精子形态学快速染色液(Diff-Quik法)
不同染色方法对精子形态学评估的影响
ｓｅｍ ｍ ｒｈ ｌ ｙｉｄｘ（Ｚ ）ｔｅｓｅｍ ｄｆｒ ｉ ｄｘ（Ｄ ） ｎ Ｏｏ ｅｅｒｃＭｅ ． ｅ ｕｔ： ｈ ｒ ｗ ｓｎ ｐ ｒ ｏｐ ｏ ｇ ｅ Ｔ Ｉ ｈ ｐ ｒ ｅ ｍ ｔ ｉ ｅ Ｓ Ｉ ａｄ Ｓ ｎｗ ｒ ｅｏ ｄ Ｒ ｓ ｌ Ｔ ｅｅ ａ ｏ ｏ ｎ ， ｏ ｙｎ ｓ ｓ ｎｆ ａ ｔ ｉｅｅ ｃ ｉ ｉｃｎ ｄｆ ｒｎ ｅ ｇｉ ｆ ＞ ． ） ｓｅｍ ｏｐ ｏ ｇａｓｓｍｅｔ ｅ ｅｎ ｉ — ｕｋ ｔｉｉｇ ｎ ｍｏ ｉｅ ００ ｉ ｐ ｒ ｍ ｒｈ ｌ ｙ ｓｅｓ ｎ ｂ ｔ ｅ Ｄ ｆ Ｑ ｉ ｓ ｎｎ ａ ｄ ５ｎ ｏ ｗ ａ ｄｆ ｄ ｉ Ｐ ｐ ｎｃｌｏ ｔｉｉｇ ｏ ｃｕ ｉ ：ｈ ｅｕｔ ｏ ｉ － ｕｋ ｓ ｉｉｇ ａ ｄ ｍ ｄｆ ｄ Ｐ ｐ ｎｃｌｏ ｔｉｉｇ ａｅ ａ ａ ｉｏ ｕ ｓ ｎｎ ．Ｃ ｎ ｌｓｏ Ｔ ｅ ｒｓｌ ｆＤｆ Ｑ ｉ ｔ ｎｎ ｎ ｏ ｉｅ ａ ａ ｉ ａｕ ｓ ｎｎ ｒ ａ ａ ｎ ｓ ａ ｉ ｏ ａ
两 张 ． 用 Ｄｉ－ ｉ 色法 及 改 良巴 氏染 色 法 分别 进 行 染 色 ， 利 ｆ Ｑｕ ｋ染 并记 录 同一 标 本 不 同染 色 方 法 其 正 常 精 子 百 分 率 、 部缺 陷 精 子 头 百分 率、 颈部 和 中段 缺 陷 精 子 百 分 率 、 部缺 陷 精 子 百 分 率 、 形 精 子形 态 指 数 （ ｚ ）精 子 畸 形 指 数 （ＤＩ等 。 结 果 ： ｆ Ｑｕｋ 尾 畸 Ｔ Ｉ、 ｓ ） Ｄｉ－ ｉ
精子DNA碎片率及顶体酶活性对男性不育的诊断价值
健康域公卫引言男性不育是高发于男性群体的生殖系统疾病，是指夫妻生活正常，且无避孕措施，因男性因素造成不育症状。
其致病因素与性病史、吸烟饮酒和环境污染有关,多需要通过精液质量检测诊断该病，而后开展针对性治疗[1]。
DFI （DNA 碎片指数）是精液质量的常用诊断指标，可以评估疾病程度。
顶体酶活性可以判断精子活性，其指数降低则精子具有较差的穿越力，进而降低精子质量。
现阶段，以上两项指标是男性不育的常规诊断指标，便于疾病的早期治疗。
为此，本研究选取1727例男性筛查者，分析以上两项指标的诊断效果。
1资料与方法1.1一般资料选择2016年6月~2021年12月入院诊断的1727例男性筛查者，其中男性不育患者481例。
根据DFI 分组，一组306例，不育时长为9个月~3年，平均（1.24±0.48）年。
二组113例，不育时长为10个月~3年，平均（1.30±0.44）年。
三组35例，不育时长为11个月~4年，平均（1.30±0.34）年。
四组27例，不育时长为8个月~4年，平均（1.51±0.33）年。
根据顶体酶活性分组，≤48.2U/106为27例，不育时长为8个月~3年，平均（1.17±0.66）年；＞48.2U/106为416例，不育时长为10个月~4年，平均（1.21±0.69）年。
经假设检验并无差异，＞0.05。
1.2方法根据精液检查与处理实验室手册对精液进行常规检测，用改良的牛鲍氏计数板测量精液密度，采取手工法计数。
用快速染色法（Diff-Quik ）测定精子形态学特点，正常形态4%为参考值的具体下限。
所有操作人员经过系统化培训以后上岗，具备熟练的操作能力。
顶体酶活性检测采取顶体酶试剂盒，根据改良后的Kennedy 法实施检测，将精液标本混匀以后进行计数操作，使每个反应管内部的精子个数大概是7.5×106个，对各个标本设置对照以及反应管，然后添加反应液以及抑制剂。
不同染色方法对精子形态学评估的影响
