WB技术服务报告模板
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Western Blot实验报告
正式实验
客户姓名:
报告日期:
一、客户样品及抗体登记
1.样品种属来源:
2.样品标记:
3.抗体名称:
抗体来源:
抗体Cat. 及lot号:
二、材料和方法
1.试剂及耗材
蛋白抽提试剂(改进型RIPA配方)
BCA蛋白定量试剂盒
2mg/ml BSA标准品
5×还原样品缓冲液
10×Tris-Glycine-SDS电泳缓冲液
考马斯亮蓝染色液
10×TBST pH8.0
中分子量蛋白marker(7条带)
中分子量预染蛋白marker(7条带)
湿转缓冲液
NC膜,0.45um孔径Millipore 丽春红染色液
BSA Amresco PMSF Amresco 蛋白酶抑制剂Roche 磷酸酶抑制剂Roche 脱脂奶粉伊利ECL Millipore Stripping buffer(抗体洗脱液)
(抗体需要选择,选择后把多余的删除)
山羊抗兔IgG(H+L),HRP Jackson
山羊抗小鼠IgG(H+L),HRP Jackson
兔抗山羊IgG(H+L),HRP Jackson
Beta-actin 兔多抗
Beta-actin 鼠单抗
Beta-tubulin 兔多抗
Beta-tubulin鼠单抗
GAPDH 兔多抗
GAPDH 鼠单抗
2.实验仪器
Fresco低温冷冻离心机Thermo
MultiSkan3酶标仪Thermo
Mini P-4电泳槽Cavoy
湿转电泳槽Cavoy
电泳仪Bio-Rad
半干槽Bio-Rad
水平脱色摇床其林贝尔
酸度计 pH211 Hanna
电动组织匀浆器Fluka
三、实验方法及结果
3.1 蛋白抽提
3.1.1组织蛋白抽提
预冷RIPA蛋白抽提试剂,加入蛋白酶抑制剂(磷酸化蛋白需要同时加入磷酸酶抑制剂)。在蛋白抽提开始前加入0.1M PMSF母液,PMSF终浓度1mM。称取组织重量以重量:裂解液体积=1:9比例加入裂解液,用眼科剪剪碎组织块,Fluka电动组织匀浆器15000rpm转速进行匀浆,每次10s,间隔10s,进行三次匀浆。匀浆时EP管需要浸入冰水混合物中进行降温。匀浆完成后在冰上孵育20min,4度离心,13000rpm,20min。离心完成后取上清,分装保存,待测。
3.1.2细胞蛋白抽提
预冷RIPA蛋白抽提试剂,加入蛋白酶抑制剂(磷酸化蛋白需要同时加入磷酸酶抑制剂)。在蛋白抽提开始前加入0.1M PMSF母液,PMSF终浓度1mM。细胞计数,以细胞数量1×107加入1ml裂解液,用枪头吹打充分悬起细胞,完成后在冰上孵育20min,4度离心,13000rpm,20min。离心完成后取上清,分装保存,待测。
3.2 BCA法蛋白定量
准备BCA工作液 A液:B液=50:1,稀释好各个提取BSA标准品。样品用PBS进行稀释。
样品:BCA工作液=1:8,混匀后37度孵育30min或者室温孵育60min,酶标仪570nm 波长滤光片读取OD值。
蛋白浓度计算见下表:
3.3 蛋白浓度调整
以RIPA调整蛋白浓度,加入5×还原样品缓冲液后样品终浓度为2-4mg/ml(不同样品具体确定)。煮沸变性5min。
样品蛋白浓度调整见下表:
3.4 SDS-PAGE
3.4.1 根据目的蛋白的分子量,配制12%分离胶,浓缩胶浓度为5%。
3.4.2 待检测蛋白样品上样量:上样20ug
3.4.3 电泳条件:浓缩胶恒压90V,约20min,溴酚蓝进行分离胶界面;分离胶恒压160V,
电泳至溴酚蓝到凝胶底部。
3.4.4 用考马斯亮蓝染色液进行染色。
染色结果见下图:
3.5 目的蛋白WB正式实验
3.5.1 根据目的蛋白的分子量,配制%分离胶,浓缩胶浓度为5%。
3.5.2 待检测蛋白样品上样量:
3.5.3 电泳条件:浓缩胶恒压90V,约20min;分离胶恒压160V,通过预染蛋白marker来
确定电泳停止时间。
3.5.4 湿转法,转膜条件:300mA恒流;0.45um孔径NC膜,转膜时间h。转膜完成后丽春
红染色试剂对膜进行染色,观察转膜效果。同时做好泳道标记,准备预实验时进行按照纵向泳道剪膜。
3.5.5 封闭:将膜完全浸没5%脱脂奶粉-TBST中室温轻摇60min。
3.5.6 一抗孵育:用5%脱脂奶粉-TBST稀释稀释一抗,室温孵育10min,放4℃过夜。
备注:按照预实验中确定的稀释度进行正式实验。
选择一种内参进行同步预实验。
3.5.7 第二天从4度拿出膜,在室温孵育30min。洗膜:TBST洗膜5次,每次3min。
3.5.8 二抗孵育:用5%脱脂奶粉-TBST稀释二抗,山羊抗兔IgG(H+L) HRP 山羊抗小鼠
IgG(H+L) HRP,1:10000,室温轻摇 40min。洗膜:TBST洗膜6次,每次3min。
3.5.9 ECL加到膜上后反应3-5min,胶片曝光:10s-5min(曝光时间随不同光强度而调整),
显影2min,定影。
胶片扫描后结果如下:
3.6 内参蛋白WB正式实验
3.6.1 Stripping Buffer洗膜,37℃洗膜30min (如果目的蛋白与内参蛋白分子量相
差在10K以上,可以不用stripping buffer洗膜这一步)。
3.6.2 洗膜:去离子水洗膜3次。
3.6.3 洗膜:TBST洗膜3次,每次3min
3.6.4 将膜完全浸没3%BSA-TBST中室温轻摇30min。
3.6.5 孵育内参:加Beta-actin兔多抗,用5%脱脂奶粉-TBST稀释抗体,1:3000稀释,
室温孵育2h。
3.6.6 洗膜:TBST洗膜5次,每次3min。
3.6.7 二抗孵育:用5%脱脂奶粉-TBST稀释二抗,山羊抗兔IgG(H+L) HRP 山羊抗小鼠
IgG(H+L) HRP,1:10000,室温轻摇 40min。洗膜:TBST洗膜6次,每次3min。
3.6.8 洗膜:TBST洗膜5次,每次3min。
3.6.9 ECL加到膜上后反应3-5min,胶片曝光:10s-5min(曝光时间随不同光强度而调
整),显影2min,定影。
胶片扫描后结果如下: