组培 实验报告
植物组织培养实习报告
植物组织培养实习报告篇一：植物组织培养实验报告一、实验目的1．掌握无菌操作的植物组织培养方法；2．通过配置MS培养基母液，掌握母液的配置和保存方法；3．通过诱导豌豆根、茎、叶形成愈伤组织学习愈伤组织的建立方法；4．通过诱导豌豆茎、叶形成愈伤组织学习愈伤组织的建立方法；5．了解植物细胞通过分裂、增殖、分化、发育,最终长成完整再生植株的过程,加深对植物细胞的全能性的理解。
二、实验原理（一）植物组织培养植物组织培养是把植物的器官，组织以至单个细胞，应用无菌操作使其在人工条件下，能够继续生长，甚至分化发育成一完整植株的过程。
植物的组织在培养条件下，原来已经分化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织结构的细胞团，即愈伤组织。
这一过程称为“脱分化作用”，已经“脱分化”的愈伤组织，在一定条件下，又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化作用”。
（二）植物细胞的全能性植物细胞的全能性即是每个植物的本细胞或性细胞都具有该植物的全套遗传基因，在一定培养条件下每个细胞都可发育成一个与母体一样的植株。
（三）组织的分化与器官建成外植体诱导出愈伤组织后，经过继代培养，可以在愈伤组织内部形成一类分生组织即具有分生能力的小细胞团，然后，再分化成不同的器官原基。
有些情况下，外植体不经愈伤组织而直接诱导出芽、根。
（四）培养基的组成培养基中各成分的比例及浓度与细胞或组织的生长或分化所需要的最佳条件相近，似成功地使用该培养基进行组织培养的主要条件。
营养培养基一般由无机营养、碳源和能源、维生素、植物激素（生长调节剂）和包括有机氮、酸和复杂物质的添加剂组成。
三、实验器材高压灭菌锅、超净工作台、烘箱、培养室镊子、记号笔、橡皮筋、玻璃器皿、三角烧瓶、烧杯、量筒、剪刀、棉塞、绳子、牛皮纸、酒精灯、喷雾器等。
四、实验材料豌豆种子五、实验药品药品、70%酒精、0.1%升汞、MS培养基、蒸馏水、NaOH、84消毒液、蔗糖、琼脂等。
植物组培实验报告
植物组培实验报告植物组培技术是指利用植物体细胞分裂和分化的能力，通过体外培养的方法，使其成为整株植物的过程。
该技术已经广泛应用于植物育种、遗传工程、植物繁殖等领域。
实验目的：本实验旨在研究植物组培技术对不同植物品种的影响，探究其在植物育种中的应用价值。
实验材料：本次实验选用了四种不同的植物品种，分别为玉米、小麦、水稻和大豆。
实验所需的试剂包括MS培养基、植物生长素、植物生长素和细胞分裂素等。
实验步骤：1.植物材料的准备将四种植物的种子经过消毒处理后，将其在无菌条件下播种在MS 培养基上。
2.植物细胞的分离将培养基上生长的植物幼苗取出，进行细胞分离。
将其放入含有植物生长素和细胞分裂素的液体培养基中，进行震荡培养。
3.植物组织的培养将分离出来的细胞放入含有植物生长素的液体培养基中，进行组织培养。
待组织生长出来后，再将其移植到含有植物生长素和细胞分裂素的液体培养基中，进行细胞分裂和分化。
4.植物的生长与繁殖将培养好的植物幼苗移植到含有适量营养物质的液体培养基中，进行生长。
当植物幼苗长大后，可以进行繁殖试验，检测组培植物在遗传性状上的变化。
实验结果：经过实验，我们发现不同植物品种对组培技术的适应性不同。
在四种植物品种中，水稻和大豆的组培效果最好，生长速度较快，成活率较高；而小麦的组培效果较差，生长速度较慢，成活率较低。
在遗传性状上，我们也发现组培植物与自然生长的植物有一定的差异，但并不影响其在植物育种中的应用。
结论：植物组培技术是一种高效、快速的植物育种方法。
通过本实验，我们发现植物品种对组培技术的适应性不同，需要根据具体品种加以调整。
虽然组培植物与自然生长的植物在遗传性状上存在差异，但并不影响其在植物育种中的应用。
植物组培技术的不断发展和完善，将会对植物育种和植物繁殖领域带来更多的变革。
组培实验的实验报告
一、实验名称植物组织培养二、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和操作流程。
2. 掌握植物组织培养技术在植物繁殖、遗传改良和资源保护等方面的应用。
3. 培养实验操作能力和团队协作精神。
三、实验原理植物组织培养技术是利用植物细胞的全能性，通过无菌操作将植物组织（如茎尖、叶片、愈伤组织等）在特定的培养基上诱导分化，从而实现植物繁殖、遗传改良和资源保护等目的。
四、实验材料1. 植物材料：柳树茎尖、紫玉兰叶片。
2. 培养基：MS培养基、1/2MS培养基、1/4MS培养基。
3. 试剂：琼脂、蔗糖、葡萄糖、活性炭、硝酸铵、硝酸钠、磷酸二氢钾、硫酸镁、硼酸、氯化钙、氯化钾、氢氧化钠、氢氧化钾、盐酸、氯化钠、硫酸铁、硫酸锌、硫酸铜、抗坏血酸、维生素B6、吲哚丁酸、生长素、细胞分裂素等。
4. 实验器具：超净工作台、高压蒸汽灭菌器、培养皿、移液器、剪刀、镊子、酒精灯、酒精棉、无菌水等。
五、实验步骤1. 材料准备：将柳树茎尖和紫玉兰叶片洗净，用75%酒精消毒30秒，再用无菌水冲洗3次。
2. 培养基配制：按照实验要求，将不同浓度的MS培养基、1/2MS培养基和1/4MS培养基分别配制。
3. 接种：将消毒后的柳树茎尖和紫玉兰叶片接种到培养基上，每个培养基接种3个材料。
4. 培养条件：将接种后的培养基放入培养箱中，温度设置为25℃，光照强度为2000勒克斯，光照时间为12小时/天。
5. 观察记录：每隔7天观察一次培养材料的生长状况，记录其生长速度、颜色、形态等变化。
六、实验结果与分析1. 柳树茎尖培养：在MS培养基和1/2MS培养基上，柳树茎尖生长速度较快，颜色为绿色，叶片形状正常；在1/4MS培养基上，柳树茎尖生长速度较慢，颜色为淡绿色，叶片形状较小。
2. 紫玉兰叶片培养：在MS培养基和1/2MS培养基上，紫玉兰叶片生长速度较快，颜色为绿色，叶片形状正常；在1/4MS培养基上，紫玉兰叶片生长速度较慢，颜色为淡绿色，叶片形状较小。
组培实习报告
一、实习背景随着生物技术的发展，植物组织培养技术已成为现代生物技术的重要组成部分。
为了更好地了解和掌握这一技术，我们学校组织了一次组培实习活动。
在实习过程中，我们学习了植物组织培养的基本原理、操作步骤以及相关设备的使用方法。
