药学生物化学实验指导

生物化学实验一、实验目的1．培养学生科学的思维方法和学习作风，独立工作能力。

2．学习基础生物化学实验方法，为今后的学习与研究准备更好的条件。

3．培养学生爱护国家财物、爱护集体、团结互助的优良道德品质。

4．培养学生的书面及口头表达能力。

二、实验的总要求1．按教研室予先公布的实验进度表，了解各次实验的具体内容，并认真做好预习。

弄清各步骤的意义，避免教条或机械式做实验。

未预习者不得进实验室。

2．进行实验不仅要求结果良好，而且要求敏捷高效。

一切步骤都按正规操作方法进行；样品与试剂勿过量取用；注意力集中，避免差错。

3．实验中观察要仔细，记录要详尽、及时与客观。

无论实验成功与失败，都应直接记录在实验报告本中，不得于实验后追记。

对于失败的实验，要分析其原因。

4．实验室是集体学习与工作的场所，实验时应保持肃静，不得大声喧哗，以免影响他人的工作与思考。

5．注意保持实验室内的整洁。

实验用器具、试剂等应排列整齐有序。

实验时切勿将试剂、标本溅洒于实验台面、地面及衣物上，如果有溅出应及时处理。

实验后应清洗用过的仪器及清理自己的实验场所。

实验所用的器材、设备不得随意乱动。

实验室内的一切器材物品严禁携出。

6．实验时使用水、电、火、易燃易爆试剂、化学毒剂及传染标本等应注意安全，防止燃烧或爆炸，防止中毒等事故之发生。

7．对师长尊敬，对同学要团结友爱。

三、实验报告实验报告的书写是培养学生书面表达能力和科学作风的重要手段之一，实验者应该重视。

实验报告的内容包括下列各项：实验名称、实验日期、实验目的、实验原理、实验步骤，实验记录、计算、讨论或小结。

实验记录应包括随做随记的原始记录。

书写实验报告要字迹工整，语句通顺。

书写工整的实验报告，是尊师的重要表现之一。

四、玻璃仪器的洗涤一般玻璃仪器用肥皂或去污粉以毛刷洗涤即足以满足要求，洗后应将肥皂或去污粉仔细冲掉，将水倾去后，器壁不挂水珠，视为合格。

铬酸洗液仅用于毛刷不能洗净的仪器，切勿滥用普通玻璃仪器之洗涤。

使用铬酸洗液时，仪器应干燥；过多的水份将使洗液迅速失效。

用过之铬酸洗液须加以保存以反复使用，直至为绿色后方可舍弃；其舍弃法与浓硫酸液相同。

用洗液浸洗过的玻璃仪器，应先用自来水冲洗，然后再用蒸馏水或去离子水清洗，清洗时，宜采用“少量多次”原则以节约蒸馏水，同时清洗的效率也高。

五、舍弃物的处理舍弃物必须依照其性质作适当的处理。

以免造成实验材料的浪费，损坏水槽及下水管道，或污染实验环境。

1．所有固体舍弃物（例如用过的滤纸、损坏的软木塞及橡皮物、玻璃渣、火柴梗等）。

必须放入废物筒或篓中，切勿丢入水槽中。

2．废硫酸或洗液，应先倾入大量水中，再倒入水槽中，并以大量水冲走。

3．实验完成后的沉淀或混合物，若含有可提取或收回的贵重物品者，不可随意舍弃，应放入教师指定的回收器中。

分光光度计的使用原理：有色溶液颜色的深浅与其中呈色物质的含量成正比关系。

在定量分析中，利用比较有色物质溶液的颜色深浅来测定物质含量的分析方法称比色法。

被测物质中，有的本身就是有色物质，但多数被测物质本身无色或颜色很浅，须加入某些化学试剂使测物质与之发生反应生成有色物质。

物质的颜色是由于物质吸收某种波长的光线以后，通过或反射出某种颜色的结果。

当一定波长的单色光通过该物质的溶液时，该物质都能有一定程度的吸光作用，单位体积内的溶液中该物质的质点数越多，对光线吸收越多。

利用物质对一定波长光线吸收的程度来测定物质含量的方法，称为分光光度法。

分光光度法依据Lambert-Beer定律。

设一束单色光I0射入溶液，由于部分光线被溶液吸收，通过的光线为I t，则I t/I0之比为透光度，若透光度T（%）。

则T= I t/I0×100% （1）透光度（T）的倒数（1/T）反映了物质对光的吸收程度。

在实际应用时，取（1/T）的对数值，做为吸光度用A表示，即：A=Lg（1/T）=-LgT （2）吸收度（A）又称消光度（E）或光密度（OD）。

根据Lambert-Beer定律推导，当一束平行单色光通过均匀、无散射现象的溶液时，在单色光强度、溶液温度等条件不变条件下，溶液对光的吸收度（A）与溶液的浓度（C）及液层厚度（L）的乘积成正比。

即：A=KCL （3）在实际比色时，标准溶液与被测溶液使用相同的比色杯，即液层厚度（L）相同。

K为常数。

测定同一种物质时，K标=K测。

所以，将比简化为仅是溶液对光吸收度（A）与其浓度（C）之间的关系。

即溶液的浓度越大，吸光度越大。

可以通过测定吸光度求知某一溶液的浓度。

设：测定管的吸光度和浓度分别为A测和C测，标准管吸光度和浓度分别为A标和C标，根据（3）式A=KCL 得知： A测：A标= C测：C标则 C测= A测/ A标×C标上式中C标为已知，A测与A标可在比色时读出数值，把这些数值代入公式，即可求出测定管浓度。

操作方法：1．接通电源，打开开关指示钮，打开比色箱盖，预热20分钟。

2．预热后，选择所需波长、转动灵敏度旋钮选择适宜灵敏度。

3．转动0旋钮，使检流针指针对准T为0，将空白液、标准液、测定液分别倒入4个比色杯中，将比色杯放入比色盒，再将比色盒放入比色箱中，使空白液对准光路，合上比色箱盖。

4．转动100旋钮，使T 为100%（A为0），观察指针是否稳定。

5．反复几次调节T=0、T=100%即开盖调“0”，闭盖调“100”。

6．轻轻拉动比色槽拉杆，先后将标准液、测定液对准光路，纪录A标值和A测值。

7．比色完毕，恢复各旋钮至原来位置，关闭电源拔下插头，取出比色杯，合上比色箱盖，套上布罩。

将比色杯洗净后倒置晾干。

8．计算 C测= A测/ A标×C标根据公式算出C测数值。

基础性实验实验一：总糖的测定---蒽酮比色法实验目的掌握蒽酮比色法测糖的原理和方法实验原理蒽酮比色法是一个快速而简便的定糖方法。

蒽酮可以与游离的已糖或多糖中的已糖基、戊糖基及已糖醛酸起反应，反应后溶液呈蓝绿色，在620nm处有最大吸收。

本法多用于测定糖原的含量，也可用于测定葡萄糖的含量。

实验器材及试剂1、马铃薯干粉2、可调试移液器或移液管3、可见分光光度计（723型）4、电子分析天平5、水浴锅6、电炉7、蒽酮试剂：取2g蒽酮溶解到80%H2SO4中，以80%H2SO4定容到1000ml，当日配制使用。

8、标准葡萄糖溶液（0.1mg/ml）：100mg葡萄糖溶解到蒸馏水中，定容到1000ml备用。

操作：1.制作标准曲线取7支干燥洁净的试管，按表1顺序加入试剂，进行测定。

以吸光度值为纵坐标，各标准溶液浓度（mg/ml）为横坐标作图得标准曲线。

2.样品含量的测定样品液的制作：精确称取马铃薯干粉0.1g置于锥形瓶中—→加入30ml沸水—→沸水浴30min（不时摇动）—→取出，3000rpm离心10min（或过滤）—→反复洗涤残渣2次—→合并滤液—→冷却至室温—→定容到50ml的锥形瓶中—→再从中取出1ml，再定容到10ml的容量瓶中样品液的测定：（1）取4支试管，按照表2加样（加蒽酮时需要冰水浴5min冷却）表2 蒽酮比色法定糖——样品的测定单位：ml（2）加样冷却完成后置沸水中煮沸10min，取出流水冷却放置10min，620nm处比色测量各管OD值。

（3）以1号试管作为调零管，2、3、4号管的OD值取平均后从标准曲线上查出样品液相应的含糖量。

3．结果计算：C×Vw =————×100%m，式中w：糖的质量分数（%）C：从标准曲线中查出的糖质量分数（mg/ml）V：样品稀释后的体积（ml）m：样品的质量（ml）实验注意事项：1.加样是实验成功的关键，一定准确。

2.试管做好标记。

实验报告：总糖的测定思考题：如何减少其他糖结构类似物的影响？实验二：血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳实验目的：1. 掌握血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳的方法及实验原理。

2. 了解血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳的临床意义及影响因素。

实验原理：带电粒子在电场中移动的现象称为电泳。

血清蛋白质的等电点均低于pH7.4，因此，在pH比其等电点高的缓冲液中它们都电离成负离子，在电场中都会向正极移动。

因各种血清蛋白质等电点不同，在同一pH下所带电荷数量不同，加上分子量的差别等因素，它们在电场中的运动速度就不同。

蛋白质分子小而带电荷多的运动较快；分子大而带电荷少的运动较慢。

所以可利用电泳将血清蛋白质按其在电场中运动的速度快慢分为白蛋白、α1－球蛋白、α2－球蛋白、β－球蛋白及γ－球蛋白等五条区带。

可用分光光度法定量检测出五种蛋白质的含量和百分数，也可将染色后的膜条直接用光密度计测定。

实验器材：【仪器】1．试管、试管架、吸量管2．电泳仪：包括直流电源整流器和电泳槽两个部分，电泳槽内装有两个电极（用白金丝制成）。

3．醋酸纤维薄膜（2.5×8㎝）：【试剂】1．pH8.6，离子强度0.075的巴比妥缓冲液：巴比妥钠15.45g，巴比妥2.76g，蒸馏水700～800 ml，加热溶解，冷后补足蒸馏水至1000ml。

2．氨基黑10B染色液：氨基黑10B 0.5g，甲醇50ml，冰醋酸10ml，蒸馏水40ml，混合使溶解。

3．漂洗液：甲醇45ml，冰醋酸5ml，蒸馏水50ml，混匀，分装甲乙丙三瓶备用。

4．新鲜血清5．0.4mol/L氢氧化钠溶液6．透明液：冰醋酸25ml，无水乙醇75ml，混匀备用。

实验内容与方法：1.电泳槽的准备：将缓冲液加入电泳槽的两槽内，并使两槽液面在同一水平。

两槽内侧边各贴挂四层滤纸或纱布，浸入缓冲液中构成盐桥。

2．薄膜的准备与点样：取2.5×8cm的膜条（1）薄膜有光泽面向下，放入培养皿中的巴比妥缓冲液中使膜条充分浸透下沉，约浸泡10－20分钟，即膜条无白斑时。

（2）将充分浸透的膜条取出，用干净滤纸吸去多余的缓冲液，于薄膜的无光泽面距一端1.5cm处作为点样线。

（3）用点样器在盛有血清的表面血中蘸一下，点样器下端粘上薄层血清，然后将点样器竖直，使其沾有血清的顶端紧贴在薄膜点样线上，待血清全部渗入膜内后，移开点样器，注意点样的两端不可到边。

2．电泳：将点样后的膜条置于电泳槽的盐桥上，放置时膜条无光泽面（即点样面）向下，以防薄膜干燥，点样端置于负极，槽架上以四层滤纸作桥垫，膜条与滤纸需贴紧。

盖好电泳槽的盖，待平衡5分钟后，即可通电。

调节电泳仪，使两极间距（指膜条与滤纸桥总长度）的电压为8～10V/cm长，或电流0.4～0.6mA/cm 宽，通电50分钟左右关闭电源。

3．染色与漂洗：通电完毕后，用镊子将薄膜取出，直接浸于盛有氨基黑10B的染色液中，染3分钟取出，立即浸于漂洗液中，分别在漂洗液甲、乙、丙三瓶中各漂洗5'，直至背景漂净为止。

用滤纸吸干薄膜，即得五条蛋白区带，从阳极至阴极端依次为白蛋白、α1－球蛋白、α2－球蛋白、β－球蛋白及γ－球蛋白，。