线虫鉴定通用引物

合集下载

松材线虫病分子检测鉴定技术规程

松材线虫病分子检测鉴定技术规程

松材线虫病分子检测鉴定技术规程松材线虫病是由松材线虫引起的一种严重的林木病害,对林业生产造成了严重的危害。

为了及时发现和控制松材线虫病,科研人员开发了分子检测鉴定技术,以提高病害的检测效率和准确性。

下面将介绍松材线虫病分子检测鉴定技术规程。

1. 样品采集和处理。

首先,需要采集受感染的树木或土壤样品作为检测的对象。

对于树木样品,可以选择受感染的树皮、树脂或树液作为检测样品;对于土壤样品,可以选择受感染树木周围的土壤作为检测样品。

采集的样品需要进行处理,如粉碎或提取DNA等操作,以便后续的分子检测。

2. DNA提取。

从样品中提取松材线虫的DNA是分子检测的关键步骤。

常用的DNA提取方法包括CTAB法、酚/氯仿提取法等。

提取的DNA需要经过纯化和浓缩处理,以保证后续的PCR反应的准确性和灵敏度。

3. PCR扩增。

PCR(聚合酶链式反应)是分子检测中常用的技术手段,可以扩增目标DNA序列,从而进行检测和鉴定。

设计特异性引物对松材线虫的DNA进行扩增,以获得特异性的PCR产物。

4. 凝胶电泳分析。

通过凝胶电泳分析PCR产物,可以判断样品中是否存在松材线虫的DNA。

在凝胶电泳中,目标DNA序列会呈现特异的条带,从而进行鉴定和分析。

5. 数据分析与结果判读。

最后,对凝胶电泳分析的结果进行数据分析和结果判读。

根据PCR产物的大小和特异性条带的出现,可以判断样品中是否存在松材线虫的DNA,从而进行病害的鉴定和诊断。

总之,松材线虫病分子检测鉴定技术规程是一项重要的技术手段,可以提高对松材线虫病的检测效率和准确性。

通过标准化的操作流程和技术规程,可以有效地应用于病害的监测和防控工作中,为林业生产提供有力的技术支持。

陕西省甘薯上马铃薯腐烂茎线虫的生物型鉴定及综合防控技术

陕西省甘薯上马铃薯腐烂茎线虫的生物型鉴定及综合防控技术

陕西省甘薯上马铃薯腐烂茎线虫的生物型鉴定及综合防控技术刘晨李英梅杨艺炜陈志杰(陕西省生物农业研究所,陕西西安715299)摘要马铃薯腐烂茎线虫(Ditylenchus destructor)是危害甘薯的重要植物病原线虫,其发生有逐年加重的趋势。

通过形态学鉴定及分子生物学鉴定,确定危害陕西甘薯的马铃薯腐烂茎线虫生物型主要为A型,其1年发生8~10代,在27~28℃、20~24℃、6~10℃条件下,完成一个世代的时间分别为18d、20~26d和68d。

马铃薯腐烂茎线虫主要以卵、幼虫、成虫在薯块、土壤、粪肥中越冬,种薯和种苗是其主要传播途径。

本文提出了严格进行种薯检测、建立无病留种田和挑选健康种薯、温汤浸种、覆膜栽培、轮作倒茬、清洁田园、高剪苗、药剂防治等适宜陕西区域推广应用的综合防控技术,以期为减轻马铃薯腐烂茎线虫对甘薯的危害提供参考。

关键词马铃薯腐烂茎线虫;甘薯;生物型;发生规律;综合防控技术;陕西省中图分类号S433.89文献标识码A文章编号1007-5739(2023)09-0109-04DOI:10.3969/j.issn.1007-5739.2023.09.031开放科学(资源服务)标识码(OSID):Biological Type Identification and Integrated Control Technology of Ditylenchus destructoron Sweet Potato in Shaanxi ProvinceLIU Chen LI Yingmei YANG Yiwei CHEN Zhijie(Shaanxi Institute of Biological Agriculture,Xi'an Shaanxi715299)Abstract Ditylenchus destructor is an important plant pathogenic nematode to sweet potato,which has aggravated year by year.Through morphological identification and molecular biological identification,it was determined that Ditylen-chus destructor harming sweet potato in Shaanxi Province was mainly type A.It occurred8-10generations in a year. Under the condition of27-28℃,20-24℃and6-10℃,a generation was completed for18d,20-26d and68d, respectively.Ditylenchus destructor mainly overwintered in potato blocks,soil and manure as eggs,larvae and adults, and seed tuber and seedling were the main transmission routes.In this paper,the integrated prevention and control techniques suitable for popularization and application in Shaanxi region were put forward,such as strictly detecting of seed tubers,constructing disease-free field,selecting healthy seed tubers,soaking seeds in hot water,plastic film covering cultivation,crop rotating,cleaning the field,high seedling cutting,pesticide controlling,so as to provide a reference for decreasing the damage of sweet potato caused by Ditylenchus destructor.Keywords Ditylenchus destructor;sweet potato;biological type;regularity of outbreak;integrated control tech-nology;Shaanxi Province甘薯属旋花科番薯属,为蔓生性草本块茎植物,具有淀粉含量高、营养丰富、高产稳产、适应性强、抗逆性强、投入少且产出高的优点。

一种鉴定4种根结线虫的PCR方法

一种鉴定4种根结线虫的PCR方法

一种鉴定4种根结线虫的PCR方法景晓辉;吴伦英;汪军;黄俊生【摘要】A rapid and sensitive polymerase chain reaction (PCR) method for the detection and identification of four most common and economically important Meloidogyne spp. was developed. By using previously published primer #C2F3/#1108, fragments of three sizes were detected. The M. incognita and M. javanica reactions produced a 1.7 kb fragment; the M. arenaria reaction, a 1.1 kb fragment; and the M. hapla reaction resulted in a O.S kb fragment. Based on the sequence of oesophageal gland protein gene SEC-1, specific primer MI-F/MI-R was designed and tested for its amplification specificity and efficiency against populations of M. incognita. This resulted in two pairs of primers that were used in combination to reliably identify Meloidogyne incognita, M. arenaria, M. javanica and M. hapla.%根结线虫(Meloidogyne spp.)是威胁全球农业生产的重要病原物,每年给农业生产造成巨大的经济损失.利用两对引物#C2F3/#1108和MI-F/MI-R建立了一种适用于4种根结线虫分子鉴定的技术.结果表明:引物#C2F3/#1108可将根结线虫分为南方根结线虫或爪哇根结线虫、花生根结线虫和北方根结线虫;引物MI-F/MIR可用于特异性区分南方根结线虫和爪哇根结线虫.【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2013(034)003【总页数】3页(P433-435)【关键词】聚合酶链式反应;食管腺蛋白基因;根结线虫;鉴定【作者】景晓辉;吴伦英;汪军;黄俊生【作者单位】中国热带农业科学院环境与植物保护研究所农业部热带作物有害生物综合治理重点实验室海南省热带农业有害生物监测与控制重点实验室海南省热带作物病虫害生物防治工程技术研究中心海南海口 571101【正文语种】中文【中图分类】S432根结线虫(Meloidogyne species)是一类危害非常严重的植物病原线虫,广泛分布于世界各地,危害超过3 000种植物[1]。

松材线虫检疫鉴定方法

松材线虫检疫鉴定方法

松材线虫检疫鉴定方法
松材线虫(Bursaphelenchus xylophilus)是一种寄生性线虫,可能对松树造成严重危害。

为了及时检测和防治松材线虫的传播,
科学家们发展了一系列松材线虫检疫鉴定方法。

1. PCR技术(聚合酶链式反应):PCR技术是一种常用的
DNA分子生物学方法,用于检测松材线虫的存在。

该方法可通过
放置松树样品中提取的DNA与松材线虫的特定引物结合,从而扩
增目标DNA。

通过观察PCR反应结果,可以确定松树样品是否受到了松材线虫的感染。

2. 寄主植物检疫:松材线虫主要通过传染松树传播,因此寄主
植物检疫是一种常见的鉴定方法。

检疫人员通常会观察松树的枝干、树干和根系等部位是否存在松材线虫的病征,如褐变、水渗
出等。

同时,他们还会对松树样品进行松材线虫的提取、培养和
鉴定,以确认是否受到感染。

3. 间接检测方法:除了直接检测松树样品中的线虫外,科学家
们还开发了一些间接检测方法来鉴定松材线虫的存在。

例如,可
以利用诱捕树干中的甲醇作为挥发物质,吸引松材线虫进入陷阱。

研究人员还可以观察昆虫等受松材线虫影响的寄生生物,从而推
断松树样品中是否存在线虫。

这些松材线虫检疫鉴定方法的发展为我们及时发现和控制松材线虫的传播提供了有力的工具。

通过采用这些方法,我们能够更准确地识别和确认松树样品中是否存在松材线虫,并及时采取相应的防治措施,以避免松树病害的进一步传播。

用PCR-RFLP法在海鱼中检出简单异尖线虫幼虫

用PCR-RFLP法在海鱼中检出简单异尖线虫幼虫
是, 已有学 者报 告淡水 鱼感染 异尖 线虫 。Moae 等 rvc 在 捷克 的淡 水 鱼 中发 现 了异尖 线 虫圜 。异 尖 线 虫属 于 蛔 目( saiia 、 尖科 ( nskde , 要包 括 Acr d )异 d A i ia ) 主 a 4个 属 即伪 地 新 线 虫 属 ( su oern v ) 异 尖 线 Ped t a oa 、 r 虫 属 ( ns k ) 对 盲 囊 线 虫 属 ( o w ce u 和 A i i 、 a s C n a a c m) 宫脂 线虫 属 ( ytrtya im) H s oh lcu 的线 虫 , A p ye e 如 h s—
A A A G一 A T 3 :上 游 引 物 C S 5一 G A C O : T A T T G T
T A A G G A G 3: 上 游 引 物 H D:5 - C G A C G一 A "G C
IC C TA G C C G A T 一 T A T G T A 3 :上 游 弓 物 A E : I P 1
报道 , 而后 越 来越 多 的病 例在 日本 、 国 、 国等 国 韩 法 家发现 。 目前 全球 的人体感 染病 例 已报 告 3万多例 .
并 且呈 不断 上升趋 势 。到 目前 为止 已报道 可引起 人
异 尖线 虫病 的主要有 6种 异尖线 虫 ,如简单 异尖 线 虫 ( i kss pe ) 典 型异 尖 线虫 ( .y /a 、 Ans i i l 、 a m x A t c ) 抹 p 香 鲸异尖 线虫 等 。异 尖线虫 在世 界范 围 内分 布 十分 广 泛 ,尤其 在 北太平 洋和 北大西 洋沿 岸及其 岛屿 的
TCT T CCT CCG r】 I[ T CT 一 3。

