实验动物生物材料采集和制备
安徽高等院校动物学类生物玻片采集方法
安徽高等院校动物学类生物玻片采集方法以安徽高等院校动物学类生物玻片采集方法为标题一、引言生物玻片是动物学类实验室中常用的工具，用于观察和研究动物组织和细胞的结构。
正确的采集方法对于制作高质量的生物玻片至关重要。
本文将介绍一种适用于安徽高等院校动物学类的生物玻片采集方法。
二、材料准备1. 动物组织样本：选择合适的动物组织样本，如昆虫的触角、鳞翅目昆虫的鳞片等。
2. 生理盐水：用于保存和处理组织样本的缓冲液。
3. 玻片：选择适当大小和厚度的玻片作为载玻片。
三、采集步骤1. 准备工作台：在无菌条件下，准备一个干净的工作台。
2. 处理样本：将动物组织样本放入生理盐水中，使其保持湿润。
3. 制备载玻片：取一个干净的玻片，在玻片中央滴上一滴生理盐水。
4. 放置样本：用镊子将处理好的动物组织样本小心地放置在滴有生理盐水的玻片上。
5. 压平样本：用镊子或者玻片压片器轻轻地压平样本，使其均匀分布在玻片上。
6. 加盖玻片：将另一片玻片垂直地放在样本上，并轻轻地按压，使样本均匀分布在两片玻片之间。
7. 定位样本：用手指或镊子轻轻地调整玻片，使样本位于玻片中央。
8. 清理玻片：用纸巾轻轻擦拭玻片周围的液体，使其干燥。
9. 封口：将封口胶带固定在两片玻片的边缘，以防止样本干燥和移动。
四、注意事项1. 采集过程中要保持工作台的清洁和无菌。
2. 选择合适的动物组织样本，根据实验需求进行选择。
3. 在制备载玻片时要确保滴在玻片上的生理盐水量适中。
4. 压片时要轻柔而均匀，以避免样本破裂或移位。
5. 封口胶带要牢固，以防止玻片的松动和样本的脱落。
五、结论通过本文介绍的方法，可以有效地采集动物组织样本并制备生物玻片。
在进行实验或研究时，可以使用这种方法来观察和研究动物的组织结构和细胞形态，为动物学类相关研究提供有力的支持。
希望本文的内容能对安徽高等院校的动物学类学生有所帮助。
喉部微生物实验报告
一、实验目的1. 了解喉部微生物的组成及分布；2. 掌握喉部微生物分离和鉴定的方法；3. 分析喉部微生物与呼吸道感染的关系。
二、实验原理喉部是呼吸道的重要组成部分，是空气进入肺部的必经之路。
喉部微生物的组成和数量与呼吸道感染的发生密切相关。
本实验通过分离和鉴定喉部微生物，了解其组成及分布，为临床诊断和治疗呼吸道感染提供依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年豚鼠；2. 试剂与仪器：生理盐水、营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂、革兰氏染色液、生化鉴定试剂、显微镜、培养箱等。
四、实验方法1. 样本采集：取豚鼠喉部组织，用生理盐水清洗，无菌操作下取少量组织液。
2. 培养基制备：将营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂分别融化，待冷却至50℃左右时，加入适量的无菌生理盐水，混匀。
3. 分离培养：将喉部组织液分别接种于营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂平板上，置于37℃培养箱中培养24小时。
4. 鉴定：观察菌落特征，对疑似菌落进行革兰氏染色，根据革兰氏染色结果和生化反应进行鉴定。
5. 数据统计：统计各类菌落的数量，分析喉部微生物的组成及分布。
五、实验结果1. 菌落观察：在营养琼脂平板上，观察到白色、黄色、绿色等不同颜色的菌落；在血琼脂平板上，观察到透明、红色、黄色等不同颜色的菌落；在麦康凯琼脂平板上，观察到红色、黄色、绿色等不同颜色的菌落。
2. 革兰氏染色：革兰氏染色结果显示，部分菌落为革兰氏阳性菌，部分菌落为革兰氏阴性菌。
3. 生化鉴定：根据生化反应结果，鉴定出以下微生物：金黄色葡萄球菌、大肠杆菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌、表皮葡萄球菌等。
4. 数据统计：喉部微生物组成及分布如下：（1）革兰氏阳性菌：金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌等，占总菌落数的30%；（2）革兰氏阴性菌：大肠杆菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌等，占总菌落数的70%。
六、实验讨论1. 本实验通过分离和鉴定喉部微生物，发现喉部微生物种类繁多，主要包括革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌。
动物生物学实验实验十昆虫标本采集与制作PPT教案
昆虫等标本定型及放置
