实验 试管苗移栽
试管苗的移栽和管理
试管苗的移栽和管理试管苗是指通过组织培养技术培育出来的植物苗,它们通常生长在试管中,具有较高的成活率和生长速度。
然而,一旦试管苗长大了,就需要将其移栽到土壤中进行进一步的生长和发育。
本文将介绍试管苗的移栽和管理方法,帮助读者更好地了解如何有效地移栽和管理试管苗。
一、移栽前的准备工作在移栽试管苗之前,我们需要做好以下准备工作:1. 准备好移栽所需的土壤和容器:选择适合试管苗生长的土壤,如腐殖质和营养丰富的土壤。
同时,准备好适合试管苗生长的容器,确保容器具有良好的透气性和排水性。
2. 适时进行移栽:根据试管苗的生长情况,选择适当的时间进行移栽。
一般来说,试管苗生长到一定高度或者根系发达时,就可以进行移栽了。
二、移栽方法1. 将试管苗取出:在移栽之前,先将试管苗从试管中取出。
可以用消毒的镊子或者其他工具轻轻夹住试管苗的茎部,将其小心地取出。
2. 处理苗体:将试管苗放在清水中,轻轻摇晃,让水冲洗掉试管外的凝胶物质。
然后,将试管苗放在含有生长调节剂的溶液中浸泡一段时间,有助于促进试管苗的生根和适应土壤环境。
3. 移栽到土壤中:将处理好的试管苗小心地放入事先准备好的容器中,确保试管苗的根系完整无损。
然后,将土壤填充到容器中,轻轻压实,使试管苗稳固地生长在土壤中。
4. 浇水和光照:移栽后,及时给试管苗浇适量的水,保持土壤湿润。
同时,确保试管苗能够获得充足的阳光或人工光照,促进其正常的生长和发育。
三、移栽后的管理移栽后,我们还需要进行相应的管理工作,以确保试管苗能够健康地生长。
1. 控制水分:试管苗刚移栽到土壤中时,根系可能较为脆弱,因此需要注意控制水分。
避免过浇水或者过干燥,以免对试管苗的生长造成不利影响。
2. 施肥:根据试管苗的生长情况,适时施肥。
选择合适的肥料,按照肥料的使用说明进行施肥,有助于提供足够的营养供给,促进试管苗的生长。
3. 定期修剪:试管苗在移栽后会不断生长,我们需要定期修剪试管苗的茎和叶,保持其形态美观,并促进其分枝和侧芽的生长。
试管苗的驯化移栽
试管苗的驯化移栽一、试管苗的生态环境组织培养出来的苗通称试管苗或组培苗。
试管苗长期生活在密闭容器中,形成其独特生态系统,与外界环境相比,有四大差异。
⑴高恒温试管苗整个生长过程中采用的是恒温培养,温差很小。
并且温度一般控制在25+2℃。
外界环境条件温度不断变化,其调节由太阳辐射决定,温差很大,而且一般不会达到25+2℃。
⑵高湿试管瓶内水分移动途径有两条:试管苗水分从气孔蒸腾,培养基水分向外蒸发,凝结后又进入培养基。
水分移动循环造成瓶内相对湿度接近100%,远远大于瓶外空气湿度,故试管苗蒸腾小。
⑶弱光试管瓶内光照一般比太阳光弱,幼苗生长也较弱,不能受太阳光直接照射。
⑷无菌试管苗所在环境无菌,与外界有菌环境不同,试管苗也无菌,同时,培养瓶内气体环境较为特殊,与外界环境有很大差异。
⑴试管苗生长细弱、茎叶表面角质层不发达。
⑵叶绿体的光合作用较差。
⑶叶片气孔数目少,活性差。
⑷根的吸收功能差。
⑸对逆境的适应性和抵抗能力较差。
二、试管苗的特点:⑴试管苗生长细弱、茎叶表面角质层不发达。
⑵叶绿体的光合作用较差。
⑶叶片气孔数目少,活性差。
⑷根的吸收功能差。
⑸对逆境的适应性和抵抗能力较差。
三、试管苗的驯化1、驯化的目的提高试管苗对外界环境条件的适应性,提高光合能力,使试管苗健壮,提高试管苗移栽成活率。
2、驯化原则调节温湿光和无菌等环境要素,开始和培养条件相似,后期与预计栽培条件相似。
3、驯化方法将长有完整试管苗的培养瓶由培养室转到伴遮荫的自然光下锻炼,并打开瓶盖注入少量自来水使幼苗逐渐降低温度,转向有菌,根据材料不同驯化天数有异。
四、试管苗的移栽a、常规移栽法将已诱导出大量根的试管苗,驯化3-5天,移到无菌基质(蛭石、珍珠岩、泥炭土或其混合物)中,当长出2-3片新叶时,栽到田间或盆钵中。
b、直接移栽法直接将试管苗移栽到盆钵的方法。
c、嫁接移栽法用试管苗做接穗嫁接在同一植物的实生苗上。
嫁接移栽优点:1、移栽成活率高。
2、适用范围广,嫁接移栽也适用于弱苗或污染苗。
试管苗移入苗床成活技术
试管苗移入苗床成活技术中国科学院亚热带农业生态研究所莫继荣摘要外植体消毒、外植体分化与再分化、试管苗移栽成活是植物组织培养(克隆)三大技术难点。
试管苗在密闭的瓶内培养基上无菌生长,光照较暗、湿度大、长势不旺,类似母体腹中婴儿;试管苗从瓶中移入苗床(称炼苗或驯化),就像婴儿降生,开始了从异养(渗透吸收养分)到自养(根毛吸收养分)的转化,必须精心呵护,使其根部长出有吸收功能的根毛,才能顺利成活。
本文介绍的是试管苗移入苗床保成活的关键技术。
1、苗床设施设计与建造一般植物,生长最适温度:地下部,2-5℃时根系开始活动,10℃时根系大量形成,最适生长温度是15~20℃;地上部是20~26℃。
气温低于5℃进入休眠,高于30℃生长受阻。
光补偿点是8000Lux左右,高温强光高湿不仅生长不好,而且容易发生病害。
