病原菌分离培养总结

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细菌培养报告总结范文

细菌培养报告总结范文

报告编号:2023-0001一、摘要本次细菌培养报告针对患者临床标本进行微生物学检验,通过严格规范的实验操作,对分离培养的细菌进行鉴定和药敏试验。

现将实验过程及结果总结如下:二、实验材料与方法1. 实验材料:临床标本、细菌鉴定试剂、药敏纸片、营养琼脂、血琼脂、生理盐水、无菌试管、无菌棉签等。

2. 实验方法:(1)标本采集:按照无菌操作原则,采集患者大便、尿液、血液等临床标本。

(2)标本处理:将采集到的标本进行适当稀释,分别接种于营养琼脂、血琼脂平板,37℃培养24小时。

(3)细菌分离:观察平板上菌落生长情况,挑取典型菌落进行纯培养。

(4)细菌鉴定:采用生化试验、血清学试验等方法对纯培养的细菌进行鉴定。

(5)药敏试验:采用纸片扩散法,对分离得到的细菌进行药敏试验。

三、实验结果1. 细菌鉴定结果:本次培养共分离出金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、白色念珠菌等细菌。

2. 药敏试验结果:(1)金黄色葡萄球菌:对青霉素、头孢噻肟、万古霉素敏感,对红霉素、克林霉素、四环素耐药。

(2)大肠埃希菌:对头孢噻肟、氨苄西林、左氧氟沙星敏感,对阿莫西林、头孢他啶、四环素耐药。

(3)白色念珠菌:对氟康唑、伏立康唑、特比萘芬敏感,对酮康唑、咪康唑、克霉唑耐药。

四、讨论1. 本实验严格按照微生物学检验规范进行,保证了实验结果的准确性。

2. 通过细菌培养鉴定和药敏试验,为临床提供了有效的细菌学依据,有助于指导临床合理用药。

3. 在本次实验中,金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌等细菌的分离鉴定和药敏试验结果与临床诊断相符,为临床治疗提供了有力支持。

4. 针对本次实验结果,建议临床医生在治疗过程中,根据细菌的药敏试验结果,合理选用抗生素,以减少耐药菌的产生。

五、结论本次细菌培养报告通过对临床标本进行微生物学检验,成功分离出金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、白色念珠菌等细菌,并对其进行了鉴定和药敏试验。

实验结果为临床治疗提供了有效依据,有助于提高治疗效果。

细菌分离培养实验报告

细菌分离培养实验报告

细菌分离培养实验报告
实验目的:
通过对样品的细菌分离和培养,观察和鉴定细菌种类及其生长特征,为日后的研究奠定基础。

实验原理:
细菌分离培养是指将样品中的微生物通过特定的方法分离出来,并且在适宜的培养基上进行培养。

主要步骤包括选择样品、消毒、接种、分离和鉴定。

实验步骤:
1.选择样品:本次实验选用的是口腔拭子样品。

2.消毒:将口腔拭子放入细菌营养液中,充分均匀振荡,将细
菌营养液倒入灭菌瓶中。

3.接种:将灭菌瓶中的细菌营养液,均匀地涂抹在培养基平板上,用铁环进行接种。

4.分离:将铁环进行细菌分离,标记好分离点。

5.鉴定:根据样品的菌落形态、生长特征及其他相关检测方法,进行初步鉴定和筛选,待进一步的鉴定。

实验结果与分析:
在培养基平板上观察到了菌落的生长,初始生长时间为48小时。

根据菌落的形态、颜色、大小和特征等,初步判断菌落为链球菌属(Streptococcus)。

结论:
通过细菌分离培养实验,成功分离出一株链球菌属的菌落,并进行初步鉴定,为日后的进一步研究提供了基础。

病原菌分离实验报告

病原菌分离实验报告

病原菌分离实验报告一、实验目的本次实验旨在从临床样本中分离和鉴定病原菌,为疾病的诊断和治疗提供准确的病原学依据。

通过实验,掌握病原菌分离的基本方法和技术,熟悉常见病原菌的形态特征和培养特性。

二、实验材料1、临床样本:包括血液、尿液、痰液、粪便等。

2、培养基:血琼脂平板、麦康凯琼脂平板、巧克力琼脂平板等。

3、试剂:革兰氏染色液、氧化酶试剂、触酶试剂等。

4、仪器设备:显微镜、培养箱、接种环、酒精灯等。

三、实验方法1、样本采集与处理血液样本:采集患者静脉血,注入血培养瓶中,立即送实验室进行培养。

尿液样本:收集中段尿,离心后取沉淀进行培养。

痰液样本:患者清晨深部咳痰,经生理盐水洗涤后,制成均匀的混悬液进行培养。

粪便样本:挑取脓血或黏液部分,制成混悬液进行培养。

2、接种培养用接种环取处理后的样本,分别划线接种于不同的培养基上。

将接种后的培养基放入 35℃培养箱中培养 18 24 小时。

3、观察菌落形态培养结束后,观察培养基上菌落的形态、大小、颜色、边缘、质地等特征。

4、涂片染色镜检挑取可疑菌落,制作涂片,进行革兰氏染色。

在显微镜下观察细菌的形态、排列方式等。

5、生化鉴定根据细菌的染色结果和形态特征,选择相应的生化试验进行鉴定。

如氧化酶试验、触酶试验、糖发酵试验等。

四、实验结果1、血液样本培养结果:在血琼脂平板上生长出圆形、凸起、表面光滑、湿润的菌落,有溶血现象。

染色镜检:革兰氏阳性球菌,呈葡萄串状排列。

生化鉴定:触酶阳性,能发酵葡萄糖、麦芽糖,初步鉴定为金黄色葡萄球菌。

2、尿液样本培养结果:在麦康凯琼脂平板上生长出粉红色、光滑、湿润的菌落。

染色镜检:革兰氏阴性杆菌,短杆菌。

生化鉴定:氧化酶阴性,能发酵乳糖,初步鉴定为大肠埃希菌。

3、痰液样本培养结果:在血琼脂平板上生长出扁平、干燥、表面粗糙的菌落。

染色镜检:革兰氏阳性杆菌,有分枝。

生化鉴定:触酶阴性,能分解尿素,初步鉴定为结核分枝杆菌。

4、粪便样本培养结果:在麦康凯琼脂平板上生长出无色、半透明、圆形的菌落。

细菌培养工作总结报告

细菌培养工作总结报告

一、前言细菌培养是微生物学、临床医学、食品卫生学等领域的重要研究手段之一。

本人在细菌培养工作中,严格遵守操作规程,确保实验结果的准确性和可靠性。

现将本人在细菌培养工作中的总结报告如下:二、工作内容及成果1. 实验操作规范(1)严格遵循无菌操作原则,确保实验环境、仪器、试剂、培养基等符合无菌要求。

(2)按照实验要求,正确配制培养基,并进行高压灭菌处理。

(3)规范接种方法,避免交叉污染。

(4)对实验数据进行详细记录,确保实验结果的准确性。

2. 细菌分离与鉴定(1)成功分离出多种细菌,包括革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌等。

