动物脾脏单个核细胞分离液试剂盒使用说明
脾脏单个核细胞的制备
脾脏单个核细胞的制备脾脏单个核细胞的制备: 将5 只小鼠断颈椎处死, 无菌取出脾脏, 分别剪碎, 置200 目无菌尼龙网上, 分次滴入4~ 5 ml RPMI1640 培养液, 轻轻研磨脾脏, 直到脾脏变白;收集细胞悬液( 由于红细胞所占比例很低且对实验影响不大, 故无需作红细胞裂解处理) , 1 000 r/ min( 离心半径17. 5 cm) 离心5 min, 弃上清; 加入2 ml pH7. 4 的PBS, 混匀后1 000 r/ min( 离心半径17. 5 cm) 离心5min, 弃上清; 加入4 ml RPMI1640 培养液, 混匀, 用RPMI1640 培养液稀释200 倍后滴加在细胞计数板上进行细胞计数, 根据计数结果用RPMI1640 将细胞悬液调成2 × 10 / 300 µl 的浓度。
《流式细胞术检测小鼠脾细胞内细胞因子刺激方案的筛选》单细胞悬液的制备：将大鼠颈椎脱位处死后, 置70%乙醇中浸泡5 m in, 无菌取出脾脏和胸腺置于平皿中, 除掉结缔组织, 用生理盐水清洗3次。
加入2 mL RPM I- 1640完全培养液, 用剪刀分别将脾和胸腺剪成1 mm 1 mm 1 mm 碎块后, 用毛玻片轻柔研磨组织碎片, 经8层纱布过滤制成单细胞悬液, 经H anks液离心洗涤后, 将细胞悬浮于含10%小牛血清的RPM I- 1640 培养液。
台盼蓝染色, 计数活细胞在95%以上, 调整细胞数至5×10 cells /L。
《粗江蓠多糖对大鼠淋巴细胞周期的影响》610制备脾细胞悬液脾淋巴细胞的获取:手术刀、解剖剪、解剖镊、止血钳等手术器械,300 目尼龙网等须经消毒处理; 以颈椎脱臼法处死小鼠, 用7 5 % 乙醇浸泡小鼠10-15min 。
沿腹腔中线剪开小鼠胸腔, 取出脾脏置于培养皿中, 剪去脂肪和筋膜组织, 用R PMI-1640培养液漂洗。
粗剪成小块, 用注射器芯轻轻挤压, 加人基础培养液, 混悬, 用300目尼龙网过滤到玻璃离心管中, 再加人基础培养液冲洗网上剩余组织细胞。
小鼠单个核细胞分离
小鼠单个核细胞分离
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操作步骤：
1. 将2ml小鼠脾脏细胞悬液混匀，然后用 滴管沿盛有2ml淋巴细胞分离液试管壁 轻轻铺于分离液面上。
2. 将该试管置水平式离心机中1800rpm离 心15min。
3. 用滴管小心直接插入白色絮状细胞层， 吸出界面层细胞，移入另一试管中。
小鼠单个核细胞分离
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操作步骤：
小鼠单个核细胞分离
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原理：
依据物理学颗粒沉降原理，不一样密度颗粒在其沉降 运动中可因其比重差异而处于不一样分布位置。利用 此原理可设计一定比重液体界面，将小鼠脾脏中各种 不一样比重细胞经过离心沉降而到达使其彼此分离目 标。
小鼠单个核细胞分离
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原理：
已知小鼠淋巴细胞和单核细胞比重为1.088左右，而 红细胞与粒细胞比重均大于1.088。所以，若用比重 为1.088±0.001分离液则可经过密度梯度离心方法， 在分离液界面上搜集得到脾单个核细胞。
2. 分离时所取离心速度与时间，因各台离 心机离心半径而异，需事先经过预试验 决定。
3. 加入稀释血时应十分小心，注意保护试 管内界面，勿使混同影响分离效果。
4.
小鼠单个核细胞分离
做细胞活力检验时，锥兰染色后应尽快
计数完成，时间过长则细胞活力可能降 低。
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试验结果统计与分析
经过前后两次细胞计数：
取细胞悬液一滴加入等量白细胞稀释液于另一 试管中充分混匀，用计数板在显微镜下计数， 计算出淋巴细胞浓度（个/ml）。
检验细胞活力：取细胞悬液一滴，加入等量锥 兰溶液于另一试管中，充分混匀后马上滴一滴 细胞悬液于载玻片上，在显微镜下计数 100~200个淋巴细胞中着色死细胞数。
五年制免疫实验课 小鼠脾脏单个核细胞分离-新
E花环分离法
（纯化T细胞）
T细胞表面的CD2分子－绵羊红细胞受体（E受体）
尼龙纤维分离法
B细胞和单核细 胞具有易粘附特性， 将淋巴细胞悬液加 到尼龙纤维上， 37℃作用1－2小时 后，洗脱的为非粘 附性T细胞。
PBMC
B细胞 单核细胞
尼龙纤维 毛柱
T细胞
流式细胞术
（Flow Cytometry，FCM）
一 、 T细 胞 增 殖 试 验
1. 形态学检查
T细胞增殖试验 原毒的行正理刺分常素激裂：）人后的T、转细能淋非化胞转巴率特体化为母异（外为细7性形0受体％胞有态特积左，丝学异较右以分示性大。此裂意抗、测原原图代定（物）谢T如质细旺P（胞盛HA的如、、功细且C能菌能on类进。A） 4P8H~A72刺小激时
NOTE：尽量少吸分层液；
6、每管加 PBS 到1ml，重悬细胞，3000转离心5分钟。
7、计数：吸弃上清，用100ml PBS重悬细胞，取出20ml加入新 的EP管中，再加入20ml细胞计数液，混匀后取出10ml，加到 计数板内，显微镜下计数。
细胞计数方法
4
查出四个大方格的总细胞数(X) 算出每个大方格的平均细胞数：Y=X/4 每个大方格的体积为V=1mm×1mm×0.1mm=0.1mm3=10-4ml 制备的细胞悬液的细胞浓度（/ml)=Y×104×稀释倍数
2.