利用PCR-RFLP技术鉴别异尖线虫

利用PCR-RFLP技术鉴别异尖线虫
nq e b s d o e I S g n e u n e sa smp e p cf t o o h d n i c t n o e e n mao e . i u a e n t T e e s q e c swa i l ,s e i c me d f r e i e t ai ft s e t s h i h t f o h d Ke r s C R L y wo d :P R- F P;A i kssm l ns i ipe a x;A i kstp c ns i y i a a;C r r c c u ot a a c m p ;Ra hd a a i ti ir t . p i a c r r h u i s c
ZHENG ng me ,GONG n— i g Ya — i Ya q n ,CHEN n—h n 2 Xi z o g
( . o eeo n l c ne F j gc tr adFrsyU ie i , uhu F j n30 0 ,C ia 1 Cl g f i i c , ui A r u ue n oet nvrt F zo , ui 50 2 hn ; l A ma S e n a il r sy a 2 X a nE t -xtnpc o n ur t eB ra , i e , ui 6 0 2 C i ) .i me n yE iIset nadQ aa i u u Xa n F j 3 1 1 , hn r i nn e m n a a
福建农林大学学报(自然科学版 )
Ju a o uinA r ut eadF rsyU i rt N trl cec dt n o rl f j gi l r n oet nv sy( a a S i eE io ) n F a c u r ei u n i

五种短体线虫 DNA 条形码鉴定方法

五种短体线虫 DNA 条形码鉴定方法

五种短体线虫 DNA 条形码鉴定方法魏亚东;容万韬;赵立荣;王金成;黄国明;郭京泽;孙建华【摘要】以穿刺短体线虫、咖啡短体线虫、伤残短体线虫、斯克里布纳短体线虫和落选短体线虫5种短体线虫的18个种群为试验材料,将其测序获得的ITS序列与GenBank中已提交的短体线虫序列进行了Blast比对和系统发育分析,以验证核糖体ITS序列作为DNA条形码的可行性。

结果显示,核糖体ITS序列作为DNA条形码可以很好的用于鉴别以上5种短体线虫。

%The root lesion nematodes,Pratylenchus Flipjev,1936,are among the widespread and seriously de-structive plant endoparasites around the world .Due to the instability of morphological characteristics ,it was very dif-ficult to identify this kind of nematodes just by their morphology .In this study ,18 populations of the following 5 Pra-tylenchus species,i.e.Pratylenchus penetrans,P.coffeae,P.vulnus,P.scribneri and P.neglectus, were used as ex-periment materials ,and their ribosomal ITS sequences were obtained to conduct blast alignment and phylogenetic a -nalysis with other ribosomal ITS sequences of Pratylenchus species submitted in GenBank in order to verify the fea-sibility of ITS regions as DNA barcode .The results showed that DNA barcoding approach using ribosomal ITS re-gions as target fragment could be readily used for identification of the above-mentioned 5 Pratylenchus species .【期刊名称】《华北农学报》【年(卷),期】2013(000)006【总页数】4页(P136-139)【关键词】短体线虫;ITS;系统发育;DNA条形码【作者】魏亚东;容万韬;赵立荣;王金成;黄国明;郭京泽;孙建华【作者单位】天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心,天津 300461;天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心,天津 300461; 天津师范大学,天津300387;广东出入境检验检疫局,广东广州 510623;天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心,天津300461;天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心,天津 300461;天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心,天津 300461;天津师范大学,天津 300387【正文语种】中文【中图分类】S433.89短体属线虫(Pratylenchus Flipjev,1936)又称根腐线虫,是世界广泛分布且破坏性极大的迁移性植物内寄生线虫类群之一[1]。

一种鉴定4种根结线虫的PCR方法

一种鉴定4种根结线虫的PCR方法

p r i me r# C 2 F 3 / # 1 1 0 8 . f r a g m e n t s o f t h r e e s i z e s w e r e d e t e c t e d . T h e M. i n c o g n i t a a n d M. j a v a n i c a r e a c t i o n s p r o d u c e d
1 海 南大 学农 学院 .海 南海 口 5 7 0 2 2 8 中 国 热 带 农 业 科 学 院 环 境 与 植 物 保 护 研 究 所
2 。 蠢 海 南 薯 省 羹 热 喾 带 农 业 有 害 生 物 监 测 与 控 制 重 耋 点 羹 实 篓 验 妻 室 … 海 南 … 海 口 5 7 1 1 0 1
热 带作 物 学 报 2 0 1 3 ,3 4 ( 3 ) :4 3 3 — 4 3 5
Chi ur n e s e J o n a l o f Tr o pi c a l Cr o p s
. . . . . . .
— — — —

种鉴定 4种根结线虫 的 P C R方法
景 晓辉 ,吴 伦 英 ” ,汪 军 黄 俊 生 料
Ab s t r a c t A r a p i d a n d s e n s i t i v e p o l y m e r a s e c h a i n r e a c t i o n( P C R )m e t h o d f o r t h e d e t e c t i o n a n d i d e n t i i f c a t i o n o f
# C 2 F 3 / # 1 1 0 8可将 根结 线 虫 分 为 南 方 根 结 线 虫 或 爪 哇 根 结 线 虫 、花 生 根 结 线 虫 和北 方 根 结 线 虫 : 引 物 MI — F / MI — R可用于特异性区分南方根结线虫和爪哇根结线虫。 关键 词 聚 合酶 链 式 反 应 ;食 管 腺 蛋 白 基 因 ;根 结 线 虫 ; 鉴 定 s 4 3 2 文献 标 识 码 A

植物寄生线虫分子鉴定技术研究进展

植物寄生线虫分子鉴定技术研究进展

植物寄⽣线⾍分⼦鉴定技术研究进展植物寄⽣线⾍分⼦鉴定技术研究进展学⽣:指导⽼师:摘要:20世纪80年代以来,分⼦⽣物学技术在各个研究领域得到⼴泛应⽤,分⼦鉴定诊断技术也成为植物线⾍学研究的新途径。

本⽂将简述运⽤多种分⼦技术,如限制性染⾊体⽚段长度多型性(RFLPS)、特异性DNA探针、线粒体DNA、合成低聚核苷酸,rDNA–ITS–PCR 等分⼦⽣物学⽅法来区分、鉴定植物寄⽣线⾍的⽅法。

关键词:植物寄⽣线⾍; 分⼦⽣物学; DNA序列; 线⾍分⼦鉴定Research progress of plant-parasitic nematodeidentification technologyStudent:YANG Hao-naInstructor:HUANG Guo-huaAbstract:Since in the 1980 of the 20th century, molecular biological techniques in all areas of research widely, molecular identification of diagnosis new approach to technology has also become a study of plant-parasitic nematodes. Brief introduction of this article using various molecular techniques, Such as restrictive chromosome fragment length polymorphism(RFLPS), Specific DNA probe, Mitochondrial DNA, Synthesis of oligonucleotide, rDNA–ITS–PCR identification of molecular biological methods to distinguish, such as methods of plant-parasitic nematodes.Key words:Plant-parasitic nematodes; Molecular Biology; DNA sequences; Nematode identification植物寄⽣线⾍是⼀类重要的病原微⽣物,分布⼴、种类多,全世界已报道的植物线⾍有200多属5000余种,给农林业⽣产造成严重危害。

