测序常见问题分析实例
一代测序常见问题及解决策略知识分享

一代测序常见问题及解决策略知识分享测序常见问题及解决策略一、PCR常见问题1.假阴性,不出现扩增条带PCR出现假阴性结果,可从以下几个方面来寻找原因:1)模板:①模板中有杂蛋白;②模板中有Taq酶抑制剂;③在提取制备模板时丢失过多;④模板核酸变性不彻底。
2)酶:酶失活或反应时忘了加酶。
3)Mg2+浓度:Mg2+浓度过高可降低PCR扩增的特异性,浓度过低则影响PCR扩增产量甚至使PCR扩增失败而不出扩增条带。
4)反应条件:变性对PCR扩增来说相当重要,如变性温度低,变性时间短,极有可能出现假阴性;退火温度过低,可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
5)靶序列变异:靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其PCR扩增是不会成功的。
2.假阳性假阳性:出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。
常见原因有:1)引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。
靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。
需重新设计引物。
2)靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。
这种假阳性可用以下方法解决:操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。
可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。
3.出现非特异性扩增带PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。
非特异性条带的出现,其原因:一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。
二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数过多有关。
DNA测序常见问题分析及解决办法总结

DNA测序常见问题分析及解决办法总结PCR类型测序模板注意事项PCR类型测序模板注意事项•总反应体积建议为50uL或100uL,扩增结束后取3ul用1%左右的琼脂糖电泳检测,应为单一的条带。
3ul样品总量不低于50ng(非常小的PCR产物可以酌情减小),PCR产物产量过低说明PCR扩增结果不是很理想,应改进条件重新扩增。
•对于有杂带和扩增弥散的PCR产物,需经琼脂糖电泳将目的片段切下来并回收,建议将PCR 产物作克隆后进行测序。
有杂带的和扩增弥散的PCR产物即使通过琼脂糖电泳纯化,测序仍有可能出现双峰等异常结果。
•经上述检测合格的PCR产物,需经过琼脂糖电泳纯化去除未反应的引物,dNTP,引物二聚体等影响测序反应的组分。
有多种纯化方法可供选择,Promega,Qiagen和生工等公司都有相应的产品可供选择。
纯化后的PCR产物经电泳检测估计总量应不低于200ng/Kb(非常小的PCR产物可以酌情减小)。
•与质粒模板相比,PCR产物彼此间差异很大,因此,每个PCR模板应尽可能提供相应的PCR 退火温度和PCR产物的长度,以供测序时参考。
•PCR模板一般不应短于200bp,过短的PCR产物应经克隆后进行测序。
•纯化好的PCR产物应溶于双蒸水中,TE缓冲液会严重影响测序反应。
•若让公司对PCR产物进行纯化,PCR产物需满足∶总量不低于1ug/kb,片段长度不低于200bp •各种PCR测序模板均应提供相应的测序引物,并尽可能提供引物的全序列,并将引物浓度准确稀释到5pmole/ul 。
引物浓度的换算关系∶总ng数 = pmole x 分子量/1000由于PCR产物测序相对较难,为使您能拿到一个好的结果,请尽量满足上述要求。
DNA测序常见问题分析及解决办法总结测序常见问题分析序列中出现N值的常见原因:通常有以下几种情况将造成测序结果中N值较多:•PCR产物直接进行测序,在PCR产物长度以后将无反应信号,机器将产生许多N值。
DNA测序技术的使用中常见问题

DNA测序技术的使用中常见问题DNA测序技术是一项重要的科学工具,被广泛应用于生物医学研究、进化学、司法科学等领域。
然而,在使用DNA测序技术的过程中,常常会遇到一些问题。
本文将介绍DNA测序技术使用中常见的问题,并提供相应的解决方案。
1. 样品质量问题在DNA测序之前,样品质量是至关重要的。
低质量的样品会导致测序结果的偏差和错误。
常见的样品质量问题包括样品的纯度不高、浓度不足或者样品受到了污染。
解决方案:- 提高样品纯化方法:使用恰当的纯化试剂和技术来提高样品的纯度,例如使用芳香族化合物或异维酮类物质。
- 检测样品浓度:使用光谱法或者比色法来测量样品中DNA的浓度,确保其符合测序要求。
- 避免样品污染:在样品处理过程中,严格遵守无菌操作规程,使用经过无菌过滤器过滤的试剂和器具。
2. 序列读取长度问题DNA测序技术可以产生从数十个碱基对到上百万个碱基对的序列。
然而,部分DNA测序技术的读取长度有限,这可能影响到某些研究或应用的结果。
解决方案:- 选择合适的测序方法:不同的测序方法具有不同的读取长度,选择适合自己研究目的的测序方法,以满足相关的研究需求。
- 使用测序技术的新发展:不断发展的测序技术,如第三代测序技术,具有较长的读取长度和更高的准确性,可以解决传统测序方法的限制。
3. 突变检测问题DNA测序技术不仅可以用于确定特定序列的顺序,还可以用于检测和鉴定突变。
然而,突变的检测可能受到多种因素的影响,如检测方法的灵敏度和特异性、突变类型的多样性等。
解决方案:- 选择合适的突变检测方法:不同的突变具有不同的检测方法,如SNP分析、插入和缺失突变的分析等。
选择合适的方法来检测特定类型的突变。
- 结合多种检测方法:结合使用不同的突变检测方法可以提高突变检测的准确性和可靠性。
- 验证突变结果:通过使用其他独立的测序技术或方法来验证突变结果,以确保结果的可靠性。
4. 数据分析问题DNA测序技术生成的数据量巨大,数据分析是一个复杂而耗时的过程。
DNA测序常见问题分析及解决办法

