小鼠胚胎体外培养论文

合集下载

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》范文

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》范文

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》篇一一、引言随着生物医学技术的不断发展,小鼠胚胎生殖细胞(PGCs)的分离、鉴定及体外培养技术已成为生殖生物学和干细胞研究领域的重要研究方向。

PGCs作为多能性干细胞,具有发育为多种组织细胞的潜力,对于研究人类生殖发育及疾病治疗具有重要意义。

本文旨在通过小鼠PGCs的分离、鉴定及体外培养初步研究,为进一步探讨其生物学特性和应用价值提供基础数据。

二、材料与方法1. 材料本实验所需材料包括:小鼠胚胎、显微操作设备、培养基、酶等。

2. 方法(1)PGCs的分离采用机械法和酶消化法相结合的方式,从小鼠胚胎中分离PGCs。

(2)PGCs的鉴定通过免疫荧光染色法,对分离出的PGCs进行鉴定,观察其表达相关蛋白的情况。

(3)PGCs的体外培养将分离鉴定的PGCs进行体外培养,观察其生长情况和分化潜能。

三、实验结果1. PGCs的分离结果通过机械法和酶消化法相结合的方式,成功从小鼠胚胎中分离出PGCs,细胞形态清晰可见。

2. PGCs的鉴定结果通过免疫荧光染色法,观察到分离出的PGCs表达相关蛋白,证明其为PGCs。

3. PGCs的体外培养结果将分离鉴定的PGCs进行体外培养,观察到PGCs在培养基中生长良好,具有较高的增殖能力。

同时,PGCs在体外培养过程中表现出一定的分化潜能,可分化为多种细胞类型。

四、讨论本实验成功分离、鉴定了小鼠PGCs,并进行了体外培养初步研究。

结果表明,PGCs具有较高的增殖能力和一定的分化潜能,为进一步研究其生物学特性和应用价值提供了基础数据。

同时,本实验也为PGCs在生殖生物学和干细胞研究领域的应用提供了新的思路和方法。

在实验过程中,我们发现PGCs的分离和鉴定是关键步骤,需要采用合适的方法和条件,以保证分离出的细胞纯度和活性。

此外,PGCs的体外培养也需要优化培养基和培养条件,以促进其生长和分化。

未来研究方向可以进一步探讨PGCs的分化机制和调控因素,以及其在生殖发育和疾病治疗中的应用价值。

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》范文

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》范文

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》篇一一、引言小鼠的生殖细胞(PGCs,Pluripotent Germ Cells)的发育过程对于哺乳动物生殖生物学具有重大意义。

在动物和人类的发育过程中,生殖细胞的形成与增殖直接影响了个体的繁殖潜能。

本研究致力于对小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养进行初步研究,旨在为生殖生物学、细胞生物学和医学领域提供新的研究视角。

二、材料与方法1. 材料本实验所需材料包括:小鼠胚胎、培养基、试剂、抗体等。

2. 方法(1)PGCs的分离:通过显微操作技术从小鼠胚胎中分离出PGCs。

(2)PGCs的鉴定:利用免疫荧光技术对分离出的PGCs进行鉴定。

(3)体外培养:将分离并鉴定的PGCs进行体外培养,观察其生长和分化情况。

三、实验结果1. PGCs的分离通过显微操作技术成功从小鼠胚胎中分离出PGCs,其形态特征明显,易于识别。

2. PGCs的鉴定利用免疫荧光技术对分离出的PGCs进行鉴定,结果显示其具有PGCs的特异性标记,证明成功分离出PGCs。

3. 体外培养研究将分离并鉴定的PGCs进行体外培养,观察其生长和分化情况。

结果显示,PGCs在体外培养环境中能够正常生长和增殖,且保持其多能性。

四、讨论本研究成功分离并鉴定了小鼠PGCs,并在体外培养环境中进行了初步研究。

结果表明,PGCs在体外培养环境中能够正常生长和增殖,这为进一步研究PGCs的发育机制、疾病模型以及生殖细胞治疗等领域提供了可能。

同时,本研究的成功也为其他哺乳动物PGCs的研究提供了借鉴。

然而,本研究仍存在一些局限性。

首先,虽然我们已经证明了PGCs在体外培养环境中的生长和增殖能力,但关于其具体分化方向和功能的研究尚待进一步深入。

其次,关于PGCs在体内外的互作机制、信号通路以及与周围微环境的关系等问题仍有待研究。

最后,由于PGCs具有高度多能性,其潜在的应用价值和风险也需要进一步评估。

五、结论本研究为小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养提供了新的方法和思路。

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》篇一一、引言随着生命科学研究的深入发展,小鼠卵母细胞干细胞的研究成为科研领域的热点之一。

通过对其体外分离、建系及其功能的研究,不仅能够加深对生殖机制的理解,还可能为生殖医学、生物医学等研究领域提供新的研究思路和治疗方法。

本文将详细介绍小鼠卵母细胞干细胞的体外分离、建系及其功能研究。

二、材料与方法1. 实验材料实验所需材料包括小鼠卵母细胞、培养基、试剂等。

选用适当的小鼠品系,如CD-1小鼠等,以确保实验的准确性。

2. 实验方法(1)体外分离采用酶消化法进行小鼠卵母细胞的体外分离。

具体步骤包括麻醉小鼠、卵巢取材、消化、洗涤等步骤。

(2)建系将分离得到的卵母细胞进行培养,通过筛选和克隆等技术建立稳定的细胞系。

(3)功能研究通过基因表达、细胞分化、细胞周期等实验手段,研究卵母细胞干细胞的生物学特性和功能。

三、实验结果与分析1. 体外分离结果经过酶消化法,成功从小鼠卵巢中分离出卵母细胞。

通过显微镜观察,可见细胞形态完整,活力良好。

2. 建系结果将分离得到的卵母细胞进行培养,经过筛选和克隆等技术,成功建立稳定的细胞系。

通过PCR、RT-PCR等分子生物学手段,验证了细胞系的纯度和稳定性。

3. 功能研究结果通过基因表达实验,发现卵母细胞干细胞具有较高的增殖能力和多能性。

通过细胞分化实验,观察到卵母细胞干细胞能够分化为不同类型的细胞,如卵泡细胞、颗粒细胞等。

此外,通过细胞周期实验,发现卵母细胞干细胞的增殖速度较快,具有较高的生物学活性。

四、讨论与展望通过对小鼠卵母细胞干细胞的体外分离、建系及其功能研究,我们得出以下结论:1. 卵母细胞干细胞具有较高的增殖能力和多能性,可分化为不同类型的细胞,具有潜在的应用价值。

2. 通过对卵母细胞干细胞的深入研究,有望为生殖医学、生物医学等研究领域提供新的研究思路和治疗方法。

3. 然而,目前关于卵母细胞干细胞的研究仍存在许多未知领域,如其在体内的生物学特性、调控机制等。

小鼠胚胎干细胞体外诱导分化成GABA能神经元

小鼠胚胎干细胞体外诱导分化成GABA能神经元

小鼠胚胎干细胞体外诱导分化成GABA能神经元目的探讨小鼠胚胎干细胞在体外培养向GABA能神经元定向诱导分化的可能性。

方法将小鼠胚胎干细胞以“无血清”方法培养,用DMEM/F12、N2、B27及NT4作为诱导分化剂定向诱导分化,分化好的细胞利用免疫荧光技术、流式细胞技术和RT-PCR鉴定。

结果在胚胎干细胞诱导分化成神经元后期,免疫荧光显示有GABA能神经元存在;RT-PCR结果证实有GABA能神经元正确分化的重要调控基因Viaat、Gad1和Gad2基因表达;流式细胞仪计数结果显示GABA阳性细胞约占总细胞数的(11.49±6.86)%。

结论小鼠胚胎干细胞经体外培养可以定向诱导分化成GABA能神经元,可作为神经移植的新来源。

[Abstract] ObjectiveTo investigate the possibilities of in vitro culture and differentiation of mouse embryonic stem cell to GABAergic neurons. MethodsMouse embryonic stem cells were cultured and induced into GABAergic neurons in serum-free cultural condition. Immunofluorescence,reverse transcription polymerase chain reaction(RT-PCR) and flow cytometer assay were used to identify the properties of the differentiated cells. ResultsIn the later period of differentiation of embryonic stem cells into neurons,immunofluorescence showed that GABAergic neurons existed,RT-PCR results confirmed the important regulatory genes Viaat,Gad1 and Gad2 gene expression due to the correct differentiation of GABAergic neurons and flow cytometry analysis showed the GABA-positive cells accounted for about(11.49±6.86)% of the total cell number. ConclusionMouse embryonic stem cells can be induced into GABAergic neurons in vitro in serum-free cultural condition,providing a new source of nerve graft.[Key words]Embryonic stem cell; Induce; Differentiate; GABA干细胞移植治疗中枢神经系统疾病的研究方兴未艾,且取得了一定成果,但由于其多取材于胚脑的神经干细胞,为日后临床应用埋下了伦理道德问题之患,并且受到供体来源短缺的限制[1]。

激素对小鼠胚胎体外发育的影响

激素对小鼠胚胎体外发育的影响

激素对小鼠胚胎体外发育的影响摘要探讨小鼠胚胎体外发育过程中,2种激素(孕马血清促性腺激素PMSG、人绒毛膜促性腺激素HCG)对早期胚胎发育的影响。

取原核期胚胎培养于不同的培养体系中,确定适合胚胎发育的最佳体外培养体系;在胚胎培养液中加入不同浓度的激素,观察激素对体外发育的影响。

试验发现含10%胎牛血清的人输卵管液培养液(HTF)是该试验条件下小鼠早期胚胎发育的最佳培养液;在该培养液中添加不同浓度和不同种类的激素后,各发育阶段胚胎的发育率与未添加激素的对照组相比均有所下降,但未发现浓度依赖性。

由此可认为,高浓度的PMSG和HCG对体外培养的胚胎发育有抑制作用,可降低胚胎发育到各阶段的比例,尤其是显著降低了囊胚的发生率。

关键词激素;小鼠胚胎;体外发育;影响AbstractThe system for mouse embryo culture,and the effects of two different hormone on mouse preimplantation embryos in vitro were explored.One-cell mouse embryos were cultured in different culture media to determine the optima system,and thendifferentconcentrationhormone were added to the medium to observe the effect ofhormone on mouse embryo development in vitro. HTF +10% FBS medium was the best culture system of mouse preimplantation embryod in viting. After hormone of different concentrations and kinds were added to HTF +10% FBS medium,the development rate of different stages embryos declines compared with control group. High concentration hormone could depress development of mouse preimplantation embryos in vitro,and lessens the developmental proportion of different stage embryos,then significant decreased the occurrence of blastocyst.Key wordshormone;mouse preimplantationembryos;development in vitro;effects早期胚胎体外培养技术在发育生物学、胚胎移植、转基因动物等领域的研究工作中都有很重要的作用[1]。