试管苗从密闭的瓶内培养基上无菌生长,光照较暗、湿度大、长势不旺的主营异养生长,到适用外界环境的自养生长,存在一个逐步适用的过程,应该尽量避免冬季太冷、夏季太热时期炼苗。
我国北方冬天日光温室配备地热线+塑料小拱棚,南方冬天配备钢架双层膜覆盖塑料大棚+塑料小拱棚;夏天两地避开高温期,以4针遮阳网取代棚膜,遮阳网离地1米高开始覆盖,配备4针遮阳网小拱棚覆盖5-7天保湿(预备农膜防暴雨),可以延长试管苗炼苗期很多,具体用5厘米地温温度计与小工拱棚内气温温度计量温,指导实行。
完全用电力控制的智能温室作炼苗室,造价与运营成本太高,只适合特别稀有,生产量大的场合,但不能采取高架育苗。
2、苗床整地与施肥苗床必须选用肥力中等以上沙壤土或壤土,每亩初次使用苗床施1.5吨腐熟生物有机肥(以后减半),翻耕25厘米深。
开沟作畦:按南北方向,沟宽35厘米,畦宽1.5米整地,畦的四周作宽5-8公分、高5公分框边,框中央整平稍微压实,以利均匀填充炼苗基质。
炼苗基质:完全晒透过细河沙(刀口纱),有条件的地方可以用体积比为1:1的细河沙与草炭(太阳暴晒过)混合物,效果更好。
植物试管苗移栽技术
关键词 : 试管苗 ; 移栽 ; 菌根 丛枝
中图 分 类 号 : 93 Q 4. 1
文献 标 识 码 : A
文 章 编 号 :0600 (001-080 10—6X 2 1)103—3
Tr ns a i c o o y o a pl ntng Te hn l g fHor iulur lTe t u a s tc t a s -t be Pl nt
湖南农业科学
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H n n g cl r c n e u a 6 u uM S i cs A
邱金 梅
( 北京林 业 大学 园林 学 院 , 京 10 8 ) 北 0 0 3
摘 要 : 综述 了植物试 管苗 移栽的相关技 术, 从试管苗质量 、 菌根 、 丛枝 环境条件控制等 方面来提高试管苗 的移栽成 活率 , 为植
和适 应 的过程 。 目前 , 国内关 于试 管苗 的报 道和 研 究 比较 多 , 真正 应 用于 大规模 工 厂化 生产 的还 不 但 多, 试管 苗移 栽成 活率 低是 主要 原 因之 一 。应 从 环
境 控制 、 育 壮 苗 、 苗 、 培 炼 移栽 基 质 、 湿管 理 和 丛 温 枝菌 根应 用等方 面来 提高 试管苗 的移 栽成 活率 。
Ke y wor :ts—u es e l g ;rn pa t ab s ua erhz ds ettb e di s t sln; ru c lrmy or ia n a
试管 苗在 恒 温 、 高湿 、 弱光 、 氧等 特殊 环境 下 异
增 殖 与生 长 , 形态 、 剖 和生 理 特 性 与温 室 和 大 其 解 田生长 的植 株不 同 , 了适 应 移栽 后 的较低 湿度 以 为 及较 高光 照度 并进 行 自养 , 须要 有一 个逐 步锻 炼 必
植物组织培养——试管苗的生根与移栽
植物组织培养——试管苗的生根与移栽————————————————————————————————作者:————————————————————————————————日期:第六章试管苗的生根与移栽技能目标:要求学生在熟练掌握试管苗生根与驯化移栽的基本知识和技能的基础上,能够灵活应用,为试管苗工厂化生产服务,并能够解决试管苗生根与移栽中遇到的问题.知识目标:通过本章的学习和实践,了解影响试管苗生根和移栽成活的因素,熟悉试管苗生根和移栽的常用方法,掌握试管苗生根和移栽的基本技术.植物的组培快繁通过外植体的初代培养以及试管苗的继代增殖培养,往往诱导产生了大量的丛生芽、丛生茎或原球茎。
离体繁殖产生的芽、嫩梢和原球茎,一般都需进一步诱导生根,才能得到完整的植株。
当培养材料增殖到一定数量后,就要使部分培养物分流到生根培养阶段,并进行进一步的驯化移栽,使其适应外界的栽培环境,以获得高质量的商品苗.若不能及时将培养物转移到生根培养基上去,就会使久不转移的试管苗发黄老化,或者因过分拥挤而使无效苗增多造成抛弃浪费。
试管苗的生根与移栽是植物组培快繁的第三个阶段,也是植物组培快繁的最后一道工序,是能否进行大量生产和实际应用的重要问题,也是商品化生产出售产品、取得效益的最终环节.第一节试管苗的生根试管苗的生根培养是使无根苗生根形成完整植株的过程,这个过程的目的就是使试管苗生出浓密而粗壮的不定根,以提高试管苗对外界环境的适应力及驯化移栽的成活率,获得更多高质量的商品苗.试管苗的生根一般需转入生根培养基中或直接栽入基质中促进其生根,并进一步长大成苗。
试管苗的生根可分为试管内生根和试管外生根两种方式。
一、试管内生根(一)影响试管苗生根的因素植物离体培养中根的发生都来自不定根,根原基的形成与生长素有关,但根原基的伸长和生长可以在没有外源生长素的条件下实现。
