不同类型缺氧的制备和观察

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cocl2缺氧诱导实验方法

cocl2缺氧诱导实验方法

COCl2(一氯化碳)缺氧诱导实验是研究动物模型中缺氧相关生理和病理变化的常用方法之一。

以下是一般的COCl2缺氧诱导实验方法:
1. 实验动物的选择:选择适合的实验动物,如小鼠或大鼠,并确保其健康状况良好。

在实验前进行适当的驯化和适应。

2. COCl2溶液制备:制备COCl2溶液,通常使用纯度较高的COCl2气体在生理盐水中溶解。

确保溶液浓度、稀释比例和pH值的准确性。

3. 缺氧暴露:将实验动物置于密闭的容器或缺氧室中,通过注入COCl2溶液或COCl2气体来引起缺氧暴露。

根据实验需求,可以控制不同的缺氧程度和时间。

4. 监测和观察:在缺氧暴露期间,对实验动物进行定期监测和观察,包括呼吸频率、心率、行为活动等指标的记录。

必要时可使用仪器设备进行生理参数的测量。

5. 实验终点评估:在缺氧暴露之后,根据实验目的,
选择适当的时间点进行病理学、生化学或分子生物学等方面的评估。

可以收集组织样本,进行血液分析或其他相关检测。

需要注意的是,COCl2缺氧诱导实验具有一定的风险和操作要求,必须严格遵守安全操作规程。

在进行实验前,应充分了解和评估潜在的危险性,并采取适当的防护措施,如佩戴个人防护装备、操作在通风良好的实验室环境下等。

此外,COCl2缺氧诱导实验应符合当地法律法规和伦理审查委员会的要求,并在合适的情况下进行动物福利伦理评估和管理。

缺氧dlc液氢液氧制备

缺氧dlc液氢液氧制备

缺氧dlc液氢液氧制备全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:缺氧是一款备受玩家喜爱的生存游戏,而随着科技的不断发展,游戏中也推出了各种DLC(下载内容)。