客户自己提供2ug纯化好的质粒
PCR产物定量
极低
重新电泳检测已纯化的PCR产物,确认有足够的量,或提供PCR原液由公司进行纯化
测序结果正常,与预期不符
找不到引物
质粒模板
检测是否为空载体,从其互补链上寻找,克隆位点离测序引物太近,长插入片段未测通。
PCR模板
不可能找到所用的测序引物,短片段可以从互补链上找到另一段的引物,长片段由于测不通,无法找到相应序列想得到全序列,短片段可以从两端进行测序,长片段需要经克隆后进行测序。
现象
可能原因
是否收费
收
不收
反应无信号或全部杂峰
引物与模板结合不好(引物或模板原因)
不收
质粒抽提未成功
质粒太大或活化方式不好、转化不好
不收
鉴定质粒或PCR浓度
建议50ul(pcr)/20ul(质粒)去离子水溶解
不收
帮助客户设计引物和序列拼接
不收
300bp以前中断或衰减
高级结构GC结构重复序列
PCR除外
收
客户提供引物导致测序结果不理想
引物不纯
收
质粒抽提成功率60%以下(大单)
质粒太大或活化方式不好、转化不好
质粒抽提不成功的,加收3元/质粒
验证实验结果,两次结果
一致
收2次费
不一致
收1收费
PCR原液纯化后
无反应结果
引物与模板结合不好(引物或模板原因)
收纯化费
不收测序费
测反向互补序列,AC结构不影响测序
严重的重复结构
测反向互补序列
模板特性决定的
根据具体情况决定
信号极弱或无信号
信号极弱或无信号
模板质量差
DNA测序常见问题分析及解决办法总结

DNA测序常见问题分析及解决办法总结PCR类型测序模板注意事项PCR类型测序模板注意事项•总反应体积建议为50uL或100uL,扩增结束后取3ul用1%左右的琼脂糖电泳检测,应为单一的条带。
3ul样品总量不低于50ng(非常小的PCR产物可以酌情减小),PCR产物产量过低说明PCR扩增结果不是很理想,应改进条件重新扩增。
•对于有杂带和扩增弥散的PCR产物,需经琼脂糖电泳将目的片段切下来并回收,建议将PCR 产物作克隆后进行测序。
有杂带的和扩增弥散的PCR产物即使通过琼脂糖电泳纯化,测序仍有可能出现双峰等异常结果。
•经上述检测合格的PCR产物,需经过琼脂糖电泳纯化去除未反应的引物,dNTP,引物二聚体等影响测序反应的组分。
有多种纯化方法可供选择,Promega,Qiagen和生工等公司都有相应的产品可供选择。
纯化后的PCR产物经电泳检测估计总量应不低于200ng/Kb(非常小的PCR产物可以酌情减小)。
•与质粒模板相比,PCR产物彼此间差异很大,因此,每个PCR模板应尽可能提供相应的PCR 退火温度和PCR产物的长度,以供测序时参考。
•PCR模板一般不应短于200bp,过短的PCR产物应经克隆后进行测序。
•纯化好的PCR产物应溶于双蒸水中,TE缓冲液会严重影响测序反应。
•若让公司对PCR产物进行纯化,PCR产物需满足∶总量不低于1ug/kb,片段长度不低于200bp •各种PCR测序模板均应提供相应的测序引物,并尽可能提供引物的全序列,并将引物浓度准确稀释到5pmole/ul 。
引物浓度的换算关系∶总ng数 = pmole x 分子量/1000由于PCR产物测序相对较难,为使您能拿到一个好的结果,请尽量满足上述要求。
DNA测序常见问题分析及解决办法总结测序常见问题分析序列中出现N值的常见原因:通常有以下几种情况将造成测序结果中N值较多:•PCR产物直接进行测序,在PCR产物长度以后将无反应信号,机器将产生许多N值。
DNA测序常见问题分析及解决办法

