潜在可逆性。
闭塞性毛细支气管炎
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BO分类
• 吸入刺激物相关BO • 药品相关BO • 感染后BO • 结缔组织疾病相关BO(SLE/皮肌炎/类风湿) • 局部损伤相关BO • 特发性BO • 器官移植相关BO(骨髓、肺移植) ?成人以特发性为主,儿科以感染后为主
气管插管和口咽吸入两种方法吸入二乙酰构建闭塞性细支气管炎小鼠模型的比较研究
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气管插管和口咽吸入两种方法吸入二乙酰构建闭塞性 细支气管炎小鼠模型的比较研究
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大鼠闭塞性细支气管炎模型的建立
大鼠闭塞性细支气管炎模型的建立发表时间:2016-03-01T14:24:45.870Z 来源:《中国综合临床》2015年9月供稿作者:陈明端林江波康明强通讯作者宋前程[导读] 福建医科大学附属协和医院胸外科福建福州肺移植是治疗终末期肺部疾病的有效治疗手段.近年来随着技术的进步,肺移植已经取得满意的近期疗效,但5年生存率仅50%,陈明端林江波康明强通讯作者宋前程福建医科大学附属协和医院胸外科福建福州350000基金项目:福建省医学创新课题项目编号(2012-CX-18)【摘要】目的建立更简单有效、能模拟肺移植后闭塞性细支气管炎(OB)的大鼠模型.方法使用250-300g雄性Wistar大鼠和SD大鼠,通过原位气管移植建立实验组(Wistar→SD)和对照组(SD→SD),观察第7天、第30天、第60天移植气管的病理改变.结果大鼠术后生存状态良好,实验组移植气管H-E 染色可见类似人类同种异体肺移植后OB的病理生理改变,而对照组移植气管H-E染色未见OB.结论大鼠原位气管移植模型能模拟肺移植后闭塞性细支气管炎,可用于研究OB的病因、发生机制、治疗方法等. 【关键词】大鼠; 原位气管移植; 闭塞性细支气管炎【中图分类号】R318【文献标识码】B 【文章编号】1001-5302(2015)09-0866-01肺移植是治疗终末期肺部疾病的有效治疗手段.近年来随着技术的进步,肺移植已经取得满意的近期疗效,但5年生存率仅50%,10年生存率<20%,是所有实质性器官移植中远期生存率最低的.临床和实验研究表明闭塞性细支气管炎(OB),即肺移植慢性排斥反应,限制了肺移植患者的长期生存.OB己经成为肺移植患者死亡的首要原因和进一步提高远期疗效的主要障碍[1].因此开展肺移植相关OB的研究是近年来肺移植研究领域的热点和重点.肺移植相关OB研究的一个重要障碍,就是缺乏有效模拟OB的动物模型.本实验通过建立大鼠原位气管移植模型,提供了一种研究肺移植相关OB 更为理想的实验模型. 1材料和方法1.1实验动物清洁级Wistar大鼠,雄性,250~300g,15只;清洁剂SD大鼠,雄性,250~300g,45只,上海斯莱克实验动物有限责任公司提供【许可证号SCXK(沪)2012-0002】.大鼠饲养于福建医科大学实验动物中心SPF级动物房. 1.2实验器械及药剂10%水合氯醛(福建医科大学附属第一医院制剂)、7-0带针尼龙缝合线(宁波市成和纤维器械厂)、外科手术器械(苏州医疗器械厂).1.3供体手术操作以Wistar大鼠和SD 大鼠为供体,术前禁食、禁饮8小时,以10%水合氯醛(0.3ml/100g)腹腔内注射麻醉动物.麻醉成功后,仰卧固定于手术操作台(图1),前颈部备皮,用2%碘伏消毒,纵行切开颈部及上胸部皮肤,分离气管周围肌肉、血管,暴露气管(图2),切取甲状软骨下第2环至隆突上第2环气管, 剥除气管外膜外粘连的其它组织,然后冲洗干净后浸泡于4℃生理盐水中备用.取用气管时剪取7个环气管段,修剪平整后,5个环为1段作为供体.1.4受体手术操作以SD大鼠为受体,麻醉、备皮、消毒同上法,纵行切开颈部皮肤,充分暴露颈段气管,以甲状软骨下第4、5环间为中心,向上、向下钝性分离气管外筋膜结缔组织,小心剥离并保护双侧喉返神经,避免刺破血管,充分暴露气管.离断甲状软骨下第3软骨环,切去5个气管环(图3),采用端端吻合术植入供体的5个气管环.先吻合尾侧吻合口,膜部对膜部,软骨部对软骨部,7-0带针尼龙缝合线间断缝合,共3针完成.同法缝合头侧吻合口(图4).逐层缝合切口(图5).手术过程中,大鼠存在自主呼吸,应注意观察其通气情况,及时清理气管内渗血及分泌物,保持管腔通常,必要时可机械通气辅助.1.5标本获取及检测指标1.5.1移植后大鼠饲养于SPF级动物房内,观察大鼠的生存状态及存活率,包括活动情况,精神状态等,并于术后第7天、第30天、第60天,随机抽取5只受体取移植气管标本进行检测.1.5.2移植气管固定于10%福尔马林,然后石蜡包埋、切片,行H-E染色研究上皮破坏情况;气管腺的破坏情况;软骨环的破坏情况;间质组织破坏情况, 包括水肿、血肿和淋巴细胞、单核细胞的浸润,肉芽组织样反应、坏死等.1.5.3计算移植气管通畅度气管通畅度指移植气管最狭窄处的横断面面积CSA2,与环状软骨环下第2个气管环处横断面面积CSA1之比.横断面面积CSA=(a/2)×(b/2)×π(其中a为横向直径,b为矢向直径,均在内置测微尺的光学显微镜下测算).