不同染色方法对精子形态学评估的影响张红斌;毛熙光;陈绍威;梁冠男;黄桂英;王芳【期刊名称】《泸州医学院学报》【年(卷),期】2012(35)2【摘要】目的:探讨Diff-Quik染色法及改良巴氏染色法对精子形态学评估的异同性及相关性.方法:对80例标本分别涂片两张,利用Diff-Quik染色法及改良巴氏染色法分别进行染色,并记录同一标本不同染色方法其正常精子百分率、头部缺陷精子百分率、颈部和中段缺陷精子百分率、尾部缺陷精子百分率、畸形精子形态指数(TZI)、精子畸形指数(SDI)等.结果:Diff-Quik 染色法及改良巴氏染色法在精子形态评估中,正常形态率、各种类型的缺陷率(头部、颈部与中段、尾部)、畸形精子指数、精子畸形指数等均无统计学意义(P＞0.05).结论:Diff-Quik染色法及改良巴氏染色法在精子形态评估中具有较为一致的结果；改良巴氏染色法虽经典,但过于繁琐；在病人多且急需出具精子形态学检验报告的情况下,可以考虑使用Diff-Quik染色法作为精子形态评估染色方法.【总页数】3页(P148-150)【作者】张红斌;毛熙光;陈绍威;梁冠男;黄桂英;王芳【作者单位】泸州医学院附属医院人类辅助生殖医学技术部,四川泸州646000;泸州医学院附属医院人类辅助生殖医学技术部,四川泸州646000;泸州医学院附属医院人类辅助生殖医学技术部,四川泸州646000;泸州医学院附属医院医学实验中心,四川泸州646000;泸州医学院附属医院人类辅助生殖医学技术部,四川泸州646000;泸州医学院附属医院人类辅助生殖医学技术部,四川泸州646000【正文语种】中文【中图分类】R698.2【相关文献】1.2种染色方法用于精子细胞形态学分析的效果比较 [J], 邓云;吕健忠2.精子形态学分析中染色方法的对比分析 [J], 李林;吴励梅;罗一平;李彩英;徐妙容3.精子形态学分析中染色方法的比较 [J], 高久春;王瑞雪;许宗革;郑海筝;刘媛;刘睿智4.四种酶处理液化异常精液对精子形态学影响的评估 [J], 王世君; 彭晓枫; 张梅5.应用严格精子形态学测定法评估精子形态对体外受精率的影响 [J], 崔险峰因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
diffquik染色原理
diffquik染色原理Diff-Quik染色原理引言Diff-Quik染色技术，又称为Wright染色法，是一种常用的细胞核和细胞质染色方法，广泛应用于临床实验室和病理学领域。
本文将介绍Diff-Quik染色的原理、步骤和应用。
一、Diff-Quik染色的原理Diff-Quik染色法主要通过染色剂的作用，使细胞核和细胞质的结构显现出不同的颜色，从而达到对细胞形态和组织结构的观察和分析的目的。
Diff-Quik染色原理主要包括三个方面的作用：核染色、胞质染色和胶原纤维染色。
1. 核染色：Diff-Quik染色使用的核染色剂是由甲苯胺、甲苯胺盐酸盐和蓝色染料组成的溶液。
这种染料有亲核性，能与细胞核内的DNA结合，使细胞核呈现出蓝色。
2. 胞质染色：Diff-Quik染色使用的胞质染色剂是由碱性染料组成的溶液。
这种染料能与胞质内的蛋白质结合，使胞质呈现出粉红色。
3. 胶原纤维染色：Diff-Quik染色还能染色胶原纤维，使其呈现出红色。
这是因为Diff-Quik染色剂中的胶原纤维染色剂能与胶原纤维结合，使其呈现出红色。
二、Diff-Quik染色的步骤Diff-Quik染色的步骤相对简单，一般包括以下几个步骤：固定、染色、洗涤、脱水、透明化和覆盖。
1. 固定：将待染色的细胞固定在载玻片上，常用的固定剂有甲醛和乙醇等。
固定的目的是保持细胞形态和结构的完整性，使细胞不发生变形。
2. 染色：将Diff-Quik染色剂均匀地滴于待染色细胞上，让染色剂充分渗透到细胞内。
染色剂的作用是使细胞核染色为蓝色，胞质染色为粉红色，胶原纤维染色为红色。
3. 洗涤：用蒸馏水或生理盐水轻轻地冲洗载玻片，以去除多余的染色剂。
4. 脱水：将载玻片放入不同浓度的乙醇溶液中，逐渐提高乙醇浓度，以使细胞内的水分逐渐被乙醇取代。
5. 透明化：将载玻片浸入透明剂（如苯胺、苯酚醛等）中，使细胞透明，以便观察。
6. 覆盖：用显微镜盖玻片将载玻片覆盖，以保护样本并方便观察。