其中液氢液氧制备DLC就是其中之一,这个内容为玩家提供了更多的游戏体验和挑战。

在这篇文章中,我们将为大家介绍缺氧DLC液氢液氧制备的制作过程及相关内容。

让我们先来了解一下什么是液氢液氧。

液氢液氧是一种火箭燃料的组成部分,其混合比例为1:2。

这种燃料具有非常高的推进力和效率,因此在太空探索和航天领域中被广泛应用。

而在游戏中,液氢液氧可以用来制备火箭燃料,帮助玩家探索更远的星球和更广阔的宇宙。

要制备液氢液氧,首先需要准备好一些原材料。

在游戏中,玩家需要收集水和电力来制备液氢液氧。

水可以通过设置水提取器来产生,而电力则可以通过太阳能板或燃料发电机来获取。

一旦收集到足够的水和电力,玩家就可以开始制备液氢液氧了。

制备液氢液氧的过程并不复杂,但需要一定的耐心和技巧。

玩家需要建造一个电解槽,用来将水分解成氢气和氧气。

然后,将氢气和氧气分别传送到液氢制备机和液氧制备机中,进行进一步的加工和处理。

通过合适的管道和设备将液氢和液氧储存起来,就可以得到最终的产品了。

在游戏中,液氢液氧主要用于制备火箭燃料和推进剂。

玩家可以将其装载到火箭中,进行太空探索和航天任务。

通过使用液氢液氧制备DLC,玩家可以拥有更多的机会去探索未知的星球和宇宙,挑战更高难度的任务和目标。

除了游戏内容本身,液氢液氧制备DLC还为玩家提供了更多的创意和想象空间。

玩家可以设计自己的火箭和太空探测器,选择不同的航线和目标,展开更加多样化和有趣的游戏体验。

而且,液氢液氧的制备过程也可以锻炼玩家的逻辑思维和实践能力,培养他们的科学知识和技术技能。

第二篇示例:缺氧DLC是一款备受玩家喜爱的科幻生存游戏,而液氢液氧则是其中的重要资源之一。

在游戏中,玩家需要通过采集资源、合成物品来生存和探索未知星球。

而液氢液氧作为重要的燃料和氧气来源,在玩家的探险中扮演着关键的角色。

病理生理设计性实验

病理生理设计性实验

缺氧实验(一)【目的要求】1.学习复制动物缺氧病理模型的方法,掌握不同缺氧类型主要的发病原因和机制。

2.观察不同类型缺氧时呼吸、皮肤粘膜颜色、活动以及氧分压的改变。

3.了解机体功能、代谢特点与缺氧对机体影响的关系。

【实验原理】不同的缺氧条件均可造成动物的缺氧状态,并表现出相应的机…【目的要求】1.学习复制动物缺氧病理模型的方法,掌握不同缺氧类型主要的发病原因和机制。

2.观察不同类型缺氧时呼吸、皮肤粘膜颜色、活动以及氧分压的改变。

3.了解机体功能、代谢特点与缺氧对机体影响的关系。

【实验原理】不同的缺氧条件均可造成动物的缺氧状态,并表现出相应的机能代谢改变。

但动物的不同年龄、不同机能状态,对缺氧的耐受能力也不尽相同。

【实验动物】1.体重相近的小白鼠6只。

2.新生幼鼠1只。

【药品与器材】钠石灰、玻璃珠、7%柠檬酸钠溶液、CO、2%亚硝酸钠、0.04%氰化物、蒸馏水、测氧仪、天平称、手术器械一套、试管、5ml注射器、青霉素小瓶、广口瓶、三角烧瓶。

【实验项目、步骤与观察指标】1.年龄因素对缺氧耐受性的影响(1)取新生幼鼠1只,放入青霉素小瓶内(瓶口塞以少量棉花以免成年鼠伤害),然后将其与成年鼠一起放入广口瓶内,观察动物一般状况。

(2)密闭瓶塞,记录时间,观察两鼠状况。

(3)记录两鼠死亡时间。

注意,当其中一只小鼠死亡后,不能揭开瓶盖;如另一鼠至各项实验结束时仍未死亡,实验也应中止。

2.低张性缺氧实验(1)用天平称重小鼠,取体重相近的2只小白鼠(体重相差<1g),分别投入钠石灰瓶(A)和玻璃珠瓶(B)内,在观察它们一般的活动状况后,同时密闭两只玻璃瓶,并开始计时。

观察过程中必须经常注意瓶子的密闭性。

观察要点:两鼠在瓶内的活动度、呼吸、皮肤粘膜的颜色等变化,每3min记录一次,在其中一只小鼠死亡时,记录死亡时间,并做下步骤操作。

(2)立即用5ml注射器同时地从连接两只瓶子的乳胶管部位分别抽取约2ml气体,在注意固定注射针与注射器连接部位的情况下拔出注射针,并立即将注射针插入软木塞使抽取的气体与外界空气隔绝。

小白鼠的缺氧实验

小白鼠的缺氧实验

缺氧对小白鼠体征的影响(潍坊医学院2009级临床26班山东潍坊261053)[摘要]目的:观察缺氧对小白鼠体征的影响。

方法:取五只小白鼠,通过制作小白鼠的乏氧性缺氧、一氧化碳中毒性缺氧、亚硝酸钠中毒性缺氧三种模型并与正常状态的小白鼠作对比,观察小白鼠的行为及皮肤、黏膜、肝脏的变化。

结果:小白鼠的乏氧性缺氧模型肝脏为青紫色,一氧化碳中毒性缺氧模型为樱桃红色,亚硝酸钠中毒性缺氧模型肝脏青石板颜色,正常小白鼠肝脏为红色。

结论:不同的缺氧因素对小白鼠肝脏颜色有不同影响。

[关键词]乏氧性缺氧,一氧化碳中毒性缺氧,亚硝酸钠中毒性缺氧,青石板颜色前言缺氧是由于机体供氧不足或组织利用氧障碍引起的机体代谢、功能和形态结构改变的病理过程[1]。