请提供详细资料我们会根据结果具体分析。
关于DNA测序服务的说明
1、如需TA克隆后测序,提供PCR产物的量不少于50ul。我们在收到样品后,先进行回收纯化,再进行克隆实验。
2、目的基因亚克隆实验,请提供含有目的基因的质粒及亚克隆载体质粒,如果质粒量少请提供保存菌种,我们需要额外收取转化或质粒提取费用。我们在收到样品后,先进行预实验检测,检测结果与背景资料一致时开始实验。
培养方式不当
自带质粒或已纯化PCR产物量极低
是否为电泳法定量
质粒:电泳检测浓度大于100ng/ul,体积大于20ul;已纯化PCR产物:根据片段长度提供足够量的模板,一般100ng/反应/Kb,进行多个反应的应相应增加量。
只测OD值不可靠
总量是否足够
测序出现双峰
双峰
重复序列,如polyT、polyA或几个碱基重复
质粒测序时整个结果双峰
引物特异性不好,改用其他引物测序。
质粒和PCR产物测序出现双峰
引物不纯,测序时只要单一引物,请不要将双向PCR引物混合;合成的引物没有纯化或纯化不好。重新合成引物测序。
信号
信号迅速衰减或
中断
模板GC二级结构区后
难以得到好的测序结果,亚克隆成较小的片段进行测序
模板GT二级结构区后
现象
可能原因
是否收费
收
不收
反应无信号或全部杂峰
引物与模板结合不好(引物或模板原因)
不收
质粒抽提未成功
质粒太大或活化方式不好、转化不好
不收
鉴定质粒或PCR浓度
建议50ul(pcr)/20ul(质粒)去离子水溶解
不收
帮助客户设计引物和序列拼接
不收
300bp以前中断或衰减
DNA测序常见问题及分析

DNA测序过程可能遇到的问题及分析对于一些生物测序公司(如Invitrogen等),我们的菌液或质粒经过PCR和酶切鉴定都没问题,但几天后的测序结果却无法另人满意。
为什么呢?PCR产物直接进行测序,在PCR产物长度以后将无反应信号,机器将产生许多N值。
这是由于Taq酶能够在PCR反应的末端非特异性地加上一个A碱基,我们所用的T载体克隆PCR产物就是应用该原理,通常PCR产物结束的位点,PCR产物测序一般末端的一个碱基为A(绿峰),也就是双脱氧核甘酸ddNTP终止反应的位置之前的A,A后的信号会迅速减弱。
N值情况一般是由于有未去除的染料单体造成的干扰峰。
该干扰峰和正常序列峰重叠在一起,有时机器377以下的测序仪无法正确判断出为何碱基。
有时,在序列的起始端的小片段容易丢失,导致起始区信号过低,机器有时也无法正确判读。
在序列的3’端易产生N值。
一个测序反应一般可以读出900bp以上的碱基(ABI3730可以达到1200bp),但是,只有一般600bp以前的碱基是可靠的,理想条件下,多至700bp的碱基都是可以用的。
一般在650bp以后的序列,由于测序毛细管胶的分辩率问题,会有许多碱基分不开,就会产生N值。
测序模板本身含杂合序列,该情况主要发生在PCR产物直接测序,由于PCR产物本身有突变或含等位基因,会造成在某些位置上有重叠峰,产生N值。
这种情况很容易判断,那就是整个序列信号都非常好,只有在个别位置有明显的重叠峰,视杂合度不同N值也不同。
测序列是从引物3’末端后第一个碱基开始的,所以就看不到引物序列。
有两种方法可以得到引物序列。
1.对于较短的PCR产物(<600bp),可以用另一端的引物进行测序,从另一端测序可以一直测通,可以在序列的末端得到该引物的反向互补序列。
对于较长的序列,一个测序反应测不通,就只能将PCR产物片段克隆到载体中,用载体上的通用引物(T7/SP6)进行测序。
载体上的通用引物与所插入序列间有一段距离,因此就可以得到完整的引物序列。
测序常见问题分析解答