《2024年小鼠新型胚胎干细胞系的建立》范文

《2024年小鼠新型胚胎干细胞系的建立》范文

《小鼠新型胚胎干细胞系的建立》篇一一、引言胚胎干细胞(Embryonic Stem Cells, ESC)的研究一直是生物学和医学领域的重要课题。

这些细胞具有自我更新和多潜能的特性,为再生医学、疾病模型、药物筛选等多个领域提供了巨大的研究潜力。

近年来,随着对小鼠胚胎干细胞研究的深入,新型小鼠胚胎干细胞系的建立显得尤为重要。

本文旨在详细介绍小鼠新型胚胎干细胞系的建立过程、方法和应用前景。

二、材料与方法1. 材料准备(1)实验动物:选择合适的小鼠品系作为供体,确保其遗传背景清晰。

(2)实验试剂:包括培养基、生长因子、抗生素等。

(3)实验设备:显微镜、培养箱、离心机等。

2. 方法(1)胚胎获取:从小鼠中获得早期胚胎。

(2)胚胎培养:将胚胎置于特定培养基中,加入生长因子,进行体外培养。

(3)干细胞诱导:通过特定方法诱导胚胎内细胞团向胚胎干细胞方向分化。

(4)干细胞系建立:经过筛选和扩增,建立稳定的小鼠胚胎干细胞系。

三、实验过程与结果1. 胚胎获取与培养通过超数排卵和人工授精等方法,从小鼠中获得早期胚胎。

将胚胎置于含有适当营养成分和生长因子的培养基中,置于适宜温度和湿度的培养箱中培养。

2. 干细胞诱导与分化通过特定方法诱导胚胎内细胞团向胚胎干细胞方向分化。

这一过程需要严格控制培养条件和时间,以确保干细胞的成功诱导和分化。

3. 干细胞系的建立与鉴定经过筛选和扩增,建立稳定的小鼠胚胎干细胞系。

通过细胞形态观察、生长曲线绘制、基因表达分析等方法,对干细胞系进行鉴定和评估。

四、讨论与分析1. 小鼠新型胚胎干细胞系的特点与优势新型小鼠胚胎干细胞系具有较高的分化潜能、稳定的遗传背景和良好的扩增能力等特点。

与以往的小鼠胚胎干细胞系相比,新型干细胞系在研究过程中具有更高的可靠性和实用性。

2. 小鼠新型胚胎干细胞系的应用前景(1)再生医学:小鼠新型胚胎干细胞系可用于研究细胞分化和组织再生,为再生医学提供新的治疗策略。

(2)疾病模型:通过基因编辑技术,可以构建特定疾病的小鼠模型,为疾病研究和药物筛选提供有力工具。

《小鼠新型二倍体孤雌胚胎干细胞系的建立》范文

《小鼠新型二倍体孤雌胚胎干细胞系的建立》范文

《小鼠新型二倍体孤雌胚胎干细胞系的建立》篇一一、引言小鼠胚胎干细胞(Mouse Embryonic Stem Cells, mESCs)的研究对于生物医学领域具有深远的意义。

近年来,关于小鼠二倍体孤雌胚胎干细胞系的建立与发展受到了广大研究者的关注。

本论文主要阐述如何通过科学的实验设计与操作,成功建立小鼠新型二倍体孤雌胚胎干细胞系,并对其生物学特性进行详细分析。

二、材料与方法1. 材料实验所需小鼠孤雌激活卵母细胞、胚胎培养基、培养箱、显微操作设备等。

2. 方法(1)孤雌激活卵母细胞的获取与培养;(2)孤雌胚胎干细胞的诱导分化与筛选;(3)二倍体孤雌胚胎干细胞的建立与鉴定;(4)生物学特性的分析。

三、实验过程1. 孤雌激活卵母细胞的获取与培养通过超排技术获取小鼠的孤雌激活卵母细胞,在胚胎培养基中培养至成熟。

2. 孤雌胚胎干细胞的诱导分化与筛选将成熟的卵母细胞进行体外受精或激活,诱导其分化为胚胎干细胞。

通过特定的筛选方法,筛选出具有干细胞特性的细胞。

3. 二倍体孤雌胚胎干细胞的建立与鉴定将筛选出的干细胞进行基因组检测,确保其具有二倍体染色体组。

通过形态学、生长特性、分化能力等多方面的鉴定,确认其为二倍体孤雌胚胎干细胞。

4. 生物学特性的分析对建立的二倍体孤帕胚胎干细胞进行生长曲线测定、多能性检测、基因表达分析等,以了解其生物学特性。

四、结果与讨论1. 结果成功建立了小鼠新型二倍体孤帕胚胎干细胞系,具有稳定的生长曲线和良好的多能性。

通过基因组检测和生物学特性分析,证实了其具有二倍体染色体组和良好的生物学特性。

2. 讨论(1)在孤帕激活卵母细胞的获取与培养过程中,需要优化培养条件和方法,以提高卵母细胞的成熟率和质量。

同时,通过改进体外受精和激活方法,可进一步提高胚胎干细胞的诱导效率和质量。

(2)在筛选和鉴定过程中,应采用多种方法和技术,如形态学观察、生长曲线测定、基因组检测、多能性检测等,以确保筛选出的细胞具有理想的二倍体孤帕胚胎干细胞特性。

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》范文

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》范文

《小鼠PGCs的分离鉴定及体外培养初步研究》篇一一、引言随着生物医学技术的不断发展,对生殖细胞的研究已成为科研领域的重要方向。

其中,小鼠的生殖细胞(PGCs,Primordial Germ Cells)的分离、鉴定以及体外培养对于理解其发育机制、疾病治疗以及生殖生物学具有重要意义。

本文旨在通过小鼠PGCs的分离、鉴定及体外培养初步研究,为后续相关研究提供基础数据和理论支持。

二、材料与方法1. 材料本实验所需材料包括小鼠胚胎、专用培养基、胰蛋白酶、荧光染色试剂等。

2. 方法(1)PGCs的分离:从小鼠胚胎中提取PGCs,采用胰蛋白酶消化法进行细胞分离。

(2)PGCs的鉴定:通过荧光染色法对分离出的PGCs进行鉴定,观察其形态特征及表达相关基因。

(3)PGCs的体外培养:将鉴定后的PGCs接种于专用培养基中,进行体外培养,观察其生长情况及分化情况。

三、实验结果1. PGCs的分离结果通过胰蛋白酶消化法成功从小鼠胚胎中提取出PGCs,细胞形态清晰,数量适中,为后续实验提供了良好的材料基础。

2. PGCs的鉴定结果荧光染色法显示,分离出的PGCs具有明显的荧光特征,形态特征与文献报道相符,同时检测到相关基因的表达,证明成功分离出PGCs。

3. PGCs的体外培养结果将鉴定后的PGCs接种于专用培养基中,观察到PGCs在体外培养环境中生长良好,细胞分裂增殖迅速,且未出现明显分化现象。

四、讨论本实验成功分离出小鼠PGCs,并通过荧光染色法进行了鉴定。

在体外培养环境中,PGCs生长良好,为进一步研究PGCs的发育机制、疾病治疗及生殖生物学提供了基础数据。

然而,仍需进一步研究PGCs的分化机制、基因表达调控等方面,以更全面地了解PGCs的生物学特性。

五、结论本研究通过小鼠PGCs的分离、鉴定及体外培养初步研究,成功提取出PGCs并进行了鉴定,同时在体外培养环境中观察到PGCs生长良好。

本研究为后续相关研究提供了基础数据和理论支持,有助于进一步了解PGCs的生物学特性及发育机制。

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》篇一一、引言在过去的几十年中,随着细胞生物学和干细胞技术的不断发展,对于卵母细胞和干细胞的研究已成为科学领域的重要课题。

小鼠作为实验室常用的研究模型,其卵母细胞干细胞的研究对于理解生殖机制、疾病治疗以及再生医学等领域具有重要意义。

本文旨在探讨小鼠卵母细胞干细胞的体外分离、建系及其功能研究,为相关领域的研究提供理论依据。

二、小鼠卵母细胞干细胞的体外分离小鼠卵母细胞干细胞的体外分离是本研究的首要任务。

在实验室中,我们采用了多种方法对小鼠卵巢进行分离和获取卵母细胞干细胞。

具体而言,首先使用适当的消化酶处理卵巢组织,使卵母细胞干细胞得以释放。

随后,通过离心、过滤等方法将干细胞与其他细胞成分分离。

最后,通过特定培养基的培养和筛选,得到纯度较高的卵母细胞干细胞。

三、建系及培养在成功分离出卵母细胞干细胞后,我们进行了建系工作。

首先,我们确定了适宜的培养基和培养条件,以保证干细胞的生长和增殖。

随后,通过多次传代和筛选,建立了稳定的卵母细胞干细胞系。

在培养过程中,我们密切关注干细胞的形态、增殖速度以及基因表达等方面的变化,确保其稳定性和可靠性。

四、功能研究在建立稳定的卵母细胞干细胞系后,我们进行了功能研究。

首先,我们通过基因表达分析、蛋白质组学等方法,研究了干细胞的生物学特性和功能。

结果表明,这些干细胞具有多向分化的潜能,可以分化为不同类型的细胞。

此外,我们还研究了这些干细胞在体内外的生长和增殖情况,以及其在组织修复和再生方面的应用潜力。

五、结论与展望本研究成功实现了小鼠卵母细胞干细胞的体外分离、建系及其功能研究。

通过建立稳定的干细胞系,我们深入了解了其生物学特性和功能。

这些研究结果为进一步探索卵母细胞干细胞在生殖医学、疾病治疗以及再生医学等领域的应用提供了理论依据。

然而,本研究仍存在一些局限性。

例如,对于卵母细胞干细胞的分化机制和调控机制等方面的研究还不够深入。

未来,我们将继续深入研究这些领域,以期为卵母细胞干细胞的应用提供更多理论支持。

不同体外培养方法对去透明带小鼠胚胎发育的影响

不同体外培养方法对去透明带小鼠胚胎发育的影响

不同体外培养方法对去透明带小鼠胚胎发育的影响目的探讨不同体外培养方法对小鼠去透明带胚胎发育的影响。

方法以胚胎各阶段发育率、囊胚率和囊胚细胞数作为衡量指标,对比微滴单卵法、微滴群卵法、微滴单卵+群卵法、mWOW培养法(the modified “well of well” system)四种体外培养方法,探讨不同体外培养方法对去透明带胚胎发育的影响。

