免疫共沉淀原理及实验方法

合集下载

免疫共沉淀试验原理及方法

免疫共沉淀试验原理及方法

免疫共沉淀试验原理及方法免疫共沉淀试验基于抗体-抗原相互作用的原理进行。

首先,通过对目标蛋白质进行免疫反应,用特异性的抗体与目标蛋白质形成抗原-抗体复合物。

然后,将抗体与目标蛋白质的复合物与磷酸化的蛋白质、蛋白质复合物或其他特定蛋白质结合,形成更大的复合物。

最后,通过沉淀这些复合物,从而使复合物分离于整个细胞提取物中。

1.固相免疫共沉淀:该方法使用固相支持材料,如蛋白A或蛋白G结合的琼脂糖磁珠或亲和树脂柱。

首先,将目标蛋白质与特异性抗体免疫反应,然后将抗体与蛋白A或蛋白G结合的支持材料结合。

接下来,将细胞提取物与抗体-蛋白质复合物和支持材料一起孵育。

随后,用磁力或离心将复合物分离,并通过洗涤去除非特异性结合的蛋白质。

最后,用洗涤液溶解复合物,并通过离心或磁力分离来收集目标蛋白质及其相互作用伴侣。

2.液相免疫共沉淀:该方法使用溶液中的特异性抗体与目标蛋白质进行免疫反应。

首先,将目标蛋白质与特异性抗体免疫反应,然后添加蛋白A或蛋白G结合的琼脂糖磁珠或亲和树脂,形成抗体-蛋白质复合物。

接下来,将细胞提取物加入到抗体-蛋白质复合物中,使复合物与目标蛋白质的相互作用伴侣结合。

随后,用磁力或离心将复合物分离,并通过洗涤去除非特异性结合的蛋白质。

最后,用洗涤液溶解复合物,并通过离心或磁力分离来收集目标蛋白质及其相互作用伴侣。

1.直接鉴定特定蛋白质的相互作用伴侣。

2.可以识别特定蛋白质的翻译后修饰形式,如磷酸化、乙酰化等。

3.可以从复杂的细胞提取物中寻找目标蛋白质的结合伴侣。

然而,免疫共沉淀试验也存在一些局限性,包括:1.需要具有较高特异性的抗体。

2.可能产生伪阳性结果,特别是在存在非特异性结合的情况下。

3.难以从细胞提取物中完全分离复合物。

总结:免疫共沉淀试验是一种常用的实验技术,可以用于寻找细胞中特定蛋白质的相互作用伴侣或靶向蛋白的修饰形式。

根据不同的实验需求,可以选择固相免疫共沉淀或液相免疫共沉淀方法进行。

免疫共沉淀实验原理及详细步骤

免疫共沉淀实验原理及详细步骤

免疫共沉淀实验原理及详细步骤免疫沉淀(immunoprecipitation,简称IP)是一种广泛应用于生物学和生物化学研究中的实验方法,用于检测和分离复合物中的特定蛋白质。

它结合了特异性抗体与蛋白质-抗体相互作用的原理,利用抗体选择性地沉淀出目标蛋白质,并与其相关的复合物。

本文将详细介绍免疫共沉淀实验的原理及步骤。

免疫共沉淀实验利用抗体与目标蛋白质相互结合的特异性,通过该特异性结合,将目标蛋白质及其相关的复合物选择性地沉淀出来。

该实验主要包括以下几个步骤:1.抗体与抗原的结合:在实验中,需要选择特异性的抗体与目标蛋白质结合。

2.抗体与蛋白质-抗体复合物的沉淀:将抗体结合的蛋白质与复合物从样本中沉淀。

3.洗涤:洗涤沉淀的复合物,去除非特异性结合的蛋白质和杂质。

4.释放目标蛋白质:将目标蛋白质从抗体中释放出来,以进行后续的下游分析。

1.细胞预处理:在进行免疫共沉淀实验之前,需要将细胞或组织进行必要的处理,例如刺激剂的刺激或疾病模型的建立。

可以选择不同条件下的实验处理组和对照组进行对比。

同时,还需要对实验样本进行适当的裂解,以确保目标蛋白质的充分释放。

2.抗体选择:选择特异性的抗体与目标蛋白质结合。

抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体,也可以是特异性抗体。

此外,需要选择适当的免疫沉淀试剂盒,确保实验的准确性。

3.抗原结合:将适当的抗体与目标蛋白质结合,形成抗原-抗体复合物。

这一步骤可以在实验前进行或将其加入样本中进行。

为确保抗原-抗体结合的充分性,可以进行一定的反应时间和反应温度。

4.免疫沉淀:将抗原-抗体复合物选择性地沉淀出来。

可以采用多种方法进行免疫沉淀,例如蛋白A/G琼脂糖,特效筛选柱等。

通过离心或过滤等方式从沉淀中收集复合物。

5.洗涤:洗涤步骤用于去除非特异性结合的蛋白质和杂质。

洗涤液的组成可以根据实验需要进行调整。

洗涤步骤需要进行多次,确保洗涤得到干净的复合物。

6.释放目标蛋白质:将目标蛋白质从抗体中释放出来,以进行后续的下游分析。

免疫共沉淀实验原理

免疫共沉淀实验原理

免疫共沉淀实验原理免疫共沉淀是一种常用的实验方法,用于研究蛋白质间的相互作用。

其原理是利用特异性抗体结合目标蛋白质,将其与抗体一起沉淀下来,从而富集目标蛋白质及其相互作用的蛋白质分子。

这种实验方法常用于研究蛋白质的定位、亚细胞定位、蛋白质复合物的组成以及蛋白质间的相互作用等。

下面将详细介绍免疫共沉淀实验的原理及步骤。

免疫共沉淀实验的原理可以简单描述为以下几个步骤:1. 抗体结合:首先,选择特异性抗体,该抗体能够与目标蛋白质结合。

抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体,其选择应根据实验需求来确定。

将抗体与目标蛋白质结合形成免疫复合物。

2. 免疫复合物的富集:将免疫复合物与磁珠或琼脂糖等固相载体结合,形成免疫磁珠或免疫琼脂糖。

这些固相载体具有良好的亲和力,能够高效地捕获免疫复合物。

3. 样品处理:将待测样品加入到含有免疫磁珠或免疫琼脂糖的溶液中,使样品中的目标蛋白质与免疫复合物结合。

同时,对样品进行适当的处理,如细胞裂解、蛋白质交联等,以保持样品的完整性并增加结合效率。

4. 免疫共沉淀:将含有样品和免疫复合物的溶液进行充分混合,并进行一定时间的孵育,使目标蛋白质与免疫磁珠或免疫琼脂糖结合。

通过外加磁场或离心的方式,将免疫磁珠沉淀下来,从而富集目标蛋白质及其相互作用的蛋白质分子。

5. 洗涤:对沉淀下来的免疫磁珠或免疫琼脂糖进行洗涤,以去除非特异性结合的蛋白质和其他杂质。

洗涤的条件需要根据实验需求进行优化,通常包括洗涤缓冲液的浓度、洗涤次数和洗涤时间等。

6. 析出:将洗涤后的免疫磁珠或免疫琼脂糖进行脱盐或去除洗涤缓冲液,最终得到含有富集的目标蛋白质及其相互作用蛋白质的沉淀物。

7. 分析:对沉淀物进行进一步的分析,如Western blotting、质谱分析、原位杂交等,以研究蛋白质的相互作用关系、定位及功能等。

总结起来,免疫共沉淀实验是一种通过特异性抗体结合目标蛋白质,将其与抗体一起沉淀下来,从而富集目标蛋白质及其相互作用蛋白质的实验方法。

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤
免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)原理:是以抗体和抗原之间的专一性作用为基础的用于研究蛋白质相互作用的经典方法。