3 H-TdR掺 入 法 T细胞增殖试验 原激胞养腺DD淋素NN活巴经进理液嘧AAβ后入细：中中啶的，胞-S淋加，液核原期进对巴入根体苷，料入刺细据闪3H细(被（细激T胞同烁标胞d摄胞物3位仪被RH记合入)周的素检-有，的T成期应细掺测d丝则DDR进答入胞。N分N掺3H行水A细A，裂入合-明有平胞T原掺法成d显丝。的RC入）原分掺增量o新n作料加裂入则A合为或脱，的，可成合P当同在氧推H细位的培成测胸A
小鼠脾脏单个核细胞分离
-
特异性 敏感性
优点
缺点
细胞生物 低 学方法 免疫学方 高 法
分子生物 高 学方法
高
可确定活 性
易操作， 可大量检 测 既可定量 又可定位
繁琐费时 不能确定是 否有活性
不能反映浓 度和活性
较高
高
小鼠脾单个核细胞的分离—密度梯度离心法
原理 根据物理学中颗粒沉降原理，不同密度的物质颗 粒在其沉降运动中可因其比重的差别而处于不同 的分布位置。利用此原理可设计一定密度的液体 界面，将各种不同密度的细胞通过离心沉降而达 到使其彼此分离的目的。已知小鼠淋巴细胞和单 核细胞的密度大约在1.088之间，而红细胞与粒细 胞 的 密 度 均 大 于 1.088 。 因 此 ， 若 用 密 度 为 1.088±0.001 的分离液则可通过密度梯度离心方 法，在分离液界面上收集单个核细胞。
T:表达CD2(SRBC受体） B:不表达CD2
免疫细胞功能检测
淋巴细胞转化试验
细胞毒试验
细胞因子检测 溶血空斑实验
T
PHA, ConA,PWM
或Ag
形态学观察Lc 与淋巴母细胞 的比值
3H-TdR掺入法测cpm值
细胞因子检测
细胞生物学方法: CK细胞敏感株
密度梯度离心法
聚蔗糖—泛影葡胺 Ficoll-Hypaque: 1.088±0.001
LC, M :1.088 RBC, 粒细胞：>1.092
在1ml小鼠脾脏细胞悬液混匀，然后用滴管沿盛有 2ml淋巴 细胞分离液的试管壁轻轻铺于分离液面上。 将该试管置水平式离心机中离心（1800rpm）15分钟。 用滴管小心地直接插入白色絮状的细胞层（含单个核细 胞），吸出界面层细胞，移入另一试管内。 在该细胞收集管内加入生理盐水，用滴管轻轻上下冲洗混 匀，然后在离心（1000rpm）10分钟，弃去上清液，将沉 淀细胞充分摇匀，再用生理盐水离心洗涤1次。 用0.3ml生理盐水（约6滴）将沉淀细胞稀释，摇匀。 取细胞悬液一滴加入等量白细胞稀释液于另一试管中充分 混匀，用计数板在显微镜下计数，计算单个核细胞浓度 （个/ml）。 检查细胞活力：取细胞悬液一滴加入等量锥兰溶液于另一 试管中充分混匀，用载玻片在显微镜下计数100~200个单 个核细胞中着色的死细胞数
复旦大学免疫实验小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数
小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数实验时间：实验地点：实验人：1实验原理小鼠脾脏位于上腹部左后侧，体积较大，长条形，属于外周免疫器官。
外周血中淋巴细胞可经再循环驻如脾脏等外周免疫器官的特定区域，所以富含各类免疫细胞。
免疫细胞的分离：采用红细胞裂解法，是根据细胞对渗透压变化的敏感度。
红细胞由于细胞结构较为简单，仅有细胞膜结构，对于膨胀的耐受能力较差，因此绝大部分就会涨破，受到破坏。
是一种比较温和的去除红细胞最简便易行的方法。
2实验材料：1)健康小鼠2)手术器械（剪刀、镊子）、解剖板3)70%乙醇4)PBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK）5)0.2%台盼蓝6)细胞计数板、计数器7)离心机8)显微镜3实验方法：3.1取小鼠脾脏●将小鼠颈椎脱位处死，用酒精消毒。
●用剪刀剪开背部皮肤，再找到脾脏，用镊子夹出脾脏并剪除周围组织。
3.2制备单个核细胞悬液●将取出的脾脏置于盛有3mlPBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指套中，用针芯轻轻碾压使得单个核细胞悬浮于平皿中。
●吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管（15ml）中，以1500rpm离心10min，弃去上清液，加入ASK至2-3ml，轻轻吹打混匀并放置2min，以破坏红细胞。
然后加入PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min。
●弃去上清液，用PBS缓冲液定容至2ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。
3.3计算细胞浓度稀释十倍，随机选取一个大方格计数细胞计数为324个，计算细胞浓度为324×104×10=3.24×107/ml3.4计算细胞活力在总计为324个细胞中计数，死亡细胞有16个，计算细胞活力为：324-16/324×100%=95.1%在理论范围之内4实验结果4.1研磨脾脏得到细胞悬液本实验中将小鼠的脾脏放入尼龙指套内，置于少量PBS液中缓慢研磨，获得细胞悬液。
实验中，我们发现尼龙指套不能滤去所有结缔组织，操作中会有结为絮状团块的结缔组织。
4 脾脏单个核细胞分离及流式细胞术染色(1)(1)
• 3．急性大失血法：用粗针头一次采取大量心脏血液，可使动物致死。 • 4．吸入麻醉致死法：应用乙醚吸入麻醉的方法处死。大、小鼠在20～30秒
3.清洗：加500ulPBS,吹打混匀后， 5000rpm， 4℃，5min
