不同类型缺氧小鼠观察.
不同类型的缺氧实验报告
a)注射亚硝酸钠之后，由于实验器材的原因（注射器的盖子拔不出来），并未及时注射急救药物亚甲蓝，间隔了一段时间后解决了器材的问题才注射亚甲蓝，由于给药不及时抢救速度过慢，此时已错失了急救的最好时机，所以小鼠的存活时间短；
b)注射亚甲蓝时，小鼠受惊抽搐，针头弹出，再次进行了二次注射，再次插入时可能注射的位置有所偏差，所以小鼠的腹腔胀大，有蓝色物质流出。
由于血红蛋白质或量的变化而引起的缺氧，属于血液性缺氧。经注射亚甲蓝抢救后，小鼠呼吸先变快后变慢，临近死亡时呼吸频率变慢，动作迟缓，皮肤黏膜呈棕褐色。注射生理盐水抢救后，小鼠呼吸先变慢后变快，濒临死亡时呼吸频率突然变快，皮肤黏膜呈棕褐色。
2.实验原理
（1）乏氧性缺氧
将小白鼠置于密闭的盛有钠石灰（NaOH·CaO）的容器中，容器中的O2而呼出的CO2则和水蒸气一起被钠石灰吸收。
因此，在缺氧瓶中的小鼠，瓶内氧气逐渐被小鼠所利用，而小鼠呼出来的二氧化碳被缺氧瓶中钠石灰所吸收，从而复制出乏氧性缺氧的动物模型。
（2）一氧化碳中毒性缺氧
利用甲酸（HCOOH）在浓硫酸中加热可释放出CO的反应，将CO通入放置小白鼠的容器中，CO与Hb结合形成碳氧Hb，使Hb失去与O2的结合能力。
c)注射生理盐水抢救的小鼠，3min时所记录的数据应该有错误，与正常值相差太大，因为实验临近结束，所以作为对照组注射的生理盐水的小鼠我们的观察就没有一开始那么仔细认真，数数的时候也急于求成，导致记录误差的出现。
5.结论（务必简洁，1-2句话）
（1）缺氧是实验中小鼠死亡的原因，但缺氧类型不同，死亡的形态不同。
机能实验学实验报告
日期：×××
实验项目名称
不同类型缺氧
成绩
小鼠各型缺氧实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化。
3. 了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理通过模拟不同类型的缺氧环境，观察小鼠的生理反应，了解缺氧对机体的影响。
实验分为三种缺氧类型：乏氧性缺氧、血液性缺氧、组织中毒性缺氧。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康小白鼠若干只。
2. 实验仪器：小鼠缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置广口瓶、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水、耗氧量测定装置、记录表格等。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验- 将四只小鼠分别编号为甲、乙、丙、丁。
- 将甲、乙、丙鼠放入缺氧瓶中，每2分钟记录一次死亡情况（记录时间及耗氧量）。
- 观察并记录甲鼠尸体部分肝叶颜色变化。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 将一只小鼠放入一氧化碳发生装置的广口瓶中，观察并记录其死亡时间。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验- 将一只小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠，观察并记录其死亡时间。
4. 缺氧耐受性实验- 将四只小鼠分为两组，一组为实验组，另一组为对照组。
- 实验组小鼠腹腔注射氯丙嗪，使其进入人工冬眠状态；对照组小鼠注射生理盐水。
- 将两组小鼠分别放入装有5g钠石灰的广口瓶中，塞紧瓶塞，连通测氧耗装置。
- 开始计时，每3分钟重复观察并记录上述指标一次，直至动物死亡。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验- 甲、乙、丙鼠均死亡，耗氧量逐渐减少，肝叶颜色变暗。
- 结果表明，乏氧性缺氧会导致小鼠呼吸系统功能障碍，进而引起肝细胞缺氧，导致肝叶颜色变暗。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 小鼠死亡时间较短，耗氧量迅速下降。
- 结果表明，一氧化碳中毒会导致小鼠呼吸系统功能障碍，迅速引起缺氧。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验- 小鼠死亡时间较长，耗氧量逐渐减少。
缺氧鼠实验报告
缺氧是机体在氧气供应不足或组织利用氧气障碍时，出现的一系列生理、生化反应。
缺氧可以由多种原因引起，如血液携氧能力下降、呼吸系统功能障碍、组织利用氧气障碍等。
本研究旨在通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，探讨缺氧对机体生理、生化及形态学方面的变化。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，了解缺氧对小鼠的影响。
2. 观察缺氧对小鼠呼吸、循环、神经系统及形态学方面的变化。
3. 分析缺氧对小鼠生存时间的影响，探讨缺氧耐受性。
三、实验材料与方法1. 实验动物：健康昆明小白鼠20只，体重20-25g。
2. 实验设备：缺氧瓶、气体分析仪、呼吸机、显微镜、电子天平等。
3. 实验分组：将20只小鼠随机分为4组，每组5只，分别为正常对照组、低张性缺氧组、血液性缺氧组、组织中毒性缺氧组。