测序常见问题分析主讲人: 张隽辉LOGO1. 序列结构对测序的影响图例:poly结构原因: 主要原因是在polyT结构后,测序酶容易在模板上 滑动,导致随后的峰型变乱 或者移码解决办法: 此类样品通过对其反向互补序列进行测序,通过 拼接可以得到模板全长序列.图例:重复结构原因: 重复结构会导致测序复制框的滑移,另外测序试剂采用 了I, U 代替G, T, 与模板结合能力较弱, 测序酶很难延伸, 信号会迅速衰减或峰谱很乱解决办法: 使用反向引物对模板进行测序,测到重复序列反向互 补位置时,即可完成模板全长的拼接,一般测A\C重复 序列比G\T要容易一些图例:回文结构位点94至137碱基前后互补, 形成回文结构,该结构导致 后面的信号衰减,出现错误的判读。
图例: 特殊结构现象: 信号在73bp(信号峰图2700处)突然中断, 测序PCR反应终止原因: 变性后的单链在该处很可能互补或在全序列中有大的 特殊结构,造成严重的二级结构,使dNTP 和 ddNTP不 能和模板结合, 测序酶无法正常延伸解决方法: 酶切,做亚克隆测序2.测序常见图谱分析图例:双克隆1现象: T载体序列峰图正常, 连接位置处出现套峰原因: 1.有插入片段的载体和空载体同时存在 2.PCR产物用T载体进行连接时,其片段能以正反两个方向 插入T载体解决办法: 重新挑取单克隆备注: 重新进行PCR反应或者酶切鉴定仅能证明该克隆含有插入片段, 并不足以证明模板的单一图例:双克隆2现象: 载体序列及插入片段前半部分峰图单一,套峰出现在插入片段中间原因: 1. pcr产物不纯,且产物的引物结合区以及峰图单一的序列 都一样 2. 部分模板碱基发生突变,双峰出现的位点是由碱基突变 的位置决定的,有时会一端正常一端双峰(插入片断超过一 个反应测序长度(800~900bp)), 或者两个反应都双峰解决方法: 重新挑单克隆图例:非特异扩增现象: 峰图起始即双峰 原因及解决方法: 1. 对于质粒样品, 引物在序列上有两个结合位点(载体上和插入片段上),换一个引物测序 2.对于PCR产物,有两个模板,且两个模板都能和引物结合扩增, 换引物或克隆测序图例:等位基因双模板现象:序列的80bp到120bp之间有两套峰存在,没有发生移码突变解决方法: 采取克隆的方法将两套模板分开,分别进行测序图例:碱基缺失碱基缺失常见在PCR产物中,特别是从基因组中扩增得到的PCR片段, 上图的186位缺失两个连续的T。
测序常见问题分析与解答

测序常见问题分析与解答1、DNA测序样品用什么溶液溶解比较好?答:溶解DNA测序样品时,用灭菌蒸馏水溶解最好。
DNA的测序反应也是Taq酶的聚合反应,需要一个最佳的酶反应条件。
如果DNA用缓冲液溶解后,在进行了测序反应时,DNA溶液中的缓冲液组份会影响测序反应的体系条件,造成Taq酶的聚合性能下降。
有很多客户在溶解DNA测序样品时使用TE Buffer。
的确,TE Buffer能增加DNA样品保存期间的稳定性,但TE Buffer对DNA测序反应有影响,根据我们的经验,我们还是推荐使用灭菌蒸馏水来溶解DNA测序样品。
2、提供DNA测序样品时,提供何种形态的比较好?答:我们推荐客户提供菌体,由我们来提取质粒,这样DNA样品比较稳定。
如果您要以提供DNA样品,我们也很欢迎,但一定要注意样品纯度和数量。
提供的测序样品为PCR产物时,特别需要注意DNA的纯度和数量。
PCR产物应该进行切胶回收,否则无法得到良好的测序效果。
有关DNA测序样品的详细情况请严格参照“DNA测序样品准备及注意事项”部分的说明。
3、提供的测序样品为菌体时,以什么形态提供为好?答:一般菌体的形态有:平板培养菌、穿刺培养菌,甘油保存菌或新鲜菌液等。
我们提倡寄送穿刺培养菌或新鲜菌液。
平板培养菌运送特别不方便,我们收到的一些平板培养菌的培养皿在运送过程中常常已经破碎,面目全非,需要用户重新寄样。
这样既误时间,又浪费客户的样品。
一旦是客户非常重要的样品时,其后果更不可设想。
而甘油保存菌则容易污染。
制作穿刺菌时,可在1。
5ml的Tube管中加入琼脂培养基,把菌体用牙签穿刺于琼脂培养基(固体)中,37℃培养一个晚上后便可使用。
穿刺培养菌在4℃下可保存数个月,并且不容易污染,便于运送。
4、与测序引物有关的问题:答:对于通用测序引物,只要正确使用,一般不会有太大问题,测序引物问题主要发生在客户自己提供的PCR引物上。
应该明确的一点是并不是所用的用于PCR的引物都可以用来作测序,以下几种PCR引物将是不适合用作测序引物的:(1)简并引物,简并引物必然要在测序模板上有多个结合位点,直接影响测序结果。
DNA测序常见问题及其分析-图文