(2)采用生化实验、分子生物学等方法对分离出的细菌进行鉴定,明确了细菌的种类和特性。

(3)在细菌鉴定过程中,发现了一些新型细菌,丰富了细菌资源。

3. 细菌耐药性研究(1)对分离出的细菌进行耐药性测试,包括纸片扩散法、微量肉汤稀释法等。

(2)分析细菌耐药性,为临床用药提供参考。

(3)研究细菌耐药性机制,为耐药性防治提供理论依据。

4. 细菌与疾病关系研究(1)研究细菌感染与人类疾病的关系,为疾病预防、治疗提供依据。

(2)探索细菌与宿主相互作用机制,为新型药物研发提供思路。

(3)揭示细菌耐药性与疾病传播的关系,为防控细菌性传染病提供参考。

三、存在的问题及改进措施1. 存在问题(1)部分实验操作过程中存在误差,影响实验结果的准确性。

(2)实验条件有限,部分实验无法开展。

(3)对细菌耐药性机制研究不够深入。

2. 改进措施(1)加强实验操作培训,提高实验人员的操作技能。

(2)积极申请实验设备,提高实验条件。

(3)加强与国内外研究机构的合作,深入研究细菌耐药性机制。

四、总结通过细菌培养工作,本人掌握了细菌分离、鉴定、耐药性研究及与疾病关系研究等方面的技能。

在今后的工作中,本人将继续努力,提高实验技能,为微生物学、临床医学、食品卫生学等领域的发展做出贡献。

病原物的分离与培养

病原物的分离与培养

病原物的分离与培养病原物的分离与培养在植物病害的研究中具有重要意义;分离、培养病原菌的方法是植物病理学研究工作中最常应用的实验技术..一方面;在一个新的病害研究中;通过分离与培养获得病原物的纯培养;完成柯氏法则;以明确该病病原;研究病原物的生物学特性和病害循环侵染、病程等等..所谓病原物的分离;即把该病原菌从发病组织上与其他微生物分开;所谓病原物的培养;即将分离的病原菌移到可以让这种病原菌正常生长的营养基质即培养基上;从而获得其纯培养..病原物的分离与培养;需经以以几个步骤:1.有关器皿的灭菌和消毒;2.制作培养基;3.病原菌的分离4.病原菌的培养..-、灭菌与消毒灭菌与消毒是两个不同的概念..灭菌则是指杀死一切微生物的营养体和孢子..消毒一般是指消灭病原菌和有害微生物的营养体;在植物病理学实验中;需要进行纯培养;不能有任何杂菌污染;因此对所用器材、培养基和工作场所都要进行严格的消毒和灭菌..消毒与灭菌的方法很多;一般可分为加热、过滤、辐射和使用化学药品等方法..一热力灭菌热力灭菌分干热灭菌和湿热灭菌两类..1.干热灭菌干热灭菌是利用高温使微生物细胞内的蛋白质凝固变性而达到灭菌的目的..细胞内的蛋白质疑固性与其本身的含水量有关..在菌体受热时;当环境和细胞内含水量越大;则蛋白质凝固就越快;反之含水量越小;凝固越慢..因此;与湿热灭菌相比;干热灭菌所需温度高160~170℃;时间长1~2 h..但干热灭菌温度不能超过180 ℃;否则包器皿的纸或棉塞就会烧焦;甚至引起燃烧..干热灭菌使用的仪器是烘箱..干热灭菌有火焰烧灼灭菌和热空气灭菌两种..火焰烧灼灭菌适用于接种环、接种针和金属用具如镊子等;无菌操作时酌试管口和瓶口也在火焰上作短暂烧灼灭菌..涂布平板用的三角玻棒也可在蘸有乙醇后进行灼烧灭菌..通常所说的干热灭菌是在烘箱内利用高温干燥空气160~170℃进行灭菌..此法适用于玻璃器皿如吸管和培养皿等的灭菌..进行干热灭菌要注意以下问题:物品不要摆得太挤;以免妨碍空气流通;灭菌物品不要接触烘箱内壁的铁板;以防包装纸烤焦起火;在升温过程中;如果红灯熄灭;绿灯亮;表示箱内停止加温;电烘箱内温度未降到70℃以前;切勿自行打开箱门以免骤然降温导致玻璃器皿炸裂..2 湿热灭菌1 高压蒸汽灭菌此法是将物品放在密闭的高压蒸汽灭菌锅内;0.1MPa;121℃保持15~30 min进行灭菌..时间的长短可根据灭菌物品种类和数量的不同而有所变化;以达到彻底灭菌..这种灭菌适用于培养基、工作服、橡皮物品等;也可用于玻璃器皿的灭菌..2 常压蒸汽灭菌在不具备高压蒸汽灭菌的情况下:常压蒸汽灭菌是一种常用的灭菌法..对于不宜用高压蒸汽灭菌的培养基如明胶培养基、牛乳培养基、含糖培养基等可采用常压蒸汽灭菌..这种灭菌方法可用阿诺氏流动蒸汽灭菌器进行;也可用普通蒸笼进行灭菌..由于常压;其温度不超过100℃;仅能使大多数微生物被杀死;而芽孢细菌却不能在短时间内杀死;因此可采用间歇灭菌以杀死芽孢细菌;达到彻底灭菌的目的..常压间歇灭菌是将灭菌培养基放人灭菌器内;每天加热100℃;30 min;连续3 d;第一天加热后;其中的营养体被杀死;将培养物取出放室温下18~24 h;使其中的芽孢发育成营养体;第二天再加热100℃;30 min;发育的营养体又被杀死;但可能仍留有芽孢;故再重复一次;使彻底灭菌..二过滤除菌许多材料例如血清、抗生素及糖溶液等用加热消毒灭菌方法;—均会被热破坏;因此采用过滤除菌的方法..应用最广泛的过滤器有:1 蔡氏过滤器该过滤器是由石棉制成的圆形滤板和一个特制的金属银或铝漏斗组成;分上、下两节..过滤时;用螺旋把石棉板紧紧夹在上、下两节滤器之间;然后将溶液置于滤器中抽滤..每次过滤必须用一张新滤板..根据其孔径大小;滤板分为3种型号:K型最大;作一般澄清用;EK滤孔较小;用来除去一般细菌;EK-S滤孔最小;可阻止大病毒通过..使用时可根据需要选用..2 微孔滤膜过滤器这是一种新型滤器;其滤膜是用醋酸纤维酯和硝酸纤维酯的混合物制成的薄膜..微孔滤膜过滤器是由上下二个分别具有出口和入口连接装置的塑料盖盒组成..出口处可连接针头;入口处可连接针筒..使用时将滤膜装入两塑料盖盒之间;旋紧盖盒;当溶液从针筒注入滤器时;此滤器将各种微生物阻留在微孔滤膜上面;从而达到除菌的目的..根据待除菌溶液量的多少;可选用不同大小的滤器..此法除菌的最大优点是可以不破坏溶液中各种物质的化学成分..但由于滤量有限;所以一般只适用于实验室中小量溶液的过滤除菌..实验室中用于除菌的微孔滤膜孔径一般为0.22μm;但若要将病毒除掉;则需更小孔径的微孔滤膜..微孔滤膜过滤除菌的主要操作步骤为:①组装、灭菌将0.22μm孔径的滤膜装入清洗干净的塑料滤器中;旋紧..压平;包装灭菌后待用0.1MPa、121.5℃灭菌:20 min..连接..将灭菌滤器的入口在无菌条件下;以无菌操作方式连接于装有待滤溶液注射器上;将针头与出口处连接并插入带橡皮塞的无菌试管中..②压滤将注射器中的待滤溶液加压缓缓挤压过滤到无菌试管中..滤毕;将针头拨出..压滤时;用力要适当;不可太猛太快;以免细菌被挤压通过滤膜..提示: 整个过程应在无菌条件下严格无菌操作以防污染;过滤时应避免各连接处出现渗透现象..三辐射灭菌紫外线灭菌是用紫外线灯进行的..波长为200~300 nm的紫外线都有杀菌能力;其中以260 nm的杀菌力最强..在波长一定的条件下;紫外线的杀菌效率与强度和时间的乘积成正比..紫外线杀菌机理主要是因为它诱导了胸腺嘧啶二聚体的形成和DNA的交联;从而抑制了DNA的复制..另一方面;由于辐射能使空气中的氧电离成O;再使O2氧化生成臭氧O3;或使水氧化生成过氧化氢H2O2..O3和H2O2有杀菌作用..紫外线穿透力不大;所以只适用于无菌室、接种箱的空气及物体表面的灭菌..注意事项: 紫外线对眼结膜及视神经有损伤作用;对皮肤有刺激作用;故不能直视紫外线灯光;更不能在紫外线灯光下工作..紫外线灯距照射物以不超过1.2 m为宜..此外;采用60Co-γ射线灭菌;也已广泛用于不能进行加热灭菌的纸、塑料薄膜;各种积层材料制作的容器以及医用生物敷料皮等的灭菌..γ射线灭菌的最大优点是穿透力强;可在厚包装完好条件下灭菌..四化学药品灭菌化学药品消毒灭菌法是应用能抑制或杀死微生物的化学制剂进行消毒灭菌的方法..能破坏细菌代谢机能并有致死作用的化学药剂为杀菌剂;如重金属离子等;只是阻抑细菌代谢机能;使细菌不能增殖的化学药剂为抑菌剂;如磺胺类及大多数抗生素等..化学药品对微生物的作用是抑菌还是杀菌以及作用效果还与化学药品浓度的高低、处理微生物的时间长短、微生物的种类以及微生物所处的环境等有关..植物病理学实验室中常用的化学药品有2%煤酚皂溶液来苏尔、0.25%新洁尔灭、0.1%升汞、3%~5%酌甲醛溶液、75%乙醇溶液等..消毒与灭菌不仅是从事植物病理学和整个生命科学研究必不可少的重要环节和实用技术;而且在医疗卫生、环境保护、食品、生物制品等各方面均具有重要的应用价值..根据不同的使用要求和条件选用合适的消毒灭菌的方法..附: 高压灭菌1、目的要求学习灭菌与消毒的基本原理及应用范围;学习高压蒸汽灭菌的操作方法..2、基本原理高压蒸汽灭菌是将待灭菌的物品放在一个密闭的加压灭菌锅内;通过加热;使灭菌锅隔套间的水沸腾而产生蒸汽..待水蒸气急剧地将锅内的冷空气从排气阀中排尽后关闭排气阀;继续加热;此时由于蒸汽不能溢出;而增加了灭菌器内的压力;从而使沸点增高;得到高于100℃的温度;导致菌体蛋白质凝固变性而达到灭菌的目的..在使用高压蒸汽灭菌锅灭菌时;锅内冷空气的排除是否完全极为重要..因为空气的膨胀压大于水蒸气的膨胀压;所以;当水蒸气中含有空气时;在同一压力下;含空气蒸汽的温度低于饱和蒸汽的温度..灭菌的温度及维持的时间随灭菌物品的性质和容量等具体情况而有所改变..例如含糖培养基用0.06 MPa、112℃灭菌15 min;但为了保证效果;可将其他成分先行121℃灭菌20 min;然后以无菌操作手续加入灭菌的糖溶液..又如盛于试管内的培养基以0.1MPa;121℃灭菌20 min;即可;而盛于大瓶内的培养基最好以0.1MPa、122℃灭菌30 min..实验中常用的非自控高压蒸汽灭菌锅有卧式和手提式两种..其结构和工作原理相同;本实验以手提式高压蒸汽灭菌锅为例;介绍其使用方法..全自动高压蒸汽灭菌锅在设定好有关的参数后;加温、放气、灭菌、干燥可一次完成;使用方法可参照厂家说明书..3、材料、试剂与仪器材料马铃薯葡萄糖培养基PDA..仪器与用具培养皿、手提式高压蒸汽灭菌锅、可调式电炉等..4、操作步骤1 首先将内层锅取出;向外层锅内加入适量的水;使水面与三角搁架相平为宜..提示:切勿忘记加水;同时加水量不可过少;以防灭菌锅烧干而引起炸裂事故..2 放回内层锅;并装入待灭菌物品..提示:注意不要装得太挤;以免防碍蒸汽流通而影响灭菌效果..三角烧瓶与试管口端均不要与桶壁接触;以免冷凝水淋湿包口的纸而透入棉塞..3 加盖并将盖上的排气软管插入内层锅的排气槽内..再以两两对称的方式同时旋紧相对的两个螺栓;使螺栓松紧一致;勿使漏气..4 用电炉加热并同时打开排气阀;使水沸腾以排除锅内的冷空气..待冷空气完全排尽后;关上排气阀;让锅内的温度随蒸汽压力增加而逐渐上升..当锅内压力升到所需压力时;调节电炉控温旋钮;维持压力至所需时间..本实验用0.1Mpa l21.5℃;20 min灭菌..提示:灭菌的主要因素是温度而不是压力..因此;锅内冷空气必须完全排尽后;才能关上排气阀;维持所需压力..5 灭菌所需时间到后;切断电源;让灭菌锅内温度自然下降;当压力表的压力降至“0”后;打开排气阀;旋松螺栓;打开盖子;取出灭菌物品..提示:压力一定要降到“0”后;才能打开排气阀开盖取物..否则会因锅内压力突然下降;使容器内的培养基由于内外压力不平衡而冲出烧瓶口或试管口;造成棉塞沾染培养基而发生污染..6 将取出的灭菌培养基放入25℃温箱培养48 h;经检查若无杂菌生长;即可待用..二、培养基的制作1、目的要求了解培养基的配制原理;掌握培养基的制备方法..2、基本原理在植物病理学研究工作中经常要使用各种不同的培养基..培养基是按照生物生长繁殖所需要的各种营养;用人工方法配制而成的营养基质..