大鼠及豚鼠经口灌胃方法的改进
介绍一种简便的大鼠灌胃方法_符路娣
表2两组治愈病例主要临床症状起效时间比较组别犬数发热腹痛里急后重脓血便腹部压痛治疗组230.85?0.32*1.10?0.41*1.08?0.36*1.13?0.451.51?0.47*对照组141.31?0.271.70?0.731.76?0.721.17?0.572.05?0.72注:与对照组比较*p<0.01表3两组治愈病例主要临床症状消失时间比较组别犬数发热腹痛里急后重脓血便腹部压痛治疗组231.97?0.75*3.10?1.02*2.79?1.05*2.87?1.113.16?1.17*对照组142.69?1.193.89?1.333.93?1.193.92?1.094.41?1.35注:与对照组比较*p<0.014小结犬的急性菌痢临床施治中,随着致病菌群的不断变化,耐药菌株的增长,给治疗带来一定的困难。
特别是基层兽医站无实验室,条件差,全凭目观和经验,无法对大便进行细菌培养,给用药带来了一定困难。
盲目滥用抗生素,而导致菌群失调,迁延不愈,给广大养殖户增加了支出,浪费了财力、物力、人力,造成不应有的损失。
而用中药治疗常可取得良好的疗效。
自拟葛根芩连汤中,主药葛根味甘平有解肌清热、升清止痢功用;黄芩、黄连则味苦、性寒、清热燥湿,抗菌消炎,除里急后重症;木香理气开胃、行止泻;马齿苋清热解毒止痢;茯苓、泽泻,渗湿利水、健脾和中;金银花清热解毒;甘草清热解毒、补中、调和诸药。
诸药相合,共奏清热解毒,燥湿坚阴止痢之功。
现代药理研究认为:葛根、黄芩、黄连、马齿苋对痢疾杆菌有较强的抑制作用,同时,葛根芩连汤有提高机体免疫力,增强小肠黏膜绒毛上皮细胞功能的作用。
文章编号:1003-8655(2006)03-0036-01中草药治疗宠物犬腹胀病赵沛林(山东省无棣县畜牧局2519007)中图分类号:S858.292文献标识码:B宠物犬的腹胀病,是由饲养管理不善或饲料品质低劣、变质等引起的一种原发或继发性疾病,临床比较多见。
一种改进的小白鼠灌胃给药法
一种改进的小白鼠灌胃给药法
王宁萍;赵建宁;杨志伟
【期刊名称】《宁夏医科大学学报》
【年(卷),期】1999(021)001
【摘要】在动物实验中经口给药法是一种常用的方法。
经口给药法有口服与灌胃两种方法。
适用于小白鼠、大白鼠、兔等动物。
口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物摄取。
此法虽简单方便，但剂量不够准确。
为保证剂量的准确性常用灌胃法。
灌胃法是用灌胃管将所应投的药灌到动物胃...
【总页数】1页(P57)
【作者】王宁萍;赵建宁;杨志伟
【作者单位】
【正文语种】中文
【相关文献】
1.新型灌胃器经胃给药法在新生SD大鼠中的应用及效果评价 [J], 严彩满;王潜;苏志文;吴繁;谭小华;崔其亮
2.乳大鼠灌胃给药方法之改进 [J], 范志刚;于晓凤
3.一种家兔灌胃给药新方法 [J], 刘晨;杜建军;秦雯;刘中华;杨光;孙平
4.改进的酒精灌胃法建立大鼠酒精性肝病模型 [J], 伏建峰;史清海;岳新华;张东辉
5.高效液相色谱法分析芦丁在灌胃给药大鼠体内的组织分布 [J], 李巧稚;肖丹丹;王晓颖;段青娅;刘雪松;李倩
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豚鼠灌胃方法新改进
式 ，但都 操作 复 杂 、费时 费力 ，现经 过多 次方 法 的改
进 ，获 取 了一 些豚 鼠灌 胃的经验 ，介 绍如 下 。
咽动 作 时再 推 入 适 量 药 液 ，依 次 类 推 ，直 至 将 ２ ｍｌ 药液 灌入 豚 鼠 胃内。
按照上述方法在 ３ ０ ｄ内 ，６ ０只豚 鼠每天 １次 ，均能顺 利实现灌 胃。经解剖观察无消化道损伤 ，无误人 气道导致死 亡 ， 成功率达到 １ ０ ０ ％。平 均每 只动物灌 胃时间为 （ ６ ． ８± ２ ． ４ ）ｓ ，耗费 时间较短 。结论
研究奠定 了 ． 基础 。
人为因素导致的动物死亡 ，使经 口给药途径 的动物实验不需要 因为技术 问题 而局限于大 鼠、小 鼠，为进一步 的医药学
轻轻 插入 豚 鼠 口腔 内部 （ 根据 豚 鼠 的大 小 ，插入 深 度 为１ ． ５ ｅ ｍ～ ２ ｅ ｍ，如 图 ２见 封 三 所示 ） ，轻 轻 用 右 手 小指 推人 ０ ． ２～ ０ ． ５ ｍ ｌ 药 液 ，当看 见豚 鼠有 咀 嚼 和吞
炎模 型等 Ｉ ４ Ｊ 。但 在建 立动 物模 型 后 ，就需 要 面 对豚 鼠抓 取和 灌 胃的难 题 。 由于豚 鼠 口腔结 构 和体 型 的特 殊性 ，传 统 的灌 胃方法 很容 易造 成其食 道 损伤 和误 吸 致死 Ｊ ，使 得 多数学 者选 择 了大 、小 鼠和兔 作 为实
经过上述灌 胃方法 ，对 ６ ０只豚 鼠每天灌 胃 １ 次 ，连 续灌 胃 ３ ０ ｄ ，６ ０只 豚 鼠均 顺 利 实 现 灌 胃。经 解 剖 观 察 ，无消化道损伤 ，无误入气道导致死亡 ，成功率达
到１ ０ ０ ％ 。期 问个 别 动物 有 少许 吐药 现 象 ，但 经 过 减 慢灌 胃速度后 再无 上述 现象 ，平 均每 只动 物灌 胃时 间
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法一、经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药法。
1、鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。