影响试管苗生根的因素很多,有植物材料自身的生理生化状态,也有外部的培养条件,如基本培养基、生长调节物质以及外部的环境因素等等,要提高试管苗的生根率,就必须考虑这些影响因素。
葡萄试管苗的移栽和管理
葡萄试管苗的移栽和管理以葡萄试管苗的移栽和管理为标题,我们来探讨一下相关的内容。
试管苗是指通过组织培养技术将葡萄的花药和胚珠培养在试管中,待苗长出后再进行移栽和管理。
试管苗的移栽和管理是葡萄栽培的重要一环,对于葡萄的生长和发育起着至关重要的作用。
试管苗的移栽一般在苗长到一定高度时进行,一般为2-3片真叶展开时。
首先要准备好移栽的场地,选择阳光充足、排水良好的土壤,保证葡萄苗能够顺利生长。
场地的准备工作包括松土、施肥、排除杂草等。
在移栽之前,要先将试管苗取出,将试管中的培养基清洗干净,然后将苗的根系放入水中浸泡片刻,以便去除残留的培养基。
移栽时要注意保持苗的根系完整,尽量不要损伤根系。
移栽深度要适中,不要过深或过浅,可以根据苗的生长情况和土壤条件来决定。
试管苗移栽后,还需要进行相应的管理工作。
首先是浇水,葡萄苗需要适量的水分来保持生长。
浇水要适时适量,避免积水和干旱。
其次是施肥,葡萄苗需要充足的营养来支持生长。
可以选择有机肥或化肥进行施用,但要注意控制施肥量,避免过量造成根系烂根。
此外,还要注意杂草的清除,保持场地的整洁。
杂草会竞争养分和水分,影响葡萄苗的生长发育。
定期修剪也是管理的重要一环,通过修剪可以调整苗的形态,促进分枝和花芽的形成。
试管苗的移栽和管理还需要注意防病防虫。
葡萄苗易受到一些病虫害的侵袭,如葡萄霜霉病、葡萄黑腐病、葡萄蚜等。
可以使用合适的农药进行防治,但要注意使用方法和剂量,避免对环境和人体造成危害。
另外,定期巡查苗的状况,发现异常及时采取措施处理,防止病虫害的扩散。
葡萄试管苗的移栽和管理是葡萄栽培过程中的重要一环。
只有科学合理地进行移栽和管理,才能保证葡萄苗的生长健康,为后续的生长发育打下良好的基础。
希望以上内容对于试管苗的移栽和管理有所帮助。
植物组培技术原理之试管苗移栽
植物组培技术原理之试管苗移栽驯化试管苗移栽是组织培养过程的重要环节,这个工作环节做不好,就会造成前功尽弃。
为了做好试管苗的移栽,应选择合适的基质,并配合以相应的管理措施,才能确保整个组织培养工作的顺利完成。
试管苗由于是在无菌、有营养供给、适宜光照和温度近100%的相对湿度环境条件下生长的,因此,在生理、形态等方面都与自然条件生长的正常小苗有着很大的差异。
所以必须通过炼苗,例如通过控水、减肥、增光、降温等措施,使它们逐渐地适应外界环境,从而使生理、形态、组织上发生相应的变化,使之更适合于自然环境,只有这样才能保证试管苗顺利移栽成功从叶片上看,试管苗的角质层不发达,叶片通常没有表皮毛,或仅有较少表皮毛,甚至叶片上出现了大量的水孔,而且,气孔的数量、大小也往往超过普通苗。
由此可知,试管苗更适合于高湿的环境生长,当将它们移栽到试管外环境时,试管苗失水率会很高,非常容易死亡。
因此,为了改善试管苗的上述不良生理、形态特点,则必须经过与外界相适应的驯化处理另外,对栽培驯化基质要进行灭菌,因为试管苗在无菌的环境中生长,对外界细菌、真菌的抵御能力极差。
为了提高其成活率,在培养基质中可掺入75%的百菌清可湿性粉200-500倍液,以进行灭菌处理。
通常采取的措施有:对外界要增加湿度、减弱光照;对试管内要通透气体、增施二氧化碳肥料、逐步降低空气湿度等。
1、移栽用基质适合于栽种试管苗的基质要具备透气性、保湿性和一定的肥力,容易灭菌处理,并不利于杂菌滋生的特点,一般可选用珍珠岩、蛭石、砂子等。
为了增加粘着力和一定的肥力可配合草炭土或腐殖土。
配时需按比例搭配,一般用珍珠岩,蛭石,草炭土或腐殖土比例为1:1:0.5。
也可用砂子:草炭土或腐殖土为1:1。
这些介质在使用前应高压灭菌。
或用至少3h烘烤来消灭其中的微生物。
要根据不同植物的栽培习性来进行配制,这样才能获得满意的栽培效果。
以下介绍几种常见的试管苗栽培基质。
(1)河砂:河砂分为粗砂、细砂两种类型。
S8实验八试管苗的驯化与移栽(理论)
S8实验八试管苗的驯化与移栽(理论)实验八试管苗的驯化与移栽(理论)一、植物种质资源保存概念及类型植物种质资源保存是指利用天然或人工创造的适宜环境保存种质资源,使个体中所包含的遗传物质保持其遗传完整性和活力,并能通过繁殖将其遗传特性传递下去。
其保存类型有两种,即原生境保存和非原生境保存。
1、原生境保存是将植物的遗传材料保存在它们的自然环境中。
原生境保存的地方多是植物保护区,是保存植物整个群落的最好方法。
另一种方法为农田种植保存,即将原生境植物种植在农田中进行保护。
如云南水稻。
2、非原生境保存是将植物的遗传材料保存在不是它们的自然生境的地方。
非原生境保存方式有植物园、种子库、种质圃、试管苗库、超低温库等,具体保存方法有四种,即种植保存、贮藏保存、离体保存和基因文库保存。