是确定两种蛋白质在完整细胞内生理性相互作用的有效方法。

免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)步骤:
✧配制100 ml 的modified RIPA buffe:
✧称取790 mg 的Tris-Base,加到75 ml 去离子水中,加入900
mg 的NaCl,搅拌,直到全部溶解,用HCl 调节PH 值到7.4;
✧加10 ml 10% 的NP-40;
✧加2.5 ml 10% 的去氧胆酸钠,搅拌,直到溶液澄清;
✧加1 ml 100 mM 的EDTA,用量筒定容到100 ml,2~8 ℃保
存;
✧理论上,蛋白酶和磷酸酯酶抑制剂应该在使用当天同时加入(抑
蛋白酶肽,亮抑酶肽, 胃蛋白酶抑制剂各100 μl;PMSF,Na3VO4,NaF 各500 μl),但是PMSF 在水溶液中很不稳定,
30 分钟就会降解一半,所以PMSF 应该在使用前现加,其他抑
制剂成分可以在水溶液中稳定 5 天。

免疫共沉淀实验原理及方法

免疫共沉淀实验原理及方法

免疫共沉淀实验原理及方法实验原理:实验步骤:1.细胞培养和样品收集:将需要进行免疫共沉淀的细胞株培养至适当的密度,接种到培养皿中。

细胞生长至适当的程度后,进行诱导或处理,然后收集样品。

2.细胞裂解:将收集到的细胞样品进行裂解,以释放细胞内的蛋白质。

可以使用裂解缓冲液来破坏细胞膜,并释放细胞内蛋白质。

可以添加蛋白酶抑制剂来防止蛋白质降解。

3.抗体预处理:将抗体与载体蛋白质混合,形成抗体-载体复合物。

载体蛋白质可使抗体更容易结合,并增强免疫共沉淀的效率。

4.抗体结合:将抗体-载体复合物加入到裂解的细胞提取物中,使其与靶蛋白相互结合。

对于一些低表达或低丰度的蛋白质,可以使用前处理来提高抗原的浓度。

5.免疫沉淀:将抗体结合的蛋白质复合物使用特定的技术进行沉淀,如使用蛋白A/G琼脂糖或磁珠沉淀。

可以通过离心或洗涤的方式分离复合物。

6.溶解复合物:将沉淀得到的复合物进行溶解,以获得蛋白质样品。

可以使用洗脱缓冲液将复合物从沉淀物上释放出来。

7. 分析复合物:使用各种方法对蛋白质样品进行分析,如SDS-、Western blotting、质谱分析等。

这些分析方法可以帮助鉴定免疫共沉淀物中的蛋白质。

1.简便快速:相对于其他的蛋白质相互作用检测方法,免疫共沉淀方法的操作相对简单,减少了操作步骤和时间。

2.高特异性:使用抗体作为识别蛋白质的工具,具有高度特异性,可以用于检测特定的蛋白质交互作用。

3.可定量性:免疫共沉淀方法可以通过改变沉淀条件来进行定量研究,如优化抗体和载体蛋白质的浓度,改变洗涤条件等。

4.多样性:免疫共沉淀可以与其他技术(如质谱分析等)相互结合使用,从而得到更加全面的分析结果。

尽管免疫共沉淀是一种常用的蛋白质相互作用研究方法,但也存在一些限制,如需要特异性较好的抗体、样品准备以及沉淀物的纯化等。

因此,在使用免疫共沉淀方法时,需要根据具体的研究目的和实验条件进行合理的设计和操作,以获得可靠和有意义的结果。

免疫共沉淀原理及实验方法

免疫共沉淀原理及实验方法

免疫共沉淀原理及实验方法免疫共沉淀是一种通过使用抗体分子来使特定蛋白质复合物沉淀下来的方法。

在这个过程中,抗体与蛋白质复合物结合,形成抗原-抗体共沉淀复合物。

这种方法可以用于研究蛋白质间的相互作用、检测特定蛋白质的存在以及分离蛋白质复合物等。

1.细胞裂解:将目标细胞或组织加入裂解缓冲液中,破坏细胞膜,使蛋白质释放到溶液中。

2.抗体结合:将特异性抗体加入裂解液中,与目标蛋白质结合。

3.免疫沉淀:将抗原-抗体复合物与免疫沉淀剂(如蛋白A/G琼脂糖或蛋白A/G磁珠)结合,形成免疫复合物。

4.洗涤:通过多次洗涤步骤去除非特异性结合物质,以提高免疫复合物的纯度。

5.去除抗原-抗体结合:使用酸性溶液或高盐浓度缓冲液等方式解离免疫复合物,分离出目标蛋白质。

6. 分析:通过Western blot、免疫印迹、质谱等手段对分离出的蛋白质进行分析。

免疫共沉淀的原理是利用抗体与特定目标蛋白质的结合来将其沉淀下来。

抗体通常是由动物制备得到的,可以选择单克隆抗体或多克隆抗体。

在实验中,抗体可以特异性地结合到目标蛋白质的表位上,形成稳定的免疫复合物。

随后,通过与免疫沉淀剂结合,可以使免疫复合物沉淀下来。

免疫共沉淀这种实验方法在生物医学研究中具有广泛的应用,例如检测蛋白质间的相互作用、鉴定细胞中的蛋白质复合物、研究信号转导通路等。

通过免疫共沉淀可以揭示蛋白质的功能和相互作用网络,深入理解生物学过程中蛋白质的功能和调控机制。

然而,免疫共沉淀实验也存在一些局限性。

首先,抗体需具有高度的特异性和亲合力,以保证免疫复合物的选择性。

其次,免疫共沉淀依赖于抗体与目标蛋白质的免疫反应,在一些情况下可能出现低表达的蛋白质无法被充分沉淀的问题。

此外,非特异性结合和高背景信号也会影响实验结果的准确性。

综上所述,免疫共沉淀是一种基于抗体-抗原相互作用原理的实验方法,可用于研究蛋白质间的相互作用和分离特定蛋白质复合物等。

这种方法广泛应用于生物医学研究领域,对于揭示蛋白质功能和调控机制具有重要意义。

免疫共沉淀实验原理及方法

免疫共沉淀实验原理及方法

免疫共沉淀实验原理及方法免疫共沉淀(CoIP)概述及原理免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,CoIP)是研究蛋白-蛋白间相互作用的经典方法,属于免疫沉淀技术的一类,常被用于鉴定特定蛋白复合物的中未知蛋白组分。

免疫共沉淀的设计理念是,假设一种已知蛋白是某个大的蛋白复合物的组成成员,那么利用这种蛋白的特异性抗体,就可能将整个蛋白复合物从溶液中“拉”下来(常说的“pull-down”),进而可以用于鉴定这个蛋白复合物中的其他未知成员。