精子形态学分析
《WHO5》2010版 南京军区南京总医院
戈一峰
1 本课件精子染色均采用 Diff-Quik染色
戈一峰，男，1973年3月出生，中共党员，副主任 医师、副教授，江苏省青年联合会第十、十一届委 员会委员，医疗卫生界别秘书。现就职于南京军区 南京总医院生殖医学中心，从事生殖遗传学的实验 室和临床诊疗工作，在辅助生育和习惯性流产的免 疫治疗等方面具有专长，2004年11月-2005年7月 参加联合国驻利比里亚特派团维和军事行动，2010 年1月参加中国人民解放军赴海地地震救援行动， 历年在国内外核心学术期刊上以第一著者发表论文 十多篇，参编学术专著12部。
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附录
正常形态精子
通过观察来自受孕女性生殖道，特别是 经性交后试验从宫颈粘液或从卵子透明带表 面回收的精子有助于定义具备潜在受精能力 的精子。 使用这些标准，对所有男性而言，其正常形 态精子百分率的范围大致为0-30%，很少超 过25% 。 这个低数据自然产生一个低的临界值 （仅为3-5%）。 经过“透明带选择”的精子，正常形态率仍 然低，约8-25%。
比１.３～１.８ µm ，顶体区４０％～７０％，不超过２个小空泡。 空泡大小〈２０％，顶体后区冰含任何空泡。
中段：细长、规则，长度３ .３～５ .２ µm ，大约与头部长度相等，
主轴与头部主轴成一直线，宽度０ .５～０ .７ µm ，残留胞质〈头的 １／３。 尾部：比中段细，均一，长约４５（均为头部长度的１０倍），没有锐 利折角，可以自身卷曲呈环状。
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精子中段与主段的分析参数
中段应该细长、规则，大约与头部长度相等。中段主轴应与头部长 轴成一条直线。
残留胞浆只有在过量时才被认为是异常的，即胞浆超过了精子头大
精子形态学染色液(shorr法)使用说明书
精子形态学染色液（shorr法）使用说明书货号：G2570规格：3×20ml/3×100ml保存：室温，避光，12个月。
试剂盒组成：名称3×20ml3×100ml Storage试剂A：猩红橙黄染色液20ml100ml RT，避光试剂B：媒染液20ml100ml RT，避光试剂C：固绿染色液20ml100ml RT，避光产品简介：WHO推荐的精子形态的评估方法有巴氏染色法、Shorr染色法和Diff-Quik染色法。
精子形态学染色液（shorr法）染色原理与巴氏染色法相似，因精子及细胞内不同等电点的蛋白质在相同的酸度下带不同的电荷，能选择性地结合相应的染料而着色。
胞核由酸性物质组成，它与碱性染料的亲和力较强；而胞浆则相反，它含有碱性物质和酸性染料的亲和力较大。
特别适用于精子的染色，亦可用于胸水、腹水、痰液等细胞样本的染色。
操作步骤（仅供参考）：1.细胞涂片用95%乙醇-冰乙酸（3:1）固定液固定10-15min。
2.80%、70%、50%的乙醇分别浸泡1min。
3.蒸馏水或自来水浸泡或冲洗1min。
4.苏木素染色液染色3-5min。
自来水冲洗2min。
5.（可选）0.5%的盐酸乙醇分化液分化4-5s。
自来水冲洗2min。
6.蓝化液中蓝化4min。
7.自来水冲洗2min。
8.用猩红橙黄染色液染色1-2min。
9.蒸馏水速洗，然后入媒染液处理1-2min。
10.入固绿染色液染色4min。
11.直接用1%冰醋酸分化30s。
12.水洗，然后经50%、70%、80%、95%、无水乙醇脱水。
13.二甲苯透明，中性树胶封片。
染色结果：精子头部的顶体区淡蓝色顶体后区深蓝色中段略呈红色尾部蓝色或淡红色通常位于头部下部或围绕中段的过量残留胞浆染成橘红色。
注意事项：1.所有染液均需过滤，需经常更换染液。
2.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
[汇编]精子形态学分析