二、种质资源离体保存离体保存方法有低温保存、超低温保存和生长抑制剂保存三种方法。
(一)低温保存是一种缓慢生长保存方法,是通过控制培养温度来限制培养物各种生长因子的作用,使培养物生长减少到最低限度。
低温保存的基本特征是保存材料的定期继代培养,不断繁殖更新;基本措施是控制保存材料所处的温度和光照。
一般,5—10℃适宜保存温带起源植物的试管苗,15—18℃可用于热带植物试管苗的保存。
除了温度的控制之外,适当缩短光照时间,降低光照强度,也能减缓材料的生长速度,延长保存时间。
延缓保存材料生长速度的另一项措施是改变培养基的成分。
种质库要定期检查,保持清洁,及时清除污染材料,并注意积累资料。
(二)超低温保存也叫冷冻保存,一般以液N2为冷源,使保存温度维持在-196℃。
1、保存原理低温冰冻过程中,如果生物细胞内水分结冰,细胞结构就遭到不可逆的破坏,导致细胞和组织死亡。
植物材料在超低温条件下之所以可以长期保存并能在离开保存环境后正常进行细胞分裂和分化就是在冰冻过程中避免了细胞内水分结冰,并且在解冻过程中防止细胞内水分次生结冰而达到植物材料保存目的。
植物细胞含水量大,冰冻保存难度大,投放液N2中易引起组织和细胞死亡,故须借助于冷冻防护剂,防止细胞冰冻或解冻时引起过度脱水而遭到破坏,保护细胞。
名贵菊花试管苗生根与移栽试验研究
名贵菊花试管苗生根与移栽试验研究名贵菊花是一种珍贵的花卉,因其花色艳丽、品种独特而备受喜爱。
由于名贵菊花种植难度较大,且难以大面积繁育,因此其价格较高,市场供应量相对较少。
为了解名贵菊花的生根和移栽特性,我们进行了一项试验研究。
本次试验选取了两个常见的名贵菊花品种,分别为“火焰菊”和“琉璃菊”。
试验设计分为两个阶段,首先是试管苗生根,然后进行移栽试验。
我们需要制备营养基质。
根据促进菊花生根的要求,我们选择了含有适量培养基的MS 培养基,将其加热至融化并灭菌。
接着,我们采集名贵菊花的茎尖组织作为试管苗的材料。
将茎尖切割成约0.5厘米长的组织块,并将其放置在培养基中培养。
试管内需要保持一定的温度和湿度,我们将试管放置在恒温箱中,并通过增加湿度控制试管内的湿度。
经过一段时间的培养,我们观察到试管苗开始生根。
生根期间,我们对试管苗的生长情况进行了观察和测量。
对于生根率的统计,我们随机选取了100株试管苗进行观察,并记录下生根的数量。
结果显示,“火焰菊”的平均生根率高于“琉璃菊”,分别为90%和80%。
接下来,我们对试管苗进行了移栽试验。
将试管苗移植到以腐殖土和园土为基础的育苗土中,并在移栽过程中注意保护根系,避免损伤。
对移栽后的苗期进行适当的保护,以促进其正常的生长发育。
通过观察和测量,我们发现在试管苗移栽后的3周内,苗高和叶片数量明显增加,根系也逐渐扩展。
尽管名贵菊花在移栽后需要进行适当的护理和管理,但大多数试管苗仍然能够成功地适应新的生长环境。
通过本次试验研究,我们得出了以下结论:1. 名贵菊花的试管苗生根和移栽具有一定的成功率。
在所选的两个品种中,“火焰菊”的试管苗生根率高于“琉璃菊”。
2. 移栽后的试管苗能够适应新的生长环境,并能够正常生长和发育。
本次试验研究为名贵菊花的繁育和种植提供了一定的参考,有助于提高名贵菊花的生产效率和市场供应量。
由于试验条件的限制,仍然需要进一步的研究来探索名贵菊花的生根和移栽特性,并进一步优化种植技术和管理方法,实现名贵菊花的规模化种植。
名贵菊花试管苗生根与移栽试验研究
名贵菊花试管苗生根与移栽试验研究为了探究名贵菊花试管苗的生根与移栽情况,本实验分别在不同的生长介质中进行了试验研究。
本实验采用的试管苗为名贵菊花‘车厘子’品种,在添加生长调节剂的情况下,将其接种到不同的培养介质中,以研究其生长状况。
试验结果表明,生长介质的种类和添加的生长调节剂对名贵菊花试管苗的生根和移栽具有显著影响。
一、生根试验研究本试验选取的三种培养介质分别为基础MS培养基、1/2MS培养基和NAA生长调节剂配合的MS培养基。
首先,对清洗过的名贵菊花试管苗进行消毒处理,然后在各种不同的培养介质中进行培养。
经过20天左右的培养,记录下名贵菊花试管苗在不同培养介质中的生根情况,结果如表1所示:表1:不同培养介质中名贵菊花试管苗的生根情况| 培养介质 | 试管苗数量 | 生根数量 | 生根率 || ---- | ---- | ---- | ---- || 基础MS培养基 | 20 | 3 | 15% || 1/2MS培养基 | 20 | 6 | 30% || NAA生长调节剂配合的MS培养基 | 20 | 15 | 75% |由以上数据可得出,NAA生长调节剂配合的MS培养基中的试管苗生根率最高,达到了75%。
其次是1/2MS培养基,生根率为30%。
基础MS培养基中的生根率最低,仅为15%。
因此,生长介质对名贵菊花试管苗的生根有着显著的影响。
由以上数据可得出,蛭石+珍珠岩+腐熟的黄土栽培介质中名贵菊花试管苗的成活率最高,达到了85%。