二、实习目的1. 了解植物组织培养的基本原理和操作流程；2. 掌握植物组织培养的实验技术和设备操作；3. 培养团队协作和实验操作能力；4. 提高对生物技术的认识和兴趣。
三、实习内容1. 实验原理植物组织培养是指利用植物细胞的全能性，通过体外培养，使其分化、再生和发育成完整的植株。
在组培过程中，需要严格控制培养条件，如光照、温度、湿度、营养等。
2. 实验步骤（1）外植体准备：选取健康的植物器官或组织作为外植体，如叶片、茎段等。
（2）外植体消毒：将外植体放入75%酒精和0.1%氯化汞溶液中浸泡，进行消毒处理。
（3）外植体切割：将消毒后的外植体切割成一定大小的组织块。
（4）接种：将切割好的组织块接种到含有生长调节剂的培养基上。
（5）培养：将接种后的培养基放入培养箱中，进行培养。
（6）继代培养：待外植体分化出愈伤组织或芽后，将其转移到新的培养基上进行继代培养。
（7）生根培养：将分化出的芽转移到含有生根激素的培养基上，促进其生根。
（8）移栽：待幼苗长到一定大小后，将其移栽到土壤中。
3. 实验设备（1）超净工作台：用于外植体消毒和接种。
（2）高压蒸汽灭菌器：用于培养基的灭菌。
（3）光照培养箱：用于培养过程中光照条件的控制。
（4）显微镜：用于观察外植体的生长状况。
四、实习收获1. 掌握了植物组织培养的基本原理和操作流程；2. 熟悉了各种实验设备和仪器；3. 提高了实验操作技能和团队协作能力；4. 对生物技术有了更深入的了解，增强了学习兴趣。
五、实习体会通过本次组培实习，我深刻认识到植物组织培养技术在植物繁殖、育种、基因工程等领域的重要作用。
在实习过程中，我学会了如何操作实验设备，掌握了实验技巧，提高了自己的综合素质。
组织培养实验报告
一、实验目的1. 掌握无菌操作的植物组织培养方法。
2. 通过配置MS培养基母液，掌握母液的配置和保存方法。
3. 通过诱导植物细胞形成愈伤组织，学习愈伤组织的建立方法。
4. 了解植物细胞通过分裂、增殖、分化、发育，最终长成完整再生植株的过程，加深对植物细胞全能性的理解。
二、实验原理植物组织培养是一种利用植物细胞的全能性，在人工条件下实现植物器官、组织或细胞再生为完整植株的技术。
其基本原理包括：1. 脱分化作用：原本已经分化停止生长的细胞，在人工培养基的诱导下，重新进入分裂状态，形成没有特定组织结构的细胞团，即愈伤组织。
2. 再分化作用：愈伤组织在一定条件下，可以分化为具有特定结构和功能的组织，如根、茎、叶等，最终形成完整的植株。
3. 植物激素：在组织培养过程中，植物激素如生长素（IAA）、细胞分裂素（CK）等起着关键作用，调节细胞分裂、分化和器官形成。
三、实验材料与仪器材料：1. 植物外植体：如叶片、茎段、芽等。
2. MS培养基母液：包括大量元素、微量元素、有机物、维生素和植物激素等。
3. 灭菌剂：如乙醇、HgCl2（或次氯酸钠）等。
仪器：1. 培养室2. 高压灭菌锅3. 水浴锅4. 解剖刀5. 三角烧瓶（100mL）6. 烧杯7. 量筒8. 培养皿9. 超净工作台10. 分析天平11. 镊子12. 剪刀13. 橡皮筋四、实验步骤1. 外植体消毒：将外植体放入含有乙醇、HgCl2（或次氯酸钠）的消毒液中浸泡5-10分钟，然后用无菌水冲洗干净。
2. 愈伤组织诱导：将消毒后的外植体接种到含有不同激素浓度和比例的MS培养基中，置于培养室内培养。
3. 愈伤组织继代培养：待愈伤组织形成后，将其转移到新的培养基中进行继代培养，以扩大愈伤组织数量。
4. 再分化培养：将愈伤组织转移到含有不同激素浓度和比例的培养基中，诱导其分化为根、茎、叶等器官。
5. 生根与移栽：待植物分化出根、茎、叶等器官后，将其移栽到土壤中，进行正常生长。
实验报告组培
一、实验目的1. 掌握植物组织培养的基本原理和方法。
2. 学习植物细胞全能性的概念及其在植物繁殖中的应用。
3. 培养学生的实验操作技能和科学思维。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性，通过离体培养技术，将植物细胞、组织或器官培养成完整植株的过程。
植物细胞的全能性是指具有再分化形成完整植株的潜能。
在适宜的培养基和条件下，植物细胞可以分化成各种器官，进而形成完整的植株。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：拟南芥种子、MS培养基、琼脂糖、无菌水、消毒液等。
2. 实验仪器：超净工作台、显微镜、恒温培养箱、高压蒸汽灭菌器、移液器、剪刀、镊子等。
四、实验步骤1. 种子消毒：将拟南芥种子用70%的酒精消毒30秒，再用无菌水冲洗3次。
2. 种子萌发：将消毒后的种子接种于含有1/2MS培养基的培养皿中，置于恒温培养箱中培养。
3. 营养组织分离：待种子萌发后，选择生长良好的幼苗，用无菌剪刀将幼苗的茎尖和叶片剪下。
4. 培养基制备：将MS培养基加入琼脂糖，溶解后高压蒸汽灭菌，制成固体培养基。
5. 培养基接种：将分离得到的营养组织接种于固体培养基上，置于恒温培养箱中培养。
6. 观察与记录：定期观察培养皿中植物组织的生长状况，记录生长情况。
五、实验结果与分析1. 种子萌发：经过消毒和萌发处理后，拟南芥种子成功萌发，长出幼苗。
2. 营养组织分离：成功分离出拟南芥的茎尖和叶片。
3. 培养基接种：接种后的植物组织在适宜的培养基和条件下生长良好。
4. 生长情况：接种后的植物组织逐渐分化出根、茎、叶等器官，形成完整植株。
六、实验结论1. 本实验成功实现了拟南芥的组织培养，证明了植物细胞的全能性。
2. 通过植物组织培养技术，可以快速繁殖植物，提高植物繁殖效率。
3. 本实验为植物学研究提供了有益的参考，有助于推动植物育种和繁殖技术的发展。
七、实验讨论1. 实验过程中，种子消毒和培养基制备是关键环节，需要严格控制无菌操作。
2. 在培养过程中，注意观察植物组织的生长状况，及时调整培养基和培养条件。
组培实验报告
一、实验简介实验名称：植物组织培养实验目的：通过植物组织培养技术，了解植物细胞生长、分化和再生的过程，掌握组培技术的操作方法，并应用于植物繁殖和遗传改良。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性，通过特定的培养基和外界条件，使植物组织在体外进行生长、分化和再生，最终形成完整的植株。