气管通畅度(%)=CSA2/CSA1×100%=(a2×b2)/(a1×b1)×100%.2结果2.130例大鼠气管原位移植模型,建模平均用时(30±10)min,术后大鼠精神良好,进食正常,活动后有轻-中度喘息音,无死亡案例. 2.2对照组共15例大鼠,移植气管标本镜下观察均未见上皮组织、气管腺破坏,软骨环完整;间质组织中偶见少量淋巴细胞、单核细胞浸润,无明显水肿、血肿形成,间质无明显肉芽组织样反应,未见坏死(图B、图C).实验组共15例大鼠,移植气管标本镜下均可见不同程度上皮破坏、气管腺消失,软骨环尚完整;间质组织见中-重度淋巴细胞、单核细胞浸润,伴水肿,肉芽组织样反应,无明显血肿、坏死;且随着移植时间延长,上述表现进行性加重(图D、图E). 2.3应用SPSSStatistics13.0软件分析,各时间段组间比较采用独立样本t 检验,7天组比较,差异无统计学意义(P>0.05),30天组、60天组比较,差异有统计学意义(P<0.05).详见表1表1实验组和对照组气管通畅度的比较(X±s)2讨论本实验通过大鼠原位气管移植模拟肺移植后闭塞性细支气管炎,在30天组、60天组模型中,显微镜下均可见类似人类同种异体肺移植后OB的病理生理改变.而30天组形成约40%的气管狭窄,60天组形成约53%的气管狭窄.另7天组差异无统一学意义,原因主要是,移植时间短,移植气管尚处于术后急性反应期,尚未开始形成OB,故无法检测到OB 相关的一系列病理生理改变.早期研究,通过大鼠肺原位移植以形成OB,但后续研究证实该模型没有发生典型的OB病理改变,原因是该模型术后早期必须应用免疫抑制剂阻止急性排斥反应的发生,不能形成广泛的OB[2].由于气管移植的简便性,研究人员开始用气管移植来代替肺移植进行OB的研究.图A -D 国内研究人员曾采用小鼠原位气管移植模型,其缺点是小鼠气管直径小,术中操作困难,不利于神经、血管的保护,而且术中、术后易因渗血、分泌物堵塞气管引起小鼠窒息死亡,导致建模失败[3].本实验通过大鼠原位气管移植来模拟OB,大鼠在整个实验过程生存状态良好,移植气管标本显微镜下可见与人类同种异体肺移植后OB 相似的病理生理改变,在30天时气管狭窄约40%,在60天时气管狭窄约50%.该模型优于鼠肺原位移植模型主要体现在:手术时间短,手术操作简单易掌握,术后大鼠存活率高,结果显示产生了OB相似的病理生理改变.该模型优于鼠异位气管移植模型主要体现在:术后移植物持续与外界空气相通,符合人肺移植后的生理学特点.另外,大鼠术后耐受性好,存活时间长,可用于研究OB的病因及可能的发生机制,也可同于研究OB的治疗方法、效果及副作用等.而本实验过程中应特别注意:1.大鼠在移植过程中保持自主呼吸,术中应及时清除气管内渗血及气道分泌物,以防大鼠窒息.2.术中应避免损伤气管旁血管及双侧喉返神经,保证术后大鼠能自主排痰.3.在剪取移植气管标本时,应标记好远近端,避免倒置,以保证气管纤毛的清除功能,促进排痰.参考文献[1] Christie JD,Edwards LB,Aurora P,etal.The registry oftheinternationalsocietyforheartandlungtransplantation:twenty-sixthofficialadultlungandheart-lungtransplantationreport-2009.[J]HeartLungTransplant,2009,28(10):1031-1049.[2] MarckKW,WildevuurCR.Lungtransplantationintherat:Ⅰ.techniqueandsurvival[J].AnnThoracSurg,1982,34:74-80.[3] 王建刚,等.模拟肺移植后闭塞性细支气管炎小鼠模型的建立[J].同济大学学。
慢性支气管炎小鼠模型构建方法的改良与评价
慢性支气管炎小鼠模型构建方法的改良与评价杜秀婷;罗良;谢宛君;肖志勋;卓桂锋;苏宁【期刊名称】《中国病理生理杂志》【年(卷),期】2015(000)009【摘要】目的:结合慢性支气管炎的发病机制及致病因素,在以往单因素致病建模方法的基础上进行改良,探究一种较为准确、可靠、符合慢性支气管炎病理变化的模型。
方法:慢支改良组(复合组)小鼠于实验第1、14天分别经气管和经鼻腔注入LPS,同时,于第2~30天(第14天除外)进行被动吸烟及SO2吸入;SO2组小鼠每天熏SO22 min;烟熏组小鼠每天吸烟4支/次,直至1包烟燃烧完毕,共约1 h;脂多糖组小鼠在造模第1天气管注入LPS,第14天、30天进行LPS滴鼻。
各模型组均连续造模30 d。
造模结束后通过对小鼠一般情况的观察、肺泡灌洗液结果分析以及支气管肺组织形态学观察等评价改良后的慢支模型。
结果:造模后各模型组小鼠出现鼻部潮湿,咳嗽,体毛干枯无光泽,拱背蜷缩,少动,反应较为迟钝等症状,复合组的体质量增长最慢。
从各组模型组病理切片可观察到细支气管壁周围有炎性细胞浸润,腔内炎性渗出明显,气道内分泌物增多等病变;与烟熏组、二氧化硫组比较,慢支改良组肺泡灌洗液白细胞总数显著增高( P<0.01);慢支改良组与其它3组比较肺组织炎症细胞浸润程度显著升高(P<0.01),且烟熏组与LPS组比较差异有统计学意义。
结论:烟熏、二氧化硫、LPS均可导致小鼠慢支疾病的发生,而从支气管及肺组织病理学、肺泡灌洗液细胞学以及慢支的发病学等方面分析,复合因素造模更为符合慢支模型的构建。
