甲苯胺蓝染色液
甲苯胺蓝染色渗透试验
甲苯胺蓝染色渗透试验
1.目的
根据ASTM F1929-2012标准方法采用染色渗透法检测无菌包装封口泄漏性能2.设备及工具、材料
天平（万分之一）10mL注射器，甲苯胺蓝、曲拉通X-100（氚X-1004）、纯化水、烧杯、试管
3.配制方法
3.1.用天平称量0.5g Triton X-100，与20ml纯化水混合，搅拌或摇动容器，混合二者。
待Triton X-100分散后。
再加入纯化水定容至100ml。
3.2.用天平称量0.05g甲苯胺蓝，加入混合了Triton X-100的溶液中,搅拌或摇动容器混合均匀，即成0.05%甲苯胺蓝染色液。
4.试验方法
4.1.把已灭菌产品包装在试验开始之前，放置于大气温度23±2℃（73.4±3.6oF）和相对湿度50±2%环境中进行存贮24小时。
4.2.依据ASTM F1929-2012标准，将足够的染料渗透液注入包装中，覆盖最长的封边，深度约5mm（0.25英寸）（注入方法：可以使用带有软管的注射器通过切口送入染料渗透剂）使染料渗透液与封边保持接触最少5s最多20s的时间，旋转包装使每道封边都能接触渗透液，如有需要可以补充染色液，确保每道封边都能接触足够量的染色液。
通过包装的透明面目力检测密封区，看有无泄漏或者通道出现，也可使用放大镜进行细致的观察。
5.检验标准
在包装透明的一边，用肉眼检测封口区域。
即可看见封口区的通道。
检查染色液有无透过密封区到达另一侧或染色液有无通过确定的通道进入密封区内部的迹象。
6.注意事项
染色渗透液与包装材料封边的作用时间不应超过20秒。
甲苯胺蓝染色原理
甲苯胺蓝染色原理甲苯胺蓝（Methylthioninium chloride）是一种用于组织切片染色的有机染料，也被称为甲苯蓝或亚甲基蓝。
甲苯胺蓝在组织学染色中广泛应用，特别在神经组织中的染色效果显著，常用于突触研究和神经元计数。
甲苯胺蓝的染色原理涉及到其本身的分子结构和组织切片中的某些成分之间的相互作用。
首先，甲苯胺蓝是一种亲电性染料，其分子结构含有亚甲基蓝的三个苯环。
这些苯环中的一个或多个苯基与细胞组分中的负电荷基团（如DNA核苷酸、蛋白质等）发生吸附和离子相互作用。
这种吸附和离子相互作用使得甲苯胺蓝能够与细胞内的核酸物质结合，并产生特定的染色效果。
其次，甲苯胺蓝在染色过程中通过可逆地与细胞组分中的电荷基团发生氧化还原反应来增强或改变染色效果。
在染色溶液中，甲苯胺蓝会接受电子，从而减少其氧化态，形成无色的还原型甲苯胺蓝。
当染色溶液接触到切片表面时，甲苯胺蓝被氧化，恢复到其有色的氧化态，从而显现出染色效果。
这种还原氧化循环的发生使得甲苯胺蓝能够在组织切片上形成持久的染色效果。
此外，甲苯胺蓝还可以与细胞中的多种有机物质发生特异性反应。
例如，甲苯胺蓝可以与DNA中的磷酸核苷酸结合，形成深蓝色的染色复合物。
这种DNA与甲苯胺蓝的结合形成了一种可靠的染色方法，常用于观察细胞核的形态和位置。
此外，甲苯胺蓝还可以与某些神经细胞蛋白质中的酚基团发生偶联反应，从而形成深蓝色的染色效果。
这种特异性反应可以帮助研究人员定位神经元的位置，并观察神经元之间的连接情况。
总结来说，甲苯胺蓝染色的原理是通过染料分子与细胞中的带负电荷的核酸和蛋白质等电荷基团的吸附和离子相互作用，以及发生氧化还原反应来产生染色效果。
甲苯胺蓝与细胞内不同成分的特异性反应可用于观察细胞核的形态和位置，以及神经元的连接情况。
因此，甲苯胺蓝成为一种常用的神经组织切片染色方法，为神经科学研究提供了重要的工具和技术支持。