该技术广泛应用于植物繁殖、遗传改良、基因工程等领域。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：植物外植体（如叶片、茎段、愈伤组织等）培养基（MS培养基、改良MS培养基等）诱导培养基（1/2MS培养基、添加生长调节剂的培养基等）细菌培养基（如牛肉膏蛋白胨培养基）灭菌剂（如75%酒精、1%次氯酸钠溶液）其他：超净工作台、接种针、酒精灯、移液器、培养皿、培养箱等2. 实验仪器：电子天平高压蒸汽灭菌器移液器超净工作台培养箱显微镜四、实验步骤1. 材料预处理：选择健康、无病虫害的植物材料，用流水冲洗干净。
将外植体浸泡在1%次氯酸钠溶液中消毒5-10分钟，然后用无菌水冲洗3-5次。
将消毒后的外植体用无菌滤纸吸干水分。
2. 培养基制备：称取适量的培养基粉末，加入少量蒸馏水溶解。
将溶解后的培养基过滤除菌，加入适量的琼脂和生长调节剂。
将培养基倒入培养皿中，待凝固后备用。
3. 外植体接种：在超净工作台中，用无菌接种针将外植体接种到培养基上。
每个外植体接种3-5个，确保接种密度适宜。
4. 培养与观察：将接种后的培养皿放入培养箱中，控制适宜的温度、光照和湿度。
定期观察外植体的生长情况，记录愈伤组织形成、芽生长和根生长等过程。
5. 培养基调整与继代培养：当外植体形成愈伤组织或芽生长到一定长度时，可进行培养基调整和继代培养。
将愈伤组织或芽切割成小块，重新接种到新的培养基上。
根据生长情况，适时调整培养基成分和生长调节剂浓度。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织形成：在适宜的培养基和条件下，外植体可形成愈伤组织。
愈伤组织是细胞增殖和分化的基础，是组织培养成功的关键。
茎段组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过植物组织培养技术，以茎段为外植体，探究其再生能力和快速繁殖方法，为胡桃楸的遗传改良和种苗繁育提供技术支持。
二、实验材料1. 外植体：胡桃楸带芽茎段（长度约1-2厘米，直径约0.5-1厘米）。
2. 培养基：MS培养基（改良斯诺培养基）。
3. 激素：生长素（NAA）、细胞分裂素（KT）。
4. 灭菌剂：75%酒精、0.1%HgCl2。
5. 仪器设备：高压蒸汽灭菌锅、超净工作台、光照培养箱、剪刀、镊子等。
三、实验方法1. 外植体消毒：将茎段用流水冲洗30分钟，然后用75%酒精浸泡30秒，再用无菌水冲洗3次，最后用0.1%HgCl2浸泡10分钟，再用无菌水冲洗5次。
2. 培养基配制：将MS培养基加入蔗糖（30g/L）、琼脂（6.5g/L）和活性炭（1g/L），调pH值至5.8，高压蒸汽灭菌30分钟。
3. 外植体接种：将消毒后的茎段切成0.5-1厘米的段，接种到含有不同激素浓度（NAA 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L，KT 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L）的培养基中。
4. 培养条件：将接种后的培养皿放入光照培养箱，光照强度为2000-3000勒克斯，光照时间为12小时/天，温度为25-28℃。
5. 观察记录：每隔一定时间观察外植体的生长情况，包括芽的生长、生根情况等，并记录数据。
四、实验结果与分析1. 外植体生长情况在实验过程中，外植体在不同激素浓度下的生长情况如下：（1）NAA 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组：芽生长缓慢，生根率较低。
（2）KT 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组：芽生长较快，生根率较高。
（3）NAA 0.1mg/L+KT 0.1mg/L组：芽生长较快，生根率较高。
2. 外植体生根情况在实验过程中，外植体的生根情况如下：（1）NAA 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组：生根率较低，根生长较慢。
（2）KT 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组：生根率较高，根生长较快。
月季组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验简介实验名称：月季组培实验实验目的：通过组培技术，了解月季组织培养的原理和方法，掌握无菌操作技术，提高植物繁殖效率，为月季的快速繁殖和遗传改良提供技术支持。
实验时间：2023年X月X日至X月X日实验地点：XX大学园艺实验室实验材料：月季植株（品种：XX）实验设备：超净工作台、无菌操作箱、高温高压灭菌器、移液枪、解剖刀、培养皿、试管、滤纸、镊子、剪刀、酒精灯、高压蒸汽灭菌锅等。
二、实验方法1. 外植体选取与消毒：- 选择生长健壮的月季植株，取其茎尖作为外植体。
- 使用无菌水清洗外植体，然后用75%酒精浸泡30秒，再用无菌水冲洗3次。
- 将外植体置于0.1%的氯化汞溶液中消毒5分钟，再用无菌水冲洗5次。
2. 诱导生根：- 将消毒后的外植体切成1-2厘米的小段，接种到含有不同激素比例的MS培养基中。
- 将接种后的培养皿放入培养箱中，培养温度为25℃，光照时间为12小时/天。
3. 生根培养：- 当外植体开始生根时，将培养基更换为含有较低激素浓度的MS培养基。
- 继续培养至生根率达到80%以上。
4. 炼苗与移栽：- 将生根的植株从培养皿中取出，置于温室中炼苗。
- 炼苗成功后，将植株移栽到花盆中，进行正常的养护管理。
三、实验结果与分析1. 外植体消毒效果：- 通过显微镜观察，发现消毒后的外植体表面无细菌污染，说明消毒效果良好。
2. 诱导生根效果：- 在不同激素比例的培养基中，生根效果最好的培养基为1/2MS+0.5mg/LNAA+0.5mg/L IBA。
- 在此培养基中，生根率达到90%，平均根长为3.5厘米。
3. 炼苗与移栽效果：- 炼苗过程中，植株生长良好，无病虫害发生。
- 移栽后的植株成活率达到了95%。
四、实验讨论1. 外植体选取：- 本实验选择茎尖作为外植体，主要是因为茎尖细胞分裂旺盛，易于诱导生根。
2. 消毒方法：- 消毒是组培实验的关键步骤，本实验采用氯化汞溶液消毒，效果良好。