左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。
2、兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。
然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
(二)口服法口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。
此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。
大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。
二、注射给药法(一)皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。
皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，使针头水平刺入皮下。
推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。
(二)肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。
大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。
注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。
(三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
灌胃方法
随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。
根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。
尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。
在国内文献上却很少见到具体的描述。
在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。
一、灌胃器具制作1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。
二是自制。
自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。
加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。
在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。
豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。
1.2家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。
加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。
二、灌胃操作方法2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。
在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。
以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。
如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。
注完药液后轻轻抽出灌胃针。
小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。
2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。
根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。
改良的豚鼠灌胃给药方法
复旦学报(医学版)Fudan Univ J Med Sci 2010Mar ,37(2) 上海市自然科学基金项目(09ZR1405700) △Corresponding aut hor E 2mail :chifanglu @改良的豚鼠灌胃给药方法丛 宁 韩 朝 迟放鲁△ 杨娟梅 黄一波 辛 渊(复旦大学附属眼耳鼻喉科医院耳鼻喉科 上海 200031)【摘要】 目的 改良豚鼠灌胃给药的方法。
方法 选取清醒豚鼠40只,使其后肢站立、腹侧紧贴支持物,体位垂直不能前移,后拉两耳颊部皮毛并轻抵项部使其头后仰颈伸直,插入1mL 注射器、越过上下臼齿并压住舌根灌药;另选40只全身麻醉的豚鼠,使其侧卧头高臀低位,插入直径2mm 小儿吸痰管至胃内灌药。
结果 对清醒及全麻豚鼠,连续灌胃给药7d ,80只豚鼠均顺利实现灌胃,仅需一人独立操作,无一例因操作不当引起豚鼠消化道损伤或误灌入气道死亡,成功率达100%。
结论 成功改良了豚鼠的灌胃给药方法,使经口给药途径的动物实验不需因技术问题而局限于大鼠、小鼠,为进一步的药物和营养学等研究奠定了基础。