甲苯胺蓝染色液(0.5%,硼酸盐法)
甲苯胺蓝染色液(0.5%,硼酸盐法)简介：甲苯胺蓝(Toluidine Blue O)是一种常用的人工合成染料, 属于醌亚胺染料类, 这类染料主要含有胺基和醌型苯环两个发色团，从而成色原显色。
甲苯胺蓝中的阳离子有染色作用, 组织细胞的酸性物质与其中的阳离子相结合而被染色。
甲苯胺蓝还含有两个助色团，能促使染料产生电离成盐类, 帮助发色团对组织产生染色力, 使切片上的组织细胞着色，可染细胞核使之呈蓝色。
另外，肥大细胞胞质内含有肝素和组织胺等异色性物质，遇到甲苯胺蓝可呈异染性紫红色，临床上经常用于肥大细胞染色。
Leagene 甲苯胺蓝染色液(Toluidine Blue,1%,硼酸盐法)由于硼酸盐缓冲液呈强碱性，更利于组织细胞的着色。
组成：操作步骤(仅供参考)：(一)肥大细胞染色1、脱蜡至蒸馏水。
2、根据切片厚度和组织的不同，浸染于甲苯胺蓝染色液。
3、蒸馏水或去离子水轻轻冲洗。
4、冰乙酸分化，直到细胞核和颗粒清晰可见。
5、快速和无水乙醇脱水。
6、 二甲苯透明，封固。
染色结果：肥大细胞呈紫红色；背景呈淡蓝色。
(二)软骨染色1、 石蜡切片入二甲苯。
2、 系列乙醇各。
3、 自来水洗。
4、 入Toluidine Blue O Stain ，浸染。
5、 自来水洗，滤纸吸干水分。
6、 丙酮分化至软骨细胞呈紫蓝色清楚可见。
7、 逐级乙醇脱水。
编号 名称 DA0059 Storage Toluidine Blue O stain (0.5%,硼酸盐法) 100ml RT 避光 使用说明书 1份8、二甲苯透明，中性树胶封固。
染色结果：软骨、成骨细胞呈紫红色；背景呈淡蓝色。
(三)细胞涂片染色1、用乙醇溶液稀释甲苯胺蓝染色液, 一般要求稀释即可。
2、细胞涂片后，立即放入乙醇中固定，取出放在纸巾上。
3、滴加稀释后的甲苯胺蓝染色液进行滴染，加盖玻片让染料渗透到细胞中。
4、将玻片竖起，稍加压力，使多余染料被纸巾吸去。
5、无需干燥，直接镜检。
Masson三色染色试剂盒甲苯胺蓝
Masson 三色染色试剂盒（甲苯胺蓝）说明书修订日期：2018.07.31Cat number：KGMST-8004Store at 2-8℃ for 12 monthsFor Research Use Only（科研专用）【适用范围】Masson 三色染色试剂盒主要用于结缔组织染色。
用于判定各种组织、器官的病变程度与修复情况，以不同色调显示与区分某些非结缔组织及物质成分；如显示与区分肌肉及其肿瘤组织的正常或异常成分。
尤适用于软组织肿瘤的鉴别诊断。
【主要成分】【染色步骤】1、切片脱蜡处理至水。
2、滴加 1 滴（50-100µl）苏木素染色液（试剂 A）染色 5-10 分钟。
蒸馏水冲掉染液。
3、蒸馏水或自来水冲洗 2-5 分钟。
4、滴加 1 滴（50-100µl）复合染色液（试剂 B）染色 5 分钟。
5、蒸馏水或自来水冲洗一下（2-3 秒，冲掉染液即可）。
6、滴加 1 滴（50-100µl）磷钼酸（试剂 C）染色 1 分钟。
7、甩干或自然晾干。
8、滴加 1 滴（50-100µl）甲苯胺蓝染色液（试剂 D）染色 5min 左右。
9、蒸馏水或自来水冲洗一下（2-3 秒，冲掉染液即可）。
10、放入烘箱（50－60 摄氏度）烘干。
中性树胶封片。
【结果】胶元纤维、黏液、软骨、神经纤维呈蓝色；肌肉、弹力纤维呈红色；神经轴索呈粉红色；纤维素呈紫红色；红血球呈橘红色。
