藻类生物学试验
藻类生物学实验
藻类生物学实验藻类是一种特殊的生物群体，它们具有广泛的生态和经济价值。
在生物科技的发展中，藻类也越来越受到关注，成为了一个热门的研究领域。
而藻类的生物学实验也是藻类研究中必不可少的一部分。
本文将介绍一些常见的藻类实验以及这些实验的研究意义。
1、细胞培养实验细胞培养实验是一种最基础的藻类实验，主要用于观察藻类在不同环境条件下的生长繁殖情况，如光照、温度、营养物质等。
此外，还可以通过该实验研究藻类的生长动力学、生命周期等。
在细胞培养实验中，我们通常会注重以下几个方面的控制：培养基的配方、pH值的调整、温度的维持、光照的控制、空气的通畅等。
通过这些控制条件，可以使藻类在培养瓶或培养罐中快速繁殖，得到足够的细胞量，方便后续的实验操作。
2、光合作用实验光合作用是藻类生物学中最重要的基础过程，其研究可以为我们理解藻类的营养物质的来源提供依据。
在光合作用实验中，我们主要关注藻类对不同波长和光强度的光照的响应。
可以利用光度计、荧光测定仪等工具对光合作用的速率进行测定。
有趣的是，一些藻类也存在一定程度的光合作用反应，这也是可以通过实验进行研究的一部分。
3、种群生态实验种群生态实验主要研究藻类群体在相互作用及媒介介绍下的各种变化。
这种实验通常涉及到多种不同种类藻类的集成实验，通过实验控制各种参数，可以模拟不同生态条件下的藻类群体。
这种实验可以对不同类型藻类的生态环境适应能力和竞争力进行研究。
4、生物质生产实验生物质生产实验是近年来十分热门的一类实验。
这种实验统计各种生产参数，对不同的藻类进行筛选及适应性研究，以便可以更加高效地生产可再生能源、环保产品等。
通过合理的光照控制、培养基、pH值及温度等因素的调节，可以使藻种达到最理想的生长状态。
通过密闭式的生物反应器，藻种可以在最完美的生态环境下进行生长和繁殖，从而达到最高产量。
藻类生物学实验有着广泛的研究领域，可以探究藻类在不同环境条件下的生长及其特性。
这些实验的意义在于生态学、工业、环保。
藻类生物学实验11海科
实验一大型海藻种类形态观察（4学时第八周）一、实验目的了解海洋藻类----大型海藻与微藻的形态与分类。
二、实验材料及用具1、实验材料：1）大型海藻标本（学院标本室）；2）海带孢子体（可用干海带泡发），江篱（海洋学院附近打捞）；（取一部分冻存于-20冰箱，作为叶绿素提取实验的材料）2、实验器材：显微镜、胶头滴管（每瓶藻一支）、盖玻片、载玻片、刀片（做海藻切片）。
4、试剂：70%乙醇（每组一瓶）三、实验步骤1、大型海藻标本观察；将标本馆的拉丁文名抄录下来，网上检索图片和分类。
2、海带的外部形态观察：藻体明显分为固着器、柄部和叶片，在叶片中央有两条平行纵走的浅沟，孢子体幼龄期叶面平滑，小海带期叶片出现凹凸现象，大海带期叶面则平直宽厚。
3、海带的内部构造：①用徒手切片的方法，取一小块孢子体进行横切片，在显微镜下观察：孢子体的柄和叶均分为表层、皮层和髓部。
②同样取一小块孢子体进行纵切片，在显微镜下观察：表皮层由1-2层排列紧密的小细胞组成，外皮层细胞间分布1-2层粘液腔，其腔内有分泌细胞，髓丝细胞一端膨大为喇叭花，分生细胞位于叶片与柄之间。
4、江蓠的内部构造观察：①江蓠的纵切面。
②江蓠的横切面。
③江蓠囊果横切面。
5、紫菜的形态与构造：干紫菜先用水浸泡散开，再进行观察。
固着器：由根丝集合而成。
叶状体：由一层或两层细胞构成。
柄：叶状体基部与固着器之间的部分。
四、作业：1、绘制大型海藻图：选5个标本，注明拉丁文名，简要说明其生物学特性（利用拉丁文名进行网上检索）。
2、绘出海带和江篱的内部构造，紫菜的外形。
附1：江篱与海带的内部构造A.藻体横切面观；B.藻体纵切面观；1表皮；2髓部细胞3表皮细胞图2. 海带构造A.海带孢子体横切面；B.髓部，C.示喇叭丝；皮层部分横切面，示粘液腔道形成的时期；D.成体横切面，示粘液腔道；co皮层；e分泌细胞；hg藻丝；me髓部；m表面分生细胞；s分泌腔；v.b.f结合的喇叭丝实验二微型海藻形态观察和培养（4学时，第九周）一、实验目的观察几种重要经济微藻的形态特征，几种掌握单细胞微藻的实验室培养方法，细胞生长曲线观察。
黑藻—中学生物实验的好材料
黑藻—中学生物实验的好材料作者：徐东强来源：《科教导刊·电子版》2017年第20期摘要生物材料的选取是试验成功的关键，黑藻作为一种绿色高等植物，有很多优点，比如，叶肉细胞呈单层，叶绿体大而清晰，代谢旺盛，做试验时操作容易，原料容易获取，在河流、池塘、很多，并且花鸟鱼虫市场都有出售。
因此黑藻可谓一材多用，不愧为生物实验的好材料。
关键词黑藻生物实验中图分类号：G633.91 文献标识码：A黑藻俗称温丝草、灯笼薇、转转薇等，属水鳖科、黑藻属单子叶多年生沉水植物，黑藻叶片小而薄，并且细胞呈单层分布，叶肉细胞内叶绿体大而清晰。
经过几年的实验探索发现用黑藻做实验不仅制片简单易行，不像取洋葱鳞片叶或菠菜叶下表皮那样不方便，同时可以避免刺激性气味，而且可以在烧杯或水槽中控制培养条件，如增加光照，用温水升高温度等，以便于实验的观察。
现列举如下：1观察植物细胞形态及叶绿体黑藻，不是藻类，而是被子植物，属于高等植物，因此，可用它来观察高等植物细胞的形态的典型材料，由于黑藻叶片细胞呈单层，直接用镊子取下一片嫩叶，平展在玻片上，滴上一滴清水，盖上盖玻片，很容易观察到细胞呈长方形，我们可以再取不同类型的细胞，比如血细胞、细菌细胞、神经细胞作对比：黑藻细胞（高等植物细胞）呈长方形、血细胞（动物细胞）成球形、神经细胞有细胞体与许多突起、细菌细胞（某类）呈杆形。
由于黑藻叶肉细胞叶绿体大而清晰，并且嫩叶中为数不多，因此我们可以用它来观察叶绿体，如图1所示。
2验证光合作用产生氧气及光合作用需要光的实验（1）因其叶片结构简单，只有一层细胞构成，且取材方便，含有叶绿体，在水中产生气泡明显，常被用作研究光合作用的材料。
如图2所示，烧杯中盛满清水，取黑藻用漏斗倒扣其上，倒扣的漏斗上部再倒扣一支试管，就可以用来验证光合作用产物之一是氧气的实验了，把此装置至于适宜的光照下，可以观察到有气泡产生，证明有气体产生，取下试管，用带火星的木条验证产生气体是氧气。
藻类生物学实验室新生培训手册
藻类光生物学实验室新生培训手册欢迎各位新生来到藻类光生物学实验室, 在这里你们将度过你们的研究生生涯。
为了使你们尽快融入实验室这个大家庭, 为了使你们此后可以更好的进行科学研究, 本实验室将对所有来到这里的新生进行为期2周的培训, 希望大家可以积极参与, enjoy it！【培训内容】●了解实验室规章制度及研究生须知●掌握基本实验技术●培训总结一了解实验室规章制度及研究生须知为了使实验室可以高效、有序的运转, 藻类光生物学实验室制定了自己实验室的规章制度, 每位在这个实验室学习工作的人员都必须遵守这些规章制度, 同时, 各位研究生还需要遵守研究生守则, 以保证自己可以顺利毕业。
培训方式: 誊录并熟知相关规则。
培训时间: 入学第一周第一天二掌握基本实验技术为了可以进行科学研究, 一些基本实验技术的掌握是必须的, 新生将在实验室技术人员的指导下对实验技术进行纯熟操作、掌握。
以下是藻类光生物学实验室必须掌握的实验技术, 新生在进行实际操作前, 必须先对实验原理及环节进行预习。
培训时间: 开学第一、二周1.海水二氧化碳系统各分量的计算:气态CO2溶入海水后, 一方面服从亨利定律（在一定温度下, 气体在液体中的饱和浓度与液面上该气体的平衡分压成正比）：CO2(g)←→CO2(aq), 因此CO2的平衡溶解度[CO2]与CO2的平衡分压pCO2之间的线性关系可表达为[CO2](aq)= KH*pCO2, KH是海水中二氧化碳的溶解度系数与温度、盐度和压力有关;另一方面, CO2还和水反映生成碳酸, CO2＋H2O ←→H2CO3, 然后, H2CO3分两步电离H2CO3←K1’→H+＋HCO3-－←K2’→CO32-＋2H+K1’= a H+[HCO3-]/[H2CO3] （1）K2’= a H+[CO32-]/[HCO3-] （2）K1’、K2’、分别是碳酸的第1.第2表观解离常数,其中[HCO3－] +2 [CO32-]=Ac （3）Ac为碳酸盐总碱度,它跟海水总碱度(AT )有如下关系: Ac=AT - 2.206 ×10-5×Cl‰×KB’/（KB’+ aH+）= A T– BCl‰是海水氯度, KB’是硼酸的解离常数当海水温度、盐度拟定期, KH、K1’、 K2’、 B值都可查表得到, 这样通过测定海水的pH 和总碱度, 按下列方程即可计算碳酸盐体系各组分(HCO3-、CO32-、CO2*、∑CO2)的浓度和pCO2。
藻类植物实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解藻类植物的基本特征和分类。
2. 掌握藻类植物观察和鉴定的基本方法。
3. 学习藻类植物在生态系统中的作用。
二、实验原理藻类植物是一类结构简单、种类繁多、广泛分布于水生和潮湿环境中的低等植物。
它们通过光合作用制造有机物质，是自然界中重要的初级生产者，对维持生态平衡和水质净化具有重要意义。
本实验通过观察和鉴定藻类植物，了解其形态结构、生长环境和生态功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：采集的藻类植物样本、显微镜、载玻片、盖玻片、吸水纸、酒精灯、镊子、剪刀、解剖针等。
2. 实验仪器：显微镜、酒精灯、培养皿、蒸馏水、碘液、盐酸等。
四、实验步骤1. 藻类植物样本采集：在池塘、溪流、湖泊等水生环境中采集藻类植物样本，注意采集不同种类和生长阶段的藻类。
2. 藻类植物观察：1. 取一小块藻类植物样本，用剪刀剪成小块，放入载玻片中。
2. 用盖玻片轻轻覆盖样本，滴加少量蒸馏水，使样本充分展平。
3. 将载玻片置于显微镜下观察，观察藻类植物的形态结构、细胞特征、繁殖方式等。
3. 藻类植物鉴定：1. 根据藻类植物的形态结构、细胞特征等，参考藻类植物分类学资料，对采集的藻类植物进行鉴定。
2. 记录鉴定结果，包括藻类植物的学名、门、纲、目、科、属、种等信息。
4. 藻类植物生长环境调查：1. 对采集藻类植物的水体环境进行观察和记录，包括水质、水温、光照、底质等。
2. 分析藻类植物的生长环境与水质、水温等因素的关系。
五、实验结果与分析1. 藻类植物观察结果：1. 观察到藻类植物种类繁多，形态各异，包括单细胞、群体和多细胞藻类。
2. 部分藻类植物具有类似高等植物的根、茎、叶结构，如水绵、丝藻等。
3. 部分藻类植物具有特殊繁殖方式，如轮藻的精囊、卵囊等。
2. 藻类植物鉴定结果：1. 采集到的藻类植物样本共鉴定出10种，包括蓝藻、绿藻、硅藻、金藻等。
2. 其中，蓝藻门的颤藻、绿藻门的衣藻、硅藻门的硅藻等是常见种类。
藻类试验总结报告范文(3篇)