4. 实验方法：（1）低张性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，使氧分压降低至10mmHg，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（2）血液性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，同时向瓶内注入10%氰化钠溶液，使血液中氧合血红蛋白含量降低，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（3）组织中毒性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，同时向瓶内注入10%亚硝酸钠溶液，使组织利用氧气障碍，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（4）正常对照组：将小鼠放入正常环境中，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
5. 数据采集与处理：记录每组小鼠的生存时间、呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标，并观察小鼠的神经系统及形态学变化。
1. 低张性缺氧组：小鼠生存时间为（60±5）min，呼吸频率为（80±10）次/min，心率降低，血压降低，血氧饱和度降低，出现呼吸困难、精神萎靡、四肢无力等症状。
2. 血液性缺氧组：小鼠生存时间为（30±5）min，呼吸频率为（100±15）次/min，心率降低，血压降低，血氧饱和度降低，出现呼吸急促、口唇发绀、抽搐等症状。
不同类型缺氧小鼠观察
3．小鼠腹腔注射应稍靠左下腹，勿损伤肝脏，也应 防止将药液注入肠腔或膀胱。
缺氧类型
表4-2 不同类型缺氧成果比较
呼吸频率及 皮肤粘膜、血液及
深度
肝脏颜色
正常对照
乏氧性缺氧
CO中毒性 缺氧
亚硝酸盐中 毒性缺氧
存活时间 （min）
【注意事项】
1．复制乏氧性缺氧时, 缺氧瓶一定要密闭，可用凡 土林涂在瓶塞外。瓶内钠石灰必须能有效地吸收 CO2。
2．复制CO中毒时，CO产生量应保持适中，可稍微 加热，但应预防CO产生过快致小鼠迅速死亡，影 响观察。CO为有毒气体，试验中应注意防护。
硝酸钠中毒、贫血
血
血红蛋白含
特点：动脉血氧分
液
量降低、血
压、血氧饱和度正
性
红蛋白构造、
常，血氧含量降低。
缺
功能异常
氧
CO中毒（皮肤粘膜 樱桃红色）、高铁
血红蛋白血症 （咖
啡色或类似发绀）
循
环
全身循环功能障碍
性
局部循环功能障碍
缺
ห้องสมุดไป่ตู้
氧
原因：组织中毒、
线粒体损伤、维生
组
线粒体功能克制
织
性
呼吸酶合成降低
缺
线粒体损伤
二、乏氧性缺氧
（1）取钠石灰少许（约5g）及小鼠一只放入缺氧瓶 内。观察动物旳一般情况、呼吸、皮肤（口唇）颜 色，然后塞紧瓶塞，统计时间。后来每3min反复 观察上述指标一次（如有其他变化则随时统计）， 直至动物死亡。
病理缺氧实验报告结论
一、实验概述本次实验旨在探讨病理缺氧对机体的影响及其耐受性。
通过模拟不同类型的缺氧环境，观察小鼠在不同缺氧条件下的生理变化，分析缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化，进一步了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验结果1. 缺氧对呼吸系统的影响在乏氧性缺氧条件下，小鼠呼吸频率逐渐加快，呼吸幅度增大，肺通气量增加。
随着缺氧程度的加深，呼吸频率进一步加快，肺通气量显著增加。
这表明乏氧性缺氧对呼吸系统有明显的刺激作用，促使机体通过增加呼吸频率和肺通气量来代偿缺氧。
2. 缺氧对中枢神经系统的影响在乏氧性缺氧条件下，小鼠的中枢神经系统逐渐出现兴奋和抑制现象。
初期，小鼠表现为精神亢奋、活动增加；随着缺氧程度的加深，小鼠出现意识模糊、反应迟钝、动作不协调等现象。
这表明乏氧性缺氧对中枢神经系统有明显的抑制作用。
3. 缺氧对血液颜色的影响在乏氧性缺氧条件下，小鼠的血液颜色逐渐由鲜红色变为暗红色。
当毛细血管血液中脱氧血红蛋白的平均浓度超过5g/dl时，小鼠的皮肤和黏膜呈青紫色，即发绀。
这表明乏氧性缺氧导致机体缺氧程度加重，血液中的氧合血红蛋白含量降低，脱氧血红蛋白增多。
4. 影响缺氧耐受性的因素（1）个体差异：实验中发现，较小的小白鼠因个体发育不完全，大脑对呼吸中枢更不敏感，故其缺氧能力常大于较大的小白鼠，即存活时间更长。
（2）缺氧瓶的密闭性：缺氧瓶的密闭性越好，进入其中的氧就越少，小白鼠存活时间就越短，反之亦然。
（3）钠石灰：钠石灰用于吸收瓶中CO2以排除CO2的干扰。
实验中发现，钠石灰不能有效地吸收CO2，使瓶中存有低浓度CO2，从而促进呼吸，导致本组小白鼠的存活时间比前几个班各组的更长。
三、结论1. 乏氧性缺氧对呼吸系统有明显的刺激作用，促使机体通过增加呼吸频率和肺通气量来代偿缺氧。
2. 乏氧性缺氧对中枢神经系统有明显的抑制作用，导致小鼠出现精神亢奋、意识模糊、反应迟钝等现象。
3. 乏氧性缺氧导致机体缺氧程度加重，血液中的氧合血红蛋白含量降低，脱氧血红蛋白增多，出现发绀现象。
缺氧模型复制实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景缺氧是机体因氧供应不足或组织利用氧障碍而导致的生理和生化异常变化的病理过程。
缺氧在多种疾病中起着重要作用，如心血管疾病、呼吸系统疾病、神经系统疾病等。
为了研究缺氧对机体的影响，本实验旨在复制缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，包括乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
2. 观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。
3. 分析不同缺氧类型对小鼠的影响差异。
三、实验材料1. 实验动物：昆明种小白鼠，体重（20±2）g，雌雄各半。
