Cellometer细胞计数仪Auto T4中文操作手册
Cellometer细胞计数分析仪
Insert chamber in Cellometer Output data generated instantly
One click to generate more data
18
Vision 结果分析：
Automatically save all results in a data table Fluorescence intensity distribution
PBMC
platelets
PBMC
应用：酵母计数
应用背景: 酵母广泛应用于酿酒、生物燃 料的领域，由于其具有直径 小、出芽（budding)等特性， 常用方法计数比较困难。
常用方法: 手动计数
荧光染料： PI Oxonol
部分客户：
市场：
• Auto T4 • Auto X4（Auto 2000) • Vision
Cell size histograms
Automatically save cell images
Size vs. intensity scatter plot Export all data to Excel
Concentration calculator
可更换滤光片组件:
Cellometer Vision 应用：
Vision提供更加简便,快速的定量
检测细胞表面标志物的方法．
应用：原代肝细胞计数
首次实现原代肝细胞存活率的自动检测
AO & PI Stain
Live
Live
Dead
Live AO
Dead PI
应用：PBMC计数
Using fluorescent stains for accurate concentration and viability: •Fresh PBMCs •Splenocytes •WBCs in whole blood •BAL •Primary hepatocytes
cellometer k2操作手册
Cellometer K2操作手册一、概述Cellometer K2是一种基于荧光技术的细胞计数仪器，可以快速、准确地测量细胞的数量和活力。
其原理是利用荧光染料与细胞结合后的荧光强度来计算细胞的数量和活力。
本操作手册将详细介绍Cellometer K2的使用方法。
二、操作步骤1.准备样品：将待测细胞样品准备好，确保细胞浓度在可测范围内（1x10e5~1x10e7 cells/ml）。
2.加样：将样品加入到Cellometer K2的样品池中，加入适量荧光染料，确保染料与细胞充分结合。
3.开始测量：在仪器上选择相应的参数，如细胞大小、荧光通道等，然后点击开始测量。
4.数据分析：仪器会自动进行计数和活力分析，并将结果输出到计算机或打印机。
三、注意事项1.在使用Cellometer K2之前，请仔细阅读本操作手册，并确保了解其工作原理和操作方法。
2.请勿在仪器工作过程中打开样品池盖，以免影响测量结果。
3.在使用荧光染料时，请务必戴好防护眼镜和手套，避免直接接触皮肤和眼睛。
4.请勿在潮湿或灰尘较多的环境下使用Cellometer K2，以免影响测量结果。
5.在使用过程中如遇到任何问题，请及时联系厂家或专业维修人员。
四、常见问题及解决方法1.问题：测量结果不准确。
解决方法：检查样品是否在可测范围内，荧光染料是否适量，仪器参数设置是否正确。
如有问题，请进行调整。
2.问题：仪器无法启动。
解决方法：检查电源是否正常，仪器是否有故障。
如有故障，请联系维修人员进行检查和修复。
3.问题：测量速度较慢。
解决方法：检查样品是否在可测范围内，仪器参数设置是否正确。
如有问题，请进行调整。
同时，可以尝试关闭其他不必要的应用程序，以释放更多的系统资源供仪器使用。
五、维护与保养1.定期清洁仪器表面，保持清洁卫生。
2.定期检查仪器内部的零件是否松动或损坏，如有需要请及时更换。
3.按照厂家建议的保养周期进行保养和维护。
细胞计数仪的使用方法与结果解读
细胞计数仪的使用方法与结果解读细胞计数仪是一种用于准确计数和分析细胞数量的实验室工具。
它广泛应用于生物医学研究和临床实践中，能够对各种类型的细胞进行快速、方便和准确的计数。
本文将介绍细胞计数仪的使用方法，并提供一些关于细胞计数结果的解读。
一、细胞计数仪的使用方法细胞计数仪的使用方法通常分为以下几个步骤：1. 准备样本：将待检测的细胞样本制备成适当的悬浮液，确保悬浮液均匀且细胞密度适中，避免过高或过低的细胞浓度对计数结果产生影响。
2. 校准仪器：仪器通常需要进行校准，以确保结果的准确性。
校准步骤通常包括零点校准和参考样本校准。
零点校准是将样本室中的计数槽清空，使细胞计数仪认定该位置为零细胞计数；参考样本校准是使用已知细胞数目的样本进行校准，确保仪器对细胞的计数准确。
3. 收集数据：将制备好的样本注入细胞计数仪中，按照仪器操作说明进行测量。
一般情况下，细胞计数仪会自动吸取适量的样本并进行计数。
4. 记录结果：细胞计数仪会显示细胞计数和浓度等结果。
将结果记录下来，以备后续分析和解读使用。
二、结果解读细胞计数仪的结果解读包括两个方面：细胞计数和浓度。
下面分别进行解读：1. 细胞计数：细胞计数指的是在给定体积的样本中计算出的细胞数。
细胞计数结果可以用于评估细胞生长情况、细胞浓度和细胞活性等。
通常情况下，细胞计数较高可能表示细胞增殖活跃，而较低的计数值可能与细胞凋亡或生长停滞有关。
2. 细胞浓度：细胞浓度是指在单位体积中存在的细胞数量。
它是通过将总细胞数除以样本的体积来计算得出的。
细胞浓度的高低可以反映细胞的密度和稀释程度。
高浓度的细胞样本可能需要进一步稀释，以便进行后续实验或操作。
而低浓度的细胞样本则可能需要进行浓缩或寻找其他方法增加样本的细胞数量。
细胞计数仪的使用方法和结果解读需要根据具体实验目的和细胞类型进行调整和优化。
此外，操作时应注意消毒和清洁的问题，以避免细菌和其他污染物对实验造成干扰。
总结起来，细胞计数仪是一种非常有用的实验工具，它能够快速、准确地计数和分析细胞数量。
细胞计数器使用方法
细胞计数器使用方法细胞计数器使用方法1、细胞计数器接通电源，打开电源开关，十组数据和总数都显示“0”，若有显示不为“0”，则按一下“复位”键，使各组显示数据清零。
2、细胞计数器一般把常用的“中性分叶核、中性杆状核、淋巴细胞、单核细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性粒细胞、中性晚幼粒、变异淋巴、天真细胞”九种血细胞计数对应在九个计数键上，若进行上述九种血细胞计数，可直接按动相应的计数键进行计数。
3、细胞计数器没有定义的其它细胞的分类计数，用户可在第“——”组计数器上自行定义，按动相应的计数键进行计数。
4、细胞计数器的计数键中按动其中任一个键，都会听到蜂鸣器的“嘟”声，表示计数有效，相应的计数器加“1”，而Σ总数同时加“1”。
若计数时没有听到蜂鸣器的“嘟”声，则表示该次计数无效，需重新计数。
5、当计数的总数达到“100”，则本次分类计数已计满，可听到“嘟”的长声，请记下各组数据。
按一下“复位”键，显示屏全部清零，可连续计数。
（单路计满时，总数显示“100”，单路显示“FF”。
）6、假如计数的总数没有计满“100”，而需结束本次测量时，可按一下“%”键，在听到“嘟”声后，电脑自动将各组数据换算成百分比值显示在对应的显示屏上。
假如需要再精准明确，则再按一下“%”键，显示各组数据百分比的小数位（此时指示灯亮），总数不变。
（单路计数未满“100”时，按下“%”键显示“—”，此时总数显示值即为单路计数值）。
7、每次测量结束时，按一下“复位”键，十组数据和总数Σ都为“0”，细胞计数器恢复到初始状态，可以进行下一次测量。
1、细胞计数器应水平放置，阔别强电磁场的干扰，交流电源应有良好接地线，电源电压应在规定的范围内。
2、按计数键时，手指应按键的中心部位，用力要适当，过轻易接触不良而不计数，过重易损坏键。
3、细胞计数器使用结束，应切断电源，盖上防尘盖，并保持干燥。
细胞计数仪怎么操作
细胞计数仪怎么操作你知道细胞计数仪怎么操作呢?很多研究人员都在使用血球计数器，使用起来不方便，而自动的细胞计数仪使用方便，时间短，那么你知道细胞计数仪怎么操作吗?一起来看看。
文章目录细胞计数仪怎么操作1、细胞计数仪怎么操作1.1、将计数板及盖玻片擦拭干净,并将盖玻片盖在计数板上。
1.2、轻轻吹打细胞悬液,使细胞均匀分布;吸出少许细胞悬液滴在细胞入口,使细胞悬液充满盖玻片和计数板之间,静置1-2min,使细胞沉降;注意盖玻片下不要有气泡,也避免细胞悬液进入旁边的槽中。
1.3、在显微镜下对A/B/C/D四个大格内的细胞进行计数,压在大格四周边线上的细胞只计数压在2条边线上的细胞(如右侧和下方);若镜下有2个细胞组成的细胞团,则应按单个细胞计算;若细胞团数量较多,占细胞总量的10%左右,则说明细胞分散不好会导致计算不准确,需要重新制备细胞悬液。
1.4、按公式计数细胞数量:细胞数/mL=四个大格内细胞总数×104/4?(每一个大格的体积为长1mm×宽1mm×高0.1mm=0.1mm3,1mL=1000mm3,因此计算时需×104)。
2、细胞计数仪的原理2.1、电阻抗检测原理血细胞是相对不良导体,当血细胞悬浮电解质中,将小孔管插入细胞悬液,使其管内充满稀释液,当一个细胞通过小孔时,瞬间引起电压变化出现一个脉冲信号,细胞体积越大,引起脉冲越大,产生脉冲振幅越高。
2.2、流式细胞术加光学检测原理利用流式细胞术使单个细胞随着流体动力聚集的鞘流液在通过激光照射的检测区时,使光束发生折射、衍射和散射,散射光光检测器接受后产生脉冲,脉冲大小与被照细胞的大小成正比,脉冲的数量代表了被照细胞的数量。
3、白细胞分类原理白细胞三分类原理:根据电阻抗法原理,不同体积的白细胞通过小孔时产生的脉冲大小有明显差异,仪器根据脉冲的大小将白细胞进行分群。
标本中加入溶血剂,将红细胞溶解,仪器将从白细胞计数池中测量得到的大于35fl电子脉冲的数量作为白细胞计数。
细胞计数仪说明书
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快速参考卡 (QRC)
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登录我们的网站/countess，获取完整的使用说明书。 有关 Countess™ 自动细胞计数仪的技术规格及描述信息，请参见第 vii 页。
收到仪器后应立即
仔细检查仪器，是否在运输过程中发生损坏。确定仪器的所有部件 (包括上表列出的附 件) 是否配备齐全。必须与承运商签署损坏索赔条款。保证书不包括运输过程中造成的 损坏。
方法...............................................................................................................................................3