![[汇编]精子形态学分析](https://img.taocdn.com/s3/m/1e59a21853ea551810a6f524ccbff121dd36c50f.png)
精子形态学分析正常形态精子百分率是评价精子受精能力的重要指标之一。
目前，用于精子形态学分析的染色方法有：改良巴氏染色法、苏木精-伊红（HE）染色法、瑞氏染色法、瑞-吉氏染色法、Diff-Quik染色法和Shorr染色法。
1 涂片的制备一般用新鲜的液化精液或生理盐水洗涤过的精子悬液进行涂片，通常每份标本涂双份片子，以备染色或操作出问题。
载玻片应洁净，可用70%酒精洗涤并干燥后使用；涂片的厚薄应根据精子密度而定，精子密度高者涂片应薄些，而精子密度低者涂片应尽可能厚些。
涂片的方法有多种，WHO推荐的方法有拉薄技术和滴管法，拉薄技术即用另一张载玻片的边缘拖拉载玻片上的一滴精液；滴管法即水平持滴管使一滴精液沿载玻片的表面展开。
由于精液有一定粘稠度，这两种方法都很难涂成均匀的涂片。
可建议用以下方法涂片：用滴管将一滴精液置于载玻片上，然后从液滴中央向周围循环吸净多余的精液，注意滴管的头要平整，滴管与载玻片垂直，缓慢吸去多余的液体。
低密度、粘稠的、或充满碎屑的标本，建议先离心去除精浆，沉淀的精子团重新悬浮在适当体积中，以获得尽可能高的密度，但不应超过80×106/ml。
正常精子密度且液化良好的精液标本亦可以洗涤后用精子悬液进行涂片，但离心操作对精子形态分析有无影响，尚需要进一步验证。
精子涂片可进行空气干燥并固定。
固定程序取决于染色方法。
2 改良巴氏染色法这是WHO手册推荐的方法。
它可以使精子和其他细胞很好地染色，可使精子头部的顶体和顶体后区、胞浆小滴、中段和尾部着色。
染液中的俾士麦棕为盐基性染料，伊红、亮绿、橙黄等为酸性染料，能与细胞中具有相反电荷的蛋白质结合，而染成各种不同的颜色，从而能清楚地区分各种细胞成分。
以往用巴氏染色法进行染色时，操作步骤繁琐，目前已有改良的单一的巴氏染色液出售，操作非常简单，只需在自然干燥的精子涂片上滴加1~2滴巴氏染液，染15分钟即可。
流水冲洗后自然晾干，显微镜油镜下观察精子形态。
迪夫快速染色的方法
迪夫快速染色试剂盒
(Diff-Quik Stain)
货号：BB-44665
试剂盒储存条件： 室温避光保存。
试剂瓶开盖后各组份按要求条件保存。
试剂盒组成：
产品组份 试剂 A：Diff 固定液 试剂 B：Diff 快速染色液 I 试剂 C：Diff 快速染色液 II
使用说明书 各组份储存条件：
染色结果： 细胞核和白细胞染成深蓝色； 基质和淋巴细胞染成紫色； 细胞质和红细胞染成粉红色。
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产品说明书
注意事项： ● 螺旋盖微量试剂管装的试剂在开盖前请短暂离心，将盖和管内壁上的液体离心至管 底，避免开盖时试剂损失。 ● 禁止与其他品牌的试剂混用，否则会影响使用效果。 ● 样品或试剂被细菌或真菌污染或试剂交叉污染可能会导致错误的结果。 ● 最好使用一次性吸头、管、瓶或玻璃器皿，可重复使用的玻璃器皿必须在使用前清 洗并彻底清除残留清洁剂。 ● 实验后完成后所有样品及接触过的器皿应按照规定程序处理。
产品号 BB-4101 BB-4102 BB-4201 BB-4202 BB-4203 BB-4204 BB-4131 BB-4133 BB-4122
产品 细胞周期检测试剂盒 JC-1 线粒体膜电位试剂盒 Caspase 3 活性检测试剂盒 Caspase 8 活性检测试剂盒 Caspase 9 活性检测试剂盒 Caspase 10 活性检测试剂盒 细胞凋亡形态学检测试剂盒 Rhodamine 123 染色试剂盒 AO/EB 双染试剂盒
who中对 diff-quik法的描述
Diff-Quik法是一种用于细胞涂片染色的快速染色技术。
它起源于20世纪70年代，由希腊的科学家吉奥尔格斯·帕帕尼科拉乌设计，并于1973年首次发表。