细胞核呈蓝紫色。
【注意事项】1、不同的固定液或固定时间以及不一样的组织，染色效果可有差异，要根据显微镜下观察来掌握染色或分化时间。
2、染色液必须充分淹盖组织。
3、每次染色宜用阳性切片作对照。
【有效期】12 个月仅供研究、不用于临床诊断。
X染色质甲苯胺蓝
[实验用品]
(1)器材：显微镜、载玻片、牙签。
(2)试剂 ：0.2％甲苯胺蓝染液 、5mol/L HCl溶液 、95％乙醇、pH 6. PBS
(3)材料：人口腔黏膜上皮细胞。
[方法与步骤]
(1)取材制片：先让受检者用水漱口数次，然 后用牙签钝头部刮取口腔下唇内侧面，弃 去第一次刮到的细胞，在同一部位连刮几 次，将刮取物均匀涂在干净的载玻片上晾 干。
[实验原理]
一个个体不论其细胞中有几条X染色体，均只有一 条具有转录活性，其余的X染色体均失活形成异固 缩的X染色质。正常女性间期细胞核中X染色质阳性 率一般约为10％一30％，有的可高达50％以上。其 出现率的高低与个体不同生理状态、染色方法、染 色技术以及X染色体在细胞核中的位置不同有关。 在男性间期细胞核中则平均低于1％。一般检查X染 色质确定性别时，观察200个细胞，X染色质出现5 ％以上者为女性。现在，X染色质检查已广泛应用 于临床，作为性别测定和性染色体数目异常的一种 辅助诊断方法。
(2)固定：Βιβλιοθήκη 95%乙醇固定30分钟.(3)水解：玻片标本置于5mol/L HCl中，室温水解 20 min。用新鲜蒸馏水冲洗四次，充分洗去残 留的HCl。
(4)染色：0.2％甲苯胺蓝染液染色5—10min。
(5)镜检：自来水漂洗，空气干燥后油镜下观察。
[观察与结果]
高倍镜下可见许多染成蓝色的细胞核，细胞 质不着色或不明显。选择核较大，染色清 晰，轮廓完整，核质呈均匀细网状的细胞 进行观察。找到核膜内侧缘有蓝色浓染小 体的细胞核后，换油镜进一步观察。油镜 下X染色质为蓝色平凸形、三角形、扁平形 的浓染小体。
[注意事项]
(1)取材前要漱口，以免口腔中的杂质影响观 察效果。 (2)HCl水解要充分，使X染色质易于显现。 (3)临床检查时要选择形态好的细胞观察，计 算100个细胞中X染色质出现的频率。
甲苯胺蓝染色原理
甲苯胺蓝染色原理
甲苯胺蓝(Toluidine Blue O)是一种常用的人工合成染料, 属于醌亚胺染料类, 这类染料主要含有胺基和醌型苯环两个发色团，从而成色原显色。
甲苯胺蓝中的阳离子有染色作用, 细胞的酸性物质与其中的阳离子相结合而被染色。
甲苯胺蓝还含有两个助色团，能促使染料产生电离成盐类；帮助发色团对产生染色力，使切片上的细胞着色，可染细胞核使之呈蓝色。
肥大细胞胞质内含有肝素和胺等异色性物质，遇到甲苯胺蓝可呈异染性紫红色，临床上经常用于肥大细胞染色。
1。
甲苯胺蓝
染色原理
染色原理
甲苯胺蓝是常用的人工合成染料的一种，属于醌亚胺染料类，这类染料一般含有两个发色团，一个是胺基， 一个是醌型苯环，来构成色原显色。染料除有发色团外，还要有能使色原对组织及其他被染物产生亲和力的原子 团即助色。助色团能促使染料产生电离成盐类，帮助发色团对组织产生染色力，使切片上的组织细胞着色。甲苯 胺蓝不仅含有两个发色团，还含有两个助色团，为碱性染料，甲苯胺蓝中的阳离子有染色作用，组织细胞的酸性 物质与其中的阳离子相结合而被染色。
Байду номын сангаас
试剂的配制
称取0.1g甲苯胺蓝，溶于100ml0.1M醋酸盐缓冲液中，置室温5天后，即可使用染液于室温下可保存3个月， 若放于4℃冰箱则可保存半年左右，但该液的染色效果在早期为最佳，若染液存放时间较长，则染色偏淡，应适应 延长染色时间。
注意事项
1、第一次使用本试剂时建议先取1-2个样品做预实验。样品数量很多时，可使用染色架和染色缸，以便于操 作。
染色方法
试剂 染色步骤
试剂的配制 注意事项
试剂
1.甲苯胺蓝液 甲苯胺蓝0.5g蒸馏水定容至100mL 2.冰醋酸液 冰醋酸0.5ml蒸馏水定容至100mL
染色步骤
（一） 1.组织切片常规脱蜡至水。 2.入甲苯胺蓝液30min。 3.稍水洗。 4.入冰醋酸液分化，直到胞核和颗粒清晰。 5.稍水洗，用冷风吹干。 6.二甲苯透明，中性树胶封固。 (二) ①切片脱腊至水。 ②蒸馏水浸洗3次。 ③0.1%甲苯胺蓝液浸染10min。
2、本产品为1%浓度水溶液，具体使用浓度可自行稀释。 3、由于温度对染料的溶解度与着色力有很大的影响，若快速染色，当室温较低时，可以适当加温。 4、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 提示：本品仅用于科研实验，不能用作医疗及临床诊断。
肥大细胞-甲苯胺蓝
肥大细胞-甲苯胺蓝目的：此细胞广泛分布于结缔组织中。
胞质含有异染性颗粒，由肝磷脂和组胺构成。
原理：肥大细胞被染成红-紫色(异染质着染)和蓝色的背景(正染质着染)。
异染性组织染色原理是一种染液染出不同的颜色。
是因为碱性染料的PH值、染料浓度和温度。
蓝色和紫色染料可显出红色，红色染料可显出黄色异染色组织原理。
对照：皮肤固定：10%甲醛技术：4μ石蜡切片设备：染色，蒸馏水稍洗。
试剂：甲苯胺蓝原液：甲苯胺蓝Toluidine Blue O 1.0 gm70%酒精alcohol 100.0 ml混合溶解，保存期6个月。
警告：避免接触和吸入。
工作液：甲苯胺蓝Toluidine blue, Stock 5.0 ml1%氯化钠Sodium chloride 45.0 ml新鲜配制，用后丢弃。
警告：避免接触和吸入。
1%氯化钠：氯化钠Sodium chloride 0.5 gm蒸馏水Distilled water 50.0 ml新鲜配制。
安全：穿戴手套、护目镜和白大衣。
在通风场所进行。
避免接触和吸入。
甲苯胺蓝O：有引起人的胃肠道和血液紊乱报导。
程序：1. 脱蜡至蒸馏水。
2. 甲苯胺蓝工作液1-2 minutes。
3.蒸馏水稍洗×3。
4. 快速95%和无水乙醇脱水。
5. 二甲苯透明和封固。
结果：肥大细胞紫红色背景蓝色参考文献：Sheehan D, Hrapchak B, Theory and practice of Histotechnology, 2nd Ed, 1980, pp282,Battelle Press, OhioLuna L, Manual Of Histologic Staining Methods from the AFIP, 3rd Ed, 1968,pp 162-163, McGraw-Hill, NYCrookham,J, Dapson,R, Hazardous Chemicals in the HistopathologyLaboratory, 2nd ED, 1991, Anatech肥大细胞-甲苯胺蓝对照：皮肤技术：4μ石蜡切片程序：1. 脱蜡至蒸馏水。
甲苯胺蓝(TB)染色实验
甲苯胺蓝（TB）染色一、甲苯胺蓝（TB）染色简介甲苯胺蓝（Toluidine blue，TB）是常用的人工合成染料的一种，属于醌亚胺染料类，这类染料一般含有两个发色团，一个是胺基，一个是醌型苯环，来构成色原显色。