4.检测：小心用枪去除上清，再加入500ul PBS吹打混匀，置于冰上， 流式细胞仪检测
CD3： T cell CD4+ T cell； CD8+ T cell
补充知识
通常分离细胞是为了下一步实验。有些实验如需要对细 胞作进一步培养，则在分离细胞时一定要严格无菌操作。
在用ACK破坏红细胞时，不要时间过长，以免破坏其他 细胞。
计数完毕后请立即清洗细胞计数板！
思考题
1.实验过程中注意问题有哪些？
实验小鼠处死方法
• 1．颈椎脱臼法：是大、小鼠最常用的处死方法。用拇指和食指用力往下按住 鼠头，另一只手抓住鼠尾，用力稍向后上方一拉，使之颈椎脱日，造成脊髓 与脑髓断离，动物立即死亡。
实验四
小鼠脾脏单个核细胞分离及 流式细胞术染色
钱国军 邹本坤 2016-03-31
解剖图
小鼠脾脏位于上腹部左后侧， 体积较大，长条形，属于外 周免疫器官。外周血中淋巴 细胞可经再循环驻入脾脏等 外周免疫器官的特定区域， 所以富含各类免疫细胞。
实验原理
细胞计数
3mm
W1
W2
W3
4 脾脏单个核细胞分离及流式细胞术染色(1)
lived dead
实验材料：
小鼠 手术器械（剪刀、镊子）、酒精喷壶 平皿，尼龙膜指套、研磨棒
PBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK）
细胞计数板 0.2%台盼蓝染液 显微镜（关掉之前，请把光度调到最小！！）
实验步骤
（一）取小鼠脾脏：
小鼠颈椎脱位处死（注意安全）； 用75%酒精喷小鼠腹部，使其皮毛沾湿。用剪刀，剪开皮肤 暴露腹腔，再找到脾脏，劲量剪除脾脏周围组织；
• • • •
实验小鼠处死方法
• 1．颈椎脱臼法：是大、小鼠最常用的处死方法。用拇指和食指用力往下按住 鼠头，另一只手抓住鼠尾，用力稍向后上方一拉，使之颈椎脱日，造成脊髓 与脑髓断离，动物立即死亡。
注意： 细胞总数和细胞活力可以一起做 细胞总数=视野内活细胞数+死细胞数 细胞活力=活细胞数/总数x100%
1.颈椎脱臼处死小鼠：用拇指和食指用力往下按住鼠头，另一只手抓住 鼠尾，用力稍向后上方一拉，使之颈椎脱臼，造成脊髓与脑髓断离 2.摘取脾脏：用75%酒精喷小鼠腹部，使其皮毛沾湿。用剪刀，剪开皮 肤暴露腹腔，再找到脾脏，尽量剪除脾脏周围组织 3.研磨脾脏：在培养皿中加入3mlPBS，将脾脏放入过滤网制成的指套中， 再放入培养皿中，用注射器的活塞棒或研棒将脾脏研碎。将含有脾脏细 胞的PBS移入15ml离心管。再取3mlPBS冲洗培养皿后移入15ml离心管。
（三）计算细胞浓度
将上述细胞悬液做一定倍数（10倍左右）的稀释（小鼠脾 脏细胞一般为1x107-2x108）； 混匀稀释后，取10uL加至细胞计数板中(不要有气泡），计 数细胞计数板中4大方格细胞总数； 计算细胞总数：
细胞浓度=4个大方格细胞总数/4*104*稀释倍数。
细胞总数=细胞浓度x细胞悬液的体积
复旦大学免疫实验小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数
小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数实验时间：实验地点：实验人：1实验原理小鼠脾脏位于上腹部左后侧，体积较大，长条形，属于外周免疫器官。
外周血中淋巴细胞可经再循环驻如脾脏等外周免疫器官的特定区域，所以富含各类免疫细胞。
免疫细胞的分离：采用红细胞裂解法，是根据细胞对渗透压变化的敏感度。
红细胞由于细胞结构较为简单，仅有细胞膜结构，对于膨胀的耐受能力较差，因此绝大部分就会涨破，受到破坏。
是一种比较温和的去除红细胞最简便易行的方法。
2实验材料：1)健康小鼠2)手术器械（剪刀、镊子）、解剖板3)70%乙醇4)PBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK）5)0.2%台盼蓝6)细胞计数板、计数器7)离心机8)显微镜3实验方法：3.1取小鼠脾脏●将小鼠颈椎脱位处死，用酒精消毒。
●用剪刀剪开背部皮肤，再找到脾脏，用镊子夹出脾脏并剪除周围组织。
3.2制备单个核细胞悬液●将取出的脾脏置于盛有3mlPBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指套中，用针芯轻轻碾压使得单个核细胞悬浮于平皿中。
●吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管（15ml）中，以1500rpm离心10min，弃去上清液，加入ASK至2-3ml，轻轻吹打混匀并放置2min，以破坏红细胞。
然后加入PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min。
●弃去上清液，用PBS缓冲液定容至2ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。
3.3计算细胞浓度稀释十倍，随机选取一个大方格计数细胞计数为324个，计算细胞浓度为324×104×10=3.24×107/ml3.4计算细胞活力在总计为324个细胞中计数，死亡细胞有16个，计算细胞活力为：324-16/324×100%=95.1%在理论范围之内4实验结果4.1研磨脾脏得到细胞悬液本实验中将小鼠的脾脏放入尼龙指套内，置于少量PBS液中缓慢研磨，获得细胞悬液。
实验中，我们发现尼龙指套不能滤去所有结缔组织，操作中会有结为絮状团块的结缔组织。
脾淋巴细胞分离