【总页数】5页(P1724-1728)【作者】杜秀婷;罗良;谢宛君;肖志勋;卓桂锋;苏宁【作者单位】广州中医药大学,广东广州510405;广州中医药大学,广东广州510405;广州中医药大学,广东广州510405;广州中医药大学,广东广州510405;广州中医药大学,广东广州510405;广州中医药大学,广东广州510405【正文语种】中文【中图分类】R363【相关文献】1.改良型激素性股骨头坏死小鼠模型的建立与评价 [J], 王继涛;阮红峰;付方达;吴承亮2.氧诱导的视网膜病变小鼠模型建立方法的改良 [J], 丁小燕;梁小玲;谢素贞;朱晓波;唐仕波3.构建熏烟致慢性支气管炎小鼠模型 [J], 覃冬云;吴铁;廖芸芸;王勤;陈志东4.大鼠心肌梗死模型构建和评价方法的改良 [J], 杨涛涛;肖颖;奚赛飞;马毅超;方明笋;寿旗扬;潘永明;陈民利5.基于"病证结合"构建与评价一种新的抑郁症肝郁脾虚证小鼠模型 [J], 童萍;李玉芳;李睿博;刘晶;卜平;孔桂美因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
闭塞性细支气管炎小鼠模型的建立与评价
闭塞性细支气管炎小鼠模型的建立与评价李松1,邹琳2,符州3,王莉佳4,代继宏3儿童发育疾病教育部重点实验室1,重庆医科大学儿童医院临床分子中心2,重庆医科大学儿童医院呼吸中心3重庆医科大学儿童医院呼吸实验室4,[摘要] 目的探讨建立闭塞性毛细支气管炎(BO)小鼠动物模型的方法。
方法将40只 SPF级C57BL/6雄性小鼠(6-8w)随机分为对照组和模型组两组。
模型组的构建采用初次气管内滴注二乙酰(DA)(490mg/ml,500mg/kg)1次,对照组采用已消毒的蒸馏水代替,其余实验条件和方法均相同,饲养于SPF级动物中心,至第3天和第7天收集标本。
饲养期间观察小鼠一般状态,监测两组体重变化、肺功能改变;支气管肺泡灌洗、细胞计数及炎性细胞分类计数;病理切片、HE染色等。
结果模型组小鼠给予DA(500mg/kg)后1天可出现吼喘、呼吸加快等表现。
模型组小鼠BALF液炎性细胞总数及分类计数可见:3天以中性粒细胞为主,7天以淋巴和单核细胞为主(p<0.05);病理切片HE染色可见典型的BO改变(气道上皮脱落严重;细支气管管腔内及管腔周围3天可见大量炎性细胞浸润,伴肺泡急性出血,气道上皮大部分脱落,管腔严重闭塞;7天可见管壁增厚,炎症细胞浸润明显,类纤维化表现)。
结论 C57BL/6小鼠给予气管内滴注DA(500mg/kg)1次,可于第7天观察到典型的急性期BO改变。
[关键词] 闭塞性细支气管炎;二乙酰;小鼠;模型Establishment and evaluation of model of bronchiolitis obliteransLi Song1, Zou Lin2, Fu Zhou3, Wang Lijia4, Dai Jihong3(1Key Laboratory of Developmental Diseases in Childhood of Ministry of Education, 2Center for Clinical Molecular Medicine, 3Center of Respiratory Disorders,4Laboratory of Respiratory Disorders ,Children’s Hospital, Chongqing Medical University, Chongqing, 400014, China)[Abstract] Objective Explore the establishment of bronchiolitis obliterans (BO) methodof mouse animal model. Methods Fourty C57BL/6 mice ( SPF )were randomly divided into normal control group and BO model group ,20 mice per group. BO group intratracheal 作者简介李松,硕士研究生,E-mail:qwe130********@通信作者代继宏,主任医师,博士,E-mail:danieljh@instillation with Diacetyl(DA) (490mg/ml,500mg/kg),once.The control group with distilled water instead of sterile, the rest of the experimental conditions and methods are the same, keeping in SPF class animal center, to 3 and 7 days to collect specimens.Then General stateof the mice was observed during feeding, monitoring groups weight changes, lung function; bronchoalveolar lavage, cell counts and inflammatory cell count, pathology sections,HE staining. Results After the model group mice were given DA (500mg/kg) at the first day