试验动物与细胞系

尾加压素II在2型糖尿病小鼠骨骼肌组织中的表达情况作者:张思凡单位:北京市陈经纶中学辅导老师: 黄臣田超指导专家:王学江目录摘要 (2)前言 (3)实验目的 (3)材料与方法 (4)实验结果 ........................................... 错误！未定义书签。

讨论 . (9)结论 (11)参考文献 ........................................... 错误！未定义书签。

附录 ............................................... 错误！未定义书签。

致谢 ............................................... 错误！未定义书签。

1摘要目的探讨T2DM时小鼠骨骼肌组织UII/UT系统的表达变化情况。

方法采用免疫组化、RT-PCR实验观察骨骼肌组织中UII/UT系统的表达；采用血糖测定仪检测2型糖尿病的特征。

结果 1. 在遗传性2型糖尿病小鼠模型上，证实2型糖尿病小鼠骨骼肌组织中UII/UT系统高表达。

用放免法测定到2型糖尿病小鼠血浆UII含量明显高于对照小鼠；骨骼肌组织UII含量和释放到孵育液中的UII含量分别较对照动物高；免疫组化染色发现T2DM小鼠骨骼肌组织中UII的含量较对照组增高。

结论 1. 2型糖尿病小鼠骨骼肌UII/UT系统上调。

2. UII抑制胰岛素刺激的骨骼肌的糖摄入，提示骨骼肌UII可能以旁/自分泌方式作用于骨骼肌参与了胰岛素抵抗的发病关键词尾加压素II；2型糖尿病；胰岛素抵抗2前言胰岛素抵抗指各种原因使胰岛素促进葡萄糖摄取和利用的效率下降，机体代偿性分泌过多胰岛素产生高胰岛素血症，以维持血糖的稳定。

胰岛素抵抗是2型糖尿病的重要表现之一，主要是肝脏、肌肉和脂肪组织对胰岛素的敏感性和反应性降低。

胰岛素抵抗发病机制目前并不完全清楚，不仅与遗传因素高度相关，而且与胰岛素信号传导缺陷、多种脂肪源性细胞因子表达异常、物质代谢异常、炎症介质和氧化应激等诸多因素有关。

越来越多的研究提示血管活性因子、尤其是缩血管因子的调节紊乱参与胰岛素抵抗及糖尿病的发病，如血管紧张素II、内皮素等。

尾加压素II也是体内重要的血管活性肽，具有与内皮素相似或更强的收缩血管和促进血管平滑肌细胞增殖效应。

尾加压素II最早是从鱼的脊髓尾部下垂体中分离出的生长抑素样环肽，后证实从软体动物到哺乳动物的神经系统均存在UII，并且目前已经从人体中克隆出来。

UII的特异性受体是人体内一种孤立的G蛋白耦联受体，又称为UT。

UII与UT结合后引起一系列生物学效应，参与多种疾病的发生。

例如，在中枢神经系统中，可以引起交感神经兴奋，释放肾上腺素和促肾上腺皮质激素，对心率、呼吸和血压也具有一定的调节作用。

在心血管系统，UII可以引起冠状动脉收缩和反射性心动过速。

在外周血管中，UII是迄今为止发现的最强的缩血管物质，可引起内皮炎症，导致内皮损伤。

在肾脏，UII可以减少肾脏血流，使上皮细胞增殖。

近来研究发现，UII对胰腺也具有一定的作用，可以减少胰岛素的分泌。

由于UII是迄今为止发现的最强的缩血管物质，因此人们对它的研究最初主要集中在心血管方面。

在心血管系统中，UII参与了心力衰竭和心肌肥大，冠心病和冠状动脉粥样硬化，肾功能衰竭等这些疾病。

近年大量实验资料显示UII还参与糖代谢的调节、在糖尿病及其并发症的发病中具有重要作用，尤其是2型糖尿病。

2型糖尿病占糖尿病总数的90%以上，它的发生主要与胰岛素抵抗有关。

目前有大量数据表明炎症因子是骨骼肌胰岛素抵抗的一个病因，而它与骨骼肌中UII/UT系统有何关系并不清楚。

本工作旨在观察T2DM时骨骼肌组织中UII/UT系统内源性表达的变化及其意义，及影响这种表达的因素。

3实验材料与方法一、实验动物与细胞系KK小鼠是日本学者培育的一种轻度肥胖型T2DM动物，KK小鼠有明显的多食，从5周龄起，血糖、血胰岛素水平逐步升高，1岁龄时，多食、高血糖、高胰岛素血症、肥胖及肝脏对胰岛素的敏感性可自发恢复正常，但其生命明显缩短。

对照组小鼠（C57BL/6J）体重20-30g，12周龄。

所有小鼠实验当日清晨空腹自尾静脉采血测定其空腹血糖，随后自由饮食，1-2小时后测其随机血糖。

分离双下肢的比目鱼肌，用中性福尔马林固定用于免疫组化。

肌原细胞C2C12细胞株购自中国医学科学院基础研究所。

二、主要试剂和仪器（表1、表2）表1 主要试剂Table 1 Main regents试剂生产厂家DMEM高糖培养基美国Hyclone公司特级胎牛血清美国Gibco公司青霉素-链霉素溶液美国Gibco公司胰蛋白酶(trypsin) 美国Gibco公司二甲基亚砜(DMSO) 美国Sigma公司UII放免试剂盒UII多克隆一抗UII多肽Honenix Pharmaceuticals Honenix Pharmaceuticals Honenix Pharmaceuticals山羊抗兔IgG 北京中杉金桥生物技术有限公司DAB染色试剂盒北京中杉金桥生物技术有限公司45表2 主要仪器Table 2 Main instruments仪器生产厂家 电子天平德国Sartorius 公司 超速低温离心机美国Sigma 公司 紫外可见分光光度计Unico 公司 二氧化碳培养箱美国Revco 公司 PB-600 型恒温水浴箱BOEKELScientific 倒置显微镜日本Olympus 公司 石蜡切片机北京东方仪器厂 制冰机日本三洋公司 pH 计德国Sartorius 公司 超纯水制备装置美国Millipore 公司 微量移液器德国Eppendorf 公司 超净工作台硝酸纤维素膜 天津泰斯特公司 Waters 公司二、实验方法1．C2C12细胞的培养及传代该细胞系用含15%胎牛血清，青霉素100 U/ml ，链霉素100 U/ml 的高糖DMEM培养基在37℃，5% CO2条件下培养。