【关键词】 豚鼠; 灌胃; 臼齿; 麻醉【中图分类号】 R 332 【文献标志码】 AModif ied gavage methods for guinea pigsCON G Ning ,HAN Zhao ,C HI Fang 2lu △,YAN G J uan 2mei ,HUAN G Y i 2bo ,XIN Yuan(Department of Otorhinolary ngology ,Eye ,Ear,N ose and T hroat Hos pital ,Fudan Universit y ,S hanghai 200031,China )【Abstract 】 Objective T o modify the method of gavage administration in guinea pigs. M ethods Fourtyawake guinea pigs were kept rearing on the hind legs and leaning on a vertical fixture to avoid their escaping forward.A 1mL injector was inserted into the mouth to the depth when the molar teeth were passed.Another fourty guinea pigs under general anesthesia were reversed at trendelenburg position and a children suction tube with an outer diameter of 2mm was inserted into the stomach. R esu lts All of the 80guinea pigs were administered by modified gavage smoothly for seven consecutive days by one operator each time.None endured much pain or digestive tract injury ,or died from air way perfusion by mistake. C onclusions We successfully modified the gavage method in guinea pigs ,which would definitely take guinea pigs involved in intragastical pharmacal experiments besides the routine of rats and mice.【K ey w ords 】 guinea pig ; gavage ; molar teet h ; anest hesia 灌胃给药能够准确掌握给药剂量、控制给药时间,是营养学和药物学动物实验中的重要给药途径。
实验动物常用灌胃方法及改进
Ｋｅ ｙ ｗｏｒ ｄ ｓ： ｌ ａ ｂ ｏ ｒ ａ ｔ ｏ ｒ ｙ ａ ｎ ｉ ｍａ ｌ ｓ ； Ａｎ ｉ ｍａ ｌ ｉ ｇ ； Ｉ ｍｐ ｒ ｏ ｖ ｅ ｄ ｍｅ ｔ ｈ ｏ ｄ ｓ
在动物实验尤其是关于中草药的实验 时， 常常需要经 口给药， 常 用有 口服 和灌 胃两种方法 ， 适 用于小 鼠 、 大 鼠、 豚鼠、 兔、 狗等动物 。 口服法可将药 物混入饲料 中或溶于饮水中任动物 自行摄取 。但由于 动物的状态和嗜性 的不 同， 很难准确掌握给药量 。另外 ， 室温下易分 解物质和少量被检物质 的给药 ， 都很难准确平 均添加 。为保证准确 掌握给药量 ， 通常采用灌 胃法 。灌 胃法相 比 口服法除每天给药耗 费 时间外 ， 还会对动物造成一定程度 的机械损 伤和心理改变从而影 响 实验数据 的准确性 ， 要 减少这些 不 良影响 ， 有必要掌握 灌 胃的方法 和技巧。
［ ２ 】 江光荣， 著． １ 心理 咨 询 与 治 疗 【 Ｍ】 ． 合肥： 安 徽 人 民 出版 社 ， １ ９ ９ ５版．
［ ３ １ － ￣
东， 著． 登天的感觉ｌ Ｍ】 北京 ： 北 京 师 范大 学 出版 社 ， 法及 改进
解 剖 学特 点 ， 操 作 简单 ， 耗时 少， 成功率高， 值得推广 。 关 键词 ： 实验 动物 ； 灌 胃； 改 进 方 法
Ｃｏ ｍｍｏ ｎｌ Ｙ Ｕｓ ｅ ｄ Ｅｘｐ ｅ ｒ ｉ ｍｅ ｎ ｔ ａ ｌ Ａｎ ｉ ｍａ ｌ Ｇａ ｓ ｔ ｒ ｉ ｃ Ｐｅ ｒ ｆ ｕｓ ｉ ｏ ｎ Ｍｅ ｔ ｈｏ ｄ ａｎ ｄ Ｉ ｍ ｐｒ ｏｖ ｅ ｍｅ ｎ ｔ
大鼠灌胃给药方法的研究_冯雪建
1 .1 .3 绳套制作 :用普通外科缝线或适宜的棉线制 成一环形绳套 , 绳套强度要适宜 。
收稿日期 :2005-11-01 作者简单 :冯雪建(1979-), 男 , 贵州大学硕士研究生 , 主要从事动物组织胚胎学及病理学研究 。(0851-8297824 , fengxuejian001 @sohu .com)
从其解剖学来看 , 在针头沿上颚向内推进受到 硬腭皱褶的阻力时可使针头稍向上抬起越过硬腭皱 褶 , 然后继续贴着上腭前进至针头插入食管 。
在整个灌胃过程当中 , 要尽量避免大鼠的挣扎 。 使用铁架台的质量要适当 , 在保定过程中 , 大鼠 挣扎时铁架台则可起到缓冲作用 。
参考文献
[ 1] 苗明三 .实验动物和动物实 验技术 .北 京 :中国中 医药出版 社 , 1997 .
图 3 将大鼠反转保定 图 4 操作者将绳子 挂在大鼠门齿
图 2 从背 部保定大鼠
2 结果