小鼠脾脏单个核细胞的分离一、实验目的1. 熟悉细胞分离的基本原理2. 掌握小鼠脾脏单个核细胞的分离的方法3. 掌握流式细胞术检测细胞表面标志的方法二、实验原理1.台盼蓝染色：正常的活细胞，胞膜结构完整，能够排斥台盼蓝，使之不能够进入胞内。
丧失活性或细胞膜不完整的细胞，胞膜的通透性增加，可被台盼蓝染成蓝色。
通常认为细胞膜完整性丧失，即可认为细胞已经死亡。
2.脾是人和脊椎动物最大的淋巴器官。
人的脾脏位于左季肋区的后外侧部，呈卵圆形，脾是血循环中重要的滤过器，能清除血液中的异物、病菌以及衰老死亡的细胞，特别是红细胞和血小板。
三、实验材料小鼠手术器械（剪刀、镊子）、酒精喷壶、杀鼠板平皿，尼龙膜指套、研磨棒、吸管、试管、EP管、移液器和tipsPBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK）细胞计数板0.2%台盼蓝染液8.显微镜四、实验步骤（一）取小鼠脾脏1.小鼠颈椎脱位处死——用拇指和食指往下按住鼠头，另一只手抓住鼠尾，用力稍向后上方一拉，使之颈椎脱臼，造成脊髓与脑髓断离。
2.取其后右侧卧位，消毒左侧背腹交界处皮肤，剪取脾脏并尽量将去除脂肪及筋膜组织。
（二）制备单个核细胞悬液：1.将脾脏置于盛有5mLPBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指套中。
用针芯轻轻碾磨使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中；2.吸取平皿中细胞悬液（再次用尼龙指套过滤）置于刻度离心管中，加PBS缓冲液（可冲洗培养皿）至10mL，以1500rpm离心5min。
弃去上清，弹散细胞沉淀，加ACK2ml，轻轻吹打混匀并放置3-4min，以破坏红细胞。
然后加PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心5min；3.弃去上清，弹散细胞沉淀，加PBS缓冲液至2ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。
(放置冰上)4.取100uL至EP管中，进行计数和活力测定（建议5倍稀释）5.以1500rpm离心5min，根据计数结果稀释到合适的浓度a)注：减少操作的时间，并放置冰上或低温离心机里以保证细胞活力（三）计算细胞浓度1.将上述细胞悬液做一定倍数的稀释；（建议5倍稀释）。
脾脏单个核细胞的制备
脾脏单个核细胞的制备: 将5 只小鼠断颈椎处死, 无菌取出脾脏, 分别剪碎, 置200 目无菌尼龙网上, 分次滴入4~ 5 ml RP MI1640 培养液, 轻轻研磨脾脏, 直到脾脏变白; 收集细胞悬液( 由于红细胞所占比例很低且对实验影响不大, 故无需作红细胞裂解处理) , 1 000 r/ min( 离心半径17. 5 cm) 离心5 min, 弃上清; 加入2 ml pH7. 4 的PBS, 混匀后1 000 r/ min( 离心半径17. 5 cm) 离心5min, 弃上清; 加入4 ml RPMI1640 培养液, 混匀, 用RPMI1640 培养液稀释200 倍后滴加在细胞计数板上进行细胞计数, 根据计数结果用RPMI1640 将细胞悬液调成2 × 106 / 300 µl 的浓度。
《流式细胞术检测小鼠脾细胞内细胞因子刺激方案的筛选》单细胞悬液的制备：将大鼠颈椎脱位处死后, 置70%乙醇中浸泡5 m in, 无菌取出脾脏和胸腺置于平皿中, 除掉结缔组织, 用生理盐水清洗3次。
加入2 mL RPM I- 1640完全培养液, 用剪刀分别将脾和胸腺剪成1 mm 1 mm 1 mm 碎块后, 用毛玻片轻柔研磨组织碎片, 经8层纱布过滤制成单细胞悬液, 经H anks液离心洗涤后, 将细胞悬浮于含10% 小牛血清的RPM I- 1640 培养液。
台盼蓝染色, 计数活细胞在95%以上, 调整细胞数至5×1010 cells /L。
《粗江蓠多糖对大鼠淋巴细胞周期的影响》制备脾细胞悬液脾淋巴细胞的获取:手术刀、解剖剪、解剖镊、止血钳等手术器械,300 目尼龙网等须经消毒处理; 以颈椎脱臼法处死小鼠, 用7 5 % 乙醇浸泡小鼠10-15min 。
沿腹腔中线剪开小鼠胸腔, 取出脾脏置于培养皿中, 剪去脂肪和筋膜组织, 用R PMI-1640培养液漂洗。
粗剪成小块, 用注射器芯轻轻挤压, 加人基础培养液, 混悬, 用300目尼龙网过滤到玻璃离心管中, 再加人基础培养液冲洗网上剩余组织细胞。
实验三小鼠脾细胞的分离制备及其活力检测
实验三小鼠脾细胞的分离制备及其活力检测
实验二小鼠脾细胞的分离制备及其
活力检测
材料
1、器材：离心机、手术剪、镊子、平皿、10ml离心管，5ml 注射器等
2、动物：昆明小鼠（25g左右，雄性）
3、试剂：碘伏、红细胞裂解液、Hank’s 液、0.4%台盼兰染液
方法
1、取小鼠一只，置于蜡盘上，颈椎脱臼处死，用碘伏消毒小鼠腹部后，打开腹腔，取出脾，去除周围的结缔组织，放入含有5ml Hank’s的平皿中。
2、用眼科剪将脾一端剪一小口后，将含有5ml Hank’s液的注射器从脾的另一端刺入脾，缓缓注入Hank’s液，即可见脾细胞悬液流入平皿，注意在注射Hank＇s液同时不断转动针头方向，直至脾变苍白为止。
3、将平皿倾斜静置10 min后，用干净吸管吸取细胞液到10ml 离心管中，平衡后，离心（1500rpm 10min），将
离心管盖子打开，快速弃上清液，往管底的细胞中加入1ml的红细胞裂解液，充分混匀20秒，立即加入9ml的Hank’s液，混匀，离心（1500rpm 10min），弃上清，将细胞定容到1ml。