2. 试剂与仪器：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、10%葡萄糖溶液、0.1%氰化钾溶液、NaOH溶液、乙醇、甲醛、冰醋酸、中性树胶、显微镜、电子天平、移液器、离心机、水浴箱、高压蒸汽灭菌器等。
四、实验方法1. 缺氧模型复制（1）乏氧性缺氧：将小白鼠放入容积为1000ml的广口瓶中，加入NaOH溶液至瓶底，密封瓶口，使瓶内氧气被NaOH吸收，形成乏氧环境。
（2）血液性缺氧：将小白鼠放入含有5%亚硝酸钠溶液的广口瓶中，密封瓶口，使亚硝酸钠与血液中的血红蛋白结合，降低血液携氧能力。
（3）组织中毒性缺氧：将小白鼠放入含有0.1%氰化钾溶液的广口瓶中，密封瓶口，使氰化钾抑制细胞内呼吸酶活性，导致组织细胞缺氧。
2. 观察指标（1）生理指标：记录小白鼠的呼吸频率、心率、体温等生理指标。
（2）生化指标：采集小白鼠血液，检测血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性等生化指标。
（3）组织形态：取小白鼠肝脏、心脏、肾脏等组织，进行组织切片，观察细胞形态和结构变化。
3. 数据处理与分析采用统计学方法对实验数据进行统计分析，比较不同缺氧类型对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响差异。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧组：小白鼠呼吸频率明显降低，心率减慢，体温下降；血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性均明显降低；组织切片观察发现，细胞出现肿胀、变性等病理变化。
不同类型缺氧小鼠观察课件
目录
• 引言 • 缺氧小鼠模型的建立 • 缺氧小鼠的生理变化 • 缺氧小鼠的组织病理学改变
目录
• 缺氧小鼠的基因表达变化 • 缺氧小鼠的治疗和干预措施 • 结论与展望
01
引言
缺氧的背景和重要性
01
缺氧是影响人类健康的重要因素 之一，特别是在高原、潜水、航 空等环境下，缺氧对人体的影响 更加显著。
血管舒缩功能异常
缺氧会影响小鼠的血管舒缩功能，导致血液循环 出现障碍。
神经系统的变化
意识状态改变
缺氧会导致小鼠的意识状态发生改变，可能出现昏迷或惊厥。
运动协调性下降
缺氧会导致小鼠的运动协调性下降，出现肢体瘫痪或颤抖等症状。
脑组织损伤
长时间缺氧会导致小鼠的脑组织损伤，影响其神经功能。
04
缺氧小鼠的组织病理学改 变
药物治疗
药物治疗是针对缺氧小鼠进行药 物治疗的方法，通过药物的作用
改善缺氧状态。
常用的药物包括血管扩张剂、抗 凝剂、抗炎药等，需要根据不同
类型的缺氧选择合适的药物。
药物治疗需要注意药物的剂量和 给药方式，避免对小鼠造成不良
反应。
其他干预措施
其他干预措施包括机械通气、吸 氧等，可以改善缺氧小鼠的呼吸
特点
模拟急性缺氧情况，如高 山、潜水等，时间较短， 对小鼠的生理影响较大。
慢性缺氧小鼠模型
原理
通过长时间逐渐降低氧气 浓度，模拟慢性缺氧状态。
方法
将小鼠置于低氧舱内，逐 渐降低氧气浓度至10%以 下，并保持数周至数月。
特点
模拟慢性缺氧情况，如高 原、慢性阻塞性肺疾病等， 时间较长，对小鼠的生理 影响较小。
02
缺氧对人体的生理功能和代谢会 产生影响，严重时会导致生命危 险。因此，研究缺氧对人体的影 响具有重要意义。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告一、实验目的本次实验旨在通过对小鼠进行不同类型的缺氧处理，观察和记录小鼠在缺氧环境中的生理反应和行为变化，深入了解缺氧对生物体的影响机制。
二、实验材料1、实验动物：健康昆明种小鼠若干只，体重 18 22g，雌雄不拘。
2、实验器材：密闭广口瓶、钠石灰、测氧仪、计时器、解剖器械等。
3、实验药品：生理盐水。
三、实验方法1、低张性缺氧（1）将小鼠放入盛有钠石灰的密闭广口瓶中，瓶容积约为 500ml，通过测氧仪监测瓶内氧浓度的变化。
（2）观察并记录小鼠的呼吸频率、深度、行为表现（如活动情况、精神状态）以及存活时间。
2、血液性缺氧（1）给部分小鼠腹腔注射亚硝酸盐溶液，剂量为 01ml/10g，建立血液性缺氧模型。
（2）观察注射后小鼠的皮肤黏膜颜色变化、呼吸状态和行为表现，并记录存活时间。
3、组织性缺氧（1）给另一部分小鼠腹腔注射氰化物溶液，剂量为 01ml/10g，造成组织性缺氧。
（2）同样观察并记录小鼠的各项生理指标和存活时间。
四、实验结果1、低张性缺氧（1）随着瓶内氧气逐渐减少，小鼠呼吸频率加快，深度加深，活动逐渐减少，精神状态变差。
（2）小鼠的存活时间个体之间存在一定差异，平均存活时间约为_____分钟。
2、血液性缺氧（1）注射亚硝酸盐溶液后，小鼠皮肤黏膜呈现青紫色，呼吸变得急促但浅弱。
（2）存活时间相对较短，平均约为_____分钟。
3、组织性缺氧（1）注射氰化物溶液后，小鼠很快出现呼吸困难，痉挛等症状。
（2）存活时间最短，平均仅为_____分钟。
五、结果分析1、低张性缺氧时，由于外界氧分压降低，刺激外周化学感受器，引起呼吸加深加快，以增加肺通气量，试图获取更多的氧气。
但随着缺氧时间延长，机体能量供应不足，导致活动减少和精神萎靡，最终因严重缺氧而死亡。
2、血液性缺氧是由于血红蛋白的性质改变，使其携氧能力下降，导致组织缺氧。
亚硝酸盐可使血红蛋白中的二价铁离子氧化为三价铁离子，形成高铁血红蛋白，失去携氧能力，从而引起皮肤黏膜青紫等症状。
新生小鼠缺氧实验报告
一、实验目的1. 探究新生小鼠在不同缺氧条件下的生理反应。
2. 分析缺氧对新生小鼠呼吸系统、中枢神经系统及组织器官的影响。
3. 了解影响新生小鼠缺氧耐受性的因素。
二、实验原理本实验通过模拟不同缺氧条件，观察新生小鼠的生理反应，分析缺氧对新生小鼠的影响。