该技术在临床诊断中广泛应用，尤其是在细胞学和病理学领域。
Diff-Quik法的原理是利用两种染料，分别叫做Wright-Giemsa和Diff-Quik，对细胞核和胞质进行染色。
Wright-Giemsa染料可以将细胞核染成蓝紫色，而Diff-Quik染料则可以将细胞胞质染成粉红色。
通过双重染色，可以清晰地观察细胞的形态和结构，有助于医生快速准确地进行疾病诊断。
Diff-Quik法的操作步骤如下：1. 准备细胞涂片：首先需要从患者身上采集样本，例如血液、尿液、骨髓等，然后将样本制备成细胞涂片，使细胞均匀分布在载玻片上。
2. 固定和干燥：将细胞涂片进行固定和干燥处理，以保持细胞形态的完整性和稳定性。
3. 染色处理：将涂片依次在Wright-Giemsa染料和Diff-Quik染料中浸泡，使细胞核和胞质均匀染色。
4. 清洗和干燥：将染色后的涂片进行清洗除去多余染料，然后进行干燥处理，使涂片干燥。
5. 观察和分析：最后将干燥好的细胞涂片放置在显微镜下观察，医生可以通过放大镜头观察细胞的形态、结构和染色情况，并做出相应的诊断。
Diff-Quik法的优点在于操作简便、快速方便，对细胞形态的保留和染色效果都非常理想。
它可以在短时间内完成细胞观察和分析，特别适用于临床医生需要迅速做出诊断的情况，有助于提高疾病的早期诊断率和治疗效果。
Diff-Quik法在临床诊断中得到了广泛的应用和推广。
然而，虽然Diff-Quik法具有诸多优点，但也存在一些局限性。
由于Wright-Giemsa和Diff-Quik染料的特殊性，某些特定的物质或结构可能会对染色结果产生影响，因此在某些情况下可能需要结合其他检测方法进行综合分析。
由于细胞染色过程中需要严格控制时间和染料浓度等因素，操作者需要具备一定的技术经验和专业知识，否则可能会影响染色效果和诊断结果的准确性。
diff-quick染色原理
diff-quick染色原理
Diff-Quick染色法是一种常用的细胞染色方法，主要用于快速染色分析和观察细胞形态结构。
它的染色原理是基于细胞成分的亲合、亲水性差异以及细胞结构的亲水性差异。
Diff-Quick染色的主要步骤包括：1. 细胞固定：将要研究的细胞固定在载玻片上，一般使用酒精或甲醛进行固定。
2. 快速染色：将固定的细胞放入染色液中，Diff-Quick染色液由甲醇、染液1和染液2组成。
在这个过程中，染液1主要起到了碱性染色剂的作用，尤其是双碱性染色剂，它们可以染色细胞核和DNA；染液2含有酸性染色剂，可以染色细胞浆和细胞质。
3. 脱水：经过染色后，将载玻片中的细胞样品通过一系列的酒精浓度逐渐脱水。
4. 封片：将脱水后的载玻片用明胶封装并加盖玻片，使细胞样品得以保存。
Diff-Quick 染色法能够清晰显示细胞核、细胞浆和细胞质等细胞组成成分的形态结构。
通过观察不同染色深浅和颜色的变化，可以识别和分析细胞的变化、异常以及病理性的改变，从而帮助进行细胞学诊断和研究。
diffquik染色原理
diffquik染色原理Diff-Quik染色原理引言Diff-Quik是一种常用的染色技术，主要用于细胞学和组织学研究中的涂片染色。
该技术通过使用一系列染色试剂，将细胞核和细胞质染色成不同的颜色，从而使细胞结构更加清晰可见。
本文将介绍Diff-Quik染色的原理及其应用。
一、Diff-Quik染色原理Diff-Quik染色的原理基于细胞的酸碱性差异以及细胞结构的吸附性能。
具体步骤如下：1. 涂片固定：将待染色的细胞涂片经过适当的固定处理，固定细胞的形态和结构，防止其在染色过程中发生变形或破损。
2. 染色试剂：将涂片依次浸入三种染色试剂中，分别为嗜酸性染色剂、嗜碱性染色剂和背景染色剂。
嗜酸性染色剂主要染色细胞核，嗜碱性染色剂主要染色细胞质，背景染色剂则用于清晰显示细胞间的背景。
3. 染色时间控制：不同染色试剂的浸染时间需要控制得当，以保证染色效果的最佳表现。