第1篇一、试验背景随着全球气候变化和环境污染问题的日益严峻，生物能源的开发和利用成为了缓解能源危机和减少温室气体排放的重要途径。
藻类作为一种高效的光合生物，具有生长周期短、生物质产量高、CO2吸收能力强等特点，被广泛认为是一种极具潜力的生物能源。
为了探索和优化藻类生物能源的生产技术，我们开展了本次藻类试验。
二、试验目的1. 探究不同藻类品种的生长特性和生物量积累情况。
2. 评估不同光照强度、温度、营养盐浓度等环境因素对藻类生长的影响。
3. 优化藻类培养条件，提高生物量产量和油脂含量。
4. 研究藻类培养过程中的水质变化，为水质管理提供依据。
三、试验材料与方法1. 试验材料- 藻类品种：小球藻（Chlorella pyrenoidosa）、绿藻（Chlorophyta）、蓝藻（Cyanobacteria）等。
- 培养基：BG-11培养基。
- 光照设备：LED光源。
- 温度控制器：水浴恒温箱。
- 营养盐：硝酸钾、磷酸二氢铵等。
- 分析仪器：分光光度计、质谱仪、气相色谱-质谱联用仪等。
2. 试验方法（1）藻类培养将藻类种子接种到BG-11培养基中，置于光照强度为200-800 μmol·m²·s⁻¹、温度为25-30℃的条件下培养。
（2）环境因素试验分别设置不同光照强度、温度、营养盐浓度等环境因素，观察藻类生长情况。
（3）生物量测定通过称重法或体积法测定藻类生物量。
（4）油脂含量测定采用索氏抽提法提取藻类油脂，并通过气相色谱-质谱联用仪分析油脂成分。
（5）水质分析定期检测培养液中的pH值、溶解氧、营养盐含量等指标。
四、试验结果与分析1. 不同藻类品种的生长特性通过对比试验，我们发现小球藻在生长速度和生物量积累方面表现最佳，其次是绿藻和蓝藻。
2. 环境因素对藻类生长的影响（1）光照强度：在一定范围内，光照强度越高，藻类生长速度越快。
但当光照强度超过一定阈值后，藻类生长速度反而下降。
藻类生长抑制试验课件
生态修复
通过藻类生长抑制试验，可以了解不同环境因素对藻类生长的影响，为生态修复 提供科学依据。
在水产养殖领域的应用
养殖水体质量监测
藻类生长抑制试验可以用于监测养殖水体的质量，评估水质 是否符合养殖要求。
饲料添加剂筛选
试验误差控制
保证试验的一致性
在藻类生长抑制试验中， 应保证试验条件的一致性， 包括温度、光照、pH值等， 以减小误差。
重复试验
为确保试验结果的可靠性， 应进行重复试验，并对结 果进行统计分析，以减小 误差对结果的影响。
标准化操作
在试验过程中，应遵循标 准化的操作流程，确保每 一步操作的准确性，以减 小误差。
为环境风险评估和化学品管理提供科 学依据。
试验原理
基于藻类生长速率测定
通过比较不同浓度的化学物质对藻类生长速率的影响，评估其抑 制作用。
荧光测定法
利用荧光光度计测定藻细胞内的荧光物质，从而快速、准确地测定 藻类生物量。
显微计数法
通过显微镜观察和计数藻细胞，计算藻类密度和生长率。
试验步骤
配置化学物质溶液
培养基
抑制剂
选择具有代表性的藻种， 如蓝藻、绿藻、硅藻等。
选择适宜藻类生长的培 养基，如BG-11、f/2等。
选择具有代表性的化学 物质或天然物质作为抑
制剂。
其他试剂
如无水乙醇、丙酮等。
试验设备
01
02
03
04
培养箱
用于培养藻类，控制温度和光 照。
分光光度计
用于测定藻细胞密度和光合作 用速率。
显微镜
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数据整理
藻类生物学实验
进行微藻培养时，可根据培养藻类对营养的要求，选用合适 的配方，在消毒水中按配方加入各种营养物质配成。所加肥料 应保持清洁，某些不清洁肥料必须消毒，预防敌害生物通过肥 料污染。
绿藻培养液配方：
①海洋三号扁藻培养液（海洋研究所，1960）：
NaNO3
0.1g
2Na3C6H5O7﹒ 11H2O 0.02g
1、实验材料：海带、 裙带菜、紫菜、小球藻、球等鞭金藻等,选4种藻 2、实验仪器：紫外分光光度计(208实验室) 3、实验器材：研钵（每组一套）、15ml离心管（每组4支-依藻种类定）、
15ml刻度试管（每组4支）、0.45m的滤膜（每组3个），抽滤装置， 离心机（或用20ml针管和滤膜器） 4、试剂：丙酮（分析纯）、MgCO3
碘液，常用的配方是：将6克的碘化钾溶于20毫升水中，待完全溶解后加入4克碘，摇 荡，待碘完全溶解后，加入80毫升蒸馏水，贮存在棕色试剂瓶内。）
（3） 计数板与盖玻片洗净擦干――盖好盖玻片――摇荡藻液――吸取藻液 （干的微吸管）――迅速加样――1分钟后低倍镜下计数－计数任何对角两大 格（加盖玻片后每一大格即形成一个体积为0.1立方毫米的空间），然后取其 平均值。每个样品须重复计数两次。
三、实验步骤
3、分离：镜检待分离的藻液，调藻液浓度为5-6个藻细胞为宜，在已灭菌 的载玻片上滴加6滴消毒培养液，另取一载玻片滴一滴稀释的待分离藻 液，在显微镜下用微吸管吸取所需的藻细胞，放在第一滴消毒水中，清 洗，再用微吸管吸取所需的藻细胞放在备有培养液的试管中。
4、将装有藻细胞的试管置于适宜的条件下培养。
三、实验步骤
1、抽滤： 减压过滤5ml的藻类培养液到玻璃纤维滤片上，约加0.1g MgCO3 细粉，使均匀覆盖于薄膜上，倒入水样抽滤，注意避免高温、强光及压力
水生生态系统藻类毒性实验
试验方法
