荧光定量实验方法操作手册

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荧光定量仪操作指南

荧光定量仪操作指南

荧光定量仪操作指南1.准备工作在使用荧光定量仪之前,需要进行一些准备工作:-打开仪器电源,并接通仪器的电源线。

-启动仪器,并等待其自检完成。

-检查仪器所需的配件是否齐全,如荧光管、滤光片等。

2.校准仪器在进行荧光定量测量之前,需要对仪器进行校准,以确保测量结果的准确性。

校准通常包括两个步骤:-波长校准:使用标准荧光溶液,根据其发射波长设置仪器的激发和发射波长。

-亮度校准:使用标准荧光溶液,根据其知名的荧光强度设置仪器的亮度。

3.准备样品在测量样品之前,需要进行一些准备工作:-根据测定要求,选择合适的荧光染料,并将其溶解在适当的溶剂中。

-在样品舱中选择合适的载体,如荧光底板或石英反射板,并将样品涂覆在载体上。

4.进行测量在开始测量之前,需要进行一些操作:-打开样品舱盖,并将载体放置在样品舱中。

-选择适当的激发波长和发射波长,并将它们设置到仪器上。

-调节仪器上的曝光时间,以确保荧光强度在仪器的线性范围内。

5.数据分析测量完成后,需要对数据进行分析:-使用仪器上的软件导出数据,并存储到计算机中。

-对数据进行统计分析,如计算平均值、标准差等。

-通过比较样品间的荧光强度,得出相应的结论。

6.清洁和维护在使用荧光定量仪完成实验后,需要进行仪器的清洁和维护工作:-关闭仪器电源,并拔下电源线。

-将使用过的载体和滤光片取下,并进行清洗。

-清洁仪器的外壳和光学系统,可以使用干净的纸巾或专门的清洁剂。

注意事项:-避免直接接触荧光管,以免对其造成损坏。

-在测量荧光强度之前,应先调节仪器的对比度和亮度,以获得清晰的图像。

-在测量过程中,尽量避免光线干扰,可在实验室内提供充足的遮光条件。

总结:以上是荧光定量仪的操作指南。

正确操作荧光定量仪是确保实验结果准确的重要步骤,希望本文对您在实验中使用荧光定量仪时有所帮助。

荧光定量PCR实验操作流程

荧光定量PCR实验操作流程

荧光定量PCR实验操作流程1、实验器材多样品研磨珠均质仪台式高速冷冻型微量离心机荧光定量PCR仪超净工作台分光光度计离心管TIP头2、主要实验试剂及耗材RNA提取液三氯甲烷异丙醇无水乙醇引物75%乙醇:HyPure TMMolecular Biology Grade Water配制离心管、TIP头均购湿热灭菌40min,干燥。

二、荧光定量PCR实验步骤1、总RNA抽提(枪头和离心管均经过湿热灭菌,无RNA酶)1)取匀浆器,加入1ml的Trizol Reagent,置冰上预冷。

2)取100mg组织,加入到匀浆器中。

3)充分研磨直至无可见组织块。

4)12000rpm离心10min取上清。

5)加入250 μl三氯甲烷,颠倒离心管15s,充分混匀,静置3min。

6)4℃下12000rpm离心10min。

7)将上清转移到一新的离心管中,加入0.8倍体积的异丙醇,颠倒混匀。

8)-20℃放置15min。

9)4℃下12000rpm离心10min,管底的白色沉淀即为RNA。

10)吸除液体,加入75%乙醇1.5ml洗涤沉淀。

11)4℃下12000rpm离心5min。

12)将液体吸除干净,将离心管置于超净台上吹3min。

13)加入15μl无RNA酶的水溶解RNA。

14)55℃孵育5min。

15)使用UV1800检测RNA浓度及纯度:仪器空白调零后取2.5μl 待测RNA溶液于检测基座上,放下样品臂,使用电脑上的软件开始吸光值检测。

16)将浓度过高的RNA进行适当比例的稀释,使其终浓度为200ng/μl.左右。

2、反转录(枪头和PCR均经过湿热灭菌,无RNA酶)1)取一PCR管,加入含2μg RNA的溶液。

2)加入1μl 逆转录引物。

3)用无核糖核酸酶的去离子水补足至12μl。

4)于PCR仪上65℃保温5min,迅速置冰上冷却。

5)依次加入4μl 5×buffer,2μl 10mM dNTPs,1μl RNA inhibitor和1μl 反转录酶,用枪抽吸混匀。

荧光定量PCR-实验步骤

荧光定量PCR-实验步骤

荧光定量PCR检测MMP-2 mRNA的表达一、提取细胞总RNA(一)材料准备1.注意事项(1)RNA酶广泛存在于人体表面和环境中,戴口罩,勤换手套,避免皮肤与实验器具接触;专门的RNA操作区,保持清洁,定期消毒离心机,移液器均应专用。

(2)注意冰上操作,低温离心,实验所需试剂均应-4℃冰箱中预冷处理。

(3)所有实验器皿,材料都要经过去RNA酶处理,所需的氯仿、异丙醇、乙醇等都确保没有被RNA酶污染。

如果发现有污染,立即更换。

(4)操作人员保证操作的准确性,避免人为产生误差和偏倚。

2.实验器具处理:(1)塑料制品:包括枪头、EP管等,尽量使用一次性塑料制品。

若已表明为RNase-free 制品,且没有开封使用过,不需要再处理。

去除RNA酶处理步骤为:玻璃烧杯中加三蒸水和DEPC使其终浓度为0.1%(DEPC二乙基焦碳酸酷为剧毒物,通风橱中小心使用),将待处理的塑料制品逐个浸泡入DEPC水中,保证塑料制品的所有部分都浸泡到溶液中,在通风橱中室温下处理过夜,取出后尽量控干其中液体,高压后烘干,置洁净处备用。