其中含有碳源、氮源、无机盐、维生素以及水分等..微生物在培养基上生长繁殖还必须在最适pH范围内才能生长得更好;因此;对不同种类的微生物应将培养基调节到一定的pH范围..-般而言;真菌调节到微酸;细菌调节到微碱..培养基的种类很多;不同的微生物所需要的培养基不同..依物理性状可分为液体的、固体的和半固体的三种..固体培养基是在液体培养基中加入1.5 %~2 %的琼脂;半固体培养基是加入0.2 %~0.5 %的琼脂..琼脂agar 起凝固作用;一般微生物均不能分解利用..根据营养物质来源的不同;培养基可分为天然、半合成和合成培养基三类..天然培养基是以自然界原有的有机物为材料经灭菌后制成;如马铃薯、胡萝卜、水果、大麦粒、高粱粒等..半合成培养基中既有一些天然的有机物质;又有一些成分简单或明确的化合物..如常用的马铃薯葡萄糖培养基PDA、肉汁胨培养基NA等..合成培养基是由一些成分明确的化合物配制而成的;无任何成分不明确的物质;常用于研究微生物的生理生化性状;如查氏Czapek培养基等..根据培养基用途不同;可分为生长繁殖培养基、富集培养基、贮存培养基、选择性培养基和鉴别培养基等..在植物病理学研究中;最常用培养基有马铃薯葡萄糖培养基;主要用于分离培养病原真菌..在培养基配制完之后;必须经过灭菌;以便彻底杀死其中原有的一切微生物..3、材料、试剂与仪器材料马铃薯..试剂葡萄糖、琼脂等..仪器与用品高压蒸汽灭菌锅、pH试纸或酸度计、试管、铝锅、搅拌棒、三角瓶、烧杯、漏斗、量筒、纱布、棉花、天平等..4、操作步骤PDA培养基马铃薯葡萄糖培养基马铃薯去皮200 g 、葡萄糖20 g、琼脂15~20g、蒸馏水1000 ml ;自然pH..在PDA培养基配方中也可用蔗糖代替葡萄糖;这样配制的培养基也称为PSA培养基..1 称量称量去皮马铃薯200 g;葡萄糖20 g;琼脂15~20 g..提示:琼脂加入的量取决于琼脂的质量;质量好的15 g就够了;质量差的应适当增加..另外;在夏天气温较高时;适当增加用量..2 将马铃薯切成小块;放入锅中;加水1000 ml;煮沸30 min..用纱布滤去马铃薯残渣..3 将马铃薯滤液放回锅中;加入琼脂;加热熔化..提示:在琼脂熔化的过程中;需要用玻璃棒不断搅拌;并控制火力不要使培养基溢出或烧焦..4 加入葡萄糖葡萄糖溶解后;加入适量的水以补充加热过程中损失的水分;定容至1000 ml..提示:通常在制作培养基的锅内用红蓝铅笔标记出不同体积的刻度;如1 000 ml、2000 ml等;在定容时直接将水加至已标记的刻度即可..5 分装根据不同的实验目的;可将配制的培养基分装于试管内或三角瓶内..分装试管;其量为管高的1/5;灭菌后制成斜面..分装三角瓶的容量以不超过三角瓶容积之一半为宜..6 加塞在管口或瓶口塞上棉塞..棉塞要用未脱脂的经弹松的棉花;棉塞可过滤空气;防止杂菌侵入并可减缓培养基水分的蒸发;故在植物病理学研究工作中普遍使用..正确的棉塞是形状、划、、松紧与管口或瓶口完全适合;过紧时妨碍空气流通;操作不便;过松则达不到滤菌的目的;且棉塞过小往往容易掉进试管内..正确的棉塞头较大;约有1/3在外;2/3在试管内..分装过程中注意不要使培养基沾染在管瓶口上以免浸湿棉塞;引起污染..7 包扎加塞后;将试管用线绳捆好;再在棉塞外包一层牛皮纸;以防止灭菌时冷凝水润湿棉塞;其外再用一道线绳扎好..用记号笔注明培养基名称、配制日期、组别、制作人等..8 灭菌将上述培养基以0.1MPa;121℃;高压蒸气灭菌20 min..9 搁置斜面将灭菌的试管培养基竖置冷至50℃左右以防斜面上冷凝水太多;将试管口端搁在玻棒或其他合适高度的器具上;搁置的斜面长度以不超过试管总长的一半为宜..培养基经灭菌后;必须放在37℃温箱培养24h;无菌生长者方可使用..PDA培养基一般不需要调pH..对于要调节pH的培养基;一般用pH试纸测定其pH..如果培养基偏酸或偏碱时;可用l mol/L NaOH 或l mol/L HCl溶液进行调节..调节时应逐滴加入NaOH或HCI溶液;防止局部过酸或过碱破坏培养基成分..5、流程图培养基配制高压灭菌培养观察三、病原菌的分离培养和纯化1、目的要求1 了解分离与纯化微生物的基本原理及方法..2 掌握倒平板的方法和组织分离、稀释分离、平板划线分离的基本操作技术..3 掌握在平板、斜面及液体培养基上培养病原菌及观察其培养性状的方法..2、基本方法植物病原真菌的分离方法主要有组织分离法和稀释分离法两种..最常用的方法是组织分离法;而稀释分离法主要用于病组织上产生大量孢子的病原真菌的分离..病原细菌的分离方法以划线分离法为最常用;在有些情况下也采用稀释分离法..为了获得分离菌的纯培养;必须要进行分离菌的纯化;纯化的方法类似于分离工作中采用的稀释分离法或划线分离法..3、材料、仪器与用具3.1 材料1 稻瘟病叶、病节、病穗颈Pyricularia oryzae..2 柑桔炭疽病Colletotrichum gloeosporioides..3 黄瓜灰霉病Botrytis cineria..4 番茄灰霉病果Botrytis cinerea..5 黄瓜菌核病果Sclerotinia sclerotiorum..6 黄瓜细菌性角斑病叶Pseudomonas syringaepv.1achryrnans ..7 水稻白叶枯病叶Xanthomonas campestris pv.oryzae ..8 白菜软腐病叶Erwinia carotovora subspp.carotovora..3.2.培养基PDA培养基;肉膏蛋白脉培养基;加寄主组织煎汁的培养基等..3.3.仪器与用品超净工作台、培养箱、培养皿、吸管、吸水纸、三角玻璃棒、剪刀、解剖刀、镊子、接种铲针、接种环铒、70%酒精、0.1%升汞、酒精灯、火柴、记号笔、橡皮筋套、可调式电炉、不锈钢锅等..4、实验操作一病原真菌的分离1.组织分离法其步骤为:1 取灭菌培养皿一个;置于湿纱布上;在皿盖上用玻璃铅笔注明分离日期、材料和分离人的姓名..提示:无菌操作应注意下面几点:工作前将所需的物品都放在超净工作台内;操作前用肥皂洗手;操作时还需用70 %酒精擦拭双手;无菌操作时;呼吸要轻;不要说话..2 用无菌操作法向培养皿中加入25%乳酸1~2滴可减少细菌污染;然后将融化而冷至60℃左右的PDA培养基倒人培养皿中;每皿倒10~15 ml;轻轻摇动使之成平面..凝固后即成平板培养基..提示:加入25%乳酸1~2滴;可减少平板上出现污染细菌菌落..除乳酸外;在培养基中加入适当的抗菌素抑制细菌的生长;也是常用的方法..加青霉素20μg/m1可以抑制G+ 细菌生长;加多黏霉素B5.0μg/ml..可以抑制G-细菌生长;加链霉素40μg/ml或氯霉素50μg/m1可以抑制大部分细菌的生长..除了氯霉素可在灭菌前加入外;其他抗菌素都应在灭菌后并冷却到45℃左右以手背触三角瓶感到烫;但尚可以忍耐为宜时加入..倒平板过程中只要遵循“稳、轻、快”要领;不必在火焰上方;一般很少污染..3 取真菌叶斑病的新鲜病叶或其他分离材料;选择典型的单个病斑;用剪刀或解剖刀从病斑边缘病健交界处;切取小块每边长3~4 mm病组织数块..提示:选择新患病的组织作为分离的材料;可以减少腐生菌混入的机会..腐生菌一般在发病很久而已经枯死或腐败的部分滋生;因此;一般斑点病害应在临近健组织的部分分离..4将病组织放入70%酒精中浸3~5s后;按无菌操作法将病组织移入0.1%升汞液中分别表面消毒0.5、1、2、3、5 min 也可使用其他表面消毒剂;如植物组织柔嫩;则表面消毒时间宜短;反之则可长些..然后放入灭菌水中连续漂洗三次;除去残留的消毒剂..提示:先用70%的酒精浸2~3 s是为了消除寄主表面的气泡;减少表面张力;70%的酒精亦用于表面消毒;处理的时间较短一般数秒至l min升汞溶液消毒的时间因材料而异;可自30s至30min不等;一般情况下;需时间3~5 min..5 用无菌操作法将病组织移至平板培养基上;每皿内放4~6块..提示:在将病组织小块移放到平板表面之前;应将其在无菌吸水纸上吸去多余的水;以大大减少病组织附近出现细菌污染..6 将培养皿倒置放入25℃左右恒温箱内培养..一般3~4 d后观察待分离菌生长结果..7 若病组织小块上均长出较为一致的菌落;则多半为要分离的病原菌..在无菌条件下;用接种针铲自菌落边缘挑取小块移入斜面培养基上;在25 ℃左右恒温箱内培养;数日后;观察菌落生长情况;如无杂菌生长即得该分离病菌纯菌种;便可置于冰箱中保存..提示:除根据菌落的一致性初步确定长出的菌落是否目标菌外;还要在显微镜下检查;进一步确定..如果是对未知病原菌的组织分离;则要将长出的菌落分别转出;通过进一步的接种实验明确哪一种为其病原菌..在组织分离工作中;如果植物材料体积较大且较软如患灰霉病的番茄果实;在分离过程中可直接挖取内部患病组织移入平板培养基上;完成分离工作..2. 稀释分离法1 取灭菌培养皿三个;平放在湿纱布上;编号;并注明日期、分离材料及分离人姓名..2 用灭菌吸管吸取灭菌水;在每一皿中分别注入0.5~1.0 ml..3 用移植环蘸一滴孢子悬浮液;与第一个培养皿中的灭菌水混合;再从第一个培养皿移三环到第二个培养皿中;混合后再移三环到第三个培养皿中..4 将熔化并冷却到45~50℃的培养基;分别倒在三个培养皿中为防止细菌污染;也可以向每个培养皿中事先加入1~2滴25%乳酸;摇匀;凝固;要使培养基与稀释的菌液充分混匀..提示:倒平板时的培养基温度一定要掌握好;过热易将病原菌烫死而使分离失败;过冷则倒入培养皿中后难以形成平板;不利于分离..5 将培养皿翻转后置恒温箱25℃中培养;数日后观察菌落生长情况..6 挑菌将培养后长出较为整齐一致的单个菌落分别挑取;接种到斜面培养基上;置25℃左右培养..待菌长出后;检查菌是否单纯;若有其他菌混杂;就要再一次进行分离纯化;直到获得纯培养..二病原细菌的分离病原细菌的分离方法以稀释分离法和划线分离法为最常用..在进行分离之前;首先应对病组织材料进行细菌学初步诊断;即经过镜检确认有喷菌现象以后;才对该病组织作分离工作..稀释分离法是最经典的标准分离法;方法同上述真菌分离..除去上述稀释分离法以外;较为方便的是划线分离法:1 预先把熔化好的肉膏蛋白胨培养基倒入培养皿中;凝成平板后;翻转放在30℃恒温箱中2~4 h;使表面无水滴凝结..也可凝成平板后直接使用..2 将病组织先用0.1%升汞表面消毒0.5~2 min;再用无菌水换洗3次后;放在灭菌培养皿中的灭菌水中;用灭菌玻棒研碎;并让组织碎块在水中浸泡20~60 min;让细菌释放到灭菌水中..3 用灭菌的接种铒;接种环;蘸取浸泡液在干燥的培养基平板表面划线;尽量不要把平板表面划破..划过第一批线后的接种环应放在火焰上烧灼;冷却后直接在第一批划线的末端向另一方向划线..灭菌后再划第三次线..提示:划过第一批线后接种铒放在火焰上烧过这一步骤非常重要;这样做可以使第一批线和第二批线上的细菌数量相差很大..4 用玻璃铅笔在培养皿上写上分离材料、日期和分离者姓名后;翻转培养皿;放在26~28℃恒温箱中培养..1~3 d后观察有无细菌生长;在哪些地方有单菌落生长出来其中的优势单菌落应为待分离菌形成的..5 仔细挑取病原菌的单菌落;并移植到斜面培养基上..同时;再把单菌落用灭菌水稀释成悬浮液作第二次划线分离;经培养后出现的菌落在形态特征都趋于一致;并与典型描述的特征相一致时;即表明已获得纯培养..最好要经过连续三次单菌落的分离;才能确保纯化..三真菌、细菌培养性状。