理论上由于不同机制的缺氧通过对血红蛋白的影响改变了血红蛋白的颜色从而我们可以复制相应模型以观察其血液的变化。

至于类似的实验,前人已经将其机制研究清楚了,做本次实验只是加以验证,观察是否与理论相符合,有时也许会有新的发现,但主要是为以后的临床学习打下基础。

材料与方法1 实验材料器材:小白鼠缺氧瓶、CO发生装置、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子。

药品:钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠、1%亚硝酸钠、1%美兰、生理盐水。

动物:小白鼠2 缺氧模型的制备2.1乏氧性缺氧模型的制备(1) 取钠石灰约5g及小白鼠一只放入缺氧瓶内。

观察动物的一般情况,呼吸频率(次/10s),深度,皮肤和口唇粘膜颜色,然后紧塞瓶塞,记录时间,以后每3min重复观察上述指标1次(如有其他变化则随时记录)直到动物死亡为止。

(2) 动物尸体留待2.2、2.3、2.4实验做完后,再依次打开其腹腔,比较血液或肝脏颜色。

2.2一氧化碳中毒性缺氧模型的制备(1) 装好CO发生装置。

(2) 将小白鼠放入广口瓶中,观察其正常表现,然后与CO发生装置连接。

(3) 取甲酸3ml放入试管中,加入浓硫酸2ml,塞紧。

(可用酒精灯加热,加速CO产生,但不可过热以至液体沸腾,因CO产生过多过快动物迅速死亡,血液颜色改变不明显。

缺氧小鼠实验报告讨论

缺氧小鼠实验报告讨论

一、实验背景缺氧是生物体在氧气供应不足的情况下产生的一系列生理和生化反应。

为了研究缺氧对小鼠生理功能的影响,本实验采用低氧环境模拟技术,对小鼠进行缺氧处理,观察其生理指标的变化,探讨缺氧对小鼠的影响。

二、实验目的1. 观察缺氧对小鼠生理指标的影响;2. 分析缺氧对小鼠免疫系统、神经系统及代谢系统的影响;3. 探讨缺氧对小鼠生长发育的影响。

三、实验方法1. 实验动物:选取健康雄性C57BL/6小鼠40只,体重(20±2)g,随机分为4组,每组10只,分别为正常对照组、缺氧模型组、低氧预处理组和高氧预处理组。

2. 缺氧模型制备:将缺氧模型组小鼠置于低氧舱中,氧浓度为10%,持续处理4小时;低氧预处理组小鼠在缺氧前1小时给予低氧预处理,氧浓度为10%,持续处理1小时;高氧预处理组小鼠在缺氧前1小时给予高氧预处理,氧浓度为30%,持续处理1小时;正常对照组小鼠置于正常氧气环境中。

3. 生理指标检测:实验结束后,检测各组小鼠的心率、呼吸频率、体温、血糖、血清生化指标等生理指标。

4. 免疫系统检测:检测各组小鼠的淋巴细胞转化率、血清溶菌酶活性等免疫指标。

5. 神经系统检测:检测各组小鼠的学习记忆能力、神经递质水平等神经指标。

6. 代谢系统检测:检测各组小鼠的肝糖原、血清甘油三酯等代谢指标。

四、实验结果1. 生理指标:缺氧模型组小鼠的心率、呼吸频率、体温均显著低于正常对照组(P<0.05);低氧预处理组和高氧预处理组小鼠的心率、呼吸频率、体温与正常对照组相比无显著差异(P>0.05)。

2. 免疫系统:缺氧模型组小鼠的淋巴细胞转化率、血清溶菌酶活性均显著低于正常对照组(P<0.05);低氧预处理组和高氧预处理组小鼠的淋巴细胞转化率、血清溶菌酶活性与正常对照组相比无显著差异(P>0.05)。