(2)玻璃制品:泡酸过夜,冲洗干净后0.1%DEPC-H20浸泡过夜,烤干备用。

(二)试剂配制1.DEPC水:吸取1ml DEPC放在1000ml容量瓶中加双蒸水定容至1000ml,配制成0.1%DEPC水,充分搅拌混匀后分装,备用。

2.75%乙醇:用无水乙醇加DEPC水(高压灭菌处理后的DEPC水)按比例配制,-4℃冰箱保存备用。

3.异丙醇:DEPC水处理过的棕色瓶中保存。

4.氯仿:DEPC水处理过的棕色瓶中保存。

(三)实验操作步骤1.标本收集根据实验设计,给予不同浓度的药物作用于人卵巢癌SKOV3细胞24h,观察MMP-2 mRNA表达的变化。

按实验要求收集样本,分别提取细胞的总RNA。

2.Trizol法提取细胞总RNA(1)吸除6孔板中的旧培养基,使用PBS清洗2次。

(2)吸除PBS,每孔加入0.9ml RNA裂解液(Trizol),轻轻平晃板身,使裂解液覆盖底面与细胞充分接触并完全裂解细胞。

荧光定量PCR实验指南

荧光定量PCR实验指南

荧光定量PCR实验指南荧光定量PCR(qPCR)是一种能够对DNA或RNA的特定序列进行定量分析的技术。

它结合了PCR技术和荧光检测技术,能够检测出非常低浓度的靶分子。

本文将为您提供一份荧光定量PCR实验的指南,以帮助您完成这一实验。

实验前的准备工作:1.设计引物和探针:引物和探针是荧光定量PCR实验的核心组成部分,因此需要确保它们与目标序列特异性结合。

同时,还需选择合适的荧光染料和探针的浓度。

2.准备实验材料:包括引物、探针、荧光染料、模板DNA或RNA、逆转录酶酶、dNTP、聚合酶、缓冲液、MgCl2等。

3.准备质量控制样品:根据需要制备相应的阳性对照样品,并准备阴性对照样品。

实验步骤:1.反应体系的准备:根据PCR试剂盒使用说明或自行优化,将引物、探针、荧光染料、逆转录酶酶、dNTP、聚合酶、缓冲液、MgCl2等加入PCR管(注意按顺序添加,避免污染)。

2.加入模板:将模板DNA或RNA加入PCR管中,注意保持反应体系的稳定。

3.PCR条件设定:根据目标序列的特性和PCR试剂盒的要求设定PCR反应的温度、时间和周期数。

4.PCR反应:将PCR管密封,然后置于热循环仪中进行PCR反应。

5.数据分析:使用荧光定量PCR软件分析PCR反应产生的荧光信号,得到目标序列的定量结果。

注意事项:1.严格控制实验室的污染,使用无核酸污染的试剂和器材,避免引物和探针的降解。

2.对于荧光定量PCR的标准曲线方法,可以使用标准品系列的不同浓度来制作标准曲线,并根据荧光信号的强度进行定量。

3.在实验过程中,建议进行阳性和阴性对照样品的实验,以确保实验结果的准确性。

4.合理选择PCR管的容量,适量调整反应体系的配比,以保证实验的稳定性和可重复性。

总结:荧光定量PCR是一种非常强大的技术,能够在基因表达调控、感染病原体检测、突变检测等多个领域发挥重要作用。

在进行荧光定量PCR实验时,我们需要设计特异性的引物和探针,并合理选择荧光染料和探针的浓度。

荧光定量PCR仪标准操作规程

荧光定量PCR仪标准操作规程

荧光定量PCR仪标准操作指导书1、适用范围:AGS AGS4800型实时荧光定量PCR仪。

1、双击桌面“AGS4800”快捷方式,运行程序。

打开AGS4800程序进入用户选择界面。

选择用户后,进入软件操作界面。

2、新建一个检测程序文件单击新建按钮,新建一个检测程序文件。

2.1设置热盖温度调节热盖温度(30-105℃),默认105℃。

2.2设置试管加液量根据实际试管加液量调节加液量参数(5-100μl),默认25μl。

2.3设置扩增程序单击“添加”创建一个程序段2.4添加程序名称,设置各程序段循环数。

2.5温度设置功能按钮添加--------------------在当前温度节结尾,新建一个温度节插入--------------------在当前温度节前添加一个温度节删除--------------------将当前温度节删除2.6 样本信息录入2.6.1打开样本参数设置界面2.6.2在当前程序染料设置里,选择试剂所对应的染料。

2.6.3样本信息设置选择扩增的染料,选中要设置孔位依次输入“样本序号、样本名称、样本ID”,在荧光信息选择框中选择样本类型,若为标准品可以输入样本浓度信息。

样本浓度信息可以手工输入数值或者使用下拉选择框选取标准样品浓度信息。

最大样本浓度输入值1.00e+10。

2.6.4孔位选择单孔选择-----------------通过鼠标单击选中单个孔位。

相邻孔位选择--------------通过单击鼠标并拖动选择矩形框内相邻孔位或者先选中一个孔位,按住“Shift”功能键单击另一孔位进行选择。

不连续孔位选择---------通过按住“Ctrl”功能键进行依次追加选择孔位。

A(B)行全选----------在A(B)行开始位置单击鼠标则选中A(B)行所有孔位。

孔位全选-----------------在图示位置单击鼠标左键则全选所有孔位。

选择孔位增减-------------按住“Ctrl”键,使用鼠标单击需增加或减少的孔位。

实时荧光定量PCR(RT-qPCR)完全手册

实时荧光定量PCR(RT-qPCR)完全手册

实时荧光定量PCR(RT-qPCR)完全手册所谓的实时荧光定量PCR就是通过对PCR 扩增反应中每一个循环产物荧光信号的实时检测从而实现对起始模板定量及定性的分析。

RT-qPCR是由三个步骤组成 RT-qRCR影响分析可靠性关键点(Key porint)关键词:荧光实时实时荧光定量PCRRT-qPCRRT-PCR反转录定量PCRQRT-PCR方法简介所谓的实时荧光定量PCR就是通过对PCR 扩增反应中每一个循环产物荧光信号的实时检测从而实现对起始模板定量及定性的分析。

在实时荧光定量PCR反应中,引入了一种荧光化学物质,随着PCR 反应的进行,PCR 反应产物不断累计,荧光信号强度也等比例增加。

每经过一个循环,收集一个荧光强度信号,这样我们就可以通过荧光强度变化监测产物量的变化,从而得到一条荧光扩增曲线。

RT-qPCR是由三个步骤组成:1.反转录:依赖反转录酶将RNA反转录成cDNDA;2. 扩增:用PCR的方法扩增cDNA;3.检测:实时检测和定量扩增的产物.RT-qRCR影响分析可靠性关键点(Key porint):1.分析结果依赖于模板的数量、质量以及合理的检测方法设计2.反转录反应的非标准化影响试验的稳定性3.数据分析应该高度客观,如果不合理的分析,从分析结果中会得到混淆的错误结果,因此通过对RT-qPCR的每一组分进行质量评价以达到最小化变异性,最大化可重复性,而且还需要沿用一个通用的数据分析的指南。