本法应用于 40 只大鼠 , 连续 30d , 每天 一次灌 胃 , 灌胃量为每次 1 .3mL , 所用时间为 25min 。 结果 表明 , 40 只大鼠无一因插管错误或液体误入气管而 出现死亡者 , 成功率达 100 %。
第 23 卷 第 4 期 2006 年 12 月
技术·方法
实验动物科学与管理 LABORATORY ANIMAL SCIENCE AND MANAGEMENT
Vol .23 No .4 December 2006
大鼠灌胃给药方法的研究
冯雪建 卢占军 高登慧
(贵州大学动物科学学院 , 贵阳 550025)
Abstract : During the animal experiments , the author explored a new method of stomach_lavaging of rat , which needed cooperation of two people , 92 rats can be finished per hour .During the 30 days of rat stomach_lavaging continuously (40 d), there were no unexpected death because of unsuitable lavage , and the rate of success was up to 100 %.During adminstration , the most critical thing is how to fix the rat skillfully and effectively .One person fixed rat with two hands , additionally using metal shelf and rope to fix the head of the rat , and kept the head and body in line , which can assure tubatton to go on smoothly . Key words:Rat ;Lavaging into stomach ;Fix
大鼠灌胃给药方法的研究_冯雪建
想的给药途径 。 所以对灌胃方法技巧的掌握在动物 实验当中是非常重要的 。 国内外传统的大鼠经口灌 胃方法的介绍中 , 主要由一人操作(图略)。
用左手拇指和食指抓住大鼠两耳和头部皮肤 , 其它三指抓住背部皮肤 , 将大鼠抓在左手中(此法要 求抓得不能太紧 , 以免颈部皮肤向后拉 , 勒住食管 , 灌胃针不易插直或易损伤食管 , 也有人建议改用左 手拇指和食指抓紧右耳的方法避免上述缺点), 使其 腹部向上 , 头部向上有一个倾斜度 , 固定好动物 , 右 手取注射器进行灌胃 , 也可两人操作 , 助手帮助固定 好大鼠两后肢和尾部 。 由于大鼠的体型较小鼠大 , 灌胃操作中采取一人操作 , 不大方便 。 助手帮助保 定的方法 , 在国内外文献上也鲜有提及 , 更未见有具 体的且比较理想的经口灌胃给药方法 。 作者在大鼠 的实验中 , 摸索出一套比较理想的大鼠经口灌胃给
随着科学技术的发展 , 动物实验已成为医学实 验研究的基本方法 。 在实验动物当中 , 大鼠占有很 重要的位置 。根据实验目的 、实验动物的种类及药 物剂量的不同 , 需对实验动物实施不同的给药方法 。 在现代医学实验中 , 大鼠的给药方法主要有注射 、埋 植和插管等[ 1, 2] 。 但对要长期定量给药的实验中 , 为 使实验条件统一 , 注射方式给药 , 因长期操作 , 感染 率较高 , 注射剂的制作对实验室的要求也相对较高 ; 埋植给药方式可以达到长期均匀的释放 , 但中途不 易控制 , 操作比较麻烦 , 适用范围有限 ;在插管给药 方式中经口灌胃给药相对于以上两种方法是比较理
经口急性毒性试验方法-改良寇氏法
急 性 毒 性 试 验 方 法――改良寇氏法Kärber 法由Kärber 于1931提出，后经Finney 改进，顾汉颐作过改进，1963年孙瑞元教授对该法进一步改进，改进后的计算方法称为点斜法或孙氏法，增加了不含0%和100%死亡率的校正式，所得LD 50及全部有关参数与正规概率单位法相近。
改良寇氏法（Käber）试验设计的原则是：各组剂量按等比级数；各组动物数相等：大致有一半组数的动物死亡率在10%～50%之间，另一半在50%～100%之间，最好出现0 %和100 %的剂量组。
一、剂量选择及分组1、剂量选择剂量设计是否合理是急性毒性试验能否成功的关键。
探求外源化学物的急性毒性，测定其LD 50或LC 50时，应首先广泛查阅文献资料，了解该化学物的化学结构和理化性质，如结构式、分子量、溶解度、挥发度、纯度及杂质含量等，其次确定测定LD 50的计算方法，然后设计剂量。
2、预试验：总的原则是先用少量动物，以较大的剂量间距染毒，求出粗略的致死剂量范围，即确定受试动物全部致死的最小剂量（b ）和全部不致死的最大剂量（a ），即求出待测化学物0 %~100 %的大致致死剂量范围，然后在这个剂量范围内按几何级数的间距设计5~7个剂量组，组间剂量呈等比级数（r ），其比值为1.2~1.5。
进行正式实验。
用于急性毒性试验时，动物的体重为：大鼠180~200g ，小鼠18~22g ，豚鼠200~250ｇ，家兔2~2.5kg ，犬10~12 kg 。
用于实验的同一批动物体重变异范围不得超过所用动物平均体重的20%。
仍然遵守雌雄各半或雌雄兼取的原则。