免疫共沉淀的特点可以概括为两点,第一是天然状态,第二是蛋白复合物。

免疫共沉淀的优势:与其他研究蛋白质相互作用技术(如GST-Pull down、酵母双杂交等)相比,免疫共沉淀鉴定的相互作用蛋白是在细胞内与目的蛋白发生的天然结合,避免了人为的影响,因此符合体内实际情况,得到的蛋白可信度更高。

免疫共沉淀的局限性和注意事项:1. 免疫共沉淀是建立在蛋白复合物成员间彼此紧密结合的基础上,意味着松散结合的蛋白组分很可能检测不到;2. 由于蛋白质形成复合物以后,某些表位就会被掩盖,因此可能导致使用某一种pull-down抗体,无论怎么增加抗体浓度,也极少能将不到一半的目标蛋白复合物沉淀出来,如有必要最好使用多种不同抗体分别进行CoIP;3. 由于检测的是天然状态,因此在不同的时间和不同的处理下,CoIP拉下来的蛋白复合物都可能是不同的,当然随着实验次数的增加,得到的蛋白复合物成员也会越来越庞大;4. 如果使用Western Blot的方法检测的蛋白复合物中的目标蛋白,则需要在试验前进行预测,具有一定的冒险性;当然如果将蛋白复合物直接进行质谱分析就不存在上述问题,但需要得到较高纯度和浓度的蛋白复合物样品也非易事,并且成本较高;5. CoIP鉴定得到的蛋白间相互作用可能是直接作用也可能是间接作用,进一步区分还需要进行GST-Pull down等实验检测;6. 为了保证CoIP实验的可靠性和严谨性,需要使用复合物的不同成员分别独立进行CoIP实验,并且结果应该能够彼此验证,因为原则上使用复合物的任一成员进行CoIP都会得到其他所有成员[1]免疫共沉淀的一般操作流程(中英文对照):1.用预冷的PBS洗涤细胞两次;Carefully wash cultured cells with pre-chilled PBS for 2 times.2. 加入预冷的RIPA裂解缓冲液(107细胞加入1ml);Add in cold RIPA lysis buffer (1ml for 107cells).3. 用预冷的细胞刮将细胞从培养介质上刮离,并转移到干净的1.5EP管中。

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤免疫共沉淀(immunoprecipitation)是一种用于分离和富集特定蛋白质的常见实验技术。