3. 激素配比：- 激素配比对生根效果有显著影响，本实验通过优化激素配比，提高了生根率。
组培实习报告总结（精选7篇）
组培实习报告总结(精选7篇)工作总结主体部分常见的结构形态有三种。
要根据实际需要选择好。
你会写组培实习报告总结吗?下面小编给大家带来组培实习报告总结，希望大家喜欢!组培实习报告总结（篇1）我在__小学进行了一个多月的教育实习。
学高为师，身正为范，在这一个月里，作为一名实习教师，我坚持以教师身份严格要求自己，处处注意自己的言行和仪表，热心爱护实习学校的学生，本着对学生负责的态度尽全力做好班主任及教学的每一项工作;同时作为一名实习生，能够遵守实习学校的规章制度，尊重实习学校领导和老师，虚心听取他们的指导意见，并且和其他实习生一起团结合作完成实习学校给予我们的任务。
在这期间，通过理论与实践的结合、与学校、家长的沟通，进一步提高了我的教育技能，尤其是观察、分析和解决问题的实际工作能力。
本次教育实习的基本内容包括三部分：课堂教学、班主任工作和教育调查。
一、基本情况如下：1.课堂教学：听课60节，完成教案数为15份，上课节数为20节，其中新授课9节，复习课1节，练习课10节。
2.班主任工作：组织一次主题为“人月团圆,和谐小北”的中秋班会和一次“矛盾出现了，怎么办?”的团体心理活动课，取得了不错的效果。
3.教育报告;完成一份教育实习论文。
二、具体情况：三年的大学理论学习，各种各样的教育理论冲击着我的脑袋，我曾感到迷茫和无助，但通过这次实习，很好的将在课堂上学到的理论运用在实践中，在实践中筛选、磨砺出适合自己的理论指导，给我以后的教学工作指明的发向。
首先，要认真在备课。
第一天实习，黄老师就建议我们，作为新老师，在备课时，可以采取集体备课，集体设计教案，制作课件，集智慧之所长。
在备课时，不要过于追求形式上的多样性。
备课前既要备教材要备学生。
熟读教材、尊重教材，将教材中透漏出的信息传递给学生。
备课时的要结合学生的认知水平将教学重点和难点用教材语言用学生能读懂的语言简明扼要地呈现给学生。
同时上课前一定熟悉教案，反复试讲，理顺教学思路，从整体上把握教学设计的框架，提高教学德条理性和逻辑感染力，此外也要确定教学细节，尤其是新老师，避免上课时由于经验不足，无法应对各种状况外的事情。
组培实验的实习报告
一、实习背景随着生物技术的发展，植物组织培养技术作为一种无性繁殖的新技术，在农业、林业、医药等领域得到了广泛应用。
为了提高自身实践能力，我参加了为期一个月的组培实验实习。
本次实习旨在通过实践操作，了解植物组织培养的基本原理、技术流程以及实验方法，提高自己在植物组织培养方面的实际操作技能。
二、实习内容1. 实验目的（1）掌握植物组织培养的基本原理和实验技术；（2）了解植物组织培养在农业生产、医药研究等方面的应用；（3）提高自身动手操作能力和团队协作精神。
2. 实验材料（1）植物材料：柳树、紫玉兰、栀子花等；（2）培养基：MS培养基、1/2MS培养基、改良培养基等；（3）仪器设备：超净工作台、高压蒸汽灭菌器、培养箱、剪刀、镊子、解剖针等。
3. 实验方法（1）植物材料的采集与处理：选取生长健康的柳树、紫玉兰、栀子花等植物，采集其茎段、叶片等组织，进行消毒处理。
（2）外植体培养：将消毒处理后的外植体接种于MS培养基中，置于培养箱中培养。
（3）培养基的配制与灭菌：根据实验要求，配制不同成分的培养基，进行高压蒸汽灭菌。
（4）观察与记录：定期观察植物组织培养的生长状况，记录培养过程中的各项数据。
三、实习过程1. 实习初期在实习初期，我主要学习了植物组织培养的基本原理和实验技术。
通过查阅资料和老师的讲解，我对植物组织培养有了初步的了解。
在实验过程中，我严格按照操作规程进行操作，确保实验结果的准确性。
2. 实习中期在实习中期，我逐渐掌握了植物组织培养的实验技术。
在老师的指导下，我学会了培养基的配制、灭菌、接种等操作。
同时，我还参与了植物材料的采集、处理等工作。
在实验过程中，我遇到了一些问题，如外植体褐化、培养基污染等，通过查阅资料和请教老师，我找到了解决问题的方法。
3. 实习后期在实习后期，我参与了植物组织培养的整个流程。
从外植体的采集、处理到接种、培养，我都亲身体验了每个环节。
在实验过程中，我积累了丰富的实践经验，提高了自己的动手操作能力。
组培实验报告结果(3篇)
第1篇一、实验简介实验名称：植物组织培养实验实验目的：通过植物组织培养技术，探究植物细胞分裂、分化和再生能力，掌握植物组织培养的基本操作流程，并观察培养过程中植物组织的生长变化。
实验材料：水稻、玉米、小麦等植物叶片、茎段、愈伤组织等。
实验方法：采用植物组织培养技术，对植物叶片、茎段、愈伤组织进行体外培养，观察其在不同培养基、激素浓度、光照条件下的生长和分化情况。
二、实验结果与分析1. 培养基对植物组织生长的影响实验结果表明，不同培养基对植物组织的生长和分化具有显著影响。
其中，MS培养基（Murashige and Skoog培养基）对植物组织的生长和分化效果较好，愈伤组织诱导率和再生植株数量较高。
（1）MS培养基在MS培养基中，水稻叶片愈伤组织诱导率为80%，玉米叶片愈伤组织诱导率为75%，小麦叶片愈伤组织诱导率为70%。
再生植株数量分别为：水稻40株，玉米30株，小麦20株。
（2）改良MS培养基在改良MS培养基中，水稻叶片愈伤组织诱导率为70%，玉米叶片愈伤组织诱导率为65%，小麦叶片愈伤组织诱导率为60%。
再生植株数量分别为：水稻25株，玉米20株，小麦15株。
2. 激素对植物组织生长的影响实验结果表明，激素对植物组织的生长和分化具有显著影响。
其中，生长素（IAA）和细胞分裂素（KT）对植物组织的生长和分化效果较好。
（1）生长素和细胞分裂素浓度对愈伤组织诱导率的影响当生长素和细胞分裂素的浓度分别为0.5mg/L和0.1mg/L时，水稻叶片愈伤组织诱导率达到最高，为80%。
玉米叶片愈伤组织诱导率达到最高，为75%。
小麦叶片愈伤组织诱导率达到最高，为70%。
（2）生长素和细胞分裂素浓度对再生植株数量的影响当生长素和细胞分裂素的浓度分别为0.5mg/L和0.1mg/L时，水稻再生植株数量为40株，玉米再生植株数量为30株，小麦再生植株数量为20株。
3. 光照条件对植物组织生长的影响实验结果表明，光照条件对植物组织的生长和分化具有显著影响。
组织培养的实验报告