病原物分离培养实验报告

病原物分离培养实验报告

四川农业大学《普通植物病理学》实验论文病原物的分离培养和纯化病原物的分离和纯化摘要:本实验主要通过用对辣椒炭疽病或柑橘炭疽病病菌的分离和在PDA培养基中对炭疽病菌消毒后做无菌培养然后转移到斜面培养的实验过程观察炭疽病菌的生长情况,了解分离与纯化病原物的基本原理与方法,掌握实验室常用的消毒灭菌方法,并掌握培养基的制作和无菌操作技术。

关键词:分离培养、炭疽病、PDA培养基、灭菌前言柯赫氏法则(Koch’s Rule)又称柯赫氏假设(Koch's postulates)或柯赫氏证病律,是确定侵染性病害病原物的操作程序。

如发现一种不熟悉的或新的病害时,就应按柯赫氏法则的四个步骤来完成诊断与鉴定。

诊断是从症状等表型特征来判断其病因,确定病害种类。

鉴定则是将病原物的种类和病害种类同已知种类比较异同,确定其科学名称或分类上的地位。

有些病害特征明显,可直接诊断或鉴定,如霜霉病或秆锈病。

但在许多场合难以鉴定病原物的属、种。

如花叶症状易于识别,要判断由何种病原物引起,就必须经详细鉴定比较后才能确定。

柯赫氏法则表述为:“(1)在病植物上常伴随有一种病原微生物存在;(2)该微生物可在离体的或人工培养基上分离纯化而得到纯培养;(3)将纯培养接种到相同品种的健株上,出现症状相同的病害;(4)从接种发病的植物上再分离到其纯培养,性状与接种物相同”【1】。

如果进行了上述四步鉴定工作得到确实的证据,就可以确认该微生物即为其病原物。

但有些专性寄生物如病毒、菌原体、霜霉菌、白粉菌和一些锈菌等,目前还不能在人工培养基上培养,可以采用其他实验方法来加以证明。

侵染性病害的诊断与病原物的鉴定都必须按照柯赫法则来验证,每个医学家和植物病理学家都应能熟练地运用。

柯赫氏法则同样也适用来对非侵染性病害的诊断,只是以某种怀疑因子来代替病原物的作用,例如当判断是否缺乏某种元素而引起病害时,可以补施某种元素来缓解或消除其症状,即可确认是某元素的作用。

细菌分离培养实训报告

细菌分离培养实训报告

一、实验目的1. 掌握细菌分离培养的基本原理和操作方法。

2. 了解不同细菌的生长特性和菌落形态。

3. 培养实际操作能力,为后续的微生物学学习和研究打下基础。

二、实验原理细菌分离培养是微生物学实验中的一项基本操作,通过将混合菌液中的细菌进行分离、纯化,得到单一菌种。

常用的分离方法有平板划线法和稀释涂布平板法。

本实验采用平板划线法进行细菌分离培养。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:大肠杆菌菌种、牛肉膏蛋白胨琼脂培养基、接种环、酒精灯、无菌水、试管、试管架、培养皿等。

2. 仪器:恒温培养箱、电子天平、生物安全柜、无菌操作台等。

四、实验步骤1. 培养基制备:称取牛肉膏蛋白胨琼脂干粉,加入适量无菌水,混匀后煮沸溶解,待冷却至50℃左右,倒入培养皿中,待凝固。

2. 接种:将大肠杆菌菌种接种于牛肉膏蛋白胨琼脂平板培养基上,用接种环在平板表面进行划线。

3. 恒温培养:将划线平板倒置放入恒温培养箱中,培养24小时。

4. 观察菌落:观察菌落形态,记录菌落特征,如大小、形状、颜色、边缘等。

5. 纯化菌种:根据菌落特征,挑选单个菌落进行纯化。

将纯化后的菌落接种于新的牛肉膏蛋白胨琼脂平板培养基上,培养24小时,再次观察菌落形态,确认纯化成功。

五、实验结果与分析1. 菌落形态:大肠杆菌菌落呈圆形、光滑、湿润、边缘整齐,直径约为2-3mm,白色。

2. 纯化菌种:通过观察菌落特征,挑选出单个菌落进行纯化,成功得到纯化的大肠杆菌。

六、实验总结本次细菌分离培养实训,使我掌握了细菌分离培养的基本原理和操作方法。

通过实验,我了解到不同细菌的生长特性和菌落形态,提高了实际操作能力。

在实验过程中,我学会了无菌操作、接种、观察和记录等技能,为后续的微生物学学习和研究打下了基础。

七、注意事项1. 操作过程中要严格遵循无菌操作原则,避免污染。

2. 接种环要灼烧灭菌,待冷却后再进行划线操作。

3. 观察菌落时,要仔细观察菌落形态,准确记录。

4. 培养过程中,要注意培养箱温度和湿度,保证菌落正常生长。

植物病原菌的分离和培养

植物病原菌的分离和培养

实验三植物病原菌的分离和培养一、实验目的在研究病原菌的形态、生理、生态以及病原菌对寄主植物的致病性等多种试验中,常常需要病原菌的纯培养物。

然而,在自然情况下,病原菌通常是与其他杂菌混生在一起的,从受病组织或其他基物中将病原菌单独分选出来,叫作分离。

分离和培养是植病实验室最基本的操作技术之一。

通过本次实验学习植物病原菌分离培养的原理和常用的方法。

二、内容、材料和方法(一)分离材料的选择分离材料的选择对分离培养的成败有着决定的影响,因为在感病植物受害部位的内外,要有多种腐生菌,为减少腐生菌的污染,分离所用的病害材料应尽可能新鲜,并且最好在病、健交接处选材取样。

病、健交接处,除材料新鲜,污染的可能性小外,病原菌的生活力强、比较活跃,容易分离成功。

(二)分离方法病原菌分离的方法因材料不同而异,植病实验室最常见的方法有组织分离法和稀释分离法两种。

1.组织分离法:这种方法适用于大部分病菌的分离,此法又分为小块组织分离和大块组织分离两种方法。

分别以玉米大斑病、小麦根腐病和梨褐腐病为试材进行。

(1)叶斑病类病原菌的分离(玉米大斑病病菌的分离)取玉米大斑病病叶,在病、健交界处剪取2—3毫米长的病组织。

用10%漂白粉(次氯酸钙)溶液消毒(漂白粉溶液现用现配)3-5min,时间长短依病组织不同而异,然后直接移至PSA平板培养基上(为防止细菌污染,可在培养基中加入1000ppm链霉素10毫升),倒置于20—25℃室温下,待菌落长出后挑取前缘菌丝,回接于PSA斜面培养基上,在25℃温箱中培养,待菌落颜色变深后,在无菌条件下镜检是否是玉米大斑病菌,弱仅有玉米大斑病菌的孢子,则说明已获得了纯培养,否则,则需要继续转至斜面培养基上进行纯化,直至获得纯培养。

(2)种子内部病原菌的分离(小麦根腐病菌的分离)选择典型的小麦黑胚粒3—4个,在70%的酒精中浸2—3秒钟后,以镊子夹住投入0.1%升汞溶液中表面消毒2—3分钟(处理时间可自30秒至30分钟不等),然后取出小麦粒,以灭菌水冲洗3次,再移至已倒好的马铃薯琼脂平板培养基上,注意要以小麦的黑胚部位着靠在培养基上,倒置在25℃温箱中培养,待菌落长出后,挑取前缘菌丝于马铃薯斜面培养基上培养,培养3-4天后,无菌条件下镜检是否获得纯培养。