结果mWOW培养法、微滴单卵+群卵法、微滴单卵法这三种方法之间的发育率、囊胚率以及囊胚数均有显著差异(P<0.05)。

结论mWOW法与其他三种方法相比,更适合作为体外培养去透明带小鼠8-细胞以后阶段的方法,以及用于体内移植小鼠胚胎的体外培养方法。

[Abstract] Objective To investigate the effects of different culture methods in vitro mouse zona-free embryonic development. Methods In various stages of embryonic development rate,blastocyst rate and cell numbers of blastocysts developed were measured as mWOW system (the modified “well of well” system),micro-drops single + group,micro-drops single and micro-drops group culture in vitro. The effects of different methods of were compared in vitro embryo development zona-free. Results Embryonic development rate,blastocyst rate and cell numbers of blastocysts developed were significantly higher in mWOW system culture than micro-drops single + group,micro-drops single and micro-drops group culture. Conclusion Compared with micro-drops single + group,micro-drops single and micro-drops group culture,mWOW system method is more suitable for zona-free cultured in vitro mouse embryos.[Key words] Embryo culture techniques;Embryonic development;mWOW method现阶段,体外培养去透明带小鼠胚胎已经成为研究早期胚胎发育机制、制备转基因小鼠等科学研究领域中的重要环节。

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》范文

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》范文

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》篇一一、引言随着生命科学和生物技术的快速发展,体外培养技术在生物医学研究领域扮演着日益重要的角色。

特别是对于小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞(Epicardial-like Pluripotent Stem Cells, EPLSCs)的建立,体外培养条件对于胚胎的发育潜力及干细胞特性的维持具有重要影响。

本文将探讨不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响。

二、方法1. 实验材料:本实验使用的小鼠为健康野生型品系,所有胚胎均来自超数排卵的雌性小鼠。

2. 体外培养条件:设置不同的培养条件,包括培养基种类、气体环境(如氧气浓度)、温度等。

3. 胚胎培养与外胚层干细胞提取:在设定的条件下进行小鼠早期胚胎的体外培养,并从外胚层提取多能干细胞。

三、不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育的影响1. 培养基种类:不同种类的培养基对小鼠早期胚胎的发育具有显著影响。

例如,某些含有特定生长因子或营养因子的培养基能促进胚胎的生长发育,提高其成活率。

2. 氧气浓度:氧气浓度是影响胚胎发育的关键因素之一。

过高的氧气浓度可能导致胚胎发育受阻,而适宜的氧气浓度则有利于胚胎的正常发育。

3. 温度:适宜的温度是保证胚胎正常发育的必要条件。

过高或过低的温度都会对胚胎的发育产生不利影响。

四、不同体外培养条件对外胚层多能干细胞建立的影响1. 培养基与生长因子:在特定的培养基中添加适当的生长因子,如BMP4、SHH等,能促进外胚层多能干细胞的生成和增殖。

2. 细胞因子与信号通路:通过调节细胞因子如TGF-β、Wnt 等及其相关信号通路,可以影响外胚层多能干细胞的特性和分化方向。

3. 细胞间相互作用:细胞间的相互作用对于外胚层多能干细胞的建立和维持具有重要作用。

在体外培养中,通过调整细胞密度、共培养等方式,可以模拟细胞间的相互作用,从而影响干细胞的特性和分化。

小鼠胚胎培养方法的探究

小鼠胚胎培养方法的探究

小鼠胚胎培养方法的研究摘要目的:探讨小鼠早期胚胎在不同的体外培养液中生长发育的状况,从而寻找胚胎培养的最佳培养体系,为人类胚胎培养方法的改善提供理论依据,以提高临床体外受精一胚胎移植(IVF.ET)的成功率。

方法:配制不同的培养液,对100例小鼠超排卵共取卵子1678枚,分别在不同的培养液中进行体外授精,并将2一细胞鼠胚放入各组培养液中进行培养,其中,血清组的培养液为Earle培养液加10%人血清:卵泡液组的培养液为Earle培养液加lO%人卵泡液;蜕膜细胞条件培养液组的培养液为Earle培养液加lO%条件培养液:血清加卵泡液组的培养液为Earle培养液加10%人血清和5%人卵泡液:血清加条件培养液组为Earle培养液加10%人血清和5%条件培养液。

每日在显微镜下观察小鼠胚胎的发育情况,分析受精率、卵山西医科大掌裂率、卵裂速度及桑椹胚与囊胚形成率,采用x2分割检验进行统计分析。

结果:一、1、小鼠胚胎在蜕膜细胞条件培养液中有72.9%发育到8.细胞期,66.0%发育到桑椹胚,61.6%形成囊胚,32.1%胚胎孵化。

而对照组有43.6%发育到8.细胞期,30.9%发育到桑椹胚,19.1%到初级囊胚,55%孵化的胚胎。

两组比较有显著性差异。

2、卵泡液的胚胎有71.3%到8.细胞期,588%发育到桑椹胚,50.O%形成囊胚,257%孵化。

与对照组比较有差显著性异。

3、血清组有53,4%发育到8.细胞期,40.5%到桑椹胚,29.3%形成囊胚,仅有7.8%孵化。

与对照组无显著性差异。

二、鼠卵在不同培养液中受精率无显著性差别,而对于卵裂率和优质胚胎的形成率,鼠卯在蜕膜细胞条件培养液组和卵泡液组中均与对照组有显著性差异,而血清组与对照组比较无差异。

鼠胚在蜕膜细胞条件培养液和卵泡液中培养发育速度快,碎片率明显低于对照者。

三、小鼠早期胚胎在卵泡液组、蜕膜细胞条件培养液组中的调亡速度明显低于对照组,有显著性差异,而血清组中鼠胚的调亡速度低于对照组,但无显著性差异。

小鼠胚胎体外培养研究

小鼠胚胎体外培养研究

小鼠胚胎体外培养研究【摘要】本文所选用的实验材料为小鼠原核胚,主要研究几种不同溶液、溶液所含不同生长因素、不同培养气象等所对小鼠原核胚发展产生的影响,主要目的是最终找到一种适于小鼠胚胎成长的培养环境以及溶液成分,进而不断优化小鼠胚胎体外培养的体系结构。

并且为其它哺乳类动物的胚胎体外培养提供一些参考。

【关键词】小鼠;胚胎;体外培养0.前言在迈入新世纪以后,我国的科学技术发展十分迅猛,尤其是我国的生物科技得到了广泛的推广与使用,从而加快了人类社会的发展。

胚胎工程是指主要针对胚胎哺乳类动物的胚胎所进行的工程技术操作,之后再将胚胎继续发育,从而使人们获得所需的成体动物的一种全新技术。

当前,胚胎工程在蓄牧种繁殖预遗传资源保护、利用方面得到了广泛推广和使用,并且在人类疾病真毒、药物研发等研究方面蕴含巨大应用价值,因此,受到人们高度的关注。

1.材料预方法1.1实验所需的材料实验所需的动物:清洁过的雌性预雄性小鼠,所选用的雌性小鼠年龄约在28—35日的日龄范围内,共约250只,而选用的雄性小鼠日龄在56天以上,共有32只。

选用的实际预药品主要有,丙酮酸钠、青霉素钠、链霉素、探索氢钠、氯化镁、牛磺酸等。

而所选用的仪器主要有倒置显微镜与实体显微镜,离心机、PH仪、显微图像管理系统等。

小鼠胚胎培养液主要有三种,即HTF、CZB、KSOM 溶液。

在配制每一种溶液时都要进行过滤,以便除菌,并且还要放在4摄氏度的环境下进行保存。

1.2小鼠超数排卵从中选用体重超过25g雌性小鼠,要在小鼠腹腔中注射PMSG20IU,待48小时之后再在腹腔中注射Hcg10IU。

雄性小鼠要选用体重超过30g的,严格按照雌性鼠预雄性鼠比例为2:1的比例放在同一个笼中混合养殖,在第二天早晨要检查小鼠的阴道栓,将具有阴道栓的雌性小鼠在20—23小时范围内提取卵母细胞预卵丘细胞的复合体。

1.3采集小鼠的原核胚在注射hCG后的22小时后,采用颈椎脱臼方法将小鼠处死,在用酒精消毒之后,剪开腹腔,在沿着小鼠卵巢端剪取输卵管,将输卵管放在生理盐水的35mm 培养器皿中,然后将培养器皿放进实验室,将小鼠的输卵管放入到洗卵液培养器皿中浸泡一段时间。

小鼠1-细胞胚胎体外培养条件的研究

小鼠1-细胞胚胎体外培养条件的研究

小鼠1-细胞胚胎体外培养条件的研究*【摘要】目的检验培养基(Whitten、CZB、SOM和KSOM)、培养器皿(进口、国产新旧平皿)与配制培养基的水质对小鼠胚胎体外发育的影响。

方法采用微滴培养法培养昆明种小白鼠1-细胞胚胎,以胚胎发育到囊胚的比例为判断培养效果的标准。

结果Whitten、CZB、SOM和KSOM培养基中2-细胞发育率分别为100%、100%、100%和98.6%,而囊胚发育率却分别为0%、78.3%、4.8%和9.5%;用三蒸水、五蒸水和去离子水配制的CZB培养基,培养囊胚发育率分别为40.8%、54.1%和52.4%;国产和进口新平皿的囊胚发育率分别为68.0%和72.2%;国产和进口旧平皿的培养囊胚发育率为27.2%和4 6.1%。

结论昆明小白鼠早期胚胎存在体外发育阻断现象;CZB培养基培养昆明小白鼠早期胚胎效果最好;用三蒸水、五蒸水和去离子水配制的CZB 培养基培养结果无显著差别;进口和国产新平皿的培养效果相近,但再次使用时培养效果显著下降。