1 水样的加工制备 利用滤膜在减压条件下过滤，以除去水样中原有的藻类生 物，在108kPa和121oC之下持续30min，高压处理水样， 杀灭水样中所有生物，以便测定水样中的全部营养。 2 藻类培养基的配制 分别取常量营养盐的每一种化合物储备液1mL和微量元素EDTA的混合液1mL加入去离子水中，定容至1000mL得标 准培养基，高压灭菌后分装三角瓶中备用。 3 藻类预培养 将事先准备的藻种移种至盛有培养基的三角瓶中，在试验 确定的温度和光强条件以及无菌条件下，培养2-3周，使 藻类达到同步生长阶段。用离心机离心收集培养物中的藻 细胞，去除上清液，在沉积的藻细胞中加入 10mLNaHCO3溶液（15g/L）使藻细胞悬浮于此溶液中， 再次离心，悬浮，再离心，悬浮，经此处理的藻悬浮物作 为试验藻接中原。
4 预备试验 目的在于探明毒物对藻类影响的半数有效浓度（EC50）的 范围，为正式试验打基础。 5 正式试验 (1) 试验浓度的选择 按等对数间距取5-7个毒物浓度，其中必须包括EC50并在 此浓度上下至少各设2个浓度，另设一个不含毒物的空白 对照。各浓度组均设3个平行样。 （2）种的制备和接种量 取上述达到同步生长的藻类培养液充分摇匀，取样计数细 胞密度后，用吸管转移相应体积的细胞悬浮液到受试水样 中。 （3）生物量的测定测定藻类生长的指标有多种，要考虑所 有相关的环境因素以及自己试验的目的和条件来选择指标
水生生态系统藻类毒性试验
不常用词解释
半对数坐标纸:横坐标或纵坐标轴是按照相等的指 数变化来增加的，（距离来说：如果每1cm代表 10的1次方增加，则坐标轴刻度依次为0，10， 100，1000，10000。。。。） 内插法:
实验原理
生物测试能够弥补化学和物理的检验的不足，目 前水生生态系统藻类毒理试验已经成为许多国家 对环境质量监测的标准方法之一而得到广泛应用， 影响藻类生长的主要因子包括阳光、二氧化碳、 温度、PH及氮、磷、微量元素等营养成分。水环 境中的这些生态因子的变化会刺激或抑制藻类的 生长，而导致水体初级生产力的变化。如果外来 有毒有害化学物质进入水体，藻类的生命活动就 会受到影响，生物量也随之发生变化。
原核生物和真核藻类实验
衣藻制片
衣藻可以在水中游动，故衣藻的形态在显微 镜下难以观察。等到装片的水慢慢减少之后， 一早的运动缓慢下来，此时观察到衣藻为游 动得的单细胞，球形，卵形，椭球形或宽纺 锤形。观察到衣藻的两条鞭毛。可以看到衣 藻位于中央的细胞核。
衣藻临时装片
鱼腥藻
鱼腥藻属的藻体是由许 多
鱼腥藻属和念珠藻属类似，二者 的主要区别在于：①本属的厚壁 孢子常大量在异形胞间形成，后 者仅形成少数厚壁孢子。②本属 群体无坚韧定形的总胶被，念珠 藻有。
栅藻
在观察临时制片的时候看到了这一段藻体，对比试验 教程，与栅藻的形态结构相似。故推测其为栅藻。
念珠藻
念珠藻属的单列细胞藻丝形态相似，由 公共胶质鞘将众多藻丝包裹在一起。 这张图片为本小组其他成 员把发菜（念珠藻）的叶 片打碎后在显微镜下观察 的样子，因为我和跟我一 起做实验的同学没有把其 打碎，没能观察到其中的 连成串的念珠状细胞。但 是本小组的另一个成员在 没有把其打碎的情况下也 看到了类似的结构，如下 图。小组讨论的结果是， 没打碎之所以能够看到， 是因为那个同学所取的材 料比较薄，可以透过显微 镜的光进行观察。
硅藻的运动
具有壳缝的硅藻可以运动，图示硅藻的相对位置发生了改变。实 验过程中观察了硅藻的运动过程。
海带
பைடு நூலகம்
本次试验观察海带的装片， 观察了海带的孢子囊。海带 的孢子囊在“叶片”的两面 产生，棒状，单室。使得 “叶片”的表面观具有深褐 色的斑块。
孢子囊
集星藻
本次实验中在观察 临时装片的时候， 找到了一个明显呈 立体结构的星形的 藻类，调节显微镜 的焦距后发现又是 另一个构型。询问 老师后知道，这是 集星藻。
螺旋藻
本实验制作了螺旋藻的临 时制片观察。
藻类生长抑制实验
藻类生长抑制实验
主要内容
一、实验目的与内容 二、实验原理 三、实验材料与方法 四、实验步骤 五、实验结果
ln N n ln N 1
tn t
1
ln N n ln N 1
tn t
1
式中： μ——藻类平均生长率；
t——培养时间，t1为起始时间，tn为终了时间；
N——藻类细胞生长量，N1为起始细胞数，Nn为 最终细胞数。 以不同浓度组中藻类生长率的下降比例与对数浓度作图， 可直接从图上读出EC50，再标明测定时间，如24 h EC50。也 可求出回归关系式，再算出EC50。
3. 需要明确受试化合物的理化特性，有针对性的进行实验。
思考与讨论
1.干扰藻类EC50正常测定的因素有哪些？
2.受试物质对藻类的生长在不同时期起的作用
有何 不同？有无促进作用？
表 2 实验记录表格
时间 24 h 48 h 藻类平均 生长率 对照 浓度1 浓度2 浓度3 浓度4 浓度5
根据直线内插法或概率单位图解法估算24h和48h藻类生长
受到抑制的EC50。
注意事项
1.在正式试验前必须进行必要的预试验。 2. 实验藻种的选择和预培养应注意：藻细胞大小均匀，颜色 鲜绿，处于对数生长期。试验开始3天内，对照组藻细胞浓 度至少应增加16倍。
长：①细胞计数；②测光密度；③测叶绿素含量。
推荐使用方法①和②。
2. 数据处理
将不同浓度试验培养液和对照培养液的藻细胞浓度与测
藻类细胞实验报告
一、实验目的1. 了解藻类细胞的基本结构和功能；2. 掌握藻类细胞实验的操作方法；3. 通过实验观察藻类细胞的结构和功能，加深对藻类细胞生物学知识的理解。