昆虫标本制作工具
制作昆虫标本的工具：昆虫 针、三级板、展翅板、标签、 记录本。
昆虫针主要是对虫体和标签 起支持和固定作用。用优质 不锈钢丝制成。针的顶端以 铜丝制成的小针帽，便于手 摇移动标本。昆虫针按照粗 细可分为：00、0、1、2、3、 4、5 号共7 种，其中0号直 径 0.3mm，每增加一号，直 径增加0.1mm，可根据虫体 大小分别选用。
采集昆虫的方法
介绍几种昆虫的采集方法：
(1)昆虫在空中挥动捕虫网，待 昆虫入网后，将网底向上甩， 连同昆虫倒翻到上面来。
(2)昆虫在花上先靠近昆虫，再 惊动它，待它飞起后，猛挥虫 网，在花朵上方将昆虫捕入网 内。这样可以避免将花朵一同 挥进网里。
(3)昆虫在地上靠近昆虫，用盖 压的方法，将昆虫罩入网，再
浸有乙醚的圆形棉花块，
上放一张圆形滤纸，这样
毒瓶就做成了，注意：及
时关闭瓶塞、以免乙醚挥
发致人危害。
采集工具
三角袋：是专门用来装蛾、 蝶等鳞翅目昆虫的，因为这 些昆虫的翅膀上有着五颜六 色的鳞片，在碰撞，摩擦的 过程中极易脱落，以三角袋 装的昆虫则很容易完整保存。 捕到这样的昆虫后，先用注 射器向其腹部注入乙醚，致 其迅速死亡，然后再平放入 三角袋中保存，再将三角袋 整齐平地放到采集包中。
昆虫标本制作步骤
1.还软
从野外采集的昆虫，在制成干燥标本以前，常存放 了一段时间，其虫体已干硬发脆，在制成标本前必 须经过还软，才不致折断破碎。
2 .整姿
昆虫死后足会蜷缩，需要整姿，整姿前先把昆虫利 用三级台刺好，再移到整姿板上，虫针伸入小孔， 使虫体务必保持自然姿势。然后放置干燥，最后放 入昆虫盒中保存。
田野里的昆虫更多了。 稻田里有螟虫、叶蝉、飞 虱。棉田里有棉铃虫，菜 园里有菜青虫，柑桔上有
小鼠脾细胞的制备实验报告
小鼠脾细胞的制备实验报告一、实验目的本实验旨在掌握从小鼠体内分离和制备脾细胞的方法，为后续的免疫学实验和细胞生物学研究提供材料。
二、实验原理脾脏是机体重要的免疫器官，富含各类免疫细胞，如淋巴细胞、巨噬细胞等。
通过机械破碎和细胞筛过滤的方法，可以将脾组织分散成单细胞悬液，再经过离心、洗涤等步骤，去除杂质和红细胞，从而获得较为纯净的脾细胞。
三、实验材料与设备1、实验动物：健康成年小鼠2、主要试剂：无菌 PBS 缓冲液、红细胞裂解液、胎牛血清、培养基3、实验器材：手术器械（剪刀、镊子）、无菌培养皿、细胞筛、离心机、移液器、显微镜等四、实验步骤1、小鼠的处理提前将小鼠禁食不禁水 12 小时。
采用颈椎脱臼法处死小鼠，将其仰卧固定在解剖板上。
用 75%的酒精消毒小鼠腹部皮肤。
2、脾脏的获取在无菌条件下，沿腹部中线剪开皮肤和腹膜，暴露腹腔。
小心地分离出脾脏，避免损伤周围组织和血管。
将脾脏放入盛有少量无菌 PBS 缓冲液的培养皿中。
3、脾细胞的制备用镊子和剪刀将脾脏剪成小块，置于细胞筛上。
用注射器活塞轻轻研磨脾脏组织，使细胞通过筛网进入下方的离心管中。
加入适量 PBS 缓冲液冲洗细胞筛，收集全部细胞悬液。
4、离心和洗涤将细胞悬液离心（1500rpm，5 分钟），弃上清。
加入红细胞裂解液，轻轻吹打混匀，室温静置 5 分钟，以裂解红细胞。
再次离心（1500rpm，5 分钟），弃上清。
用 PBS 缓冲液洗涤细胞 2-3 次，每次离心后弃上清。
5、细胞计数和培养用适量含血清的培养基重悬细胞。
取少量细胞悬液，加入台盼蓝染液，在显微镜下计数活细胞数量。
根据实验需要，将细胞调整至合适的浓度，接种于培养板或培养瓶中，置于培养箱中培养。
五、实验结果1、细胞形态观察在显微镜下观察制备的脾细胞，可见多数细胞呈圆形，大小不一，有细胞核。
细胞形态完整，无明显的破碎和损伤。
2、细胞计数结果经台盼蓝染色后，计数活细胞比例，通常应在 90%以上。
动物生物材料采集准备实验报告思考题
动物生物材料采集准备实验报告思考题
动物生物材料采集准备实验报告思考题
引言：
动物生物材料的采集是生物学研究中不可或缺的一环。
通过采集、处理和保存动物生物材料，可以获得有关动物生理、生态、遗传等方面的重要信息。
本实验报告将探讨动物生物材料采集的准备工作，包括选定目标动物、采集设备的准备和技术操作的培训等。
第一章选定目标动物
1. 为什么需要在采集动物生物材料之前选定目标动物
2. 选择目标动物时需要考虑哪些因素
3. 如何确定采集的动物数量以及采集地点
第二章采集设备的准备
1. 采集动物生物材料需要哪些基本设备
2. 在采集设备选择时，应该考虑哪些因素
3. 是否可以使用可重复使用的设备为什么
第三章技术操作的培训
1. 为什么需要对实验人员进行技术操作的培训
2. 哪些技术操作需要进行培训
3. 培训的内容应该包括哪些方面
第四章采集过程的注意事项
1. 在采集动物生物材料时，应该注意哪些事项
2. 如何确保采集过程对动物的伤害最小化