启动........................................................................................................................................................3 一般准则.................................................................................................................................................9 使用 Countess™ 自动细胞计数仪.......................................................................................................10 清洁与维护............................................................................................................................................19 更新和校准 Countess™ 自动细胞计数仪.............................................................................................20 疑难解析................................................................................................................................................22 Countess™ 自动细胞计数仪错误代码...................................................................................................24
自动细胞计数操作流程
自动细胞计数操作流程
自动细胞计数是一种快速、准确的细胞计数方法，常用于生物学实验和临床诊
断中。
下面将介绍自动细胞计数的操作流程，以便您更好地了解和掌握这一技术。
首先，准备工作是非常重要的。
在进行自动细胞计数前，需要准备好细胞悬液
样本和自动细胞计数仪。
确保细胞悬液样本的质量和浓度符合要求，避免杂质和空气泡的干扰。
同时，根据仪器的要求调整好仪器的参数和设置，确保仪器处于正常工作状态。
接下来是样本处理和加载。
将准备好的细胞悬液样本加载到自动细胞计数仪中，按照仪器的操作说明进行操作。
通常需要将样本倒入仪器的样本槽中，确保样本均匀分布并没有气泡。
然后根据仪器的指示启动仪器，进行细胞计数和分析。
在仪器进行细胞计数和分析的过程中，需要耐心等待结果的输出。
仪器会自动
识别细胞并进行计数，同时输出计数结果和细胞浓度。
在操作过程中要注意观察仪器的显示界面，确保数据的准确性和可靠性。
最后是数据分析和结果记录。
得到细胞计数结果后，需要进行数据分析和结果
的记录。
可以将结果导出到计算机进行进一步分析，比如细胞浓度的计算和细胞类型的鉴定。
同时，将结果记录在实验记录表或者实验报告中，以备后续的研究和分析。
综上所述，自动细胞计数的操作流程包括准备工作、样本处理和加载、仪器操作、数据分析和结果记录等步骤。
正确的操作流程和细致的实验操作可以确保细胞计数的准确性和可靠性，为后续的实验和研究提供有力的支持。
希望以上内容能够帮助您更好地理解和掌握自动细胞计数的操作流程。
如果还有任何疑问，欢迎继续咨询。
自动血细胞计数器说明书
Assessment of blood cell counts i.e. Red Blood Cells (RBC), White Blood Cells (WBC) or plateletsfrom manual and automated cell counters is central to the diagnosis and management of hematologic diseases. Only with just few exceptions, most of the manual methods are replaced by automated particle counter methods. The selection of analyzers with a variety of technological principles and techniques is made further complex due to the addition of newparameters and their specific utility throughout the patient care process.The current generation of hematology analyzers is equipped with new and improved specific parameters, which are useful to clinicians not only for diagnostic information, but also providing invaluable prognostic value for their patients. Many new hematology parameters have been added by instrument manufacturers, some with just different terminology but similar clinical value as have been available earlier. Leukocyte differential countWhite blood cells, or leukocytes, are an important part of body’s immune system as they are responsible for protecting the body against infections and invading organisms. WBC differential determines the percentage of each type of white blood cell present in the blood. A differential can also detect immature white blood cells and abnormalities, both of which are signs of potential issues.There are five types of leukocytes (lymphocytes, monocytes, neutrophils, eosinophils and basophils). Apart from basophils, these can be visualized on the LMNE Matrix (Figure 1) of Yumizen hematology analyzers. In this matrix, optical extinction (Y-axis) is plotted against volumes (X-axis) to form an image with several clusters of cells.Yumizen hematology analyzers are characterized by their capacity to manage precisely whole blood volumes added to their high level of automation. This allows accurate defining two additional parameters for leukocyte populations: Atypical lymphocytes (ALY) and Large Immature Cells (LIC), reported in percentage as well as absolute counts.What are Large Immature Cells?LICs are a minor subset of WBCs normally found in bone marrow tissue where the hematopoiesis takes place. This subset consists of various immature forms of myeloid or lymphoid cells combined. In certain clinical or even physiologic conditions, LICs, not fully matured, especially in terms of their size and complexity, may get released into the peripheral blood. Thus, they are found to be larger than normal mature blood cells, and immature in their nuclear complexity and in the extent of their cytoplasmic granularity.Figure 1 : LMNE MatrixKeywords: White Blood Cells, LMNE Matrix.These events occur both in benign (reactive to stress, infection or bone marrow regeneration) or neoplastic disorders (myeloproliferative disorders, leukemias or lymphoproliferative disorders). Among the LICs, we can find (1):•Promonocytes •Monoblasts •Metamyelocytes •Myelocytes •Promyelocytes •Myeloblasts•Blasts (myeloid or lymphoid) •Prolymphocytes •MegakaryocytesSeveral blood diseases have been investigated by biologists and the LIC parameter showed an acceptable correlation between automatic and manual counts. This parameter was definitively used for flag purpose. we have to recognize that it is designed to detect and flag abnormal cells in the sample on electro-optical attributes and further cytology analysis is needed to provide more information on a patient’s