染料除有发色团外，还要有能使色原对组织及其他被染物产生亲和力的原子团即助色。
助色团能促使染料产生电离成盐类，帮助发色团对组织产生染色力，使切片上的组织细胞着色。
甲苯胺蓝不仅含有两个发色团，还含有两个助色团，为碱性染料，甲苯胺蓝中的阳离子有染色作用，组织细胞的酸性物质与其中的阳离子相结合而被染色。
二、染色步骤（软骨组织为例）1、常规脱钙，包埋、固定。
2、石蜡切片入二甲苯2次。
3、系列乙醇各1min自来水洗。
4、入软骨染色液浸染。
根据不同组织，染色时间不完全相同。
5、自来水洗2min，滤纸吸干水分。
6、丙酮分化至软骨细胞呈紫蓝色清楚可见。
7、逐级乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。
8、结果：软骨、成骨细胞呈紫红色；背景呈淡蓝色三、样本说明1、石蜡切片取材：1、组织离体后需及时固定；2、组织标本不宜过大、过厚。
固定：1、固定液：10%福尔马林（4%多聚甲醛）或10%中性甲醛；2、用量：一般固定液的量与组织体积比为10:1～20:1；3、固定：适宜的固定时间，主要根据材料的大小、松密程度及固定液的穿透速度而定。
保存：切片经60℃烤片3-5小时后，可于常温或4℃干燥保存。
2、冰冻切片取材：取材后需立即置于超低温冰箱或液氮中保存。
固定：样本冰冻切片后，应立即放入甲醇、丙酮、95%酒精、4%多聚甲醛等固定液中固定。
保存：固定好的切片自然风干，密封后置于-80℃、-20℃保存，尽快用于后续实验。
3、细胞块石蜡切片细胞量较多的样品，可离心分离所需细胞，用中性甲醛固定后制作成琼脂细胞块，然后按照制作石蜡切片的操作流程进行切片。
4、细胞爬片在孔板里做的细胞爬片，爬片取出后，用PBS洗涤2次（根据研究目的，PBS洗涤可选择不做），用4%多聚甲醛4℃固定15分钟，将表面液体吹干，置于-20℃保存。
SD大鼠甲苯胺蓝染色步骤
SD大鼠甲苯胺蓝染色步骤1、甲苯胺蓝染色法鉴定软骨细胞表型ⅱ代软骨细胞以2x105／ml的密度接种到铺有多聚赖氨酸盖玻片的24孔细胞培养板中，与原代培养条件相同，制作细胞爬片，常规培养48h后行甲苯胺蓝染色。
具体操作步骤如下：(1)倾去培养液，pbs充份冲洗3次，重新加入10％的中性甲醛常温下紧固30min。
(2)倾去10％的中性甲醛，pbs充份冲洗3次，重新加入70％的乙醇紧固30min除去四价铵离子，以免影响染色。
(3)倾去70％的乙醇溶液，pbs充分漂洗3次，晾干，加入甲苯胺蓝乙醇液(甲苯胺蓝0.2g溶于30％乙醇100m1)染色_20min。
(4)pbs充份冲洗3次，快速用无水乙醇再冲洗1次。
(5)取出爬片，干燥后中性树脂封片，电子显微镜下观察、摄片。
2、型胶原免疫细胞化染色法鉴定软骨细胞表型ⅱ代软骨细胞以2×105／ml的密度注射至砌存有多聚赖氨酸盖玻片的24孔细胞培养板中，与原代培育条件相同，制作细胞爬片，常规培育48h后行免疫细胞化学法染色。
实验过程严苛遵从免疫细胞化学染色试剂盒说明书展开操作方式，pbs缓冲液替代一抗炎做为阴性对照组。
具体内容操作步骤如下：(1)倾去培养液，冰冷的pbs漂洗3x3min，加入4%多聚甲醛1ml室温固定15min。
(2)pbs清洗标本3x3min，每张标本滴加1滴新鲜配制的3％h202，室温下孵育10min。