危害马铃薯的茎线虫分离鉴定*

危害马铃薯的茎线虫分离鉴定*

I e tfc to fD i l n h sd s r c o r m d n i a in o t e c u e tu t r fo i y
p tte nZ a g k u oao si h n j o ,He e i a bi
Gu a xn, Ja n o Qu n i in He g
Z a gik uCt , b i rvn e t a enie t i stp rL o i l c u et co h r eb sd h n j o i He e o ic .I h dbe n ie a eB o fD t e h sdsr trT on ae a y P d fd y yn u
o b ip o i c . fHe r v n e e Ke r s p t t y wo d o a o; Di ln h sd sr c o ; mo p o o i a d n iia i n; I e u n e a a y i t e c u etu tr y r h l g c l e tfc to TS s q e c n lss i
1 材 料 与 方 法
1 1 试 验材 料 .
从我国甘薯上分离获得 的马铃薯腐烂茎线虫 I S区 T
序 列进行 比较 , 现 其 种 群 内存 在 差 异 , 据 I 1 发 依 TS 区域序列 长短 可分 为 A、 体或称 S L群体 , 染 B群 、 侵 甘 薯 的优势 群体 为 A 或 S群体 , I S 其 T 1区缺 失 1 8 8 b , 也有 I p但 TS区序列 与 国外 报 道 的 马铃 薯 腐 烂 茎 线 虫一致 的 B或 L群 体l ] 1 。近年 来发 现 马铃 薯 腐 烂茎 线虫 在我 国也 危 害 马 铃 薯l , 我 国河 北 张 北 6从 ] 县马 铃薯上 首次 发现 的马铃 薯腐 烂茎 线 虫 为 B或 L 类 群 。最近 , 作者 从 河 北 张 家 口地 区 的 马铃 薯 上 再 次发现 线虫 危害 , 为此 , 本研 究对 分离 到 的线 虫 进 行

陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫的分离鉴定及同源性分析

陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫的分离鉴定及同源性分析

西北农业学报㊀2020,29(5):793G800A c t aA gr i c u l t u r a eB o r e a l i Go c c i d e n t a l i sS i n i c a 网络出版日期:2020G05G19㊀d o i :10.7606/j.i s s n .1004G1389.2020.05.017网络出版地址:h t t p ://kn s .c n k i .n e t /k c m s /d e t a i l /61.1220.s .20200518.1240.004.h t m l 陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫的分离鉴定及同源性分析收稿日期:2019G08G19㊀㊀修回日期:2020G01G07基金项目:陕西省科技厅重点项目(2017Z D XM GN Y G008);西安市农业科技创新工程(20193064Y F 052N S 052);陕西省科学院科技计划(2019K G12).第一作者:刘㊀晨,女,助理研究员,研究方向为农业昆虫与害虫防治.E Gm a i l :l i u c 1204@126.c o m通信作者:张㊀锋,男,研究员,研究方向为植物保护.E Gm a i l :545141529@q q.c o m 刘㊀晨,杨艺炜,王家哲,常㊀青,洪㊀波,张㊀锋(陕西省生物农业研究所,西安㊀710043)摘㊀要㊀旨在鉴定陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫生物型,为其防治提供理论依据.对陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫进行分离,对其形态进行观察并测量特征值,通过茎线虫线粒体C OⅠ通用引物㊁I T S 区通用引物及A ㊁B 生物型的特异性引物对不同地区采集马铃薯腐烂茎线虫进行P C R 检测及序列分析,利用M E G A 6.0进行系统发育树构建及种群同源性分析.结果表明,陕北地区腐烂茎线虫的生物型为B 型,关中地区为A 型.形态特征值数据显示雌成虫体长㊁体宽均大于雄成虫,A 型的体长㊁体宽均大于B 型.系统发育树结果显示,陕北不同地区的B 型马铃薯腐烂茎线虫聚为一支,合阳㊁兴平的A 型马铃薯腐烂茎线虫聚为一支,与分子鉴定结果相一致.关键词㊀马铃薯腐烂茎线虫;形态特征;生物型;系统发育树中图分类号㊀S 435.621㊀㊀㊀文献标志码㊀A㊀㊀㊀㊀㊀文章编号㊀1004G1389(2020)05G0793G08㊀㊀马铃薯俗称土豆,作为全球第四大粮食作物在农业生产中具有举足轻重的地位[1].但中国马铃薯产业一直饱受病害困扰,马铃薯病害严重制约国内马铃薯单位面积产量的提升以及马铃薯产业的进一步发展,目前陕西省马铃薯产业面临着同样问题.甘薯已经成为中国许多省(区)调整农业产业结构,促进农村产业发展的重要作物,甘薯在陕西省也逐步成为重要经济作物,对于带动区域农业经济发展具有重要意义.马铃薯腐烂茎线虫(D i t yl e n c h u s d e s t r u c t o r )也被称为P o t a t o n e m a t o d e,最初发现于马铃薯上,是其贮藏期一种重要病害[2],也是严重为害马铃薯的重要病原之一[3].在中国,马铃薯腐烂茎线虫首次在甘薯上被分离出来,发生严重时可造成80%以上的减产,甚至绝收[4G5].此外,腐烂茎线虫还可为害蚕豆㊁小麦㊁当归㊁三七等几十种农作物及中药材[6].马铃薯腐烂茎线虫目前主要分为2类基因型,有文献[7]报道这2个基因型在尾长㊁C 值㊁V值等形态特征值上存在显著差异.2007年,有学者[8]对多个马铃薯腐烂茎线虫种群的核糖体I T S区序列进行比对,发现在中国不同地理种群明显分为2个生物型,即A 型和B 型这两种.此外,还有多篇文献也证实马铃薯腐烂茎线虫种群中存在2类基因型这一结论[9G11].有国外学者将不同寄主作物上的马铃薯腐烂茎线虫群体分为A 型㊁B 型㊁C 型㊁D 型㊁E 型㊁F 型和G 型这7个不同生物型[12G13].A 型仅在中国发现,且只为害甘薯,B 型和E 型主要为害甘薯和马铃薯,C 型寄主为马铃薯㊁甘薯及大蒜,D 型可侵染大蒜,F 型在甘薯和黄芪上有分离出来,G 型为害马铃薯.1925年,马铃薯腐烂茎线虫首次在美国甘薯上被发现[14],传入中国后,在北京㊁山东㊁河北等甘薯生产区均造成严重为害[15].马铃薯腐烂茎线虫在国外主要为害马铃薯,在国内主要为害甘薯,但近几年,在甘肃等地也发现此线虫为害马铃薯[16G18].因此,明确该病原线虫的生物型及系统发育地位,可为其致病性研究奠定基础,同时为马铃薯及甘薯生产区腐烂茎线虫的防治提供理论依据.1㊀材料与方法1.1㊀材料2018年3月至12月期间,马铃薯腐烂茎线虫采自陕西省榆林市定边县㊁靖边县㊁神木县及榆阳区的马铃薯发病田,及陕西省渭南市合阳县及兴平市的甘薯发病田.1.2㊀试验方法1.2.1㊀线虫的分离㊀将不同地区采集病薯的典型病块区切下,切成1c mˑ1c m 小块,清水冲洗干净,取双层面巾纸将其包住,采用漏斗分离线虫.收集到的线虫用0.5%次氯酸钠浸泡㊁消毒5m i n,无菌水冲洗3遍,保存,备用.1.2.2㊀形态学鉴定、线虫标本制作及特征值测量㊀将分离得到的腐烂茎线虫悬浮液,置于65ħ水浴处理0.5m i n 热力杀死[19G21],并制成玻片以供观察.应用E Z c a m 软件,在显微镜下对腐烂茎线虫的主要形态特征进行观察㊁测量及拍照.主要测量数据包括线虫的体长(L )㊁体宽(W )㊁口针长度(S )㊁头长(H )㊁尾长(T )等[22],对比不同生物型的马铃薯腐烂茎线虫在形态上的差异.每组测量20条线虫,计算平均值.扫描电镜观察:将线虫置于装有5%戊二醛的离心管中于4ħ下固定3h ,在3000r /m i n 下离心2m i n ,弃上清,留下层的线虫,用0.2m o l /L磷酸盐缓冲液进行冲洗之后,在3000r /m i n 下离心2m i n ,弃上清,留下层的线虫,用超声波清洗仪将线虫于30ħ条件下清洗30m i n ,经体积分数依次为10%㊁20%㊁30%㊁40%㊁50%㊁60%㊁70%㊁80%㊁90%㊁100%乙醇梯度脱水,每级脱8m i n ,离心2m i n .再依次用乙酸异戊酯与无水乙醇体积比分别为1ʒ2㊁1ʒ1㊁2ʒ1㊁1ʒ0的乙酸异戊酯与无水乙醇混合液置换,每步置换6m i n ,离心2m i n ,E M I T E C H GK 850型临界点干燥仪干燥,M S P G1S 型离子溅射仪喷金镀膜,在H I T A GC H I G3400N 型扫描电子显微镜下观察并照相.1.2.3㊀分子生物学鉴定提取线虫D N A㊀向1.5m L 离心管内加入16μL ˑP C R B u f f e r (去M g 2+)㊁4μL 蛋白酶K ㊁40μLd d H 2O ,再将线虫放入混合液中;将离心管置于液氮中研磨,反复研磨3次;离心管水浴65ħ保温90m i n;再放置85ħ金属浴10m i n,取出放至室温即可用于P C R 扩增.P C R 扩增条件:反应选取腐烂茎线虫线粒体C O I 通用引物㊁核糖体I T S 通用引物及A 型生物型及B 型生物型的特异性引物(表1).表1㊀用于鉴定马铃薯腐烂茎线虫的引物T a b l e 1㊀P r i m e r s o f D i t yl e n c h u s d e s t r u c t o r 引物名称P r i m e r引物序列(5ᶄң3ᶄ)S e qu e n c e (5ᶄң3ᶄ)目标片段大小/b p F r a gm e n t s i z e 线粒体C O I 通用引物T T T T T T G G G C A T C C T G A G G T T T A T480U n i v e r s a l p r i m e r o fm t D N AC O I T A A A G A A A G A A C A T A A T G A A A A T G 核糖体I T S 通用引物C G T A A C A A G G T A G C T G T A G760/950U n i v e r s a l p r i m e r o f r D N AI T S T T T C A C T C G C C G T T A C T A A G G A 型特异性引物T C G T A G A T C G A T G A A G A A C G C 252S p e c i f i c p r i m e r s o f t y p e A A T T A T C T C G A G T G G G A G C G CB 型特异性引物T T G T G T T T GC T G G T G C G C T T G T485S p e c i f i c p r i m e r s o f t y p eB G A G T G A G A G C G A T G T C A A C A T T G㊀㊀P C R 反应体系为2ˑT a q Mi x 25μL (上海生工),20μm o l /L 上游引物2μL ,20μm o l /L 下游引物2μL ,D N A 模板2μL ,H 2O 补充总体积至50μL .P C R 扩增反应为95ħ预变性4m i n,94ħ变性30s ,50ħ退火30s ,72ħ延伸2m i n ,35个循环;72ħ最后延伸7m i n ,P C R 产物4ħ保存.P C R 反应结束后,1%琼脂糖凝胶电泳检测.1.2.4㊀系统发育树构建㊀将P C R 产物送至上海生工生物工程有限公司,进行测序(S a n ge r 测序).利用M E G A6.0软件,采用邻接法(N e i gh Gb o u r GJ o i n i n g,N J )分别对线粒体C OⅠ及核糖体I T S 序列进行系统发育树的构建.2㊀结果与分析2.1㊀腐烂茎线虫形态学鉴定在40倍显微镜下观察可见,雌性腐烂茎线虫温热死亡后虫体略向腹部弯曲,虫体表角质膜上有细环纹,环距1μm ,唇区低且平滑,稍突出于体外,头区与体躯之间有一轻微的溢缩.虫体侧宽约占整体宽的1/5,侧线6条(图1).食道属垫刃型,口针细小,长10~13μm ,口针基球小而明显,呈圆形(图2).中食道球卵圆形,肌肉质,具瓣门.狭部窄,其上环绕神经环.后食道腺体 497 西㊀北㊀农㊀业㊀学㊀报29卷从背面或侧面交盖肠的前端,约交盖半个体宽至1个体宽.后阴子宫囊明显,其长度一般为阴门到肛门距离的2/3.卵母细胞在近子宫处单行排列.后阴子宫囊长约达阴门至肛门距离的3/4位置处.尾圆锥形,略向腹部弯,尾端细圆(图2).雄虫虫体前端形态与雌性虫形态相似,尾略窄,尾端细圆;交合刺略向腹部弯曲.交合伞始于交合刺前端相对应的位置,向后伸约尾长的75%,基部膨大,其宽处有2个指状突起;引带简单且短(图2).2.2㊀不同生物型腐烂茎线虫特征值测量对不同生物型的马铃薯腐烂茎线虫雌㊁雄成虫各测量20头,测量结果见表2.㊀㊀A.6面辐射状唇片;B .交合伞始于交合刺前端;C .体中侧区6条侧线A.S i x r a d i a l l a b r u m ;B .C o p u l a t o r y b u r s ab e g i n s a t t h e f r o n t o f s p e c u l u m ;C .S i x l a t e r a l l i n e s o fm i d d l e b o d y si d e 图1㊀马铃薯茎线虫扫描电镜照片F i g .1㊀S t e r e o s c a n p h o t o g r a pho f D i t y l e n c h u s d e s t r u c t or ㊀㊀A.雄虫交合刺侧面及交合伞;B .交合刺腹面及指状;C .雌虫阴门及尾部;D .头部溢缩及口针;标尺:A /B /C =25μm ,D=10μm A.S p i c u l u ml a t e r a l s u r f a c e a n d c o p u l a t o r y b u r s a o fm a l e ;B .S e g m e n t a l v e n t e r a n d f i n g e r o f s pe c u l u m ;C .C u n n u s a n d t a i l of f e m a l e ;D .E x c e s s i v e s h r i n k ag e a n d l a n c e t o fh e a d ;s c a l e p l a t e :A /B /C =25μm ,D=10μm 图2㊀马铃薯腐烂茎线虫显微镜下特征形态F i g .2㊀C h a r a c t e r i s t i cm o r p h o l o g y u n d e rm i c r o s c o pe of D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r597 5期刘㊀晨等:陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫的分离鉴定及同源性分析表2㊀不同生物型马铃薯腐烂茎线虫种群与其他种群形态测量值比较T a b l e 2㊀M o r p h o m e t r i c v a l u e c o m pa r i s o no f d i f f e r e n t D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r 地点L o c a t i o n 生物型B i o Gt y p e 性别G e n d e r 体长(L )/μm L e n g t h 体宽(W )/μm W i d t h 口针(S )/μm L a n c e t 尾长(T )/μm T a i la b c V陕北N o r t h e r n S h a a n x iB 型T y peB 雌F e m a l e 972.78ʃ70.03a24.13ʃ9.85a 11.05ʃ2.31a b 64.02ʃ6.44a 41.81ʃ11.12a 8.73ʃ1.44a b 15.20ʃ0.74a b 80.11ʃ5.31a b雄M a l e943.20ʃ129.38a 24.03ʃ11.35a 10.28ʃ3.89a 69.25ʃ8.89a b 40.25ʃ3.54a 8.65ʃ2.67a b 13.61ʃ0.57a/合阳H e y a n gA 型T y peA 雌F e m a l e 1121.8ʃ192.63a b 29.06ʃ7.57a 11.13ʃ2.58a 64.78ʃ6.85a 35.42ʃ5.22a 8.99ʃ2.91a15.56ʃ0.91a 81.27ʃ3.63a b雄M a l e1053.94ʃ117.52a b 32.53ʃ8.14a 10.59ʃ2.39a 71.71ʃ7.94a b 30.24ʃ4.42a 8.67ʃ1.93a 13.60ʃ0.49a b/兴平X i n g p i n gA 型T y peA 雌F e m a l e 1009.55ʃ155.72a b 29.62ʃ9.78a 11.09ʃ3.72a 64.65ʃ7.72a b 34.19ʃ5.13a 8.71ʃ2.05a15.62ʃ1.15a 80.58ʃ3.19a b 雄M a l e 974.56ʃ108.29a 28.93ʃ10.15a 10.51ʃ3.28a 69.83ʃ7.89a b 33.69ʃ7.51a b 8.64ʃ1.38a14.16ʃ0.55a/辽宁等省L i a o n i n g P r o v i n c e e t c雌F e m a l e 1011ʃ13734.6ʃ8.2/65.31ʃ1138.75ʃ9.28ʃ1.413ʃ1.580.2ʃ1.6雄M a l e 1020ʃ6524.25ʃ4.25/75.5ʃ10.540.25ʃ7.757.8ʃ1.25.7ʃ1.5/张家口Z h a n g ji a k o u 雌F e m a l e 886ʃ96///32ʃ415ʃ214ʃ281ʃ18雄M a l e870ʃ92///38ʃ514ʃ214ʃ1/注:a =体长/体宽;b =体长/体前部至肠前端距离;c =体长/尾长;V =体前端至阴门距离ˑ100/体长.N o t e :a =L e n g t h /w i d t h ;b =L e n g t h /d i s t a n c e f r o ma n t e r i o r b o d y t o a n t e r i o r i n t e s t i n e ;c =L e n gt h /T a i l ;V =D i s t a n c e f r o ma n t e r i o r e n d o f b o d y t ov u l v a ˑ100/l e n gt h .