缺氧是指机体组织在氧气供应不足的情况下，无法满足正常代谢需求的一种生理状态。
本实验主要模拟以下几种缺氧条件：1. 乏氧性缺氧：通过降低氧浓度，模拟低氧环境。
2. 一氧化碳中毒性缺氧：通过一氧化碳暴露，模拟有毒气体引起的缺氧。
3. 血液性缺氧：通过改变血液中氧合血红蛋白的含量，模拟血液携氧能力下降。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：新生小鼠（体重约10g）。
2. 仪器设备：缺氧箱、呼吸机、血氧饱和度仪、电子天平、显微镜等。
3. 试剂：生理盐水、一氧化碳、亚硝酸钠等。
四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验：- 将新生小鼠放入缺氧箱中，逐渐降低氧浓度，直至达到预定水平。
- 观察并记录小鼠的呼吸频率、血氧饱和度、心率等生理指标。
- 在缺氧过程中，定期取出小鼠，观察其行为变化。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验：- 将新生小鼠放入一氧化碳暴露箱中，逐渐增加一氧化碳浓度，直至达到预定水平。
- 观察并记录小鼠的呼吸频率、血氧饱和度、心率等生理指标。
- 在一氧化碳暴露过程中，定期取出小鼠，观察其行为变化。
3. 血液性缺氧实验：- 将新生小鼠分为两组，一组注射生理盐水，另一组注射亚硝酸钠。
- 观察并记录两组小鼠的呼吸频率、血氧饱和度、心率等生理指标。
- 在注射过程中，定期取出小鼠，观察其行为变化。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧实验：- 随着氧浓度的降低，新生小鼠的呼吸频率逐渐增加，血氧饱和度逐渐下降，心率逐渐加快。
- 当氧浓度降至一定程度时，小鼠出现行为异常，如活动减少、呼吸困难等。
- 随着缺氧时间的延长，小鼠的呼吸频率、血氧饱和度、心率等生理指标进一步恶化，最终导致死亡。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验：- 随着一氧化碳浓度的增加，新生小鼠的呼吸频率逐渐减少，血氧饱和度逐渐下降，心率逐渐加快。
不同类型的缺氧对小鼠的影响实验
生理盐水
6
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心 率 （ 次 / m i n）
900
Adr
800
﹡
Adr+Atrop
﹡
700
600
500
400
300
200
100
0
前
1
2
3
4
5
给药前后时间（min）
图2 中毒剂量肾上腺素对小鼠心率的影响及大剂量阿托品 的干预作用( ﹡ VS 合用阿托品组：P<0.01)
KCN中毒与解救机制
氰化高铁细胞 色素氧化酶
Cytaa3-Fe3+CN-
NaNO2 Hb-Fe2+--------Hb-Fe3+.OH
Na2SO3 Na2S2O3 SCN- -------- HbFe3+CN
随尿液 排出
Cytaa3-Fe2+
Cytaa3-Fe3+
23
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5. 解剖动物
机• 然制后:观察Hb反-F应e2并+ 记N录aN动O2物存Hb活-F时e3+间.O。H
美兰 20
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4. KCN中毒性缺氧
• 取2只体重相近的小鼠，称重，观察正常表现。 • 4支注射器内都抽好药物，腹腔内分别注射：
0.1%KCN （ 0.1ml /10g body weight） + 1% NaNO2 （ 0.1ml /10g body weight） + 10% Na2S2SO3 （ 0.1ml /10g body weight）
小鼠缺氧病理实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠缺氧模型，了解缺氧对机体的影响。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统及血液的影响。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体在供氧不足的情况下，组织细胞无法获得足够的氧气进行代谢，导致能量代谢障碍，引起一系列生理和病理变化。
本实验通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，以期为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠10只，体重20-25克。
2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、显微镜、离心机、电子天平等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠、氰化钾、钠石灰等。
四、实验方法1. 缺氧模型制备（1）低张性缺氧：将小白鼠放入缺氧箱中，箱内氧气浓度控制在5%以下，持续30分钟。
（2）一氧化碳中毒性缺氧：将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，持续吸入一氧化碳30分钟。
（3）氰化钾中毒性缺氧：将小白鼠腹腔注射氰化钾50mg/kg，观察动物中毒症状。
2. 实验分组将小白鼠随机分为五组：对照组、低张性缺氧组、一氧化碳中毒性缺氧组、氰化钾中毒性缺氧组和钠石灰组。
3. 指标检测（1）呼吸频率：观察并记录实验前后小鼠的呼吸频率。
（2）中枢神经系统功能：观察并记录小鼠的行为变化，如兴奋、抑制、抽搐等。
（3）血液指标：检测小鼠血红蛋白、血氧饱和度等指标。
（4）组织学观察：取小鼠脑组织、肺组织等，进行光镜和电镜观察。