当预试中发现化学物的毒性有明显的性别差异时，则需要选用雌、雄两种性别的动物分别进行试验，求出各自的LD 50。
通过预试，找出受试化学物引起动物死亡的大致剂量范围，以此为依据设计正式试验的剂量和分组。
按下式设计剂量组：1n abr -= 式中：r —相邻两组剂量的比值，一般为1.2～1.5，b —最低全致死剂量量， a —最高不致死剂量， n —设计的组数。
豚鼠灌胃实验报告
一、实验目的1. 观察不同剂量五虎汤对豚鼠离体气管平滑肌的舒缩作用。
2. 探讨五虎汤中麻黄碱、甘草酸、甘草次酸、龙脑、松油醇、苯乙醇等6种活性成分的平喘作用。
二、实验材料1. 实验动物：健康豚鼠20只，体重200-250g，雌雄不限。
2. 药物：五虎汤制剂，由麻黄、甘草、龙脑、松油醇、苯乙醇等6种成分组成。
3. 仪器：生物显微镜、气管螺旋条装置、恒温水浴箱、电子天平、微量注射泵等。
4. 试剂：生理盐水、0.1%肾上腺素、0.1%异丙肾上腺素等。
三、实验方法1. 将20只豚鼠随机分为4组，每组5只，分别为正常组、低剂量组、中剂量组和高剂量组。
2. 每组豚鼠禁食12小时，自由饮水。
3. 实验前，将豚鼠处死，取出气管，置于生理盐水中备用。
4. 将气管剪成2cm长的条状，放入气管螺旋条装置中，加入适量生理盐水，调节温度为37℃。
5. 每组豚鼠分别给予以下药物：- 正常组：生理盐水0.1ml；- 低剂量组：五虎汤制剂0.1ml；- 中剂量组：五虎汤制剂0.2ml；- 高剂量组：五虎汤制剂0.4ml。
6. 在给药前和给药后5分钟，记录气管平滑肌的舒缩情况，包括收缩幅度和频率。
7. 给药后，将气管条放入含有0.1%肾上腺素和0.1%异丙肾上腺素的生理盐水中，观察气管平滑肌的舒缩情况。
四、实验结果1. 与正常组相比，低剂量组、中剂量组和高剂量组的气管平滑肌收缩幅度和频率均显著降低（P<0.05）。
2. 与低剂量组相比，中剂量组和高剂量组的气管平滑肌收缩幅度和频率降低更明显（P<0.01）。
3. 与生理盐水组相比，0.1%肾上腺素和0.1%异丙肾上腺素组的气管平滑肌收缩幅度和频率均显著增加（P<0.01）。
五、讨论1. 本实验结果表明，五虎汤中麻黄碱、甘草酸、甘草次酸、龙脑、松油醇、苯乙醇等6种活性成分对豚鼠离体气管平滑肌具有舒张作用，表明五虎汤具有平喘作用。
2. 与生理盐水组相比，低剂量组、中剂量组和高剂量组的气管平滑肌收缩幅度和频率降低，表明五虎汤中活性成分具有剂量依赖性。
灌胃
1.用块毛巾先盖住大鼠，然后包起它2.用棉手套或棉袜让它钻1.手套必须带，其实防咬作用不大，主要是为了避免污染。
所以我们一般棉麻手套外层还加一层PE手套。
2.对大鼠的手法咬尽量温柔，没有必要麻醉打时候非要把大鼠抓起来，有时候轻提起尾巴就可以进行腹腔注射。
3.对于需要固定后才能操作的大鼠，最好自己做一个固定笼子。
利用大鼠喜欢钻黑洞的习惯，用羽毛球桶等各种东西，制作一个自己好用都抓鼠用具，会给实验带来很多便利。
记住大鼠也是有脾气的，你越了解它手法越轻柔，越不容易被咬。
其实大鼠都是很温顺的,我们做的Wistar大鼠SPF级,我们觉得都是很单纯的动物啊,通常抓住尾巴轻提就可以打腹腔注射了,如果要做别的操作可以握住大鼠腰骶部就可以拿起来了,很乖的.我师妹有一种单手抓大鼠的方法,我觉得很好,就是戴一只帆布手套,整个抓住大鼠,从头颈直到背上,紧抓,也不会被咬到.总之,我觉得大鼠是很乖的,不过还是级别高的比较容易控制,要是普通级的还是要小心的,通常很燥狂,呵呵.就这些了,希望有用!其实大鼠并不是很凶。
你首先要对它温柔一些。
如果动作不是很熟练，最好戴上后的面部手套。
再用戴手套的手，抚摸一下大鼠，让它感觉到你对它很好。
然后非常迅速的用你的大拇指和食指尽量多的抓住大鼠后颈部的皮肤，一定要抓牢，这样它就不会回头咬人了。
当心不要将大鼠窒息死亡。
这个问题我有些体会，就是戴李宁牌棉手套，这个手套的手心面是反毛皮的，咬不透。
如果没有，可戴电工手套，这只是防护措施，再加上上面各位的指点，相信应该安全了。
首先,不要怕.第二,一定要带手套,我一般都是带两双.安全第一!!第三,动作要快,一下捉住它的腋窝,就可以啦看了兄弟们的回复，收获很多，我做老鼠实验也有近2年的时间了，期间没有发生过任何动物咬伤抓伤的事件。
总结起来主要有这么几点：1、一般SD大鼠还是性情很温和的，要抓它们的时候要尽量动作温和并且迅速：一般小心的从它们身后麻利地抓住鼠尾，提起，给予腹腔麻醉注射即可。
实验三经口急性毒性实验
掌握实验步骤
实验步骤
选取实验动物、准备受试物、分组、给药、观察并记录实验 数据。
实验步骤的意义
通过规范化的实验操作，确保实验结果的准确性和可靠性， 为后续的安全性评价和风险评估提供科学依据。
理解实验意义
实验意义
经口急性毒性实验是安全性评价的重要环节，有助于评估受试物的急性毒性作用和潜在风险，为新药 研发、化学品安全性评价等领域提供科学依据。
效性。
实验设计
根据实验目的和要求，设计合理的 实验方案，包括实验动物种类、数 量、分组、给药方式、剂量等。
实验人员培训
确保实验人员熟悉实验操作规程和 注意事项，具备相应的实验技能和 知识。
实验操作
给药
按照实验方案，采用适当的给药方式，给予实验 动物不同剂量的受试物。
观察
密切观察实验动物的生命体征、行为变化等，记 录实验数据和异常情况。
02
03
毒性反应
实验组动物体重增长较对照组慢。
实验组动物出现呼吸困难、抽搐、 瘫痪等毒性反应，对照组无异常。
结论总结
经口急性毒性实验表明，实验组动物 表现出明显的毒性反应和死亡，提示 该物质具有较高的急性毒性。
实验结果可用于评估该物质的急性毒 性风险，为进一步的安全性评价和风 险控制提供依据。