病原菌分离培养总结(合集五篇)

病原菌分离培养总结(合集五篇)

病原菌分离培养总结(合集五篇)第一篇:病原菌分离培养总结病原菌的分离培养方法一、基本原理植物病原菌的分离培养,是植物病理实验室工作中的基本技能。

为了获得某微生物的纯培养,一般是根据该微生物对营养、酸碱度、氧气等条件要求不同,而供给它们适宜的生活条件,即让病原菌生活在适宜的培养基上,或加入某种抑制剂造成只利于此菌生长,而抑制其他菌生长的环境,从而得到纯菌株。

植物病原真菌的分离方法主要有组织分离法和稀释分离法两种。

最常用的方法是组织分离法,而稀释分离法主要用于病组织上产生大量孢子的病原真菌的分离。

为了获得分离菌的纯培养,必须要进行分离菌的纯化,纯化的方法类似于分离工作中采用的稀释分离法或划线分离法。

二.病原真菌的分离培养(花生褐斑病为例)1.分离的准备工作(1)分离材料准备:花生褐斑病叶片:病斑圆形或近圆形暗褐色、黑褐色,淡黄色晕圈。

背面有许多黑色小点,呈同心轮纹状排列。

(2)培养基的准备: PDA培养基,加热熔化,紫外灭菌后倒板; (3)分离工作仪器与用品:超镜工作台、培养箱、无菌培养皿、剪刀、解剖刀、镊子、接种铲(针)、70%酒精、0.1%升汞、酒精灯、火机、记号笔、橡皮筋套、可调式电炉等。

(升汞是剧毒药物,在操作时应特别小心)。

2.组织分离法(1)工作前用肥皂洗手,无菌操作前还要用70%酒精擦拭双手;在使用无菌操作间时,呼吸要轻,不要说话。

(2)酒精灯放入中间合适位置,点燃后不要在移动,保证火焰周围无菌环境;(3)取花生褐斑病的症状典型病叶(或其他分离材料),选择典型的单个病斑,用剪刀或解剖刀从病斑边缘(病健交界处)切取小块病组织数块。

(选择新患病的组织作为分离的材料,可以减少腐生菌混入的机会。

腐生菌一般在发病很久而已经枯死或腐败的部分滋生,因此,一般斑点病害应在临近健全组织的部分分离。

)(4)表面消毒:用菌培养皿一次准备流程(75%酒精—0.1%升汞—无菌水—无菌水—无菌水),将病组织放人70%酒精中浸3—5s后,按无菌操作法将病组织移人0.1%升汞液中分别表面消毒1 min左右(如植物组织柔嫩,则表面消毒时间宜短;反之则可长些),然后放入灭菌水中连续漂洗三次,除去残留的消毒剂。

病原培养细菌实验报告(3篇)

病原培养细菌实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 掌握病原细菌的分离与纯化方法。

2. 熟悉病原细菌的形态特征。

3. 学习病原细菌的培养技术。

二、实验原理病原细菌是一类引起人类和动物疾病的细菌。

通过对病原细菌进行分离、纯化和培养,可以研究其生物学特性,为疾病的诊断、治疗和预防提供依据。

三、实验材料与仪器1. 材料:病原细菌样本、牛肉膏蛋白胨培养基、营养琼脂培养基、生理盐水、无菌生理盐水、无菌棉签、接种环、酒精灯、恒温培养箱等。

2. 仪器:显微镜、无菌操作台、高压蒸汽灭菌器、接种器、培养皿、吸管等。

四、实验方法与步骤1. 病原细菌的分离与纯化(1)取病原细菌样本,用无菌生理盐水进行稀释。

(2)将稀释后的样本涂布于牛肉膏蛋白胨培养基上,进行平板划线。

(3)将平板置于恒温培养箱中,37℃培养24小时。

(4)观察菌落生长情况,挑取单菌落进行纯化。

2. 病原细菌的形态特征观察(1)将纯化后的细菌接种于营养琼脂培养基上,37℃培养24小时。

(2)观察菌落特征,如菌落大小、形状、颜色、边缘等。

(3)使用显微镜观察细菌的形态、大小、排列等特征。

3. 病原细菌的培养(1)将纯化后的细菌接种于牛肉膏蛋白胨培养基中,37℃培养24小时。

(2)观察细菌的生长情况,如菌液浑浊度、沉淀等。

(3)定期取样,进行菌落计数,计算细菌生长曲线。

五、实验结果与分析1. 病原细菌的分离与纯化实验成功分离出病原细菌,纯化后菌落特征明显,为后续实验提供了纯净的样本。

2. 病原细菌的形态特征观察观察结果显示,病原细菌为革兰氏阴性杆菌,菌落呈圆形,表面光滑,边缘整齐,颜色为灰白色。

3. 病原细菌的培养实验结果表明,病原细菌在牛肉膏蛋白胨培养基中生长良好,菌液浑浊度逐渐增加,沉淀逐渐增多,符合细菌生长曲线。

六、实验结论1. 成功分离出病原细菌,纯化后菌落特征明显。

2. 观察到病原细菌的形态特征,为后续研究提供了依据。

3. 病原细菌在牛肉膏蛋白胨培养基中生长良好,为细菌培养实验提供了成功经验。

植物病原真菌的分离培养(参考模板)

植物病原真菌的分离培养(参考模板)

实验十三植物病原真菌的分离培养一、实验原理植物患病组织内的真菌菌丝体,如果给予适宜的环境条件,除个别种类外,一般都能恢复生长和繁殖。

植物病原菌的分离就是指通过人工培养,从染病植物组织中将病原真菌与其它杂菌相分开,并从寄主植物中分离出来,再将分离到的病原菌于适宜环境内纯化,这个过程总称植物病菌的分离培养。

植物病原真菌的分离一般都是采用组织分离法,就是切取小块病组织,经表面消毒和灭菌水洗过后,移到人工培养基上培养。

二、实验目的:植物病原菌的分离培养是植物病理学实验最基本的操作技术之一,它对原害鉴定,病原形态观察、植物病害接种体的培养等方面都是经常使用的研究手段。

通过本实验,要求植物病原菌分离培养的一般原则和方法。

三、实验材料及准备:1.分离材料:梨黑斑病(Alternaria kikuchiana),柿树圆斑病(Pestnlotia sp)及杉木炭疽病(Glomerella cingolata)新发病的病叶;杨树烂皮病(Cytospora chrysosperma)国槐腐烂病(Dothiorella sp.)的带有新病斑的枝条;油松种子。

2.分离用具(每小组为单位)酒精灯4个,手术剪4把,眼科镊4把,PDA培养基3瓶,培养皿(Φ9cm)24套,小烧杯(5ml)4个,大烧杯1个,斜面培养基12管,灭菌水4瓶,75%酒精瓶1个(内放脱脂棉球)0.1%升汞瓶1个,5%乳酸瓶(60ml)1个,火柴1盒,湿、干纱布各4张。

四、实验方法及步骤:(一)、分离前的准备工作:1.工作环境的清洁和消毒分离培养一般在无菌室、无菌箱或无菌工作台(超净工作台)上进行,无菌室和无菌箱要经过喷雾除尘,并用药物或紫外线照射消毒(常用消毒药物为70%酒精,2%煤酚皂液,5%石炭酸液等喷雾。

若用紫外线灯照射则需20-30分钟)。

在没有上述设备条件时,在清洁房间里关闭门窗,避免空气流动,经过喷雾除去空气及地面灰尘后进行操作,也可获得较好的结果。

肺结核的结核病原菌分离与培养技术

肺结核的结核病原菌分离与培养技术

肺结核的结核病原菌分离与培养技术肺结核是由结核分枝杆菌感染引起的慢性传染病,它是全球范围内的重要公共卫生问题。

为了诊断和治疗肺结核,必须准确地分离和鉴定病原菌,这在临床实践中起着重要作用。

本文将介绍肺结核的结核病原菌分离与培养技术。

一、分离技术肺结核的结核病原菌主要通过痰液传播,因此,分离病原菌的第一步是收集患者痰液样本。

通常情况下,患者需要在早晨醒来后的连续两至三天采集新鲜的痰液样本。

采集后,样本应迅速送至实验室。

在实验室中,常用的分离技术是培养法。

首先,将痰液进行稀释,然后使用不同的培养基进行涂布。

最常用的培养基是Löwenstein—Jensen培养基和Middlebrook 7H10/7H11培养基。

这些培养基含有适合结核菌生长和分离的营养成分。

涂布后,将培养皿放置在37℃的培养箱中进行培养。

结核菌的生长速度相对较慢,通常需要2至6周的时间才能看到可见的菌落。

在观察期间,必须定期观察并记录培养皿上的菌落特征,如形状、颜色和大小等。

二、培养技术结核菌的培养技术有多种方法,常用的包括固体培养和液体培养。

固体培养是将此菌接种到含有琼脂的培养基上。

固体培养的主要优点是便于观察,菌落特征清晰可见。

但缺点是病原菌增殖速度较慢,且只能得到纯培养物。

液体培养是将结核菌接种到液体培养基中进行培养。

液体培养的主要优点是菌落生长速度快,可以提高结核菌的密度。

此外,液体培养还可以应用于抗生素敏感性测试等其他实验。

无论使用何种培养技术,都要注意环境条件和操作规范以避免交叉污染。

通风良好的实验室环境、洁净的培养仪器和消毒的试剂是保证培养过程成功的关键。

三、分离鉴定培养得到的菌落需要进行进一步的分离鉴定。

传统的鉴定方法包括酸忍受试验、抗酸染色和结核菌分枝杆菌分离物抗原检测等。

这些方法能够鉴定结核分枝杆菌的特殊细胞壁结构和抗原特征。

近年来,随着分子生物学技术的发展,PCR(聚合酶链反应)和核酸杂交等方法也被广泛应用于结核菌的鉴定。

分离培养法实验报告(3篇)

分离培养法实验报告(3篇)