对基因表达分析的标准化的需要是与人类临床诊断分析相适应的。

存在的问题由于各个学术团体和科研机构使用不同的操作流程,必然导致大家使用不同定量的来源物以及数据分析:1.新鲜、冰冻、甲醛固定的样品2.整个组织样本,显微切割样本,单个细胞,组培细胞3.总RNA或者mRNA4.RNA反转录成cDNA的不同的引发策略5.不同的酶以及酶的不同组合6.变异系数、灵敏度7. 多类型的检测化学方法,反应的条件,热循环仪的分析以及汇报方式。

Archimed Analyzer 荧光定量PCR系统 简明操作手册—非洲猪瘟检测说明书

Archimed Analyzer 荧光定量PCR系统 简明操作手册—非洲猪瘟检测说明书

Archimed实时荧光定量PCR系统Archimed Analyzer(Software Version1.08)简明操作手册非洲猪瘟检测鲲鹏基因(北京)科技有限责任公司利用Archimed荧光定量PCR仪完成一个非洲猪瘟检测实验共分8个步骤,如下图所示操作流程图:1.启动系统1.1启动电脑显示器、主机;1.2打开仪器后底板的电源开关,电源状态灯POW为蓝色,常亮;1.3等待系统自检,自检过程中状态灯STU为绿色闪烁状态,自检通过后为绿色常亮;1.4双击桌面软件图标,启动软件;1.5软件启动中界面;1.6软件启动完成后界面;2.创建实验2.1点击启动界面右下方“创建”按钮,或者通过菜单栏选择“创建”,可以创建全新的实验流程;2.2点击菜单栏的“从模板创建”,可以通过之前已保存的实验运行模板创建新实验。

3.设置实验属性点击页面左侧的实验属性选项,进入实验属性设置界面:3.1实验名称:系统默认以实验当前的时间而命名,也可以自己命名,但目前不支持中文和特殊字符,这里以系统默认名称命名;3.2仪器型号:根据实际使用机型进行选择,这里以选择Archimed-X6系统为例;3.3反应管类型:根据实际使用的反应管类型进行选择,这里以选择白管为例;3.4实验类型:选择绝对定量和相对定量(ΔΔCt)都可以,但是不能选择熔解曲线,我们这里选择绝对定量。

3.5实验试剂:根据实际使用的试剂类型进行选择,非洲猪瘟检测试剂盒多采用TaqMan试剂,所以这里以Taqman试剂为例进行说明。

4.设置运行条件实验属性设置完成后,点击页面左侧的运行条件或者右下角的下一步,进入运行条件设置界面:4.1反应体积设置:建议在5-25ul,实际实验可在1-30间选择一个值,明日达和郑州中道都选择25ul体系,反应体系后面显示热盖温度为100°C;4.2反应阶段设置:根据实际使用的试剂说明书设置反应阶段及步骤,如需增加或减少PCR反应阶段,如“保温”、“PCR反应”等,可将鼠标移至反应阶段区域,点击“+”或“-”,左侧及右侧“+”分别代表在此阶段前或后增加一个阶段,中间“-”代表去掉此阶段;如需增加或减少PCR某阶段中的反应步骤,可将鼠标移至该步骤区域,点击“+”或“-”,左侧及右侧“+”分别代表在此步骤前或后增加一个步骤,中间“-”代表去掉此步骤;4.3反应温度设置:时间、温度、升温速度(熔解曲线模式)的设定可以通过在数值区输入数值或点击进行,其中温度的设置还可通过点击拖拽温度曲线中的进行温度更改,拖动时温度以1°C为单位发生改变;注意:时间设置最小值不能小于00:01秒,进行实际更改时请避免4.4信号采集的相机图标:在每个反应步骤的时间框下面都有一个信号采集的相机图标,相机图标有两种状态,当为深蓝色时,代表处于信号采集开启状态,当为浅蓝色时,代表处于信号采集关闭状态,软件默认在每个循环扩增完成后进行信号采集;根据4.1到4.4的设置方法设置好后,明日达试剂盒运行条件如下图所示:根据4.1到4.4的设置方法设置好后,郑州中道试剂盒运行条件如下图所示:4.5运行条件模板保存:设置好的运行条件,可以点击界面左上角的保存按钮后的下拉菜单,单击另存为,即会弹出保存对话框。

ABI Prism 7900HT 型荧光定量 PCR 仪 中文操作手册说明书

ABI Prism 7900HT 型荧光定量 PCR 仪 中文操作手册说明书

美国应用生物系统公司ABI Prism® 7900HT型荧光定量PCR仪操作手册目录ABI PRISM® 7900HT型荧光定量PCR仪简明手册 . 快速入门 (3)ABI PRISM® 7900HT型荧光定量PCR仪简明手册 . 绝对定量 (4)一.开机 (4)二.新建文件 (4)三.探针设置 (4)四.参数设置 (5)五.填样品表 (6)六.启动循环 (7)七.数据分析 (7)八.查看结果 (7)ABI PRISM® 7900HT型荧光定量PCR仪简明手册 . 相对定量 (9)一.开机 (9)二.新建文件 (9)三.探针设置 (9)四.参数设置 (10)五.填样品表 (11)六.启动循环 (12)七.数据分析 (12)八.设置S TUDY (12)九.查看结果 (12)ABI PRISM® 7900HT型荧光定量PCR仪简明手册 . 终点读板 (14)一.开机 (14)二.新建文件 (14)三.设置D ETECTOR和M ARKER (15)四.参数设置 (16)五.填样品表 (16)六.终点读板 (16)七.数据分析 (17)八.查看结果 (17)ABI Prism® 7900HT型荧光定量PCR仪简明手册 · 快速入门1. 开机开电脑显示屏电源,启动电脑,进入Windows NT操作系统,以用户名Administrator 登陆,密码7900。

待鼠标沙漏消失,电脑完全启动后,开7900HT电源,红橙绿灯依次闪动2次,然后绿灯点亮。

双击桌面图标,打开SDS应用软件。

2. 新建文件菜单File → New,新建一个空白文件。

Assay代表试验类型,实时定量选Absolute Quantification;终点读板选Allelic Discrimination;Container指反应板类型,根据需要选择96孔板、384孔板或微量反应卡;Template项用于调用事先设置好的模板文件;Barcode是反应板的条形码,可以用扫描仪扫入或者手工输入。