其次是蛭石+腐熟的黄土,成活率为70%。
珍珠岩+腐熟的黄土中名贵菊花试管苗的成活率最低,仅为55%。
因此,栽培介质对名贵菊花试管苗的移栽具有显著影响。
通过以上试验结果可以得出,名贵菊花试管苗的生根与移栽情况受到生长介质和添加的生长调节剂的影响。
生根的效果最佳的是NAA生长调节剂配合的MS培养基,生根率达到75%。
移栽的效果最佳的是蛭石+珍珠岩+腐熟的黄土栽培介质,成活率达到了85%。
地黄试管苗实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 探究地黄试管苗的快速繁殖技术。
2. 确定地黄试管苗的最佳培养基配方。
3. 分析地黄试管苗的生根和生长条件。
二、实验原理地黄试管苗的快速繁殖技术主要基于植物组织培养原理。
通过将地黄植物的茎段或叶片在无菌条件下诱导形成愈伤组织,再通过适当的培养基和生长条件诱导愈伤组织分化成试管苗。
本实验采用微扦插技术,通过调节培养基的成分和培养条件,提高地黄试管苗的繁殖效率和生长质量。
三、实验用品1. 地黄植物材料:茎段或叶片2. 无菌操作台3. 75%酒精、无菌水、无菌滤纸4. 0.1%氯化汞溶液5. MS培养基(大量元素)6. 磷酸二氢钾、硝酸铵、硝酸钙、硫酸镁等微量元素7. 琼脂8. pH计9. 烧杯、移液管、培养皿、试管等四、实验步骤1. 材料处理:选取健康的地黄茎段或叶片,用无菌水冲洗干净,然后用75%酒精消毒30秒,再用无菌水冲洗3次,最后用0.1%氯化汞溶液消毒5分钟,再用无菌水冲洗5次。
2. 愈伤组织诱导:将消毒后的地黄茎段或叶片切成1-2厘米的小段,接种到含有MS培养基的愈伤组织诱导培养基中,置于25℃、光照强度为2000勒克斯的培养箱中培养。
3. 试管苗诱导:当愈伤组织形成后,将愈伤组织切成小块,接种到含有MS培养基的试管苗诱导培养基中,置于25℃、光照强度为2000勒克斯的培养箱中培养。
4. 生根培养:当试管苗长到一定高度后,将其转移到含有生根激素的生根培养基中,置于25℃、光照强度为2000勒克斯的培养箱中培养。
5. 移栽:待试管苗生根后,将其从培养基中取出,洗净根部的培养基,移栽到蛭石或珍珠岩等基质中,进行室外培养。
五、实验数据记录和处理1. 记录愈伤组织诱导时间、愈伤组织形成时间、试管苗诱导时间、生根时间等。
2. 观察试管苗的生长状况,包括株高、叶片数、叶片颜色等。
3. 分析不同培养基配方对试管苗生长的影响。
六、结果与分析1. 愈伤组织诱导:经过15天左右,愈伤组织开始形成,愈伤组织颜色呈白色或淡黄色。
怎样移栽试管苗
。
根 部浸 泡 在 消毒
。
0 1 一0 3
. .
多 的 硫 酸 钠溶 液 中
,
进行
试 管 苗生 长 出 来 了
要移 栽到 土 壤 中 去
、
,
它 玲 珑剔 透 生 机 勃 勃 就
, ,
。
2
,
,
.
移栽
将 装 有培 养土 的 瓦 盆放 在 水 池 内
,
从 习 惯 了 的 条 件 十 分 优 越 的 试 管环 境 迁
。
然后 将 消 过
, ,
近 年 来 结 合植 物 育 种和 基 础 理 论 的研 究
,
影 响 缓苗 时 间 ) 冲 去 沾在 苗 上 的培 养 基 注 意
, ,
使组 织
,
、
器 官和 细 胞 的 培 养 工 作大 量地开 展 了
,
不 要 损 伤 了 根 茎 叶 特 别是 茎 然 后 将 幼 苗 的
, ,
、
、
起 来 经 以 上 方 法 培 养 出 来 的 幼 苗 叫 试 管苗
,
备土
试 管 苗 应 栽 培在 疏 松 的 土 壤 中
2
使 用 以 促 进 幼 苗 生 长 发 育 培养 出 壮 苗 达 到 预 期 的实 验 目的
。
可 用 过 筛后 的 河 砂 掺合
。
份 黑炭 土
,
、
3
份 熟土
,
、
5
份
并将
O 3
,
多的 硫 酸铜 溶 液 均 匀 地 喷 洒 在
,
混 合 好 的 土壤 上 以 预防 瘁 倒病
,
0 天 内 每天 试 管 苗 移栽 后 的 l一 3
【2024版】实验八试管苗驯化移栽
可编辑修改精选全文完整版实验八组培苗驯化移植试管苗移栽是组织培养过程的重要环节,这个工作环节做不好,就会造成前功尽弃。
为了做好试管苗的移栽,应该选择合适的基质,并配合以相应的管理措施,才能确保整个组织培养工作的顺利完成。
试管苗由于是在无菌、有营养供给、适宜光照和温度近100%的相对湿度环境条件下生长的,因此,在生理、形态等方面都与自然条件生长的小苗有着很大的差异。
所以必须通过炼苗,例如通过控水、减肥、增光、降温等措施,使它们逐渐地适应外界环境,从而使生理、形态、组织上发生相应的变化,使之更适合于自然环境,只有这样才能保证试管苗顺利移栽成功。
一、目的要求熟练掌握组培苗驯化移植技术。
二、实验材料及器具石斛组培苗、蛭石、珍珠岩、泥炭、苔藓、育苗盘、镊子、喷雾器、杀菌剂等三、方法与步骤试管苗养到3~5cm,且生有4~5条健壮根时,即可进行移栽,在移栽之前先要培育壮苗和开瓶炼苗。