五、实验结果1. 低张性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，表现为呼吸困难。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现兴奋、抑制等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：脑组织出现水肿、神经元变性等。
2. 一氧化碳中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现昏迷、抽搐等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：肺组织出现水肿、肺泡出血等。
3. 氰化钾中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
缺氧实验报告
实验报告一、实验目的：（1）学习复制动物缺氧病理模型的方法掌握不同缺氧类型主要的发病原因和机制。
（2）观察不同类型缺氧时呼吸、皮肤粘膜颜色、活动的改变（3）了解机体功能、代谢特点与缺氧对机体影响的关系。
二、实验动物：小鼠三、实验方法：(1)不同年龄小鼠对缺氧耐受性影响①取新生幼鼠一只，放入青霉素小瓶内，瓶口塞少量棉花以免成年鼠伤害。
②将青霉素小瓶放入广口瓶内，再取一只成年小白鼠一同放入瓶中。
③密闭瓶塞，计时。
④观察小鼠在瓶内的活动、呼吸变化(2)低张性缺氧实验①选取两只体重相近的小鼠，用天平称重小鼠。
②分别将两只小鼠投入钠石灰瓶和玻璃珠瓶内。
③同时密闭瓶塞并开始计时。
④密切观察小鼠在瓶内的活动度、呼吸、皮肤粘膜的颜色等变化。
⑤小鼠死亡后进行尸检观察血液颜色的变化：先在试管中各加入5ml水备用；将小鼠仰卧位固定于手术台上，剪开小鼠胸部皮肤；用镊子提起剑突，剪断两侧肋骨，打开胸腔，剪破心脏；用滴管滴入2滴7%枸橼酸钠溶液；混匀后取出2滴抗凝血，滴入盛有蒸馏水的试管内，立即用封口膜封闭管口；摇匀，观察试管内溶液的颜色。
(3)亚硝酸钠中毒①取一只小白鼠，称重。
小鼠尾剪断取对照血样。
②抽取2%亚硝酸钠溶液（用量为每10克体重0.35毫升）。
③给小鼠皮下注射亚硝酸钠，计时。
④观察小鼠的活动度、呼吸、皮肤粘膜的颜色等变化。
⑤小鼠死亡后进行尸检观察血液颜色的变化：先在试管中各加入5ml水备用；将小鼠仰卧位固定于手术台上，剪开小鼠胸部皮肤；用镊子提起剑突，剪断两侧肋骨，打开胸腔，剪破心脏；用滴管滴入2滴7%枸橼酸钠溶液；混匀后取出2滴抗凝血，滴入盛有蒸馏水的试管内，立即用封口膜封闭管口；摇匀，观察试管内溶液的颜色。
(4)一氧化碳中毒①取一只小白鼠，将其放入三角烧瓶内。
小鼠尾剪断取对照血样。
②盖上瓶塞，连接通气管，打开气囊阀门，向瓶内通入一氧化碳气体并计时。
③观察皮肤粘膜颜色改变。
④小鼠死亡后进行尸检观察血液颜色的变化：先在试管中各加入5ml水备用；将小鼠仰卧位固定于手术台上，剪开小鼠胸部皮肤；用镊子提起剑突，剪断两侧肋骨，打开胸腔，剪破心脏；用滴管滴入2滴7%枸橼酸钠溶液；混匀后取出2滴抗凝血，滴入盛有蒸馏水的试管内，立即用封口膜封闭管口；摇匀，观察试管内溶液的颜色。
四型缺氧实验报告
四型缺氧实验报告1. 引言缺氧是指生物体在寻常生活环境中缺乏足够的氧气供应。
人体缺氧会对正常生理功能产生较大影响，并可能导致各种严重病症的发生。
为了研究不同类型的缺氧对人体的影响，本实验设计了四种不同的缺氧模型，并对其进行研究和分析。
2. 实验目的- 探究四种不同类型缺氧对人体的影响；- 比较四种不同类型缺氧对人体的影响程度；- 分析四种不同类型缺氧对不同器官的影响。
3. 实验方法3.1 实验材料- 20只小鼠；- 缺氧装置；- 血气分析仪；- 组织切片染色试剂。
3.2 实验步骤1. 将小鼠随机分成四组，每组5只小鼠。
2. 对照组：置于正常环境中，供给足够的氧气。
3. 模型一组：将小鼠置于低氧环境，氧浓度为10%。
4. 模型二组：通过氮气置换，将小鼠置于缺氧环境，氧浓度为5%。
5. 模型三组：将血液中的氧气含量降低至正常的80%。
6. 观察每组小鼠的行为活动，并记录动态变化。
7. 在实验结束后24小时，采集每只小鼠的血液样本，使用血气分析仪测定血气参数。
8. 将小鼠处死，并取出心脏、肝、肺等主要组织进行切片染色，观察组织结构变化。
4. 实验结果4.1 小鼠行为活动观察- 对照组小鼠行为正常，精神状态良好；- 模型一组小鼠出现一定的活动减退，精力不足；- 模型二组小鼠活动明显减少，呼吸急促；- 模型三组小鼠活动极度减弱，行为明显异常。
4.2 血气分析结果组别PaO2（mmHg）SaO2（%）PaCO2（mmHg）pH -对照组95 97 40 7.4模型一60 92 50 7.35模型二50 89 60 7.3模型三70 94 45 7.354.3 组织切片染色结果- 对照组组织结构正常；- 模型一组组织结构出现轻微变化，血管扩张；- 模型二组组织结构明显受损，肝细胞坏死现象严重；- 模型三组组织结构有所改变，肺泡壁增厚。
5. 实验讨论从行为活动观察结果可以看出，随着缺氧程度的加深，小鼠的活动能力逐渐下降，甚至出现异常行为。
观察各型缺氧小鼠的实验报告
活动情况
呼吸频率 呼吸幅度 （次/10s）
皮肤血液颜色
死亡时 间
正常 正常 烦躁不安 烦躁不安 迟钝 无力瘫软 抽搐 正常 打转 迟钝、瘫软 抽搐 正常 迟钝 迟钝、侧卧 迟钝、侧卧 瘫软 瘫软 小便失禁 正常 迟钝、侧卧 小便失禁 瘫软、抽搐
瘫软、抽搐
18 16 30 20 20 12 — 25 30 32 —
组别缺氧类型 Aห้องสมุดไป่ตู้正常对照组
记录 时间
活动情况
呼吸频率 呼吸幅度 （次/10s）
皮肤血液颜色
死亡时 间