Archimed 荧光定量 PCR 系统 应用手册—非洲猪瘟荧光定量 PCR 检测说明书

Archimed 荧光定量 PCR 系统 应用手册—非洲猪瘟荧光定量 PCR 检测说明书

A PPLICATION N OTE利用Archimed定量PCR进行非洲猪瘟病毒检测鲲鹏基因(北京)科技有限责任公司阳性对照阴性样本非洲猪瘟荧光定量PCR 分析2018年8月非洲猪瘟疫情在中国爆发,爆发地区分布交广,对我国畜牧养殖造成了巨大损失。

我国将非洲猪瘟列为一类动物疫病,非洲猪瘟(ASF )是由非洲猪瘟病毒(ASFV )引起的猪的一种急性、烈性、高度接触性传染病,对生猪致病率高,致死率高达100%。

应用实时荧光PCR 技术可以从低微含毒量样品中扩增获得病毒特异性核酸片段,进行病毒鉴定。

通过扩增捕获ASFV 主要免疫原基因VP72,进而测定其核酸序列,可进行以毒株间核苷酸序列同源性比较为主要技术手段的非洲猪瘟分子流行病学研究。

利用Archimed 荧光定量PCR 进行非洲猪瘟检测一般流程为了帮助实验人员更便捷地进行非洲猪瘟检测,Archimed 定量PCR 在实验条件设置、孔板设置及数据分析等方面均进行了充分优化,力争以最智能化的方式帮助研究者完成该类型实验。

利用Archimed 软件智能设置向导,完成一个非洲猪瘟荧光定量PCR 分析实验只需简单的6个步骤:1. 创建实验:点击启动界面右下方“创建”按钮,或者通过菜单栏选择“创建”,可以创建全新的实验流程;选择实验类型:根据实际使用的实验类型进行选择,这里选择相对绝对定量。

创建实验•创建新的相对定量实验文件并设置实验属性设置反应条件•进行相对定量运行条件的设置设置孔板•对反应孔进行属性及分布设置运行实验•开始非洲猪瘟荧光定量PCR 运行查看及分析结果•查看非洲猪瘟荧光定量图谱实验结果并进行分析导出实验结果•将图谱及实验数据导出保存以进行后续分析2.设置反应条件:实验属性设置完成后,点击页面左侧的运行条件或者右下角的下一步,进入运行条件设置界面3.设置孔板:运行条件设置完成后,点击页面左侧孔板设置或者右下角的下一步,进入孔板设置界面。

根据实际反应管放置的相应孔位选择反应孔,对样本及检测项目进行相应属性设置,并勾选分配至对应孔位中,待测样品孔位将显示相应设置属性注:Archimed孔板设置可以在反应运行前、运行中、或运行后设置,运行中或运行后进行孔板设置可以节省时间。

荧光定量PCR仪操作指南eppendorf

荧光定量PCR仪操作指南eppendorf

目录:1 安全预防法2 安装2。

1 交货包装2。

2 仪器的安装2.3 功能性单元2。

3.1 Mastercycler ep realplex2。

4 启动2。

4.1 realplex模块与热模块之间的连接2.4。

2 Mastercycler ep realplex 与计算机之间的连接2。

4.3 与其它部件的连接2。

4。

4 realplex软件的安装2.4。

4.1 安装主程序2.4.4。

2 数据恢复2。

4.4。

3 开始realplex软件的运行3。

操作3.1 管理者登陆3。

2 登陆3.3 用户变更3。

4 系统配置3。

4.1 对使用者的管理3。

4。

1。

1 新用户建立3.4.1.2 编辑用户3。

4。

1。

3删除用户3.4.2 用户层3.4。

3 循环仪3。

4.4 realplex 模块3.4.5 系统层3.4。

5。

1 特性3.4.5。

2 登陆出错信息3。

4.5。

3 用户登陆3.4。

5。

4 软件更新3。

5 检测项目管理3。

5.1 建立检测项目3。

5.2 打开检测项目3。

5.3 保存检测项目3.5.4 保存模板文件3.5。

5 模板文件的使用3.5.6 复制检测项目3。

5。

7 检测项目的输出3.5。

8 检测项目的输入3。

5.9 建立文件夹3.5。

10 删除检测项目和文件夹3.6 探针管理3。

7 染料管理3。

8 校准3.8.1 背景校准3。

8。

2 颜色校准3。

8。

2。

1 使用商业的校准工具包进行的颜色校准3。

8.2。

2 客户特有的染料的校准3.9 数据库管理3.9.1 当前数据库的自动保存3。

9.2 当前数据库的保存3。

9.3 输入数据库3.9。

4 数据库的归档4 编程(检测项目的建立)4。

1 建立一个新的检测项目4.2 建立板布局4.2。

1 染料的确定4。

2.2 参考染料的选择4。

2.3 样本容积输入4。

2。

4 探针类型的确定4.2.5 背景的确定4。

2。

6 样品类型的定义4.2。

6。

1 标准4。

2。

6。

2 阳性对照4。

荧光定量PCR手册

荧光定量PCR手册

荧光定量PCR手册一、什么是荧光定量 PCR荧光定量 PCR(Quantitative Realtime PCR,qPCR)是一种在 DNA 扩增反应中,通过荧光信号的实时监测来定量分析特定核酸序列的技术。