它利用抗体的特异性和高亲和力,将目标蛋白与其所结合的抗体共同沉淀下来。

该技术常用于研究蛋白质-蛋白质相互作用、鉴定修饰的蛋白质以及分析蛋白质的上调或下调。

免疫共沉淀的原理基于抗体与抗原之间的特异结合。

通常,首先需要用目标蛋白免疫动物制备抗体,或者使用商业提供的针对该目标蛋白的抗体。

然后,抗体与经过适当处理的细胞或组织提取物一起反应,使抗体能够与目标蛋白结合。

接下来,将抗体和目标蛋白的免疫复合物与可沉淀的载体(如蛋白A或蛋白G)结合,形成稳定的复合物。

最后,通过沉淀,将复合物从其他非特异性蛋白质中分离出来。

1.细胞或组织的处理:将目标细胞或组织用合适的缓冲液裂解,以释放细胞内的蛋白质。

裂解液添加蛋白酶抑制剂和磷酸酯酶抑制剂,以避免蛋白质降解。

2.抗体与样品的孵育:将抗体加入到裂解液中,使抗体与目标蛋白相互结合。

孵育时间和温度根据具体实验需要而定。

3. 添加载体:添加蛋白A或蛋白G等具有高亲和力的载体,以结合与抗体结合的蛋白质。

蛋白A主要结合IgG的Fab区域,而蛋白G则能结合多种类别的抗体。

4.免疫复合物的沉淀:通过加入沉淀剂(比如蛋白质A/A洗涤缓冲液、蛋白G洗涤缓冲液等)将免疫复合物与载体结合,使其沉淀下来。

通常,将混合物在低温条件下(4℃)离心沉淀,使复合物完全分离。

5.沉淀物的洗涤:将沉淀物洗涤,以去除非特异性的蛋白质和污染物。

洗涤使用的缓冲液通常包括含盐的洗涤缓冲液。

6.沉淀物的溶解:将沉淀物溶解在适当的缓冲液中,以获得目标蛋白。

根据后续的实验需求,选择适当的缓冲液进行溶解。

在免疫共沉淀实验过程中,为了增加结果的可靠性,常常需要进行对照组实验。

控制实验组通常为使用无关的非特异性抗体和样品进行操作,以检验沉淀结果是否为特异性。

总结来说,免疫共沉淀技术是一种有效的蛋白质识别和富集方法。

COIP免疫共沉淀实验原理

COIP免疫共沉淀实验原理

COIP免疫共沉淀实验原理COIP(Co-immunoprecipitation)又称为共沉淀法,是一种常用的蛋白质相互作用研究方法。

该方法通过特异性抗体结合可以与靶蛋白相互作用的蛋白进行共沉淀,进而检测目标蛋白与其相互作用蛋白的存在。

COIP 方法可以用于研究蛋白质相互作用的结构、功能和动力学等方面。

COIP方法的原理可以总结为以下几个步骤:1.细胞裂解:首先需要获取含有目标蛋白的样品,可以是细胞裂解液或组织提取物。

样品需要经过适当的处理,最常用的是利用磷酸缓冲液含有盐洗涤细胞,从而打破细胞膜,使蛋白质裂解。

2.共沉淀试剂的制备:共沉淀试剂通常由特异性抗体与载体蛋白(如蛋白A/G或青霉素酰胺等)结合而成。

特异性抗体用于识别目标蛋白,载体蛋白则用于固定和沉淀抗体-抗原复合物。

载体蛋白通常具有亲和力,能够与抗体结合形成稳定的复合物。

3.共沉淀试剂的结合:将共沉淀试剂加入细胞裂解液中,使其与目标蛋白结合形成复合物。

目标蛋白与抗体结合后,与载体蛋白的特异性结合使复合物能够稳定。

4.免疫共沉淀:此步骤是COIP方法的核心,其目的是将目标蛋白及其相关蛋白质结合的复合物从细胞裂解液中沉淀下来。

常用的方法有加入蛋白A/G琼脂糖磁珠或微珠,使其与抗体-抗原复合物相互结合形成稳定的复合物,然后通过磁力或离心沉淀下来。

此步骤通常需要进行数次洗涤以去除非特异性结合的蛋白质。

5. 分离和分析:最后将COIP得到的蛋白复合物溶解或电泳分离,然后通过Western blot等方法检测目标蛋白及其相互作用的蛋白质。

总的来说,COIP(共沉淀法)通过特异性抗体和载体蛋白的结合形成稳定的复合物,实现了目标蛋白及其相互作用蛋白的共沉淀。

通过COIP 方法可以探究蛋白质相互作用的结构、功能和动力学等方面的研究。

免疫共沉淀原理图解

免疫共沉淀原理图解

免疫共沉淀原理图解免疫共沉淀(immunoprecipitation,IP)是一种用于分离和富集特定蛋白质的技术。

基于特异性抗体与目标蛋白质的结合,IP可以用于检测蛋白质-蛋白质和蛋白质-核酸相互作用、蛋白质修饰和定位等方面的研究。

下面将介绍免疫共沉淀的原理和流程。

原理:免疫共沉淀是通过特异性抗体与目标蛋白质的结合,来沉淀出目标蛋白质及其相关蛋白质、DNA或RNA等分子的方法。

具体来说,IP通过以下步骤实现:1. 将细胞裂解,使蛋白质溶于缓冲液中。

2. 加入特异性抗体,并使其与目标蛋白质结合。

3. 加入亲和素(一种与抗体结合的蛋白质),再将亲和素固定在磁珠上。

4. 加入磁珠后,亲和素与抗体结合,并沉淀下含有目标蛋白质及其相关分子的复合物。

5. 用洗涤缓冲液洗涤磁珠,并用洗涤液去除非特异性结合的蛋白质。

6. 用洗涤缓冲液或热水溶液将目标蛋白质及其相关分子从磁珠上去除。

7. 最后,用Western blot或其他方法检测目标蛋白质及其相关分子。

流程:IP的具体实验流程如下:1. 细胞溶解:将含有目标蛋白质的细胞或组织裂解并使蛋白质溶于缓冲液中。

2. 抗体结合:加入经过验证的特异性抗体,使其与目标蛋白质结合。

3. 亲和素结合:加入亲和素,使其与抗体结合,并将其固定到具有磁性的磁珠上。

4. 免疫共沉淀:将磁珠加入到蛋白质混合物中,使亲和素与抗体结合并沉淀出目标蛋白质及其相关分子。

5. 洗涤:用洗涤缓冲液将非特异性结合的蛋白质去除,保留目标蛋白质及其相关分子。

6. 去除磁性珠:用洗涤缓冲液或热水溶液将目标蛋白质及其相关分子从磁珠上去除。

7. 分析:用Western blot、质谱等多种技术检测目标蛋白质及其相关分子。

总结:免疫共沉淀是一种非常有用的技术,可以帮助研究者了解蛋白质相互作用、蛋白质修饰及其定位等方面的信息。

虽然技术流程复杂,但只要按照正确的方法进行操作,就能够产生非常有意义的结果。

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤免疫沉淀(Immunoprecipitation, IP)原理IP是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“protein A/G"特异性地结合到抗体(免疫球蛋白)的FC片段的现象开发出来的方法。

目前多用protein A/G预先结合在argarose beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads上的prorein A/G就能达到吸附抗原的目的。

通过低速离心,可以从含有目的抗原的溶液中将目的抗原与其它抗原分离。

免疫沉淀实验的操作步骤比较多,同时由于在非变性条件下进行实验,所以要得到一个完美的实验结果,不仅需要高质量的抗体,同时对免疫沉淀体系也需要有严格的控制指标。

免疫沉淀实验从:蛋白样品处理;抗体-agarose beads孵育;抗体-agarose beads复合物洗涤到最后的鉴定,每步都非常关键,需要严格控制实验流程中每个关键步骤的质量,才能最终达到你的实验目的。

IP实验步骤基本实验步骤(1)收获细胞,加入适量细胞IP裂解缓冲液(含蛋白酶抑制剂),冰上或者4℃裂解30min, 12,000g 离心30 min后取上清;(2) 取少量裂解液以备Western blot分析,剩余裂解液将1μg相应的抗体和10-50 μl protein A/G-beads加入到细胞裂解液,4°C缓慢摇晃孵育过夜;(3)免疫沉淀反应后,在4°C 以3,000 g速度离心5 min,将protein A/G-beads离心至管底;将上清小心吸去,protein A/G-beads用1ml裂解缓冲液洗3-4次;最后加入15μl的2×SDS 加样缓冲液,沸水煮10分钟;(4)SDS-PAGE, Western blotting或进行质谱分析。

一、样品处理:免疫沉淀实验成功与否,第一步处理样品非常关键。

免疫沉淀实验本质上是处于天然构象状态的抗原和抗体之间的反应,而样品处理的质量决定了抗原抗体反应中的抗原的质量,浓度以及抗原是否处于天然构象状态。

免疫沉淀与免疫共沉淀原理及方法

免疫沉淀与免疫共沉淀原理及方法

免疫沉淀与免疫共沉淀原理及方法免疫沉淀和免疫共沉淀是一种常用的实验技术,用于分离和富集特定的抗原-抗体复合物。

这两种技术在生物医学研究中广泛应用,有助于揭示蛋白质的相互作用、分子机制以及疾病的发生和发展过程。

下面将详细介绍免疫沉淀和免疫共沉淀的原理和方法。

免疫沉淀是利用抗体的高度特异性与需要研究的抗原结合,然后通过添加固相或固体材料,使抗原-抗体复合物沉淀。

这样可以将目标蛋白质从混合溶液中分离出来,以便于后续的分析和检测。

免疫沉淀的原理可以分为两个步骤:第一步是抗体与目标抗原的结合,第二步是利用固相或固体材料将抗原-抗体复合物沉淀。

免疫沉淀的方法通常包括液相免疫沉淀和固相免疫沉淀两种。

液相免疫沉淀方法是将抗体与需要研究的抗原混合,形成抗原-抗体复合物。

然后通过添加沉淀剂如聚乙二醇(PEG),将复合物沉淀下来。

沉淀后,可以通过离心将沉淀物与上清液分离。

固相免疫沉淀方法则是在固相材料如蛋白A/G琼脂糖或蛋白A/G磁珠上固定抗体,然后将抗原样品添加到固相材料中,形成抗原-抗体复合物。

复合物通过洗涤去除非特异性结合的物质,然后通过洗脱或酸性条件解离,将目标蛋白质分离出来。

免疫共沉淀是通过利用亲和层析柱或免疫磁珠结合多个抗体分离多个蛋白质复合物的技术。

与免疫沉淀不同的是,免疫共沉淀使用多个抗体同时结合多个蛋白质,以便于研究这些蛋白质之间的相互作用。

免疫共沉淀的原理与免疫沉淀相似,不同之处在于使用了多个抗体来捕获目标蛋白质。

免疫共沉淀的方法通常包括两个步骤:首先,在样品中添加多个抗体,形成抗原-抗体复合物。

然后使用亲和层析柱或免疫磁珠,将复合物沉淀下来。

与免疫沉淀类似,免疫共沉淀也可以使用液相或固相方法进行。

但是,由于需要结合多个抗体,免疫共沉淀的操作更加复杂。

总结起来,免疫沉淀和免疫共沉淀是一种基于抗体特异性的实验技术,用于富集和分离特定的抗原-抗体复合物。

免疫沉淀主要用于从混合溶液中分离目标蛋白质,免疫共沉淀则用于分离多个蛋白质复合物。

免疫共沉淀实验原理及方法

免疫共沉淀实验原理及方法

免疫共沉淀实验原理及方法免疫共沉淀实验(immunoprecipitation)是一种常用的分子生物学实验方法,用于检测免疫反应的可视化。

该实验基于免疫学反应的原理,通过特异性抗体与目标分子结合,将目标分子从复杂的混合物中沉淀出来,以便进一步分析。

免疫共沉淀实验的原理是基于抗体与抗原之间的特异性结合。

首先,需要选择与目标分子特异性结合的抗体,并对抗体进行纯化和标记,常用的标记物有酶、放射性同位素、荧光素等。

然后,将标记的抗体与样品中的目标分子充分混合,在适当的条件下,使抗体与目标分子发生结合反应。

接下来,通过添加沉淀剂,例如蛋白A/G磁珠、蛋白G琼脂糖或亲和素等,将抗体/目标复合物与其他组分一起沉淀下来。

通过离心将沉淀物分离出来,然后用缓冲液洗涤,以去除非特异性结合的物质。

最后,将洗涤后的沉淀物进行破碎、蛋白质酶解等处理,并使用电泳、免疫印迹、质谱等技术对目标分子进行分析和鉴定。

在免疫共沉淀实验中,关键步骤包括抗体的选择和标记、样品的制备与处理、抗体与目标分子的结合、沉淀物的分离与洗涤以及沉淀物的分析和鉴定。

1.抗体的选择和标记:选择特异性结合目标分子的抗体,并对抗体进行纯化和标记。

例如,使用蛋白A/G或蛋白G将抗体结合于磁珠或琼脂糖上,再通过标记物的共价偶联(如酶、放射性同位素、荧光素等)对抗体进行标记。

2.样品的制备与处理:根据实验要求,选择适当的样品组织或细胞,将其裂解并得到包含目标分子的混合物。

裂解缓冲液的组成需要根据目标分子的特性进行优化,以保持目标分子的稳定性和活性。

可以加入适量的蛋白酶抑制剂、磷酸酯酶抑制剂和甲基化酶抑制剂等保护目标分子。

3.抗体与目标分子的结合:将标记的抗体加入到样品中,与目标分子发生特异性结合反应。

可以在低温(4℃)下进行反应,以减少非特异性结合。

4.沉淀物的分离和洗涤:通过添加适当的沉淀剂,将抗体/目标复合物与其他组分一起沉淀下来。

常用的沉淀剂有通过蛋白A/G磁珠、蛋白G琼脂糖或亲和素等。

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤

免疫共沉淀原理及步骤免疫沉淀(Immunoprecipitation, IP)原理IP是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“protein A/G"特异性地结合到抗体(免疫球蛋白)的FC片段的现象开发出来的方法。

目前多用protein A/G预先结合在argarose beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads上的prorein A/G就能达到吸附抗原的目的。

通过低速离心,可以从含有目的抗原的溶液中将目的抗原与其它抗原分离。

免疫沉淀实验的操作步骤比较多,同时由于在非变性条件下进行实验,所以要得到一个完美的实验结果,不仅需要高质量的抗体,同时对免疫沉淀体系也需要有严格的控制指标。

免疫沉淀实验从:蛋白样品处理;抗体-agarose beads孵育;抗体-agarose beads复合物洗涤到最后的鉴定,每步都非常关键,需要严格控制实验流程中每个关键步骤的质量,才能最终达到你的实验目的。

IP实验步骤基本实验步骤(1)收获细胞,加入适量细胞IP裂解缓冲液(含蛋白酶抑制剂),冰上或者4℃裂解30min, 12,000g 离心30 min后取上清;(2) 取少量裂解液以备Western blot分析,剩余裂解液将1μg相应的抗体和10-50 μl protein A/G-beads加入到细胞裂解液,4°C缓慢摇晃孵育过夜;(3)免疫沉淀反应后,在4°C 以3,000 g速度离心5 min,将protein A/G-beads离心至管底;将上清小心吸去,protein A/G-beads用1ml裂解缓冲液洗3-4次;最后加入15μl的2×SDS 加样缓冲液,沸水煮10分钟;(4)SDS-PAGE, Western blotting或进行质谱分析。

一、样品处理:免疫沉淀实验成功与否,第一步处理样品非常关键。

免疫沉淀实验本质上是处于天然构象状态的抗原和抗体之间的反应,而样品处理的质量决定了抗原抗体反应中的抗原的质量,浓度以及抗原是否处于天然构象状态。

蛋白质免疫共沉淀实验

蛋白质免疫共沉淀实验

蛋白质免疫共沉淀实验引言:蛋白质免疫共沉淀实验是一种广泛应用于生物学研究中的实验技术,通过利用抗体的高度特异性与目标蛋白的结合,实现对目标蛋白的分离和鉴定,从而揭示蛋白质相互作用网络及其功能。

本文将详细介绍蛋白质免疫共沉淀实验的原理、步骤以及应用。

一、原理:蛋白质免疫共沉淀实验是基于免疫学原理开展的。

当外源抗原(目标蛋白)与机体内的免疫系统接触后,机体会产生相应的抗体。

这些抗体具有高度特异性,可以与目标蛋白结合形成免疫复合物。

在免疫共沉淀实验中,我们通过将抗体固定在固相上(如琼脂糖或磁珠),使其能够特异性地结合目标蛋白,然后通过洗涤等步骤将非特异性结合的蛋白去除,最终得到含有目标蛋白的复合物。

二、步骤:1. 提取蛋白:首先,从细胞或组织中提取含有目标蛋白的总蛋白。

可以使用细胞裂解液或特定的蛋白提取缓冲液进行细胞裂解,释放细胞内的蛋白。

2. 抗体固定:将抗体固定在固相上,如琼脂糖或磁珠。

这些固相材料具有大量的活性基团,可以与抗体发生共价结合,形成固定的抗体。

3. 免疫沉淀:将提取的总蛋白与固定的抗体进行免疫反应。

在适当的条件下,目标蛋白与固相上的抗体结合形成免疫复合物。

4. 洗涤:通过洗涤步骤去除非特异性结合的蛋白。

洗涤缓冲液的成分和洗涤次数需要根据实验需要进行调整,以确保获得高纯度的复合物。

5. 蛋白析出:将洗涤后的固相与适当的缓冲液进行洗脱,将目标蛋白从抗体固定上释放下来。

6. 蛋白分析:经过免疫共沉淀实验后,可以使用Western blot、质谱等技术对蛋白进行进一步鉴定和分析,以验证目标蛋白的特异性。

三、应用:蛋白质免疫共沉淀实验在生物学研究中具有广泛的应用。

以下是几个常见的应用领域:1. 蛋白质相互作用:通过免疫共沉淀实验可以鉴定蛋白与蛋白之间的相互作用关系,揭示蛋白质相互作用网络及其功能。

2. 信号转导:通过免疫共沉淀实验可以鉴定信号通路中的关键蛋白,深入了解信号传导机制。

3. 疾病机制:通过免疫共沉淀实验可以鉴定与疾病相关的蛋白质,揭示疾病的分子机制,为疾病的诊断和治疗提供新的靶点。

免疫共沉淀原理及实验方法

免疫共沉淀原理及实验方法

免疫共沉淀原理及实验方法1.利用抗体的高度特异性与抗原结合,将抗原特异性地富集。

2.抗原-抗体复合物与磁珠或珠标记结合,通过磁力或离心作用将复合物分离沉淀下来。

1.材料准备:准备所需的细胞或组织样品,以及抗体、磁珠或珠标记等实验试剂。

2.细胞或组织提取:将细胞或组织样品裂解,并用适当的缓冲液重悬,获得蛋白质提取液。

3.抗体结合:将蛋白质提取液与所需的抗体结合,形成抗原-抗体复合物。

4.沉淀:将磁珠或珠标记加入抗原-抗体复合物中,使其结合,再利用磁力或离心作用将复合物沉淀下来。

5.洗涤:用适当的缓冲液洗涤沉淀物,去除非特异性的蛋白质。

6. 分离与检测:将沉淀物分离出来并进行进一步的分析、检测,如Western blotting、质谱分析等。

1.高特异性:通过使用特异性抗体,可以选择性地沉淀目标蛋白质,减少非特异性的干扰。

2.高灵敏度:沉淀后的蛋白质富集度高,有利于进一步的鉴定和分析。

3.可用于分析蛋白质相互作用:通过免疫共沉淀技术,可以研究蛋白质与其他分子的相互作用关系,揭示机体内蛋白质功能和信号传导的调控机制。

免疫共沉淀技术在生命科学研究中扮演着重要的角色。

例如,通过免疫共沉淀可以研究蛋白质与DNA、RNA或其他蛋白质的相互作用关系,从而了解基因调控、信号传导和代谢途径等重要生物学过程的调控机制。

此外,免疫共沉淀还可以用于筛选靶蛋白质、鉴定疾病标志物,以及评估一些药物对蛋白质相互作用的影响。

综上所述,免疫共沉淀技术是一种重要的实验方法,通过利用特异性抗体与所要研究的蛋白质结合,实现蛋白质的富集、分离和鉴定。

该技术广泛应用于细胞生物学、分子生物学和疾病研究等领域,对揭示分子相互作用、信号传导机制和疾病发生发展具有重要意义。

核酸蛋白质的免疫共沉淀

核酸蛋白质的免疫共沉淀

核酸蛋白质的免疫共沉淀
核酸蛋白质的免疫共沉淀
免疫共沉淀是一种常用的实验技术,用于研究蛋白质与核酸之间的相互作用。

通过利用特异性抗体,可以将特定的蛋白质-核酸复合物沉淀下来,以便进一步分析其结构和功能。

以下是核酸蛋白质免疫共沉淀的基本原理和步骤:
1. 抗体选择:根据研究目的选择能够与目标蛋白质特异结合的抗体。

这些抗体通常是经过充分验证的,确保其高度特异性和亲和力。

2. 样品准备:将待研究的生物样品(如细胞提取物或组织溶液)进行预处理,以确保目标蛋白质和核酸的稳定性和完整性。

3. 免疫共沉淀反应:将抗体与样品中的目标蛋白质结合,形成抗体-蛋白质复合物。

这个过程通常在低温环境下进行,并可以通过交联剂等手段增强复合物的稳定性。

4. 共沉淀:将复合物与磁珠或琼脂糖糖珠等亲和基质结合,使复合
物以沉淀形式分离出来。

这些亲和基质通常具有与抗体Fc区域相互作用的亲和分子。

5. 洗脱和分析:通过洗脱步骤去除非特异性和背景物质,并收集纯化的复合物。

纯化的复合物可以进一步用于不同的分析技术,如免疫印迹、质谱分析或核酸测序等。

核酸蛋白质免疫共沉淀是一种有力的实验方法,可用于研究核酸与特定蛋白质的相互作用,从而深入了解其在细胞中的功能和调控机制。

正确的实验设计和严格的实验操作能够确保结果的可靠性和准确性,进一步促进科学研究的进展。

免疫共沉淀的原理及应用

免疫共沉淀的原理及应用

免疫共沉淀的原理及应用1. 原理免疫共沉淀是一种常用的生物化学技术,用于检测蛋白质与其他蛋白质或分子的相互作用关系。

其基本原理是利用特异性抗体与目标蛋白质结合,然后将抗体与结合的蛋白质一起沉淀下来。

通过这种方法可以分离出与目标蛋白质相互作用的其他蛋白质或分子。

免疫共沉淀的步骤如下:1.样品制备:将待测的细胞或组织样品裂解,释放出蛋白质。

2.抗体结合:加入特异性抗体,将其与目标蛋白质结合。

3.免疫共沉淀:加入沉淀剂,使抗体与结合的蛋白质形成复合物,并沉淀下来。

4.洗涤:洗涤复合物,去除非特异性结合的蛋白质。

5.蛋白质释放:将目标蛋白质与与之相互作用的蛋白质从复合物中释放出来。

6.分析:通过Western blot、质谱等技术对释放出的蛋白质进行分析。

2. 应用免疫共沉淀技术在生物学研究中有着广泛的应用。

以下是几个常见的应用领域:2.1 蛋白质相互作用网络研究免疫共沉淀技术可以用于分离和鉴定与目标蛋白质相互作用的其他蛋白质,从而帮助构建蛋白质相互作用网络。

这对于研究细胞信号传导、蛋白质功能和疾病机制等方面具有重要意义。

2.2 蛋白质纯化和鉴定免疫共沉淀技术可以用于纯化目标蛋白质,特别是与其他蛋白质相互作用的复合物。

通过免疫共沉淀,可以去除其他干扰蛋白质,从而提高目标蛋白质的纯度。

此外,通过鉴定与目标蛋白质共沉淀的蛋白质,可以帮助研究者了解目标蛋白质的生物功能。

2.3 药物研发免疫共沉淀技术可以用于筛选与目标蛋白质相互作用的化合物,作为药物研发的候选。

通过免疫共沉淀,可以鉴定与目标蛋白质相互作用的小分子化合物,并评估其对蛋白质功能的影响。

这为新药物的研发提供了重要的依据。

2.4 信号转导途径研究免疫共沉淀技术可以帮助研究细胞信号转导途径中关键蛋白质的相互作用关系。

通过分析与信号转导途径相关的蛋白质复合物,可以揭示信号传递的分子机制,为疾病诊断和治疗提供新的思路。

3. 结论免疫共沉淀技术是一项重要的生物化学技术,通过特异性抗体与目标蛋白质结合,可以分离和鉴定与目标蛋白质相互作用的其他蛋白质或分子。

免疫共沉淀实验原理及详细步骤

免疫共沉淀实验原理及详细步骤

免疫共沉淀实验原理及详细步骤免疫共沉淀是一种常用的实验方法,用于确定蛋白质与其他分子(例如核酸,蛋白质和脂类等)之间的相互作用关系。

该方法利用抗体与目标蛋白结合的特异性,将其与蛋白质一起纯化或检测。

下面将详细介绍免疫共沉淀的实验原理及步骤。

实验原理:在免疫共沉淀实验中,首先需要利用对目标蛋白高度特异性的抗体经抗原抵结的方式将目标蛋白与抗体结合。

然后将这种特异性抗体抵结的蛋白(复合体)与抗体相结合的固相支架接触,利用固相支架上特异抗体识别结合复合体,并通过洗脱和沉淀步骤将目标蛋白纯化或检测。