一、实验目的1. 理解分离培养法的基本原理和操作步骤。

2. 掌握从混合菌群中分离出单一菌株的方法。

3. 熟悉实验室无菌操作技术,确保实验结果的准确性。

二、实验原理分离培养法是一种微生物学实验技术,旨在从含有多种微生物的样品中分离出单一菌株。

该实验通过将样品在适当的培养基上稀释,使微生物分散生长,从而形成单个菌落,便于观察和进一步研究。

三、实验材料1. 样品:土壤、水体、食品等。

2. 培养基:营养肉汤、琼脂平板等。

3. 仪器:恒温培养箱、接种环、酒精灯、显微镜等。

4. 药品:无菌生理盐水、无菌水、消毒剂等。

四、实验步骤1. 样品准备- 将样品充分搅拌,取适量样品于无菌试管中。

- 加入适量的无菌生理盐水,振荡混匀。

2. 样品稀释- 将样品稀释液进行一系列的梯度稀释,如10倍、100倍、1000倍等。

- 将稀释后的样品涂布于琼脂平板上。

3. 培养- 将涂布好样品的平板置于恒温培养箱中培养,培养温度根据微生物种类而定。

- 观察菌落生长情况,记录菌落特征。

- 从生长良好的菌落中挑取单个菌落,接种于新的琼脂平板上。

- 重复上述步骤,直至获得纯培养。

5. 观察与鉴定- 观察纯培养菌落的形态、颜色、大小等特征。

- 使用显微镜观察菌体的形态和染色特性。

- 根据菌落特征和菌体形态,对分离出的菌株进行初步鉴定。

五、实验结果1. 从土壤样品中分离出一种具有红色菌落的细菌。

2. 该菌株在显微镜下呈现革兰氏阳性,为球菌。

3. 初步鉴定为金黄色葡萄球菌。

六、实验讨论1. 分离培养法是微生物学实验中常用的技术,对于研究微生物的生物学特性具有重要意义。

2. 实验过程中应注意无菌操作,避免污染。

3. 稀释倍数的选择对实验结果有较大影响,应根据样品的含菌量进行合理调整。

4. 菌落特征和菌体形态是初步鉴定菌株的重要依据,但需结合其他实验手段进行综合判断。

七、实验总结通过本次实验,我们掌握了分离培养法的基本原理和操作步骤,学会了从混合菌群中分离出单一菌株,并对分离出的菌株进行了初步鉴定。

病原菌实验报告

病原菌实验报告

病原菌实验报告实验目的本实验旨在通过分离、培养和鉴定病原菌,探究其特性及对人类健康的潜在威胁。

实验原理病原菌是引起疾病的微生物,能够侵入宿主并繁殖,引起免疫系统的反应。

通过实验,我们可以采集病原菌样本并在合适的培养基上培养和观察它们的生长特性。

同时,鉴定病原菌的种类对于有效的治疗和预防疾病非常重要。

实验材料与方法实验材料:- 无菌采样棉签- 无菌培养基(如琼脂培养基)- 培养皿- 无菌培养瓶- 显微镜与镜片实验步骤:1. 使用无菌采样棉签采集病人体内分泌物、分泌物或皮肤创伤等潜在病原菌样本。

2. 将采样棉签轻轻滚动在无菌培养基上,确保将病原菌样本均匀地涂抹在培养基表面上。

3. 使用无菌技术将培养基放入无菌培养皿中,密封密实并倒扣。

4. 在恒温培养箱中以适当的温度(通常为37C)进行培养。

5. 培养24小时后,观察培养皿中是否有菌落的形成。

6. 使用无菌技术将菌落转接到新的培养皿中,继续培养。

7. 观察菌落的形态、颜色、大小以及其他特征,并记录下来。

8. 取一个菌落进行革兰染色和镜检,观察菌的结构特征。

9. 可参照鉴定手册或使用进一步鉴定技术来确定病原菌的种类。

实验结果与数据分析经过培养和观察,我们发现培养皿中出现了菌落的形成。

通过进一步的观察和鉴定,我们确定了该菌落为革兰氏阴性细菌,且菌落为白色,大小较小。

在镜检下,我们观察到该菌细胞呈杆状,具有纤毛结构。

根据鉴定手册的数据,结合我们观察到的特征,我们初步推测该病原菌可能属于大肠杆菌属。

结论与讨论通过本实验,我们成功地分离、培养和鉴定了一株病原菌。

病原菌的准确鉴定对于疾病的治疗和预防具有重要的意义。

在今后的实验中,我们可以进一步探究该菌株的生理特性、耐受性以及对人体的致病机制,以更好地了解和应对潜在的疾病威胁。

然而,本实验只是初步鉴定,还需要进一步的验证和精确的鉴定技术来确认该菌株的种属。

此外,由于实验条件的限制,实验过程中出现的污染可能对结果产生一定的影响。

园林植物病原菌的分离培养

园林植物病原菌的分离培养

2. 臭氧或者双氧水(H2O2)
O2 hγ
2[O]
O2
oxidization来自O3胸腺嘧啶二聚体的形成及光修复示意图
➢ 注意:
1. 紫外线的穿透力较弱,只能用于物体表面的消毒。主要用于 无菌室,接种箱,手术室等的空气和物体表面消毒。
2. 紫外线对视神经及眼结膜有较大的损伤,请勿直视紫外线。 紫外线灯距离照射物距离最好不超过1.2 m。
0.1MPa,121 ℃,20~30 min。
三、仪器与材料
仪器与用具:高压蒸汽灭菌锅,培养皿 材料:马铃薯葡萄糖培养基(PDA,Potato Dextrose Agar)
四、操作步骤
高压蒸汽灭菌锅的使用
➢ 检查灭菌锅内水位(不能用自来水?) ➢ 加盖、拧紧 ➢ 加热升温 ➢ 排冷空气 ➢ 升温、保压持续升温,维持0.1MPa,20~30 min。 ➢ 降压、取物
手提式高压蒸汽灭菌锅
立式高压蒸汽锅和卧式高压蒸汽锅
大容量立式高压蒸汽锅
过滤除菌
➢ 主要适用于血清、抗生素、糖溶液等,这些物质用一般加 热消毒灭菌方法,均会被破坏,因此应采用过滤除菌的方法。
应用最广的过滤器有蔡氏过滤器和微孔滤膜过滤器。
蔡氏过滤器示意图
蔡氏过滤器分上、下两节, 过滤时,用螺旋把石棉板紧紧地夹 在上、下两节滤器之间,然后将溶 液置于滤器中抽滤,每次过滤必须 用一张新滤板。滤板根据其孔径的 大小可分为3种类型:K型最大, 用于澄清;EK型缕空较小,用来 过 滤 细 菌 ; EK-S 最 小 用 于 过 滤 病 毒。
必须等到灭菌锅内的压力为 “ 0 ” 时,方可打开灭菌锅!!
五、记录实验结果 (数据,图片) 六、分析实验结果,总结实验成败的原因 七、撰写实验报告

病原物的分离与培养

病原物的分离与培养

病原物的分离与培养病原物的分离与培养在植物病害的研究中具有重要意义,分离、培养病原菌的方法是植物病理学研究工作中最常应用的实验技术。

一方面,在一个新的病害研究中,通过分离与培养获得病原物的纯培养,完成柯氏法则,以明确该病病原;研究病原物的生物学特性和病害循环(侵染、病程等等)。

所谓病原物的分离,即把该病原菌从发病组织上与其他微生物分开;所谓病原物的培养,即将分离的病原菌移到可以让这种病原菌正常生长的营养基质即培养基上,从而获得其纯培养。

病原物的分离与培养,需经以以几个步骤:1.有关器皿的灭菌和消毒;2.制作培养基;3.病原菌的分离4.病原菌的培养。

-、灭菌与消毒灭菌与消毒是两个不同的概念。

灭菌则是指杀死一切微生物的营养体和孢子。

消毒一般是指消灭病原菌和有害微生物的营养体,在植物病理学实验中,需要进行纯培养,不能有任何杂菌污染,因此对所用器材、培养基和工作场所都要进行严格的消毒和灭菌。

消毒与灭菌的方法很多,一般可分为加热、过滤、辐射和使用化学药品等方法。

(一) 热力灭菌热力灭菌分干热灭菌和湿热灭菌两类。

1.干热灭菌干热灭菌是利用高温使微生物细胞内的蛋白质凝固变性而达到灭菌的目的。

细胞内的蛋白质疑固性与其本身的含水量有关。

在菌体受热时,当环境和细胞内含水量越大,则蛋白质凝固就越快,反之含水量越小,凝固越慢。

因此,与湿热灭菌相比,干热灭菌所需温度高(160~170℃),时间长1~2 h。

但干热灭菌温度不能超过180 ℃,否则包器皿的纸或棉塞就会烧焦,甚至引起燃烧。

干热灭菌使用的仪器是烘箱。

干热灭菌有火焰烧灼灭菌和热空气灭菌两种。

火焰烧灼灭菌适用于接种环、接种针和金属用具如镊子等,无菌操作时酌试管口和瓶口也在火焰上作短暂烧灼灭菌。

涂布平板用的三角玻棒也可在蘸有乙醇后进行灼烧灭菌。

通常所说的干热灭菌是在烘箱内利用高温干燥空气(160~170℃)进行灭菌。

此法适用于玻璃器皿如吸管和培养皿等的灭菌。

进行干热灭菌要注意以下问题:物品不要摆得太挤,以免妨碍空气流通;灭菌物品不要接触烘箱内壁的铁板,以防包装纸烤焦起火;在升温过程中,如果红灯熄灭,绿灯亮,表示箱内停止加温;电烘箱内温度未降到70℃以前,切勿自行打开箱门以免骤然降温导致玻璃器皿炸裂。

肠道病原菌的分离与鉴定实验报告

肠道病原菌的分离与鉴定实验报告

肠道病原菌的分离与鉴定实验报告摘要本实验旨在分离、鉴定肠道病原菌,并深入了解肠道病原菌对人们健康的影响。

本实验采用选择性培养基和生化试剂对样品进行处理和鉴定,最终成功分离出大肠杆菌、沙门菌和耐甲氧西林金黄色葡萄球菌等肠道病原菌。

引言肠道病原菌是导致肠胃疾病的主要病因之一。

一些细菌和病毒都可引起肠道感染,导致腹泻、呕吐、腹痛等不适症状。

有些肠道病原菌很难通过常规的培养方法进行分离和鉴定,因此对于其鉴定至关重要。

在临床和实验室中,肠道病原菌的鉴定是非常重要的。

在本实验中,我们将通过选择性培养基和生化试剂来分离和鉴定肠道病原菌。

材料与方法实验所需材料:-食品样品(牛肉、猪肉、家禽产品等)-选择性培养基(MacConkey agar, SS agar, XLD agar)-氯霉素(50μg/ml)-β-半乳糖苷酶-生化试剂(甲基红、青田霉素、麦芽糖、尿素、甲酸氢钠、甲酸亚铁、碳酸氢铵、硫代硫酸钠、氧化亚铁、硫酸铜、氯化铵、硝酸钴、聚苯乙烯乳胶、过氧化氢)实验步骤:1. 食品样品的处理:将样品切成小块,加入100 ml的含氯霉素(50μg/ml)的生理盐水中,放在室温下搅动10分钟,再将悬浮液离心10分钟,取沉淀制备10倍连续稀释液备用。