05
04
实验结果与分析
数据记录
实验动物
健康成年小白鼠，体重20-30g，雌雄各半。
给药方式
经口灌胃，给药剂量为10ml/kg。
观察指标
记录实验过程中动物的行为、体征、毒性反应等。
实验数据
记录各组动物死亡数、体重变化、毒性反应程度等。
结果分析
01
死亡情况
实验组动物死亡率为20%，对照 组无死亡。
大鼠灌胃给药方法的研究_冯雪建
大鼠灌胃给药方法的研究_冯雪建大鼠是实验室中常用的动物模型之一，被广泛应用于药物研发以及毒性测试等领域。
在大鼠实验中，常常需要进行给药实验，其中较常见的方法之一是灌胃给药。
本文将就大鼠灌胃给药方法的研究进行探讨。
首先，大鼠灌胃给药方法的选择需考虑多个因素，包括药物性质、给药剂量、给药时间等。
根据药物性质的不同，可以选择不同的给药溶剂和给药方案。
一般而言，水溶性药物可以使用生理盐水或葡萄糖溶液作为给药溶剂，而脂溶性药物则可以选择乳化剂或溶解剂。
给药剂量的选择应根据实验需要和药物的毒性确定，通常以毫克/千克体重或毫摩尔/千克体重为单位。
给药时间也需要根据实验设计来确定，例如可以选择单次给药或多次给药。
其次，大鼠灌胃给药方法的具体操作需要注意一些技巧。
首先，应将大鼠固定在操作台上，避免其动作干扰给药操作。
其次，需要选择合适的灌胃针或灌胃管。
一般来说，灌胃针较为简单易行，但对于灌输粘稠药物来说可能存在困难。
灌胃管则需要经过食道插入，操作相对复杂，但可以确保给药的准确性和稳定性。
在使用灌胃针或灌胃管进行给药时，需要将给药物质缓慢注入，避免过快引起窒息或呕吐。
最后，给药后需密切观察大鼠的反应，并记录相关的生理指标或行为变化。
另外，大鼠灌胃给药方法的研究还需要考虑给药途径的选择。
除了口服途径外，灌胃给药还可以选择胃管插入途径。
对于一些需要将药物直接送入胃部的实验，胃管插入途径可以保证给药的准确性和一致性。
但是，该方法需要一定的操作技巧并需要特殊设备的支持。
综上所述，大鼠灌胃给药方法的研究需要考虑多个因素，并在操作中注意一些技巧和安全措施。
只有在严格控制给药条件的情况下，才能确保给药结果的准确性和可靠性，为药物研发和毒性测试提供可靠的数据支持。
改良的豚鼠灌胃给药方法
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【中图 分 类 号】 Ｒ ３ ２ ３ 【 献 标 志 码】 Ａ 文
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综述：大鼠灌胃给药方法——修改版
综述：大鼠灌胃给药方法——修改版综述：实验大鼠灌胃给药方法简介徐意摘要:本文主要介绍了几种大鼠经口灌胃给药的方法。
并介绍各年龄段等方面大鼠（删）在灌胃中注意事项。
关键词:大鼠；灌胃；给药。
随着科学（医学）技术的发展,动物实验已成为医学实验研究的基本方法。
根据实验目的、实验动物的种类及药物剂量的不同,需对实验动物实施不同的给药方法。
经口灌胃给药方法是一种重要的给药途径。
[1]灌胃给药能够准确掌握给药剂量、控制给药时间,在营养学和药物学动物实验中有重要意义。
在此，作者根据操作经验，对各实验动物灌胃方法加以改良，并用于实验操作中，关于大鼠的灌胃方法介绍如下。
1 大鼠解剖生理特点: [2]SD大鼠与Wistar大鼠的解剖生理特点相似：①腔粘膜幼嫩，易受损伤引起出血。
②咽喉部神经反射较差，自我保护能力差。
药液溢出时极易呛入肺内而致死。
③管长，自口角至责门为5.5士0.5cm。
④解剖位置低，常达腹中部甚至腹下部。
胃的外形似蚕豆状，胃底部和幽门部均高于责门部。
责门括约肌紧张度较低，灌胃时药液易外溢。
⑤胃内容积为0.6士0.2ml，但胃内常常是积满汁液，压力较大，也是药液易于外溢的原因。
2 特制灌胃管的制作（与题无关）2.1软质灌胃器的制作选取临床用小儿头皮针(带针座)塑管一段。
放置60°C左右热水中浸泡2~3min，取出后迅速将其拉长，使该塑管变细，直径约为1mm。
剪取带针座的一段长约6cm，再将游离端磨光滑即成。
最后连干注射器上备用。
2.2硬质灌胃器的制作取12号普通注射针头，首先用粗锉刀把针头锉掉,然后用细锉刀把锉掉部位锉平、锉光、再用沙纸磨平。
加工成有一定弧度,针体长约5 cm并连接1 ml注射器,即成大鼠灌胃器。
灌胃时在针头处套上长2 cm 硅胶管,比针头稍微长0.1 cm,太长容易被动物咬掉。
以防灌胃时损伤动物食道。
另外在锉针头时或加工弧度时用力要均匀,否则就会把针管弄扁,以影响通畅。
3 大鼠(固定)保定操作[1~3] （文献要标注到具体的位置）3.1清醒大鼠的保定大鼠在未受到强烈刺激情况下性情虽较温顺,但捕捉时也要提防被其咬伤或抓伤手指,因此需要戴手套捕捉。
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
一．经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，就是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内得·种常用给药法。
1．鼠类：鼠类得灌胃器由特殊得灌胃针构成.左手固定鼠,右手持灌胃器，将灌胃针从鼠得右U角中,插入口中,沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置,灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。