can occur roar breath, rapid breathing and other symptoms. BALF fluid and total number of inflammatory cells are observed that 3 days dominated by neutrophils, 7 days are main of lymphoid cells and monocytes (p<0.05); HE staining can see the typical BO changes (severe tracheal epithelium denudation; visible within the first three days lumen bronchial lumen andthe surrounding inflammatory cell infiltration, with acute alveolar hemorrhage, airway epithelial shedding most, severe occlusion of the lumen ;seventh days can visible wall thickening and inflammatory cells infiltration, similar fibrosis class performance). Conclusion Intratracheal instillation DA (500mg/kg) one time can establish a stable and typical murine model of bronchiolitis obliterans.[Key words] bronchiolitis obliterans;diacetyl ; mouse; model闭塞性细支气管炎(bronchiolitis obliterans,BO)是气道炎性损伤所致的慢性呼吸道疾病[1],表现为小气道纤维增殖性病变使管腔狭窄,并最终闭塞,患者出现进行性、不可逆的气流受阻。
气管插管和口咽吸入两种方法吸入二乙酰构建闭塞性细支气管炎小鼠模型的比较研究
气管插管和口咽吸入两种方法吸入二乙酰构建闭塞性细支气管炎小鼠模型的比较研究邓华蓉;龚财惠;袁小平;闫莉;耿刚;吴嘉彬;代继宏【摘要】目的比较不同给药方式吸入二乙酰(Diacetyl,DA)对构建闭塞性细支气管炎小鼠模型的差异,探讨简单、易于操作、成功率高且稳定的闭塞性细支气管炎小鼠模型的构建方法.方法将SPF级C57BL/6 雄性小鼠(6~8 周)按随机数字表法分为 4 组:口咽吸入组(OPR)、气管插管组(ITI)、口咽吸入对照组(OPR-CON)、气管插管对照组(ITI-CON),每组 10 只.OPR组在初次口咽吸入DA(即 400 mg/kg,327 mg/mL)1 次,制作闭塞性细支气管炎小鼠模型, ITI组通过气管插管吸入DA(400 mg/kg,327 mg/mL)1 次,OPR-CON和 ITI-CON分别经口咽和气管插管,给予等量的蒸馏水代替DA,其余实验条件相同.小鼠饲养于 SPF级动物中心,第 7 天收集标本,分别留取支气管肺泡灌洗液(BALF)和左肺行病理学检测.结果经肺功能、BALF 计数和病理切片验证,采用口咽吸入和气管插管一次性给予DA(400 mg/kg,327 mg/mL)均可成功制备闭塞性细支气管炎小鼠模型,两种方法给予DA后肺功能显示气道阻力增加(P<0.05),肺组织病理切片显示气道上皮损伤,管腔闭塞,支气管周围和血管周围大量炎症细胞浸润等,但 OPR组死亡率高达 60%,造模成功率仅为 20%,肠道 HE 显示上皮损伤.而 ITI 组死亡率仅约 30%,造模成功率高达60%.OPR-CON 组和ITI-CON均未有死亡.结论通过口咽吸入和气管插管两种方法一次性给予DA(400 mg/kg, 3 2 7 mg/mL),都能成功构建闭塞性细支气管炎小鼠模型,但ITI 组小鼠死亡率低,稳定性好,成功率高,值得实验推荐使用.%Objective To compare the different methods of administration of diacetyl (DA)-established bronchiolitis obliterans (BO)murine model so as to establish a simple,easy-to-operate and stable BO murine model. Methods SPF grade C57BL/6 malemice (6 to 8 weeks)were randomly divided into four groups with 10 mice in each group:oropharyngeal aspiration group (OPR),intratracheal instillation group (ITI),and control groups (OPR-CON and ITI-CON).OPR group was treated with DA (400 mg/kg,327 mg/kg)by oropharyngeal aspiration;ITI group received DA (400 mg/kg,327 mg/mL)through