3. 采集之后，应该如何处理和保存生物材料
结论：
动物生物材料的采集准备工作对于研究的顺利进行至关重要。
通过选定目标动物、准备合适的采集设备以及进行技术操作的培训，可以提高采集效率并确保采集过程的科学性和可靠性。
同时，在采集过程中应该严格遵守伦理规范，尽量减少对动物的伤害，并采取适当的方法进行生物材料的处理和保存。
注：以上章节仅供参考，具体内容可根据实际情况进行调整。
培养草履虫实验报告
一、实验目的1. 掌握草履虫的采集、培养和观察方法。
2. 了解草履虫的生长发育规律及其在生态环境中的作用。
3. 提高实验操作技能，培养观察能力和分析问题的能力。
二、实验原理草履虫是一种单细胞生物，隶属于原生动物门。
它们生活在水中，以细菌、藻类等有机物为食。
草履虫的采集、培养和观察是生物学实验中常见的实验内容，通过实验可以了解草履虫的形态特征、生活习性以及生长发育规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：水样、稻草、大米、大麦、鸡蛋黄、牛肉汁、显微镜、载玻片、盖玻片、滴管、微吸管、解剖针、烧杯、培养皿、凹玻璃片、纱布、吸水纸、大头针、琼胶、质量分数为3％的甲基纤维素溶液、碘液、葡萄糖、氯化钠、质量分数为％的洋红溶液、质量分数为01％的中性红溶液。
2. 实验仪器：恒温培养箱、显微镜、放大镜、电炉、烧杯、培养皿、滴管、微吸管、解剖针等。
四、实验步骤1. 采集水样：在有机物含量丰富的污水、池塘、水沟等地方采集水样，用网捞取水样，过滤后备用。
2. 培养草履虫：将稻草、大米、大麦、鸡蛋黄等有机物煮沸后过滤，制成培养液。
将过滤后的培养液倒入烧杯中，加入适量牛肉汁，搅拌均匀。
将烧杯放置在恒温培养箱中，温度控制在20℃左右，培养3-5天。
3. 分离草履虫：取载玻片，用滴管吸取少量培养液，滴在玻片上，盖上盖玻片。
用解剖针轻轻搅拌培养液，使草履虫聚集在玻片的一侧。
用微吸管吸取培养液，将草履虫移至另一载玻片上，重复操作，直至得到较为纯净的草履虫培养液。
4. 观察草履虫：将载玻片放在显微镜下，观察草履虫的形态特征、运动方式、摄食等生活习性。
记录观察结果。
5. 分析草履虫的生长发育规律：观察不同时期的草履虫，记录其形态特征、生长速度等，分析草履虫的生长发育规律。
五、实验结果与分析1. 草履虫形态特征：草履虫呈圆筒形，长0.1-0.2mm，直径0.02-0.03mm。
细胞表面有纤毛，运动方式为摆动。
细胞内含有食物泡、伸缩泡、眼点等细胞器。
实验动物生物材料采集及解剖实验报告
实验动物生物材料采集及解剖实验报告家兔实验一、实验目的：通过家兔、豚鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握家兔动物实验的基本操作技术。
二、实验动物及主要实验器材：动物：家兔、豚鼠；器材：兔固定器，兔开口器，兔导胃管，豚鼠固定器、常规手术器械、5ml注射器、l0ml注射器、烧杯、75％酒精及酒精棉，干棉球。
三、实验内容：1、家兔的抓取固定：在兔安静下来后，用右手抓住颈部的被毛与皮肤，轻轻提起，用左手托住其臀部，兔身的重量大部分落在左手上，也可用兔盒固定或将兔固定在兔手术固定台。
2、家兔性别的鉴定：使兔下腹部朝向观察者，将腿部周围的皮肤拨开，可见—圆孔，里面露出生殖器官。
3、经口灌胃给药法：先用特制张口器置于上下腭间，用布绳固定。
然后用左手抓住动物的嘴，右手由张口器中央小孔处将—适当粗细的导尿管插入，沿食管进入胃上部，最后将装有药液的注射器连接上导尿管，慢慢将药物灌入胃内。
注意：判别胃管插入气管或胃内，其方法：（1）观察反映；（2）感觉；（3）聞；（4）洗耳球法；（5）烧杯气泡法4、对家兔进行麻醉：用手抓住家兔的背部的被毛与皮肤，皮下注射百分之20乌拉坦，注意用量为5毫升比公斤体重。
5、利用空气栓塞法处死家兔：向家兔的静脉内注入一定量的空气，使之发生空气栓塞，形成严重的血液循环障碍而死亡。
6、解剖家兔：首先用手术刀打开腹腔，首先认识各个脏器的结构和位置。
然后摘除各个脏器。
摘除顺序如下：（1）胰腺；（2）脾脏；（2）胃肠；（4）肝脏；（5）泌尿系统；（6）生殖系统。
然后打开胸腔，认识各个脏器的结构和位置。
然后按顺序摘除各脏器。
摘除顺序如下：（1）胸腺；（2）心脏；（3）肺脏。
四、医学比较：家兔：家兔为脊椎动物、兔科动物，白天变现的十分安静，听觉灵敏，胆小怕惊，喜欢磨牙而且有啃木习惯。
解剖学特点：1、齿式：门齿2/1，犬齿0/0前臼齿3/2臼齿3/3，共有28个，门齿外露。
实验动物取血,尿液,其他体液的采集,实验动物的剖检方法
名称：生物样品的采集及实验动物的解剖和脏器系数测定标准操作规程(SOP)关键词：生物样品的采集实验动物解剖脏器系数测定目的：在药物毒理学研究中，常常需要收集实验动物的血液、尿液或其它体液进行常规检查或生化分析，因此，正确采集实验动物的生物材料是药物毒理学最基本和最重要的操作技术。