二、实验原理藻类是一类低等植物，广泛分布于地球上各种水体中。
藻类细胞具有独特的细胞结构，如细胞壁、叶绿体等，能够进行光合作用，是地球上重要的初级生产者。
本实验通过观察藻类细胞的结构和功能，了解藻类细胞的基本特性。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：小球藻（Chlorella pyrenoidosa）、盖玻片、载玻片、吸管、滴管、酒精灯、显微镜、盐酸、蒸馏水等。
2. 仪器：显微镜、酒精灯、载玻片、盖玻片、吸管、滴管、显微镜专用光源等。
四、实验步骤1. 藻类细胞制片（1）将小球藻从培养液中取出，用吸管吸取适量藻液，滴在载玻片中央；（2）用另一载玻片轻轻按压，使藻液均匀分布；（3）用盖玻片覆盖，确保藻液充满盖玻片与载玻片之间的空隙；（4）用酒精灯对盖玻片进行轻微加热，使藻细胞紧贴盖玻片。
2. 藻类细胞观察（1）将制片放在显微镜下，先用低倍镜观察藻类细胞的整体结构；（2）选择一个细胞，将其移至视野中央，转换为高倍镜；（3）观察藻类细胞的形态、大小、细胞壁、细胞核、叶绿体等结构；（4）观察藻类细胞的光合作用，记录细胞内气泡产生的情况。
3. 藻类细胞功能实验（1）将制片放在显微镜下，观察藻类细胞的光合作用；（2）用吸管吸取适量盐酸，滴在盖玻片的一侧；（3）观察藻类细胞在盐酸作用下的反应，记录细胞内气泡产生和消失的情况；（4）用吸管吸取适量蒸馏水，滴在盖玻片的一侧；（5）观察藻类细胞在蒸馏水作用下的反应，记录细胞内气泡产生和消失的情况。
五、实验结果与分析1. 藻类细胞结构观察在显微镜下观察到小球藻细胞呈球形，直径约为2-5微米。
细胞壁较厚，细胞核明显，位于细胞中央。
叶绿体呈绿色，分布均匀。
2. 藻类细胞光合作用观察在显微镜下观察到小球藻细胞在进行光合作用时，细胞内产生大量气泡，气泡逐渐上升并破裂。
实验七藻类观察及识别
– 取兰蓝色一小块材料，做水封片，注意将材 料用镊子在载玻片上分散开；镜检。
① 观察藻体外形特点与运动； ② 细胞构造：有无特殊细胞（死细胞与隔离盘特
点）；一般细胞（ 0.1%亚甲基兰染色观察）；
– 另取材料观察，加I2—KI溶液，观察蓝藻淀 粉。
蓝藻观察与操作
2.念珠藻属：发菜观察
试验材料
1. 云大校本部、翠湖、滇池、斗南花卉大棚种 植区沟渠水样等。
2. 观察材料：发菜、地木耳、满江红、水绵、 海带、紫菜等。
试验用具
• 显微镜 • 镊子、解剖针、载玻片、盖玻片、培养皿、
等
试验试剂
• 蒸馏水 • I2—KI溶液（染色绿藻真核与细胞质，淀粉
粒蓝色；染色蓝藻淀粉为红褐色） • 0.1%亚甲基兰水溶液（染色原核：中央质）
红藻
1. 多为多细胞丝状体或形成假薄壁组织旳叶 状体或枝状体；
2. 载色体1-多数，颗粒状；一般藻红素占优 势，藻体多呈红色；储红藻淀粉
3. 世代交替；无性与有性生殖（果胞子）
紫菜旳观察
①外形：紫菜旳藻体为单层或双层细胞构成旳叶状 体，基部有盘状固着器，无柄或有短柄。
②细胞形态： 直接取叶状体做水封片在显微镜下观察细胞形
微芒藻
盘星藻 星芒藻
盘星藻 栅藻
小环藻
针杆藻
绿藻门代表植物—水绵观察
a) 用镊子夹取少许水绵丝状体作水封片。
b) 观察：1.藻体形态，有无细胞分化；
c)
2.细胞构造：带状叶绿体，叶绿体上蛋白核；加
I2—KI溶液染色观察：细胞壁、叶绿体、细胞核、细胞质 丝、细胞质、蛋白核。
d) 观察难点是：细胞核与胞质丝。
水生生物学实验-PowerPointPresentat
放射虫
有孔虫
四、注意事项
1．制作草履虫临时装片时，应注意棉花纤 维
的使用量；观察时，避免长时间观察同 一
虫体。 2．观察食物泡、刺丝放散时，要注意试剂 的
添加量。
五、结果表述
1．掌握原生动物代表种类的形态结构； 2．掌握运动性强的微型动物的观察、实验 方
2．借助显微镜观察藻类个体形态，通过实验了解藻 类的特性。
三、实验准备
称取1克硝酸钾、0.25克氯化钾、0.25克硫酸 镁、0.25克磷酸二氢钾和0.2毫升1％的硫酸 亚铁，溶在盛有1000毫升蒸馏水的大烧杯里， 再倒入10克琼脂后加热，溶化后倒入试管备 用（约占试管的1／4）。为衣藻的采集和培 养做准备。
三、实验内容和步骤
1．沙蚕的外形观察，内部解剖和横切面玻片标 本的观察。
2．星虫的外形观察，内部解剖和横切面玻片标 本的观察。
3．沙蚕和星虫外形和内部结构的比较。
吻的分区：8区
背 面 观
辐 面 观
躯干部
疣足(parapodium） 单叶型：1个叶瓣1束刚毛 双叶型：2个叶瓣，背叶， 腹叶，背（触）须；腹（ 触）须。叶舌，刚叶 亚双叶型：背叶退化
方格星虫
四、思考题与作业
1．绘蚯蚓、沙蚕的横切面图。 2．总结环节动物门的主要特征。
小结
环节动物体长圆柱形或长而扁平，左右对称， 由前后相连的许多环节合成。有的有不分节的附肢， 即疣足；有的无附肢，而只有刚毛，以佐运动。体 腔多数明显。分布于海水、淡水和土壤中，少数寄 生。可分原环虫纲（例如角 虫）、毛足纲（例如 沙蚕、蚯蚓）和蛭纲（例如蚂蟥）三纲。其中沙蚕 等动物对水产养殖意义较大。
生物藻类实验报告结论
生物藻类实验报告结论引言藻类是一种重要的生物资源，在水生态系统中起到重要的生态功能。
通过对藻类的研究，可以更好地了解其生态特性、生物学特征及其与环境的相互关系。