(3)pbs清洗标本3x3min，每张标本滴加穿膜液0.5m](0.1％timton+o.1mglycine)冰上孵育30min。
(4)pbs冲洗标本3x3min，每张标本碱液5mg／ml的动物非免疫系统半封闭血清(bsa)0.5ml，室温下半封闭1h。
(5)滴加1：150稀释的兔抗大鼠ii型胶原多克隆抗体50ul于封口膜上，使标本与一抗充分接触，置于湿盒中4℃过夜。
pbs缓冲液代替一抗作为阴性对照组。
(6)pbs清洗标本3x3min，加入二抗工作液，37℃孵育20min。
x小体的染色 甲苯胺蓝磷酸盐法
x小体的染色甲苯胺蓝磷酸盐法染色是一种对物体表层进行着色的方法，通过改变物体的颜色，实现美化和增强其视觉效果的目的。
在染色中有许多方法和化学物质被应用于不同的物体上。
其中，甲苯胺蓝磷酸盐法是一种常用的染色方法，下面将对其原理和应用进行详细介绍。
甲苯胺蓝磷酸盐法是一种常用的染色方法，它是利用甲苯胺蓝和磷酸盐的相互作用来实现染色效果的。
甲苯胺蓝是一种有机染料，具有很好的亲水性和亲脂性，在水性和油性物体上均能有效染色。
磷酸盐是一种无机化合物，它在染色中所起的作用是增强染色效果和稳定染色剂。
首先，准备甲苯胺蓝和磷酸盐。
甲苯胺蓝可以溶解在水中，所以我们可以直接将其溶解在适量的水中，形成甲苯胺蓝溶液。
磷酸盐可以溶解在无机溶剂中，所以我们可以将其溶解在适量的无机溶剂中，形成磷酸盐溶液。
然后，将需要染色的物体浸泡在甲苯胺蓝溶液中。
甲苯胺蓝具有较好的渗透性，可以在物体表层形成均匀的染色层。
浸泡的时间可以根据物体的大小和染色效果的要求来确定，一般为数分钟到数小时。
接下来，将物体从甲苯胺蓝溶液中取出，并用清水进行洗涤，以去除多余的染料。
清水的用量要足够，以确保物体表层的染料被充分清洗干净。
洗涤的时间可以通过观察水的颜色来判断，当水不再有明显的染料溶出时，即可停止洗涤。
最后，将物体浸泡在磷酸盐溶液中，以固定染色剂。
磷酸盐可以与甲苯胺蓝发生反应，形成稳定的染色层，防止染料在后续使用中褪色。
浸泡的时间一般为数分钟到十几分钟，根据物体的大小和染色效果的要求来确定。
通过上述步骤，就可以使用甲苯胺蓝磷酸盐法对物体进行染色。
该方法具有操作简单、染色效果良好、染料稳定等优点，所以在实际应用中得到了广泛的应用。
甲苯胺蓝磷酸盐法在实际中的应用非常广泛。
它可以用于纺织品、皮革、纸张、玻璃等物体的染色，能够提高它们的装饰性和美观性。
此外，甲苯胺蓝还具有良好的抗紫外线性能，可以用于防晒衣物和防晒窗帘的染色。
在工业领域中，甲苯胺蓝磷酸盐法也被广泛应用于染色检测和颜色测定中。
甲苯胺蓝染色原理软骨
甲苯胺蓝（Toluidine Blue）染色法用于软骨染色的原理基于该染料的化学性质和软骨组织的特性。
甲苯胺蓝是一种碱性染料，它的分子结构中含有阳离子，使其带有正电荷。
软骨组织中富含酸性黏多糖（如硫酸软骨素、透明质酸等），这些多糖带负电荷，因而能够与甲苯胺蓝中的阳离子形成离子键，从而被染色。
在甲苯胺蓝染色液中，软骨组织特别是软骨基质会被染成蓝紫色，这是因为软骨基质内丰富的酸性黏多糖容易与甲苯胺蓝结合。
此外，软骨细胞核和一些特殊的蛋白质也可能会被甲苯胺蓝染成不同的颜色，从而可以在显微镜下清晰地区分软骨的不同结构成分。
通过甲苯胺蓝染色，研究人员能够准确观察到软骨的形态结构，包括软骨细胞、软骨基质的分布以及软骨损伤等情况，这对于研究关节炎、发育生物学、病理诊断等多种领域都具有重要意义。
甲苯胺蓝染软骨原理
甲苯胺蓝染软骨原理
甲苯胺蓝是一种常用的软骨染色剂，它的染色原理涉及到其与软骨组织中的多糖类物质的特异性结合。