对实验动物进行大体解剖检查是药物毒理实验的常规观察项目，简便易行并能提供重要资料。
测定动物死后器官湿重和含水量是常用的指标之一，可以从大体标本大概地估计内脏器官病变的程度，特别适用于某些可致内脏水肿、实质细胞肿胀、间质纤维组织增生或脏器萎缩等药物的研究。
组织匀浆的制备以及在匀浆技术的基础上发展起来的亚细胞结构分离技术，也是药物毒理实验的重要技术之一。
学习和掌握药物毒理学试验中常用的生物材料的采集方法；实验动物的处死方法、大体解剖检查、脏器系数和含水量的测定以及组织匀浆的制备；了解病理切片常规收集样本的部位和方法。
主体内容（一）血液的采集1、大鼠与小鼠的采血方法：①鼠尾采血：当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾，将尾部浸入45~50℃温水中数分钟，使尾静脉充血，擦干，再用酒精棉球擦试消毒。
剪掉尾尖（约0.2~0.3cm），拭去第一滴血。
然后用血色素吸管定量吸取尾血，或将尾血直接滴入容器内。
采血完毕用干棉球压迫止血。
亦可不剪尾，用7~8号注射针头连上注射器直接刺破尾静脉采血。
②眼眶静脉丛采血：当需用中等量的血液，而又避免动物死亡时采用本法。
左手拇指及食指紧紧握住大鼠或小鼠颈部，压迫颈部两侧使眶后静脉丛充血，但用力要恰当，防止动物窒息死亡。
右手持玻璃毛细管从右眼或左眼内眦部以45°角刺入，刺入深度小鼠约2～3mm, 大鼠4～5mm。
若遇阻力稍后退调整角度后再刺入，如穿刺适当，血液能自然流入毛细管内。
得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，拔出毛细管，用干棉球压迫止血。
③断头采血：当需用较大量的血液，而又不需继续保存动物生命时采用本法。
收集动物细胞的方法
收集动物细胞的方法一、细胞样品的准备通常使用动物组织、胚胎、器官、血液、粪便、尿液、唾液、口腔黏膜、皮肤、毛发等样品进行动物细胞的收集。
在收集前，需注意细胞采集要满足实验的需要，材料不能污染，以避免对实验结果的影响。
收集前应先清洗样品以去除外部污染物，防止影响细胞培养效果。
二、细胞预处理在细胞收集前，通常需要对细胞进行预处理，以提高细胞的生存率和质量，去除对实验的影响。
1. 细胞分离将组织、器官等样品进行分离处理，获得到单独的细胞进行培养或分离。
通常使用试剂盒和设备对组织样品进行酶解、剪切等处理，或使用显微镜对样品进行手工分离，以获得细胞单层进行培养。
2. 细胞培养将得到的细胞放到培养基中进行细胞培养，以稳定维持细胞的生长状态，并在此基础上进行细胞分离、鉴定、检测等操作。
培养时应根据实验要求选择适当的培养基、培养条件，如温度、pH、CO2浓度、培养时间等，并需要定期更换培养液。
3. 细胞冻存将细胞培养液中的细胞加入冻存液中，利用低温储存或保存细胞，可防止细胞在传递或保存过程中的死亡和变异。
冻存细胞需要选择适当的冻存液、低温保管条件和速度，以确保冻存细胞的质量和活性。
三、细胞采集1. 摇床法将细胞培养瓶放在轻微震动的摇床上进行振荡，使细胞从底部生长层脱离并悬浮于液体中，然后利用吸管或移液管等工具将悬浮液吸取出来，采集细胞。
2. 贴壁法将细胞培养瓶中的细胞附着于培养瓶的底部，之后使用细胞分离酶将附着的细胞脱离出来，或直接使用旋涡器进行快速搅拌并收集被搅拌脱下来的细胞。
3. 消化方法将组织切片或切成小块，加入消化酶、胶原酶等试剂进行消化处理，将细胞分离出来。
4. 反复离心法通过离心对悬浮细胞进行收集，离心后可采集上清液或沉淀。
四、细胞检测和分析采集到的细胞还需要进行检测和分析。
检测可以借助显微镜、荧光显微镜等设备进行；分析则可通过蛋白质测定、PCR、Western Blot、流式细胞术、各种组织学染色等方法进行。
食品毒理学实验方案
⾷品毒理学实验⽅案实验⼀实验动物的⼀般操作技术⼀、实验⽬的学习⾷品毒理学试验中有关动物试验的基本操作技术，掌握实验动物的选择，性别鉴定，抓取⽅法，标记⽅法，染毒⽅法，⽣物材料采集和实验动物处死等技术。
⼆、试剂、器材及动物苦味酸酒精饱和溶液、美蓝溶液、0.9％的NaCl 溶液托盘天平、电⼦天平、棉签、1mL 注射器、灌胃器、烧杯、容量瓶、定量取⾎管、玻璃⽑细管、⿏笼昆明种⼩⿏三、操作⽅法（⼀）实验动物的选择⾷品毒理学研究中，⽆论应⽤何种种属、品系的实验动物，都必须是健康动物。
动物的选择，应重点检查下述项⽬。
1. 外观体形丰满，被⽑浓密光顺，⾏动敏捷，反应灵活。
2. 眼睛明亮，瞳孔清晰，双侧等圆，眼内⽆分泌物，眼睑⽆肿胀、发红。
3. ⽿⽿道⽆分泌物溢出，⽿壳⽆脓疮、糜烂。
4. ⿐⽆喷嚏，⽆浆性黏液分泌物。