2.兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行.先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。
然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器得小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管就是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水得烧杯中，若无气泡产生,表明灌胃管被正确插入胃中,未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液.(二）口服法口服给药就是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取.此法优点就是简单方便,缺点就是剂量不能保证准确,且动物个体间服药量差异较大。
大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高,使其自然吞咽.二、注射给药法（一）皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松得部位,大鼠、小鼠与豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射;家兔可在背部或耳根部作皮卜注射;猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。
皮下注射用左手拇指与食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器,使针头水平刺入皮下。
推送药液时注射部位隆起。
拨针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。
（二）肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过得部位。
大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁得肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射.注射时针头宜斜刺迅速人肌肉,回抽针栓如无回血，即可注射。
（三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时,以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿4５角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液,即可注入药液。
不同经口给药方式对 SD 大鼠生长的影响
中啮齿 类 动物 亚慢 性 （ ９ ０ ｄ ） 经 口毒 性试 验进 行 。 灌 胃组 根 据 大 鼠体 重 （ 每 周 调 整 一 次 胃量 ） 给 予 蒸 馏水 灌 胃 ，每周 灌 胃 ５ ｄ ，连续 １ ３周 ；喂 饲组 给
接近人类接触方式 ，但受试物掺入量 、适 口性 、异 味 等 因素影 响动 物进食 ，从 而影 响人们 对受 试 物毒
温度 ２ Ｏ～２ ６ ℃ ，相 对 湿 度 ４ ０ ％ 一７ ０ ％ ，人 工 照 明 ，１ ２ ｈ光照 和 １ ２ ｈ 无 光 照交替 ，每小 时 １ ２次室 内空 气更 新 。实验 动物 试验 前在 动物 房环境 中适 应
７ ｄ。
１ ． ２ 实验 方 法
参照 《 化 学 品测 试 方 法 》
浙江 预 防医学
２ ０ １ ４年 ８ 月第 ２ ６卷第 ８期
Ｚ ｈ ￣ ｉ ａ ｎ ｇ Ｐ ｒ ｅ ｙ Ｍ ｅ ｄ ， Ａ ｕ ｇ ． ２ ０ １ ４ ， Ｖ ｏ ｌ ２ ６ ， Ｎ ｏ ． ８
・
实验技术与质控 ・
不 同经 口给药 方 式 对 Ｓ Ｄ大 鼠生 长 的影 响
洪雅青，顾刘金 ，黄雅丽，徐娟 ，黎关龙 ，朱勇，陈炜，张芳芳，陈琼姜 ，陶核
文 献 标 识 码 ：Ｂ 文章 编 号 ：１ ０ ０ ７— ０ ９ ３ １（ ２ ０ １ ４ ）０ ８— ０ ８ ６ １ — ０ ４
关键词 ：给药方式 ；大 鼠体重 ；亚慢性 毒性 ；Ｓ Ｄ大 鼠
中 图分 类 号 ：Ｒ １ １ ３
检 测 外来 化学 物 的毒性 作用 时 ，首先 要确 定染 毒 途径 。一般应 尽 量模 拟人 类接 触受 试化 学物 的方 式 … 。在化 学 品 安 全 性 评 价 中常 用 的 经 口给 药 方 法 有灌 胃法和 喂饲 法 。喂饲 法是 指将 受试 物混 入饲 料 或溶 于饮 水 中染 毒 ；而灌 胃法 即使 用灌 胃器 ，将 药 液 由动物 口直 接 注入 到动 物 胃中 。喂饲 和灌 胃这 两 种方 式各 有优 缺点 ，灌 胃给药量 准 确 、影 响 因素 较小 ，但工 作量 大并 易造 成动 物意 外死 亡 ；喂饲 法
乳大鼠灌胃给药方法之改进
乳大鼠灌胃给药方法之改进
范志刚;于晓凤
【期刊名称】《中国药理学通报》
【年(卷),期】1994(10)6
【摘要】乳大鼠灌胃给药方法之改进范志刚，于晓凤，张芙翠，曲绍春，吕怡芳（白求恩医科大学药理教研室，长春１３００２１）近年来，乳大鼠在医药学科研工作中，尤其是在药物对动物生长发育的影响研究中的应用越来越多。
而有关这种乳大鼠的解剖生理及灌胃方法的介绍甚少。
过去多...