一般来说，嗜酸性染色剂和嗜碱性染色剂的浸染时间较短，而背景染色剂的浸染时间较长。
4. 脱色：经过染色后，涂片需要进行脱色处理，以去除多余的染色试剂，使细胞结构更加清晰可见。
5. 封片：染色完成后，用透明的封片剂将涂片封装，以保护细胞结构并固定染色效果。
二、Diff-Quik染色的应用Diff-Quik染色技术广泛应用于细胞学和组织学研究中，具体包括以下几个方面：1. 细胞分类与计数：Diff-Quik染色可以使细胞的核和细胞质呈现出不同的颜色，便于观察和分类。
通过对染色后的细胞进行计数，可以获得细胞数量的信息，用于疾病的诊断和治疗。
2. 细胞形态分析：Diff-Quik染色后的细胞结构清晰可见，可以观察到细胞的形态特征，如核的形状、大小和细胞质的颜色等。
这些信息有助于研究细胞的发育、功能和病理变化。
3. 细胞核和细胞质的比例计算：通过Diff-Quik染色，可以定量计算细胞核和细胞质的比例，从而了解细胞的代谢状态和细胞功能的变化。
4. 细胞核的DNA含量分析：Diff-Quik染色后，细胞核的颜色深浅与细胞核内的DNA含量呈正相关。
who中对 diff-quik法的描述 -回复
who中对diff-quik法的描述-回复Diff-Quik（也称为Diff临时染色法或Giemsa染色法）是一种常用的涂片染色方法，它用于在临床实验室和病理学领域中快速和可靠地诊断和鉴定细胞形态学特征。
该方法通过使用一系列染色剂，可以使细胞结构和形态更清晰可见。
以下将详细介绍Diff-Quik染色法的步骤和原理。
首先，我们需要准备样本涂片。
通常，我们会采集到骨髓、血液、腺体分泌物、淋巴组织等含有细胞的样本。
将样本涂片制备到玻片上，并在空气中晾干。
接下来，我们需要准备Diff-Quik染色盒，其中包括三种染色液：染色剂1（肉桂剂）、染色剂2（甲基蓝剂）和染色剂3（胡尔氏液）。
这些染色剂是根据酸性和碱性染色剂的组合配制而成的。
进一步，我们将样本涂片分别浸入染色剂1、染色剂2和染色剂3中，每次浸泡时间均为10-30秒。
染色剂1主要具有优秀的强染性和对细胞核染色的能力，它将核染上肉桂色素，使其呈现出红色到白色。
染色剂2具有嗜酸性，可以将细胞质染成蓝色。
染色剂3为酸性补偿剂，可以中和之前使用的染色剂1和染色剂2，以确保正确的染色结果。
完成染色后，我们需要用洗涤液（例如蒸馏水或纯水）将涂片清洗干净，以去除多余的染色剂。
最后，我们将涂片放置在载玻片上，并在显微镜下观察细胞的形态学特征。
通过观察染色后的细胞核染色和细胞质染色的变化，可以获得关于细胞类型、形态和病理特征的信息。
Diff-Quik染色法的原理是利用染色剂的亲和性选择性地染色不同细胞组分。
酸性染色液染色剂1具有针对核酸的亲和性，其与DNA和RNA结合形成肉桂色素，使细胞核显现出红色到白色。
碱性染色液染色剂2则针对嗜酸性蛋白和某些细胞器质，在细胞质中形成蓝色染色。
酸性染色液染色剂3主要是为了中和前两个染色步骤中使用的酸性、碱性染料，从而确保适当的染色平衡。
Diff-Quik染色法具有许多优点。
首先，它是一种快速而简便的方法，可以在几分钟内提供可靠的结果。
who中对 diff-quik法的描述
who中对diff-quik法的描述Diff-Quik法（即快速涂片法）是一种用于染色细胞和细胞组织的常用方法。
该方法广泛应用于临床和实验室环境中，常用于对涂片制备的细胞和组织进行快速染色。
Diff-Quik法通常用于鉴定细胞的形态特征、分类和评估细胞的功能状态。
Diff-Quik法能够快速的染色细胞和组织，常常用于血液细胞学、骨髓学、涂片或脱落细胞学和组织学病理学等领域。
该方法的主要优势是染色速度快，结果清晰可见，且操作简单快捷。
Diff-Quik法的主要原理是通过使用特定的酸碱性染料来染色细胞和组织。
其中最常用的是由尼尔斯·罗曼（Niels Roman）于1969年发现的巴尼色（panol-A），该染料对细胞和组织具有较好的亲和性，可以准确地染色细胞的核和细胞质。