5. ⽪肤⽆创伤、脓疮、疥癣、湿疹。
6. 头颈部姿势端正。
颈项歪斜提⽰可能存在内⽿疾患，不能⽤于实验。
7. 消化道⽆呕吐、便秘、腹泻，粪便成形，肛门附近被⽑洁净。
8. 神经系统⽆震颤、⿇痹、运动失调，如有转圈运动或倒提时呈圆圈摆动，不能⽤于实验。
9. 四肢及尾四肢、趾及尾⽆红肿、溃疡。
10. ⾷欲及营养良好（⼆）实验动物的性别鉴定1. ⼤⿏、⼩⿏主要观察肛门与⽣殖孔的间距，雄性间距⼤，⽽雌性间距⼩；雄⿏夏天或卧位可见睾丸，雌⿏腹部有明显乳头，⼤⿏ 6 对，⼩⿏5对。
（三）实验动物的抓取和固定实验前应了解动物的⼀般习性，正确抓取和固定动物，既要⼤胆，⼜要细⼼。
1. ⼩⿏的抓取⽅法先⽤右⼿抓取⿏尾部提起，置于实验台上向后拉，在其向前爬⾏时，⽤左⼿拇指和⾷指抓取⼩⿏的两⽿和颈部⽪肤，将⿏体置于左⼿⼿⼼中，以⽆名指按住⿏尾根部，⼩指按住后腿即可。
右⼿则可进⾏灌胃或注射等操作。
（四）实验动物的称重、编号和标记1. 称重⼀般同⼀组内，同性别动物体重差异应⼩于平均体重的10％，组间同性别动物体重平均值相差应⼩于5％。
食品毒理学实验方案
实验一实验动物的一般操作技术一、实验目的学习食品毒理学试验中有关动物试验的基本操作技术，掌握实验动物的选择，性别鉴定，抓取方法，标记方法，染毒方法，生物材料采集和实验动物处死等技术。
二、试剂、器材及动物苦味酸酒精饱和溶液、美蓝溶液、0.9％的NaCl 溶液托盘天平、电子天平、棉签、1mL 注射器、灌胃器、烧杯、容量瓶、定量取血管、玻璃毛细管、鼠笼昆明种小鼠三、操作方法（一）实验动物的选择食品毒理学研究中，无论应用何种种属、品系的实验动物，都必须是健康动物。
动物的选择，应重点检查下述项目。
1. 外观体形丰满，被毛浓密光顺，行动敏捷，反应灵活。
2. 眼睛明亮，瞳孔清晰，双侧等圆，眼内无分泌物，眼睑无肿胀、发红。
3. 耳耳道无分泌物溢出，耳壳无脓疮、糜烂。
4. 鼻无喷嚏，无浆性黏液分泌物。
5. 皮肤无创伤、脓疮、疥癣、湿疹。
6. 头颈部姿势端正。
颈项歪斜提示可能存在内耳疾患，不能用于实验。
7. 消化道无呕吐、便秘、腹泻，粪便成形，肛门附近被毛洁净。
8. 神经系统无震颤、麻痹、运动失调，如有转圈运动或倒提时呈圆圈摆动，不能用于实验。
9. 四肢及尾四肢、趾及尾无红肿、溃疡。
10. 食欲及营养良好（二）实验动物的性别鉴定1. 大鼠、小鼠主要观察肛门与生殖孔的间距，雄性间距大，而雌性间距小；雄鼠夏天或卧位可见睾丸，雌鼠腹部有明显乳头，大鼠 6 对，小鼠5对。
（三）实验动物的抓取和固定实验前应了解动物的一般习性，正确抓取和固定动物，既要大胆，又要细心。
1. 小鼠的抓取方法先用右手抓取鼠尾部提起，置于实验台上向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓取小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手手心中，以无名指按住鼠尾根部，小指按住后腿即可。
右手则可进行灌胃或注射等操作。
（四）实验动物的称重、编号和标记1. 称重一般同一组内，同性别动物体重差异应小于平均体重的10％，组间同性别动物体重平均值相差应小于5％。
2. 编号和标记（1）染色法一般采用不同颜色的染料涂擦于动物不同部位的被毛染色，表示不同号码，此法适用于大鼠、小鼠和豚鼠。
《食品毒理学》实验动物一般操作技术及生物材料采集
《食品毒理学》实验动物一般操作技术及生物材料采集一、实验目的和要求毒理学研究需要用实验动物来进行各种实验，通过对动物的实验观察和分析来研究毒作用，获得毒物的毒性、剂量—反应关系、毒作用机制等方面的资料，因此动物实验是毒理学研究中重要的手段之一。
通过本次学习，熟悉并掌握毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术，掌握实验动物的选择、动物抓取、动物分组、采血及处死等技术。
二、主要仪器设备实验动物：成年昆明系实验小鼠（SPF级别）。
器材：解剖剪刀、血色素吸管、干棉球、注射器、镊子、玻璃毛细管、电子分析天平、动物体重秤、酒精棉球、棉签、鼠笼、一次性手术手套、一次性口罩、注射器。
试剂：医用酒精、脱脂棉、苦味酸酒精饱和液。
三、实验内容（一）健康动物的选择无论选择哪种种属品系的动物进行实验，均要求选择健康的实验动物。
健康动物检查时要求达到：外观体形丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛明亮，行动迅速，反应灵活，食欲及营养状况良好。
选择时重点检查以下几项：l．眼睛：明亮，瞳孔双侧等圆，无分泌物。
2．耳：耳道无分泌物溢出，耳壳无脓疮。
3．鼻：无喷嚏，无浆性粘液分泌物。
4．皮肤：无创伤、无脓疮、疥癣、湿疹。