2. 分离培养:取三个不同的选择性培养基MacConkey agar、SS agar和XLD agar,分别接种均匀悬浮液并用无菌环展开,然后使其在37℃恒温箱中孵化24小时。

3. 生化识别:观察菌落的形态、颜色和表面涂膜,并用生化试剂行革兰染色、甲基红反应、青田霉素试验、尿素酶试验、甲酸氢钠氧化试验、甲酸亚铁还原试验、碳酸氢铵水解试验、硫代硫酸钠还原试验、氧化亚铁试验、硫酸铜凝集试验、氯化铵水解试验、硝酸钴试验、聚苯乙烯乳胶凝聚试验和过氧化氢试验,根据结果进行分类鉴定。

结果经过实验分离和鉴定,本实验成功分离出大肠杆菌和沙门菌等常见的肠道病原菌,并且还分离出一株耐甲氧西林金黄色葡萄球菌。

分离培养细菌的实验报告

分离培养细菌的实验报告

一、实验目的1. 学习分离培养细菌的基本原理和方法。

2. 掌握平板划线法和稀释涂布平板法两种分离细菌的方法。

3. 熟悉显微镜的使用,观察细菌的形态。

二、实验原理细菌是一种微小的单细胞生物,具有高度的自我复制能力。

分离培养细菌是微生物学研究中的一项基本技术,通过分离培养,可以纯化细菌,便于对其生物学特性进行研究。

分离培养细菌的方法主要有平板划线法和稀释涂布平板法。

平板划线法:将细菌涂布在琼脂平板上,用接种环划线,使细菌在琼脂上逐渐稀释,最终形成单个菌落。

稀释涂布平板法:将细菌进行系列稀释,取一定量的稀释液涂布在琼脂平板上,培养后观察菌落形成。

三、实验材料1. 细菌样品:土壤、水体、食品等。

2. 培养基:牛肉膏蛋白胨培养基、营养琼脂培养基等。

3. 实验器材:接种环、无菌操作台、酒精灯、镊子、培养皿、显微镜等。

四、实验步骤1. 分离培养细菌(1)取适量细菌样品,加入适量的无菌水,进行系列稀释。

(2)将稀释后的样品涂布在牛肉膏蛋白胨琼脂平板上。

(3)将平板倒置,放入37℃恒温培养箱中培养。

2. 观察菌落形态(1)用接种环挑取单个菌落,进行平板划线。

(2)将平板倒置,放入37℃恒温培养箱中培养。

(3)观察菌落形态,记录菌落颜色、大小、形状等特征。

3. 镜检细菌形态(1)取适量菌落,加入适量的无菌水,制成悬液。

(2)取一滴悬液,滴在载玻片上,盖上盖玻片。

(3)用显微镜观察细菌的形态,记录细菌的大小、形状、排列等特征。

五、实验结果与分析1. 分离培养细菌在牛肉膏蛋白胨琼脂平板上,观察到多个菌落形成,颜色、大小、形状各异。

2. 观察菌落形态通过平板划线法,观察到单个菌落,菌落形态各异,部分为革兰氏阳性菌,部分为革兰氏阴性菌。

3. 镜检细菌形态在显微镜下观察到细菌的形态,部分为球状,部分为杆状,部分为螺旋状。

六、实验结论1. 成功分离培养出多种细菌。

2. 掌握了平板划线法和稀释涂布平板法两种分离细菌的方法。

3. 熟悉了显微镜的使用,观察到了细菌的形态。

病原体分离培养实验报告

病原体分离培养实验报告

一、实验目的1. 学习病原体分离培养的基本原理和方法。

2. 掌握无菌操作技术,提高实验操作能力。

3. 观察病原体在人工培养基上的生长情况,为病原体鉴定提供依据。

二、实验原理病原体分离培养是指将病原体从感染组织或环境中分离出来,并在人工培养基上培养,使其生长繁殖,从而获得纯培养物。

通过观察病原体在人工培养基上的生长特征,可以初步鉴定病原体的种类。

三、实验材料与试剂1. 实验材料:新鲜辣椒炭疽病果、番茄青枯病果、水稻稻瘟病病叶等。

2. 试剂:70%酒精、2%煤酚皂液、5%石炭酸液、无菌水、PDA培养基、牛肉膏蛋白胨培养基等。

3. 仪器与设备:超净工作台、酒精灯、接种针、接种环、培养皿、培养箱、显微镜等。

四、实验步骤1. 分离材料处理:将新鲜辣椒炭疽病果、番茄青枯病果、水稻稻瘟病病叶等病料剪成小块,用70%酒精消毒后,再用无菌水冲洗3次。

2. 分离培养:将处理好的病料接种于PDA培养基上,于28℃恒温培养箱中培养。

3. 观察与记录:每隔24小时观察一次,记录病原体在培养基上的生长情况,包括菌落形态、颜色、边缘等特征。

4. 病原体纯化:选取典型的菌落进行划线分离,纯化病原体。

5. 病原体鉴定:观察纯化后的病原体在牛肉膏蛋白胨培养基上的生长情况,进行初步鉴定。

五、实验结果与分析1. 辣椒炭疽病菌:在PDA培养基上,菌落呈圆形,边缘整齐,表面光滑,初期为白色,后期为粉红色。

在牛肉膏蛋白胨培养基上,菌落呈圆形,边缘整齐,表面光滑,初期为白色,后期为粉红色。

2. 番茄青枯病菌:在PDA培养基上,菌落呈圆形,边缘整齐,表面光滑,初期为白色,后期为粉红色。

在牛肉膏蛋白胨培养基上,菌落呈圆形,边缘整齐,表面光滑,初期为白色,后期为粉红色。

3. 水稻稻瘟病菌:在PDA培养基上,菌落呈圆形,边缘整齐,表面光滑,初期为白色,后期为粉红色。

在牛肉膏蛋白胨培养基上,菌落呈圆形,边缘整齐,表面光滑,初期为白色,后期为粉红色。

六、实验结论通过本次实验,我们成功分离培养出辣椒炭疽病菌、番茄青枯病菌和水稻稻瘟病菌。

从血液培养分离出布鲁菌的总结和体会

从血液培养分离出布鲁菌的总结和体会

从血液培养分离出布鲁菌的总结和体会布鲁菌是导致布鲁菌病的病原菌,临床较为少见,辽宁省本溪市中心医院2014年10月收治1例患者,从血液培养中分离出布鲁菌,布鲁菌的误诊率较高,希望临床及微生物医师能引起重视,注重血液培养病原菌的分离,同时注重检验和临床的沟通,为临床合理诊治提供依据。

标签:血液培养;布鲁菌;布鲁菌病;实验室感染布鲁菌属(Brucella)隶属于细菌域、变形菌门、α-变形菌纲、根瘤菌目,布鲁菌科(Brucellaceae)是导致布鲁菌病的病原菌[1],这是一种人畜共患病原菌,是较为少见的病原菌,现将辽宁省本溪市中心医院(以下简称“我院”)从血液培养分离出的1例布鲁菌作以总结,报道如下:1 病例资料患者,男,58岁,2014年10月3日上午来我院就诊。

以“发热1周”为主诉入院,患者1周前无明显诱因出现咳嗽、发热症状,无明显咳痰,伴寒战、呼吸困难,自测体温最高39.2℃,口服抗感染药物并静点头孢类药物1 d,症状无明显好转,因出现尿潴留,于急诊给予导尿,为求进一步诊治入我院呼吸感染科。

病来时无咯血,无乏力,无盗汗,无恶心呕吐,无腹痛腹泻,无皮疹,无皮肤黏膜出血,无黄疸,无头痛,无肌肉痛,无关节痛,无口唇疱疹,无消瘦,饮食及睡眠尚可,小便留置导尿,大便正常。

既往史:肾结石10余年。

查体:T:39℃,P:86次/min,R:18次/min,BP:146/89 mm Hg(1 mm Hg=0.133 kPa),发育正常,营养中等,步入病室,自动体位,神清语明,查体合作。

双肺呼吸音粗,未闻及明显的干湿啰音,心律齐,心率86次/min,各瓣膜听诊区未及病理性杂音,腹软无压痛,未触及包块。

双下肢无浮肿,四肢肌力Ⅴ级。

神经系统查体未见异常。

留置导尿。

辅助检查:门诊尿常规化验尿红细胞(RBC)19.0 μL,尿蛋白1+,尿糖2+,入院后化验:采集血培养,血常规白细胞8.60×109/L,中性粒细胞比率83.0%,淋巴细胞比率8.5%,单核细胞比率8.4%,红细胞3.9×1012/L,血红蛋白117 g/L,血小板197×109/L,生化:白蛋白34.3 g/L,谷丙转氨酶160 U/L,谷草转氨酶79 U/L,血钾3.25 mmol/L;血气分析血氧分压68.8 mm Hg;其他:C 反应蛋白(CRP)116.0 mg/L,总前列腺特异抗原70.440 ng/mL;肺CT肺内纤维索条影,腹部B超肝内类圆形低密度影,肝血管瘤,胆囊壁毛糙,脾大,泌尿系B超提示前列腺肥大。

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病原菌得分离培养方法
一、基本原理
植物病原菌得分离培养,就是植物病理实验室工作中得基本技能。

为了获得某微生物得纯培养,一般就是根据该微生物对营养、酸碱度、氧气等条件要求不同,而供给它们适宜得生活条件,即让病原菌生活在适宜得培养基上,或加入某种抑制剂造成只利于此菌生长,而抑制其她菌生长得环境,从而得到纯菌株.
植物病原真菌得分离方法主要有组织分离法与稀释分离法两种.最常用得方法就是组织分离法,而稀释分离法主要用于病组织上产生大量孢子得病原真菌得分离。