1、炼苗将生根的试管苗从培养室取出,放在自然条件下1-2天,然后打开瓶口,再放置1-2天。
2、基质灭菌及育苗盘准备将配制好的移栽基质放在高压灭菌锅中灭菌,冷却备用。
或用化学药剂(如多菌灵、高锰酸钾等)进行基质灭菌。
将基质倒入育苗盘中,加水浸透基质备用。
3、组培苗脱瓶用镊子将组培苗轻轻取出,轻轻但要彻底地洗掉沾在根上的培养基,以免栽后发霉,注意种苗不受或少受创伤。
清洗干净后用0.1%多菌灵或0.3%~0.5%的高锰酸钾消毒杀菌5分钟。
4、移植用竹签在基质上打孔,将组培苗小心插入事先准备好的基质内,轻轻覆盖、压实。
再喷0.1%多菌灵或百菌清。
覆上薄膜保湿,遮荫处理,待幼苗成活后移栽大田。
四、数据统计试管苗移植成活率=(成活的试管苗数/移植试管苗数)×100%思考题如何提高组培苗移栽成活率。
组培实验五 驯化移栽
实验六组培苗的驯化、移栽一、实验目的熟练掌握驯化的各个技术环节,包括试管苗的取出、清洗、扦插、驯化观察等等。
二、实验材料实验材料:太子参生根的试管苗;三、实验场所:实验场所:组培实验室和驯化室(阳台)。
四、实验与步骤。
1、移栽前练苗移栽前将培养物不开口移到自然光照下锻练2-3天,然后开口练苗1-2天。
2、移栽:(1) 营养钵制作:取一次性塑料杯,在杯子侧面下部打3个孔,按100%腐殖土、100%黄泥土、黄泥土和腐殖土各50%装满,装后浇透水,准备扦插幼苗。
(2) 用镊子轻轻取出组培幼苗,轻轻洗掉根部粘附的培养基,切忌揉伤,取细竹签在营养钵上插一小孔,将幼苗扦插进去,用手轻压根部周转基质,将所有营养钵栽好后,并排摆好,轻浇薄水。
注意:幼苗较嫩,防止弄伤。
栽前基质要浇透水。
栽后移入高湿度的环境中,保证空间湿度达90%以上。
3、管理:1) 保持小苗的水分供需平衡。
用塑料薄膜支起小拱棚保湿,初期要喷雾处理,保持拱棚薄膜上有水珠出现,但要注意通风防止滋生杂菌,可逐渐减少湿度加大通风,以后逐渐揭去棚膜,并给予水分控制,促进小苗根系生长。
营养钵的培养基质要浇透水,所放置的床面也要浇湿,•搭设小拱棚,并且初期要常喷雾处理,•保持拱棚薄膜上有水珠出现。
后期减少喷水次数,将拱棚两端打开通风,•使小苗适应湿度较小的条件。
约15天以后揭去拱棚的薄膜,并逐渐减少浇水,促进小苗长得粗壮。
2)防止菌类滋生。
对基质进行灭菌。
对幼苗喷洒杀菌剂,使用多菌灵、托布津,每7-10天一次。
在移苗时尽量少伤苗。
3)喷水施肥:喷水时可加入0.1%的尿素,或用1/2MS大量元素的水溶液。
4)温、光条件:冬春季地温较低时,可用塑料薄膜覆盖或电热线来加温。
夏季可在小拱棚上加盖遮阳网或报纸等,后期当小植株有了新的生长时,逐渐加强光照,至直接利用自然光照。
5)保持基质适当的通气性,要选择适当的颗粒状基质,保证良好的通气作用。
管理过程中不要浇水过多,过多的水应能迅速沥除,以利根系呼吸。
试管苗的生根与移栽
第一节 试管苗的生根
一、试管内生根 二、试管外生根
第二节 试管苗的移栽技术
一、试管苗移栽难以成活的原因 二、提高移栽成活率的技术和措施
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试管苗的生根
一、试管内生根 (一)影响试管内生根的因素: 1、植物材料 2、基本培养基:1/2MS(1/2MS是指培养
基中的无机盐用量为MS的一半,由此类 推。)或1/3MS,甚至1/4MS培养基 3、植物生长调节物质 (1)生长调节剂使用方法及配比
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(2)生长调节剂使用方法
一步生根法
二步生根法,先将试管嫩茎在一定浓度植物 生长调节剂中浸泡或培养一段时间,然后再 转入无植物生长调节剂培养基中培养
4、其它物质
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砂培炼苗:即将试管苗从瓶内取出,用清水 洗去根际的培养基,立即移栽到盛有沙、蛭 石、珍珠岩等基质的浅盘中,覆膜保湿(相 对湿度85%左右)、控温(25℃左右), 一周左右
(三)适时移栽
试管苗生命力强、根系生长势旺、叶片展开、 苗高2.5cm左右,根为白色时移栽,适应性 强,成活率高。
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(四)防病保苗
移栽前,用0.4%的硫酸亚铁溶液处理,或 用25%多菌灵1000倍溶液湿润基质。也可 用0.3%KmnO4溶液淋湿基质
移栽时要洗净试管苗根部的培养基,以防止 病菌感染
移栽完毕浇透水,并用0.1%百菌清、多菌 灵或托布津、甲基托布津等喷雾保苗,
也可在移栽时用抗菌剂浸根,
5、继代培养代数
6、光照
7、pH值
8、温度
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二、 试管外生根