㊀㊀从表2可以看出,无论B 型还是A 型腐烂茎线虫的雌成虫均比雄成虫体长长,体宽也略宽,合阳与兴平的A 型马铃薯腐烂茎线虫雌成虫与雄成虫在体长㊁a 值㊁b 值㊁c 值及V 值之间差异不显著,B 型腐烂茎线虫雌成虫与雄成虫的体长均比A 型的显著减小,雌成虫的V 值B 型比A 型小,但a 值B 型高于A 型,b 值㊁c 值差异不显著.测量结果与郭全新等[19]㊁刘维志等[20]的测量结果基本一致.2.3㊀腐烂茎线虫分子鉴定2.3.1㊀不同地区茎线虫线粒体C O I 及核糖体I T S 通用引物检测结果㊀通过马铃薯腐烂茎线虫的线粒体通用引物扩增陕北及关中合阳㊁兴平的线虫群体,从凝胶成像结果来看,所有样品都扩增出480b p 条带(图3).用马铃薯腐烂茎线虫I T S 通用引物进行P C R 扩增,结果显示,为害陕北马铃薯的茎线虫均有约950b p 的条带,关中合阳㊁兴平甘薯上茎线虫均扩增出约760b p 的条带(图4).因此可以确定所有这些线虫样品均为马铃薯腐烂茎线虫.2.3.2㊀不同地区腐烂茎线虫生物型鉴定结果㊀为确定不同地区马铃薯腐烂茎线虫的生物型是否相同,选取A 型与B 型的特异性引物扩增陕北㊁合阳及兴平的马铃薯种群.从图5可以看出,榆林地区靖边县㊁定边县㊁神木县及榆阳区为B 型马铃薯腐烂茎线虫,合阳县及兴平市采集的为A 型马铃薯腐烂茎线虫.图3㊀I T S 区通用引物扩增结果F i g .3㊀U n i v e r s a l p r i m e r a m pl i f i c a t i o no f r D N A GI T S 2.4㊀r D N A GI T S 序列分析及系统发育树构建对马铃薯腐烂茎线虫核糖体I T S 通用引物扩增产物测序结果在N C B I 上B L A S T 比对后发现,陕北B 型种群与登录号为J Z 133363㊁J Z 133338的B 型马铃薯腐烂茎线虫群体同源性高达99.5%,关中A 型种群与A 型的M H 992393的同源性高达99.1%.㊀㊀使用腐烂茎线虫核糖体I T S 通用引物对陕697 西㊀北㊀农㊀业㊀学㊀报29卷图4㊀线粒体通用引物扩增结果F i g .4㊀U n i v e r s a l p r i m e r a m pl i f i c a t i o no fm t D NA 图5㊀A 型、B 型特异性引物扩增结果F i g .5㊀S p e c i f i c p r i m e r a m p l i f i c a t i o no f t y peAa n dB 北不同地区㊁合阳及兴平的种群进行扩增及测序,利用M E G A 6.0软件,将这7个序列及N C B I 上已知的5个序列号为J Z 133363㊁J Z 133338的B 型及MH 992393的A 型马铃薯腐烂茎线虫种群分别构建系统发育树(图6).从结果来看,种群D i n g B ㊁J i n gB ㊁S h e n M 及Y u Y 的r D N A GI T S 序列与已知序列MK 979365㊁J Z 133411聚为一支.X i n g P ㊁H e Y 和H e Y 2聚在一支.合阳的两个不同样品遗传距离最近,与兴平种群亲缘性高,这3个种群均为A 型马铃薯腐烂茎线虫,陕北的定边县及靖边县的种群遗传距离最近,与神木县及榆阳区的茎线虫种群亲缘性较高,这4个种群均为B 型马铃薯腐烂茎线虫.同时,此系统发育树成功将A 型㊁B 型两个种群的马铃薯腐烂茎线虫成功区分开.此结果与分子鉴定结果较为一致.图6㊀马铃薯腐烂茎线虫r D N A GI T S 系统发育树F i g .6㊀P h y l o ge n e t i c t r e e of D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r r D N A GI T S 3㊀结论与讨论通过对中国马铃薯腐烂茎线虫r D N A GI T S序列对比可以看出,其种群主要分为A 型和B 型2个基因生物型[8,23],但关于这2个生物型群体在形态特征㊁寄主范围㊁病理学上等方面差异的研究较少[18].本研究首次在陕西省发现该线虫为害马铃薯及甘薯,并首次对陕西不同地区㊁不同寄主上该线虫的生物型进行了形态学与分子生物学鉴定.结果显示,侵染陕西省榆林马铃薯的为B797 5期刘㊀晨等:陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫的分离鉴定及同源性分析型马铃薯腐烂茎线虫,侵染陕西省合阳及兴平甘薯的为A型.形态特征值的测量结果显示,A型马铃薯腐烂茎线虫比B型的体长长,体宽略宽,雌成虫的V值较大,但a值B型马铃薯腐烂茎线虫高于A型,b值㊁c值差异不显著.不同地区相同生物型的茎线虫,在形态特征值上差异并不显著.构建系统发育树,成功将A型㊁B型2个种群的马铃薯腐烂茎线虫区分开.有研究[18,23G24]表明:中国山东㊁河北及江苏等地甘薯上马铃薯腐烂茎线虫可分为A型㊁B型2个生物型;有学者[12]在此基础上将马铃薯腐烂茎线虫种群分为AGG型7个单元型,AGF单元型均在中国有发生,而G型并未发现.关于陕西省是否还存在马铃薯腐烂茎线虫的其他生物型,及不同生物型发生区域㊁侵染作物种类㊁生物特性及其他分子生物学方面是否存在差异,还需进一步调查研究,这将对有效预防及控制马铃薯腐烂茎线虫的扩散提供理论依据.参考文献㊀R e f e r e n c e:[1]㊀谢从华.马铃薯产业的现状与发展[J].华中农业大学学报(社会科学版),2012,97(1):1G4.X I EC H.C u r r e n t s i t u a t i o na n dd e v e l o p m e n to f p o t a t o i nGd u s t r y[J].J o u r n a l o f H u a z h o n g A g r i c u l t u r a lU n i ve r s i t y(S o c i a l S c i e n c e sE d i t i o n),2012,97(1):1G4.[2]㊀HO O P E R DJ.D i t y l e n c h u sD e s t r u c t o r[M].C I H D e s c r i pGt i o no f P l a n tGp a r a s i t i cN e m a t o d e sN o.21.C A B I n t e r n a t i o n a l W a l l i n g f o r d,U K,1973.[3]㊀洪㊀波,张㊀锋,李英梅,等.马铃薯腐烂茎线虫在陕西的适生性分析[C]//中国植物保护学会.中国植物保护学会会议论文集.北京:中国农业科学技术出版社,2017:52G58.H O N GB,Z H A N GF,L IY M,e t a l.T h e s u i t a b i l i t y a n a l yGs i so f p o t a t or o t t e n s t e m n e m a t o d ei n S h a a n x i p r o v i n c e[C]//C h i n aS o c i e t y o fP l a n tP r o t e c t i o n.P r o c e e d i n g so f t h eC o n f e r e n c e o f t h eC h i n e s e S o c i e t y f o r P l a n t P r o t e c t i o n.B e iGj i n g:C h i n a A g r i c u l t u r a l S c i e n c e a n d T e c h n o l o g y P r e s s,2017:52G58.[4]㊀周㊀忠,马代夫.甘薯茎线虫病的研究现状和展望[J].杂粮作物,2003,23(5):288G290.Z H O UZ H,MADF.R e s e a r c h s t a t u s a n d p r o s p e c t o f s w e e t p o t a t o s t e mn e m a t o d e d i s e a s e[J].R a i nF e dC r o p s,2003,23(5):288G290.[5]㊀朱秀珍,田希武,王随保,等.甘薯茎线虫病发病规律及综合防治[J].山西农业科学,2004,32(3):54G57.Z HU XZ H,T I A N X W,WA N G SB,e ta l.T h e i n f e c t i o n l a wa n d I P Mo f D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r t h o r n e[J].J o u r n a l o f S h a n x iA g r i c u l t u r a l S c i e n c e s,2004,32(3):54G57.[6]㊀王宏宝,李㊀茹,付佑胜,等.不同基因型腐烂茎线虫侵染不同甘薯品种后生物学特性研究[J].西南农业学报,2017,30(1):93G99.WA N G H B,L IR,F U Y S H,e ta l.S t u d y o nb i o l o g i c a lc h a r a c t e r i s t i c so fd i f fe r e n t g e n o t y p e s D i t y l e n c h u sd e s t r u cGt o r i nf e c t e do nd i f f e r e n t s w e e t p o t a t ov a r i e t i e s[J].S o u t hGw e s tC h i n aJ o u r n a l o f Ag r i c u l t u r a l S c i e n c e s,2017,30(1):93G99.[7]㊀黄㊀健,戚龙君,王金成.腐烂茎线虫种内不同种群形态及遗传分析[J].植物病理学报,2009,39(3):39G43.HU A N GJ,Q I L J,WA N GJ C H.M o r p h o l o g i c a l a n d g e n e tGi c a n a l y s i s o nd i f f e r e n t p o p u l a t i o n so f D i t y l e n c h u sd e s t r u cGt o r[J].A c t aP h y t o p a t h o l o g i c aS i n i c a,2009,39(3):39G43.[8]㊀王金成,季㊀镭,黄国明.腐烂茎线虫不同地理种群I T S区序列比对及系统发育[J].河北农业大学学报,2007,30(5):79G83.WA N GJC H,J IL,HU A N G G M.A l i g n m e n t so f r D N AGI T S s e q u e n c e s a n d p h y l o g e n y o f d i f f e r e n t g e oGp o p u l a t i o n s o fD i t y l e n c h u sd e s t r u c t o r i n C h i n a[J].J o u r n a lo f A g r i c u lGt u r a lU n i v e r s i t y o f H e b e i,2007,30(5):79G83.[9]㊀刘㊀斌,梅圆圆,郑经武.腐烂茎线虫种内群体特异性检测研究[J].浙江大学学报(农业与生命科学版),2007,33(5):490G496.L I U B,M E IYY,Z H E N GJW.S p e c i e sGs p e c i f i c d e t e c t i o n o f i n t e rGp o p u l a t i o n s o f D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r[J].J o u r n a l o fZ h e j i a n g U n i v e r s i t y(A g r i c u l t u r e a n d L i f e S c i e n c e s),2007,33(5):490G496.[10]㊀刘先宝,葛建军,谭志琼.马铃薯腐烂茎线虫在国内危害马铃薯的首次报道[J].植物保护,2006,32(6):157G158.L I U XB,G EJJ,T A N Z H Q.T h e f i r s t r e p o r to f p o t a t or o t t i n g s t e mn e m a t o d e h a rm i n g p o t a t o i nC h i n a[J].P l a n tP r o t e c t i o n,2006,32(6):157G158.[11]㊀郭全新,简㊀恒.危害马铃薯的茎线虫分离鉴定[J].植物保护,2010,36(3):117G120.G U O Q X,J I A N H.I d e n t i f i c a t i o no f D i t y l e n c h u sd e s t r u cGt o r f r o m p o t a t o e s i nZ h a n g j i a k o u,H e b e i[J].P l a n tP r oGt e c t i o n,2010,36(3):117G120.[12]㊀S U B B O T I N S A,MO H AMMA D D A,Z H E N GJ,e ta l.L e n g t hv a r i a t i o na n d r e p e t i t i v e s e q u e n c e s o f i n t e r n a l t r a nGs c r i b e d s p a c e r o f r i b o s o m a lR N A g e n e,d i a g n o s t i c s a n d r eGl a t i o n s h i p s o f p o p u l a t i o n s o f p o t a t o r o t n e m a t o d e D i t y l e nGc h u sde s t r u c t o r T h o r n e,1945(T y l e n c h i d a:A n g u i n i d a e)[J].N e m a t o l o g y,2011,13(7):773G785.[13]㊀J E S Z K E A,B U D Z I S Z E W S K A M,D O B O S Z R,e ta l.Ac o m p a r a t i v ea nd p h y l o ge n e t i cs t u d y o ft h e D i t y l e n c h u sd i p s a c i,D i t y le n c h u s d e s t r u c t o r,a n d D i t y l e n c h u s g i g a sp o p u l a t i o no c c u r r i n g i nP o l a n d[J].J o u r n a lo f P h y t o p aGt h o l o g y,2014,162:61G67.[14]㊀S T E I N E R G.T h e p r o b l e mo f h o s t s e l e c t i o na n dh o s t s p eGc i a l i z a t i o no f c e r t a i n p l a n tGi n f e s i n g n e m a sa nd i t sa p p l i c aGt i o n i n t h e s t u d y o f n e m i c p e s t[J].P h y o p a t h o l o g y,1925,15:499G534.[15]㊀S T E V E N S O N W R,L O R I AR,F R A N CGD,e t a l.C o mGp e n d i u mo f p o t a t od i s e a s e s(2n de d i t i o n)[M].S t.P a u l,897 西㊀北㊀农㊀业㊀学㊀报29卷M i n n e s o t a,U S A:T h e A m e r i c a nP h y t o p a t h o l o g i c a lS o c i eGt y,2009:50G51.[16]㊀盯再福,林茂松.甘薯㊁马铃薯和薄荷上的茎线虫的鉴定[J].植物保护学报,1982,9(3):169G172.D I N GZF,L I N MS.I d e n t i f i c a t i o n o f s t e mn e m a t o d e f r o ms w e e t p o t a t o,p o t a t o a n dm i n t[J].J o u r n a l o f P l a n tP r oGt e c t i o n,1982,9(3):169G172.[17]㊀李惠霞,徐鹏刚,李建荣,等.甘肃定西地区马铃薯线虫病病原的分离鉴定[J].植物保护学报,2016,43(4):580G587.L IH X,X UPG,L I JR,e t a l.I d e n t i f i c a t i o no f t h e p a t h oGg e n i c n e m a t o d e s f r o m p o t a t o e s i nD i n g x i o fG a n s u p r o v i n c e[J].J o u r n a l o f P l a n tP r o t e c t i o n,2016,43(4):580G587.[18]㊀张淑玲,李惠霞,徐鹏刚,等.黑龙江腐烂茎线虫群体的分离和鉴定[J].植物病理学报,2019,3(8):1G10.Z HA N GS H L,L IH X,X UPG,e t a l.I s o l a t i o n a n d i d e nGt i f i c a t i o n o f D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r f r o m H e i l o n g j i a n g[J].A c t aP h y t o p a t h o l o g i c aS i n i c a,2019,3(8):1G10.[19]㊀郭全新,简㊀恒.危害马铃薯的茎线虫分离鉴定[J].植物保护,2010,36(3):117G120.G U O Q X,J I A N H.I d e n t i f i c a t i o no f D i t y l e n c h u sd e s t r u cGt o r f r o m p o t a t o e s i nZ h a n g j i a k o u,H e b e i[J].P l a n tP r oGt e c t i o n,2010,36(3):117G120.[20]㊀刘维志,刘清利,尼秀媚.马铃薯茎线虫D i t y l e n c h u sd eGs t r u c t o r T h o r n e,1945的描述[J].莱阳农学院学报,2003,20(1):1G3.L I U W Z H,L I U QL,N IX M.D e s c r i p t i o no f D i t y l e n c h u sd e s t r u c t o r T h o r n e,1945[J].J o u r n a lo f L a i y a n g A g r iGc u l t u r a lC o l l e g e,2003,20(1):1G3.[21]㊀周志强,程瑚瑞.热力杀死制片线虫标本的初步研究[J].植物检疫,1993,7(2):81G84.Z HO UZ H Q,C H E N G H R.P r e l im i n a r y s t u d y o nt h e rGm a l k i l l i n g o f n e m a t o d e s p e c i m e n s[J].P l a n tQ u a p a n t i n e,1993,7(2):81G84.[22]㊀段玉玺,陈立杰.植物寄生线虫标本制作方法简介[J].中国寄生虫学与寄生虫病杂志,2006,12(24):65G69.D U A N Y X,C HE N LJ.I n t r o d u c t i o nt o p r e p a r a t i o no fp l a n t p a r a s i t i c n e m a t o d e s p e c i m e n[J].C h i n e s eJ o u r n a l o fP a r a s i t o l o g y a n dP a r a s i t i cD i s e a s e s,2006,12(24):65G69.[23]㊀宛㊀菲,彭德良,杨玉文,等.马铃薯腐烂茎线虫特异性分子检测技术研究[J].植物病理学报,2008,38(3):263G270.WA NF,P E N G D L,Y A N G Y W,e ta l.S p e c i e ss p e c i f i cm o l e c u l a r d i a g n o s i s o f D i t y l e n c h u sd e s t r u c t o r p o p u l a t i o n so c c u r r i n g i n C h i n a[J].A c t a P h y t o p a t h o l o g i c a S i n i c a,2008,38(3):263G270.[24]㊀于海英,彭德良,胡先奇,等.马铃薯腐烂茎线虫28Sr DGN AGD2/D3区序列分析[J].植物病理学报,2009,39(3):254G261.Y U H Y,P E N G D L,HU X Q,e ta l.M o l e c u l a rc l o n i n ga n ds e q u e n c e sa n a l y s i so f28Sr D N AGD2/D3r e g i o n so fD i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r o n s w e e t p o t a t o i nC h i n a[J].A c t aP h y t o p a t h o l o g i c aS i n i c a,2009,39(3):254G261.9975期刘㊀晨等:陕西不同地区马铃薯腐烂茎线虫的分离鉴定及同源性分析008 西㊀北㊀农㊀业㊀学㊀报29卷H o m o l o g y A n a l y s i s a n d I d e n t i f i c a t i o no f D i t y l e n c h u sd e s t r u c t o r f r o m D i f f e r e n tA r e a s o f S h a a n x i P r o v i n c eL I U C h e n,Y A N G Y i w e i,WA N GJ i a z h e,C H A N G Q i n g,H O N GB o a n dZ H A N GF e n g(B i oGA g r i c u l t u r e I n s t i t u t e o f S h a a n x i,X i a n㊀710043,C h i n a)A b s t r a c t㊀I n o r d e r t o p r o v i d e t h e o r e t i c a l b a s i s f o r c o n t r o l l i n g D i t y l e n c h u s d e s t r u c t o r,w e i d e n t i f i e d b iGo t y p e s o f D.d e s t r u c t o r f r o md i f f e r e n t a r e a s o f S h a a n x i.I n t h i s s t u d y,t h e D.d e s t r u c t o r s f r o md i f f e rGe n t a r e a s o fS h a a n x iw e r e i s o l a t e d,a n dt h e i rm o r p h o l o g i c a l c h a r a c t e r i s t i c sw e r eo b s e r v e da n d m e a sGu r e d.T h e n t h eu n i v e r s a l p r i m e r s o f D.d e s t r u c t o r m i t o c h o n d r i a l C OⅠa n d r i b o s o m e s I T Sw e r eu s e d f o rP C R d e t e c t i o na n ds e q u e n c ea n a l y s i so fa l lt h e D.d e s t r u c t o r s a m p l e sf r o m d i f f e r e n ta r e a so f S h a a n x i.I na d d i t i o n,t h e s p e c i f i c p r i m e r s o f b i o t y p eAa n dBw e r e a l s o u s e d f o r P C Rd e t e c t i o n a n d s eGq u e n c e a n a l y s i s o f a l l t h e s a m p l e s.M E G A6.0w a s u s e d f o r p h y l o g e n e t i c t r e e c o n s t r u c t i o n a n d p o p u l aGt i o nh o m o l o g y a n a l y s i s.T h e r e s u l t s s h o w e d t h a t,t h e b i o t y p e o f D.d e s t r u c t o r s f r o m N o r t h e r nS h a a n x i w a s t y p eB,a n d t h eb i o t y p e o f D.d e s t r u c t o r s f r o m G u a n z h o n g a r e aw a s t y p eA.M o r p h o l o g i c a l c h a rGa c t e r i s t i c v a l u e d a t a s h o w e dt h a t f e m a l ea d u l t sw e r e l o n g e ra n dw i d e r t h a n m a l ea d u l t s,a n dt y p eA w e r e l o n g e r a n dw i d e r t h a n t y p eB i nb o t h f e m a l e a n dm a l e a d u l t s.P h y l o g e n e t i c t r e e s h o w e d t h a t t y p e B D.d e s t r u c t o r s f r o m N o r t h e r nS h a a n x i c l u s t e r e d i no n e c l a d e,a n d t y p eA D.d e s t r u c t o r s f r o m H e yGa n g a n dX i n g p i n g c l u s t e r e d i no n e c l a d e,s o i tw a s c o n s i s t e n tw i t h t h e r e s u l t s o fm o l e c u l a r i d e n t i f i c aGt i o n.K e y w o r d s㊀D i t y l e n c h u sd e s t r u c t o r;M o r p h o l o g i c a l c h a r a c t e r i s t i c s;B i o t y p e;P h y l o g e n e t i c t r e eR e c e i v e d㊀2019G08G19㊀㊀㊀㊀R e t u r n e d㊀2020G01G07F o u n d a t i o n i t e m㊀S h a a n x iP r o v i n c i a lD e p a r t m e n to fS c i e n c ea n d T e c h n o l o g y(N o.2017Z D X MGN YG008);A g r i c u l t u r a l S c i e n c ea n dT e c h n o l o g y I n n o v a t i o no fX i a n(N o.20193064Y F052N S052);S c i e n c e a n dT e c h n o l o g y P r o g r a mo f S h a a n x iA c a d e m y o f S c i e n c e s(N o.2019KG12).F i r s t a u t h o r㊀L I U C h e n,f e m a l e,a s s i s t a n t r e s e a r c h f e l l o w.R e s e a r c ha r e a:a g r i c u l t u r a l e n t o m o l o g y a n d p e s t c o n t r o l.EGm a i l:l i u c1204@126.c o mC o r r e s p o n d i n g a u t h o r㊀Z H A N G F e n g,m a l e,r e s e a r c hf e l l o w.R e s e a r c ha r e a:p l a n t p r o t e c t i o n.EGm a i l:545141529@q q.c o m(责任编辑:郭柏寿㊀R e s p o n s i b l e e d i t o r:G U OB a i s h o u)。

三七病原根结线虫的分子鉴定

三七病原根结线虫的分子鉴定

出 , u o e Me  ̄ g n sp ( i o i , a n r d b t t r l oye p . M cg t r al a h o n na e an
t i )pp ao s a oa p f ao r ut Ii i t a m c o u t n hdn l ct np d c . d a t t 口 li m i i o s tn c e h i d
PCR ee to fNe a o e io a e r m a a o o i s n d t ci n o m t d s lt d fo P n x n tg n e g
FN un q n,O GLyg,H NY-n, A GHi L u—i LJ.i Y N a-o C I imn ,A GPie ‘ EGGa . a‘D N 。 2 E uu S N u ,UYn h , au ,A GJn h g,U X — g Y N ・ n gu ii C n j H I z Iir i zn u i ew
三 七 病 原 根 结 线 虫 的 分 子 鉴 定
冯光泉 董 丽英 陈昱君 尚 慧 刘云芝 李 家瑞2杨 建忠 崔 秀明 杨佩文 , , , , , , , ,
( . 山州三七科学技术研究所 , 1文 云南 文山 6 3 0 ;. 6 0 02 云南省农业科学院农业环境资源研究所 , 云南 昆明 60 0 ) 5 2 5
rn n n eoreY n a cd m fA utm cecsY na u m n 5 25,hn ) omet dR suc 。 u nnA ae yo  ̄cl lSi e , un nK n ig60 0 C ia a u n
Ab ta t B s d o h e o cr sr c : a e n teg n mi DNA e uec . aro l o u loiep i twhc a p cfcfrM. a t Wa sg e . sq n e a p i foi n ce t rme ih W Sse i o h pa. s dein g d i d DNA f o n mao e xrce rm nh n p p lt n, n h n p p lt n, g a o u ain, n z o lat n a d oh r4 Meod g n p e td se t t fo We sa o ua o Ya s a o uai a d i o Ma n pp lt n o Me gip pu gi n t e lio y 北 方根结线虫( e i gn at) M ld ye p 特异性寡聚核苷酸 引物 M — M ・ , oo h a h / hR 以北 方根结 线虫、 F 南方根结线

山东省谷子线虫病的发生状况和病原鉴定

山东省谷子线虫病的发生状况和病原鉴定

山东省谷子线虫病的发生状况和病原鉴定作者:李广岩白兴勇尹传坤梁晨宋雯雯史倩倩赵洪海来源:《山东农业科学》2024年第03期摘要:近年来,山东省部分地区谷子线虫病频繁发生、危害严重。

为明确山东省谷子线虫病的病原种类,2021-2022年从山东省收集谷穗样本9个,采用组织破碎一贝曼漏斗法分离获得线虫,利用形态学和分子生物学方法鉴定线虫种类。

结果发现,从临沂、济宁、聊城、济南和潍坊的6个谷穗样本中分离到植物线虫,经形态学鉴定为同一物种,并对其为害症状和雌、雄虫主要形态特征进行了描述。

同时结合基于rDNA-ITS与28SD2/D3区序列构建系统发育树和贝西滑刃线虫(Aphelenchoides besseyi)特异性引物PCR扩增等生物学鉴定方法,最终将为害线虫鉴定为贝西滑刃线虫。

鉴定结果为山东省谷子线虫病的发生、分布和危害状况的研究提供数据参考。

关键词:谷子线虫病;贝西滑刃线虫;形态特征;分子鉴定;症状中图分类号:S435.15 文献标识号:A 文章编号:1001-4942(2024)03-0125-07谷子(Setaria italica)系一年生草本植物,果实脱皮后俗称小米,是我国传统的粮食作物,耐旱、耐瘠、耐储存,对种植业结构调整和膳食结构改善具有重要作用。

山东省谷子种植面积常年稳定在2.6万hm2以上,主要集中在鲁中山脉周边及鲁东等丘陵山区。

谷子线虫病或谷子不稔线虫病,又称紫穗病,俗称“倒青”,是一种典型的种传病害。

线虫寄生破坏子房,导致不能开花或花而不实,颖多张开,内含表面光滑有光泽的尖形秕粒,病穗瘦小,直立不下垂。

受害谷子产量损失很大,发病严重地块可减产60%-80%,甚至绝收。

由于谷子主要种植品种均为感病品种,种子调运频繁加之抗病品种培育困难,造成线虫病在我国谷子产区的危害不断蔓延且存在逐渐加重趋势。

然而,长期以来我国关于谷子线虫病发生、为害的报道数量有限,且主要集中在河北省,山东省未见报道。

应用特异引物组合检测松材线虫

应用特异引物组合检测松材线虫

目前 , 松材线虫 ( ua /cu Br ̄ e hs s n
岱 检疫技术 )
不少研究者应用 P R技术对 松材线虫进行 检测[ , C 但 _ 尚未能在生产上进行推广应用 。本实验利用多种渠道 收 集国内外各疫区的病死树 、 有松材线虫 的木质 包装材料 ,
对线虫进行分离。采用 一对松材线虫特异 引物 , 对 个
B. bu ̄ 、 B. o, , 、 B. a r/ bla  ̄ J 硎 l 、 B.r/rn t 、 t co a  ̄ u
线虫样本进行 P R扩 增验证 , 出适合于生产 上应用 C 探索
的松材线虫分子陕速检测方法 。
1 材 料 与方 法
1 1 供 试线 虫 .
B.
、 k ̄ B. / o
Ab ta t Busp e n h s x lp i s B.m, rn t a d oh r n mao e e a ae rm e d pn o d w r ee td u ig s r c : ra h l c u yo hl , e u u o a l n te e td s sp r t f c  ̄ d o d a ie w o ee d tce sn se i c pi rp i .T e r s l d c td t a te P R p o u to p cf r i me ar h e ut i iae t h C rd c fB.x l hls wa 6 b l r a d b ih rg n .w i sn h yo i s a 8 0 p ce n r t a me t hl p u a g f e B.ml r t t a d oh rn mao e a o n mp i e r d c .T i s e ic p i rp i a s d t o s u tie t c t n d oz / n te e td s h d n ta y a l d p o u t h s p c r  ̄ '  ̄ a i f i f me arw s u e c n t c d ni ai o r i f o Itfr B.x lp i s t o t o l o r o ie ty n mao e s g ti i.S hsktc ud b p l d t ee tBusp e ( o i yo hl .I c s n y3 h u st d ni e td s u i hskt o t i o l e a pi o d tc ra h ・ u s f n i e
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