5．颈部：要求颈项端正，如有歪斜提示可能存在内耳疾患，不应选作实验动物。
6．消化道：无呕吐、腹泻，粪便成形，肛门附近被毛洁净。
7．神经系统：无震颤、麻痹。
若动物(大鼠、小鼠)出现圆圈动作或提尾倒置呈圆圈摆动，应放弃该动物。
8．四肢及尾：四肢、趾及尾无红肿及溃疡。
（二）实验动物的性别鉴定小鼠：主要依据肛门与生殖孔间的距离区分，间距大者为雄鼠，小者为雌性。
成年雄鼠卧位可见睾丸，雌性在腹部可见乳头。
（三）抓取方法正确地抓取固定动物，是为了在不损害动物健康、不影响观察指标、并防止被动物咬伤的前提下，确保实验顺利进行，小鼠的抓取方法：先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台上向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
动物微生物实践报告
动物微生物实践报告一、实验目的本实验旨在通过实践操作，掌握动物微生物学的基本实验技能，了解动物体内微生态平衡的重要性，以及微生物对动物健康的影响。
二、实验原理动物微生物学是研究动物体内外正常菌群的一门科学，这些微生物在正常情况下对动物是无害的，甚至是有益的。
然而，当这些微生物的数量或种类发生变化时，可能会引发一系列健康问题。
本实验通过采集动物样本，进行微生物分离培养和鉴定，以了解动物体内微生物的分布与数量，评估其健康状况。
三、实验步骤1.实验材料准备：采集动物样本，包括粪便、皮肤、口腔等部位；培养基、显微镜、接种环、恒温培养箱等实验器材。
2.样本处理：将采集的动物样本进行处理，如稀释、搅拌、涂布等，以便于微生物的分离培养。
3.微生物分离培养：将处理后的样本接种于适宜的培养基上，在恒温培养箱中培养一段时间，使微生物生长繁殖。
4.微生物鉴定：观察培养出的微生物的形态、染色、生长情况等特征，结合显微镜观察结果，对微生物进行鉴定。
5.数据记录与分析：记录实验数据，包括微生物的种类、数量、生长情况等，分析微生物在动物体内的分布与数量变化，评估动物健康状况。
四、实验结果与分析经过实验操作，我们成功分离培养出了多种动物体内的微生物，并对其进行了鉴定。
以下是实验结果与分析：1.微生物种类与分布在粪便样本中，我们分离出了大肠杆菌、肠球菌、双歧杆菌等肠道微生物；在皮肤样本中，分离出了葡萄球菌、链球菌等皮肤微生物；在口腔样本中，分离出了口腔链球菌、乳杆菌等口腔微生物。
这些微生物在动物体内具有不同的生态位和生理功能，对维持动物微生态平衡具有重要作用。
2.微生物数量变化通过对不同部位样本中微生物数量的统计，我们发现肠道中的大肠杆菌和肠球菌数量较多，而双歧杆菌数量较少；皮肤上的葡萄球菌和链球菌数量变化较大；口腔中的口腔链球菌和乳杆菌数量相对稳定。
这些数据表明，不同部位的微生物数量存在差异，可能与动物的生理状态和环境因素有关。
生物材料合成实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解生物材料的合成原理和方法。
2. 掌握生物材料合成过程中的关键步骤和注意事项。
3. 学习生物材料的应用领域和前景。
二、实验原理生物材料是指从生物体或生物体内提取的物质，经过加工处理后，具有特定功能，可应用于医疗、生物工程、环境等领域。
生物材料的合成主要包括天然生物材料的提取和生物合成材料的制备。
三、实验材料与仪器1. 材料：（1）天然生物材料：植物纤维、动物骨骼、蚕丝等。
（2）生物合成材料：多糖、蛋白质、核酸等。
2. 仪器：（1）高温高压反应釜（2）超声波处理仪（3）离心机（4）分光光度计（5）凝胶渗透色谱仪（6）傅里叶变换红外光谱仪（FTIR）四、实验步骤1. 天然生物材料的提取（1）植物纤维提取：将植物纤维原料进行预处理，如浸泡、研磨等，然后使用有机溶剂（如乙醇、丙酮等）提取植物纤维中的天然高分子物质。
（2）动物骨骼提取：将动物骨骼原料进行预处理，如煮沸、酸碱处理等，然后使用有机溶剂提取动物骨骼中的胶原蛋白。
（3）蚕丝提取：将蚕丝原料进行预处理，如煮沸、酸碱处理等，然后使用有机溶剂提取蚕丝中的丝素蛋白。
2. 生物合成材料的制备（1）多糖制备：将天然多糖原料进行预处理，如煮沸、酸碱处理等，然后使用酶解法或化学法将多糖降解为低聚糖，再通过缩合反应得到高分子多糖。
（2）蛋白质制备：将天然蛋白质原料进行预处理，如煮沸、酸碱处理等，然后使用酶解法或化学法将蛋白质降解为氨基酸，再通过缩合反应得到高分子蛋白质。
（3）核酸制备：将天然核酸原料进行预处理，如煮沸、酸碱处理等，然后使用酶解法或化学法将核酸降解为核苷酸，再通过缩合反应得到高分子核酸。
3. 生物材料的表征（1）分子量分布：使用凝胶渗透色谱仪（GPC）测定生物材料的分子量分布。
（2）结构表征：使用傅里叶变换红外光谱仪（FTIR）分析生物材料的功能团结构。
