显微镜直接计数和平板菌落计数

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实验八 微生物显微镜直接计数
和平板菌落计数
一. 实验目的
1. 学习、掌握显微镜直接计数法和平板菌 落计数法; 2. 了解血球计数板的构造、计数原理和计 数方法,掌握显微镜下直接计数的技能。
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二、实验原理
测定微生物细胞数量的方法很多,通 常采用的有显微镜直接计数法和平板菌落 计数法。
(一)显微镜直接计数法
四、操作步骤
(一)显微镜直接计数法 1. 稀释样品 将酵母菌样品进行适当稀释。 2. 镜检计数室 加样前先镜检计数室。若有
污物则需清洗后才能加样使用。 3. 加样 在计数室上加盖玻片,用无菌吸管
由盖片边缘加一小滴稀释菌液,让其渗入计 数室,静置5分钟。
4. 将计数板置于载物台上,先用低倍镜找 到计数室,再用高倍镜对稀释菌液计数。
计数区的刻度有两种:一种是计数区
分为16个中方格(中方格用三线隔开), 而每个中方格又分成25个小方格;另一种 是一个计数区分成25个中方格(中方格之 间用双线分开),而每个中方格又分成16 个小方格。
(一)平板菌落计数法
平板菌落计数法根据微生物在固体培 养基上所形成的菌落一般由一个细胞繁殖 而成的原理进行。即一长成的菌落代表一 个活的细胞。计数时先将待测样品作一系 列稀释,使其中的微生物充分分散成单个 细胞,再吸取一定量的稀释菌液接种到培 养皿中,使其均匀分布于平皿中的培养基 内,经培养单个细胞繁殖形成菌落,统计 菌落数目即可计数出样品的含菌数。
后要尽快倒入冷至45℃左右的培养基15 ml ,并迅速旋转混匀。否则,菌体会 吸附在皿底,不易分散形成单菌落。
*不足:
测定结果误差较大、操作比较烦琐、需要的时间较长。
三、主要器材
1. 活材料:啤酒酵母(S6) 、 解脂假丝酵 母(S5)
2. 染色液:复红染色液(或结晶紫,美兰) 3. 器材:显微镜、血球计数板、载玻片、 盖玻片 、擦镜纸、吸水纸、计数器、滴管、 无菌吸管、无菌培养皿、马铃薯葡萄糖培养 基。
平板菌落计数法示意图
五、实验报告
(一)实验结果 1. 将直接计数结果记录于表中。 2. 将平板菌落计数结果记录于表中。
(二)思考题 某单位要求知道一种干酵母粉中的活菌
存活率,请设计1-2种可行的检测方法。
六.注意事项
1.计数器必须洗干净,勿刷 ; 2. 千万注意勿损坏计数器 。 3. 平板菌落计数时,测定样品移入培养皿
※显微镜直接计数法
﹡优点:简单、快速、重复性高。
❖ 不足: ➢不能区分死细胞和活细胞,应用范围较窄; ➢一些小的细胞在显微镜下很难看到; ➢样品中菌液浓度不能低于106个/mL; ➢不能用于菌丝体或呈链状而不分散的微生物测定。
※平板菌落计数法
﹡优点:灵敏度高、可以区分死活细胞、应用广。
用于食品、饮料等微生物检查及消毒灭菌效果检查。
(二)平板菌落计数法 1. 编号 将平皿和试管分别标记浓度。 2. 稀释样品 将酵母菌样品进行适当稀释。 3. 取样 用无菌吸管准确吸取10-4、 10-5、 10-6稀释菌液各1 ml,放0.2 ml 于无菌平皿。 4. 倒平板 于上述平皿中尽快倒入融化并 冷却到45℃左右的培养基15 ml ,旋转混匀。 5. 计数 培养48 h后取出培养皿,算出同一 稀释度的三个平皿中平均菌落数,再按公 式计算每毫升样品中活菌数。
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