DNA测序常见问题及其分析-图文测序常见问题及其分析CollectedbyRobertoRun,12.10.2022 HTUTUUUTTH1、PCR产物测序时出现重叠峰问题图1(模板中有碱基缺失,往往是单一位点(1-1)或两个位点(1-2)碱基缺失导致测序结果移码)图1-1图1-2解决方法:将PCR产物克隆到质粒(如T载体)中挑单克隆测序,或将PCR产物进行纯化(至少琼脂糖充分电泳后切胶纯化)后再进行测序。
问题图2(PCR产物不纯,含部分序列一致的两种以上的片段,长度不一)图2解决方法:主要原因是PCR产物没有纯化,含有部分序列一致的两种以上长度不一的片段,将PCR产物进行纯化(至少琼脂糖充分电泳后切胶纯化)后再进行测序,便可解决。
问题图3(测序引物有碱基缺失)测序引物有碱基缺失(一般是引物的5'端缺失),和模板的碱基缺失即图1有些类似,所不同的是模板碱基缺失一般是在一段正常测序序列后才出现移码,而引物碱基缺失的话,则从测序一开始就出现移码,表面在图形上便是一开始就是严重的峰形重叠。
解决方法:重新合成引物,或将引物进行纯化2、克隆测序时出现峰形重叠原因:所挑选的重组子不是单克隆,所提供的测序用质粒中含有两种以上插入片段不同的质粒;或是是送测序的菌液污染解决方法:重新挑单克隆的菌落(划线分离单菌落),提质粒或送菌液再次测序。
3、样品有杂合/突变位点模板中有杂合型突变,也就说模板本身在这个位点出现突变;或者是从基因组中扩增出来的杂合位点。
如果模板有杂合(突变或缺失),那么测序图形中其他的位點一般都是單一的峰形,然后突然在某一個位點出現重叠峰(如图中箭頭所示)。
解决方法:建议将DNA片段克隆到载体再测序。
4、polyA/T和C/Gcluter导致的套峰和测序信号衰减图4-1图4-3图4-4RACE测序时经常遇到图4-1和图4-4的情形,解决方法:从另一端测序;但如果这样的序列出现在中间,呵呵,目前还没有很好的解决方法,要看测序公司的本事了。
一代测序常见问题及解决策略

测序常见问题及解决策略一、PCR常见问题1.假阴性,不出现扩增条带PCR出现假阴性结果,可从以下几个方面来寻找原因:1)模板:①模板中有杂蛋白;②模板中有Taq酶抑制剂;③在提取制备模板时丢失过多;④模板核酸变性不彻底。
2)酶:酶失活或反应时忘了加酶。
3)Mg2+浓度:Mg2+浓度过高可降低PCR扩增的特异性,浓度过低则影响PCR 扩增产量甚至使PCR扩增失败而不出扩增条带。
4)反应条件:变性对PCR扩增来说相当重要,如变性温度低,变性时间短,极有可能出现假阴性;退火温度过低,可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
5)靶序列变异:靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其PCR扩增是不会成功的。
2.假阳性假阳性:出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。
常见原因有:1)引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。
靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。
需重新设计引物。
2)靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。
这种假阳性可用以下方法解决:操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。
可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。
3.出现非特异性扩增带PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。
非特异性条带的出现,其原因:一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。
二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数过多有关。
三是酶的质和量,往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现,酶量过多有时也会出现非特异性扩增。
测序常见问题分析实例

测序常见问题分析实例峰型整齐,在某一点前后突然变乱信号迅速衰减信号极弱或无信号整条序列信号杂乱峰型整齐,在某一点前后突然变乱:图1 PolyT特殊结构上图是我们的一个质粒测序样品,用T7通用引物进行测序,从图中可以看出,在约285bp 的polyT结构后,序列明显变乱。
主要原因是在polyT结构后,测序酶容易在模板上滑动,导致polyT结构后的峰型变得杂乱。
此类样品通过对其反向互补序列进行测序,一般可以得到好的结果。
图2 移码突变双模板的存在上图是我们的一个质粒测序样品,用M13+通用引物进行测序,从图中可以看出,该序列在290bp后序列明显有两套峰存在。
造成该现象的原因可能有如下几条:序列发生缺失突变插入外援片段的载体和未插入外援片段的载体同时存在PCR产物用T载体进行克隆时,PCR片段可以以两个方向克隆进T载体所挑克隆不纯两个大小相近的PCR产物同时存在,无法纯化分开解决的办法:对于质粒模板,重新挑选克隆,或从另一段进行测序对于PCR模板,用另一端引物进行测序,或克隆后进行测序图3 等位基因双模板的存在上图是针对一个质粒进行的测序结果,从图中可以明显看出,在序列的80bp到120bp之间有两套峰存在,但是没有发生移码突变。
该情况与图2所举的例子有所不同,该情况下从反向进行测序仍然不可能得到好的测序结果。
该种情况下只能采取克隆的方法将两套模板分开,分别进行测序。
信号迅速衰减返回图4 CTT重复结构如上图,在大约260碱基后出现了一个严重的CTT重复结构,导致信号迅速衰减,很难得到跨过该区后的信息。
该种情况下,只能从另一端进行测序,一般来说,AAG重复结构不会太影响测序。
也可以对片段进行亚克隆,使每个片段大小不大于200bp,然后再进行测序。
不过,该方法要麻烦很多。
图5 GGT重复结构严重影响测序上图下半部分是一个质粒模板用M13+通用引物进行测序,大约在130bp开始,出现GGT 重复结构,测序信号迅速减弱至消失。
一代测序常见问答及解决策略