【关键词】1-细胞胚胎培养系统小鼠STUDIES ON THE CONDITIONS FOR THE CULTURE OFONE-CELL MOUSE EMBRYOSLiu Zhonghua, Tan Jinghe△, He Guixin(Department of Biotechnology, North-East Agricultural University, Harbin)【Abstract】Objective To study the effects of culture media, types of culture dish and types of water used for preparation of media on the in vitr o development of one-cell embryos in the mice of Kunming breed. Method One-cell mouse embryos collected from the oviduct of the superovulated mice were cultured in microdrops of medium and the percentage of embryos developed to blastocyst stage was used as evaluation criteria. Results (1)Wh en one-cell mouse embryos were cultured in the Whitten's, CZB, SOM and KSOM media, the cleavage percentages were 100%,100%,100% and 98.6%, respectively, and the blastocyst percentages were 0%, 78.3%, 4.8% and 9. 5%, respectively. (2)The blastocyst percentages obtained from the CZB medi a prepared from the triple-distilled, fivefold-distilled and deionized water wer e 40.8%, 54.1% and 52.4%, respectively. (3)The blastocyst percentages prod uced from the Chinese-made and the imported culture dishes were 68.0% an d 72.2%, respectively, but those obtained when the dishes were used for the second time were decreased significantly (being only 27.2% and 46.1%, res pectively). Conclusions There existed a development block during the in vitro development of the mouse embryos of the Kunming breed. Among the me dia tested CZB was the best in supporting the development of one-cell mou se embryos to blastocyst stage. No significant difference was found among t he CZB media prepared from the triple-distilled, fivefold-distilled and deioni zed water in blastocyst percentages. Both the Chinese-made and the imported culture dishes produced good results of embryo development when used f or the first time but the blastocyst percentages decreased significantly when the culture dishes were washed and used for the second time.【Key words】One-cell embryo; Culture system; Mouse胚胎体外培养是胚胎工程研究的重要基础条件。

小鼠4-细胞期胚胎单卵裂球体外发育潜能探究

小鼠4-细胞期胚胎单卵裂球体外发育潜能探究
孕小鼠子宫后具有一定发育能力,能发育到原条期,但无法获得足月 妊娠。 结论
在未添加任何特殊生长因子的体外无透明带培养条件下,小鼠 4-细胞期单卵裂球具有发育为完整囊胚的能力,所获囊胚移植入假孕 小鼠子宫后可以发育到原条期。 关键词 早期胚胎,单卵裂球,全能性,Oct-4,体外培养
VII 上海交通大学医学院 2006 级硕士学位论文
Objective
To study the in-vitro developmental potential of individual mouse blastomeres derived from 4-cell stage mice embryos (4c-MEDB) cultured without zona pellucida, and the future implications for the study of in-vitro developmental potency of human individual blastomeres.
学位论文:小鼠 4-细胞期胚胎单卵裂球体外发育潜能研究
The In-vitro Developmental Potency of Individual Blastomeres Derived From 4-cell Stage Mice Embryos
ABSTRAБайду номын сангаасT
Background
Human embryonic stem cells (hESC) hold huge promise in modern regenerative medicine and drug discovery. However, the usage of embryos to derive hESC has resulted in polarized ethical debates since the process involves destruction of human embryos. Therefore, many researchers try to develop innovative methods to derive new hESC without destruction of viable human embryos. One alternative method of generating hES cell lines is based on a technique used to obtain a blastomere from an intact embryo for preimplantation genetic diagnosis (PGD) of genetic defects. This method may be a reasonable access since it doesn’t hurt the biopsied embryo’s developmental potential.

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》篇一一、引言小鼠卵母细胞干细胞(Mouse Oocyte-like Stem Cells,简称MOSCs)是近年来备受关注的一类细胞。