简单来说,它能告诉我们样本中特定基因的数量有多少。

这一技术在生物学、医学、农学等众多领域都发挥着重要作用。

比如,在医学诊断中,能检测病毒或细菌的感染量;在基因研究中,可分析基因的表达水平。

二、荧光定量 PCR 的原理荧光定量 PCR 的原理基于传统的 PCR 技术,但增加了荧光检测的环节。

在 PCR 反应中,DNA 会被不断复制。

我们会在反应体系中加入一种特殊的荧光探针或荧光染料。

这些荧光物质的荧光强度会随着 PCR 反应的进行而发生变化。

当 PCR 反应开始时,荧光信号很弱。

随着反应的进行,DNA 不断扩增,荧光信号逐渐增强。

通过检测荧光信号的强度变化,我们就能实时了解 PCR 反应的进程,并计算出初始样本中目标 DNA 的含量。

三、荧光定量 PCR 的实验流程(一)样本准备首先,需要从待检测的生物样本(如血液、组织、细胞等)中提取出 DNA 或 RNA。

提取的质量和纯度对后续实验结果至关重要。

(二)引物和探针设计设计合适的引物和探针是关键步骤。

引物是一小段能与目标 DNA 序列特异性结合的寡核苷酸,它们决定了 PCR 反应扩增的区域。

探针则用于检测扩增产物,通常带有荧光标记。

(三)PCR 反应体系配置将提取的核酸模板、引物、探针、酶、缓冲液、dNTPs 等试剂按照一定的比例混合,配置成 PCR 反应体系。

(四)PCR 反应将配置好的反应体系放入荧光定量 PCR 仪中,设置好反应程序,进行 PCR 反应。

(五)数据分析PCR 反应结束后,仪器会给出荧光信号的变化曲线。

通过对这些曲线进行分析,可以得出目标基因的初始含量。

四、荧光定量 PCR 的关键要素(一)引物和探针的设计引物和探针的特异性、长度、GC 含量等都会影响 PCR 反应的效率和特异性。

荧光定量PCR(染料法)实验操作SOP

荧光定量PCR(染料法)实验操作SOP

荧光定量PCR实验操作SOP一、 实验目的:通过本操作获得准确、无误差、客观的样品基因扩增数据,用于下一步实验结果的分析;二、 实验准备:A.进行荧光定量PCR实验操作之前,荧光定量PCR操作实验室需紫外灯照射15分钟,关闭紫外灯后开启通风系统抽风15分钟。

B.进入荧光定量PCR操作实验室后需要佩戴一次性无菌口罩、无菌乳胶手套、实验中尽量避免与同事交谈,防止PCR模板污染;C.实验前将70%乙醇涂布于操作台及器具(移液器等)表面,两分钟后用纸巾擦除。

D.准备实验中放污染材料的器皿、用于荧光定量PCR实验操作的耗材(要求无菌)1ml 枪头、200ul枪头、10ul枪头、1.5ml离心管,用荧光定量PCR操作的试剂: 荧光定量PCRMaster Mix、Taqman Probe(实验前预先稀释浓度至25pmol)、H2O,DNA或CDNA模板(注意必须在配置完荧光定量PCR所需MIX后才可以取出);E.一个实验区域在同一时间段只进行一种实验。

F.实验结束后移出个人专用材料(实验记录本)至个人专用区域保管;封好污染材料盛放器皿并移出至污物袋;移出共用器具至专门区域保管;将70%乙醇涂布于操作台或器具表面,两分钟后用纸巾擦除;打开紫外灯照射至少15分钟。

三、 实验步骤:1、荧光定量PCR MIX的配置:在实验记录本上记录下要进行实验的样品内容、日期、探针名称、实验样品孔信息(无特殊要求每样品每基因均按照3倍平行孔实验),然后计算出所需MIX 体积,分别加入后混匀分装至PCR扩增板,单孔荧光定量PCR孔Master Mix内容如下:Primer F: 0.5ul( 25pmol)Primer R: 0.5ul(25pmol)20×SYBER GREEN : 1.5uldNTP: 1ul(2.5mM)10*Buffer(含Mg2+) 3ulBT Taq: 0.5ulH2O: 22ulTotal: 29ul2、MIX配置好后混匀快速分装至PCR反应板,快速准确的将样品DNA/cDNA小心加入装有反应液体的反应管内,:DNA/CDNA Template: 1ul(200ng)荧光定量PCR 反应总体积:30ul3、模板加好后, 盖紧盖子并做好标记, 写上编号(用防水笔书写);4、严格按照荧光定量PCR仪的操作手册启动机器,设置实验扩增程序(包含荧光定量PCR扩增程序、荧光定量PCR样品孔及探针激发荧光程序、反应孔体系程序),保存文件,最好以日期及样品名称命。

荧光定量pcr操作流程

荧光定量pcr操作流程

荧光定量pcr操作流程荧光定量PCR操作流程。

荧光定量PCR(Quantitative PCR,qPCR)是一种用于定量检测DNA或RNA的技术,通过测定PCR反应过程中的荧光信号来定量目标分子的含量。

本文将介绍荧光定量PCR的操作流程,希望能对相关研究工作者提供一些帮助。

1. 实验前准备。

在进行荧光定量PCR实验前,首先要准备好所需的试剂和设备。

包括PCR试剂盒、引物、模板DNA或RNA样品、荧光定量PCR仪等。

确保所有试剂和设备的质量良好,避免对实验结果产生影响。

2. 反应体系设计。

根据实验需要,设计好PCR反应体系,包括引物浓度、模板DNA或RNA浓度、试剂盒成分等。

合理的反应体系设计是保证实验成功的关键,需要根据目标分子的特性和实验要求进行合理的优化。

3. PCR反应条件设置。

根据所用的PCR试剂盒和目标分子的特性,设置好PCR反应的温度、时间和循环次数等条件。

合理的PCR反应条件能够提高PCR 反应的特异性和效率,减少非特异性产物的形成。

4. 荧光定量PCR仪操作。

将混合好的PCR反应体系加入到荧光定量PCR仪中,按照仪器操作手册设置好检测参数,并启动荧光定量PCR仪进行检测。

在检测过程中,要及时观察荧光信号的变化,并根据实验要求进行数据记录和分析。

5. 数据分析与结果解读。

根据荧光定量PCR仪输出的数据,进行数据分析和结果解读。

通过标准曲线法或绝对定量法,计算出目标分子的含量,并进行结果的统计和图表展示。

同时,对实验结果进行科学的解读和讨论,得出合理的结论。

6. 实验后清理。

实验结束后,要对实验台面和仪器进行清理,保持实验环境的整洁。

同时,对实验数据进行归档和整理,做好实验记录和报告。

以上就是荧光定量PCR的操作流程,希望能为相关研究工作者提供一些参考和帮助。

在进行实验时,一定要严格按照操作流程进行,确保实验结果的准确性和可靠性。

祝实验顺利!。

荧光定量PCR实验使用方法

荧光定量PCR实验使用方法

第一部分一、基本步骤:1、目的基因(DNA和mRNA)的查找和比对;2、引物、探针的设计;3、引物探针的合成;4、反应体系的配制;5、反应条件的设定;6、反应体系和条件的优化;7、荧光曲线和数据分析;8、标准品的制备;二、技术关键:1、目的基因(DNA和mRNA)的查找和比对;从/网点的genbank中下载所需要的序列。