此外，Diff-Quik法中还包括一些辅助染料，如酸性染料和碱性染料，用于增强染色效果和改善细胞结构的可视化。
Diff-Quik法的操作步骤相对简单，可以在几分钟内完成。
首先，需要将准备好的细胞或组织样本制备成涂片，常用的方法包括涂片离心法、涂片离心法和涂片抹匀法等。
制备好的涂片需要先进行固定处理，以保持细胞和组织的形态。
接下来，将涂片浸入每种染料液中，每种染料应保持一定的时间。
在每种染料液中的时间可以根据具体要求进行调整。
然后，涂片需要进行冲洗和干燥处理，以去除多余的染料和水分。
最后，使用显微镜观察涂片，进行细胞和组织的分析和鉴定。
Diff-Quik法的染色结果丰富多样，不同类型的细胞和组织可以通过染色的颜色、形态和结构进行识别和分类。
通过观察染色后的细胞，可以判断细胞的核形态、核染色质密度、细胞核与胞浆比例、细胞膜的完整性等。
通过观察染色后的组织，可以识别和评估组织的细胞组织结构、组织细胞的形态、细胞核的高度异型性等。
Diff-Quik法的应用范围广泛，包括临床医学、研究领域和教学环境中。
临床方面，该方法常用于鉴定血液细胞和骨髓细胞的形态和功能异常，如白血病、贫血、感染和其他疾病的诊断。
Diff-Quik与改良巴氏染色法对精子形态染色效果比较
Diff-Quik与改良巴氏染色法对精子形态染色效果比较
王彦芳;张洲;寇卉
【期刊名称】《吉林医学》
【年(卷),期】2012(033)024
【摘要】目的:比较Diff-Quik染色法与改良巴氏染色法对精子形态染色效果,寻找简单、快速、准确的精子形态染色方法,替代传统的改良巴氏染色法.方法:选取83份精液标本,每份标本同时采用上述两种染色法对精液图片进行染色,分析两种染色方法的结果.结果:两种染色方法对精子形态评估结果差异无统计学意义(P＞0.05);且两种方法对精子正常形态率的评估具有显著正相关性(r =0.926,P＜0.01).结论:Diff-Quik染色法是一种简单、快速、准确的精子形态染色方法,可以替代改良巴氏染色法.
【总页数】2页(P5155-5156)
【作者】王彦芳;张洲;寇卉
【作者单位】陕西省人民医院病理科,陕西,西安,710068;陕西省妇幼保健院生殖中心,陕西,西安,710003;陕西省妇幼保健院生殖中心,陕西,西安,710003
【正文语种】中文
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精子形态学快速染色液(Diff-Quik法)
精子形态学快速染色液(Diff-Quik 法)简介：Diff-Quik 染色是在Wright 染色基础上改良而来的一种快速染色方法，是细胞学检查中常用的染色方法之一,染液是采用世界卫生组织(WHO)推荐的快速染色方法而配制，与Wright Stain 类似都是利用Romanowsky Stain 技术原理改良而来的，染色结果与瑞氏染色液也极其相似，但迪夫快速染色所需的时间极短，一般90s 以内即可完成染色。
精子形态的评估可以采用Diff-Quik 染色液。
Leagene 精子形态学快速染色液(Diff-Quik 法)属于WHO 推荐的精子形态学染色，同时结合相等的酸性染料和碱性染料而呈紫红色，但因解离电荷相等，故着色较弱。
该染色液主要用于精子(细胞)形态的评估，含固定液，非常适合用于批量浸染，且背景清晰无沉渣，该染色液仅用于科研领域，不宜用于临床诊断或其他用途。
组成：操作步骤(仅供参考)：1、 制备涂片：彻底清洗2张载玻片，再用70%的乙醇洗涤，晾干。
滴加于玻片上，用第2张载玻片的边缘在清洁载玻片表面拖拉一滴精液，制成涂片。
如果精子密度过高，可用生理盐水适当稀释。
2、 入Diff-Quik Fixative 或自然干燥，固定。
3、 将玻片直立于吸水纸上以去除多余的液体。
4、 玻片入Diff-Quik Ⅰ染色，将玻片直立于吸水纸上以去除多余的液体。
5、 玻片入Diff-Quik Ⅱ染色，将玻片直立于吸水纸上以去除多余的液体。