测序常见问题及解决策略一、PCR常见问题1.假阴性,不出现扩增条带PCR出现假阴性结果,可从以下几个方面来寻找原因:1)模板:①模板中有杂蛋白;②模板中有Taq酶抑制剂;③在提取制备模板时丢失过多;④模板核酸变性不彻底。
2)酶:酶失活或反应时忘了加酶。
3)Mg2+浓度:Mg2+浓度过高可降低PCR扩增的特异性,浓度过低则影响PCR扩增产量甚至使PCR扩增失败而不出扩增条带。
4)反应条件:变性对PCR扩增来说相当重要,如变性温度低,变性时间短,极有可能出现假阴性;退火温度过低,可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
5)靶序列变异:靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其PCR扩增是不会成功的。
2.假阳性假阳性:出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。
常见原因有:1)引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。
靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。
需重新设计引物。
2)靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。
这种假阳性可用以下方法解决:操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。
可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。
3.出现非特异性扩增带PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。
非特异性条带的出现,其原因:一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。
二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数过多有关。
三是酶的质和量,往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现,酶量过多有时也会出现非特异性扩增。
测序常见问题分析

测序常见问题分析1.图谱无信号1.1、质粒培养,转化或其他随机原因使质粒上引物序列发生变化,导致无结合位点1.1.1同一模板两端引物测序均无信号,浓度不好安排重抽,反之停止实验,建议客户确认后重新送样1.1.2同一模只一端无信号,确认不是空载体,安排重新实验或换同序列其他引物,两次测序无信号则停止实验,客户要求测通的安排单向测通。
反之建议客户单向测通1.1.3客户提供序列我司合成引物,二次实验仍无信号则停止实验,建议客户提供载体图谱或目的基因我处给他设计引物测序1.1.4客户提供序列我司设计并合成引物核实设计无误可安排重新实验,仍不成功则停止实验,请客户确认提供的序列是否和模板相匹配1.1.5我司设计并合成的步行引物核实设计无误可安排重新实验,仍不成功可重设引物或换另一端测通。
1.1.6某一通用引物测序无信号先查看当天该引物的其他实验或近期该引物的实验情况,均无信号则换管引物重新实验,当天该引物的其他实验有成功的,该反应重做1.1.7一订单多样品用同一对引物测序,某条引物测序均无信号,若为客户提供引物则停止实验。
若为通用引物有同序列其他引物,在确认不是空载载体的情况下,安排换引物试作三至四个反应,效果好全部安排用该引物测序;效果不好都停止实验。
客户要求测通的安排单向测通,反之建议单向测通。
1.1.8重摇重抽测序无信号则取消,建议重新提供样品1.1.9客户提供质粒直接测序无信号则停止实验,建议客户提供新鲜菌液1.1.10用PCR引物测序无信号可换备用引物测序,无备用引物停止实验,建议用载体上引物测序。
1.2、PCR 产物1.2.1同一模板两端引物测序均无信号则停止实验,建议客户克隆后测序1.2.2 同一模只一端无信号,安排重新实验, 仍无信号则停止实验,客户要求测通的安排单向测通,反之建议步行测通2. 图谱信号弱可参考原始峰图,对不能出报告的峰图的处理如下:2.1 同一模板某一端,可安排提高浓度梯度重新实验2.2 某一模板或一订单多个模板中的一个模板2.2.1 鉴定浓度正常可安排提高浓度梯度重新实验,效果仍不好可作弱stop处理2.2.2 一次抽提出的质粒亮度弱,可安排重新抽提质粒后测序2.2.3 二次抽提出的质粒亮度弱,可停止实验,建议重新提供样品3 双峰3.1 PCR 产物测序3.1.1 引物不纯,引物客户提供该结果可出,引物我司合成安排重合引物3.1.2 引物特异性差,有双或多结合位点,可换备用引物测序,无备用引物即出结果3.1.3 polyT/A/G/C 出结果,单向建议客户换另一端测序。
测序常见问题分析的解答