下载的方式有两种:一为打开某个序列后,直接点击“save”,保存格式为“.txt”文件。

保存的名称中要包括序列的物种、序列的亚型、序列的注册号。

然后,再打开DNAstar软件中的Editseq软件,点击“file”菜单中的“import”,打开后点击“save”,保存为“.seq”文件。

另一种直接用DNAstar 软件中的Editseq软件,点击“file”菜单中的“open entrez sequence”,导入后保存为“.seq”文件,保存的名称中要包括序列的物种、序列的亚型、序列的注册号。

然后要对所有的序列进行排序。

用DNAstar软件中的Seqman软件,点击“sequence”菜单中的“add”,选择要比较的“.seq”的所有文件,点击“add”或“add all”,然后点击“Done”导入要比较的序列,再点击“assemble”进行比较。

横线的上列为一致性序列,所有红色的碱基是不同的序列,一致的序列用黑色碱基表示。

有时要设定比较序列的开始与结尾。

有时因为参数设置的原因,可能分为几组(contig),若想全部放在一组中进行比较,就调整“project”菜单下的“parameter”,在“assembling”内的“minimum math percentage”默认设置为80,可调低即可。

再选择几个组,点击“contig”菜单下的“reassemble contig”即可。

选择高低的原则是在保证所分析的序列在一个“contig”内的前提下,尽量提高“minimum math percentage”的值。

荧光定量PCR手册

荧光定量PCR手册
一般而言,引物的长度应为 18–24 个寡核苷酸。这是针对 实际的退火温度的。引 物 应 根 据 标 准 PCR 指南设计。它 们对于目的基因序列应是特异性的,且无内部二级结构。 引物应不含共聚物延伸段序列 (如 poly (dG)) 或重复基序, 因其可引起不必要的杂交。
引物对应具有相当的熔解温度 (在 1°C 以内),且 GC 含量 约为 50%。高 GC 含量的引物可形成稳定的不良杂合体。 相反,高 AT 含量会降低匹配良好的杂合体的 Tm 值。如果 可能,引物的 3’ 端应具有高 GC 含量 (GC 夹),以提升延伸 端的退火效率。分析引物对序列,避免引物之间的互补和 杂交 (引物二聚体)。
模板
每次实时荧光定量 PCR 反应需使用 10 至 1,000 拷贝的模 板核酸。这相当于大约 100 pg 至 1 μg 的基因组 DNA 或利 用 1 pg至 100 ng 总 RNA 生成的 cDNA。多余的模板也可 能提高污染物含量,大大降低 PCR 效率。PCR 引物的特 异性针对 cDNA 而非基因组 DNA,处理 RNA 模板以降低 其包含基因组 DNA 污染的几率十分重要。一种方案是采 用 DNA 酶 I 处理模板。
实时荧光定量 PCR 手册
单管 Assay 96 或 384 孔板
384 孔 TaqMan® Array Card OpenAቤተ መጻሕፍቲ ባይዱray® 芯片
上图显示的为实时荧光定量 PCR 常用的产品形式。
1 实时荧光定量 PCR 基础知识 2 实验设计 3 反应板制备 4 数据分析 5 疑难解析 6 数字 PCR
良好的引物设计是实时荧光定量 PCR 的 最 重 要 参 数 之 一。这正是众多研究人员选择购买 TaqMan® Assay 产品的 原因——这些引物和探针采用了成熟可靠的算法设计,获 得了全世界科学家的信赖,适用于实时荧光定量 PCR。如 果您选择设计您自己的实时荧光定量 PCR 引物,切记扩 增片段的长度应约为 50–150 bp,因为较长的产物无法实 现高效扩增。

荧光定量实验全流程

荧光定量实验全流程

荧光定量实验全流程一. RNA提取准备工作1. 1mL、200ul、10ul枪头盒,浸泡在0.1% DEPC处理水中过夜,报纸包好高压灭菌,入烘箱烘干。

2. 配制0.1%DEPC水,0.1%DEPC水=1000ml双蒸水+1ml DEPC,通风橱放置过夜,高压灭菌,灭菌时将瓶盖拧松但不脱落,灭菌结束后迅速将瓶盖拧紧,冷却至室温后放入4℃冰箱冷却,使用前在超净台内分装成小管待用,避免污染。

3. 配制75%乙醇(DEPC水配置),配好放入4℃冰箱预冷保存。

4. 氯仿、异丙醇4℃冰箱预冷。

注意:DEPC试剂毒性较强,操作时注意做好防护措施,避免吸入和溅到皮肤,浸泡枪头盒的0.1% DEPC处理水需要高压灭菌后才能倒入下水道。

二、提取RNA1. 磨样:将组织样品在研钵中磨成粉,装入有1ml Trizol 的1.5ml无菌无酶EP 管中,震荡混匀,静置5-10min;细胞样品直接加入1ml 预冷的Trizol,震荡混匀,静置5min。

2. 装有样品的1.5ml EP管中加入200ul 氯仿,震荡1min,冰上静置5min,离心(12000g,4℃,10min)3. 离心后液体分层:上层无色液体(RNA),中层白色(DNA),下层红色(protein)。

小心吸取上层无色液体,不要触碰到中层白色,加入新的无菌无酶EP管中,约400ul。

4. 加入等体积的异丙醇(400ul),混匀,用力震荡,冰上静置10-15min,离心12000g,4℃,15min)5. 弃掉上清液,加入1ml 75% 乙醇,振荡,洗涤,离心8000g,4℃,10min)6. 重复步骤5洗涤7. 小心弃去上清液,超净台内EP管倒置在滤纸上干燥使75%乙醇完全挥发。