本实验旨在探究不同环境条件对藻类生长的影响，以及这些环境因素对藻类生态系统的稳定性的影响。
结果在实验中，我们将藻类分别置于不同水质条件下进行培养，并记录其生长情况。
根据实验结果，发现不同环境条件对藻类的生长有明显的影响，具体如下：1. pH值：藻类对环境pH值的敏感度较高。
当pH值过高或过低时，藻类的生长明显受到抑制。
实验结果显示，较为适宜的pH范围为6.5-8.5，藻类在此范围内的生长速率较快。
而当pH值小于6.5或大于8.5时，藻类的生长明显受到限制。
2. 温度：藻类对环境温度的适应能力较强。
实验结果显示，藻类在不同温度下的生长速率有所差异。
较为适宜的生长温度范围为20-30摄氏度。
当温度过低或过高时，藻类的生长速率明显减慢。
3. 光照强度：藻类对光照强度的需求较高。
实验结果显示，藻类在较强的光照下生长较快，而在光照不足的条件下，藻类的生长受到限制。
适宜的光照强度范围为100-200 μmol/(m^2·s)。
分析与讨论通过对实验结果的分析与讨论，我们可以得出以下结论：1. 藻类在适宜的环境条件下生长较为迅速，而在不适宜的环境条件下生长速率明显减慢。
这说明藻类的生长受到环境因素的直接影响，且环境因素对藻类的影响程度不同。
2. pH值、温度和光照强度是藻类生长的重要环境因素，其中光照强度对藻类的影响最大。
光合作用是藻类生长过程中的主要能量来源，因此光照不足会导致藻类的能量供应不足，从而限制其生长。
3. pH值对藻类生长有较大影响。
pH值的变化会改变水体溶解氧浓度，进而影响藻类的呼吸作用和光合作用。
此外，pH值还会改变水体中的阳离子和阴离子浓度，从而影响藻类的离子平衡，进一步影响其生长。
4. 温度对藻类生长有较大影响。
不同温度下，藻类的生理代谢速率不同，从而影响其生长速率。
水生生态系统藻类毒性实验
实验原理
生物测试能够弥补化学和物理的检验的不足，目 前水生生态系统藻类毒理试验已经成为许多国家 对环境质量监测的标准方法之一而得到广泛应用 ，影响藻类生长的主要因子包括阳光、二氧化碳 、温度、PH及氮、磷、微量元素等营养成分。水 环境中的这些生态因子的变化会刺激或抑制藻类 的生长，而导致水体初级生产力的变化。如果外 来有毒有害化学物质进入水体，藻类的生命活动 就会受到影响，生物量也随之发生变化。
（3）生物量的测定测定藻类生长的指标有多种，要考虑所 有相关的环境因素以及自己试验的目的和条件来选择指标
常用的测试指标有：干重、光密度、细胞计数、叶绿素a 含量的测定（减压过滤一定体积的藻类培养液到玻璃纤维 滤片上，加入1mL的MgCO3悬浮液后将水抽滤干净，把滤片 放到一个组织研磨管内的底部，加入2mL的90%的丙酮，弱 光下淹没1-2min，再用5mL的90%的丙酮把残留的样品洗入 15mL的有螺旋盖的离心管中，离心（2000g）1-5min，静 置于暗处1-2h，是色素充分被抽提，离心，将上清液在分 光光度计上，用1cm的比色皿分别读取750、663、645和 630波长处的吸收率，并以90%的丙酮作对照校正吸光度， 依据P298的公式计算得叶绿素的浓度。）
3 藻类预培养 将事先准备的藻种移种至盛有培养基的三角瓶中，在试验 确定的温度和光强条件以及无菌条件下，培养2-3周，使 藻类达到同步生长阶段。用离心机离心收集培养物中的藻 细胞，去除上清液，在沉积的藻细胞中加入 1再0次mL离N心aH，C悬O3浮溶，液再（离15心g，/L）悬使浮藻，细经胞此悬处浮理于的此藻溶悬液浮中物，作 为试验藻接中原。
实验结果与报告
计算EC50设各组平行样品生物量的平均值分别为V空白,，V1 ，V2，V3，V4,，…，Vn，在半对数坐标纸上以受试毒物浓 度为纵坐标y，以（ V空白- Vn ）/ V空白为横坐标x，用内 插法计算生物量下降50%的毒物浓度，即相应时间段的EC50
藻类生物学实验海科
实验一大型海藻种类形态观察<4学时第八周）一、实验目的了解海洋藻类----大型海藻与微藻的形态与分类。
二、实验材料及用具1、实验材料：1）大型海藻标本<学院标本室）；2）海带孢子体<可用干海带泡发），江篱<海洋学院附近打捞）；<取一部分冻存于-20冰箱，作为叶绿素提取实验的材料）b5E2RGbCAP2、实验器材：显微镜、胶头滴管<每瓶藻一支）、盖玻片、载玻片、刀片<做海藻切片）。
4、试剂：70%乙醇<每组一瓶）三、实验步骤1、大型海藻标本观察；将标本馆的拉丁文名抄录下来，网上检索图片和分类。
2、海带的外部形态观察：藻体明显分为固着器、柄部和叶片，在叶片中央有两条平行纵走的浅沟，孢子体幼龄期叶面平滑，小海带期叶片出现凹凸现象，大海带期叶面则平直宽厚。
p1EanqFDPw3、海带的内部构造：①用徒手切片的方法，取一小块孢子体进行横切片，在显微镜下观察：孢子体的柄和叶均分为表层、皮层和髓部。
②同样取一小块孢子体进行纵切片，在显微镜下观察：表皮层由1-2层排列紧密的小细胞组成，外皮层细胞间分布1-2层粘液腔，其腔内有分泌细胞，髓丝细胞一端膨大为喇叭花，分生细胞位于叶片与柄之间。
DXDiTa9E3d4、江蓠的内部构造观察：①江蓠的纵切面。
②江蓠的横切面。
③江蓠囊果横切面。
5、紫菜的形态与构造：干紫菜先用水浸泡散开，再进行观察。
固着器：由根丝集合而成。
叶状体：由一层或两层细胞构成。
柄：叶状体基部与固着器之间的部分。
四、作业：1、绘制大型海藻图：选5个标本，注明拉丁文名，简要说明其生物学特性<利用拉丁文名进行网上检索）。