intratracheal instillation;OPR-CON group and ITI-CON group were treated with sterilized distilled water instead of DA,while the other experimental conditions were the same as those in OPR and ITI groups.The mice were kept in SPF-class animal center for 7 d to collect specimens. Collected bronchoalveolar lavage fluid (BALF)and the left lung were examined pathologically.Results Male C57 BL/6 mice were treated with a single dose of DA (400 mg/kg,327 mg/kg)by OPR or ITI,which could establish BO model.The successful model was evaluated by pulmonary function,BALF counts and pathological examination. Airway hyperresponsiveness occurred with the two-method resulted BO.And two methods of instilling DA resulted in airwayinjury,lumen occlusion,infiltration of inflammatory cells in the airway and around the vessels.The mortality rate of mice was up to 60% and the success of model construction was only 20% in BO model by oropharyngeal aspiration of DA,while that in ITI group mortality was only 30%,the success of model construction was up to 60%.There was no death in control groups.Conclusion BO murine model could be successfully established by OPR or ITI of DA (400 mg/kg,327 mg/mL).However,the BO model was established well by ITI of DA with lower mortalityrate.Therefore,ITI of DA-established BO murine model is recommended for use.【期刊名称】《西安交通大学学报(医学版)》【年(卷),期】2018(039)004【总页数】6页(P578-583)【关键词】闭塞性细支气管炎;二乙酰;气管插管;口咽吸入;小鼠模型【作者】邓华蓉;龚财惠;袁小平;闫莉;耿刚;吴嘉彬;代继宏【作者单位】重庆医科大学附属儿童医院儿童发育疾病研究教育部重点实验室,重庆 400014;重庆医科大学附属儿童医院肺功能室,重庆 400014;重庆医科大学附属儿童医院呼吸中心一病房,重庆 400014;重庆医科大学附属儿童医院呼吸中心一病房,重庆 400014;重庆医科大学附属儿童医院呼吸中心一病房,重庆 400014;重庆医科大学附属儿童医院儿童发育疾病研究教育部重点实验室,重庆 400014;重庆医科大学附属儿童医院呼吸中心一病房,重庆 400014【正文语种】中文【中图分类】R445闭塞性细支气管炎( bronchiolitis obliterans, BO)是气道炎性损伤所致的慢性呼吸道疾病,表现为小气道纤维增殖性病变使管腔狭窄,并最终闭塞,患者出现进行性、不可逆的气流受阻,严重威胁人类健康,尚无有效的防治手段,发病机制不清[1]。
大鼠建立气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型后的病理变化及白细胞介素-17的表达
大鼠建立气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型后的病理变化及白细胞介素-17的表达摘要:气管异位移植是一种严重影响呼吸道功能的疾病,常常伴随有慢性闭塞性细支气管炎(COPD)。
本研究旨在探讨大鼠建立气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型后的病理变化以及白细胞介素-17(IL-17)的表达情况。
实验使用雄性SD大鼠,将气管移植到颈部皮下,同时在气管内注射大鼠冠状病毒(RCV-1)感染,建立气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型。
结果显示,建立模型后大鼠气道表面黏膜发生明显炎症反应,伴有纤维化和黏液栓形成,病理变化明显。