condition.LIC parameter on Yumizen hematology analyzers In the high end, state-of-the-art Yumizen H series of instruments from HORIBA Medical, total LICs are represented as sum of IMM (Immature Monocyte), IML (Immature Lymphocyte) and IMG (Immature Granulocyte) (2). Such cells, when presented to the analyzer, are identified as a separate group in the LMNE Matrix (Figure 2). The LIC parameter is thus used to flag samples containing cell subpopulations mentioned above. LIC parameter, along with IMM, IML and IMG is given by Yumizen H1500 and H2500 for research purpose only (RUO) and should be interpreted carefully. However, we have tried to enhance this additional information given by the analyzer by determining a reference interval for a given population. The study was performed according to the CLSI C28-A3 guideline (Defining, Established, and Verifying Reference Intervals in the Clinical Laboratory). A total of 240 (120 males and 120 females, > 18 years of age) whole blood samples collected in EDTA from apparently healthy Caucasian donors were analyzed in duplicate on three instruments, two Yumizen H2500 and one Yumizen H1500. Samples were kept at room temperature between the sampling and the test. The reference interval was determined in order to include the lower and upper reference limits, which enclose 95% of the values from the reference population subjects. The results are given in Table 1.LIC% IML% IMM% IMG% FemaleLowerreferencelimit0.00 0.00 0.00 0.00Upperreferencelimit1.30 0.10 0.30 1.20MaleLowerreferencelimit0.00 0.00 0.00 0.00Upperreferencelimit0.80 0.10 0.20 0.60Bibliographicdata(maleandfemale)Lowerreferencelimit0.00 0.00 0.00 0.00Upperreferencelimit3.00 0.25 0.50 2.00As obtained values vary with sample populationand/or geographical location, it is highlyrecommended to each laboratory establish itsown normal ranges based upon its localpopulation. In this context, according to the §5.5.2 of the Standard ISO 15189:2012, thelaboratory shall define the biological referenceintervals or clinical decision values for a specificparameter in order to validate a test result.Reference intervals shall be based either onnormal values observed after a series of tests in a Figure 2 : LICs on LMNE MatrixTable 1: Lower and upper reference limitsdetermined by the study for LIC parametercompared to values from bibliographic data (3, 4). Keywords: Yumizen H1500 and H2500, Reference values, RUO.healthy population, or, if it is not possible to use this method, on reliable scientific data.LIC Alarm:The large immature cells morphological alarm appears when the number of counted particles in a given area of LMNE matrix (Figure. 1) is higher than the limit set by the LIC# or LIC% of counted particles in relation to the total number of WBCs. Based on our internal study and the bibliographic data, the LIC alarm values are set at both 3% and 0.30# (Table 2).What is their clinical significance?A small number of blasts and poorly differentiated monocytes are commonly found in the peripheral blood of healthy individuals(5). During the study, we also observed a higher number of large immature cells in men, compared to women. However, their number remains small despite the variability of the results sometimes obtained for the same individual. Care should be taken while interpreting the LIC count results of pediatric patients, especially neonates, due to their immature immune systems and the greater number of immature cells in the circulating blood.Immature myeloid populations, such as promyelocytes-myelocytes, metamyelocytes, band neutrophils, monocytoid precursors, and activated monocytes are released in infectious disease, especially as an early response. In this context, a "left shift" is a term used to denote that there are young/immature white blood cells present. It indicates that infection/ inflammation present has induced a bone marrow response of increased WBC production followed by early release into blood even before they have fully matured. Clinician should be alerted if such LIC-flagged sample is from the immunocompromised or critically ill individual. The sensitivity for flagging a left shift on Yumizen hematology analyzers increases with an increasing proportion of neutrophil bands, metamyelocytes, myelocytes and promyelocytes (6, 10).Myelodysplastic syndrome(MDS) is a condition in which stem cells present in the bone marrow fail to mature normally into red blood cells, white blood cells, and platelets. Circulating micromegakaryocytes, multiple small nuclei separated by strands of nuclear material and large mononuclear cell with dysmorphic nuclear features have been described in peripheral blood of patients with MDS. Although there are several co-criteria that help to confirm the diagnosis of MDS, including studies with flow cytometry, bone marrow histology and immunohistochemistry, or molecular markers, the LIC flag can be a first warning sign for a serious clinical problem (7, 8). ConclusionTen years ago, HORIBA Medical introduced the extended 5 part diff comprising Immature Granulocyte, Monoblast and Lymphoblast counts based on volume and optical extinction measurements, with two additional populations, the LICs and ALY. Since then, the LIC parameter has been used to flag samples containing abnormal leukocytes. When immature or abnormal white blood cells are present, automated differential results warrant a manual blood smear review. Compared to similar products, Yumizen hematology analyzers have a good performance of the 5-part leukocyte differential analyses and LICs, strongly correlated to microscopic cytology analysis (9, 10).Taken alone, the LIC parameter gives little insight, but which nevertheless remains a precious supplementary information obtained quickly, without any additional reagent, and therefore at no additional cost.Standard Men Women Pediatric 0-6 years Pediatric 6-21 yearsh H h H h H h H h H LIC # 0.20 0.30 0.20 0.30 0.20 0.30 0.35 0.25 LIC % 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0Table 2: Instrument set cut-off limits (high –h and critical – H values).Keywords: LIC Alarm, Left shift, Myelodysplastic SyndromeReferences1.DP.Lokwani, The ABC of CBC, Interpretation of Complete Blood Count & Histograms, JP Medical Ltd,20132.Clinical Case Studies, Interpretation Guide for HORIBA ABX Series 5-Part Hematology Analyzers3. C. Sultan / M. Gouault - Helman / M. Imbert, AIDE MEMOIRE D'HEMATOLOGIE. Service Centrald'Hématologie de l'Hôpital Henri Mondor, Faculté de médecine de Créteil (Paris XII). 1998 Troussard X, Vol S,4. E. Cornet, V. Bardet, JP. Couaillac, C. Fossat, JC. Luce,E Maldonado, V. Siguret, J. Tichet, O. Lantieri, J.Corberand. Full blood count normal reference values for adults in France. Journal of ClinicalPathology (2014) 67 (4): 341-4.5.J. Oertel, B. Oertel, J. Schleicher, D. Huhn, Detection of small numbers of immature cells in the bloodof healthy subjects. Journal of Clin Pathology, 1998;51:886–8906.R Siekmeier 1 , A Bierlich, W Jaross, The white blood cell differential: three methods compared,Clinical Chemistry and Laboratory Medicine, 2001 May;39(5):432-45.7.G. A. Hamid, A. W. Al-Nehmi and S. Shukry, Diagnosis and Classification of MyelodysplasticSyndrome. Book: Recent Developments in Myelodysplastic Syndromes, January 30th 2019,IntechOpen.8.Peter L. Greenberg,James E. Thompson, MD, and Peter Westervelt, MD, PhD, MyelodysplasticSyndromes. Clinical Practice Guidelines in Oncology. Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 2011 January ; 9(1): 30–569.M. Małeckaa, and O. Ciepielaa, A comparison of Sysmex-XN 2000 and Yumizen H2500 automatedhematology analyzers, Practical Laboratory Medicine. 2020 Nov; 22: e00186.10.ME. Arroyo, MD. Tabernero, MA. García-Marcos, A. Orfao, Analytic performance of the PENTRA 80automated blood cell analyzer for the evaluation of normal and pathologic WBCs, American Journal of Clinical Pathology, 2005 Feb;123(2):206-14.Thanks, note:“The authors thank Dr Parag Dharap, MD, D r. Dharap's Diagnostic Centre, Mumbai, India for manuscript review and for general advice"。
活细胞计数仪的操作说明
活细胞计数仪的操作说明第一步：准备工作1.1检查仪器：确保活细胞计数仪处于工作状态，并且连接正常。
检查显示屏和键盘，确保所有功能正常。
1.2准备反应室：打开仪器顶部的前盖，清洁反应室的内部表面（使用无纤维纸巾或室内和细胞培养消毒剂）。
第二步：样品制备2.1预处理细胞样品：根据实验需求，使用相应的方法预处理细胞样品。
这可能包括培养、处理细胞或转染等。
2.2样品稀释：将预处理的细胞样品适当稀释至所需浓度。
确定稀释倍数以确保在活细胞计数时细胞在仪器的检测范围内。
第三步：设定仪器参数3.1打开活细胞计数仪，等待设备预热。
根据实验需要选择合适的检测模式（例如终点模式和连续模式）。
3.2 设定波长：根据细胞溶胀产生的荧光波长选择适当的检测波长，常见的波长包括488nm和555nm。
3.3设置检测参数：根据细胞类型和大小，调整增益、阈值和激光功率等参数，以达到最佳的检测结果。
第四步：启动测量4.1将稀释后的细胞样品缓慢注入活细胞计数仪的反应室。
确保样品完全填满仓内，避免产生气泡。
4.2关闭反应室前盖，确保密封。
启动测量过程，仪器将开始计数细胞并产生测量结果。
4.3如果需要连续测量多个样品，确保清洗仓内以防止交叉污染。
第五步：记录数据5.1完成测量后，仪器将显示测量结果，包括细胞总数、浓度和平均细胞大小等。
5.2记录结果并保存数据，同时可以根据需要打印测量报告。
5.3清洁和消毒活细胞计数仪的反应室和所有接触样品的部件，以防止交叉污染。
其他注意事项：-在测量过程中，确保环境干净，避免尘埃和异物进入仪器。
-每次测量前，请检查和校准仪器，以确保获得准确的测量结果。
-避免使用过多的荧光染料，以免影响测量结果的准确性。
-在使用活细胞计数仪之前，应详细阅读和理解仪器的操作手册并遵循相关安全操作规程。
总结：活细胞计数仪是一种非常有用的实验设备，可以快速、高效地计数和评估细胞数量。
通过正确的操作流程和仪器参数设置，可以获得准确的测量结果。
Cellometer细胞计数仪Auto T4中文操作手册
T4 中加样室中的细胞样品。计数结束后，取出，反转插入计数板，计数另一加样室中样品。
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达科为生物技术有限公司产品资料
2.2.4 焦距调节 1.打开电源，运行 cellometer 软件。 2.加样后，将 CHT4 计数板插入 Auto T4。
界面的左侧显示细胞计数的结果，包括：计数细胞数，直径均值，以及细胞浓度。如果选择了细胞存活 率检测，结果将只显示活细胞计数以及细胞存活百分率。 2.2.7 数据保存
细胞计数结果可以保存为数据文件。界面的左下角显示数据文件名称及存储位置。如需更改，选用菜单
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达科为生物技术有限公司产品资料
栏中 File->New Data File 选项，点击保存。 2.2.8 图像保存
中心过亮的死细胞 此类细胞的典型特征是中心区过亮，如下图所示，参数中的“Sensitivity”用来检测此类死细胞。可以看
到随着“Sensitivity”的升高，检测到的死细胞数目增加。
CHO
CHO
CHO
CHO
CHO
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达科为生物技术有限公司产品资料
CHO 细胞参数设置 3.5 去团簇参功能数调整
分辨率显微图像由 Cellometer®软件分析并获得计数结果。计数面积相当于血球计数
板四个角的面积。
1.1 细胞计数板
细胞计数板包含两个独立的，精确控制高度的加样仓。通过加样孔，每个加样仓中可加入 15-20μL 细胞悬 液。
细胞计数板
1.2 细胞计数步骤
操作简便，快速，3 步即可完成。
每个加样室有 2 个孔，一个用于加样，一个 用于排除空气。.