一、实验目的1. 掌握植物组织培养的基本原理和方法。
2. 熟悉植物组织培养中培养基的配制、消毒和接种技术。
3. 学习植物组织培养过程中愈伤组织的诱导、继代培养和器官分化等关键技术。
4. 了解植物组织培养在植物育种、种质资源保存等方面的应用。
二、实验原理植物组织培养是指将植物的器官、组织或细胞在人工控制的条件下，通过脱分化、再分化等过程，使其生长、发育成完整植株的技术。
植物组织培养技术具有操作简便、繁殖速度快、不受季节限制等优点，在植物育种、种质资源保存、生物工程等领域具有广泛的应用。
三、实验材料1. 植物材料：小麦种子、胡萝卜切块、番茄叶片等。
2. 培养基：MS培养基、1/2 MS培养基、1/4 MS培养基等。
3. 试剂：氯化钙、氯化钠、磷酸二氢钾、硫酸镁、琼脂、蔗糖、吲哚乙酸（IAA）、6-苄基氨基腺嘌呤（6-BA）等。
4. 仪器设备：超净工作台、高压灭菌锅、电炉、移液管、培养皿、剪刀、镊子等。
四、实验步骤1. 培养基的配制（1）称取适量氯化钙、氯化钠、磷酸二氢钾、硫酸镁等试剂，加入少量蒸馏水溶解。
（2）将溶解后的试剂溶液加入适量琼脂，搅拌至溶解。
（3）将溶解后的琼脂溶液加入蔗糖，搅拌均匀。
（4）将溶液加热至沸腾，持续搅拌，使琼脂完全溶解。
（5）待溶液冷却至50℃左右，加入适量IAA和6-BA，搅拌均匀。
（6）将溶液分装至培养皿中，待凝固后，置于高压灭菌锅中灭菌30分钟。
2. 植物材料的消毒（1）将植物材料用流水冲洗干净。
（2）用75%乙醇消毒30秒。
（3）用无菌水冲洗3-5次。
3. 植物材料的接种（1）将消毒后的植物材料切成小块或叶片。
（2）将植物材料接种至培养基中。
4. 培养与观察（1）将接种后的培养皿置于培养箱中，温度控制在25℃左右，光照时间为12小时/天。
（2）定期观察愈伤组织的形成、生长和分化情况。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织的形成经过一段时间培养，小麦种子、胡萝卜切块、番茄叶片等植物材料在培养基上形成了愈伤组织。
实习报告组培
随着生物技术的飞速发展，组织培养（Group Culture，简称组培）技术在植物繁殖、遗传改良、疾病防治等方面发挥着越来越重要的作用。
为了更好地了解组培技术，提高自己的实践能力，我在大学期间选择了组培实验室作为实习单位，进行了为期一个月的实习。
二、实习目的1. 了解组培技术的发展历程和基本原理。
2. 掌握组培技术的基本操作步骤，如外植体消毒、愈伤组织诱导、试管苗增殖和生根等。
3. 培养严谨的科学态度和团队协作精神。
三、实习内容1. 实习期间，我主要参与了以下工作：（1）外植体消毒：学习并掌握了外植体消毒的方法和注意事项，包括消毒液的配置、消毒时间、消毒方式等。
（2）愈伤组织诱导：观察并记录愈伤组织的生长状况，了解愈伤组织诱导过程中的影响因素，如培养基配方、生长调节剂种类和浓度等。
（3）试管苗增殖：学习并掌握了试管苗增殖的方法，包括培养基配制、接种操作、光照培养等。
（4）生根：学习并掌握了试管苗生根的方法，包括生根培养基配制、生根条件控制等。
（5）移栽：学习并掌握了试管苗移栽的方法，包括移栽时间、移栽方式、移栽后管理等。
2. 在实习过程中，我还参与了以下活动：（1）参加实验室例会，了解实验室的最新研究动态和进展。
（2）参加组培技术培训，提高自己的组培技术水平。
（3）与实验室成员交流，分享实习心得和经验。
1. 通过实习，我掌握了组培技术的基本原理和操作步骤，提高了自己的实践能力。
2. 在实习过程中，我培养了严谨的科学态度和团队协作精神，为今后的学习和工作打下了坚实的基础。
3. 实习期间，我参与了多个组培实验项目，取得了以下成果：（1）成功诱导出愈伤组织，并实现了愈伤组织的增殖。
（2）成功生根并移栽试管苗，提高了试管苗的成活率。
（3）通过实验，发现了影响组培效果的因素，为后续研究提供了参考。
五、实习体会1. 组培技术是一门实践性很强的学科，需要不断积累经验和提高技能。
2. 严谨的科学态度和团队协作精神是成功进行组培实验的关键。
组培的实习报告
一、实习背景随着生物技术、植物繁殖学等领域的快速发展，组织培养技术作为一项重要的无性繁殖手段，在植物育种、基因工程、生物制药等领域发挥着越来越重要的作用。
为了深入了解组织培养技术，提高自身的实践能力，我于2023年在某植物研究所进行了为期一个月的组织培养实习。
二、实习内容实习期间，我主要参与了以下几方面的内容：1. 基础知识学习：首先，我系统地学习了组织培养的基本理论，包括植物细胞的全能性、组织培养的基本流程、培养基的配制、无菌操作技术等。
2. 无菌操作训练：无菌操作是组织培养成功的关键。
在实习过程中，我接受了严格的无菌操作训练，包括消毒、灭菌、接种等操作，确保实验的顺利进行。
3. 培养基配制：我学习了培养基的配制方法，包括基本培养基的配制、添加激素、营养成分等，为后续的实验打下基础。
4. 外植体选择与消毒：我学习了如何选择合适的植物外植体，以及外植体的消毒方法，以保证培养物的健康生长。
5. 组织培养实践：在导师的指导下，我参与了多种植物的组织培养实验，包括叶片、茎段、根段等外植体的培养，掌握了组织培养的基本操作技能。
6. 数据分析与总结：实习期间，我对实验数据进行整理和分析，撰写了实验报告，总结了实验过程中的经验和教训。
三、实习收获通过本次实习，我收获颇丰：1. 理论知识与实践能力的提升：通过实习，我对组织培养的基本理论有了更深入的了解，同时，通过实际操作，提高了自己的实践能力。
2. 无菌操作技术的掌握：无菌操作是组织培养成功的关键。
通过实习，我掌握了无菌操作的基本技能，为今后的实验工作奠定了基础。
3. 团队合作与沟通能力的提高：在实习过程中，我与实验室的同事、导师进行了充分的沟通和交流，提高了自己的团队合作与沟通能力。
4. 问题解决能力的培养：在实验过程中，我遇到了各种问题，通过查阅资料、请教导师、与同事讨论等方式，逐步解决了这些问题，提高了自己的问题解决能力。
四、实习体会1. 严谨的科学态度：组织培养实验需要严谨的科学态度，从实验设计到操作过程，每一个环节都要求精确无误。
樱桃实验室组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过植物组织培养技术，实现对樱桃树苗的快速繁殖和优良品种的培育。