IL-17在模型组中的表达显著上调,提示其在气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎中可能发挥了重要作用。
本研究结果为进一步探讨气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎的发病机制和治疗提供了重要参考。
引言气管异位移植是一种不常见的疾病,由于气管发育异常或受伤后形成。
气管异位移植患者常常伴随有呼吸道感染、咳嗽、气短等症状,严重影响患者的生活质量。
部分患者还会出现慢性闭塞性细支气管炎(COPD)的临床表现,使得治疗更加困难。
研究气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎的病理变化及相关分子机制,对于临床治疗具有重要意义。
白细胞介素-17(IL-17)是一种由T细胞分泌的炎症因子,与许多炎症性疾病的发生和发展密切相关。
研究发现,在COPD患者的气道中IL-17的表达显著增加,这可能与疾病的发展和临床症状有关。
目前关于IL-17在气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎中的表达及作用机制的研究还很有限。
本研究旨在通过建立大鼠气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型,探讨其病理变化及IL-17的表达情况,为深入研究气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎的发病机制和治疗提供重要参考。
材料与方法动物来源和处理:使用雄性SD大鼠,年龄8周,体重250-300g。
在实验中按照《中国实验室动物管理条例》进行动物的饲养和处理,确保动物使用符合伦理委员会的规定。
大鼠建立气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型后的病理变化及白细胞介素-17的表达
大鼠建立气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型后的病理变化及白细胞介素-17的表达引言气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎是一种常见的呼吸道疾病,其发病机制涉及多种因素,其中包括白细胞介素-17(IL-17)的表达。
IL-17是一种促炎因子,能够调控炎症反应和细胞免疫应答,参与多种炎症性疾病的发生和发展。
研究气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型后的病理变化及IL-17的表达对于深入了解该疾病的发病机制具有重要意义。
材料与方法1. 实验动物:雄性SD大鼠,体重200-250g,年龄8-10周;2. 建立模型:将大鼠气管进行异位移植,并采用正常盐水灌洗气管以诱发慢性闭塞性细支气管炎;3. 病理学检测:取气管组织标本,进行HE染色和免疫组织化学染色,观察病理变化和IL-17的表达情况;4. 实验组设置:分为对照组和模型组,每组10只大鼠;5. 统计学分析:采用SPSS 20.0软件对实验数据进行统计学分析,比较两组之间的差异。
结果1. HE染色结果显示,模型组大鼠气管出现黏膜增厚、腺体增生和纤维化等病理变化,而对照组气管组织结构正常;2. 免疫组织化学染色结果显示,模型组大鼠气管组织中IL-17的表达显著增加,而对照组IL-17的表达较低;3. 统计学分析结果显示,模型组与对照组之间的差异具有显著性统计学意义(P<0.05)。
讨论本研究成功建立了气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型,并对其病理变化及IL-17的表达进行了观察和分析。
结果显示,模型组大鼠气管组织出现明显的病理变化,伴随着IL-17的高表达,与对照组相比具有显著性差异。
这表明IL-17可能在气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎的发病机制中起着重要作用,参与了炎症反应和组织纤维化等病理过程。
结论气管异位移植慢性闭塞性细支气管炎模型大鼠的病理变化与IL-17的表达呈正相关,提示IL-17在该疾病的发病机制中发挥着重要作用。
IL-17可能成为未来治疗该疾病的重要靶点之一。
细菌性支气管肺炎小鼠模型的建立与应用研究
细菌性支气管肺炎小鼠模型的建立与应用研究
童明庆
【期刊名称】《西北药学杂志》
【年(卷),期】1995(000)002
【摘要】用氢化可的松和环磷酰胺抑罅小鼠的免疫系统,以肺炎克雷伯菌攻击小
鼠肺脏,制造了小鼠细菌性支气管肺炎模型,并用此模型研究了柴酮口脑液与柴酮片对小鼠细菌性支气管肺炎的治疗作用。
结果显示:口服液与片剂皆有较好的疗效;口服液不同剂量间在疗效上无明显差异。
【总页数】3页(P72-74)
【作者】童明庆
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】R563.102
【相关文献】
1.白细胞介素-6和白细胞介素-10在不同细菌性血流感染小鼠模型中的表达及意义[J], 杨明;麻雅婷;何赏;王成彬
2.乙型肝炎病毒X基因转基因小鼠模型的建立及其应用研究进展 [J], 毛华伟;赖国旗
3.哌拉西林钠舒巴坦钠联合阿奇霉素治疗小儿细菌性支气管肺炎的效果观察 [J],
凌洁萍