实验步骤:1.目标蛋白和抗原抵结:首先需要纯化目标蛋白或从合适的细胞系或动物模型中提取目标蛋白。

将目标蛋白与对其高度特异性的抗体一起孵育,使抗体能够特异性地与目标蛋白结合。

2.制备固相支架:在实验管中加入含有特异抗体的磁珠或琼脂糖等固相支架。

特异抗体可以是直接专一抗体,也可以是经过交联的间接专一抗体。

3.孵育复合体与固相支架:将目标蛋白与抗原抵结后的复合物加入到含有固相支架的实验管中,并进行充分的振荡孵育,使复合物能够与固相支架上的抗体结合。

4.洗脱非特异结合物质:通过连续洗涤步骤,将非特异性结合的杂质分子从固相支架上洗脱。

一般可以使用高盐浓度或化学物质(例如尿素或磺酸盐)来打破非特异结合以保留特异性结合复合体。

5.纯化或检测目标蛋白:通过洗脱步骤,从固相支架上将目标蛋白的特异性抵结复合物分离出来。

这些分离物可以用于进一步的纯化、分析或检测。

6.质谱分析或其他分析方法:将纯化后的目标蛋白样品进行质谱分析,确定目标蛋白自身和与其相互作用的分子。

总结:免疫共沉淀实验是一种利用抗体与目标蛋白之间的相互作用来纯化或检测蛋白质的方法。

这种方法可用于确定蛋白质与其他分子之间的相互作用关系,从而揭示生物学过程中的重要调节机制。

免疫共沉淀实验步骤繁多,需要注意实验操作的细节,但也是一个非常有价值和实用的技术。

免疫共沉淀实验原理及详细步骤

免疫共沉淀实验原理及详细步骤

免疫共沉淀实验原理及详细步骤研究蛋白之间相互作用必不可少的实验是免疫共沉淀(CoIP),常被用于鉴定特定蛋白复合物的中未知蛋白组分,因其具有可信度高的优点,在现在基础医学研究中广泛应用,本文将为您详解CoIP的实验原理和操作步骤,实验刚入门的同学必看哦。

一、实验目的1)检测两种目标蛋白是否在体内相互作用;2)找到与目标蛋白在体内存在相互作用的新蛋白。

运用这项技术,说不定你会有新的发现哦!二、实验原理CoIP是利用抗原蛋白和抗体的特异性结合、以及“Protein A/G"特异性地结合抗体(免疫球蛋白)FC段的现象开发出来的方法。

目前多用Protein A/G预先结合在Argarose Beads上,使之与含有抗原蛋白的溶液(如细胞裂解液)及抗体(诱饵蛋白X抗体)反应后,Beads上的Prorein A/G就能通过抗体吸附诱饵蛋白X,诱饵蛋白X通过与靶蛋白Y相互作用将其从细胞裂解液中分离出来,从而达到免疫共沉淀的目的。

三、实验材料细胞、RIPA缓冲液(RIPA buffer)、偶联有Protein A/G的免疫磁珠(Protein A/G Beads)、诱饵蛋白X与靶蛋白Y的抗体、IgG对照抗体、移液枪、4度冰箱以及低温离心机等。

四、实验步骤(不同实验室略有差异)1) 制备细胞裂解液:收集4x107细胞,用PBS洗涤后,加入1 ml RIPA buffer(含蛋白酶抑制剂),充分混匀,冰上裂解30 min;4℃,12000 rpm离心10 min,收集上清液。

2) 免疫共沉淀:在细胞裂解液中加入50 μl 50% Protein A/G Beads,4℃翻转混合孵育1 h进行预清除,离心后取0.5 ml上清液,加入3 μg诱饵蛋白X抗体,另取0.5 ml上清液加入等量同源的IgG抗体作为对照,4℃摇晃结合过夜;第二天每管加入50 μl 50% ProteinA/G Beads,4℃摇晃结合3 h;用RIPA Buffer洗涤5次,每次5 min。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

•免疫共沉淀原理及实验方法免疫共沉淀一原理:IP是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“prorein A"特异性地结合到免疫球蛋白的FC片段的现象活用开发出来的方法。

目前多用精制的prorein A预先结合固化在argarose的beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads上的prorein A就能吸附抗原达到精制的目的。

实验最需要注意点就是抗体的性质。

抗体不同和抗原结合能力也不同,免染能结合未必能用在IP反应。

建议仔细检查抗体的说明书。

特别是多抗的特异性是问题。

其次,要注意溶解抗原的缓冲液的性质。

多数的抗原是细胞构成的蛋白,特别是骨架蛋白,缓冲液必须要使其溶解。

为此,必须使用含有强界面活性剂的缓冲液,尽管它有可能影响一部分抗原抗体的结合。

另一面,如用弱界面活性剂溶解细胞,就不能充分溶解细胞蛋白。

即便溶解也产生与其它的蛋白结合的结果,抗原决定族被封闭,影响与抗体的结合,即使IP成功,也是很多蛋白与抗体共沉的悲惨结果。

再次,为防止蛋白的分解,修饰,溶解抗原的缓冲液必须加蛋白每抑制剂,低温下进行实验。

每次实验之前,首先考虑抗体/缓冲液的比例。

抗体过少就不能检出抗原,过多则就不能沉降在beads上,残存在上清。

缓冲剂太少则不能溶解抗原,过多则抗原被稀释。

欲速则不达,确定好比例很必要。

(待续)二准备:器械#微量高速冷冻离心机#移液枪#旋转盘#电泳设备#vortex震荡器#液氮及组织粉碎器#eppentube试剂#细胞或组织#蛋白定量kit#SDS电泳试剂#抗体(单抗时选择protein G,二抗选择抗鼠Ig兔血清)#PBS#NaN3#proteinA sapharose试剂配制抗原蛋白溶解缓冲液1.RIPA缓冲液 (最终浓度)1MTris-HCL(PH7.4) 5ml (10mM)5MNacl 15ml (150mM)0.5M EDTA(PH7.4) 5ml (5mM)20%TritonX-100 25ml (1%)10% DOC 50ml (1%)10%SDS 5ml ( o.1%)TLCK 18.5mg (0.1mM)TPCK 35mg (0.2mM)DDW 395mltoal 500ml另外,使用之前加1mMPMSF(PMSF溶在酒精,浓度100mM,-20度遮光保存。

注意不易溶于水)2.NP40 lysis 缓冲液1MTris-HCL(PH7.4) 5ml (10mM)5MNacl 15ml (150mM)0.5M EDTA(PH7.4) 5ml (5mM)20%NP40 25ml (1%)TLCK 18.5mg (0.1mM)TPCK 35mg (0.2mM)DDW 450mltoal 500ml使用前加1mM的PMSF注意点:*Tris缓冲剂PH随温度变化,高浓度盐酸滴定时发热,冷却后PH增高。

*反复使用PMSF要注意保管方法。

*1和2的缓冲剂的区别在于界面活性剂。

TritonX-100,NP40是非离子界面活性剂,作用温和,,DOC<SDS是离子性的强活性剂。

注意忘记加TritonX-100,只加DOC,SDS,可能使抗体完全失去活性。

1的蛋白变性效果强,可能损害抗原/抗体结合,2的作用温和,却可能造成抗原溶解不全。

*两方都有EDTA,对抗原而言,二价离子Mg,Ca等是必要的。

根据自己需要调节。

EDTA用NaOH滴定。

Protocol1 调制protein A sapharoseprotein A sapharose 5ml 溶于20ml含0.02%NaN3的PBS离心2000转2分,去上清,在沉淀加0.02%NaN3的PBS,离心后去上清,重复2次,最后沉淀加20ml含0.02%NaN3的PBS,冷藏保存用单抗做一抗时,把protein A sapharose先用抗鼠Ig兔血清处理(每50ulprotein A sapharose用1-5ul血清)。