通过无菌操作，观察和记录樱桃组培过程中的生长情况，分析影响组培效果的因素，为樱桃树苗的产业化生产提供技术支持。
二、实验原理植物组织培养技术是利用植物体细胞的全能性，通过离体培养的方式，使植物组织在适宜的培养基和条件下生长、分化，最终形成完整的植株。
本实验采用外植体（樱桃茎段）进行组培，通过调节培养基成分、激素比例和环境条件，诱导外植体脱分化、再分化，形成植株。
三、实验材料与方法1. 实验材料- 樱桃茎段：选择生长健壮、无病虫害的樱桃枝条，剪成长约2-3cm的小段。
- 培养基：MS培养基（添加植物生长激素：NAA 0.5mg/L、BA 1.0mg/L）。
- 消毒剂：70%酒精、无菌水、氯化汞。
- 其他试剂：琼脂、葡萄糖、维生素等。
2. 实验方法（1）外植体消毒：将樱桃茎段剪成约2-3cm的小段，用70%酒精消毒30秒，再用氯化汞消毒5分钟，最后用无菌水冲洗5-10分钟。
（2）接种：将消毒后的樱桃茎段接种到MS培养基中，每个培养基接种3个茎段。
（3）培养条件：将接种后的培养基放入恒温培养箱中，温度控制在25±2℃，光照强度为2000-3000lx，光照时间为12小时/天。
（4）观察记录：每隔一周观察并记录外植体的生长情况，包括愈伤组织形成、芽苗生长、生根等。
四、实验结果与分析1. 外植体生长情况在实验过程中，外植体表现出不同的生长情况。
部分外植体在培养基中形成了愈伤组织，并逐渐分化出芽苗；部分外植体则生长缓慢，甚至死亡。
2. 愈伤组织形成愈伤组织形成是组培成功的关键。
实验结果显示，添加NAA和BA的MS培养基有利于愈伤组织的形成。
3. 芽苗生长芽苗的生长速度与培养基成分、激素比例和环境条件密切相关。
实验结果表明，适宜的培养基成分、激素比例和环境条件有利于芽苗的生长。
4. 生根生根是组培过程中另一个重要的环节。
组培综合实验报告
一、实验简介实验名称：组培综合实验实验目的：通过本实验，了解组织培养的基本原理和操作流程，掌握植物组织培养技术，并应用于植物繁殖和育种。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性，通过离体培养的方法，使植物细胞或组织在人工控制的环境下生长、发育，最终形成完整的植株。
本实验主要涉及以下原理：1. 细胞全能性：植物细胞具有全能性，即具有发育成完整植株的潜力。
2. 培养基：培养基是植物组织培养的基础，提供植物生长所需的营养物质、激素等。
3. 灭菌：灭菌是防止微生物污染的关键环节，保证培养过程的顺利进行。
4. 光照：光照是植物进行光合作用的必要条件，有利于植物生长。
三、实验材料与仪器1. 材料：（1）植物材料：选用健康、无病虫害的植物器官或组织。
（2）培养基：MS培养基、1/2MS培养基等。
2. 仪器：（1）超净工作台：用于无菌操作。
（2）接种针：用于接种植物材料。
（3）培养箱：用于培养植物材料。
（4）显微镜：用于观察植物细胞形态。
（5）剪刀、镊子、酒精灯、烧杯等。
四、实验步骤1. 材料准备：选取健康、无病虫害的植物器官或组织，用自来水冲洗干净，然后用无菌水浸泡一段时间。
2. 灭菌：将准备好的植物材料放入70%酒精中浸泡30秒，然后用无菌水冲洗干净，再用0.1%氯化汞溶液浸泡5分钟，最后用无菌水冲洗干净。
3. 接种：将灭菌后的植物材料用接种针接种到培养基上。
4. 培养基配制：根据实验需求，配制MS培养基或1/2MS培养基。
5. 培养过程：将接种后的培养基放入培养箱中，控制温度、光照等条件，观察植物材料的生长情况。
6. 观察与记录：定期观察植物材料的生长情况，记录生长状态、植株高度、叶片数量等。
7. 数据分析：对实验数据进行整理、分析，得出结论。
五、实验结果与分析1. 植物材料在培养基上的生长情况良好，部分材料分化出芽和根。
2. 通过观察和记录，发现不同植物材料的生长速度和分化能力存在差异。
3. 分析实验数据，得出以下结论：（1）植物组织培养技术可以成功应用于植物繁殖和育种。
组织培养_实验报告
一、实验目的1. 掌握无菌操作的基本技能，了解组织培养的基本原理。
2. 学习植物组织培养的具体操作步骤，包括外植体消毒、接种、培养及观察。
3. 了解植物细胞全能性在组织培养中的应用。
4. 分析实验过程中可能出现的问题及解决方法。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性，通过在人工控制的条件下，将植物器官、组织或细胞诱导分化成完整植株的过程。
实验中，通常选用茎尖、叶片、愈伤组织等作为外植体，通过无菌操作，在含有植物激素和营养物质的人工培养基上培养，使外植体脱分化形成愈伤组织，再分化形成根、茎、叶等器官，最终发育成完整植株。
三、实验材料与仪器材料：1. 外植体：选取健康植物叶片、茎尖等。
2. 培养基：MS培养基、1/2MS培养基、诱导培养基等。
3. 植物激素：2,4-D、NAA、6-BA等。
4. 无菌器械：手术刀、镊子、剪刀、酒精灯、无菌培养皿等。
仪器：1. 高压灭菌锅2. 超净工作台3. 培养箱4. 显微镜四、实验步骤1. 外植体消毒：将外植体放入70%酒精中浸泡30秒，然后用无菌水冲洗3次，再放入1%氯化汞溶液中浸泡5-10分钟，最后用无菌水冲洗5-6次。
2. 外植体接种：将消毒后的外植体剪成小块，接种到诱导培养基上，每块外植体接种3-5块。
3. 培养：将接种后的培养皿放入培养箱中，在适宜的温度、光照和湿度条件下培养。
4. 观察与记录：定期观察外植体的生长情况，记录愈伤组织的形成、器官分化等过程。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织形成：经过一段时间培养，外植体表面开始出现愈伤组织，颜色逐渐变深。
2. 器官分化：愈伤组织在适宜的激素浓度和条件下，可以分化出根、茎、叶等器官。
3. 植株再生：通过进一步培养，分化出的器官可以发育成完整植株。
六、讨论与总结1. 无菌操作的重要性：无菌操作是组织培养成功的关键，可以有效防止细菌、真菌等微生物的污染。
2. 植物激素的作用：植物激素在组织培养中起着重要作用，可以调控细胞的分裂、分化和发育。
组培个人社会实习报告总结范例五篇