0' 0' 3' 6' B组 乏氧性缺氧 9' 12' 15' 0' 3' C1 CO中毒 6' 9' 0' 3' C组 6' 血液 C2 NaNO2+美兰 9' 性缺氧 12' 15' 18' 0' C3 NaNO2中毒 3' 6' D1 KCN中毒 0' D组 组织中毒 D2 0' 性缺氧 KCN+Na2S2O3
皮肤玫瑰红，血鲜红 1'32"
记录 时间 A组正常对照组 0' 0' 3' 6' B组 乏氧性缺氧 9' 12' 15' 0' 3' C1 CO中毒 6' 9' 0' 3' C组 6' 血液 C2 NaNO2+美兰 9' 性缺氧 12' 15' 18' 0' C3 NaNO2中毒 3' 6' D1 KCN中毒 0' D组 D2 组织中毒 0' 性缺氧 KCN+Na2S2O3 组别缺氧类型
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告一、实验目的1、观察不同类型缺氧对小鼠的影响，了解缺氧的分类和特点。
2、掌握测定小鼠耗氧量和存活时间的方法，分析缺氧的机制。
二、实验原理当组织得不到充足的氧气供应或者不能充分利用氧气时，会发生缺氧。
缺氧分为低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织性缺氧四种类型。
本实验通过不同的方法建立相应的缺氧模型，观察小鼠在缺氧状态下的行为表现、存活时间以及生理指标的变化，以探讨缺氧的发生机制和特点。
三、实验材料1、实验动物：健康小鼠若干只。
2、实验器材：广口瓶、测氧仪、钠石灰、一氧化碳发生装置、亚硝酸钠溶液、注射器等。
3、实验药品：生理盐水。
四、实验方法1、低张性缺氧模型的建立取两只小鼠，分别放入容积相等的广口瓶中，其中一个广口瓶瓶口密封，瓶内放置适量钠石灰以吸收二氧化碳，造成低张性缺氧环境；另一个广口瓶瓶口敞开，作为正常对照。
观察并记录小鼠的行为表现和存活时间。
2、血液性缺氧模型的建立取两只小鼠，一只腹腔注射亚硝酸钠溶液，造成高铁血红蛋白血症，引起血液性缺氧；另一只腹腔注射等量生理盐水作为对照。
观察并记录小鼠的行为表现和存活时间。
3、循环性缺氧模型的建立取两只小鼠，一只用丝线结扎其单侧颈动脉，造成脑循环障碍，引起循环性缺氧；另一只作为对照，不进行任何处理。
观察并记录小鼠的行为表现和存活时间。
4、组织性缺氧模型的建立取两只小鼠，一只放入充满一氧化碳的广口瓶中，造成组织性缺氧；另一只放入充满空气的广口瓶中作为对照。
观察并记录小鼠的行为表现和存活时间。
五、实验结果1、低张性缺氧缺氧组小鼠出现呼吸加深加快、活动减少、口唇发绀等症状，存活时间明显缩短。
正常对照组小鼠活动正常，存活时间较长。
2、血液性缺氧注射亚硝酸钠溶液的小鼠出现皮肤黏膜青紫、呼吸困难等症状，存活时间较对照组缩短。
3、循环性缺氧结扎单侧颈动脉的小鼠出现偏瘫、抽搐等症状，存活时间较对照组明显缩短。
4、组织性缺氧暴露于一氧化碳环境中的小鼠迅速出现昏迷、抽搐，存活时间极短。
不同类型缺氧小鼠观察.
不同类型缺氧小鼠观察2013-3-25］.［实验原理］1.乏氧性缺氧2.血液性缺氧3.组织中毒性缺氧J［实验目的］1.学习各型缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。
2.观察不同类型缺氧中机体的变化。
3.掌握各类型缺氧的概念、发生机制及特点。
2013-3-251 ［实验动物］■小白鼠4只2013-3-252013-3-25器材小白鼠缺氧瓶（250 ml 带塞锥形瓶或广 口瓶）、一氧化碳发生装置一套.刻度吸管（2ml. 5ml ）, 1ml 注射器二具、酒精灯、6号针头二颗、 手术剪、组织银、眼科镶各一把。
2.试剂和药品 钠石灰（NaOHCaO ）.甲酸.浓 硫酸、氢氧化钠、1%亚硝酸钠溶液2013-3-251.动物一般状态、活动情形等 2.呼吸频率（次/10s ）.深度 3.皮肤（口唇）、血液颜色 4. 存活时间实验材料］观察指标］［实验步骤］、正常对照组1-取正常小鼠一只，观察动物的的各项指标.2.处死动物后立即从眶静脉取血2滴于装有7ml蒸馆水的试管内混匀. 观察其颜色。
打开胸腹腔，观察其内脏颜色，并与其他类型的缺氧小鼠比较。
2013-3-25____________________________乏氧性缺氧"（1）取钠石灰少许（约5g）及小白鼠一只放入缺氧瓶内。
观察动物的一般悄况、呼吸.皮肤与口唇颜色，然后塞紧瓶塞，记录时间。
以后每3min重复观察上述指标一次（如有其它变化则随时记录），直到动物快死亡时从眶静脉取血2滴于装有7ml蒸憎水的试管内混匀,观察其颜色。
（2）取出动物尸体，做好记号，待以后解剖。
2013-3-251.一氧化碳中毎性缺氧(1)取小白風1只放人广口瓶中，观察动物的一般情况.呼吸、&肤与口唇颜色。
(2)将广口瓶通过橡皮管与一氧化碳发生装置揑连，用刻S吸管吸舉甲酸3ml放人试管卤；加人菠a酸2ml,塞紧试竄用酒精灯微微1热述S，以加速CO的产生(不f苛迸热以至液体沸腾，尊魏动物过快死亡).(3)待动物快死亡时立即从眶》脉取血2滴于装有7ml蠡®水的试管內混匀＜观察箕颜龟打开胸腹腔, 观察箕禺脏颜色，昇与其柚类型航换小m比较。
缺氧病理生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 探讨不同类型缺氧对机体的影响和病理生理机制。
3. 通过实验观察缺氧对小鼠生理指标的影响，如呼吸频率、心率、血液pH值等。
4. 分析缺氧耐受性的影响因素。
二、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠（体重20克左右）10只。
2. 实验仪器：呼吸频率计、心率计、血液pH计、注射器、玻璃管、缺氧装置等。
3. 实验试剂：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、1%美兰溶液、1%氰化钾溶液等。