4、吸取0.1ml的细胞悬液到干净的试管中，加入等量的0.4%台盼兰染液，混匀，吸取1滴的细胞液到玻片上，加上盖片，显微镜观察：死亡细胞染成蓝色，活细胞不染色。
正常情况下，活细胞数应达到95%以上。
免疫细胞使用说明书
免疫细胞使用说明书（V1.0）【适用范围】该产品说明书适用于人和动物PBMC、SMC、CBMC、BMMNCs等单个核细胞和人、小鼠CD3+T、CD4+T、CD8+T、CD19+B、单核、NK细胞等亚型免疫细胞的复苏、保存、使用等过程。
【产品描述】单个核细胞是白细胞中只有一个细胞核的细胞，相对密度在1.076~1.090。
根据其组织来源不同，又可分为外周血单个核细胞（Peripheral Blood Mononuclear Cell，PBMC）、脐带血单个核细胞（Cord Blood Mononuclear Cell，CBMC)、脾脏单个核细胞（Spleen Mononuclear Cell）、骨髓单个核细胞（Bone Marrow Mononuclear Cells，BMMNCs）等。
IPHASE单个核细胞均是由新鲜的组织或器官，利用细胞比重的差异，通过密度梯度离心的方法获得。
免疫细胞（Immune cell），由多种不同类型的细胞组成，包括淋巴细胞、单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞、自然杀伤细胞等。
免疫细胞作为免疫系统的重要成员，具有吞噬异物并产生抗体、机体伤病的损伤治愈、抗御病原体入侵等能力，在执行免疫应答和免疫功能方面担负重任。
IPHASE免疫亚型细胞均是通过免疫磁性细胞阴选分选的方法，从新鲜制备的单个核细胞悬液中分选而来。
【包装规格】5×106cells/管1×107cells/管2×107cells/管5×107cells/管【应用方向】可作为大分子药物临床前药代动力学和药效学研究、药物毒性筛选、免疫学研究、疫苗开发以及移植免疫等多个领域研究的原材料。
【合规保障】合规是研究的开始。
按照国家要求，凡涉及到人和猴相关的细胞产品均需办理合规审批流程，只有审批通过，且取得证明文件后才可买卖细胞。
IPHASE/汇智和源分离免疫细胞的组织或器官均由合规渠道获得，来源清晰，免除客户后顾之忧。
%94 小鼠脾脏、胸腺单个核细胞分离
26
计数池
正面观
支持堤
侧面观
1mm 支持堤 支持堤 计数池 缝隙） （0.1mm缝隙） 缝隙
27
计数时需要遵循一定的方向逐格进行，以免重复或遗漏，对 压线细胞采用数左不数右，数上不数下 数左不数右， 数左不数右 数上不数下的原则
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细胞数量明显增大时可适当加大稀释倍数。 细胞数量明显增大时可适当加大稀释倍数。 充池时要一次完成，不能产生满溢 满溢、 充池时要一次完成，不能产生满溢、气泡 或充池不足的现象 的现象。 或充池不足的现象。 大小方格内压线细胞的计数遵循数上不数 大小方格内压线细胞的计数遵循数上不数 的原则， 数左不数右的原则 避免多数或漏数。 下、数左不数右的原则，避免多数或漏数。
取脾脏
24
实验步骤： 实验步骤：
制备单个核细胞悬液： （二）制备单个核细胞悬液： 将取出的脾脏置于盛有PBS缓冲液的平皿 盛有PBS缓冲液的平皿中 然后再置于尼龙指 1. 将取出的脾脏置于盛有PBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指 针芯轻轻碾磨使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中 使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中； 套中。用针芯轻轻碾磨使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中； 离心10min 吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管中， 1500rpm离心10min。 2. 吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管中，以1500rpm离心10min。 弃去上清， ACK至2~3ml，轻轻吹打混匀并放置3~4min， 放置3~4min 弃去上清，加ACK至2~3ml，轻轻吹打混匀并放置3~4min，以破坏 红细胞。然后加PBS缓冲液至10ml PBS缓冲液至10ml， 1500rpm离心10min； 离心10min 红细胞。然后加PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min； 弃去上清， PBS缓冲液至10ml， 1500rpm离心10min； 缓冲液至10ml 离心10min 3. 弃去上清，加PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min； 弃去上清， PBS缓冲液至10ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核 缓冲液至10ml 4. 弃去上清，加PBS缓冲液至10ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核 细胞悬液。 细胞悬液。
动物细胞高纯内质网分离试剂盒产品说明书(中文版)
动物细胞高纯内质网分离试剂盒产品说明书（中文版）主要用途动物细胞高纯内质网分离试剂是一种旨在通过机械或化学处理、差速和等密度离心方法，从动物细胞中分离出活性完整而高度纯化的内质网细胞器组分的权威而经典的技术方法。
该技术经过精心研制、成功实验证明的。
其制备物产量高，活性保证，纯度可达99％。
适合于各种动物原代和培养细胞（人体、老鼠、兔子等）内质网的制备。
可以被用于细胞色素P450系统外源化合物（xenobiotics）代谢、脂类代谢、内质网膜蛋白和腔内蛋白等研究。
产品不含污染性蛋白酶和核酶，即到即用，性能稳定，分离产量高。
技术背景内质网（endoplasmic reticulum；ER）是真核生物的细胞器组分，构成细胞内小管（tubules）、囊泡（vesicles）和小池（cisternae/sac）相互连接的网络结构，负责蛋白转译、折叠和转运成为细胞膜成分（例如跨膜受体和其它整合膜蛋白等）或分泌型蛋白（例如消化性酶），负责钙离子区隔（sequestration），以及糖原、固醇类和其它大分子的生产和储存等功能。
内质网分成三种：粗面内质网（Rough endoplasmic reticulum；RER）、滑面内质网（Smooth endoplasmic reticulum；SER）和肌质网（sarcoplasmic reticulum；SR）。
根据细胞代谢的需要，粗面内质网和滑面内质网会互相转换。
粗面内质网通过核糖体合成蛋白质并分类；滑面内质网进行固醇、碳水化合物和药物代谢等。
肌质网的主要功能为储存和释放钙离子。
内质网的分离是现代细胞生物学研究的常用手段之一：第一，通过机械或化学方法破裂组织细胞；第二，通过低速差速离心去除残渣碎屑和巨大细胞器；第三，通过高速差速离心获得内质网；甚至，第四，可以通过等密度离心获得纯度更高的内质网。
产品内容清理液（Reagent A）毫升裂解液（Reagent B）毫升净化液（Reagent C）毫升活性液（Reagent D）微升强化液（Reagent E）毫升保存液（Reagent F）毫升高纯液（Reagent G）毫升分层液（Reagent H）毫升产品说明书1份保存方式保存净化液（Reagent C）和活性液（Reagent D）在－20℃冰箱里，其余的保存在4℃冰箱里，有效保证6月用户自备HANK平衡盐缓冲溶液（HL12028）或PBS缓冲溶液（HL12033）：用于清理细胞胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液（HL12024）：用于细胞脱离完全细胞培养液（HL12052）：用于细胞处理所需的培养基50毫升锥形离心管：用于样品制备的容器15毫升锥形离心管：用于样品制备的容器1.5毫升离心管：用于样品操作的容器6毫升超速离心管：用于超高速离心的容器4℃台式离心机：用于样品制备4℃超速离心机：用于样品制备DOUNCE匀浆器：用于裂解组织试管固定支架：用于离心管固定支撑3号针筒和18号针头：用于收集样品实验步骤一、组织匀浆法实验开始前，将试剂盒里的净化液（Reagent C）和活性液（Reagent D）冻融，然后移出移取xx微升活性液（Reagent D）、xx毫升净化液（Reagent C）到xx毫升的裂解液（Reagent B）里，混匀后，置入冰槽里，标记为裂解工作液。
小鼠骨髓中性粒细胞分离液试剂盒使用说明
小鼠骨髓中性粒细胞分离液试剂盒使用说明货号：P8550规格：200mL/kit保存：18℃-25℃保存，有效期两年。
小鼠骨髓中性粒细胞分离液试剂盒易感染细菌，需无菌条件下操作。
无菌条件下操作，启封后常温保存。
如4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。
试剂盒内容：试剂A200mL试剂F（赠品）200mL样本稀释液（赠品）200mL清洗液（赠品）200mL红细胞裂解液（赠品）100mL说明书1份操作步骤：1.首先制备骨髓单细胞悬液。
2.取一支15mL离心管，小心加入试剂A。
3.用吸管小心吸取血液样本加于分离液之液面之上，400-550g，离心20-30min（注：如改变血液样本及分离液用量，需相应调整离心力及离心时间，具体离心条件需客户自行摸索，以达到最佳分离效果。
）4.离心后，离心管中将出现两层环状乳白色细胞层，上层为单个核细胞，下层细胞为中性粒细胞。
5.用吸管小心吸取分离液中的中性粒细胞层，如有红细胞混杂则加入适量的红细胞裂解液，将红细胞裂解，即得目的细胞。
6.将获得的细胞层移至另一15mL离心管中，向所得离心管中加入10mL清洗液，混匀细胞。
7.250g，离心10min。
8.弃上清。
9.用5mL清洗液重悬所得细胞。
10.250g，离心10min。
11.重复8、9、10，弃上清后以0.5mL后续实验所需相应液体重悬细胞。
注意事项：1.全程过程样本、试剂及实验环境均需要在20℃±2℃的条件下进行。
为获得最佳的实验结果，最好在取血后2h内进行实验。
2.本实验最好不使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离心管及未经碱处理后的玻璃制品，因为静电作用会导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会变成毛面，影响细胞分离效果。
3.分离液用量大于骨髓单细胞悬液样本量时，分离效果更佳。
动物脾脏NK细胞分离液
动物脾脏NK细胞分离液货号：P9310规格：5×200ml/Kit名称规格试剂B200ml试剂D200ml试剂F200ml样本稀释液200ml清洗液200ml保质期：18-25℃保存，有效期2年。