在进行软骨染色时，甲苯胺蓝会与软骨中的多糖类物质发生特异性反应，形成可见的染色复合物。
软骨组织中含有大量的多糖类物质，如硫酸软骨素和透明质酸等。
这些多糖类物质与甲苯胺蓝之间存在亲和性，甲苯胺蓝分子中的芳香环结构与多糖类物质中的羟基或羧基发生作用，从而形成复合物。
这种复合物在光学显微镜下呈现出特定的颜色，从而使得软骨组织能够被清晰地观察和分析。
甲苯胺蓝染软骨的原理是基于这种特异性结合的化学反应，通过染色使得软骨组织的结构和成分得以清晰展现。
这种染色方法在组织学研究和临床诊断中具有重要的应用意义，能够帮助科研人员和医生观察和分析软骨组织的形态和病变情况，为疾病诊断和治疗提供重要依据。
总的来说，甲苯胺蓝染软骨的原理是基于其与软骨中多糖类物
质的特异性结合，通过形成可见的染色复合物来清晰展现软骨组织的结构和成分，为科研和临床诊断提供帮助。
甲苯胺蓝试验液配制方法
甲苯胺蓝染色渗透试验
1.目的
根据ASTM F1929-2012标准方法采用染色渗透法检测无菌包装封口泄漏性能
2.设备及工具、材料
天平（万分之一）10mL注射器，甲苯胺蓝、曲拉通X-100（氚X-1004）、纯化水、烧杯、试管
3.配制方法
3.1.用天平称量0.5g Triton X-100，与20ml纯化水混合，搅
拌或摇动容器，混合二者。
待Triton X-100分散后。
再加入纯化水定容至100ml。
3.2.用天平称量0.05g甲苯胺蓝，加入混合了Triton X-100的溶
液中,搅拌或摇动容器混合均匀，即成0.05%甲苯胺蓝染色液4.试验方法
4.1.把已灭菌产品包装在试验开始之前，放置于大气温度23±
2℃（73.4±3.6oF）和相对湿度50±2%环境中进行存贮24小时】
4.2.依据ASTM F1929-2012标准，将足够的染料渗透液注入包装中，
覆盖最长的封边，深度约5mm（0.25英寸）（注入方法：可以使用带有软管的注射器通过切口送入染料渗透剂）使染料渗透液与封边保持接触最少5s最多20s的时间，旋转包装使每道封边都能接触渗透液，如有需要可以补充染色液，确保每道封边都能接触足够量的染色液。
通过包装的透明面目力检测密封区，看有无泄漏或者通道出现，也可使用放大镜进行细致的观察
5.检验标准
在包装透明的一边，用肉眼检测封口区域。
即可看见封口区的通道。
检查染色液有无透过密封区到达另一侧或染色液有无通过确定的通道进入密封区内部的迹象
6.注意事项
染色渗透液与包装材料封边的作用时间不应超过20秒
编写：日期：。
甲苯胺蓝染色液
甲苯胺蓝染色液(0.5%,磷酸盐法)产品简介：甲苯胺蓝(Toluidine Blue O)是一种常用的人工合成染料, 属于醌亚胺染料类, 这类染料主要含有胺基和醌型苯环两个发色团，从而成色原显色。
,甲苯胺蓝中的阳离子有染色作用, 组织细胞的酸性物质与其中的阳离子相结合而被染色。
甲苯胺蓝还含有两个助色团助色团，能促使染料产生电离成盐类, 帮助发色团对组织产生染色力, 使切片上的组织细胞着色，可染细胞核使之呈蓝色。
另外，肥大细胞胞质内含有肝素和组织胺等异色性物质，遇到甲苯胺蓝可呈异染性紫红色。
临床上，经常用甲苯胺蓝对软骨细胞和肥大细胞进行染色。
主要成分：主要由Toluidine Blue O、磷酸盐缓冲液等组成。
操作步骤（仅供参考）：(一)肥大细胞染色1、脱蜡至蒸馏水。
2、根据切片厚度和组织的不同，浸染于甲苯胺蓝染色液5～30min。
3、蒸馏水或去离子水轻轻冲洗3～5min。