2、绘出海带和江篱的内部构造，紫菜的外形。
附1：江篱与海带的内部构造图1. 江篱藻体的内部构造A.藻体横切面观；B.藻体纵切面观；1表皮；2髓部细胞 3表皮细胞图2. 海带构造A.海带孢子体横切面；B.髓部，C.示喇叭丝；皮层部分横切面，示粘液腔道形成的时期；D.成体横切面，示粘液腔道；co皮层；e分泌细胞；hg藻丝；me髓部；m表面分生细胞；s分泌腔；v.b.f结合的喇叭丝RTCrpUDGiT实验二微型海藻形态观察和培养<4学时，第九周）一、实验目的观察几种重要经济微藻的形态特征，几种掌握单细胞微藻的实验室培养方法，细胞生长曲线观察。
藻类生物学特性及其在生物能源研究中的应用
藻类生物学特性及其在生物能源研究中的应用随着环境污染加剧以及化石能源日益枯竭，人们开始转向寻找更加清洁、可持续的能源替代方案。
生物质能源成为备受关注的新型能源，其中以藻类能源被认为拥有极高的发展潜力。
藻类作为一类植物，其生物学特性十分独特，这也为其作为生物能源的研究提供了许多有利条件。
藻类的生物学特性藻类是一类单细胞或多细胞的水生植物，存在于自然水体或人工培养条件下。
藻类具有以下生物学特性：生长速度快：藻类具有迅速繁殖的能力，生长速度非常快，比其他植物快很多。
有些藻类的生长速度可以达到每天增长1倍以上。
光能利用高效：在阳光照射下，藻类可以利用光能进行光合作用，将二氧化碳转化为有机物质，藻类的光合作用效率远高于陆生植物。
适应环境范围广：藻类能适应各种环境条件，如温度、水质等，因此在不同的水域和气候条件下均能生存和繁殖。
丰富的营养成分: 藻类富含蛋白质、脂肪、矿物质、维生素和生物活性物质等营养成分，是非常理想的食品原料和保健品材料。
藻类的应用前景藻类作为一种生物能源，其应用前景非常广泛。
目前，人们已经在藻类生物质能与生物油等方面进行大量的研究和开发，以下是具体的应用领域：生物能源：藻类作为生物质能、生物油等能源原料，具有极佳的转化效率和清洁能源的特点，已经成为生物能源领域一种重要的开发方向。
食品与保健品：藻类所含有的独特的营养成分，如多种维生素、蛋白质和微量元素等，因此广泛应用于人类的食品工业和保健品制造领域。
环保：藻类有着很好的净化效果，它们可以吸收废水中的营养盐及重金属等有害物质，以达到水质净化的目的，同时还对温室气体CO2的吸收起到了良好的效果。
其他领域：藻类还广泛应用于动物饲料、食品膳食工业、化妆品、药品等领域。
藻类在生物能源研究中的应用在生物能源领域中，藻类能源被普遍认为是一种高效、低污染、可持续的新型生物能源，目前已经成为许多科学家研究的焦点。
以下是藻类在生物能源研究中的应用：生物油制备：藻类通过光合作用将二氧化碳转化为有机物，随后可以通过湿法或干法气-固法等方式进行提取精制，最终得到藻类油。
藻类基础研究 指南
藻类基础研究指南藻类是地球上最重要的生物之一，它们在维持生态平衡和提供食物、能源等方面具有重要作用。
因此，藻类基础研究对于深入了解藻类的生物学特性、生态学功能以及应用潜力等方面非常重要。
以下是进行藻类基础研究的一些指南：1. 选择合适的藻种：根据研究目的选择合适的藻种，例如，如果研究目的是了解不同藻类的光合作用特性，可以选择不同种类的绿藻、蓝藻、硅藻等。
2. 培养条件：在实验中，需要为藻类提供适宜的培养条件，例如光照、温度、pH值、营养盐等。
同时，还需要注意避免污染和交叉污染。
3. 形态学观察：观察藻类的形态特征，例如细胞大小、形状、鞭毛等，可以使用显微镜或流式细胞仪等设备进行观察。
4. 生理学特性：研究藻类的生理学特性，例如光合作用、呼吸作用、氮固定等，可以通过测定相关代谢产物或使用相关仪器进行检测。
5. 生化组成：研究藻类的生化组成，例如蛋白质、脂肪、碳水化合物等，可以了解其营养价值。
6. 基因组学和蛋白质组学研究：通过基因组学和蛋白质组学的研究，可以深入了解藻类的生物学特性和生态学功能。
7. 生态学研究：研究藻类在生态系统中的作用，例如其在碳循环和氮循环中的作用，可以通过野外采样和实验室模拟实验相结合的方法进行。
8. 应用研究：了解藻类的应用潜力，例如其在生物能源、生物医药、水产养殖等领域的应用，可以为经济社会发展提供新的思路和途径。
9. 伦理和安全问题：在进行藻类基础研究时，需要注意伦理和安全问题，例如避免对环境和人类健康造成影响。
10. 文献综述：在进行藻类基础研究前，需要对相关文献进行综述，了解前人的研究成果和方向，避免重复研究。
总之，藻类基础研究需要多方面的知识和技能，需要不断学习和探索。
通过深入了解藻类的生物学特性和生态学功能，可以为人类社会的可持续发展提供新的思路和途径。
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二、实验材料及用具
1、实验材料：小球藻（500ml）、等鞭金藻、扁藻 2、实验仪器：可见分光光度计、显微镜（1部/组）、血球计数板（一个/
组）、电炉、灭菌锅、pH计、 500ml烧杯（1个/组）、胶头滴管（3支 /组）、 250ml锥形瓶（每组3个）、牛皮纸、细绵绳 3、试剂：蒸馏水、海水、碘化钾
碘液，常用的配方是：将6克的碘化钾溶于20毫升水中，待完全溶解后加入4克碘，摇 荡，待碘完全溶解后，加入80毫升蒸馏水，贮存在棕色试剂瓶内。）
5.E液 500 ml 1000倍
CuSO4.5H2O
0.0098 mg； ZnSO4.7H2O
0.022 mg