组培个人社会实习报告总结范例五篇组培实习总结1：园艺组织培养实习这个暑假,学校给我们布置了一项任务,就是参加一次专业社会实践,我们观赏园艺专业的实践内容就是到当地园林部门进行了解、访问、索取材料，以及到园艺企事业部门参加社会实践，其中包括调查本行业生产状况和发展前景;了解行业对园艺人才的需求(数量、素质、业务能力等),时间不少于2周。
当得知这次暑假要进行社会实践时，我的心情很是兴奋，因为想到暑假过后，我就即将成为一名大三的学生了，为了能够在不久的将来从容地走上工作岗位，我决定要好好借这次实践的机会，多锻炼自己的动手能力和充实自己的基本专业知识。
通过联系，我有幸来到了厦门市园林植物园进行社会实践。
厦门植物园是以园林风景区建设为主体，具有植物科研科普、旅游服务、园林工程和绿化苗木生产等多功能的综合性植物园，以植物引种驯化、种质资源保护和开发利用为主要研究内容;是植物多样性保护和引种驯化的重要基地，植物学现场教学的理想场地。
也是进行科学普及教育、提高民众文化素养，以及旅游和休憩的场所。
植物园已建成的专类园(区)有13个，较有特色和优势的专类园(区)是：沙生植物区、棕榈植物区、藤本植物区、三角梅(市花)园、南洋杉植物区、苏铁植物区、竹类植物区、雨林植物区等。
实习一开始，在植物园一位见多识广的分类专家带领下，我与其他几位来自不同学校的实习生一同参观了每一个专类园，在这个汇集了6000多种形态各异植物的植物王国里，我们边走边认，一天下来，便认识了许多以前没有接触过的植物，有以观赏为目的的：如观花的美蕊花、紫蝉、蔷薇等;观叶的旅人蕉、变叶木、花叶良姜等;观果的吊瓜树、腊肠树等;还有松杉园中姿态各异的金钱松、雪松、落羽杉、活化石银杏等裸子植物;竹径中高低错落、婀娜多姿的毛竹、斑竹、佛肚竹等竹类植物;棕榈岛中充满南国风情的大王椰子、短叶鱼尾葵、加纳里海枣等棕榈科植物;百花厅中清新美丽的王莲、荷花、睡莲等水生植物;以保护和展示为目的的辣木、苦楝等乡土树种;以及可以作为经济作物的如糖棕、油棕、伊拉克蜜枣等植物……种类多到令我的眼睛目不暇接,感觉就像是好好地上了一堂观赏植物认种课,真可谓获益良多。
组培实习工作报告总结
组培实习工作报告总结组培实习工作报告总结5篇实习可以获得适当的经济收入，改善经济状况，从而可以把实习的精力放在注重成长上。
下面给大家分享一些关于组培实习工作报告总结5篇，希望能够对大家有所帮助。
组培实习工作报告总结（精选篇1）转眼间的时间，近四个月的幼师实习就这么过去了。
这四个月在幼儿园教师的实习岗位上面自己是真的学习到了许多知识的，也体会到了不一样的感受，这是跟校园里面体会到的截然不同的一种感受。
这四个月的幼师工作和新环境的体验，让我飞速地成长了，能力上面，认识上面和责任上面都是在变化着，而且是在朝着积极的方面在变化。
现在将我这段时间有幼师实习中的工作做一个总结：作为一名幼师专业的学生，对于幼教工作的认识了解并不深，因为都是停留在理论认识上面，没有具体操作过。
但是通过这一次的实习，让我认识到我们要从事幼师工作，必须要尽到自己责任，我们的工作必须是从学生的健康成长上出发的，必须要关注他们的身体、心里双重的发展。
所以通过这一次的实习，我知道了在幼师工作中，我们对待在幼儿园学习的学生，我们不仅仅要关注他们的身体是否健康安全，我们还需要关注他们的心理是否开心，要注意调节他们的内心状况。
还有就是我们做幼儿教育的时候，不仅仅要教会他们知识，更是要教会他们常识，在幼儿园里面，对待孩子我们不仅仅要告诉他们认字、识图，更是要帮助他们学会生活习惯，比如要教会他们自己的事情自己做，比如自己的铅笔用完了要学会自己换新的，而不是一直在那等待或者哭让老师来帮忙弄，虽然哭着的小孩子挺让人怜惜心疼的，但是我也清楚我帮忙也只能帮一时，终究还是要靠他们自己的。
还有就是他们吃饭前和吃饭后，以及上完洗手间了，都必须要洗手，这是告诉他们要注意个人卫生，要有好的文明素质才行。
上面是工作的一些认识，下面总结下个人的成长：因为之前都是再以学生的角色在学习生活着，所以进入实习生活中的时候，都是非常不适应的，一下子进入了一个新的环境。
之前的自己习惯了依赖别人，但是到了工作当中，大家都在忙于自己的事情，无暇顾及我，所以我只能坚强起来，一步步地学习。
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1、试剂
KI、H3BO3、MnSO4﹒4H2O、Na2MoO4﹒2H2O、ZnSO4﹒7H2O、CuSO4﹒5H2O、CoCl2﹒6H2O
2、仪器设备
电子天平、磁力搅拌器、烧杯、容量瓶（100ML）、玻璃棒、试剂瓶
四、实验步骤
1、清洗仪器（容量瓶、烧杯、试剂瓶、玻璃棒等）
2、打开电子天平，去皮。
5.待琼脂充分溶解后，将溶液均匀倒入已经事先准备好的20个组培瓶中。
6.将无菌水瓶和倒培养基的瓶子和培养皿一起放入高压灭菌锅中，盖上锅盖。在98 kPa、121.3℃下，灭菌20 min。
实验愈伤组织的转接步骤
1.查看超净工作台上的镊子，剪刀，酒精灯，升汞等是否齐全，若都齐全，将培养基，无菌水，培养皿和菊花的愈伤组织放入超净工作台上，用75%擦拭超净工作台，并紫外线灭菌30min。
（15）每个培养瓶接入3—5个嫩芽，接种时注意将培养瓶斜上45°，这样可以减少染菌的几率。
（16）将已接种好的培养瓶放入光照培养箱内培养。
四、实验现象
4月25日观察。。。。。。。
实验阶段八配制菊花愈伤组织诱导芽的培养基4月25日
一、实验目的
配制接种菊花愈伤组织诱导芽需要的培养基
二、试剂及仪器设备
1、试剂
（5）取1个培养皿，打开放在酒精灯旁
（6）用镊子夹取20粒左右种子放在滤纸上
（7）打开一个培养基在酒精灯附近，用镊子将种子夹取在培养基内，每个培养基斜上45°接种，每个培养基内放入4~5粒种子，均匀放置。
（8）将培养瓶口在酒精灯上烧一圈，盖上瓶盖。
（9）重复（5）~（8）步骤.
（10）将接好种的培养基放在生化培养箱内，25℃无光照培养一周。
（4）将剪刀，镊子放入95%酒精中，拿出在酒精灯上灼烧，冷却后，用镊子取菊花叶片修剪。剪成大小0.5*0.5cm左右。
（5）将修剪好的菊花放在垫有滤纸的培养皿中，待接种。
（6）每个培养瓶接入3—5个叶片，接种时注意将培养瓶斜上45°，这样可以减少染菌的几率。
（7）将已接种好的培养瓶放入光照培养箱内培养。
植物组织培养实验报告
实验时间：2月28号—6月6号
指导老师：…
姓名：…
班级：园艺1001
学号：181001..