4、(可选)0.5%冰乙酸分化，直到细胞核和颗粒清晰可见。
5、快速95%和无水乙醇脱水。
6、 二甲苯透明。
7、封固。
染色结果：肥大细胞呈紫红色；背景呈不同程度的蓝色。
(二)细胞涂片染色1、按要求稀释甲苯胺蓝染色液, 一般要求稀释到0.1%即可。
2、用稀释后的甲苯胺蓝染色液进行滴染，一般细胞涂片1～2min即可。
3、蒸馏水或去离子水轻轻冲洗3～5min。
4、晾干。
5、镜检。
(三)原位杂交染色1、用蒸馏水或去离子水稀释到相应的浓度，凭经验一般稀释比例大于1:100。
2、玻片在稀释好的染色液中短暂浸泡。
3、在蒸馏水或去离子水浸泡数次。
4、按需求进行压片固定。
注意事项：1、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
2、针对于胃粘膜组织、软骨组织等较难着色组织的染色，浸染于甲苯胺蓝染色液的时间应相应延长。
有效期：12个月有效。
相关产品：产品编号 产品名称DZ0040改良苯酚品红染色液DA0059甲苯胺蓝染色液(0.5%,硼酸盐法)DA0072中性红染色液(1%)DC0032Masson三色染色试剂盒DC0095核固红染色液(0.1%)DG0005糖原PAS过碘酸雪夫染色试剂盒DG0022淀粉样物质染色试剂盒(Highman刚果红法)DH0006苏木素伊红(HE)染色液试剂盒。
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产品号 401002 401041 401081 401032
产品 细胞周期检测试剂盒 线粒体膜电位试剂盒(JC-1) Caspase 3 活性检测试剂盒 AO/EB 双染试剂盒
产品号 401033 401072 401052 401037
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产品组成：
甲苯胺蓝染色液(细胞专用)
产品编号 甲苯胺蓝染色液(细胞专用)
BB-44527-1 20ml
BB-44527-2 50ml
储存条件： 室温避光保存。
有效期： 一年。
产品简介： 甲苯胺蓝(Toluidine Blue O)是一种常用的人工合成染料，属于醌亚胺染料类，这类染
料主要含有胺基和醌型苯环两个发色团，从而成色原显色。甲苯胺蓝中的阳离子有染色作用， 组织细胞的酸性物质与其中的阳离子结合而被染色。甲苯胺蓝还含有两个助色团，能促使染 料产生电离成盐类，帮助发色团对组织产生染色力，使切片上的组织细胞着色，可染细胞核 使之呈蓝色。另外，肥大细胞胞质内含有肝素和组织胺等异色物质，遇到甲苯胺蓝可呈异染 性紫红色，临床上经常用于肥大细胞染色。
贝博甲苯胺蓝染色液(细胞专用)适用于细胞内酸性黏液多糖染色，尤其适用于含硫用方法：
使用注意事项： ● 为了证实染色效果，可选用慢性粒细胞白血病血片(嗜酸性粒细胞)或再生障碍性贫血骨髓涂片(组
织嗜酸性粒细胞)作对照。 ● 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
细胞涂片染色 1、细胞涂片后，立即放入 95%的乙醇中固定 15s，取出放在纸巾上； 2、滴加甲苯胺蓝染色液进行滴染 5min； 4、滴加等量蒸馏水于涂片上混匀，染色 15min； 5、水洗、晾干、镜检。
结果分析： 细胞内酸性黏液多糖呈红色。
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