1 、生根小室生根 2、试管内诱导根原基瓶外生根 3、盆插或瓶插生根法 4、浸泡法
实验试管苗移栽
实验试管苗移栽实验五试管苗移栽⼀、实验⽬的:1. 了解试管苗移栽的⽬的,掌握其原理及操作流程;2. 熟悉试管苗移栽后的管理⽅法,能够进⾏正确的植株管理。
⼆、实验原理:试管苗是在⽆菌、恒温、适宜光照和相对湿度近100%的优越环境条件下形成的,并⼀直培养在富有营养成份与植物⽣长调节剂的培养基内,因此在⽣理、形态等⽅⾯都与⾃然条件⽣长的正常⼩苗有着很⼤的差异,存在⼀定的脆弱性,在移栽过程中很容易死亡,造成极⼤的经济损失。
从叶⽚上看,试管苗叶⽚表⾯的⾓质层不发达或没有,叶⽚通常没有表⽪⽑,或仅有较少的表⽪⽑,叶⽚上甚⾄出现了⼤量的⽔孔,且⽓孔的数量、⼤⼩也往往超过普通苗。
由此可知,试管苗更适合于在⾼湿的环境中⽣长,当将它们移栽到试管外正常的环境中时,试管苗失⽔率很⾼,⾮常容易死亡。
因此,为了要改善试管苗的上述不良⽣理、形态特点,则必须要经过与外界相适应的驯化处理,常采取的措施为:对外界要增加湿度、减弱光照;对试管内要通透⽓体、增施⼆氧化碳肥料、逐步降低空⽓湿度等。
此外,当试管苗移出培养容器后,⾸先遇到的是环境条件的急剧变化,同时,试管苗也需由异养转为⾃养。
因此,在移栽过程中必须创造⼀定的环境条件,使试管苗逐渐过渡,以利于根系的发育及植株的成活。
另外,因为试管苗在⽆菌的环境中⽣长形成,对外界细菌、真菌的抵御能⼒极差,为了提⾼其成活率,需对栽培驯化基质进⾏灭菌,在培养基质中可掺⼊ 75%的百菌清可湿性粉剂200~500倍液进⾏灭菌处理。
总体⽽⾔,试管苗在移栽过程中经历了由⽆菌到有菌、由恒温到变温、由弱光到强光、由⾼湿到低湿、由⾃养到异养的急剧变化,因此必须通过炼苗,例如通过灭菌、降温、增光、控⽔、减肥等措施,使它们逐渐地适应外界环境,从⽽使⽣理、形态、组织上发⽣相应的变化,使之更适合于⾃然环境,也只有这样才能保证试管苗顺利地移栽成功。
试管苗是否能够移栽成功,除要求试管苗⽣长健壮,既有发育完整良好的根系、其根的维管束⼜与茎相连之外,移栽后的养护管理也是⼀个⾮常关键的环节。
试管移栽后的日常管理措施
试管移栽后的日常管理措施试管移栽后的日常管理措施引言试管移栽是一种现代农业技术,通过将植物的幼苗培养在试管中,然后移栽到土壤中进行生长。
试管移栽可以提高植物生长的效率,并增加了对植物生长环境的控制。
然而,试管移栽后仍然需要进行一些日常管理措施,以确保植物的健康生长。
本文将介绍试管移栽后的日常管理措施。
植物定植试管移栽后的第一步是将植物定植到土壤中。
在将植物移栽到土壤中之前,需要确保土壤的质量符合植物的需求。
选择肥沃、排水良好的土壤,并进行充分的松土和施肥。
同时,还要为植物预留足够的空间,避免根系过于拥挤。
浇水浇水是试管移栽后的关键环节之一。
需要根据植物的需求和季节变化来合理浇水。
一般来说,植物在生长期间需要充足的水分以支持其生长和发育。
但是过量的浇水会导致根部腐烂,因此应该避免过度浇水。
根据土壤的湿度判断浇水的频率,保持土壤湿润但不过湿。
光照光照是植物生长所必需的能量来源之一。
在试管移栽后的日常管理中,保证植物获得足够的光照至关重要。
适当的光照可以促进植物的光合作用,提高植物的生长速度和产量。
根据植物的喜光性,将植物放置在光照充足的位置,或者使用人工光源进行补光。
温度和湿度温度和湿度也是试管移栽后需关注的管理因素之一。
不同的植物对温度和湿度有不同的需求。
一般来说,常温下(15-25摄氏度)的植物比较适应生长。
在夏季高温或冬季寒冷的情况下,需要采取措施调节温度,例如使用遮阳网或加热器。
同时,要保持适当的湿度,可使用喷雾器或添加湿度调节器。
施肥试管移栽后的植物需要适当的营养供应才能健康生长。
施肥是提供植物所需养分的重要方法之一。
可以使用有机肥料或化学肥料来满足植物对营养的需求。
在选择施肥方法和肥料种类时,需要根据植物的品种和生长阶段来进行合理选择。
病虫害防治病虫害是试管移栽后的植物常常会遇到的问题。
为了防止病虫害的发生,可以采取一些预防措施,如注意植物的卫生环境,定期清除病虫害源和落叶;使用合适的农药进行喷洒;增加植物的免疫力,如使用生物农药或添加促进植物健康的有机物质。
脱毒试管苗移栽大田栽培技术
脱毒试管苗移栽大田栽培技术
脱毒试管苗是一种将无病毒无害原种进行细胞培养后,再进行提取、分离、繁殖而得到的苗,具有无病、高质、高产、高效的特点。
移栽大田生产需要注意以下几个步骤:
第一步,选地。
在选地时,应对土壤进行检测,选择pH值适中、肥力较为丰富的土地。
尽量避免选用过度肥沃或过旱、过湿的土地,否则会影响苗木的生长和产量。
第二步,施肥。
在移栽之前,应先将土地进行肥力调整,确保苗木生长所需的养分充足。
一般情况下,每亩土地需要施入20-30公斤的腐熟有机肥,以及适量的氮、磷、钾等营养元素。
第三步,移栽。
在移栽时,应将苗木转移到事先挖好的苗床中,注意避免损伤苗木的根系。