它们具有自我更新能力和多向分化潜能,对于研究生殖细胞发育、疾病模型建立以及再生医学等领域具有重要意义。

然而,由于卵母细胞干细胞的分离、建系及功能研究尚处于初级阶段,因此,本篇论文旨在详细介绍小鼠卵母细胞干细胞的体外分离、建系及其功能研究的过程与结果。

二、材料与方法2.1 实验材料本实验采用小鼠卵巢组织作为实验材料,相关试剂和培养基等均购自正规生物试剂公司。

2.2 实验方法2.2.1 卵母细胞干细胞的体外分离采用酶消化法对小鼠卵巢组织进行消化,获得卵母细胞及周围颗粒细胞。

通过差速贴壁法及密度梯度离心法对细胞进行纯化,最终获得相对纯净的卵母细胞干细胞。

2.2.2 建系将纯化后的卵母细胞干细胞接种于特制的培养基中,进行体外培养。

通过调整培养条件,如温度、湿度、气体比例等,使细胞在体外环境下得以生长和繁殖。

经过多代传代后,形成稳定的细胞系。

2.2.3 功能研究通过实时定量PCR、免疫荧光、流式细胞术等技术手段,研究MOSCs的基因表达、分化能力及对生殖细胞发育的贡献。

同时,通过建立疾病模型,探究MOSCs在疾病发生、发展过程中的作用。

三、实验结果3.1 卵母细胞干细胞的分离与纯化通过酶消化法及差速贴壁法、密度梯度离心法,成功从小鼠卵巢组织中分离出相对纯净的卵母细胞干细胞。

经过显微镜观察,发现MOSCs具有典型的生殖细胞形态特征。

3.2 MOSCs的建系及传代培养将纯化后的MOSCs接种于特制培养基中,经过多代传代后形成稳定细胞系。

在适宜的培养条件下,MOSCs呈现出良好的生长状态和繁殖能力。

3.3 功能研究结果通过实时定量PCR、免疫荧光等技术手段,我们发现MOSCs具有多向分化潜能,可分化为多种生殖细胞类型。

同时,MOSCs在生殖细胞发育过程中发挥重要作用,对维持生殖系统正常功能具有关键作用。

小鼠植入后胚胎体外延时培养体系的应用进展

小鼠植入后胚胎体外延时培养体系的应用进展

2020年8月第30卷㊀第8期中国比较医学杂志CHINESE JOURNAL OF COMPARATIVE MEDICINEAugust,2020Vol.30㊀No.8邵红莲,谭韬.小鼠植入后胚胎体外延时培养体系的应用进展[J].中国比较医学杂志,2020,30(8):119-124.Shao HL,Tan T.Advances in the application of an in vitro culture system of mouse post-implantation embryos [J].Chin J Comp Med,2020,30(8):119-124.doi:10.3969/j.issn.1671-7856.2020.08.019[作者简介]邵红莲(1994 ),女,硕士,研究方向:小鼠胚胎体外培养体系的建立及优化㊂E-mail:2075543557@ [通信作者]谭韬(1981 ),男,教授,博士,研究方向:早期胚胎发育的表观遗传学研究㊂E-mail:tant@小鼠植入后胚胎体外延时培养体系的应用进展邵红莲1,谭㊀韬1,2∗(1.昆明理工大学生命科学与技术学院,昆明㊀650500;2.昆明理工大学云南中科灵长类生物医学重点实验室,昆明㊀650500)㊀㊀ʌ摘要ɔ㊀小鼠是研究哺乳动物中一种小型的模式生物,在研究非人灵长类以及人类胚胎之前,需要先在小鼠体内确定实验能否进行再转移到高等哺乳动物㊂现有体系的限制使小鼠胚胎只能在体外培养至E6.5,小鼠胚胎体外延时培养体系的建立对于理解胚胎植入后的关键事件以及分子机制有着非常重要的作用,更为人胚胎的发育研究提供有效平台㊂单细胞测序技术的发展为小鼠胚胎体外延时培养提供了新的可能,在这里我们介绍了小鼠植入后胚胎的普通体外延时培养体系㊁3D 培养体系㊁单细胞测序技术在胚胎领域的应用,以及其未来可能的发展方向㊂ʌ关键词ɔ㊀小鼠胚胎发育;体外延时培养体系;3D 培养体系;单细胞转录组测序ʌ中图分类号ɔR-33㊀㊀ʌ文献标识码ɔA㊀㊀ʌ文章编号ɔ1671-7856(2020)08-0119-06Advances in the application of an in vitro culture system of mousepost-implantation embryosSHAO Honglian 1,TAN Tao 1,2∗(1.Faculty of Metallurgical and Energy Engineering,Kunming University of Science and Technology,Kunming 650093,China.2.Yunnan Key Laboratory of Primate Biomedical Research,Institute of Primate Translational Medicine,Kunming University ofScience and Technology,Kunming 650500)㊀㊀ʌAbstract ɔ㊀Mice are a small mammal model for scientific research.Before studying non-human primates and human embryos,it must be determined whether the experiment can be carried out in mice and then employ higher mammals.The limitation of the existing system is that mouse embryos can only be cultured in vitro to E6.5.Establishment of a mouse embryo in vitro culture system is very important to understand the critical events and molecular mechanisms of embryo peri-implantation.The development of single-cell RNA sequencing technology provides new possibilities for in vitro time-lapse culture of mouse embryos.Here,we introduce an in vitro time-lapse culture system and 3D culture system for mouse embryo implantation,the application of single-cell RNA sequencing technology in the field of embryos,and its possible future direction of development.ʌKeywords ɔ㊀mouse embryonic development;in vitro time-lapse culture system;3D culture system;single cellRNA sequencing㊀㊀哺乳动物植入后胚胎发育的相关机制是发育学领域的关注热点,小鼠是最易获得且最具特征的哺乳动物胚胎发育模型㊂哺乳动物的早期胚胎发育经历:受精卵ң2-细胞ң4-细胞ң8-细胞ң桑椹胚ң囊胚ң原肠胚几个阶段,植入后早期胚胎发育是指囊胚由输卵管进入子宫着床并继续发育的过程[1-5]㊂小鼠胚胎体外培养体系的成功建立,可以作为一个深入研究小鼠植入后胚胎发育的相关机制平台,也可以作为其他哺乳动物胚胎体外培养体系的建立及优化的参考依据㊂现阶段已有较多小鼠植入前胚胎发育机制的相关研究,植入前胚胎发育过程的核基因组㊁转录组㊁蛋白表达变化等问题都得到了比较详细的解答[6]㊂Xue等[7]研究发现,受精卵胚胎处于转录静止状态,其发育完全由母系提供的蛋白质和来自卵浆的RNAs控制,2细胞期才发生重要的基因激活㊂桑椹胚时期内细胞团(inner cell mess,ICM)和滋养外胚层(trophoblastic ectoderm,TE)分化形成囊胚的分子机制也较为详尽[8-9]㊂相较于众多的植入前形态发生和信号通路的研究,植入期和植入后期的研究非常有限㊂尤其是人类及非人类灵长类动物的胚胎,其植入期㊁植入后期的形态发生㊁转录组和表观基因组的特异性调控都未得到系统的研究㊂由于人类胚胎14d原则的伦理限制以及难以获取胚胎,小鼠胚胎成为众多基础研究的常用胚胎模型㊂小鼠胚胎的体外延时培养体系不仅能够解释植入过程和植入后的胚胎发生事件,更为探索高级哺乳动物体外培养体系建立基础㊂该篇综述对小鼠植入后胚胎体外延时培养体系进行总结,并对更高等的哺乳动物的体外培养体系发展提供更好的思路㊂1㊀普通培养体系目前常用的体外培养体系(in vitro culture, IVC)可大致分为两类:IVC1与IVC2㊂IVC1用于滋养层细胞(trophoblast cells,TS)贴壁前的培养,IVC2用于TS贴壁后的培养㊂目前很多实验室都在进行小鼠的体外延时培养,培养体系在不停的优化,但依旧不能获得稳定的体系㊂1.1㊀基于DMEM、Whitten的体外培养体系2011年,Takaoka等[10]使用DMEM㊁Whitten培养基培养E5.0-E5.5和E3.7胚胎㊂首先在添加50%胎牛血清(fatal bovine serum,FBS)和25mm HEPES-NaOH(pH7.2)的DMEM中恢复胚胎㊂随后将E5.0-E5.5胚胎转移到培养基中,该培养基由75%大鼠血清和25%DMEM缓冲44mM NaHCO3 (pH7.2)组成㊂将E3.7胚胎转移到改良的Whitten培养基中㊂胚胎在35mm的玻璃底塑料培养皿中培养㊂1.2㊀基于CMRL1066的体外培养体系2012年,Morris等[11]人为了研究小鼠植入后胚胎前后轴的形成,建立了一套体外培养体系㊂在该体系中,IVC1的基础成分为CMRL1066㊁L-谷氨酰胺㊁丙酮酸钠㊁双抗(青霉素和链霉素)㊁胎小牛血清(fetal calf serum,FCS)等㊂IVC2基础成分与IVC1相同,但使用人脐带血清(human cord serum,HCS)替代了FCS㊂该培养体系使用了聚丙烯酰胺凝胶与玻璃结合,并覆盖各种蛋白质涂层,以便能够清晰地跟踪前内脏内胚层的逐步发育㊂但是凝胶制备的复杂性和HCS分离难度使该方法难以广泛应用,而且来源不同的HCS可能会导致培养结果的不同㊂1.3㊀基于Advanced-DMEM/F12的体外培养体系2014年,Bedzhov[12]团队描述了一个支持小鼠胚胎发育至囊胚之后的体系,提供了一个新的分步培养方案,奠定了小鼠植入后胚胎体外延时培养体系的发展基础㊂在该研究中,采用Advanced-DMEM/F12代替CMRL-1066,同时添加双抗(青霉素和链霉素)㊁L-谷氨酰胺㊁β-雌二醇㊁孕酮㊁N-乙酰-I-半胱氨酸等成分㊂为进一步降低HCS的需求,他们还添加了ITS-X和敲除血清替代品(KnockOut serum replacement,KSR)㊂IVC1与IVC2均基于以上成分,二者最主要的区别在于,IVC1使用FBS作为胚胎的营养成分,而IVC2使用KSR替代FBS㊂该研究还采用了特殊的光学材料(ibiTreatμ-plates, eight-well)作为基质,在体外将小鼠囊胚培养到卵圆柱阶段,体外培养的胚胎形态以及谱系标志物的检测和正常体内E6.5相同㊂在该研究中,Bedzhov等[12]还尝试了两种培养方法㊂第一种方法从早期囊胚开始,去除透明带后,囊胚可以附着在基质上,5d后发育成卵圆柱体;第二种方法是从晚期囊胚开始,在3d内分离出的附壁TE形成卵圆柱体,通过这种方法可以观察到以前隐藏的发育时期㊂他们使用的培养体系可用于直接监测小鼠植入期胚胎谱系发生,胚胎生长等情况㊂至此,小鼠胚胎体外延时培养体系已初见规模,能够很好的支持众多小鼠胚胎研究㊂2㊀3D培养体系早在几十年前,研究者就观察到,细胞在活体内和培养皿中所处的微环境截然不同㊂当细胞系嵌入3D基质或标准组织培养板中时[13],细胞表现出显著的不同形态和生长特征[14]㊂自此,细胞培养技术的一个重要进展是引入了3D培养系统㊂与二维方法相比,3D方法的一个主要优点是减少了细胞培养系统和体内环境之间的差距,显示出更接近复杂的体内条件特征[15-17]㊂在传统的2D条件下,对分化㊁增殖和细胞功能非常重要的细胞外基质(extracellular matrix,ECM)成分㊁细胞间相互作用都会丢失[18]㊂在3D培养系统中,未分化细胞的存活率也得到了提高,这对研究与环境相关的物理化学因素对胚胎细胞的影响是有帮助的㊂3D支架是用各种天然(胶原蛋白㊁明胶㊁弹性蛋白㊁丝素蛋白㊁壳聚糖㊁甲壳素㊁纤维蛋白㊁纤维蛋白原等)和合成聚合物制成的,同时也包括一些公认的天然和合成物质的混合物㊂常用的3D支架材料有琼脂糖㊁胶原㊁纤维连接蛋白㊁明胶㊁层粘连蛋白和卵黄蛋白㊂这些复合材料在孔隙率㊁纤维㊁渗透性和机械稳定性等物理特性方面模拟天然ECM㊂微结构增强了胚胎中粘附细胞的生物物理学和生物化学相互作用,使其在体外更好的表达相应的基因㊂3D基质为胚胎增殖㊁分化和分泌细胞特异性ECM提供了一个生物活性环境[19]㊂以下介绍了常用3D基质及其在胚胎培养当中的用途㊂2.1㊀基质胶(matrigel)Matrigel在干细胞领域已经有了充分的应用,在胚胎培养当中也有所尝试㊂Bedzhov等[20]使用Matrigel培养E3.5胚胎的ICM㊂该研究将单个ICMs 滴入ibiTreat显微术塑料m板中的基质凝胶中,37ħ孵育2~3min,直至基质凝胶凝固㊂然后用加热过的IVC1培养基填充培养皿㊂在以Matrigel为基质的3D 培养体系当中,TS的发育更加接近于体内的状态,可以在一定程度上模拟体内的着床过程㊂2.2㊀聚丙烯酰胺胶Niu等[21]评估了与玻璃结合并覆盖各种蛋白质涂层的聚丙烯酰胺水凝胶在3D胚胎延时培养体系中的使用㊂在该研究中,首先通过改变NᶄNᶄ-亚甲基双丙烯酰胺和丙烯酰胺的比例来优化聚丙烯酰胺水凝胶的表面硬度,其次使用了不同的蛋白质涂层㊂采用I型大鼠尾胶原涂层时,87%(13/15)的胚胎可附着在基质上,38%(5/13)的胚胎可发育成卵圆柱㊂相比之下,层粘连蛋白或纤维蛋白-布朗宁与胶原结合使用时,80%(12/15)的胚胎可以附着,41%(5/12)的胚胎可形成卵圆柱㊂这些胚胎发育出正确的形态和外胚层(epiblast,EPI)㊁TE和原始内胚层(primitive endoderm,PrE),并且表达相应的组织标记基因㊂2.3㊀3D培养体系在其他哺乳动物中的应用Shao等[22]基于人多能干细胞(pluripotent stem cells,PSC)的模型,建立了称为植入后羊膜囊胚状体(post-implantation amniotic sac embryoid,PASE),它能够概括围绕羊膜囊发育的多个植入后胚胎发生事件㊂在没有母体或胚胎外组织的情况下,PASE 自组织形成一个具有不对称羊膜EPI的上皮囊肿,类似于人类羊膜囊㊂在进一步的发育过程中,PASE 以SNAI1依赖的方式启动一个类似于后原条发育的过程㊂此外,他们还发现到非对称BMP-SMAD信号与PASE的发展同步,并证实BMP-SMAD的激活/抑制调节了PASE的稳定发展㊂该研究为小鼠胚胎体外延时培养提供了新的思路,即构建3D的培养体系,为胚胎着床及着床后的发育提供可能的条件㊂他们采用3D培养体系来培养植入后人羊膜囊,其在8孔板底部铺有一层Matrigel,且在日常培养基中添加了ECM㊂Matrigel能够向EPI细胞提供极化信号,胚胎干细胞在Matrigel内培养后能够形成类似体内胚胎花环的EPI结构,凋亡细胞数量也少于一般的二维培养[22]㊂3D培养体系在体外通过细胞外基质构建类体内环境,有效促进了哺乳动物胚胎在体外的发育过程,进而促进胚胎前后轴形成动力学㊁胚胎滋养巨细胞与子宫内膜相互作用等问题的理解[23]㊂但3D体系仍然不够成熟,不能够完全模拟小鼠胚胎体内着床以及着床后的进一步发育㊂寻找更合适的3D体系材料及其构建方法㊁并将其与已知的维持胚胎的培养体系结合是该领域的重点研究方向㊂现如今,3D打印技术逐渐成熟,能够建立更加精细的结构,该技术将来可以被应用于小鼠胚胎体外延时培养的3D体系的建立,也有可能进一步为非人类灵长类动物和人类的胚胎的体外培养提供技术支持和研究基础㊂3㊀培养体系添加物有研究者报道了小鼠囊胚到卵圆柱转变过程中的关键形态发生事件,这些步骤将简单的EPI细胞球转化为杯状上皮细胞[12]㊂Copp[24]揭示了体外囊胚着床后,TS与ECM的粘附强度随时间而发生变化,这限制了极性细胞进一步的体外发育,从而导致卵圆柱的形成㊂Bedzhov等[20]人发现,胚胎外细胞系分泌的基底膜成分为PSC提供了极化信号㊂这导致EPI整体重组为玫瑰花状结构,并伴随管腔发生㊂除了3D体系,胚胎发育过程中,胚胎外细胞系分泌的细胞因子也会决定胚胎发育的质量㊂因此体外培养体系中的各类添加物对胚胎发生也发挥重要作用㊂3.1㊀细胞因子在囊胚(E3.5)中三种不同的细胞系TE㊁ICM中的EPI和PrE发育过程中,许多关键的谱系因子,如CDX2㊁POU5F1和SOX17,分别在小鼠胚胎发育过程中表现出保守表达㊂在小鼠体内胚胎发育过程中,成纤维细胞生长因子(fibroblast growth factor,FGF)信号和随后的细胞内丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)途径激活EPI和PE细胞的分化,最终分别产生胚胎固有细胞和卵黄囊㊂在小鼠胚胎培养过程中抑制FGF/ MAPK信号可增加ICM内表达NANOG细胞的比例,FGF受体上调可导致ICM细胞转化为GATA6阳性PE前体㊂IGF1受体㊁IGF1和胰岛素受体分别在人PE和EPI中表达,通过磷酸肌醇3激酶(PI3K)/mTOR,可以维持胚胎内细胞干性的通路,如对PE发育有重要作用的FGF通路[25]㊂在小鼠胚胎培养基中,添加IGF和EGF有利于胚胎从透明带孵出㊂对小鼠胚胎研究表明,TGF-α和EGF能分别通过自分泌作用和旁分泌作用促进囊胚腔的扩张膨大㊂IL-1㊁IL-6㊁CSF-1以及TNF-α等生长因在人早期胚胎植入过程中担任不同的角色,最终促进胚胎成功着床以及后续的胚胎发育㊂Niu等[21]在体外建立了一个培养体系,在人胚胎培养体系的基础上进行优化,能够将高级哺乳动物食蟹猴的胚胎延时培养至20d,获得的胚胎能够出现谱系分化㊁胎盘形成㊁羊膜囊和卵黄囊成腔化以及原始生殖细胞分化等哺乳动物胚胎发育过程中的关键事件㊂他们通过ROCK抑制剂Y-27632促进了猴胚胎的发育,减少胚胎内细胞的凋亡㊂因此细胞因子及其作用通路是优化胚胎体外延时培养体系的重要研究方向㊂3.2㊀激素及有机物胚胎环境中的激素以及体内环境中的有机物质也对胚胎发育有着重要的作用㊂人绒毛膜促性腺激素(human chorionic gonadotropin,hCG)在体内可以吸附于TS表面,保护TS免受母体淋巴细胞的攻击㊂体内hCG的浓度也与囊胚发育质量有显著相关性㊂在体外,孕马血清促性腺激素和hCG的合用可以在一定范围内增加小鼠胚胎的发育数量和发育率[26]㊂雌激素也在小鼠早期胚胎发育过程中发挥重要作用,其在小鼠胚胎的体外培养体系中都有添加㊂牛磺酸和EDTA可以克服二细胞阻滞,一些氨基酸如谷氨酰胺也会参与蛋白质㊁DNA的合成,成为胚胎发育最初48h内的重要能量来源,而且谷氨酰胺具有防止细胞氧化的功效,一些研究表明,在培养液中添加谷氨酰胺,可提高小鼠在体外的囊胚孵化率[27]㊂4㊀单细胞转录组测序对胚胎发育的启示小鼠植入前胚胎体外培养体系较为成熟,能够培养至原条出现阶段㊂但随着囊胚的发育进行,胚胎内的细胞逐渐分化,所需求的信号分子也随之发生改变㊂这也对体外环境是否能够支持不同细胞系的发育提出了更高的要求㊂研究表明转录因子网络的协同作用对于胚胎发育成功的谱系分离是必不可少的[28-31]㊂对早期胚胎的单细胞转录组分析(single cell RNA