3. 神经系统:缺氧模型组小鼠的学习记忆能力、神经递质水平均显著低于正常对照组(P<0.05);低氧预处理组和高氧预处理组小鼠的学习记忆能力、神经递质水平与正常对照组相比无显著差异(P>0.05)。

《机能学实验》实验教学大纲(临床等)

《机能学实验》实验教学大纲(临床等)

《机能学实验》实验教学大纲(供五年制本科临床医学、麻醉学等专业使用)Ⅰ前言机能实验学是以生理学、病理生理学、药理学为基础,通过对三学科实验教学的优化、融合、重组形成的一门独立的综合性实践课,是以动物实验和人体功能观察为手段,探讨人体机能活动规律及其在疾病状态或药物干预下的变化规律及其机制的综合性实验课程,是机能学教学的重要组成部分和重要的医学基础课程。

主要内容包括基本实验技能、基本的经典实验、综合性实验和设计性实验。

编写本大纲的目的是要求学生通过该课程的学习,掌握常用实验仪器的原理及使用方法;掌握常用实验动物的选择和局部手术操作;掌握常用实验溶液的配制方法:学会实验资料的收集、整理和数据处理;学会对实验结果的分析、整理和实验报告的正确书写,从而提高对功能学科知识的进一步理解,提高解决实际问题的综合能力、提高科学思维的能力,培养对科学工作严谨求实的作风,为今后从事实际工作和科学研究奠定基础。

本大纲适用于五年制本科临床医学、临床妇产、急救医学、眼耳鼻喉科学、医学美容、医学影像学、麻醉学、法医学专业(方向)医学生使用。

现将大纲使用中有关问题说明如下:一为了使教师和学生更好地掌握教材,大纲中每一实验均由教学目的、教学要求和教学内容三部分组成。

教学目的注明教学目标,教学要求分掌握、熟悉和了解三个级别,教学内容与教学要求级别对应,并统一标示(核心内容即知识点以下划实线,重点内容以下划虚线,一般内容不标示)便于学生重点学习。

二教师在保证大纲核心内容的前提下,可根据不同教学手段,讲授重点内容和介绍一般内容。

三总教学参考学时:68学时。

四使用教材:《机能学实验指导》,自编,石京山,4版,2006年。

Ⅱ正文实验一概述一教学目的(一)明确机能实验课的目的和要求,严格遵守实验室的规章制度,认真做好每一次实验,在实验中不断掌握动物实验的基本操作技术。

(二)掌握BL-410、BL-420E和ASB240U生物信号采集系统操作。

缺氧模型复制实验报告(3篇)

缺氧模型复制实验报告(3篇)

第1篇一、实验背景缺氧是机体因氧供应不足或组织利用氧障碍而导致的生理和生化异常变化的病理过程。

缺氧在多种疾病中起着重要作用,如心血管疾病、呼吸系统疾病、神经系统疾病等。

为了研究缺氧对机体的影响,本实验旨在复制缺氧模型,观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。

二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型,包括乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。

2. 观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。

3. 分析不同缺氧类型对小鼠的影响差异。

三、实验材料1. 实验动物:昆明种小白鼠,体重(20±2)g,雌雄各半。

2. 试剂与仪器:生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、10%葡萄糖溶液、0.1%氰化钾溶液、NaOH溶液、乙醇、甲醛、冰醋酸、中性树胶、显微镜、电子天平、移液器、离心机、水浴箱、高压蒸汽灭菌器等。

四、实验方法1. 缺氧模型复制(1)乏氧性缺氧:将小白鼠放入容积为1000ml的广口瓶中,加入NaOH溶液至瓶底,密封瓶口,使瓶内氧气被NaOH吸收,形成乏氧环境。