移栽后,应及时给予足量的水分,并对苗木进行支架和固定,防止倒伏或者受到风雨等自然灾害的影响。
第四步,管理。
在移栽后的生产过程中,应加强对苗木的管理,包括及时除草、喷洒农药等措施,保证苗木的生长和产量。
同时,应加强对气候变化的监测,进行合理的灌溉和防治措施,确保苗木的生长状况。
通过以上几个步骤,实现脱毒试管苗的移栽大田生产就能够更加高效、稳定地进行。
在具体实践中,应结合具体情况进行科学调整和管理,努力提高苗木的生长质量和产量水平。
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实验五试管苗移栽
一、实验目的:
1. 了解试管苗移栽的目的,掌握其原理及操作流程;
2. 熟悉试管苗移栽后的管理方法,能够进行正确的植株管理。
二、实验原理:
试管苗是在无菌、恒温、适宜光照和相对湿度近100%的优越环境条件下形成的,并一直培养在富有营养成份与植物生长调节剂的培养基内,因此在生理、形态等方面都与自然条件生长的正常小苗有着很大的差异,存在一定的脆弱性,在移栽过程中很容易死亡,造成极大的经济损失。
从叶片上看,试管苗叶片表面的角质层不发达或没有,叶片通常没有表皮毛,或仅有较少的表皮毛,叶片上甚至出现了大量的水孔,且气孔的数量、大小也往往超过普通苗。
由此可知,试管苗更适合于在高湿的环境中生长,当将它们移栽到试管外正常的环境中时,试管苗失水率很高,非常容易死亡。
因此,为了要改善试管苗的上述不良生理、形态特点,则必须要经过与外界相适应的驯化处理,常采取的措施为:对外界要增加湿度、减弱光照;对试管内要通透气体、增施二氧化碳肥料、逐步降低空气湿度等。
此外,当试管苗移出培养容器后,首先遇到的是环境条件的急剧变化,同时,试管苗也需由异养转为自养。
因此,在移栽过程中必须创造一定的环境条件,使试管苗逐渐过渡,以利于根系的发育及植株的成活。
另外,因为试管苗在无菌的环境中生长形成,对外界细菌、真菌的抵御能力极差,为了提高其成活率,需对栽培驯化基质进行灭菌,在培养基质中可掺入 75%的百菌清可湿性粉剂200~500倍液进行灭菌处理。
总体而言,试管苗在移栽过程中经历了由无菌到有菌、由恒温到变温、由弱光到强光、由高湿到低湿、由自养到异养的急剧变化,因此必须通过炼苗,例如通过灭菌、降温、增光、控水、减肥等措施,使它们逐渐地适应外界环境,从而使生理、形态、组织上发生相应的变化,使之更适合于自然环境,也只有这样才能保证试管苗顺利地移栽成功。
试管苗是否能够移栽成功,除要求试管苗生长健壮,既有发育完整良好的根系、其根的维管束又与茎相连之外,移栽后的养护管理也是一个非常关键的环节。
试管苗移栽后的养护管理主要应注意以下几个方面:保持小苗的水分供需平衡、防止菌类滋生、保持一定的光、温条
件、保持基质适当的通气性、防止风雨的影响等。
总而言之,就是在光、温、水、气、肥各方面对小苗的整体生长环境进行调控。
三、实验仪器和药品:
1. 实验仪器:盆,塑料袋,标记牌,直尺,筛盘,小棍,竹签等;
2. 实验药品:百菌清,泥炭,珍珠岩,树皮等;
3.实验材料:‘中国先生’试管苗,蝴蝶兰试管苗
四、实验方法和步骤:
1. 炼苗:提前几天,将试管苗拿出培养室拿到常温下放置,待试管苗逐步适应外界的光照、温度和湿度后再进行移栽,即可提高移栽成活率;
2. 取出瓶苗并清洗:将试管苗从所培养的瓶中取出,放入水盆中,取时要小心地操作,切勿把根系损坏,然后把根部粘附的琼脂漂洗掉,要求全部除去,而且动作要轻,以减少伤根伤苗。
3. 灭菌浸泡:在百菌清1000倍液中浸泡3-4分钟后,用清水洗涤干净,在操作过程中一定切勿伤根伤苗;
4. 配制种苗基质:将泥炭、树皮按泥炭:树皮=1:1比例进行混合拌匀,均匀装入筛盘中;将水苔浸泡在水中充分吸水后,挤干水分备用。
5. 移植小苗:①泥炭树皮基质:移栽前,先将基质浇透水,并用竹签或小棍在基质中开一穴,然后再将植株种植下去,最好让根能够舒展开,且不要弄伤幼苗。
种植时幼苗深度应适中,不能过深或过浅,覆土后需把苗周围基质压实。
移栽时,要将标记牌放好。
②水苔:略微挤干水分,轻轻将小苗的根系包裹起来,一起放入小盆中,轻轻压实。
种植完成后,再将苗移入大棚中;
7. 养护管理:
①刚种下去的小苗暂时不用浇水,因为基质在种之前已经浸泡过水,种下后先喷一遍
杀菌剂,之后每天喷雾保湿,待过5天后再浇水;
②5天后,每隔10天来对小苗进行观察,捡出死亡的小苗,并统计死亡数量,用以计
算成活率。
②小苗刚种下去也以干养为宜,促进长根,故浇水不宜过勤。
新根长出来之前不用施
肥,预计种后一个月施肥即可。
五、实验结果:
1. 定期进行管理,拿走死亡的小苗等,死亡的小苗要计数,并于30d后统计成活率[成活率=(移栽的总苗数-死亡的苗数)/移栽的总苗数]
3. 每次管理时要进行观察,记录小苗的生长状况等。
六、思考题:
1. 试管苗移栽难以成活的原因主要有哪些?
2. 简述试管苗提高移栽成活率的技术和措施。