The primer pairs used were D2A (5’-acaagtaccgtgagggaaagttg-3’) and D2B(5’-aatccgtgtttcaagacggg-3’), D3A (5’-gacccgtcttgaaacacgga-3’) and D3B(5’-tcggaaggaaccagctacta- 3’) (Nunn, 1992), and mtA (5’-ggcggatcctacatcgatgttgtat-3’) and mtB (5’-ggcggatccwkttcctctcgtact-3’). These primers selectively amplify metazoan ribosomal DNAs (rDNA) and do not amplify common contaminants such as bacteria, fungi, or plant material. Courtright EM, Wall DH, Virginia RA, et al. Nuclear and mitochondrial DNA sequence diversity in the Antarctic nematode Scottnema lindsayae. Journal of Nematology, 2000, 32(2): 143.DNA extraction and polymerase chain reaction (PCR) assays were performed according to Subbotin et al. (2000). The ITS1-5.8S-ITS2 and the D2-D3 of 28S of rDNA were amplified using the following primer sets: 5367 (5’-ttgattacgtccctgcccttt-3’) and F195 (5’-tcctccgctaaatgatatg-3’); and D2A (5’-acaagtaccgtgagggaaagttg-3’) and D3B (5’-tcggaaggaaccagctacta-3’) as described by Schmitz et al. (1998) and De Ley et al. (1999), respectively.Castillo P, Vovlas N, Subbotin S, et al. A new root-knot nematode, Meloidogyne baetica n.sp.(Nematoda: Heteroderidae), parasitizing wild olive in Southern Spain. Phytopathology, 2003, 93(9): 1093-1102.D3A(5’-gacccgtcttgaaacacgga-3’) and D3B (5’-tcggaaggaaccagctacta-3’).Al-Banna L, Ploeg A T, Williamson V M, et al. Discrimination of six Pratylenchus species using PCR and species-specific primers. Journal of nematology, 2004, 36(2): 142.The nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS1) segment was amplified with the primers rDNA2 5’-ttgattacgtccctgcccttt-3’ (Vrain et al. 1992) and rDNA1.58S5’-acgagccgagtgatccaccg-3’ (Cherry et al. 1997). The ribosomal LSU D2-D3 expansion segment was amplified with primersD2A 5’-acaagtaccgtgagggaaagttg-3’ and D3B5’-tcggaaggaaccagctacta-3’ (Courtright et al.,2000) as previously described (Al-Banna et al., 1997).Skantar AM, Carta LK. Multiple displacement amplification (MDA) of total genomic DNA from Meloidogyne spp. and comparison to crude DNA extracts in PCR of ITS1, 28S D2-D3 rDNA and Hsp90. Nematology, 2005, 7(2): 285-294.Several nematode specimens of each sample were transferred to an Eppendorf tube containing 16 ul ddH2O, 2 ul 10X PCR buffer and 2 ul proteinase K (600 ug/ml) (Promega, Benelux, The Netherlands) and crushed for 2 min with a Vibro Mixer microhomogeniser (Zürich, Switzerland). The tubes were incubated at 65ºC (1 h) and then at 95◦C (15 min). Detailed protocols for PCR, cloning and automated sequencing are described by Tanha Maafi et al. (2003). The forward D2A (5’-acaagtaccgtgagggaaagttg-3’) and reverse D3B (5’-tcggaaggaaccagctacta-3’) primers were used for amplification and sequencing of the fragment of the 28S rRNA gene.Subbotin SA, Vovlas N, Crozzoli R, et al. Phylogeny of Criconematina Siddiqi, 1980 (Nematoda: Tylenchida) based on morphology and D2-D3 expansion segments of the 28S-rRNA gene sequences with application of a secondary structure model. Nematology, 2005, 7(6): 927-944.The different regions of rDNA were amplified as described by Castillo et al.(2003) and Tigano et al. (2005) using the following primer sets:MelF (5’-tacggactgagataatggt-3’) and MelR(5’-ggttcaagccactgcga-3’) for the 18S, 5367 (5’-ttgattacgtccctgcccttt-3’) and F195(5’-tcctccgctaaatgatatg-3’) for the ITS1–5.8S-ITS2, D2A (5’- acaagtaccgtgagggaaagttg-3’) andD3B (5’-tcggaaggaaccagctacta-3’) for the D2-D3 region of 28S.Rius JEP, Vovlas N, Troccoli A, et al. A new root-knot nematode parasitizing sea rocket from Spanish Mediterranean coastal dunes: Meloidogyne dunensis n. sp. (Nematoda: Meloidogynidae). Journal of nematology, 2007, 39(2): 190.Cloning, characterisation and heterologous expression of an astacin metalloprotease, Sc-AST, from the entomoparasitic nematode Steinernema carpocapsaeY Jing, D Toubarro, Y Hao, N Simões - Molecular and biochemical …, 2010 - Elsevier... Total RNA from different nematode stages and from nematodes induced for 0, 6, 12, 24, 36, 48and 72 h was ...Primers for 18S rRNA were 18SF(5′-GCTAATCGGAAACGAAAGTC-3′) and18SR (5′-CATCCACCGAATCAAGAAAG-3′).Primers for Sc-AST were ASTF1 (5 ...5.8SF194/F195: Tm55℃TW81/AB28:18S:Me1f/Me1r: Tm 50℃18SF/18SR:28S:D2A/D3B: Tm 55℃mtDNAC2F3/1108: Tm 50℃C2F3/MRH106: Tm 50℃Incorporating molecular identification of Meloidogyne spp. into a large-scale regional nematode surveyTO Powers, PG Mullin, TS Harris, LA Sutton… - Journal of …, 2005 - ... For M. chitwoodi identification, the first of two PCR amplifications was conducted with primer set C2F3/ 1108 (5 GGTCAATGTTCAGAAATTTGTGG 3 and 5 TACCTTTGACCAATCACGCT 3) located in the COII and 16S ribosomal mitochondrial genes, respectively (Powers and ..Biometrical, biochemical, and molecular diagnosis of Portuguese Meloidogyne hispanica isolatesCM Maleita, MJ Simões, C Egas, RHC Curtis… - Plant …, 2012 - Am Phytopath Society... Mitochondrial DNA from isolates PtHi3 of M. his- panica and ItE of M. ethiopica were sequenced with the primer set C2F3(5′-GGT CAA TGT TCA GAA ATT TGT GG-3′) and MRH106(5′-AAT TTC TAA AGA CTT TTC TTA GT-3′) located in the COII gene and the 16S rRNA... [PDF]Prevalence, incidence and molecular identification of root-knot nematodes of tomato in PakistanM Ahmed - African Journal of Biotechnology, 2012 - ... DNA amplification of mtDNA with C2F3/1108 primers yielded a 1700 bp size productfor all three species of RKNs in comparison with 520 and 750 bp for M. chitwoodiand enterolobii, respectively, which were utilized as control.Plant-parasitic nematodes in sugarcane fields in Kitadaito Island (Okinawa), Japan, as a potential sugarcane growth inhibitorM Kawanobe, N Miyamaru, K Yoshida… - …, 2014 - ...Nematode identification using DNA sequence data Single nematodes were handpicked using a sterilised needle, rinsed with distilled water and placed on a glass slide. ...F194 (5-CGTAACAAGGTAGCTGTAG- 3 ) and F195 (5 -TCC TCC GCT AAA TGA TAT G-3 ) wereDetection of the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, using a real-time polymerase chain reaction assayAX Cao, XZ Liu, SF Zhu, BS Lu - Phytopathology, 2005 - Am Phytopath Society... One to four nematodes were placed into 15 µl of double-distilled water on ... sterile 0.5-ml thin- walled PCR tube containing 8 µl of nematode lysis buffer ... Genus-specific primers F194 (5′- CGTAACAAGGTAGCTGTAG-3′) and 5368 (5′-TTTCACTCGCCGTTACTAAGG-3′) wereDe Luca F, Troccoli A, Duncan L W, et al. Pratylenchus speijeri n. sp.(Nematoda: Pratylenchidae), a new root-lesion nematode pest of plantain in West Africa. Nematology, 2012, 14(8): 987-1004.IGS sequence variation, group-I introns and the complete nuclear ribosomal DNA of the entomopathogenic fungus Metarhizium: excellent tools for isolate detection …MP Pantou, A Mavridou, MA Typas - Fungal Genetics and Biology, 2003 - Elsevier... 18SF, GCGAAACTGCGAATGGCT, This work. 18SR, GTAATGATCCCTCCGCTG, This work. TW81, GTTTCCGTAGGTGAACCTGC, Curran et al. (1994). AB28, ATATGCTTAAGTTCAGCGGGT, Curran et al. (1994). Ma-ITS2, GTCCACTGCCGTAAAACCCC, This work.Heterodera vallicola sp. n.(Tylenchida: Heteroderidae) from elm trees, Ulmus japonica (Rehd.) Sarg. in the Primorsky territory, the Russian Far East, with rDNA …AS Eroshenko, SA Subbotin… - Russian Journal of …, 2001 - ... DNA fragments were sequenced in both directions with TW81, AB28, 5.8SM2 (5'- CTTATCGGTGGATCACTCGG-3') or 5.8SM5 (5'-GGCGCAATGTGCATTCGA-3') primers witha BigDye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit (PE Applied Biosystems, UK)Nematode universal primers:Gymnodinium nolleri Ellegaard et Moestrup sp. ined.(Dinophyceae) from Danish waters, a new species producing Gymnodinium catenatum-like cysts: molecular and …M Ellegaard, Y Oshima - Phycologia, 1998 - ... 1989) conserved positions 708-727 (D3A; 5' GACCCGTCTTG AAA CACGGA-3') and 1011-992(D3B; 5' TCGGAAGGAACCAGCTACTA-3'). Double-stranded and sin gle-stranded PCR amplifications were performed in a ther mocycler with an initial denaturation step of 3 min atNuclear and mitochondrial DNA sequence diversity in the Antarctic nematode Scottnema lindsayaeEM Courtright, DH Wall, RA Virginia… - Journal of …, 2000 - ... The primer pairs used were D2A (5-ACAAGTACCGTGAGGGAAAGTTG-3) and D2B(5-AATCCGTGTTTCAAGACGGG-3), D3A(5-GACCCGTCTTGAAA- CACGGA-3) and D3B(5-TCGGAAG- GAACCAGCTACTA-3) (Nunn, 1992), and mtA (5-GGCGGATCCTACATCGATGTTGAmiri S, Subbotin S A, Moens M. Identification of the beet cyst nematode Heterodera schachtii by PCR. European Journal of Plant Pathology, 2002, 108(6): 497-506.。

相关文档
最新文档