细胞计数仪操作规程
1.目的为了规定了细胞计数仪的操作、维护清洁及注意事项，以达到操作者正确操作及维护的目的。
2.范围适用于细胞计数仪的操作、维护清洁及注意事项。
3.工作职责由仪器使用人员执行本操作规程。
4.工作程序4.1 准备确认使用登记显示正常。
确认电源系统完好、正常。
4.2 操作4.2.1 启动电源；4.2.2 初次设定Background Image（1）设置Background Image。
初次使用时需要设置Background Image，设备不再移动的情况下不需要重新设置。
（2）确定设备中无载玻片，点击Setting进入，然后点击Take Background Image。
（3）点击Cell line,Total Cell Conc.，然后点击Preview，检查Background Image。
此时应该显示白色视野，如果出现黑色区域需与技术部门联系。
4.2.3 自动保存的设置（1）连U盘；点击Setting，然后点击Saving Option。
（2）点击Auto Save to Data File和Save Raw Images，设置为On。
点击File和Folder设置存储位置。
点击Done两次。
4.2.4 计数（1）载玻片加样孔加样20μl，插入测量孔。
选择Cell line,Total Cell Conc.测量方法。
（2）点击Preview Image for Current Assay，通过Focus上下调节焦距，直至边缘清晰。
（3）点击Count，等待计数结束，点击左侧的View Details，点击View Counted Image，通过Zoom In放大视野，确认计数细胞是绿色的。
4.3 清洁操作规程结束使用仪器后，用抹布擦拭细胞计数仪表面，保持细胞计数仪表面干净，无尘。
4.4 维护保养操作规程机器表面应经常清洁，保持干净。
长期不用时应拔下电源插头，将机用塑料套罩住。
每月对计数仪进行一次清洁。
cell counter使用方法
cell counter使用方法
使用Cell Counter工具的方法如下：
1. 打开Cell Counter工具。
可以在计算机的应用程序列表中找到该工具，或者通过在计算机的搜索栏中输入“Cell Counter”来查找。
2. 在Cell Counter界面上选择要计数的细胞类型。
例如，选择“红细胞”或“白细胞”。
3. 准备一张包含要计数的细胞图像的图片。
可以通过拍照或从计算机中导入图像文件。
4. 在Cell Counter界面上点击“打开图像”按钮，然后选择要计数的细胞图像。
5. 使用鼠标点击细胞图像中的每个细胞来计数。
每次点击都会在图像上显示一个计数标记，并且每个点击都会相应地增加计数器的数量。
6. 如果需要，可以使用工具栏上的其他功能来增强计数过程。
例如，可以使用“放大”和“缩小”按钮来调整图像的放大倍率，或使用“清除所有标记”按钮来删除所有计数标记。
7. 在计数完成后，可以将结果保存为文件或进行其他相关的分析。
请记住，Cell Counter工具只是一个辅助工具，实际细胞计数的准确性仍然取决于操作者的技巧和图像质量。
因此，确保在进行计数之前对图像进行适当的准备和校正非常重要。
自动细胞计数仪安全操作及保养规程
自动细胞计数仪安全操作及保养规程引言自动细胞计数仪是现代生命科学和医疗诊断中广泛使用的仪器之一，可以快速、准确地测定细胞数量和浓度等参数，对于细胞培养、体液检测、药物研发等方面都具有重要的应用价值。
但是，由于自动细胞计数仪使用涉及到电器设备和化学试剂等，安全风险也相应增加。
为了保障使用人员的生命财产安全，本文主要介绍自动细胞计数仪的安全操作规程和保养方法。
安全操作规程1.接线前，应先查看电源和电缆的状态，确保无损坏、松动等现象，然后才能进行接线操作。
2.使用前，应先检查仪器是否正常运转和校准，避免因故障而对人员和试样产生危害。
3.使用化学试剂时，应按照试剂说明书的要求严格操作，如需使用有毒试剂，则应采取相应的防护措施。
4.操作过程中，应保持手部干燥，避免误操作、短路、电击等安全事故的发生。
5.使用完毕后，应先关闭电源、拔下电缆，然后再进行清洁、维护等操作。
6.发现仪器有异常情况时，应立即停止使用，并及时通知维修专业人员进行检修。
7.为防止误操作，仪器的使用应由经过专业培训的人员才能使用。
保养方法1.仪器的外部应定期进行清洗，用湿布擦拭外壳和电线，以防止灰尘和污垢进入器件，影响仪器的正常运转。
2.清洗试剂仓时，应使用干净的试剂或纯净水进行冲洗，避免化学污染。
3.定期检查和更换电池，以保持仪器的正常使用。
4.保持仪器的通风环境良好，避免在不合适的温度和湿度条件下使用。
5.定期维护仪器的内部组件和清洗管路，以确保试剂进出的畅通和使用效果。
6.仪器的使用寿命和性能与存储条件有关，应当按照厂商要求的温度、湿度存放，切勿在潮湿的环境下存放仪器。
7.在使用光源时，应注意避免直视光源和眩光，以免对眼睛造成伤害。
结论通过本文的介绍，在平时的使用和保养过程中遵循安全操作规程和保养方法，就能够更好地保护自身安全和仪器性能，避免因不当操作而带来的风险和损失。
同时，也增强了对生命科学和医疗治疗研究的信心和信任。
Mini细胞计数仪的操作说明
Cellometer Mini细胞计数仪操作介绍一、 启动Cellometer Mini电源连接好之后，打开电脑mini软件，即启动仪器。
二、 取背景影像1、当第一次使用Cellometer Mini时，应该取背景影像。
以后不要再取，除非移动了仪器2、仪器不要滑动3、点击“Settings”按钮，然后点击“Take Background Image”按钮4、检查背景影像，可以点击Cell Line , Total Cell Conc. Assay和Preview Image按钮。
所显示的应该是白色的屏幕。
如果出现暗区或者一些变化，联系技术支持三、 设置自动保存1、点击“Settings”按钮，然后点击“Saving Options”按钮2、将“Auto Save to Data File”和“Save Raw Images”点到“On”位置，点击File和 Folder按钮，不同情况下选择不同路径并进行命名。
保存的图像可以作为原始数据永久保存，也利于提供给技术支持4、点击“Done”，然后再点击“Done”四、 台盼蓝存活率测定中样品的准备1、Cellometer Mini可以分析的细胞浓度范围为1.0 x 105到 1.0 x 107 cells/mL，最佳细胞浓度是1.0 x 106 cells/mL2、将样品管上下颠倒十次，吹打细胞样品十次以混匀细胞样品、减少细胞团。
不要震动或旋转样品，以免产生气泡3、进行细胞存活率测量时，用50 μl，0.2%的台盼蓝溶液（最终浓度为0.1%的台盼蓝）混合50 μl的样品将细胞染色。
上下吹吸十次，轻轻混匀五、 使用Cellometer Mini进行细胞浓度和台盼蓝存活率测量1、将已染色的细胞样品轻轻吹吸十次，以打破细胞团2、吸取20μl样品，加到Cellometer计数板中（CH4）3、将计数板插入仪器中4、点击“Cell line, viability trypan blue”5、点击“Preview Image for Current Assay”6、如有需要，使用屏幕左边的粗调、微调来调节焦距，调好之后，细胞中心明亮，边缘清晰7、点击屏幕底部的Count按钮8、点击屏幕底部左边的“View Details”按钮，然后点击屏幕左手边的“ViewCounted Image”按钮9、预览计数图像。
Cellometer全自动细胞计数分析仪
Cellometer®全自动细胞计数分析仪Nexcelom Cellometer ®全自动细胞计数分析仪具有以下优势：小型化：可放入超净台 样本需要量低：15-20 uL/样品 全自动操作，避免人工误差快速：<30s/样品*，每天（8小时）可计数900次以上 无需洗涤，无堵塞和交叉污染问题 与同类产品相比，使用成本最低 无需特殊试剂稀释样品读数时间 成像时间<5s ， 计数时间<30s* 输出数据细胞图像 活细胞计数 细胞直径均值 细胞存活率 活细胞浓度细胞大小柱状图图像特征样品量性能（CV%）实时观察细胞数据与图像可存储 区分成簇细胞 手动调整15 uL- 20 uL2%-5% 举例：Jurkat:2.27% YAC-1:3.17% H460:5.57% SW620:2.79%美国Cellometer®全自动细胞计数分析仪采用世界领先的细胞成像技术，可以进行细胞计数，及细胞存活率分析，同时可绘制细胞大小柱状图。
全自动操作，避免人为误差。
无需额外试剂，无堵塞及交叉污染。
步骤1: 加样20µL步骤2: 插入计数板步骤3: 读取数据即插即用，省时省力功能举例：1. 细胞浓度，细胞存活率检测Cellometer®细胞自动计数分析仪既可检测细胞浓度和细胞大小（下左），也可以通过台盼蓝染色检测活细胞浓度及细胞存活率（下右）。
2. 细胞大小直方图Cellometer®软件可以获得细胞大小直方图用于鉴别样本中不同的细胞类型或者监测细胞培养过程中细胞大小的改变。
PBMC培养所得在细胞大小直方图中显示两个细胞群。
一个细胞群被设置检测DC细胞的浓度，而另一个细胞群被设置检测更小的细胞。
SF9细胞被病毒感染后细胞显著变大。
绿色所示为有效计数细胞绿色显示活细胞，红色为死细胞3. 细胞簇分析功能针对一些成簇的细胞，Cellometer®软件可以准确区分并精确计数。
Cellometer Mini 自动细胞计数仪操作指南
Cellometer Mini细胞计数仪操作简册
1. USB数据线连接电脑，插上仪器电源，仪器正面指示灯显示橙色
2. 双击桌面Mini操作软件，弹出软件操作界面，仪器正面指示灯显示蓝色
3. 撕去计数板上下两层保护膜，点样20 ul，将需计数的一端插入进板口
4. 选择Assay类型，如细胞计数：
5. 样品名称：在主界面右上角输入样品名称和稀释倍数。
如不需要，
请忽略此步
6. 点击主界面左下角“Preview”预览细胞图片
7. 细胞需中心透亮，轮廓清晰。
如不清晰，可适当调节界面左侧调焦按钮
8. 自动计数：点击下侧计数按钮进行自动拍摄图片并计数
9. 显示分析结果
10. 下一个样品计数：插入需要计数的下一个样品，点击结果显示界面的右下角即可自动预览图片，继续步骤7-9
11. 关机：先点击主界面下侧，点击退出软件待指示灯橙色，再关闭电源。
Auto 2000细胞计数和活力分析仪操作说明
14、用Auto 2000分析下一个样品。将另一个样品插入样品室后，点击屏幕底部 右侧的“Next Sample”按钮，根据提示，设置Sample ID，然后点击“Count”
编辑：达科为生物技术有限公司 网址：
4、 检查背景影像，可以点击 Cell Line , Total Cell Conc. Assay 和 Preview Image 按 钮。所显示的应该是白色的屏幕。如果出现暗区或者一些变化，联系技术支 持
三、 设置自动保存
1、 插入一个 U 盘或者通过 USB 数据线将仪器和一个网络驱动器连接起来 2、 点击“Settings”按钮，然后点击“Saving Options”按钮
1、 Auto 2000 可以分析的细胞浓度范围为 1.0 x 105 到 1.0 x 107 cells/mL，最佳细 胞浓度是 1.0 x 106 cells/mL
2、 将样品管上下颠倒十次，吹打细胞样品十次以混匀细胞样品、减少细胞团。 不要震动或旋转样品，以免产生气泡
3、 进行细胞存活率测量时，用 50 μl，0.2%的台盼蓝溶液（最终浓度为 0.1%的台 盼蓝）混合 50 μl 的样品将细胞染色。上下吹吸十次，轻轻混匀
下表显示使用该系统软件的各种不同样品的推荐稀释浓度和最终浓度值。将
样品加到样品室前要轻轻上下吹吸样品十次。
样品类型 原液稀释 样品体积 AO / PI 体 最终稀释
（用 PBS）
积
倍数
全外周血 1:10
20 μl
20 μl
20
或脐带血
已分离的 不需要 20 μl
20 μl
2
PBMCs
CD34+ 干 不需要 20 μl
Cellometer Auto 2000 细胞计数和活力分析仪 操作介绍
全自动细胞计数安全操作及保养规程
全自动细胞计数安全操作及保养规程前言全自动细胞计数仪器采用先进的电子设备技术，可以比较准确地测量血液、骨髓等液体中的细胞数量，是实验室中常用的设备之一。
为了确保实验的准确性和安全性，需要严格遵守全自动细胞计数的操作规程和保养规程。
安全操作规程1. 准备工作在进行细胞计数前，需要进行一系列的准备工作。
•检查仪器是否正常：可以打开设备，查看是否有异常提示或者故障灯闪烁。
•准备标本：准备好待测液体，并且按照规定的比例加入适量的稀释液。
•准备试剂：根据所需，准备好相关的试剂，如清洗液、红细胞溶解液等。
2. 操作流程根据仪器的说明书或者操作手册，了解具体的操作流程。
•打开仪器：注意操作开关的位置和方式。
•调试参数：根据标本的性质，调整仪器的相关参数，如测量管的尺寸、流速等。
•测量标本：将已经准备好的标本注入测量管中，并且根据仪器的提示，进行相关操作，如加入试剂、红细胞溶解液等。
•记录结果：等待仪器完成测量，根据屏幕上的提示，记录测量结果。
3. 安全注意事项•使用全自动细胞计数仪器时，需要根据实验室安全操作规程，进行相关的培训和安全知识的学习。
•在操作过程中，需要佩戴手套、口罩、护目镜等防护装备，避免意外伤害和因操作失误而受到污染。
•注意测量标本的量和稀释液的比例，确保测量结果的准确性。
保养规程保养规程是使用全自动细胞计数仪器时非常重要的一部分。
定期的保养可以延长仪器的使用寿命，确保测量结果的准确性。
1. 日常保养日常保养主要包括设备清洁、添加试剂等常规工作。
•设备清洁：定期对仪器进行清洁和消毒。
可以使用特定的清洗液或者对仪器进行干法清洁。
•添加试剂：根据使用频率和需要，增加或者更换试剂。
比如添加清洁液、红细胞溶解液等。
2. 定期保养定期保养包括更换部件、校准设备等重要工作。
保养周期一般是一年或者更短。
•更换部件：定期更换易损件和老化部件。
如测量管、泵头、过滤器等。
•校准设备：定期对仪器进行校准和调试，确保测量结果的准确性。
自动血细胞分析仪操作规范流程
4．操作程序4.1开机启动首先开启仪器主机侧面板的电源开关，然后开电脑主机，仪器主机前面板状态指示灯变为橙绿闪烁，仪器主机初始化后开始自检，自检时仪器会自动灌注稀释液、清洗液及溶血剂，并清洗液路。
自检完成后，仪器进入血液细胞分析窗口。
4.2本底测试4.2.1放置洁净的空试管于采样针下，应确保采样针轻挨试管底部。