（3）性能测试：根据生物材料的应用领域，进行相应的性能测试，如力学性能、生物相容性、降解性能等。
实验兔 生物实验材料
实验兔生物实验材料实验材料：成年小鼠大鼠家兔试剂、试剂盒：肝素生理盐水溶液PBS 缓冲液仪器、耗材：家兔盒兔固定架大小鼠固定板大剪刀镊子儿科小骨钳离心管玻璃毛细管注射器吸管滴管匀浆机培养皿离心机搅拌机大小鼠代谢笼一、试剂和材料（一）实验动物：成年小鼠、大鼠和家兔。
（二）器材1、家兔盒，兔固定架，大小鼠固定板。
2、解剖器材大剪刀，镊子，儿科小骨钳。
3、其他器材离心管(2-10ml)，玻璃毛细管(内径1－1.5ml)，注射器（1，2，5 和10ml）及相应针头，吸管（5－10ml），滴管，匀浆机，培养皿（直径5－10ml）。
4、仪器设备离心机(4000r/min)，搅拌机(2000r/min)，大小鼠代谢笼。
动物称，电子天平。
（三）试剂1、抗凝剂0.5%肝素生理盐水溶液。
2、生理盐水或PBS 缓冲液。
（四）其他碘酒、酒精棉球、滤纸。
二、操作步骤（一）血液的采集1、家兔采血方法：①耳缘静脉采血：本法为最常用的取血方法之一，可多次反复取血。
将家兔固定于兔箱中，拔掉拟采血耳缘部细毛，用手指轻轻弹耳或电灯照射兔耳，使耳部血管扩张，然后消毒。
左手压迫耳根，用针头刺破静脉或以刀片在血管上切一小口，让血液自然流出。
也可直接用注射器进针耳缘静脉抽取血液。
采血完毕用干棉球压迫止血，如一时不易止血，可用木夹夹住耳壳10~20 分钟。
②心脏穿刺采血：将家兔仰卧位固定在兔台上或由助手捉持，在左胸第2~4 肋部剪毛，常规消毒。
于第3~4 肋胸骨左缘心跳最明显处穿刺，针头刺入心脏后即见血液涌入注射器。
采血完毕迅速将针头拔出，这样心肌上的穿刺孔较易闭合，针眼处用酒精棉球压迫止血。
体重 2 公斤的家兔每隔2~3 周可重复采血10~20ml。
③股动脉采血：将家兔仰卧固定在兔台上，左手拉直动物后肢，右手持注射器，以血管博动为指标，将针头刺入股动脉。
若已刺入动脉，即有鲜红色血液流入注射器。
抽血完毕迅速拔出针头，用干棉球压迫止血。
2、采集血液的注意点：①实验动物一次采血量过多或采血过于频繁，都可影响动物健康，造成贫血甚至死亡，其最大安全采血量见表1。
毒理实验基本技术
实验一毒理实验基本技术一、常用实验动物染毒技术在进行毒理学动物实验时要使动物经一定的途径接触毒物，染毒的途径（Route of administration）要依实验目的并结合人类的实际接触方式，毒物的多少及理化性质和具体设备条件等来决定。
食品毒理学中最常用的染毒方式有经消化道染毒（Gastrointestinal tract exposure），在特殊需要时也使用注射染毒。
（一）经消化道染毒方法经消化道染毒方法主要有灌胃法、喂饲法和吞咽胶囊三种。
为防止胃纳充盈影响化合物的吸收及毒性，经消化道染毒要求实验动物空腹。
依动物生活习性的不同，禁食的时间也不同，白天进食的动物（如兔、猫、狗等）可在白天动物进食前给毒，夜间进食的动物（如大鼠、小鼠等）应隔夜禁食。
1 ．灌胃法( 1 ）大鼠、小鼠及豚鼠灌胃法灌胃针头连接注射器，吸取受试物。
左手抓住动物背部皮肤，将动物固定，要使动物的消化道为自然垂直位。
右手持注射器，针头由动物嘴角插入，沿咽后壁缓缓插入食道。
进针过程应没有阻力，若遇阻力，应调整方向，不要强行进针。
进针后先回抽针芯，如无气泡抽出，并有一定负压，说明位置在胃中，可进药。
否则应重新进针。
一般灌胃针插入深度小鼠约3~4cm，大鼠、豚鼠约4~6cm。
灌胃量小鼠0.2~ l ml，大鼠l~4ml，豚鼠l~5ml。
( 2 ）免、猫、狗等较大动物灌胃法通常以胃管或导尿管为灌胃导管。
先将动物固定，保持伸直的体位。
在动物上、下门牙间放一开口器，并固定之。
开口器可用本料或金属制成，梭形，宽度依动物口腔大小而定，中间钻一小孔，以使灌胃导管能通过。
灌胃导管经开口器中心圆孔插入，沿咽后壁经食道插入胃中。
如遇阻力应拔出，稍等片刻后重新插入，不可强行插管，以免造成创伤或误入肺部。
为检查导管插入是否正确，将导管外口通人一盛水的烧杯中，如不发生气泡，即认为在食道中，若不断出现气泡，则可能误人肺内，应拔出重插。
确认插入胃中后，用注射器吸取受试物，经导管注入。
动物病料采集实验报告
3采样:铺开薄膜把尸体放在薄膜上，用常规的解剖器械剥开腹部皮肤、切开肌肉，用灭菌器械剖开腹腔，注意不要损伤肠道。4脾的采集:先用镊子夹住酒精棉球点燃火焰消毒脾取材料部位表面一用灭菌的刀剪、镊子从组织深部取1-2立方厘米大小的病料一放入安培瓶内→贴上标签①
5淋巴结的采集:(可取肠系淋巴结)先用镊子夹住酒精棉球点燃火焰消毒肠系淋巴结取材料部位表面一用灭菌的刀剪、镊子从组织深部取1-2立方厘米大小的病料→放入安培瓶内→贴上标签②