本品易感染细菌，需无菌条件操作。
无菌条件下操作，启封后置常温保存。
如4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。
操作步骤：全过程样本、试剂及实验环境均需在20±2℃的条件下进行。
1.首先制备脾脏组织单细胞悬液。
2.取一支15ml离心管，依次小心加入试剂B、试剂D（体积比为3:2，试剂总量与稀释后的样本量相等。
如脾脏组织单细胞悬液为5ml，则先后加入试剂B3ml、试剂D2ml），制成梯度界面，各液面分层一定要清晰。
3.用吸管小心吸取脾脏组织悬液样本加于分离液液面上，400-500g，离心20-30min（注：根据单细胞悬液样本量确定离心条件，脾脏组织单细胞悬液样本量越多，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件需客户自行摸索，以达到最佳分离效果）。
4.离心后，此时离心管中由上至下分为五层。
第一层为稀释液层。
第二层为试剂D层。
第三层为环状乳白色目的细胞层。
第四层为试剂B层。
第五层为红细胞层。
5.用吸管小心吸取第二层试剂D层和第三层环状乳白色细胞层到另一15ml离心管中，往所得离心管中加入10ml清洗液，混匀细胞。
第1页，共2页6.250g，离心10min。
7.弃上清。
8.用吸管以5ml清洗液重悬所得细胞。
9.250g，离心10min。
10.重复7、8、9，弃上清后以0.5ml后续实验所需相应液体重悬细胞。
11.差异贴壁法纯化细胞（1）用NK细胞无血清培养基或NK细胞完全培养基以1.5-3×106个/ml的密度重悬细胞，将细胞铺于一次性细胞板或细胞瓶中，放于37℃二氧化碳培养箱中进行贴壁培养。
（2）2-4小时内贴壁的为巨噬细胞前体（俗称为单核细胞）。
（3）10-24小时内贴壁的单个核细胞为内皮、内皮祖细胞、干细胞。
动物细胞组织核糖体分离试剂盒产品说明书主要用途
毫升 毫升 毫升 毫升 1份
保存方式
保存裂解液（Reagent B）在－20℃冰箱里，其余的保存在 4℃冰箱里，有效保证 6 月
用户自备
HANK 平衡盐缓冲溶液（HL12028）或 PBS 缓冲溶液（HL12033）：用于清理细胞 胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液（HL12024）：用于细胞脱离 完全细胞培养液（HL12052）：用于中和胰蛋白酶的细胞培养基 50 毫升锥形离心管：用于样品操作的容器 15 毫升锥形离心管：用于样品操作的容器 1.5 毫升离心管：用于样品操作和保存的容器 台式离心机：用于样品操作 超速离心机：用于样品操作
避免晃动，同时离心前，使用矿物油填满离心管） 24．小心放进 4℃超速离心机离心 2 小时，速度为 260000g 25．小心取出离心管 26．小心抽去上清液 27．加入 xx 毫升保存液（Reagent D），混匀颗粒群 28．转移到到新的 1.5 毫升离心管 29．（选择步骤）进行核糖体定量测定 30．放进－70℃冰箱里保存或置于冰槽里准备后续操作
HL10409.1 v.A
动物细胞/组织核糖体分离试剂盒产品说明书
主要用途
动物细胞/组织核糖体分离试剂是一种旨在通过物理破壁和化学破膜以及等密度超速离心处理方法，分离出 完整而纯化的 80S 核糖体组分的权威而经典的技术方法。该技术经过精心研制、成功实验证明的。适合于 各种新鲜或冻存的动物和人体细胞或组织胞浆核糖体成分的分离。产品即到即用，操作简易，性能稳定， 无核酶和蛋白酶污染，萃取纯度和产量皆高。
2
二、 组织核糖体分离
1． 准备好新鲜或冻存的动物组织，并秤重以确定 1 至 2 克组织重量 2． （选择步骤）放进预冷的 50 毫升锥形离心管 3． （选择步骤）加入 xx 毫升清理液（Reagent A）清洗 1 次 4． 移入一个液氮冻存管 5． 即刻放进液氮罐过夜 6． 次日从液氮罐里取出，即刻（最快速度）碾碎组织成粉末（注意：切莫使组织冻融） 7． 放进一个预冷的 15 毫升锥形离心管 8． 加入预冷的 xx 毫升裂解液（Reagent B） 9． 涡旋震荡 5 秒，充分混匀 10．即刻放进预冷的 DOUNCE 匀浆器 11．置于冰槽里用匀浆棒匀化组织（约 80 下）（注意：未见组织块） 12．将所有组织匀浆物移入 15 毫升锥形离心管 13．放进 4℃台式离心机离心 10 分钟，速度为 10000g 14．小心移出上清液（注意：不要触碰沉淀物）到另一个新的预冷的 15 毫升锥形离心管 15．放进－70℃冰箱里备用或放进冰槽里继续后续操作 16．移取 xx 毫升分离液（Reagent C）到 8 毫升超速离心管 17．小心沿着管壁，在分离液（Reagent C）上面，一滴一滴加入 4 毫升上述获得的后线粒体组分 （注意：
大鼠单核细胞分离1083-1
大鼠单核细胞分离（HISTOPAQUE 1083说明书）一、仪器和试剂：RPMI 1640或PBS缓冲液，离心管（15ml、50ml），移液管，离心机（带转桶可提供400-1000×g的相对离心力）大鼠单核细胞分离液体（sigma LTS1083-1）二、实验原理将抗凝血置于HISTOPAQUE 1083上层。
在离心过程中，多聚糖引起红细胞聚集并迅速沉降；然而，淋巴细胞和其它单核细胞保留在血浆—HISTOPAQUE 1083分界处。
红细胞聚集成团沉至离心管底。
由于粒细胞密度升高，它们并不会和单核细胞混在一起而是向离心管底移动。
大多数不相干的血小板在冲洗过程中被低速离心清除掉了。