测序常见问题分析主讲人: 张隽辉LOGO1. 序列结构对测序的影响图例:poly结构原因: 主要原因是在polyT结构后,测序酶容易在模板上 滑动,导致随后的峰型变乱 或者移码 解决办法: 此类样品通过对其反向互补序列进行测序,通过 拼接可以得到模板全长序列.图例:重复结构原因: 重复结构会导致测序复制框的滑移,另外测序试剂采用 了I, U 代替G, T, 与模板结合能力较弱, 测序酶很难延伸, 信号会迅速衰减或峰谱很乱 解决办法: 使用反向引物对模板进行测序,测到重复序列反向互 补位置时,即可完成模板全长的拼接,一般测A\C重复 序列比G\T要容易一些图例:回文结构位点94至137碱基前后互补, 形成回文结构,该结构导致 后面的信号衰减,出现错误的判读。
图例: 特殊结构现象: 信号在73bp(信号峰图2700处)突然中断, 测序PCR反应终止原因: 变性后的单链在该处很可能互补或在全序列中有大的 特殊结构,造成严重的二级结构,使dNTP 和 ddNTP不 能和模板结合, 测序酶无法正常延伸 解决方法: 酶切,做亚克隆测序2.测序常见图谱分析图例:双克隆1现象: T载体序列峰图正常, 连接位置处出现套峰原因: 1.有插入片段的载体和空载体同时存在 2.PCR产物用T载体进行连接时,其片段能以正反两个方向 插入T载体 解决办法: 重新挑取单克隆备注: 重新进行PCR反应或者酶切鉴定仅能证明该克隆含有插入片段, 并不足以证明模板的单一图例:双克隆2现象: 载体序列及插入片段前半部分峰图单一,套峰出现在插入片段中间原因: 1. pcr产物不纯,且产物的引物结合区以及峰图单一的序列 都一样 2. 部分模板碱基发生突变,双峰出现的位点是由碱基突变 的位置决定的,有时会一端正常一端双峰(插入片断超过一 个反应测序长度(800~900bp)), 或者两个反应都双峰 解决方法: 重新挑单克隆图例:非特异扩增现象: 峰图起始即双峰原因及解决方法: 1. 对于质粒样品, 引物在序列上有两个结合位点(载体上 和插入片段上),换一个引物测序 2.对于PCR产物,有两个模板,且两个模板都能和引物结合 扩增, 换引物或克隆测序图例:等位基因双模板现象:序列的80bp到120bp之间有两套峰存在,没有发生移码突变解决方法: 采取克隆的方法将两套模板分开,分别进行测序图例:碱基缺失碱基缺失常见在PCR产物中,特别是从基因组中扩增得到的PCR片段, 上图的186位缺失两个连续的T。
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测序常见问题分析实例
峰型整齐,在某一点前后突然变乱
信号迅速衰减
信号极弱或无信号
整条序列信号杂乱
峰型整齐,在某一点前后突然变乱:
图1 PolyT特殊结构
上图是我们的一个质粒测序样品,用T7通用引物进行测序,从图中可以看出,在约285bp 的polyT结构后,序列明显变乱。
主要原因是在polyT结构后,测序酶容易在模板上滑动,导致polyT结构后的峰型变得杂乱。
此类样品通过对其反向互补序列进行测序,一般可以得到好的结果。
图2 移码突变双模板的存在
上图是我们的一个质粒测序样品,用M13+通用引物进行测序,从图中可以看出,该序列在290bp后序列明显有两套峰存在。
造成该现象的原因可能有如下几条:
序列发生缺失突变
插入外援片段的载体和未插入外援片段的载体同时存在
PCR产物用T载体进行克隆时,PCR片段可以以两个方向克隆进T载体
所挑克隆不纯
两个大小相近的PCR产物同时存在,无法纯化分开
解决的办法:
对于质粒模板,重新挑选克隆,或从另一段进行测序
对于PCR模板,用另一端引物进行测序,或克隆后进行测序
图3 等位基因双模板的存在
上图是针对一个质粒进行的测序结果,从图中可以明显看出,在序列的80bp到120bp之间有两套峰存在,但是没有发生移码突变。
该情况与图2所举的例子有所不同,该情况下从反向进行测序仍然不可能得到好的测序结果。
该种情况下只能采取克隆的方法将两套模板分开,分别进行测序。
信号迅速衰减返回
图4 CTT重复结构
如上图,在大约260碱基后出现了一个严重的CTT重复结构,导致信号迅速衰减,很难得到跨过该区后的信息。
该种情况下,只能从另一端进行测序,一般来说,AAG重复结构不会太影响测序。
也可以对片段进行亚克隆,使每个片段大小不大于200bp,然后再进行测序。
不过,该方法要麻烦很多。