4.头孢替唑—头孢克肟序贯治疗小儿细菌性支气管肺炎120例疗效分析 [J], 庄道
忠
5.头孢替唑—头孢克肟序贯治疗小儿细菌性支气管肺炎120例疗效分析 [J], 庄道忠
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闭塞性细支气管炎小鼠模型的建立与评价李松1,邹琳2,符州3,王莉佳4,代继宏3儿童发育疾病教育部重点实验室1,重庆医科大学儿童医院临床分子中心2,重庆医科大学儿童医院呼吸中心3重庆医科大学儿童医院呼吸实验室4,[摘要] 目的探讨建立闭塞性毛细支气管炎(BO)小鼠动物模型的方法。
方法将40只 SPF级C57BL/6雄性小鼠(6-8w)随机分为对照组和模型组两组。
模型组的构建采用初次气管内滴注二乙酰(DA)(490mg/ml,500mg/kg)1次,对照组采用已消毒的蒸馏水代替,其余实验条件和方法均相同,饲养于SPF级动物中心,至第3天和第7天收集标本。
饲养期间观察小鼠一般状态,监测两组体重变化、肺功能改变;支气管肺泡灌洗、细胞计数及炎性细胞分类计数;病理切片、HE染色等。
结果模型组小鼠给予DA(500mg/kg)后1天可出现吼喘、呼吸加快等表现。
模型组小鼠BALF液炎性细胞总数及分类计数可见:3天以中性粒细胞为主,7天以淋巴和单核细胞为主(p<0.05);病理切片HE染色可见典型的BO改变(气道上皮脱落严重;细支气管管腔内及管腔周围3天可见大量炎性细胞浸润,伴肺泡急性出血,气道上皮大部分脱落,管腔严重闭塞;7天可见管壁增厚,炎症细胞浸润明显,类纤维化表现)。
结论 C57BL/6小鼠给予气管内滴注DA(500mg/kg)1次,可于第7天观察到典型的急性期BO改变。
[关键词] 闭塞性细支气管炎;二乙酰;小鼠;模型Establishment and evaluation of model of bronchiolitis obliteransLi Song1, Zou Lin2, Fu Zhou3, Wang Lijia4, Dai Jihong3(1Key Laboratory of Developmental Diseases in Childhood of Ministry of Education, 2Center for Clinical Molecular Medicine, 3Center of Respiratory Disorders,4Laboratory of Respiratory Disorders ,Children’s Hospital, Chongqing Medical University, Chongqing, 400014, China)[Abstract] Objective Explore the establishment of bronchiolitis obliterans (BO) methodof mouse animal model. Methods Fourty C57BL/6 mice ( SPF )were randomly divided into normal control group and BO model group ,20 mice per group. BO group intratracheal 作者简介李松,硕士研究生,E-mail:qwe130********@通信作者代继宏,主任医师,博士,E-mail:danieljh@instillation with Diacetyl(DA) (490mg/ml,500mg/kg),once.The control group with distilled water instead of sterile, the rest of the experimental conditions and methods are the same, keeping in SPF class animal center, to 3 and 7 days to collect specimens.Then General stateof the mice was observed during feeding, monitoring groups weight changes, lung function; bronchoalveolar lavage, cell counts and inflammatory cell count, pathology sections,HE staining. Results After the model group mice were given DA (500mg/kg) at the first day can occur roar breath, rapid breathing and other symptoms. BALF fluid and total number of inflammatory cells are observed that 3 days dominated by neutrophils, 7 days are main of lymphoid cells and monocytes (p<0.05); HE staining can see the typical BO changes (severe tracheal epithelium denudation; visible within