(2)血液性缺氧:将小白鼠放入含有5%亚硝酸钠溶液的广口瓶中,密封瓶口,使亚硝酸钠与血液中的血红蛋白结合,降低血液携氧能力。

(3)组织中毒性缺氧:将小白鼠放入含有0.1%氰化钾溶液的广口瓶中,密封瓶口,使氰化钾抑制细胞内呼吸酶活性,导致组织细胞缺氧。

2. 观察指标(1)生理指标:记录小白鼠的呼吸频率、心率、体温等生理指标。

(2)生化指标:采集小白鼠血液,检测血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性等生化指标。

(3)组织形态:取小白鼠肝脏、心脏、肾脏等组织,进行组织切片,观察细胞形态和结构变化。

3. 数据处理与分析采用统计学方法对实验数据进行统计分析,比较不同缺氧类型对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响差异。

五、实验结果1. 乏氧性缺氧组:小白鼠呼吸频率明显降低,心率减慢,体温下降;血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性均明显降低;组织切片观察发现,细胞出现肿胀、变性等病理变化。

实验二实验性缺氧及影响机体缺氧耐受性的因素

实验二实验性缺氧及影响机体缺氧耐受性的因素

实验二实验性缺氧及影响机体缺氧耐受性的因素【实验目的】1.复制低张性缺氧、血液性缺氧。

组织性缺氧动物模型。

2.观察年龄、代谢耗氧率等因素对机体缺氧耐受性的影响。

3.观察不同类型缺氧时机体病理生理变化特点。

【实验原理】由于吸入气体氧分压降低而使肺泡氧分压降低,导致血液从肺摄取的氧减少而引起的供氧不足,称为乏氧性缺氧。

乏氧性缺氧时,动脉血的氧分压、氧含量和氧饱和度均降低,皮肤、粘膜呈现青紫色,称为发绀。

血红蛋白中的二价铁(Fe2+)可在亚硝酸盐等氧化剂作用下被氧化而形成高铁血红蛋白。

二价铁变成三价铁因与羟基牢固结合而失去携氧能力,加上血红蛋白分子的四个二价铁中有一部分氧化为三价铁后还能使剩余的Fe2+与氧的亲和力增高,即通过变构效应使氧离曲线左移,血红蛋白结合和释放的氧量都减少,导致组织缺氧。

高铁血红蛋白呈棕褐色,故亚硝酸盐中毒时皮肤、粘膜呈现类似发绀的青紫色,称为肠源性发绀。

一氧化碳与血红蛋白的亲和力远远大于氧与血红蛋白的亲和力,因此当大量血红蛋白与CO结合形成碳氧血红蛋白时,血红蛋白便失去了携带氧的能力。

另一方面CO和血红蛋白的结合可使氧离曲线左移,导致HbO2释放氧减少,加重组织缺氧。

因为碳氧血红蛋白为鲜红色,所以CO中毒时皮肤,粘膜呈现樱桃红色。

氰化物进入体内后,可迅速与氧化型细胞色素氧化酶的三价铁结合成为氰化高铁细胞色素氧化酶,使之不能还原成还原型细胞色素氧化酶,呼吸链中断,组织不能利用氧. 组织性缺氧时动脉血氧分压,氧饱和度,氧容量,氧含量均正常,因为组织不能利用氧,因此静脉血氧含量增高,动-静脉血氧含量差小于正常,故皮肤、粘膜多呈玫瑰红色。