（1）细胞复苏①紫外照射超净台30min，擦②于-80℃低温冰箱中取卵圆细胞一支，37℃水浴中迅速融化，加至8ml完全培养基中，1200r离心8min。

③弃上清，沉淀用3ml完全培养基重悬，接种至细胞培养瓶中，放入孵箱培养。

（2）细胞传代①紫外照射超净台30min，擦拭超净台台面。

②弃原培养基，PBS洗两次。

③加入胰酶消化至细胞变圆，细胞间隙变宽，弃胰酶，加入3ml培养基终止消化。

④吹打细胞使细胞呈悬浮状态，分瓶，补足培养基，放入孵箱培养。

（3）细胞冻存①紫外照射超净台30min，擦拭超净台台面。

②弃原培养基，PBS洗两次。

③加入胰酶消化至细胞变圆，细胞间隙变宽，弃胰酶，加入3ml培养基终止消化。

④1200r离心8min，弃上清，沉淀用冻存液重悬（冻存液配制：血清：DMSO=9:1）。

⑤度降温：4℃放置1h，-20℃放置30min，-40℃放置30min，放入-80℃低温冰箱保存。

（4）细胞计数6将稀释后的细胞悬液滴于计数板上，使悬液自由充满盖片下方间隙，勿留气泡，稍候片刻，镜下观察并计算出四角大格内的细胞数。

压线者只计上线和右线的细胞，然后按下式计算出细胞浓度：（4大格中的细胞数/4）*10000*稀释倍数=细胞数/ml。

2. 免疫组织化学染色1）切片常规脱蜡至水2）缓冲液洗3min/2次3) 为了降低内源性过氧化物酶造成的非特异性北京染色，将切片放在3%过氧化氢中孵育30分钟5）抗原修复：15min95℃，室温45-60min6）滴加一抗工作液 4℃孵育过夜7）缓冲液洗5min/2次8）滴加酶标二抗，在室温下孵育30min9）缓冲液洗5min/2次10）向1mlDABPlus Substrate中滴加1-2滴DAB Plus Chromogen，混匀后滴加到切片上，孵育3-15min11）自来水充分冲洗，复染，脱水，透明，封片。

研究过程1 检测T2DM组和对照组小鼠血糖、血浆中胰岛素含量8只KK小鼠和8只C57BL小鼠。

实验前禁食2-4h，自由饮水。

使用罗氏血糖测定仪自尾部采血测定小鼠空腹血糖及随机血糖含量。

采用放免法测定血浆中7胰岛素含量。

2检测小鼠骨骼肌组织中UII的表达取两组小鼠骨骼肌组织做石蜡切片进行免疫组织化学染色检测两组小鼠骨骼肌组织中UII蛋白的表达及其组织细胞定位3分离双下肢的比目鱼肌，取10mg左右的组织。

37°C孵育4h，孵育结束后，取孵育液放免方法测定其UII含量。

实验结果1kk小鼠呈典型T2DM表现kk小鼠为轻度肥胖型T2DM动物，具有多食、高血糖、高胰岛素血症、肥胖特征。

我们的实验结果显示：与对照组比较，kk小鼠组成的T2DM组动物更肥胖，体重重93.6%；空腹血糖高91.3%；血浆胰岛素含量高86.6%。

表明kk小鼠呈典型T2DM表现，与文献报道一致，见表1。

Control T2DMBody weight（g）20.2±1.6 39.1±2.4*8Casual blood glucose(mmol/L) 9.5±2.4 23.0±1.9*Fasting blood glucose(mmol/L) 4.6±1.1 8.8±0.5*Plasma insulin(pmol/mL) 299.3±39.4 558.5±71.0*2免疫组化结果显示对照组小鼠骨骼肌细胞有棕黄色的颗粒，主要分布于胞浆中；而T2DM组可见到较强的UII蛋白的表达，提示T2DM时骨骼肌组织中UII/UT系统高表达。

3T2DM小鼠骨骼肌分泌释放UII增加以往的文献已报道T2DM时，动物及人血浆中UII含量升高，但其升高的来源并不清楚，有文献报道血管内皮细胞时血浆中UII的一个来源。

骨骼肌占体重的70%，而且骨骼肌组织作为一个内分泌器官受到了越来越多的重视，那么骨骼肌是否能够产生和释放UII，且T2DM时骨骼肌产生和释放的UII是否是血浆中UII升高的一个来源并不清楚。

我们的结果发现，与对照组相比较，T2DM组血浆中UII含量高51.4%，与文献报道相一致；骨骼肌组织UII含量高21.8%，但差异无统计学意义，表明骨骼肌组织能够产生UII。

Control mice T2DM mice Plasma UII content(pg/mL) 137.5±31.4 208.1±28.7*Skeletal muscle(pg/mg protein) 3.3±0.3 4.0±0.5*Cell incubation liquid(pg/mg36.0±8.4 51.8±4.2*protein)*P<0.05 vs. control group讨论本工作采用遗传性T2DM小鼠为观察对象，发现由KK小鼠组成的T2DM组呈现肥胖、空腹高血糖、随机血糖及血浆中胰岛素的含量均明显高于有C57BL 小鼠组成的对照组，呈典型T2DM表现，与文献报道一致。