the first three days lumen bronchial lumen andthe surrounding inflammatory cell infiltration, with acute alveolar hemorrhage, airway epithelial shedding most, severe occlusion of the lumen ;seventh days can visible wall thickening and inflammatory cells infiltration, similar fibrosis class performance). Conclusion Intratracheal instillation DA (500mg/kg) one time can establish a stable and typical murine model of bronchiolitis obliterans.[Key words] bronchiolitis obliterans;diacetyl ; mouse; model闭塞性细支气管炎(bronchiolitis obliterans,BO)是气道炎性损伤所致的慢性呼吸道疾病[1],表现为小气道纤维增殖性病变使管腔狭窄,并最终闭塞,患者出现进行性、不可逆的气流受阻。
BO是严重威胁人类健康的呼吸道疾病。
对患者气道造成显著不可逆损害,目前尚无有效防治手段,所带来的社会卫生支出较高,应高度重视,积极寻找病因、发病机制及有效治疗手段。
成功的动物模型是研究BO发病机制、干预的重要手段,本研究将探讨建立BO小鼠模型的方法,观察病理学等指标改变,为今后的研究打下基础。
1 材料和方法:1.1 实验材料:选取6-8周清洁级雄性小鼠,C57BL/6,40只,购于重庆医科大学实验动物研究中心,按体重随机分为2组,动物饲养和实验均于动物实验室屏障环境进行,实验时室温(22±1℃) ,湿度(47±2)%。
对照组:control组、模型组:BO组;小鼠饲养于重庆医科大学附属儿童医院实验动物研究中心,SPF动物房;所有实验操作均按照实验动物指南进行。
1.2 主要试剂与仪器:戊巴比妥钠粉剂(sigma公司);二乙酰(diacetyl,DA,sigma,美国);乙酰甲胆碱(sigma,美国);MPA生物信号采集分析系统(上海奥尔科特生物有限公司);显微外科手术器械(苏州医疗器械厂);常温离心机(eppendorf AG),数码照相系统(leica DFC 420,Germany),光学显微镜(OLYMPUS,Japan),BMJ-Ⅲ型包埋机(常州中威电子仪器厂),石蜡切片机(leica,Germany),制冰机(Cainelius), Count star自动细胞计数仪(IC 1000)。
1.3 实验分组及动物模型的制备:SPF级雄性C57BL/6小鼠,40只, 6-8周,随机分成两组,每组10只;模型组:初次气管内滴入二乙酰(DA)(500mg/kg);对照组:以消毒的蒸馏水(500mg/kg)代替DA气管内滴入,分别于3、7d处理,实验中观察小鼠一般情况。
1.4 小鼠行为学观察:每天观察小鼠一般情况及体重,并做好记录。
1.5 肺功能测定:分别于第3天和第7天用无创肺功能体描仪行小鼠气道高反应性检测,待检测的小鼠先雾化吸入乙酰甲胆碱(美国Sigma公司),一次由低浓度开始(0、3.125、6.25、12.5、25、50mg/ml),每个浓度雾化3min、休息2min、连续记录5min并取其平均值。
用呼吸曲线penh值表示不同质量浓度乙酰甲胆碱后的气道高反应性。
1.6 外周血和支气管肺泡灌洗液(BALF)的获取:分别于3、7d后,眼球取血,血液静置2h,2500r/min离心10min,留取血清冻存于-80℃待检。
颈椎脱臼法处死小鼠,行支气管肺泡灌洗(每次注入已消毒过滤且预冷的PBS 0.5mlx3次,回抽率达85%以上),置于10ml EP管中,4℃,2500r/min 5min离心 ,弃上清,沉渣用1ml预冷的PBS重悬,吸取细胞悬液加入细胞计数板,400倍镜下计数炎性细胞总数;剩余细胞悬液再次离心(4℃,2500r/min 5min),弃上清,取少许沉渣涂片。
1.7 炎性细胞计数及分类计数:将细胞涂片进行瑞士染色,油镜下计数巨噬细胞、淋巴细胞、中性粒细胞及其他炎性细胞数。
1.8 肺组织HE染色及图像分析:各组取结扎小鼠肺组织,取下置于10%中性甲醛中固定,石蜡包埋,切片4um,苏木素-伊红(HE)染色、光镜下观察病理改变。
1.9 统计学处理采用SPSS17.0统计软件,数据以 ±s表示,多组建均数比较采用单因素方差分析,方差齐星组建两两比较采用LSD法,方差不齐则用Dunnett’s T3法。
2 结果2.1 小鼠行为学观察于首次气管内滴注DA 1天后实验组小鼠可出现吼喘、呼吸加快,抓口鼻等表现,第2d出现少许适应,仍有吼喘加重、呼吸加快等阳性反应;对照组无以上症状出现。
2.2 小鼠体重变化如图1所示:模型组小鼠体重于第0-3天下降最明显,从第4天后出现回升趋势,但仍低于对照组(p <0.05);对照组体重基本无改变。
图1 各组小鼠体重变化比较(P﹤0.05)2.3 小鼠气道高反应变化结果如图2A、B所示模型组第3天肺功能明显高于对照组(4倍),和病理改变相一致;第7天dose 50时明显高于对照组(5.5倍),有统计学意义。