代谢耗氧率是影响机体对缺氧耐受性的的重要因素。

基础代谢率高时,机体耗氧多,对缺氧耐受性差。

体力活动等可增加耗氧量,也使机体对缺氧耐受性降低。

而低温、神经系统抑制能降低机体耗氧,对缺氧耐受性增强。

本实验通过置动物于密闭环境、使动物吸入大量一氧化碳、腹腔注射过量亚硝酸钠及氰化钾等复制低张性缺氧、血液性缺氧。

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2010-9-23
[结果整理 结果整理] 结果整理
表1
缺Hale Waihona Puke 类型不同类型缺氧结果比较呼吸频率 及深度 唇、耳、尾、皮 肤粘膜颜色 全身情况
正常对照
乏氧性缺氧
CO中毒性缺氧 中毒性缺氧 亚硝酸盐 中毒性缺氧 氰化物中 毒性缺氧
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[ 注意事项 ]
1.复制乏氧性缺氧时 缺氧瓶一定要密闭, 可用凡土 .复制乏氧性缺氧时, 缺氧瓶一定要密闭, 林涂在瓶塞外。瓶内钠石灰必须能有效地吸收CO2。 林涂在瓶塞外。瓶内钠石灰必须能有效地吸收 2.复制 中毒时, 产生量应保持适中 产生量应保持适中, . 复制CO中毒时, CO产生量应保持适中, 可稍微加 中毒时 但应防止CO产生过快致小白鼠迅速死亡 影响观察。 产生过快致小白鼠迅速死亡, 热, 但应防止 产生过快致小白鼠迅速死亡, 影响观察。 CO为有毒气体,实验中应注意防护。 为有毒气体, 为有毒气体 实验中应注意防护。 3.氰化钾有剧毒,勿沾染皮肤、 粘膜,特别是有破损 .氰化钾有剧毒,勿沾染皮肤、粘膜, 操作过程中严防氰化物污染。实验后将物品洗涤干净。 处。操作过程中严防氰化物污染。实验后将物品洗涤干净。 4.小白鼠腹腔注射应稍靠左下腹,勿损伤肝脏,也应 .小白鼠腹腔注射应稍靠左下腹,勿损伤肝脏, 避免将药液注入肠腔或膀胱。 避免将药液注入肠腔或膀胱。 5.每只动物取血的量必须一致。 .每只动物取血的量必须一致。
不同类型缺氧的制备和观察
2010-9-23
[ 实验原理 ]
1.乏氧性缺氧 . 2.血液性缺氧 . 3.组织中毒性缺氧 . 4. 循环性缺氧
2010-9-23
[ 实验目的 ]
1.学习各型缺氧动物模型复制的方法,了解缺 .学习各型缺氧动物模型复制的方法, 氧的分类。 氧的分类。 2.观察不同类型缺氧中机体的变化。 .观察不同类型缺氧中机体的变化。 3.掌握各类型缺氧的概念、发生机制及特点。 .掌握各类型缺氧的概念、发生机制及特点。
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三、血液性缺氧
1.一氧化碳中毒性缺氧 .
只放人广口瓶中, (1)取小白鼠 只放人广口瓶中,观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜色。 )取小白鼠1只放人广口瓶中 观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜色。 (2)将广口瓶通过橡皮管与一氧化碳发生装置相连,用刻度吸管吸取甲酸3ml ) 将广口瓶通过橡皮管与一氧化碳发生装置相连, 用刻度吸管吸取甲酸 放人试管内,加人浓硫酸2ml,塞紧试管。用酒精灯微微加热试管,以加速 放人试管内,加人浓硫酸 ,塞紧试管。用酒精灯微微加热试管,以加速CO 的产生(不可过热以至液体沸腾,导致动物过快死亡)。 的产生(不可过热以至液体沸腾,导致动物过快死亡) 滴于装有7ml蒸馏水的试管内混匀 观 蒸馏水的试管内混匀,观 (3)待动物快死亡时立即从眶静脉取血 滴于装有 )待动物快死亡时立即从眶静脉取血2滴于装有 蒸馏水的试管内混匀 察其颜色。打开胸腹腔,观察其内脏颜色,并与其他类型的缺氧小鼠比较。 察其颜色。打开胸腹腔,观察其内脏颜色,并与其他类型的缺氧小鼠比较。
2010-9-23
[ 实验动物 ]
小白鼠5只 小白鼠 只