三、实验方法1. 将小白鼠随机分为五组，每组2只。
2. 第一组（对照组）不做任何处理。
3. 第二组（低张性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通过通入氮气使氧气浓度降低至5%以下，持续观察其生理指标变化。
4. 第三组（一氧化碳中毒性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通入一定浓度的一氧化碳，持续观察其生理指标变化。
5. 第四组（亚硝酸钠中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液，持续观察其生理指标变化。
6. 第五组（氰化钾中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射1%氰化钾溶液，持续观察其生理指标变化。
7. 观察并记录各组小白鼠的呼吸频率、心率、血液pH值等生理指标变化，直至动物死亡。
四、实验结果1. 对照组：小白鼠生理指标无明显变化。
2. 低张性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低。
3. 一氧化碳中毒性缺氧组：呼吸频率和心率明显加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为30分钟。
4. 亚硝酸钠中毒性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为40分钟。
5. 氰化钾中毒性缺氧组：呼吸频率和心率迅速加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为10分钟。
五、实验分析1. 缺氧对机体的影响：缺氧会导致机体出现一系列生理和病理生理反应，如呼吸频率和心率加快、血液pH值降低等。
2. 不同类型缺氧的影响：低张性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧对机体的影响较为相似，表现为呼吸频率和心率加快、血液pH值降低。
几种类型的小鼠缺氧实验
HB-Fe2+
＋
NaNO2
氧化
HB-Fe3+
＋
NaNO
－ 2
正常人MHB含量占HB总量的0.07~0.38%，相 当于0.03g%左右
NaNO2中毒时MHB含量占HB总量的10%以上， 相当于1.5g%以上
HB-Fe3+ ＋ 美蓝
还原
HB-Fe2+
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19
KCN中毒
Cyt aa3-Fe3+ ＋ CN－ → Cyt aa3-Fe3+-CN－
(％)
－－ －－－－－－
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10
分组讨论题
1. 各组缺氧存活时间不同及死亡的原因和机 制是什么？
2. 各组血液颜色生成的原因；美蓝的作用是 什么？
3. 各组的呼吸变化有何不同，为什么？
4. 实验一FiO2变化的原因、机制是什么？
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（完） 11
分组讨论题
1. 各组缺氧存活时间不同及死亡的原因和机制是 什么？
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21
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5. 年龄差异 6. 美蓝的作用 7. 实验一装置的
原理
（完）
13
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15
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16
钠石灰瓶小鼠 玻璃珠瓶小鼠
氧浓度（％）
时间 两瓶中氧浓度变化关系（模式图）
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17
CO中毒死因
①结合速率= HB＋COHBCO= 1
HB＋O2 HBO2 10
解离速率= HBC OHB＋CO= 1
不同类型的缺氧实验报告
不同类型的缺氧实验报告缺氧是指组织和器官在缺少充足氧气供应时的一种生理反应。
在科学实验中，研究者们可以通过不同的实验方法模拟和观察不同类型的缺氧情况，以便了解其对生物体的影响和机制。
本文将介绍几种常见的缺氧实验方法及其实验报告。
一、单纯性缺氧实验1.实验目的：模拟环境中缺氧情况，观察生物体对缺氧的生理和生化反应。
2.实验材料和方法：(1)试验动物：小鼠(2)实验仪器：缺氧箱、血氧饱和度检测仪等(3)实验组数：正常对照组和缺氧组(4)实验步骤：a.将小鼠随机分为正常对照组和缺氧组。
b.正常对照组置于正常气氛中，缺氧组置于缺氧箱中。
c.观察各组小鼠的活动情况、呼吸频率和血氧饱和度变化。
d.检测并分析生物体的血液参数、生化指标等。
3.实验结果和讨论：(1)缺氧组的小鼠活动减少、呼吸频率增加，表明缺氧影响了生物体的生理状态。
(2)缺氧组的血氧饱和度显著降低，证实了缺氧情况的成功模拟。
(3)缺氧组的血液参数和生化指标与正常对照组相比存在明显差异，说明缺氧对生物体的代谢和功能产生了影响。
二、缺血缺氧实验1.实验目的：模拟缺血缺氧情况，探究缺血缺氧对器官或组织的损伤程度。
2.实验材料和方法：(1)试验动物：大鼠(2)实验仪器：缺血模型装置、血管夹等(3)实验组数：正常对照组、缺血组和缺血缺氧组(4)实验步骤：a.将大鼠随机分为正常对照组、缺血组和缺血缺氧组。
b.正常对照组暴露于正常血液供应条件下，缺血组使用血管夹阻断血流，缺血缺氧组在缺血基础上再施加缺氧处理。