【总页数】1页(P470)
【作者】范志刚;于晓凤
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】R965.2
【相关文献】
1.大鼠及小鼠灌胃给药操作方法探讨 [J], 戴支凯
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大鼠及豚鼠经口灌胃方法的改进
发布者：谭军, 蔡磊明, 张亚楠发布时间：2005-11-3 13:50:00
内容摘要
大鼠及豚鼠经口灌胃方法的改进
谭军, 蔡磊明, 张亚楠
（国家沈阳新药安全评价中心, 沈阳110021）
摘要：报道大鼠及豚鼠经口灌胃方法的技术革新，该方法与常规灌胃方法比较，在某些操作细节上做以改进，获得了良好的效果。
关键词：大鼠及豚鼠；经口灌胃；新方法
The Method Improving On Gavage Using A Stomach Tube To Rat or Guinea Pig
TAN Jun,
正文
文字大小：大中小
CAI Lei-Ming , ZHANG Ya-Nan
(National research center for new drug safty evaluation, Shenyang 110021，China)
Abstract: This article reports the betterment method of gavage using a stomach tube or a suitable intubation cannula to rat and guinea pig . Comparison with routine means, some operation details are improved in the new one in order to achieves better results.
Key words: rat and guinea pig; gavage; A improving method
经消化道染毒是毒理学实验中常用的染毒方法之一。
适用于某些可能随被污染的手、饮水及食物消化道吸收的化学物质进行毒性研究时采用。
经消化道染毒的实验方法主要有两种，一为灌胃法，二为喂饲法。
灌胃法,染毒剂量能够准确掌握，操作也不复杂, 所以在毒理学领域内广为应用。
应用常规的灌胃方法，尤其是对大鼠和豚鼠的灌胃，步骤虽不复杂，但费劲，耗时，并且动物易紧张。
所以，作者依据在长期工作中积累的大量经验，对大鼠及豚鼠的常规灌胃方法做了改进，使得试验简便省力，并且灌胃效率显著提高。
1 材料与方法
1.1 注射器及针头与常规方法取材相同
1.2 支撑台面鼠笼盖或其他惰性台面
1.3 方法将动物放置鼠笼盖或其他惰性台面，用左手拇指和食指抓住动物双耳及头部皮肤，将头部提起向右上倾，使动物口腔朝上，前肢抬起，后肢接触台面，这样，动物就轻松平稳的控制于两手指间。
右手持注射器，将针头由动物口腔侧面插入，避开牙齿，在喉咙处给药即可。
2 结果与讨论
2.1 简便省力大鼠和豚鼠常规灌胃方法中，用左手抓住动物两耳后至背部的皮肤，掌心紧握颈背部，将整个动物提起。
如果所需灌胃动物数量较多，左手就会感到酸麻疼痛，而新方法，只需两个手指就可完成动物抓握任务，并且动物重心在支撑台面上，故简便省力,尤其是在亚慢性或慢性试验中，随试验时间的增长，动物体重逐渐增大，使用新方法更显其优势。
2.2 提高试验效率常规方法要将动物固定成垂直体位，尤其要注意使动物的口、咽、颈椎、胸椎等固定成一直线，以保证上消化道不弯曲，掌心紧握颈背部才可
灌胃。
灌胃时，将针头沿咽后壁缓缓滑入食管，若遇阻力，要轻轻上下滑动探索，一旦感觉阻力消失，才可深入至胃部。
如遇动物挣扎，应停止进针或将针拔出，不可强行插入，否则会损伤或穿破食管，甚至误入气管，导致动物立即死亡。
方法改进后，针头无须滑入食管，在喉咙处，即可给药，所以节省大量时间，提高了实验效率。
2.3 提高试验准确度在致畸试验中，由于常规方法需将动物提起，掌心紧握颈背部皮肤才可控制动物，而此行为很容易造成孕鼠人为因素的流产，对试验结果产生干扰，应用新方法，就会降低该干扰因素的出现频率.
2.4动物不易紧张由于常规方法是将整个动物提起，故动物容易紧张，常发出迁怒声，方法改进后，仅用两个手指控制动物，并且其重心在支撑台面上，故不易紧张，不迁怒。
2.5 注射器免受污染不起“刺” 由于常规方法需先用右手系住鼠尾，尾部脏物不可避免的要粘在手指上，既而再用右手推拉注射器，很容易污染推进杆，致使其堵塞，从而被迫清洗。
新方法无须右手系尾，污染得以避免。
参考文献
【1】李寿祺主编. 毒理学原理与方法. 成都：四川大学出版社, 2003.1
【2】湖南医学院卫生学教研组编. 卫生毒理实验方法人民卫生出版社, 1979.4 第一作者介绍谭军，女(1954-)，大专，工程师；研究方向：遗传毒理；
E-mail:kelefang527@。