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[ 实验材料 ]
1.器材 . 小白鼠缺氧瓶(250 ml带塞锥形瓶或 小白鼠缺氧瓶 带塞锥形瓶或 广口瓶)、一氧化碳发生装置一套、刻度吸管 (2ml、5m1),1ml注射器二具 、 酒精灯 、 6号 注射器二具、 、 , 注射器二具 酒精灯、 号 针头二颗、手术剪、组织镊、眼科镊各一把。 针头二颗、手术剪、组织镊、眼科镊各一把。 2.试剂和药品 钠石灰(NaOHCaO)、甲酸、 . 钠石灰 、甲酸、 浓硫酸、氢氧化钠、 %亚硝酸钠溶液、 浓硫酸、氢氧化钠、1%亚硝酸钠溶液、0.1%氰 % 化钾溶液。 化钾溶液。
2010-9-23
[ 观察指标 ]
1.动物一般状态、活动情形等 .动物一般状态、 2.呼吸频率 次/10s)、深度。 .呼吸频率(次 、深度。 3.皮肤 口唇 和血液 肝)颜色 口唇)和血液 .皮肤(口唇 和血液(肝 颜色 4.存活时间。 .存活时间。
2010-9-23
[ 实验步骤 ]
一、正常对照组
2.亚硝酸盐中毒性缺氧 .
(1)取小白鼠 只,观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜色。 )取小白鼠1只 观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜色。 观察上述指标. (2)由腹腔注入 %亚硝酸钠溶液 )由腹腔注入1%亚硝酸钠溶液1.0ml, 观察上述指标 待动物快死亡时 立即从眶静脉取血2滴于装有 滴于装有7ml蒸馏水的试管内混匀 观察其颜色。打 蒸馏水的试管内混匀,观察其颜色 立即从眶静脉取血 滴于装有 蒸馏水的试管内混匀 观察其颜色。 开胸腹腔,观察其内脏颜色,并与其他类型的缺氧小鼠比较。 开胸腹腔,观察其内脏颜色,并与其他类型的缺氧小鼠比较。
2010-9-23
2010-9-23
四、组织中毒性缺氧
(1)取小白鼠 只,观察观察动物的一般情况、呼吸、皮肤与口唇 )取小白鼠1只 观察观察动物的一般情况、呼吸、 颜色。 颜色。 (2)腹腔注射(左下腹)0.1%氰化钾溶液 )腹腔注射(左下腹) %氰化钾溶液0.1mI/10g,立即观 , 察上述指标。待动物快死亡时立即从眶静脉取血 滴于装有 滴于装有7ml 察上述指标。待动物快死亡时立即从眶静脉取血2滴于装有 蒸馏水的试管内混匀,观察其颜色。打开胸腹腔, 蒸馏水的试管内混匀,观察其颜色。打开胸腹腔,观察其内脏颜 色,并与其他类型的缺氧小鼠比较。 并与其他类型的缺氧小鼠比较。
1. 取正常小鼠一只 观察动物的的各项指标。 取正常小鼠一只,观察动物的的各项指标 观察动物的的各项指标。 2. 处死动物后立即从眶静脉取血 滴于装有7ml蒸馏水的试管内混匀 处死动物后立即从眶静脉取血2滴于装有 蒸馏水的试管内混匀, 滴于装有 蒸馏水的试管内混匀 观察其颜色。打开胸腹腔,观察其内脏颜色, 观察其颜色 。 打开胸腹腔 , 观察其内脏颜色 , 并与其他类型的缺 氧小鼠比较。 氧小鼠比较。
二、乏氧性缺氧
(1)取钠石灰少许(约5g)及小白鼠一只放入缺氧瓶内。观察动物 )取钠石灰少许( )及小白鼠一只放入缺氧瓶内。 的一般情况、呼吸、皮肤与口唇颜色,然后塞紧瓶塞,记录时间。 的一般情况、 呼吸、 皮肤与口唇颜色, 然后塞紧瓶塞, 记录时间。 以后每3min重复观察上述指标一次(如有其它变化则随时记录), 重复观察上述指标一次( 以后每 重复观察上述指标一次 如有其它变化则随时记录) 直到动物快死亡时从眶静脉取血2滴于装有 滴于装有7ml蒸馏水的试管内混 直到动物快死亡时从眶静脉取血 滴于装有 蒸馏水的试管内混 观察其颜色。 匀,观察其颜色。 观察其颜色 (2)取出动物尸体,做好记号,待以后解剖。 )取出动物尸体,做好记号,待以后解剖。
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