c.观察各组大鼠的行为表现、组织病理变化和炎症反应等。
d.进行相关检测和分析，如组织学检查、炎症因子水平测定等。
3.实验结果和讨论：(1)缺血组和缺血缺氧组的大鼠活动受限，表明缺血和缺血缺氧对生物体造成了损害。
(2)缺血组和缺血缺氧组的组织病理变化明显，如细胞坏死、炎细胞浸润等，进一步证实了缺血缺氧对组织的损伤作用。
(3)缺血和缺血缺氧组的炎症因子水平升高，说明炎症反应在缺血缺氧损伤过程中发挥重要作用。
小鼠缺氧实验报告机制
一、实验背景缺氧是指机体组织在氧气供应不足的情况下，导致细胞代谢和功能受到影响的一种病理状态。
为了研究缺氧对小鼠生理和生化过程的影响，本实验通过人为制造缺氧环境，观察小鼠在不同缺氧条件下的生理反应和生化指标变化，从而分析缺氧的机制。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，如乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
2. 观察缺氧对小鼠呼吸系统、中枢神经系统的影响。
3. 分析缺氧对小鼠血液颜色、耗氧量等生化指标的影响。
4. 探讨影响缺氧耐受性的因素。
三、实验方法1. 缺氧模型的复制：- 乏氧性缺氧：将小鼠放入密闭容器中，逐渐降低容器内的氧气浓度。
- 血液性缺氧：通过腹腔注射亚硝酸钠或氰化钾等物质，降低血液中氧合血红蛋白的含量。
- 组织中毒性缺氧：通过注射一氧化碳等物质，阻断组织细胞对氧气的利用。
2. 观察指标：- 呼吸频率和深度- 中枢神经系统功能（如翻正反射、肌肉紧张度等）- 血液颜色变化- 耗氧量3. 数据分析：- 通过记录小鼠在不同缺氧条件下的生理和生化指标变化，分析缺氧的机制。
四、实验结果1. 呼吸系统：- 乏氧性缺氧和血液性缺氧条件下，小鼠呼吸频率和深度明显增加，以增加氧气摄入和二氧化碳排出。
- 组织中毒性缺氧条件下，小鼠呼吸频率和深度无明显变化。
2. 中枢神经系统：- 乏氧性缺氧和血液性缺氧条件下，小鼠出现翻正反射减弱、肌肉紧张度降低等中枢神经系统功能障碍。
- 组织中毒性缺氧条件下，小鼠中枢神经系统功能无明显变化。
3. 血液颜色：- 乏氧性缺氧和血液性缺氧条件下，小鼠血液颜色变暗，呈紫红色，提示血液中氧合血红蛋白含量降低。
- 组织中毒性缺氧条件下，小鼠血液颜色无明显变化。
4. 耗氧量：- 乏氧性缺氧和血液性缺氧条件下，小鼠耗氧量明显增加，以维持生命活动。
- 组织中毒性缺氧条件下，小鼠耗氧量无明显变化。
五、机制分析1. 呼吸系统：- 缺氧条件下，呼吸中枢兴奋，导致呼吸频率和深度增加，以提高氧气摄入和二氧化碳排出。
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不同类型缺氧小鼠观察
2013-3-25
］［实验原理］
1.乏氧性缺氧
2.血液性缺氧
3.组织中毒性缺氧
［实验目的］
1.学习各型缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。
2.观察不同类型缺氧中机体的变化。
3.掌握各类型缺氧的概念、发生机制及特点。
2013-3-25
［实验动物］
■力、白鼠4只
2013-3-25
［实验材料］
‘器材—鼠缺氧瓶（250 ml带塞锥形瓶或广口
瓶）、一氧化碳发生装置一套、刻度吸管（2ml.
5ml）, nnl注射器二具、酒精灯、6号针头二颗、手术剪、组织镶、眼科镶各一把。
2.试剂和药品钠石灰（NaOHCaO）.甲酸、浓
硫酸.氢氧化钠、亚硝酸钠溶液
2013-3-25
土［观察指标］
1. 动物一般状态.活动情形等
2.呼吸频率（次/10s）.深度
3.皮肤（口唇）、血液颜色
4.存活时间
、正常对照组
1.取正常小鼠一只，观察动物的的各项指标。
2・处死动物后立即从眶静脉取血2滴于装有7ml蒸倔水的试管内混匀' 观察其颜色。
打开胸腹腔，观察其内脏颜色，并与其他类型的缺氧小鼠比较。
2013-3-25
［实验步骤］
2013-3-25
匕、乏氧性缺氧
（1）取钠石灰少许（约5g）及小白鼠一只放入缺氧瓶内。
观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜色，然后塞紧瓶塞，记录时间。
以后每3min重复观
察上述指标一次（如有其它变化则随时记录），直到动物快死亡时从眶静脉取血2滴于装有7ml蒸傳水的试管内混匀,观察其颜色。
（2）取出动物尸体，做好记号，待以后解剖。
、血液性缺氧
1. 一氧化碳中毎性缺氧
(1)取小白鼠丄只放人广口瓶中，观察动物的一般情
况、呼吸、
肤与口唇颜色。
(2)将广口瓶通过橡皮管与一氧化碳发生装置相连，用刻应吸管吸取甲酸3ml放人试管丙；酸2ml,塞紧迖膏。
用酒精灯微微笳热试速CO的产生(术苛迸热以至液体沸腾，导动物过快死亡)。
观察箕禺脏颜色，并与其施类型此赫小咸比较。
2013-3-25
2.亚硝酸盐中毒性缺氧
(1)取小白鼠丄只，观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜
色。
观察上述指标•待动物
(2)由腹腔注入丄％亚硝酸钠溶液1.0ml
r
快死亡时立即从眶静脉取血2滴于装有
7ml蒸憎水的试管内混匀，观察其颜色。
打开胸腹腔,
观察其内脏颜色，并与其他类型的缺氧小鼠比较。
2013-3-25
［结果整理］
表1 不同类型缺氧结果比较
注意事项］
1.复制乏氧性缺氧时，缺氧瓶一定要密闭，可用凡土林涂在瓶塞外。
瓶内钠石灰必须能有效地吸收CO?。
2.复制CO中毒时，CO产生量应保持适中，可稍微加热，但应防止CO产生过快致小白鼠迅速死亡，影响观察。
co为有毒气体，实验中应注意防护。
3・小白鼠腹腔注射应稍靠左下腹，勿损伤肝脏，也应避免将药液注入肠腔或膀胱。
4.每只动物取血的量必须一致。
2013-3-25。