在血液细胞分析窗口，点击“排液”图标，仪器通过采样针排出稀释液到试管中。
4.2.2在血液细胞分析窗口，点击“编号”图标，进入下一个编号操作，输入“0”，再点击“确定”按钮返回血液细胞分析窗口。
（注意：仪器系统软件将本底测试的顺序号设定为0，试测试数据将不存储在仪器中，但禁止将血液样本的顺序号设定为0）。
4.2.3将盛有稀释液的试管放在采样针下，按仪器前面板的“RUN”键，待听到“滴”的一声后，方可移走试管。
仪器开始自动计数、测量。
4.2.4计数过程中，在窗口的右下方有WBC、RBC的计数计时器，显示WBC、RBC的计数时间。
当计数时间过长或过短时，仪器会发出故障报警，并给出报警提示。
若出现报警提示，即参照说明第9章《故障处理》进行处理。
4.3质量控制首次装机或在每天进行血液样本测试之前必须对仪器进行质控，具体参照说明第5章《质量控制》进行处理。
4．4标定若本底测试，质控结果达不至要求，且某些参数漂移变化较大，则必须对仪器进行重新标定，具体参照说明第6章《标定》进行处理。
4．5血液样本的采集4．5．1由于所有的临床样本、质控物、标定物均可能含有人血或人的血清，具有潜在的传染性，因此在处理这些物品时必须遵守已建立的实验室或临床操作规程，穿好工作服，戴好医用手套及安全眼镜。
4．5．2采血过程避孕必须干净、无污染，必须使用合格的抗凝剂。
严禁剧烈摇动采血管。
在室温下，静脉血只能保存4个小时，若在短时间内不能将血样处理完毕，须将血样存放于2℃～8℃的冷藏室内保存。
4．5．3静脉血（全血）的采集利用静脉穿刺采取静脉血，放于含有抗凝剂（EDTA-K2·2H2O）的干净试管内，抗凝剂能够保持红细胞、白细胞的形态不变，同时可抑制血小板聚集。
自动细胞计数操作流程
自动细胞计数操作流程Carrying out an automated cell counting process can be both a tedious and crucial task in various scientific research and medical settings. 进行自动细胞计数过程可能是科学研究和医疗领域中一个繁琐而重要的任务。
As technology continues to advance, automated cell counting has become increasingly popular due to its accuracy, speed, and reliability. 随着技术的不断进步，自动细胞计数由于准确性、速度和可靠性日益受到青睐。
However, it is essential to follow a structured workflow to ensure the success of the automated cell counting operation. 然而，有必要遵循有条不紊的工作流程，以确保自动细胞计数操作的成功。
One of the initial steps in the automated cell counting process is the preparation of the cell sample. 在自动细胞计数过程中的一个初始步骤是细胞样本的准备。
This involves collecting the sample, ensuring its viability, and diluting it to an appropriate concentration. 这涉及收集样本、确保其存活性，并将其稀释至适当的浓度。
Properly preparing the cell sample is crucial as it can significantly affect the accuracy of the cell count results. 适当准备细胞样本是至关重要的，因为它会显著影响细胞计数结果的准确性。
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Cellometer Auto T4 用户手册
达科为生物技术有限公司
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达科为生物技术有限公司产品资料
1 简介
Cellometer® Auto T4 全自动细胞计数分析仪采用先进的基于图像分析技术的细
胞计数方法。与手动计数相似，细胞悬液在细胞计数板中平铺为一薄层，摄取的高
两个去团簇参数用来区分连在一起的细胞，分别是“De-cluster Edge Factor”和“Decluster Th Factor”。对于 大多数细胞来说，缺省设置足以区分细胞团内的单个细胞。然而，一些特殊类型的细胞，如：MCF7,PC12,细胞 簇内细胞边界非常弱，此时就需要进行参数调整来加以区分。
4
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3.点击“next”
4.选择“install the software automatically(recommended)” 5.点击“next”
6.选择“continue anyway”
5
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7.点击“finish” 有时，计算机可能会要求重装 USB 驱动，重复 1-7 步。
加样
插入计数板
1.3 Cellometer®软件
Cellometer®自动计数软件控制仪器，获取，分析及储存数据。
获取数据
2
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2 Auto T4 使用
2.1 安装
本部分详述 celloቤተ መጻሕፍቲ ባይዱeter Auto T4 的安装过程。 2.1.1 仪器检查
仪器在打开包装后应详细检查是否有机械损伤，如焦距调节旋钮。
3.点击
。
4.缓慢调节焦距调节旋钮，直至细胞图像清晰：细胞边缘清晰，中央明亮。
5.取出 CHT4. 6.Options 菜单选项中选择“Take Background Image”. 7.点击 OK. 2.2.5 细胞计数
点击“Count”键进行细胞计数（必须首先按“display image”键）。位于底部的进程栏显示细胞计数进 程。 3.2.细胞存活率检测 1. 点击 “Test Viability”选项 2. 点击“Count”键进行细胞计数 3. 输出显示 “Live Cell Concentration” (cells/ml), 及 "Viability" (%) 4. 点击 “Counted”选项，观察计数结果。 2.2.6 结果显示
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分辨率显微图像由 Cellometer®软件分析并获得计数结果。计数面积相当于血球计数
板四个角的面积。
1.1 细胞计数板
细胞计数板包含两个独立的，精确控制高度的加样仓。通过加样孔，每个加样仓中可加入 15-20μL 细胞悬 液。
细胞计数板
1.2 细胞计数步骤
操作简便，快速，3 步即可完成。
每个加样室有 2 个孔，一个用于加样，一个 用于排除空气。.
仪器清单：
Auto T4 软件光盘 Auto T4 功率变流器 USB 线 启动指导 用户手册 CHT4 计数板（单独运输） 2.1.2 软件安装 计算机配置要求：
Windows XP 2.4GHz 处理器 512MB 内存 USB 2.0 端口 安装程序 A 软件安装 1. 将软件安装光盘插入光驱中
2.2 细胞计数设置
本节介绍细胞计数的完整程序 2.2.1 细胞悬液准备
1.准备细胞样品，浓度在 2×105-1×107/mL. 2.如果计数细胞存活率，准备 0.2%台盼兰溶液（0.4%储液在使用前经 PBS 稀释）。 2.2.2 加样 1.CHT4 计数板置于干净的纸巾上。 2.在加样室的边缘标记，避免弄脏计数板的加样仓。 3.准备样品，充分混匀，避免产生气泡。 4.如果进行细胞存活率分析，取 50μL 细胞样品加入等体积台盼兰溶液染色。 5.加样 20μL。
中心过亮的死细胞 此类细胞的典型特征是中心区过亮，如下图所示，参数中的“Sensitivity”用来检测此类死细胞。可以看
到随着“Sensitivity”的升高，检测到的死细胞数目增加。
CHO
CHO
CHO
CHO
CHO
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CHO 细胞参数设置 3.5 去团簇参功能数调整
界面的左侧显示细胞计数的结果，包括：计数细胞数，直径均值，以及细胞浓度。如果选择了细胞存活 率检测，结果将只显示活细胞计数以及细胞存活百分率。 2.2.7 数据保存
细胞计数结果可以保存为数据文件。界面的左下角显示数据文件名称及存储位置。如需更改，选用菜单
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栏中 File->New Data File 选项，点击保存。 2.2.8 图像保存
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3 软件指南
3.1 细胞计数浓度范围 为了保证细胞计数结果的准确，样品浓度范围应该在 2.5×105-1×107 ，浓度过低，过高都会影响计数
结果的准确性。 3.2 设定新的细胞类型
方法一：从细胞库中导入 1.打开 Cell Type 菜单 2.选择 Import/export 选项 3. 从细胞库中选择细胞 4. 点击“>>” 5. 点击 “OK” 6. 在 “Set Up”框中点击 “Cell Type”下拉菜单选择细胞 方法二： 1. 点击 New Cell Type Wizard 选项 2. 选择使用 Live 或 Saved Image 3. 处理图像，起始细胞参数 4. 输入细胞类型名称 5. 处理图像，创建细胞类型参数 6.观察检测结果 点击 “Counted” 分别检查 “1” to “8”视野 调整细胞参数，再次计数 3.3 细胞大小参数调整 对于每种细胞类型，“Cell Diameter Max”和“Cell Diameter Min”分别代表细胞大小的最高和最低值。
选择菜单 File->Save Images 选项，图像自动保存。 2.2.9 结果分析（Analysis）
结果分析包括样品调整和细胞大小分析两项。根据细胞浓度检测结果，样品调整功能可以计算目的浓度 或者细胞数。我们也可以得到细胞大小分布及相应的直方图。 新的细胞参数的设置： 1. 先将细胞计数一下，记录细胞的平均直径 2. 选择软件左上角的 Cell type 菜单的 New cell type 3. 在 cell type name 输入细胞种类的名称 4. 在 cell diameter Min 输入平均直径减去 5mm 5. 在 cell diameter Max 输入平均直径加上 5mm 6. 点击 ok 保存即可
HT-29 细胞参数设置
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3.4 死细胞参数调整 对于台盼兰染色效果好的细胞类型，在死细胞参数缺省设置条件下的细胞计数速度最快。而在某些条件下，
需要对该参数进行调整。 死细胞染色弱
为了能够检测到台盼兰染色较弱的死细胞，激活“Very Dim Dead Cells”选项。死细胞的“Contrast Enhancement”值高于正常活细胞。
MCF7 细胞，调整后的参数用于区分细胞簇。 3.6 小细胞计数过程中去团簇功能的开启/关闭
小细胞主要是指小鼠脾细胞，淋巴细胞，胸腺细胞以及 PBMC,这些细胞的直径一般小于 7μm。对于这些小 细胞计数，去团簇功能的激活可能会影响细胞计数的速度，所以一般应关闭此功能。但是，如果细胞样品中含大
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量成团细胞，或者细胞浓度很高，“De-cluster”必须激活，同时，调低“Contrast Enhancement”值。 3.7 细胞大小分析
每次细胞计数后，我们可以通过细胞大小分析功能观察细胞大小分布，同时获得细胞大小直方图用于鉴别样 本中不同的细胞类型或者监测细胞培养过程中细胞大小的改变。使用“Save As”功能，可以存储数据。如果未 存，该数据将被下一样品的数据所覆盖。 选择“Multiple”最多可以添加 5 个细胞大小数据在直方图中进行比较。数据也可拷贝至剪贴板，然后再粘贴到 其它类型文件，如：Work,Excel,PowerPoint.
2.2.3 插入细胞计数板 轻持细胞计数板的白色区域，将其插入 Auto T4 样品槽，轻推至停止。此时，仪器将计数分析插入 Auto
T4 中加样室中的细胞样品。计数结束后，取出，反转插入计数板，计数另一加样室中样品。
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2.2.4 焦距调节 1.打开电源，运行 cellometer 软件。 2.加样后，将 CHT4 计数板插入 Auto T4。
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2.点击“next”
3.点击“install”
4.点击“finish” B USB 驱动软件安装 1.连接 Auto T4 电源，打开背面开关。 B 线分别连接 Auto T4 与电脑 USB 2.0 端口（确认 Cellometer®软件安装已经结束），安装程序自动起动。