实验阶段一母液配置（贮备液2）3月14日
一、实验目的
学习如何清洗仪器、校准天平、以及配置母液
二、实验原理
配置培养基时，为了使用方便和用量准确，通常采用母液法进行配置，即按培养基配方中各试剂的用量，扩大若干倍后再准确称量分别先配制成一系列的母液置于冰箱中保存，使用时按比例吸取母液进行稀释配置即可。
（3）倒入试剂瓶中，贴好标签，放入冰箱冷藏保存。
实验阶段二培养基配制与灭菌3月21号
一、实验目的
学习母液法配制培养基以及掌握培养基灭菌的方法
二、实验原理
组织培养所用的培养基含有植物生长所必需的各类营养物质，同时也是微生物繁殖的极好场所，因此必须对培养基灭菌处理，以确保无菌操作的顺利进行。
三、试剂及仪器设备
2.30min后，关闭紫外灯，将风力开至最小。
3.接种人员消毒，进入工作台进行接种工作。
电子天平，高压灭菌锅、烧杯，量筒，移液管，玻璃棒，药勺，称量纸，PH计，25个培养瓶等
三、实验步骤
1、准备25个培养瓶、洗净后用蒸馏水冲洗干净。
2、准备镊子、剪刀、刀、刀片、用报纸包好（分开包扎再合包），等待灭菌
3、准备5个加盖的干净培养皿，并在底部加上滤纸，并用报纸包扎好有待灭菌。
4.培养基配制
（1）用粗天平秤4g琼脂放入500ml烧杯中，加入250ml左右的蒸馏水进行加热溶化。
配置菊花愈伤组织转接的培养基
一所用药品：
二配置步骤：1.将所需药品依次加入500ml的瓷缸中，加入少量水，混合，溶解。
2.称取15g的蔗糖，4g的琼脂溶解于瓷缸中。
3.将溶液定容至500ml，并用pH剂测量溶液的pH，用HCL和NAOH将溶液的pH调至5.8至6.0之间，最佳值为5.8。
4.将瓷缸放到电炉上加热，并用玻璃棒搅拌，使琼脂充分溶解。
二、试剂及仪器设备
1、试剂
琼脂、蔗糖、混合培养液（贮备液1~4）、NaOH、HCL。生长素。。。。。。
2、仪器设备
电子天平，高压灭菌锅、烧杯，量筒，移液管，玻璃棒，药勺，称量纸，PH计，25个培养瓶等
三、实验步骤
1、准备25个培养瓶、洗净后用蒸馏水冲洗干净。
2、准备镊子、剪刀、刀、刀片、用报纸包好（分开包扎再合包），等待灭菌
3、配置贮备液2
（1）秤取KI 8.3mg、H3BO362mg、MnSO4﹒4H2O 223mg、Na2MoO4﹒2H2O 2.5mg、ZnSO4﹒7H2O 86mg分别溶解于约10ml蒸馏水中。
（2）秤取CuSO4﹒5H2O 25mg、CoCl2﹒6H2O 25mg分别溶解于100ml蒸馏水中，分别量取1ml与其它试剂混合，搅拌均匀，再加水定容至100ml。
实验阶段七接种石楠4月25号
一、实验内容
观察荷兰马齿苋及番茄的生长、菊花诱导愈伤组织的生长情况、准备好下周接种菊花愈伤组织诱导芽用的培养基、清洗石楠、接种石楠。
二、试剂与仪器
1、试剂
70%~95%酒精、0.1%HgCl2、石楠嫩芽
2、仪器
烧杯、移液管、量筒、长镊子、解剖刀、超净工作台、剪刀
三、实验步骤
（4）用pH计调酸碱度，pH在5.8左右（5.8~6.0）
（5）加蒸馏水定容至1000ml,搅拌均匀。
（6）将溶液倒入20个培养瓶中，每个瓶约50ml。另外，备5瓶无菌水。
5．将步骤2、3中的仪器，配好的培养基、5瓶蒸馏水一起放入高压灭菌锅内，在121℃下高温灭菌。
6.取出培养基置于实验台上，将其他用具放在烘箱内烘干并取出置于实验台上。
琼脂、蔗糖、混合培养液（贮备液1~4）、NaOH、HCL。生长素。。。。。。
2、仪器设备
电子天平，高压灭菌锅、烧杯，量筒，移液管，玻璃棒，药勺，称量纸，PH计，25个培养瓶等
三、实验步骤
1、准备25个培养瓶、洗净后用蒸馏水冲洗干净。
2、准备镊子、剪刀、刀、刀片、用报纸包好（分开包扎再合包），等待灭菌
3、准备5个加盖的干净培养皿，并在底部加上滤纸，并用报纸包扎好有待灭菌。
4.培养基配制
（1）用粗天平秤8g琼脂放入1000ml烧杯中，加入750ml左右的蒸馏水进行加热溶化。
（2）再加入30g蔗糖，直至液体呈透明状。
（3）在溶好的液体中加入配好的混合培养液（贮备液1 --25ml贮备液2--5ml贮备液3—5ml贮备液4—5ml），生长素。。。。。。搅拌均匀后冷却到室温。
（10）开始接种，用酒精棉球擦拭双手。点燃酒精灯。
（11）将石楠用75%酒精洗30秒，立即加入无菌水冲洗3次左右。
（12）将石楠用0.1% HgCl2浸泡10Min，立即加入无菌水冲洗3次左右。
（13）将剪刀，镊子放入95%酒精中，拿出在酒精灯上灼烧，冷却后，用镊子取石楠修剪。
（14）将修剪好的石楠放在垫有滤纸的培养皿中，待接种。
（2）再加入15g蔗糖，直至液体呈透明状。
（3）在溶好的液体中加入配好的混合培养液（贮备液1 --25ml贮备液2--5ml贮备液3—5ml贮备液4—5ml），生长素。。。。。。搅拌均匀后冷却到室温。
（4）用pH计调酸碱度，pH在5.8左右（5.8~6.0）
（5）加蒸馏水定容至500ml,搅拌均匀。
实验阶段六菊花愈伤组织的诱导4月18日
一、实验目的
利用菊花叶片诱导愈伤组织，为下次实验，愈伤组织诱导芽的实验做准备。
二、试剂与仪器
1、试剂
菊花、。。。。。。
2、仪器
电子天平、烧杯，量筒，移液管，玻璃棒，药芍，称量纸，PH计，22个培养瓶
三、实验步骤
1.观察石楠：一周后，石楠基本没有生根，但是其他组接种的荷兰马齿苋生根。
（4）用pH计调酸碱度，pH在5.8左右（5.8~6.0）
（5）加蒸馏水定容至500ml,搅拌均匀。
（6）将溶液倒入20个培养瓶中，每个瓶约25ml。另外，备5瓶无菌水。
5．将步骤2、3中的仪器，配好的培养基、5瓶蒸馏水一起放入高压灭菌锅内，在121℃下高温灭菌。
6.取出培养基置于实验台上，将其他用具放在烘箱内烘干并取出置于实验台上。
（6）将溶液倒入20个培养瓶中，每个瓶约25ml。另外，备5瓶无菌水。
5．将步骤2、3中的仪器，配好的培养基、5瓶蒸馏水一起放入高压灭菌锅内，在121℃下高温灭菌。
6.取出培养基置于实验台上，将其他用具放在烘箱内烘干并取出置于实验台上。
实验阶段五石楠生根培养基配制4月18号
一、实验目的
配制接种石楠生根需要的培养基
1、试剂
琼脂、蔗糖、混合培养液（贮备液1~4）、NaOH、稀HCl
2、仪器设备
电子天平，高压灭菌锅、烧杯，量筒，移液管，玻璃棒，药匙，称量纸，PH计，电炉，培养瓶等
四、实验步骤
1、准备50个培养瓶、洗净后用蒸馏水冲洗干净。
2、准备5个加盖的干净பைடு நூலகம்养皿，并在底部加上滤纸，并用报纸包扎好有待灭菌。
3、培养基配制
3、掌握无菌操作技术
二、试剂及仪器
试剂：75%酒精、95%酒精、0.1%HgCl2、圣女果种子、荷兰马齿苋种子
仪器：烧杯、移液管、量筒、长镊子、解剖刀、超净工作台、剪刀
三、实验步骤
1．准备两个干净的小烧杯：配置（1）70%~75%酒精100ml（2）0.1%HgCl2100ml
2.在无菌操作室内，超净工作台上放入：（1）用报纸包扎好的灭菌过的镊子、剪刀、（2）培养皿（已灭菌）（3）酒精灯（4）打火机（5）无菌水（6）酒精棉球（7）试管架（8）废液缸（9）95%酒精（10）75%酒精（11）0.1% HgCl2。用酒精棉球擦拭台面，打开紫外灯灭菌30Min。