6、 流水浸洗10～15次以去除多余的染液。
7、 将玻片直立于吸水纸上以去除多余的水分，并使其完全干燥，显微镜下观察。
染色结果：精子头部顶体区淡蓝色编号 名称DA0190 3×20ml DA0190 3×100ml Storage 试剂(A): Diff-Quik Fixative 20ml 100ml RT 试剂(B): Diff-Quik Ⅰ 20ml 100ml RT 避光 试剂(C): Diff-Quik Ⅱ 20ml100ml RT 避光使用说明书1份精子顶体区后区深蓝色精子中断可能为淡红色精子尾部蓝色或淡红色不等注意事项：1、如果精子密度＞20×106/ml，应取5μl；如果精子密度＜20×106/ml，应取5～20μl。
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精子形态学快速染色液(Diff-Quik 法)
简介：
Diff-Quik 染色是在 Wright 染色基础上改良而来的一种快速染色方法，是细胞学检查 中常用的染色方法之一,染液是采用世界卫生组织(WHO)推荐的快速染色方法而配制，与 Wright Stain 类似都是利用 Romanowsky Stain 技术原理改良而来的，染色结果与瑞氏染 色液也极其相似，但迪夫快速染色所需的时间极短，一般 90s 以内即可完成染色。
染色结果：
精子头部顶体区
淡蓝色
北京雷根生物技术有限公司
精子顶体区后区 精子中断 精子尾部
深蓝色 可能为淡红色 蓝色或淡红色不等
注意事项：
1、 如果精子密度＞20×106/ml，应取 5μl；如果精子密度＜20×106/ml，应取 5～20μl。 2、 涂片染色中请勿先去除染液或直接对涂片用力冲洗。不能先倒掉染液，以免染料沉着于
相关：
编号 DC0032 DF0111 TC0713
名称 Masson 三色染色液 中性福尔马林固定液(10%) 葡萄糖检测试剂盒(GOD-POD 比色法)
操作步骤(仅供参考)：
1、 制备涂片：彻底清洗 2 张载玻片，再用 70%的乙醇洗涤，晾干。滴加于玻片上，用第 2 张载玻片的边缘在清洁载玻片表面拖拉一滴精液，制成涂片。如果精子密度过高，可 用生理盐水适当稀释。
2、 入 Diff-Quik Fixative 或自然干燥，固定。 3、 将玻片直立于吸水纸上以去除多余的液体。 4、 玻片入 Diff-QuikⅠ染色，将玻片直立于吸水纸上以去除多余的液体。 5、 玻片入 Diff-QuikⅡ染色，将玻片直立于吸水纸上以去除多余的液体。 6、 流水浸洗 10～15 次以去除多余的染液。 7、 将玻片直立于吸水纸上以去除多余的水分，并使其完全干燥，显微镜下观察。
组成：
名称
编号
试剂(A): Diff-Quik Fixative
试剂(B): Diff-QuikⅠ
试剂(C): Diff-QuikⅡ
使用说明书
DA0190 DA0190 Storage
3×20ml 3×100ml
20ml
100ml RT
20ml
100ml 避光
1份
涂片上。 3、 染色液可重复使用，但不能多次重复，若有沉淀物应过滤后使用。 4、 染色过深可用甲醇或酒精适当脱色，最好不复染。 7、如果染色过深或过浅，应调整染色时间或工作液浓度。 8、pH 值对染色有一定影响，载玻片应清洁、无酸碱污染，以免影响染色效果。 9、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
精 子 形 态 的 评 估 可 以 采 用 Diff-Quik 染 色 液 。 Leagene 精 子 形 态 学 快 速 染 色 液 (Diff-Quik 法)属于 WHO 推荐的精子形态学染色，同时结合相等的酸性染料和碱性染料而 呈紫红色，但因解离电荷相等，故着色较弱。该染色液主要用于精子(细胞)形态的评估，含 固定液，非常适合用于批量浸染，且背景清晰无沉渣，该染色液仅用于科研领域，不宜用 于临床诊断或其他用途。