CaCl2.6H2O
0.01 mg； MgCl2.4H2O
0.180 mg
Na2MoO4.2H2O 0.0063 mg
A、B、D、E高压灭菌备用
（二）海水处理
沉淀 —— 砂池过滤 ——（抽滤）——灭菌（海水放于三角瓶 中，置于电炉上煮沸，可杀来一般细菌）
加入海泥抽出液20ml，效果更好。
硅藻培养液配方：
①艾伦-内尔森（Allen-Nelson）培养液{Allen，E.J.et al （1910）}：
A. KNO3
20.2g
纯水
100ml
B. Na2HPO4.12H2O 4.0g
CaCl.6H2O
4.0g
HCl（浓）
2.0ml
纯水
80ml
FeCl3（溶液） 2.0ml
K2HPO4
0.01g
Fe(SO4)3(1%溶液) 10滴
海水
1000ml
②亚心形扁藻培养液（湛江水产学院）：
NaNO3
0.05g
维生素B12
200mμg
KH2PO4(1%溶液) 0.005g
人尿
2ml
FeC6H5O7 0.2ml
维生素B1
200μg
海水
1000ml
培养亚心形扁藻及其他绿藻使用，多用于小型培养和中继培养，如能
实验一 微藻的培养基配制
一、实验目： 掌握微藻的培养基配制方法。 以海水单胞藻培养液通用配方“f/2”为例
二、实验原理 藻类的培养液必须具备藻类的生长繁殖所需要的各种营养元
素，并且营养盐的比例应该符合藻类生长繁殖的需要。不同种 类的微藻对营养盐的质和量的需求不同，各有其特殊性，因此， 制定某种微藻的一个培养液配方时，首先必须进行一系列的试 验，了解这该种藻类对营养的要求，并在使用中验证配方的效 果，加以改进，使配方达到更理想的水平。藻类对营养盐的需 求也有很多共同点，因而一些培养液配方（如F/2）可应用于多 种藻类的培养。
三、实验步骤
（一） F/2 (+ Si)培养基母液的配制（用去离子水配制） 1.A液 500 ml 1000倍 NaNO3 37.5 g; NaH2PO4 2.5 g
2.B液 500 ml 1000倍 Fe-EDTA 2.5 g (FeCl3 1.6 g + EDTA 0.9 g)
3.C液 500 ml 1000倍 Na2SiO3.9H2O 10 g
小球藻
扁藻
球等鞭金藻
1、血球计数板计数方法：
（1） 搅拌：由于藻类细胞在培养液中分布不均匀，所以在取产前必须进行 搅拌，搅拌后立即取样。 （2）固定、稀释：运动细胞需加碘液杀死才能计数。如细胞浓度过大，计数 困难，需把水样稀释到适宜的程度。（附：鲁哥氏液（Lugol‘s Solution）又称
三、实验材料及用具 1、器材 电炉；灭菌锅；pH计 500ml 试剂瓶（每组5个）； 玻棒、500ml烧杯、50ml容量瓶（每组一个）/牛皮纸、细绵绳 2、试剂： 蒸馏水、海水 各种试剂 NaNO3; NaH2PO4；FeCl3 EDTA；Na2SiO3.9H2O；盐酸硫铵素 (VB1) ；Biotin VH
培养液是根据培养液配方配制的。为了减少每次称量的麻 烦，固体的营养元素一般都配成母液（如浓缩1000倍的母 液），在使用时，只要吸取一定的量加入培养液中即成。主 要营养元素可以单项营养元素配成母液，也可以分成若干组， 每组2种或多种营养元素同配在一起。微量元素和辅助生长有 机物质也多种组合在一起，配成母液。在浓营养溶液中一般 生物因不能忍受而死亡。
4.D液 500 ml 1000倍
盐酸硫铵素(VB1) 5 mg (试剂 50 mg/ml取100 μl)
Biotin VH
0.025 mg (试剂 0.1 mg/ml取250 μl)
VB12
0.025 mg (试剂 0.25 mg/ml取100 μl)
先用维生素分别用纯水溶解混合，稀HCl将pH调到4.5~5.0，最后用纯水 稀释至1升。膜过滤后冰冻保存。
三、实验步骤 1、培养基配制：见实验一 2、接种：一般培养的接种量为1/3～1/5. 3、计数：分光光度计测定500nm（OD500）和750nm
（OD750）吸光值；细胞计数板计数。 4、每天测定一次，分别绘制以OD值和细胞绝对数目为纵坐
标、时间为横坐标的生长曲线，分析细胞数目与OD500和 OD750的相关性。 5、观察并描述微藻不同生长时期的特点
（三）F/2培养基配制
1000 ml (1升) F/2 (+ Si)培养基 = 1000 ml (1升)过滤灭菌海水 + 1ml A 液 + 1ml B液+ 1ml D液+ 1ml E液 (+ 1ml C液)
注意：煮沸的海水放置凉后（50度以下）再加母液，否则会出现沉淀。
实验二 单细胞藻类的培养
一、实验目的
B液的配制法：先把氧化钙4g溶解于40ml纯水中。另外把磷酸氢二钙4g溶
解于40ml纯水中，再把三氯化铁溶融液2ml，缓慢滴入，摇动，产生白色
沉淀，加热，缓慢滴入浓盐酸2ml，沉淀的白色沉淀即重新溶解。把以上两
溶液混合。
使用时，取A液2ml和B液1ml，加入1000ml海水中，充分Байду номын сангаас合后加热消毒，
消毒后静置24h，然后将上层清夜倒出使用。
进行微藻培养时，可根据培养藻类对营养的要求，选用合适 的配方，在消毒水中按配方加入各种营养物质配成。所加肥料 应保持清洁，某些不清洁肥料必须消毒，预防敌害生物通过肥 料污染。
绿藻培养液配方：
①海洋三号扁藻培养液（海洋研究所，1960）：
NaNO3
0.1g
2Na3C6H5O7﹒ 11H2O 0.02g