为了获得分离菌得纯培养,必须要进行分离菌得纯化,纯化得方法类似于分离工作中采用得稀释分离法或划线分离法。

二.病原真菌得分离培养(花生褐斑病为例)
1.分离得准备工作
(1)分离材料准备:花生褐斑病叶片:病斑圆形或近圆形暗褐色、黑褐色,淡黄色晕圈。

背面有许多黑色小点,呈同心轮纹状排列。

(2)培养基得准备:PDA培养基,加热熔化,紫外灭菌后倒板;
(3)分离工作仪器与用品:超镜工作台、培养箱、无菌培养皿、剪刀、解剖刀、镊子、接种铲(针)、70%酒精、0。

1%升汞、酒精灯、火机、记号笔、橡皮筋套、可调式电炉等。

(升汞就是剧毒药物,在操作时应特别小心)。

2.组织分离法
(1)工作前用肥皂洗手,无菌操作前还要用70%酒精擦拭双手;在使用无菌操作间时,呼吸要轻,不要说话。

(2)酒精灯放入中间合适位置,点燃后不要在移动,保证火焰周围无菌环境;
(3)取花生褐斑病得症状典型病叶(或其她分离材料),选择典型得单个病斑,用剪刀或解剖刀从病斑边缘(病健交界处)切取小块病组织数块。

(选择新患病得组织作为分离得材料,可以减少腐生菌混入得机会。


生菌一般在发病很久而已经枯死或腐败得部分滋生,因此,一般斑点
病害应在临近健全组织得部分分离。

)
(4)表面消毒:用菌培养皿一次准备流程(75%酒精—0、1%升汞—无菌水-无菌水—无菌水),将病组织放人70%酒精中浸3-5s后,按无菌操作
法将病组织移人0。

1%升汞液中分别表面消毒1min左右(如植物
组织柔嫩,则表面消毒时间宜短;反之则可长些),然后放入灭菌水中连
续漂洗三次,除去残留得消毒剂。

(5)用无菌操作法将病组织移至平板培养基上,每皿内放3—5块。

(在将病组织小块移放到平板表面之前,应将其在无菌吸水纸上吸去多余得
水,以大大减少病组织附近出现细菌污染).
(6)将培养皿倒置放人25 ℃左右恒温箱内培养。

一般3-4d后观察待分离菌生长结果;若病组织小块上均长出较为一致得菌落,则多半为要分
离得病原菌。

(7)除根据菌落得一致性初步确定长出得菌落就是否目标菌外,还要在显微镜下检查,并且根据保湿培养得结果进一步确定;
(8)在无菌条件下,用打孔菌落边缘挑取小块移入培养基上,在25℃左右恒温箱内培养,数日后,观察菌落生长情况,如无杂菌生长,即得该分
离病菌纯菌种,便可保存。

三.病原细菌得分离培养(萝卜黑腐病为例)
1、分离得准备工作
(1)分离材料准备:萝卜黑腐病俗称黑心、烂心,该病就是由细菌引起得病害.主要危害叶与根。

幼苗期发病子叶呈水浸状,根髓变黑腐烂。

叶片发病,叶缘多处产生黄色斑,后变”V”字形向内发展,叶脉变黑呈网纹状,逐渐整叶变黄干枯.病菌沿叶脉与维管束向短缩茎与根部发展,最后使全株叶片变黄枯死.萝卜肉质根受浸染后,透过日光可瞧到暗灰色病变;横切萝卜可瞧到维管束呈放射线状、黑褐色;重者呈干缩空洞,维管束溢出菌脓,这一点与缺硼引起得生理性变黑不同。

(2)培养基得准备:PDA,后划线纯化NB;
(3)分离工作仪器与用品:超镜工作台、培养箱、无菌培养皿、剪刀、解剖刀、镊子、70%酒精、酒精灯、火机、记号笔、橡皮筋套、可调式电炉等。

2、黑腐病菌分离
(1)工作前用肥皂洗手,无菌操作前还要用70%酒精擦拭双手;在使用无菌操
作间时,呼吸要轻,不要说话。

(2)酒精灯放入中间合适位置,点燃后不要在移动,保证火焰周围无菌环境;
(3)取萝卜黑腐病块茎,用75 %酒精进行表面消毒;用灭菌解剖刀切去表面,并向内切取病组织,切成长条小块(2mm*3mm),用无菌操作法将病组织移至平板培养基上,每皿内放3—5块。

(在将病组织小块移放到平板表面之前,应将其在无菌吸水纸上吸去多余得水,以大大减少病组织附近出现细菌污染)。

(4)将培养皿倒置放人28 ℃左右恒温箱内培养。

一般3-4d后观察待分离菌生长结果;若病组织小块上均长出较为一致得菌落,则多半为要分离得病原菌.
(5)根据菌落得一致性初步确定长出得菌落,选择长出得三种菌落(黄、红、生防),分别在无菌条件下在NB培养基进行划线;在28℃左右恒温箱内培养,数经培养后出现得菌落在形态特征都趋于一致,并与典型描述得特征相一致时,即表明已获得纯培养;最好要经过连续三次单菌落得分离,才能确保纯化。

(6)观察到得菌落特征:萝卜黑腐病菌,圆形,同心环状,内环呈金黄色,外围白色菌脓,湿润,随环隆起、凹陷,半透明,边缘不整齐。

四。

资料查询其她分离培养方法
1、病原真菌
稀释分离法
(1)取灭菌培养皿三个,平放在湿纱布上,编号,并注明日期、分离材料及分离人姓名。

(2)用灭菌吸管吸取灭菌水,在每一皿中分别注入0。

5~1.0ml。

ﻫ(3)用移植环蘸一滴孢子悬浮液,与第一个培养皿中得灭菌水混合,再从第一个培养皿移三环到第二个培养皿中,混合后再移三环到第三个培养皿中.ﻫ(4)将熔化开冷却到45~50C得培养基,分别倒在三个培养皿中(为防止细菌污染,也可以向每个培养皿中事先加入1—2滴25%乳酸),摇匀,凝固,要使培养基与稀释得菌液充分混匀。

ﻫ提示:倒平板时得培养基温度一定要掌握好,过热易将病原菌烫死而使分离失败,过冷则倒入培养皿中后难以形成平板,而成为起伏不平得表面,不利于分离.为大体估计培养基温度,可将盛培养基得器皿靠在人手背上,如果手背感到烫但尚可以忍耐,则大体为45~50C。

ﻫ(5)将培养皿翻转后置恒温箱(25℃)中培养,数日后观察菌落生长情况.ﻫ(6)挑菌.将培养后长出较为整齐一
致得单个菌落分别挑取,接种到斜面培养基上,置25℃左右培养。

待菌长出后,检查菌就是否单纯,若有其她菌混杂,就要再一次进行分离纯化,直到获得纯株培养。

2、病原细菌
病原细菌得分离方法以稀释分离法与划线分离法为最常用。

在进行分离之前,首先应对病组织材料进行细菌学初步诊断,即经过镜检确认有喷菌现象以后,才对该病组织作分离工作.稀释分离法就是最经典得标准分离法,方法同上述真菌分离。

ﻫ除去上述稀释分离法以外,较为方便得就是划线分离法:ﻫ(1)预先把熔化好得肉膏蛋白胨培养基倒在培养皿中,凝成平板后,翻转放在30C恒温箱中2-4h,使表面无水滴凝结。

也可凝成平板后直接使用。

ﻫ(2)将病组织先用0。

1%升汞表面消毒0。

5--2min,再用无菌水换洗3次后,放在灭菌培养皿中得灭菌水中,用灭菌玻棒研碎,并让组织碎块在水中浸泡20—60min,让细菌释放到灭菌水中。

(3)用灭菌得接种铒(接种环)蘸取浸泡液在干燥得培养基平板表面划线,尽量不要把平板表面划破。

划过第一批线后得接种环应放在火焰上烧灼.冷却后直接在第一批划线得末端向另一方向划线。

灭菌后再划第三次线.
提示:划过第一批线后接种铒放在火焰上烧过这一步骤非常重要,这样做可以使第一批线与第二批线上得细菌数量相差很大。

(4)用玻璃铅笔在培养皿上写上分离材料、日期与分离者姓名后,翻转培养皿,放在26~28C恒温箱中培养。

1—3d后观察有无细菌生长,在哪些地方有单菌落生长出来?其中得优势单菌落应为待分离菌形成得。

(5)仔细挑取病原菌得单菌落,并移植到斜面培养基上。

同时,再把单菌落用灭菌水稀释成悬浮液作第二次划线分离,经培养后出现得菌落在形态特征都趋于一致,并与典型描述得特征相一致时,即表明已获得纯培养。

最好要经过连续三次单菌落得分离,才能确保纯化。

五。

常用得几种典型得病原菌分离方法
1。

斑点病原菌得分离。

从病斑部分切取每边3—5mm得小块组织,在70%酒精中浸数秒钟后,移人0.1%得升汞水溶液中处理3-5rain,以灭菌水冲洗3次,移置培养皿得培养基中,然后培养。

2.维管束组织内病原菌得分离.从根茎维管束组织分离病菌,可先将寄主病部表面用70%酒精擦拭消毒,将表皮组织用灭菌得解剖刀削去,然后切取其中小块变色得维管束组织,用升汞或漂白粉液消毒后,用灭菌水冲洗几次,移置培养基面上。


3.根腐病病原菌得分离.根腐或基腐病得分离,由材料得大小决定。

材料小得可仿照斑点病得分离法,材料大得则可以用维管束组织内病原得分离法.4.肉质组织中病原菌得分离。

多肉得根、茎及果实等,可以采用维管束组织内病菌分离法除去表面组织,切取小块病组织分离。

如有杂菌感染可采用“直接接种"法,待出现症状后,用此法再行分离。

ﻫ5。

种子内病原菌分离.将整个种子或者种子得一部分进行表面消毒(升汞或漂白粉),用灭菌水洗涤后,移置培养基上.
6.孢子分离法。

能产生大量孢子得病菌如青霉素、链格孢等,则可配制成孢子悬浮液以稀释法或划线法分离之。

7.土壤带菌分离法.为了研究一些真菌在土壤中存活与分布得情形,从有病得土壤中分离它们就是必要得。

分离方法就是将土壤取出少许,配制成悬浮液,然后用稀释法或划线法分离。

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