8. 根据RNA沉淀大小,加入适量0.1%DEPC水反复吹打直至溶解,50ul左右。

9. 测定RNA浓度三、RNA电泳鉴定RNA很容易讲解,跑电泳的时候也容易降解,最好换新的电泳液。

德诺荧光定量操作方法

德诺荧光定量操作方法

德诺荧光定量操作方法
德诺荧光定量操作方法是一种常用的荧光定量实验方法,适用于测量样品中目标分子的浓度。

以下是一般的德诺荧光定量操作方法:
1. 样品制备:将待测样品进行适当的处理和准备。

根据目标分子的特性,可以选择提取、纯化、稀释样品等步骤。

2. 反应体系准备:根据需要,选择合适的德诺荧光试剂,并将其与样品相互反应。

德诺荧光试剂可以与目标分子发生特异性的结合反应,形成稳定的荧光化合物。

3. 反应参数设置:根据德诺荧光试剂的特性和目标分子的浓度范围,设置适当的反应温度、时间和pH值等反应条件。

4. 荧光测量:使用荧光分析设备,如荧光光谱仪、荧光显微镜等,测量反应产物的荧光强度。

根据荧光强度与目标分子浓度之间的标准曲线,计算样品中目标分子的浓度。

5. 数据分析:根据所测得的荧光强度数据,进行数据处理和分析。

包括拟合标准曲线,计算样品中目标分子的浓度,以及统计分析等。

需要注意的是,德诺荧光定量方法在不同的实验条件下可能存在差异。

具体的操
作方法应根据实验目的、所用试剂和仪器等因素进行调整和优化。

此外,为了保证实验结果的准确性和可重复性,实验过程中需要进行合适的对照实验和质量控制措施。

荧光定量简易操作流程

荧光定量简易操作流程

Applied Biosystems QuantStudio 3 & 5实时荧光定量PCR 仪V1.X 相对定量简易操作流程1、双击桌面图标开启QuantStudio Design & Analysis Software,或从开始菜单 > All Programs > Applied Biosystems > Quant Studio Design & Analysis Software> Quant Studio Design & Analysis Software开启软件。

2、进入主界面后,点击“Create New Experiment”。

3、在“Properties”界面设置实验属性:a.输入实验的名称;b.选择仪器型号;c.选择仪器的block(加热模块)类型;d.选择实验类型:“Comparative C T(∆∆C T)”;e.选择实验试剂类型:Taqman 探针法选择“Taqman reagents”,SYBR 染料法选择“SYBR Green Reagents”,其他选择“Other”;f.选择运行模式(run mode):普通试剂选择“Standard”;快速试剂选择“Fast”。

4、点击“Next ”进入“Method”界面,设置实验的运行程序:4.1、(可选)设置多梯度反应温度:○1单击(Advanced Settings);○2勾选veriflex,○3然后更改block上相应的反应温度,相邻区域温度差异不能超过5℃。

注:QuantStudio 3 可设置3个梯度反应温度;上图为QuantStudio 5示例图,可设置6个梯度反应温度。

4.2、(可选)设置暂停程序:点击○1图标,○2勾选Pause,○3设置暂停前的反应循环数(Pause after cycles),以及暂停后的温度(Pausing Temperature,范围:4~30℃)。