动物病料采集实验报告
实验名称
动物病料的采集
实验时间
2021.3.21
实验地点
科教楼
实验目的
掌握动物病料的采集方法和步骤。
实验内容与要求
1规范采集脾、淋巴结、心脏三种病理材料
2采取生物安全措施，无菌操作。
3样品编号记录、填写送检单。Fra bibliotek实验步骤以及方法
1实验器材的准备:手术刀、剪刀、镊子、安培瓶、酒精灯、3.8%柠檬酸钠、一次性手套等器械的准备。
指导老师:年月日
6心脏血液采集:前断肋软骨，打开胸腔→先用镊子夹住酒精棉球点燃火焰消毒→用10毫升一次性注射器从右心房抽取5-10毫升血液放入加了1毫升3.8%柠檬酸钠的样品管中，摇匀→贴上标签③
7保存:以上病料分别用塑料包装袋密封包好，容器正立放入加有冰块的保沮瓶中的临时保存，液体防容器颜倒。
8-送检:①每份样品均须贴上标签。详细登记，包括时间、地点，名称、送检编号。②送往实验室的样品应有一式二份的送检单，样品记录内容包括:厂址、动物种类、发病日期、临床症状、治疗药物、送检人等
9尸体要进行无害化处理
实验结果以及分析
熟练的掌握了动物病料的采集的程序和如何保存动物病料。这次我们解剖的是死亡的家兔，通过解剖分析后初步诊断为该兔是患有急性肠炎和脊柱变形而导致下肢瘫痪而死。(依据:最典型的病变是腹腔积液，膀胱极度充盈，脊柱变形，肠管有病变(变薄、出血)肝、肺也有病变等)。
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实验内容
1. 动物常用采血方法
(1) 大、小鼠鼠尾采血方法：适用于需血量少的实验。方法：将动物固定 后，把鼠尾浸入到45-50度得温水中使尾静脉充血，擦干皮肤后，再用酒 精棉球擦拭消毒。剪去鼠尾（约0.2-0.3厘米），拭去第一滴血，吸取一 定量尾血，然后用棉球压迫止血。
实验一：实验动物生物材料采集和制备
指导教师：冯斐斐
Email：feifeifeng@ 卫生毒理学教研室
实验意义
在卫生毒理学实验中，为研究实验动物接触毒物的毒效应，经 常需要测定血液、尿液、组织匀浆等实验动物生物材料中受试化合 物的浓度，确定其代谢产物的性质和含量，分析外来化合物质对组 织脏器的影响，实验动物生物材料采集和制备是卫生毒理学的重要 基础技术。
实验注意事项
1.抓取动物时应规范小心，避免被动物抓伤或咬伤。 2.应根据具体实验的用血量而决定采用何种采血方式。 3.实验动物每次采血量不能过多。
4.撰写实验报告。
需要采集的生物样品主要是血液和尿液及组织脏器，它是反映 受试物的生物学效应及物质在体内代谢情况的最为重要的途径。
实验目的
掌握常用的实验动物生物材料采集和制备方法。
仪器和器械
实验动物：大鼠、小鼠 器材：大小鼠固定板 实验剪刀 实验镊子 匀浆仪器 玻璃毛细管 大鼠代谢笼 试剂： 生理盐水 乙醚
实验内容住大鼠或小鼠颈部压 迫颈部两侧使眶后静脉丛充血（注意用力要恰当，以防止动物窒息死 亡），右手持玻璃毛细管从一侧眼内呲部以45度角刺入，捻转前进。如 无阻力继续刺入，直到出血为止。右手持容器收集血液后，拔出毛细管， 用干棉球压迫止血。
（3）断头采血法：该法可用于大、小鼠。左手握住动物，右手持剪刀，快速 剪断头颈部，倒立动物将血液滴入容器。注意防止剪断的毛发掉入接血的容 器中。也可用大鼠断头器断头后，倒立动物接血。
实验内容
（4）腹主动脉或股动（静）脉采血法： 为一次性采血方法。大小鼠麻醉后，仰卧位固定动物，剪开腹腔，剥离暴露 腹主动脉或股动（静）脉，用注射器刺入采血。
（5）家兔耳缘静脉采血法： 家兔在兔盒中固定，拔掉一侧耳缘部细毛，轻轻以手指弹耳，使耳缘静脉充 血，酒精消毒。左手压迫耳根，右手持阵刺破静脉收集血液；或直接用注射 器进针，耳缘静脉采血。
（6）心脏采血法: 将动物以仰卧位固定，于肋部近胸骨左缘出，手触心搏最强部位进针，采血。 采血毕迅速拔针，用酒精棉球压迫止血。
实验内容
2. 动物尿液的收集： 收集大动物与小动物的尿液，一般使用不同的代谢笼。代谢笼主要由备有动 物饮水和装饲料的笼体、粪尿分离器和收集尿液容器组成。一般笼体为金属 和铁丝制成，如实验要求防止金属污染时，则代谢笼应用玻璃或有机玻璃制 作。 兔、狗等大动物也可用导尿法收集尿液。 为了使收集的实验动物尿液满足实验需要，可在收集尿前给动物一定量的水， 如大鼠可先行灌胃1-5毫升的水。
实验内容
3.血浆制品的制配： （1）红细胞、白细胞制备 （2）血清制备 （3）全血，即抗凝血 （4）血浆制备
实验内容
4.匀浆制备技术： 1 小鼠断颈放血处死,迅速取其肝脏, 2 置冰冷的生理盐水中反复冲洗,剔除脂肪及结缔组织, 3 滤纸吸干表面水分后称重1克,（根据你需要来）。 4 放在平皿中加入适量的冷生理盐水（肝：生理盐水为 1:4）, 剪碎，然后转移到匀浆器中，匀浆。