旋转1-2h,混匀后,再离心1-2s去上清后,加PBS,vortex混合,离心去上清,重复二次加含0.02%NaN3的PBS到原来体积,冷存。

避免长期保存。

2.抗原的检出以下操作全在冰面或4度进行去除细胞培养液,用冷PBS洗一次。

加RIPA,溶解后,转移到eppentube中用vortex混匀。

RIPA的量:6cm的培养皿加1 ml(蛋白质的量为500mg/ml),组织块用液氮粉碎,在缓冲剂中捣匀,蛋白定量。

30m,15000rpm离心,上清转移到新tube 。

不用移液枪,直接从tube倒进另一个tube往上清加抗体,1ml加2-5ul抗体,冷室内旋转混匀1h加protein A sapharose50ul,再混匀1h5000rpm离心1s,使sapharose沉淀,去上清。

往sapharose加RIPA,vortex 混匀,离心,去上清。

重复4次洗净。

加电泳用 sample 缓冲液40ul,2m煮沸,泳动后,固定/干燥胶,现像。

3.注意点A:不熟练使用移液枪,会混入沉淀的不溶性蛋白,使实验失败。

对无论怎么也除不去的混入蛋白,只使用上清的上半部,或用超速离心机。

B:对电泳的非特异条带,最后可依次用含300mM,1omMNaCl的RIPA洗净各一次。

(完)评论()引用阅读(876)圈子打印有奖举报免疫共沉淀原理及实验方法[SPAN class=java id=text9766]免疫共沉淀[BR]一原理:[BR]IP是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“prorein A"特异性地结合到免疫球蛋白的FC片段的现象活用开发出来的方法。

目前多用精制的prorein A预先结合固化在argarose的beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads 上的prorein A就能吸附抗原达到精制的目的。

[BR][BR]实验最需要注意点就是抗体的性质。

抗体不同和抗原结合能力也不同,免染能结合未必能用在IP反应。

建议仔细检查抗体的说明书。

特别是多抗的特异性是问题。

[BR][BR]其次,要注意溶解抗原的缓冲液的性质。

多数的抗原是细胞构成的蛋白,特别是骨架蛋白,缓冲液必须要使其溶解。

为此,必须使用含有强界面活性剂的缓冲液,尽管它有可能影响一部分抗原抗体的结合。

另一面,如用弱界面活性剂溶解细胞,就不能充分溶解细胞蛋白。

即便溶解也产生与其它的蛋白结合的结果,抗原决定族被封闭,影响与抗体的结合,即使IP成功,也是很多蛋白与抗体共沉的悲惨结果。

[BR][BR]再次,为防止蛋白的分解,修饰,溶解抗原的缓冲液必须加蛋白每抑制剂,低温下进行实验。

[BR][BR]每次实验之前,首先考虑抗体/缓冲液的比例。

抗体过少就不能检出抗原,过多则就不能沉降在beads上,残存在上清。

缓冲剂太少则不能溶解抗原,过多则抗原被稀释。

欲速则不达,确定好比例很必要。

(待续)[BR]二准备:[BR]器械[BR]#微量高速冷冻离心机[BR]#移液枪[BR]#旋转盘[BR]#电泳设备[BR]#vortex震荡器[BR]#液氮及组织粉碎器[BR]#eppentube[BR]试剂[BR]#细胞或组织[BR]#蛋白定量kit[BR]#SDS电泳试剂[BR]#抗体(单抗时选择protein G,二抗选择抗鼠Ig兔血清)[BR]#PBS[BR]#NaN3[BR]#proteinA sapharose[BR]试剂配制[BR]抗原蛋白溶解缓冲液[BR]1.RIPA缓冲液 (最终浓度)[BR]1MTris-HCL(PH7.4) 5ml (10mM)[BR]5MNacl 15ml (150mM)[BR]0.5M EDTA(PH7.4) 5ml (5mM)[BR]20%TritonX-100 25ml (1%)[BR]10% DOC 50ml (1%)[BR]10%SDS 5ml ( o.1%)[BR]TLCK 18.5mg (0.1mM)[BR]TPCK 35mg (0.2mM)[BR]DDW 395ml[BR]toal 500ml[BR]另外,使用之前加1mMPMSF(PMSF溶在酒精,浓度100mM,-20度遮光保存。

注意不易溶于水)[BR]2.NP40 lysis 缓冲液[BR]1MTris-HCL(PH7.4) 5ml (10mM)[BR]5MNacl 15ml (150mM)[BR]0.5M EDTA(PH7.4) 5ml (5mM)[BR]20%NP40 25ml (1%)[BR]TLCK 18.5mg (0.1mM)[BR]TPCK 35mg (0.2mM)[BR]DDW 450ml[BR]toal 500ml[BR]使用前加1mM的PMSF[BR]注意点:[BR]*Tris缓冲剂PH随温度变化,高浓度盐酸滴定时发热,冷却后PH增高。

[BR]*反复使用PMSF要注意保管方法。

[BR]*1和2的缓冲剂的区别在于界面活性剂。

TritonX-100,NP40是非离子界面活性剂,作用温和,,DOC&lt;SDS是离子性的强活性剂。

注意忘记加TritonX-100,只加DOC,SDS,可能使抗体完全失去活性。

1的蛋白变性效果强,可能损害抗原/抗体结合,2的作用温和,却可能造成抗原溶解不全。

[BR]*两方都有EDTA,对抗原而言,二价离子Mg,Ca等是必要的。

根据自己需要调节。

EDTA用NaOH滴定。

[BR]Protocol[BR][BR]1 调制protein A sapharose[BR][BR]protein A sapharose 5ml 溶于20ml含0.02%NaN3的PBS[BR][BR]离心2000转2分,去上清,在沉淀加0.02%NaN3的PBS,离心后去上清,重复2次,最后沉淀加20ml含0.02%NaN3的PBS,冷藏保存[BR][BR]用单抗做一抗时,把protein A sapharose 先用抗鼠Ig兔血清处理(每50ulprotein A sapharose用1-5ul血清)。

旋转1-2h,混匀后,再离心1-2s[BR][BR]去上清后,加PBS,vortex混合,离心去上清,重复二次[BR][BR]加含0.02%NaN3的PBS到原来体积,冷存。

避免长期保存。

[BR][BR]2.抗原的检出[BR]以下操作全在冰面或4度进行[BR][BR]去除细胞培养液,用冷PBS洗一次。

加RIPA,溶解后,转移到eppentube中用vortex混匀。

RIPA的量:6cm 的培养皿加1 ml(蛋白质的量为500mg/ml),组织块用液氮粉碎,在缓冲剂中捣匀,蛋白定量。

[BR][BR]30m,15000rpm离心,上清转移到新tube 。

不用移液枪,直接从tube倒进另一个tube[BR][BR]往上清加抗体,1ml加2-5ul抗体,冷室内旋转混匀1h[BR][BR]加protein A sapharose50ul,再混匀1h[BR][BR]5000rpm 离心1s,使sapharose沉淀,去上清。

相关文档
最新文档