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熔解曲线,其中红色表示目的基因,绿色表示看家基因,峰位置代表产物的 Tm 值的温度, 图中可以看到看家基因和待测基因的产物基本具有相似的 Tm 值。
基因表达差异柱壮图显示,程序可以自动计算出基因表达的差异,并用柱壮图显示出来,每 一个柱表示一个样本,基因表达的趋势清晰可见,对照样本被算为 1。
柱壮图还可以表示成 Log 的形式,这样可以清楚分开上调和下调的样本。
Stratagene 定量 PCR 仪标准曲线制作方法
定量 PCR 定量的基本原理就是用已知拷贝数梯度稀释的样品作出标准曲线,未知样品 和标准曲线相比较从而得到未知样品的量。无论是在基因表达分析实验还是在病原微生物检 测应用中都有可能要做标准曲线,分别用于绝对定量和相对定量。 标准样品的准备 1、绝对定量。绝对定量就是要确定未知样品的拷贝数。对于这类实验标准品是通过某种方 法制备得到的已知拷贝数的含有目标片段的核苷酸序列。最常见的是插入有目标序列的质 粒,因为质粒是环状 DNA 有较强的稳定性,而且分子量比较大定量的时候比较准确。也有 用线状的 PCR 产物作为标准品的,通常要比扩增的目标片段要大一些,这也是为了获得分 子量比较大的片段,提高拷贝数的准确性。标准品的拷贝数是通过紫外定量的方法来确定, 先得到标准品的浓度 C(ng/uL),因为无论是质粒还是 PCR 产物它们的序列都是已知的,这 样通过核苷酸的相对分子量和标准品序列信息估算出标准品的分子量 B,则标准品的拷贝数 A(copy/uL) 为:
写看家基因和目的基因名 由于用 SYBR 染料做两种基因,所以应该在 SYBR 后面的 Assay 栏中写入看家基因和目的
基因名称。假设前两排是 GAPDH,后两排是 IL1,则可以在 assign assays within selected wells 中选择 SYBR 并输入 GAPDH 和 IL1 的名称,同时你可以选择一个颜色代表不同的基因。这 样系统就可以分辨哪个孔是什么基因了。
基因表达分析板设置方法
Stratagene 荧光定量 PCR 仪的应用软件 MxPro 提供了比较强大的基因表达差异分析功 能,要很好的运用这些功能的前提是要告诉仪器一些必要板设置信息。下面举例子来说明如 何来进行板设置。
在这里举一个例子,用 SYBRGreenI 染料法,用 GAPDH 作内参,检测不同样品中 LI1 的基因表达差异,在这里要设置各自的标准品样品和阴性对照等信息。 首先打开分析软件,选择基因表达分析一项
上图中的 ABCD 表示标号相同是来自同一份组织,这样就把同一份组织中的看家基因和目 的基因对应了起来。 选择对照样本:在基因表达实验中总要选择一个 cDNA 样本作为基因表达的基准,比如实 验中会有一个正常样本,最后的表达结果作为 1,所有其他的样本的基因表达量都和它相比 较,这个作为基准的样品称为 Calibrator。在板上选中这个 cDNA 样品对应的目的基因和看 家基因,在 well type 中选择 calibrator。
1.3、方便而快捷的反应条件设定。可以很容易设定扩增反应条件和熔解曲线条件。
2、结果分析 2.1、多种分析结果可供选择 扩增曲线,其中红色表示目的基因,绿色表示看家基因(和板设置中选择的颜色相同)
标准曲线,看家基因和待测基因的标准曲线都能被作出来,并显示出分别的扩增效率。
如果不做标准曲线,用户也可以根据经验写入扩增效率的值,这样最后的计算结果也可以根 据用户写入的扩增效率进行计算。 扩增效率的引入方法是点软件操作界面上方的 Term settings 键 ,打开 Analysis term settings 对话框,点里面的 Efficiency Settings,在 efficiency 框中输入不同基因的扩增效率。
填入标准品的量 自动增加稀释倍数 为了方便设置系统有一个自动增加稀释倍数的设置,点开后就可以选择你的稀释倍数,然后 用鼠标去选择孔的时候会自动增加
选择稀释倍数 每次选择不同的孔,在里面赋的值会自动按照倍数增加
5、设置温度 在这里提供一个对于 SYBR 染料常用的温度的控制模板,可以参考。注意最后的溶解曲线 制作过程在升温的过程中选择标有 all 的放大镜,代表从 55℃到 95℃逐渐升温的过程中不停 的检测荧光信号。
例如要分析 IL1 基因的表达情况,用看家基因 GAPDH 作为内参,采用的是 SYBR GreenI 染料法。 1、板设置 1.1、专门的基因表达分析实验模式。打开 Mxpro 程序操作窗口,首先弹出的对话框是要用 户 选 择 要 进 行 的 实 验 类 型 , 做 基 因 表 达 分 析 可 以 选 择 第 二 项 Comparative Quantitation (Calibrator)。
样品组织分类:看家基因和目的基因未知样品应该对应起来,即同一个 cDNA 样品应该既 作了目的基因也作了看家基因。再接下来把来自同一个 cDNA 的样品的目的基因和看家基 因扩增标出来。可以在 Identify associations 中的 Assoc.symbol 下拉菜单中选择一个字母来标 记用同一个 cDNA 模板分别扩增目的基因和看家基因的孔。
数据文本显示,实验得到的数据可以以文本的形式显示出来,用户可以很直观的看到用于计 算的具体数据,自己也可以利用这些数据进行统计计算。
2.2、数据导出 实验产生的结果都可以方便地导出,图片可以导成图片格式、Excel 图片或 Powerpoint 等, 数据也可以导入 Excel 或文本文件中。
多种数据的导出形式。
这样板设置就完成了。
熔解曲线设置方法
熔解曲线的原理 定量 PCR 的荧光标记方法通常有两种,一种是探针法,一种是染料法。染料法通常指
的是用 SYBR GreenI 染料作为荧光标记。 SYBR GreenI 这种染料之所以可以用来定量,是因为它的特殊性质决定的。第一,它可
以非特异性地结合到双链 DNA 的小沟处,和单链 DNA 以及蛋白都不结合。第二,SYBR GreenI 这种染料游离存在的情况下它没有荧光,一旦它和双链 DNA 结合了,再用一定波长 的光激发它时就可以发出很强的荧光(大概是游离状态的 1000 倍)。我们再想 PCR 的过程, PCR 的最终产物正是双链 DNA,随着每次的循环双链 DNA 产物的数量成指数增长。如果 把 SYBR GreenI 这种染料加入到反应体系中,就可以随着每次循环结合到双链 DNA 产物上。 产物的量越多,结合的染料就越多,染料发出的荧光就和产物的量成正比,因此通过检测 SYBR GreenI 的荧光就可以时实监控 PCR 反应的产物变化。 SYBR GreenI 染色法的优越性是使用方便,不用专门设计探针。想检测不同的基因只用在 PCR 体系中加入同一种荧光物质就可以。而且价格非常便宜,因此在科研领域里还是非常 常用的。但它主要的缺点是灵敏度不够。因为 SYBR GreenI 可以和 DNA 双链非特异性的结 合,那么如果 PCR 反应有非特异性的扩增产物或引物二聚体的话也会结合这种染料,因此 实验的结果往往就会受到一些因素的干扰。 当采用 SYBR GreenI 染料法做定量 PCR 实验时为了确定实验产物中有没有引物二聚体或非 特异性的引发,一般要在反应结束之后做一个熔解曲线。熔解曲线的原理是根据 SYBR GreenI 染料只和双链 DNA 结合的特性,设计一个从 55℃到 95℃逐渐升温的过程,随着温 度的升高,双链 DNA 在不断的解链,SYBR GreenI 染料的结合数量也在减少,发出的荧光 也越来越少,当到达产物 Tm 值的时候,荧光信号突然下降,然后趋于平缓,这时双链完全 解开,不发荧光。
用红色代表 IL1ห้องสมุดไป่ตู้
这时候软件只知道在这个实验中检测了两个基因,而哪个基因是看家基因并不知道,下一步 是要告诉系统哪一个是看家基因,在 Normalizing assay 中选择 GAPDH 就可以了
这时候原来图上的 GAPDH 就变成了 NORM 重复设置:接下来设置重复,每一个样品设置了三个重复。如果一个样品重复三次,这些相 同重复的样品可以标上同样的一个数字,这时系统就知道标有同样数字的孔是重复样品,将 来在分析数据的时候可以对这些样品进行取平均等操作。
6、设好了之后可以运行程序了,最后的标准曲线和扩增曲线系统会自动给出,也会算出未 知样品的拷贝数。
Stratagene 荧光定量 PCR 仪基因表达分析解决方案
Stratagene 荧光定量 PCR 仪和配套的 Mxpro 软件在处理基因表达分析方面的功能比较 强大,下面简要说明如何使用该软件来进行基因表达分析。
基本信息设置:软件首先出现的界面就是板信息设置界面。先选中要放置反应管的位置 A-D 四行,接下来就是在程序界面的右边的设置命令面板上给选中的孔上填入信息。信息的输入 顺序一般是从上到下的。
设置命令 面板
首先要选择孔的类型(Well type)。在孔类型中可以选择 Unknow(未知样品),Standard(标 准品),NTC(阴性对照)等。为了方便起见,我先将所有的孔都设置成 Unknow。
然后再选择使用的荧光染料,这里由于只用到了 SYBR GreenI 一种荧光染料,所以就选上 SYBR。如果实验当中用了几种荧光染料,就可以将这几种荧光染料都选中。
当选中了荧光染料之后,板设置的基本信息已经输入电脑了,实验可以运行了。以下信息可 以在实验进行之前设置,也可以在实验结束之后再设置。 不同基因设置:由于做基因表达分析实验通常要做目的基因和看家基因,所以接下来要告诉 软件目的基因和看家基因的名字,软件才能加以区分。点 Assign assay name 打开如下对话 框
1.2、方便的类型选择和孔设定。在板设置中选择样品的类型,可以将样品的名称写成 GAPDH 和 IL1,并将 GAPDH 设为看家基因(NORM),这样设置非常清晰,有利于分析结果。如 果实验中使用了复孔,则在复孔上标上相同的数字,代表这些样品是重复,下图中每个样品 重复三次。
基因表达分析实验同一个 cDNA 既要做目的基因,也要做看家基因。看家基因和目的基因 来自同一样本的用相同的字母来标记,如果是对照样品则标上 Calibrator。
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