三、实验步骤1．向离心管中加1083-1单核细胞分离液3ml离心液—15ml离心管；15ml离心液—50ml离心管2.小心将全血置于1083-1离心液表面上3ml全血—15ml离心管；15ml全血—50ml离心管3.室温下以400×g的相对离心力离心30min。
须关闭离心机的制动开关。
低温离心可能会导致细胞聚集或复苏延迟。
4.离心结束后，小心吸去最上层液体至含单核细胞的不透明层2-3mm。
弃掉吸取的最上层液体。
5.用吸管小心将单核细胞层吸取并转移到15ml圆锥形离心管中。
6.加等渗PBS溶液或细胞培养液（无血清）至离心管中，10ml—15ml离心管 / 30ml—50ml离心管。
上下翻转离心管摇匀。
7.以250×g的相对离心力离心10min。
吸弃上清液。
8.用0.5ml等渗PBS溶液或细胞培养液，重新悬浮离心后的细胞。
之后添加适量等渗PBS溶液或细胞培养液，4.5ml—15ml离心管 / 14.5ml—50ml离心管。
9.以250×g的相对离心力离心10min。
吸弃上清液。
10.重复第8-9步。
基本上需要冲洗2-3遍便能将单核细胞中的残留分离液洗净。
最后一遍冲洗完成后，以等渗PBS溶液或细胞培养液重新悬浮细胞，0.5ml—15ml离心管 /1.5ml—50ml离心管。
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动物脾脏单个核细胞分离液试剂盒使用说明
规格：3×200mL/kit
保存：动物脾脏单个核细胞分离液试剂盒对光敏感，应该室温避光储存，保质期2年。
无菌开封后，保存于室温。
组成：
各种动物脾脏单个核细胞分离液200mL
全血及组织稀释液200mL
细胞洗涤液200mL
单个核细胞分离方法
1.制备脾脏的单细胞悬液。
2.取一支适当的离心管，加入与脾脏单细胞悬液等量的分离液（分离液最少不得少于3mL，
总体积不能超过离心管的三分之二，否则会影响分离效果）。
3.小心吸取单细胞悬液加于分离液液面上，注意保持两液面界面清晰。
（可以使用巴氏德
吸管吸取单细胞悬液，然后小心的平铺于分离液上，因为两者的密度差异，将形成明显的分层界面。
）
4.室温，500~900g，离心20~30min。
（根据脾脏单细胞悬液的量确定离心条件，单细胞悬
液量越大，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件可以自行摸索，以达到最佳分离效果）。
5.离心后，此时离心管中由上至下细胞分四层。
第一层为稀释液层；第二层为环状乳白色
单个核细胞层；第三层为透明分离液层；第四层为红细胞层。
6.用吸管小心吸取第二层环状乳白色单个核细胞层至另一洁净的15mL离心管中，向离心管
中加入10ml细胞洗涤液洗涤白膜层细胞，250g，离心10min。
7.弃上清，5mL的PBS或细胞清洗液重悬细胞，250g，离心10min。
8.重复步骤7
9.弃上清，细胞重悬备用。
分层示意图
脾脏单细胞悬液的制备方法
脾脏研磨的方法：
1.无菌条件下摘取脾脏，撕去脾脏被膜，用眼科剪将脾脏剪成小块。
2.将尼龙筛网或者是细胞过滤筛放置于平皿上，加入少量全血及组织稀释液（保证脾脏及
获得的细胞处于液体环境中）。
3.将脾脏放置于筛网上，使用注射器活塞或者是无菌镊子来研磨脾脏（尽量控制研磨力度，
保持筛网悬空，避免在皿底上直接研磨而造成大批细胞死亡）
4.研磨完全后使用全血及组织稀释液冲洗筛网，收集细胞悬液，再经滤网过滤。
注：
A.可用酶消化法，使用胶原酶对脾脏组织进行消化，得到单细胞悬液。
B.如果最终得到的细胞需要培养，那全过程所需试剂与器材均要求无菌。
C.根据脾脏的体积控制单细胞悬液的浓度在108~109个/mL。
注意事项：
A.开封前颠倒混匀，本分离液为无菌产品，为延长分离液保存时间，请在无菌条件下启封，
避免微生物污染。
B.分离液使用时应始终保持室温（18℃~25℃），如室内温度较低，可将分离液预热。
4℃
或者是温度较低的条件下离心，可能会导致白膜层中红细胞污染加重。
C.待分离的组织要求新鲜，避免冷冻和冷藏。
D.部分塑料制品（如聚苯乙烯）因其带有的静电作用，可能会导致细胞挂壁影响分离效果。
E.如果要进一步对分离的细胞进行培养，那在制备单细胞悬液和分离过程中，注意无菌操
作，避免微生物污染。
参考文献：
1.Boyum A.Separation of leucocytes from blood and bone marrow.Scand J Clin Lab
Invest Suppl.1968;97:7.
2.Ting A,Morris PJ.A technique for lymphocyte preparation from stored
heparinized blood.Vox Sang.1971Jun;20(6):561-3.
3.Boyum A.Separation of Blood Leucocytes,Granulocytes and Lymphocytes Tissue
Antigens.1974;4(4):269-74.
4.Weisbart RH,Webb WF,Bluestone R,Goldberg LS.
A simplified method for lymphocyte separation.Vox Sang.1972;23(5):
478-80.
相关试剂：
200目细胞过滤筛YA0949
200目尼龙筛网YA0961
全血及组织稀释液R1017
一次性巴氏德吸管YA0902
细胞洗涤液R1018
各种其他动物及其他细胞的分离液及试剂盒。