图5 GGT重复结构严重影响测序
上图下半部分是一个质粒模板用M13+通用引物进行测序,大约在130bp开始,出现GGT 重复结构,测序信号迅速减弱至消失。
上图的上半部分是用M13-通用引物从反向进行测序,在反向序列上该重复是GGT的反向互补序列,即ACC,大约在500bp处,测序很轻松地就读过了ACC重复序列区。
GGT重复结构严重影响测序的原因是在测序试剂盒中,为了得到均匀的测序峰型图,G和T碱基均进行了替代,分别替代成I和U,因此与模板的结合能力减弱,测序酶反应到此后就比较难延伸下去,导致该区域后信号迅速减弱。
通过优化多种条件,可以对结果有一点改善,但仍然不能得到可用的结果。
对该类型的模板,对反向互补链进行测序,可以很轻松地跨过该区域。
图6 GC特殊结构区
上图是一个质粒模板用M13+通用引物进行测序的结果,序列中存在一个GC特殊结构区,在该区域后,信号迅速减弱。
上图的下半部分是对测序反应进行优化后的测序结果,在GC 特殊结构后,测序信号得到一定程度的改善,但是离一般的测序结果还是相差甚远。
针对该类型的模板,一般应从反向进行测序,然后在该特殊结构区附近将两个方向的测序结果拼接起来,得到完整的序列。
图7 模板特殊结构
上图是一个pGEM-T载体用M13+引物进行测序,可以看出,序列在载体后迅速衰减,造成此现象的原因一直不明,我们试用了多种方法试图解决该测序问题,但几乎毫无效果。
该种情况很有可能是在全序列中有大的特殊结构,造成严重的二级结构结构,使测序酶无法
读过此区域。
正常情况下pGEM-T载体测序结果非常理想。
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信号极弱或无信号
造成该现象主要有两个原因:
模板质量极差;
引物与模板序列不匹配。
图8 pGEM质粒用T3通用引物进行测序,测序结果无可用信息,因为pGEM载体上无T3通用引物结合位点。
上图中两处峰前面的一个主要是未去除的测序反应单体造成的,靠右边的一处峰主要是引物的非特异性反应造成的。
在我们每天的测序样品中,有相当一部分测序失败的样品是由于缺少引物结合序列造成的,主要有下面几种原因可能造成该种结果:
客户提供了错误的载体信息或引物信息,
用客户自己在克隆片段上的引物对质粒进行测序,但是该质粒为空载体,不包含插入片段。
载体由于突变,丢失了原来的引物结合位点。
图9 一个PCR产物的测序结果,整个序列信号极低,几乎无可用信息。
造成该现象主要是在测序反应中,模板的量太低,所得信号太弱。
重新提供足够量的模板一般可以得到较好的测序结果。
返回
整条序列信号杂乱
模板本身的问题:
图10 一个污染的PCR产物测序结果,可以看出,整条序列都有极高的背景。
有以下几个原因可能造成测序模板污染:
PCR产物有杂带
质粒类型的模板克隆不纯
对于PCR类型的模板,我们现在都采取切胶的方法进行纯化。
该纯化方法一般情况下可以将PCR产物的杂带及多余的引物去掉。
但是,当扩增的片段中包含有大小非常近似的片段时,切胶纯化的方法也无济于事了。
该情况下只能采取将待测的PCR产物进行克隆测序了。
质粒类型的测序模板一般有两种原因可以造成模板污染。
一为所挑选的克隆不纯,包含两种或两种以上的克隆,如不包含插入片段的克隆和包含插入片段的克隆的混合体,用T载体进行PCR产物克隆时,正向插入的克隆和反向插入的克隆的混合体等。
通常重新挑选独立的克隆可以解决该问题。
第二种情况是一些产量很低的质粒,测序时需要加入较多体积的模板,因此相应包含的杂质就要多了,这些增加的杂质对测序将产生极大的影响。
通常我们要求质粒的产量要达到每毫升菌液能够提取到至少200 ng的质粒,低于此产量的质粒用于测序成功率将大大下降。
对于低产量的质粒,一般让客户自己采取大量提取的方法,拿到足够用于测序的量的质粒,最少1ug。
图11PCR产物的测序结果,该结果信号很强,峰型整齐,但是在该测序结果中有多个位置有重叠峰,出现N值。
造成该情况的主要原因很可能是该PCR产物中有突变体的存在。
在每个突变位点上有一个重叠的峰,由于仪器无法正确识别该处的碱基,就只能以N值代替。
在有的测序结果中,整条序列信号很好,在个别位置有N值,一定要确认该处N值的具体情况,如果却是两个
重叠峰存在,重新测序也解决不了问题。
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