sequencing,scRNA-seq)给胚胎发育领域带来了很多新的启发[25]㊂scRNA-seq在不到10年的时间里飞速发展,该技术能够揭示胚胎内的每一个细胞各自的发育事件及其产生的变化,详细研究特定基因和调控序列在发育中的作用㊂4.1㊀胚胎发育的基因表达Smart-seq2技术的出现及优化为胚胎发育的单细胞转录组学提供了一个很好的平台[32-34]㊂Mohammed等[35]人通过对E3.5到E6.5小鼠胚胎进行scRNA-seq来研究从着床期到早期原肠胚形成的调控环境,以探索从植入前到早期原肠胚早期的小鼠发育㊂有研究者将该方法直接应用于E3.5小鼠囊胚未分化ICM中的单个细胞,发现存在两个细胞群,一个具有PrE表达,另一个具有多能性EPI样基因表达㊂两个群体间差异表达的基因在胚胎中E4.5在形态分化的PE和EPI中得到了很好的保存,表明该方法成功地检测到了表面上同质的细胞群体在单细胞水平上细微但本质的差异[36-37]㊂为了建立小鼠囊胚ICM内EPI与PrE谱系分离的图谱,Ohnishi等[38]描述了单个ICM细胞的基因表达谱㊂这项研究提出了一个模型,即ICM中细胞基因的表达水平出现随机变异,且彼此独立,随后通过一系列信号通路增强支持了ICM谱系分离㊂众多胚胎scRNA-seq是胚胎内细胞群体的鉴定强有力的工具,为细胞命运的溯源提供证据㊂4.2㊀胚胎发育的细胞命运图谱体内哺乳动物细胞分化轨迹的全面描绘代表胚胎发育过程中基因表达变化的基线,其可用于再生医学的优化体外分化方案的参照[39]㊂Scialdone 等[39]通过单细胞转录组分析小鼠胚胎早期中胚层分化的问题㊂传统的多细胞DNA分析的实验方法依赖于细胞数较多的样本,不适合胚胎早期谱系多样性的研究㊂为了解决这个问题,他们使用scRNA-seq研究了1205个中胚层单细胞向造血系统的分化过程,涵盖了从E6.5早期原肠胚形成到E7.75原始红细胞生成的时间过程㊂在E6.5小鼠胚胎中,位于PrE和EPI交界处的细胞经历上皮-间充质转化㊂随后,细胞发生迁移进而获得不同的细胞命运,或围绕着EPI,或进入PrE形成卵黄囊㊁脐带和胎盘㊂细胞命运图谱显示,成熟组织,如血液和心脏,起源于原肠胚前成纤维细胞的特定区域,但仍然不清楚胚胎中众多细胞的命运是如何决定的[40]㊂Pijuan-Sala等[40]报告了在受精后6.5~8.5d 的九个连续时间点收集的来自小鼠胚胎的116,312个单细胞的转录谱㊂构建了从多能性向所有主要胚胎谱系的细胞分化的分子图谱,并探讨了内脏和原条衍生㊁内胚层融合的复杂事件[39]㊂Cao等[41]分析了在妊娠9.5~13.5d之间的61个胚胎大约200万个细胞的转录体㊂由此产生的 小鼠器官发生细胞图谱 (MOCA)提供了这一关键时期发育过程的全局视图[41-42]㊂scRNA-seq为追踪胚胎发育过程的所有细胞命运提供了可能,而且该领域还需要更深入的研究去完善其他哺乳动物胚胎谱系分化图谱㊂4.3㊀其他哺乳动物胚胎发育的单细胞测序研究与此同时,众多研究者对高级哺乳动物的胚胎也进行了单细胞转录组的研究,探索胚胎发育的复杂机制㊂EPI是哺乳动物所有体细胞和生殖细胞的起源㊂为了探索人类和灵长类多能性的个体发育, Nakamura等人[43]对食蟹猴(Macaca fascicularis)植入前和植入后的EPI进行了全面的scRNA-seq㊂结果表明,在囊胚发育过程中,食蟹猴EPI在着床过程中发生了重要的转录组变化㊂该研究不仅揭示了EPI发育的差异性和一致性,而且确定了关键物种间多能性谱的发育坐标,为更好地建立人胚胎的培养体系提供了线索㊂Zhou等人[44]结合体外培养的胚胎发育和scRNA-seq,系统分析了来自人的65个移植前后胚胎的8000多个单个细胞㊂转录组数据的无监督降维和聚类算法显示了EPI㊁PrE和TE谱系的逐步植入路径,表明胚胎在植入过程中为着床于子宫内膜做好了充分准备㊂该研究提供了对调节人类胚胎植入的复杂分子机制的理解,并有助于推进未来对早期胚胎发育和生殖医学的理解㊂众多的测序研究结果揭示了小鼠㊁高级哺乳动物以及人胚胎发育过程中的复杂路径,同时其详尽的转录组信息为体外延时培养获得的胚胎发育谱系提供了很好的参照标准,也为解析发育过程的分子机制提供了有力的支持㊂5㊀结论与展望胚胎是生命的起源,理解胚胎的发育历程有助于研究高等动物的发育过程㊂小鼠胚胎以其哺乳动物的胚胎特性和较短的发育时间等优势,成为了很好的胚胎研究的模型㊂猴胚胎㊁人胚胎的植入发育研究都是建立在小鼠胚胎的模型上来开展的㊂建立体外延时培养的小鼠胚胎体系,有助于我们更好的理解哺乳动物在着床后所经历的事件,揭示胚胎发育的过程㊂高级哺乳动物以及人胚胎的延时培养研究能够反哺小鼠胚胎体外延时培养体系的有效建立㊂总之,植入后胚胎体外培养这个领域在胚胎发育过程的研究中是至关重要的㊂目前针对胚胎的体外培养技术还存在不足,需要更多的研究投入㊂未来的研究需要更多地理解胚胎发育的机制以及发育过程中的事件,这可以为生殖医学等相关领域提供相应的基础,也可以帮助我们理解生殖医学中的多种问题,例如胚胎受孕后的流产㊁胚胎与子宫内膜的交互作用以及移植胚胎吸收等相关事件㊂参考文献:[1]㊀Bischof P,Campana A.Trophoblast differentiation and invasion:its significance for human embryo implantation[J].EarlyPregnancy,1997,3(2):81-95.[2]㊀Zernicka-Goetz M,Morris SA,Bruce AW.Making a firmdecision:multifaceted regulation of cell fate in the early mouseembryo[J].Nat Rev Genet,2009,10(7):467-477. [3]㊀Rossant J,Tam PP.Blastocyst lineage formation,earlyembryonic asymmetries and axis patterning in the mouse[J].Development,2009,136(5):701-713.[4]㊀Arnold SJ,Robertson EJ.Making a commitment:cell lineageallocation and axis patterning in the early mouse embryo[J].NatRev Mol Cell Biol,2009,10(2):91-103.[5]㊀Lawson KA,Meneses JJ,Pedersen RA.Clonal analysis ofepiblast fate during germ layer formation in the mouse embryo[J].Development,1991,113(3):891-911.[6]㊀Rossant J.Mouse and human blastocyst-derived stem cells:viveles differences[J].Development,2015,142(1):9-12. [7]㊀Xue Z,Huang K,Cai C,et al.Genetic programs in human andmouse early embryos revealed by single-cell RNA sequencing[J].Nature,2013,500(7464):593-597.[8]㊀Leung CY,Zernicka-Goetz M.Mapping the journey fromtotipotency to lineage specification in the mouse embryo[J].Curr Opin Genet Dev,2015,34:71-76.[9]㊀Paranjpe SS,Veenstra GJ.Establishing pluripotency in earlydevelopment[J].Biochim Biophys Acta,2015,1849(6):626-636.[10]㊀Takaoka K,Yamamoto M,Hamada H.Origin and role of distalvisceral endoderm,a group of cells that determines anterior-posterior polarity of the mouse embryo[J].Nat Cell Biol,2011,13(7):743-752.[11]㊀Morris SA,Grewal S,Barrios F,et al.Dynamics of anterior-posterior axis formation in the developing mouse embryo[J].NatCommun,2012,3:673.[12]㊀Bedzhov I,Leung CY,Bialecka M,et al.In vitro culture ofmouse blastocysts beyond the implantation stages[J].NatProtoc,2014,9(12):2732-2739.[13]㊀Montesano R,Schaller G,Orci L.Induction of epithelial tubularmorphogenesis in vitro by fibroblast-derived soluble factors[J].Cell,1991,66(4):697-711.[14]㊀Zhang K,Manninen A.3D cell culture models of epithelialtissues[J].Methods Mol Biol,2019,1926:77-84. [15]㊀Cukierman E,Pankov R,Stevens DR.Taking cell-matrixadhesions to the third dimension[J].Science,2001,29(5547):1708-1712.[16]㊀Ravi M,Paramesh V,Kaviya SR.3D cell culture systems-advantages and applications[J].J Cell Physiol,2015,230(1):16-26.[17]㊀Vinci M,Gowan S,Boxall F.Advances in establishment andanalysis of three-dimensional tumor spheroid-based functionalassays for target validation and drug evaluation[J].BMC Biol,2012,10:29.[18]㊀Mazzoleni G,Lorenzo DD,Steimberg N.Modelling tissues in3D:the next future of pharmacotoxicology and food research[J].Genes Nutr,2009,4(1):13-22.[19]㊀Gu Z,Guo J,Wang H,et al.Bioengineered microenvironment toculture early embryos[J].Cell Prolif,2020,53(2):e12754.[20]㊀Bedzhov I,Zernicka-Goetz M.Self-organizing properties of mousepluripotent cells initiate morphogenesis upon implantation[J].Cell,2014,156(5):1032-1044.[21]㊀Niu Y,Sun N,Li C,et al.Dissecting primate early post-implantation development using long term in vitro embryo culture[J].Science,2019,366(6467):eaaw5754. [22]㊀Shao Y,Taniguchi K,Townshend RF,et al.A pluripotent stemcell-based model for post-implantation human amniotic sacdevelopment[J].Nat Commun,2017,8(1):208. [23]㊀Ruane PT,Berneau SC,Koeck R,et al.Apposition toendometrial epithelial cells activates mouse blastocysts forimplantation[J].Mol Hum Reprod,2017,23(9):617-627.[24]㊀Copp AJ.The mechanism of mouse egg-cylinder morphogenesis invitro[J].J Embryol Exp Morphol,1981,61:277-287. [25]㊀Guo G,Huss M,Tong GQ.Resolution of cell fate decisionsrevealed by single-cell gene expression analysis from zygote toblastocyst[J].Dev Cell,2010,18(4):675-685. [26]㊀姚瀛,徐营,陈毅斐.激素对小鼠胚胎体外发育的影响[J].现代农业科技,2010,3:319-321,323.[27]㊀衣少莉.牛磺酸㊁EDTA和类固醇激素对小鼠胚胎体外发育的影响[D].北京:中国农业大学,2004.[28]㊀Jedrusik A,Parfitt DE,Guo G,et al.Role of Cdx2and cellpolarity in cell allocation and specification of trophectoderm andinner cell mass in the mouse embryo[J].Genes Dev,2008,22(19):2692-2706.[29]㊀Kang M,Piliszek A,Artus J,et al.FGF4is required for lineagerestriction and salt-and-pepper distribution of primitive endodermfactors but not their initial expression in the mouse[J].Development,2013,140(2):267-279.[30]㊀Ralston A,Rossant J.Cdx2acts downstream of cell polarizationto cell-autonomously promote trophectoderm fate in the earlymouse embryo[J].Dev Biol,2008,313(2):614-629. [31]㊀Niwa H,Toyooka Y,Shimosato D,et al.Interaction betweenOct3/4and Cdx2determines trophectoderm differentiation[J].Cell,2005,123(5):917-929.[32]㊀Ramsköld D,Luo S,Wang YC,et al.Full-length mRNA-Seqfrom single-cell levels of RNA and individual circulating tumorcells[J].Nat Biotechnol,2012,30(8):777-782. [33]㊀Kurimoto K,Yabuta Y,Ohinata Y,et al.An improved single-cell cDNA amplification method for efficient high-densityoligonucleotide microarray analysis[J].Nucleic Acids Research,2006,34(5):e42.[34]㊀Picelli S,Faridani OR,Björklund AK,et al,Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2[J].Nat Protoc,2014.9(1):171-181.[35]㊀Mohammed H,Hernando-Herraez I,Savino A,et al.Single-celllandscape of transcriptional heterogeneity and cell fate decisionsduring mouse early gastrulation[J].Cell Rep,2017,20(5):1215-1228.[36]㊀Rossant J,Chazaud C,Yamanaka Y.Lineage allocation andasymmetries in the early mouse embryo[J].Philos Trans R SocLond B Biol Sci,2003,358(1436):1341-1349. [37]㊀Picelli S,BjörklundÅK,Faridani OR,et al.Smart-seq2forsensitive full-length transcriptome profiling in single cells[J].Nat Methods,2013,10(11):1096-1098.[38]㊀Ohnishi Y,Huber W,Tsumura A,et al.Cell-to-cell expressionvariability followed by signal reinforcement progressivelysegregates early mouse lineages[J].Nat Cell Biol,2014,16(1):27-37.[39]㊀Scialdone A,Tanaka Y,Jawaid W,et al.Resolving earlymesoderm diversification through single-cell expression profiling[J].Nature,2016,535(7611):289-293.[40]㊀Pijuan-Sala B,Griffiths JA,Guibentif C,et al.A single-cellmolecular map of mouse gastrulation and early organogenesis[J].Nature,2019,566(7745):490-495.[41]㊀Cao J,Spielmann M,Qiu X,et al.The single-cell transcriptionallandscape of mammalian organogenesis[J].Nature,2019,566(7745):496-502.[42]㊀Shahbazi MN,Zernicka-Goetz M.Deconstructing andreconstructing the mouse and human early embryo[J].Nat CellBiol,2018,20(8):878-887.[43]㊀Nakamura T,Okamoto I,Sasaki K,et al.A developmentalcoordinate of pluripotency among mice,monkeys and humans[J].Nature,2016,537(7618):57-62.[44]㊀Zhou F,Wang R,Yuan P,et al.Reconstituting thetranscriptome and DNA methylome landscapes of humanimplantation[J].Nature,2019,572(7771):660-664.收稿日期 2020-07-03。

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》范文

《小鼠卵母细胞干细胞体外分离、建系及其功能研究》篇一一、引言近年来,随着生物医学的快速发展,小鼠卵母细胞干细胞(Oogonia)的体外分离、建系及功能研究已成为生命科学领域的研究热点。

本篇论文将就这一课题展开讨论,探讨小鼠卵母细胞干细胞的分离、建系及其功能的相关研究进展,为今后的研究提供理论依据。

二、小鼠卵母细胞干细胞的体外分离1. 分离技术小鼠卵母细胞干细胞的体外分离主要采用酶消化法。

该方法利用胰蛋白酶等酶类物质将卵母细胞从卵巢组织中分离出来,以获得纯净的干细胞。

此外,还可以采用机械分离法、激光捕获法等方法进行分离。

2. 分离条件在分离过程中,需要严格控制温度、pH值、酶浓度等条件,以避免对干细胞造成损伤。

此外,还需要对卵巢组织进行预处理,如切片、消化等,以提高分离效率。

三、小鼠卵母细胞干细胞的建系1. 培养体系在体外培养过程中,需要选用适宜的培养基和培养条件,如添加生长因子、激素等物质,以满足干细胞的生长和分化需求。

同时,还需注意无菌操作和细胞污染的预防。

2. 建系方法建系过程中,主要采用单细胞克隆法。

该方法通过将单个干细胞种植于培养皿中,待其形成克隆后进行扩增和传代,从而建立稳定的细胞系。

此外,还可以采用血清饥饿法、基因编辑等技术手段进行建系。

四、小鼠卵母细胞干细胞的功能研究1. 分化能力小鼠卵母细胞干细胞具有强大的分化能力,可以分化为多种细胞类型。

通过对其分化能力的研究,可以了解其在生殖系统及其他相关系统中的作用。

2. 生物活性物质分泌研究表明,小鼠卵母细胞干细胞可以分泌多种生物活性物质,如生长因子、细胞因子等。

这些物质在体内具有重要生理功能,对研究其作用机制具有重要意义。

3. 疾病模型应用通过基因编辑等技术手段,可以将小鼠卵母细胞干细胞应用于疾病模型的研究。

例如,可以通过在干细胞中引入特定基因突变,模拟某些遗传性疾病的发病过程,为相关疾病的研究提供有力工具。

五、结论本篇论文主要讨论了小鼠卵母细胞干细胞的体外分离、建系及其功能研究的相关内容。

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》范文

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》范文

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》篇一一、引言随着生物医学技术的不断发展,体外培养技术已成为研究早期胚胎发育及多能干细胞建立的重要手段。

小鼠作为常用的实验动物模型,其早期胚胎发育及外胚层多能干细胞的研究对于理解人类胚胎发育及干细胞生物学具有重要意义。

然而,体外培养条件对小鼠早期胚胎的发育及多能干细胞的建立具有显著影响。

本文旨在探讨不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响。

二、材料与方法1. 实验材料小鼠早期胚胎、培养基、生长因子、不同浓度的生长因子、不同基质等。

2. 实验方法(1)将小鼠早期胚胎置于不同体外培养条件下进行培养;(2)观察并记录各组小鼠胚胎的发育情况;(3)收集各组外胚层细胞,进行多能性鉴定及基因表达分析;(4)比较各组间小鼠胚胎的发育情况及外胚层多能干细胞的建立情况。

三、实验结果与分析1. 早期胚胎发育情况通过不同体外培养条件的比较,我们发现小鼠早期胚胎在不同培养条件下的发育情况存在显著差异。

具体表现为:(1)在适宜的生长因子浓度和基质条件下,小鼠早期胚胎的发育速度较快,胚胎质量较高;(2)在生长因子浓度过高或过低的条件下,小鼠早期胚胎的发育受到抑制,胚胎质量较差;(3)在缺乏适宜基质的情况下,小鼠早期胚胎的黏附性降低,发育受阻。

2. 外胚层多能干细胞的建立情况在体外培养过程中,我们收集了各组外胚层细胞,进行了多能性鉴定及基因表达分析。

结果显示:(1)在适宜的体外培养条件下,外胚层细胞具有较高的多能性,能够成功建立外胚层多能干细胞系;(2)在生长因子浓度过高或过低的条件下,外胚层细胞的多能性受到抑制,无法成功建立外胚层多能干细胞系;(3)在适宜的基质条件下,外胚层干细胞的黏附性及生长速度均有所提高,有利于干细胞的建立与维持。

四、讨论与结论通过本研究,我们发现体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞的建立具有重要影响。

适宜的生长因子浓度和基质条件有利于提高小鼠早期胚胎的发育速度和质量,同时也有利于外胚层多能干细胞的建立与维持。

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》范文

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》范文

《不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响》篇一一、引言在生物学和医学领域,小鼠作为实验动物模型被广泛使用。

其早期胚胎发育及外胚层多能干细胞的建立,对于研究人类胚胎发育、疾病治疗及再生医学等领域具有重要意义。

而体外培养条件作为影响这些过程的关键因素,其影响不容忽视。

本文旨在探讨不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育及外胚层多能干细胞建立的影响。

二、材料与方法1. 实验材料本实验采用小鼠早期胚胎及外胚层多能干细胞为研究对象。

2. 实验方法(1)体外培养条件的设置:设定多组不同的温度、pH值、氧气浓度及培养基等条件;(2)胚胎培养:将小鼠早期胚胎置于不同条件下进行培养,观察其发育情况;(3)干细胞培养:从外胚层组织中提取多能干细胞,置于不同条件下进行培养,观察其生长及分化情况。

三、不同体外培养条件对小鼠早期胚胎发育的影响1. 温度影响研究表明,适宜的温度范围对小鼠早期胚胎的发育至关重要。

过高或过低的温度都会导致胚胎发育受阻或死亡。

在37℃左右的条件下,胚胎发育最为良好。

2. pH值影响pH值是影响胚胎发育的另一重要因素。

在适宜的pH值范围内(约7.2-7.4),胚胎能够正常进行细胞分裂和器官原基分化。

当pH值偏离此范围时,胚胎发育将受到抑制。

3. 氧气浓度影响氧气浓度对胚胎发育也有显著影响。

低氧条件下,胚胎发育速度减慢,而高氧条件下则可能导致胚胎凋亡。

因此,适宜的氧气浓度对胚胎发育至关重要。

四、不同体外培养条件对外胚层多能干细胞建立的影响1. 培养基影响不同类型的培养基对多能干细胞的生长和分化具有显著影响。

某些培养基能够促进干细胞的增殖和自我更新,而另一些则可能诱导其向特定方向分化。

2. 细胞因子影响细胞因子在多能干细胞的建立和维持中起着关键作用。

例如,某些细胞因子能够促进多能干细胞的增殖和分化,而另一些则可能抑制其分化,促进其自我更新。

因此,在体外培养过程中,细胞因子的种类和浓度也是影响多能干细胞建立的重要因素。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

小鼠胚胎体外培养研究
【摘要】本文所选用的实验材料为小鼠原核胚,主要研究几种不同溶液、溶液所含不同生长因素、不同培养气象等所对小鼠原核胚发展产生的影响,主要目的是最终找到一种适于小鼠胚胎成长的培养环境以及溶液成分,进而不断优化小鼠胚胎体外培养的体系结构。

并且为其它哺乳类动物的胚胎体外培养提供一些参考。

【关键词】小鼠;胚胎;体外培养
0.前言
在迈入新世纪以后,我国的科学技术发展十分迅猛,尤其是我国的生物科技得到了广泛的推广与使用,从而加快了人类社会的发展。

胚胎工程是指主要针对胚胎哺乳类动物的胚胎所进行的工程技术操作,之后再将胚胎继续发育,从而使人们获得所需的成体动物的一种全新技术。

当前,胚胎工程在蓄牧种繁殖预遗传资源保护、利用方面得到了广泛推广和使用,并且在人类疾病真毒、药物研发等研究方面蕴含巨大应用价值,因此,受到人们高度的关注。

1.材料预方法
1.1实验所需的材料
实验所需的动物:清洁过的雌性预雄性小鼠,所选用的雌性小鼠年龄约在28—35日的日龄范围内,共约250只,而选用的雄性小鼠日龄在56天以上,共有32只。

选用的实际预药品主要有,丙酮酸钠、青霉素钠、链霉素、探索氢钠、氯化镁、牛磺酸等。

而所选用的仪器主要有倒置显微镜与实体显微镜,离心机、ph仪、显微
图像管理系统等。

小鼠胚胎培养液主要有三种,即htf、czb、ksom 溶液。

在配制每一种溶液时都要进行过滤,以便除菌,并且还要放在4摄氏度的环境下进行保存。

1.2小鼠超数排卵
从中选用体重超过25g雌性小鼠,要在小鼠腹腔中注射
pmsg20iu,待48小时之后再在腹腔中注射hcg10iu。

雄性小鼠要选用体重超过30g的,严格按照雌性鼠预雄性鼠比例为2:1的比例放在同一个笼中混合养殖,在第二天早晨要检查小鼠的阴道栓,将具有阴道栓的雌性小鼠在20—23小时范围内提取卵母细胞预卵丘细胞的复合体。

1.3采集小鼠的原核胚
在注射hcg后的22小时后,采用颈椎脱臼方法将小鼠处死,在用酒精消毒之后,剪开腹腔,在沿着小鼠卵巢端剪取输卵管,将输卵管放在生理盐水的35mm培养器皿中,然后将培养器皿放进实验室,将小鼠的输卵管放入到洗卵液培养器皿中浸泡一段时间。

与此同时,要求实验人员在体视显微镜下准确找到输卵管膨大位置,再使用专门的注射器将其划破,然后轻轻挤压小鼠输卵管端部,从而大量溢出小鼠卵母细胞复合体。

1.4培养小鼠原核胚
首先,要制作一胚胎培养碟,然后将小鼠原核胚放入其中,并且在上部覆盖一层石蜡油,将其放置在碳培养箱中,调节至37度环境下预热四个小时。

把细胞复合体取出放在500ulhtf溶液中,
利用移液枪吹打几次,并将脱光卵丘细胞原核胚抽取出。

多次反复进行此操作,待卵细胞全部脱落后,再将其移动到胚胎培养碟中培养。

在移入时标记为0小时,在24小时以后,便开始观察小鼠卵细胞的分裂情况,而在48小时之后便开始观察小鼠细胞分裂情况,在72小时后观察小鼠桑椹胚分裂,在96小时后观察小鼠囊胚分裂轻,而在120小时之后,便开始观察小鼠囊胚孵化情况。

1.5实验设计方案
实验1不同培养基培养小鼠原核胚体,将正常受精之后的小鼠原核胚分为3小组,并且分别放入到三种不同培养基中,即htf、czb、ksom中,共培养约120小时。

并且要不断观察小鼠原核胚发育状况,对三组胚胎发育率加以统计,此次实验要进行多次。

实验2置于不同浓度的egf或者是bfgf的ksom溶液培养小鼠原核胚体将受精后的正常原核胚分成7组,分别在含有egf以及bfgf的kosm溶液中培养120小时。

并且要不断观察小鼠的原核胚发育状况,再将各组培养基中小鼠胚胎发育率加以统计。

此实验重复进行几次。

实验3利用wow法培养小鼠原核胚,在受精后的原核胚分成2组,利用wow法以及成组培养法培养小鼠原核胚胎。

在培养约120小时左右,观察其原核胚发育情况,统计各组胚胎发育率,此实验重复进行多次。

实验4将小鼠原核胚体放在不同培养气相中培养,将受精后的原核胚分成3组,分别放在不同的混合气体中培养约120小时。


察小鼠原核胚体发育状况,统计各组胚胎发育率。

此实验重复进行多次。

2.结果分析
2.1三组溶液对小鼠原核胚体发育产生的影响
通过实验我们得出:在这三组溶液中,其卵裂率、囊胚率、囊胚细胞并没有较大差异。

其中,在koms溶液中的卵裂率是最大的,而czb溶液中囊胚率比其它两种溶液要高,然而,htf囊胚细胞数是最多的。

2.2 ksom中egf或者bfgf含量不同对小鼠原核胚体发育产生的影响
在培养基中,加入不同溶度的egf或者是bfgf,并不会对小鼠原核胚发育产生较大的影响。

2.3 wow对小鼠原核胚体发生产生的影响
实验结果表明:从卵裂率方面来分析,wow要高于对照组,但是,效果不是十分明显;从小鼠受精细胞的囊胚率、囊细胞数角度分析,利用wow法分裂能力要明显高于对照组。

因此,便得出培养小鼠原核胚应该最好利用wow法,其培养效果较好。

2.4培育气相不同对小鼠原核胚胎发育产生的影响
通过实验证明,在氧气浓度为5%的ksom培养液与在肺气组czb 溶液中的的培养效果最好。

3.讨论
3.1不同溶液对小鼠原核胚体发育影响
对于哺乳类动物胚体的发育来说,是受很多因素影响的,但是,最主要的影响因素是培养基。

然而,当前,哺乳类动物胚体体外发育往往会选用集中溶液包含htf、czb、ksom等。

虽然其它类型的胚胎培养液也可以支持哺乳动物胚胎的体外发育。

然而,在体外培育胚胎过程中,常表现出一定程度的发育阻滞。

在通过大量实验证明,htf培养效果最好。

3.2不同浓度egf或者是bfgf对小鼠胚体发育带来的影响
通过实验证明,小鼠的早期胚胎在体外发育过程中,因小鼠胚体原性生长因素在胚体发育中有较强的分泌调控能力,能够快速使胚体发育至囊胚时期。

然而,只依靠内源性生长因素,会导致胚胎发育非常缓慢,并且囊胚的发育率偏低,最终导致囊胚细胞较少。

因此,胚胎发育需要来自怒踢生殖管道分泌的生长因子的共同参与。

但是,如果不具有外源性生长因素,那么会严重阻碍小鼠胚胎发育。

3.3培养方法不同对小鼠胚体发育产生的影响
在体外培养胚胎时,采用微滴方式可以促进胚胎的发育,但是,在选用wow法培养胚胎时,因胚胎间相互隔离,能够使胚胎分泌的因子不被稀释,通过自分泌的方式作用在胚胎上,与此同时,又可以阻碍有毒物质作用在胚胎上,阻碍其发育率。

3.4培养气相不同对小鼠胚体发育产生的影响
通过上述实验证明,在氧气浓度为5%的条件下,kosm培养溶液效果要高度其它几组,但是,其它两组培养效果没有较大差异。


然小鼠胚体能够在高浓度的氧气环境中生长预发育,然而,在低浓度氧气环境下,能够提高胚胎的存活率,更会促进胚胎的发育。

【参考文献】
[1]刘洋,马兰,周红林.胰岛素对不同时期icr小鼠胚胎体外发育的影响[j].昆明医学院学报,2009(11).
[2]钱怀剑,丁彪.小鼠胚胎体外发育培养基中氨基酸含量变化[j].动物学杂志,2010(1).
[3]林峰,陈玉霞.小鼠超数排卵与早期胚胎体外培养效果研究[j].江西农业学报,2010(12).
[4]李复煌,董晓晨.fcs和bsa对小鼠早期胚胎体外培养的影响[j].北京农业,2010(15).。

相关文档
最新文档