GenePharma shRNA表达载体使用说明书

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pAAV-tTS-shRNA使用说明

pAAV-tTS-shRNA使用说明

pAAV-tTS-shRNA编号载体名称北京华越洋VECT76042pAAV-tTS-shRNApAAV-tTS-shRNA载体图谱:pAAV-tTS-shRNA载体相关的哺乳动物表达载体:SuperCos I pDsRed2-Bid pNFκB-MetLuc2-Reporter pYr-adshuttle-3pAcGFP1-N1pEF1α-IRES-DsRed-Express2 pVitro2-neo-mcs pSecTag2A pCMV-DsRed-Express2 pUB6/V5-His/LacZ pGL4.27pcDNA3.1/NT-GFP-TOPO pUB6/V5-His C pGL4.26pEF1α-IRES-ZsGreen1 pUB6/V5-His B pACT pCMV-Tag2ApUB6/V5-His A pBIND-Id Control pCMV-Tag5BpTracer-CMV2pTRE2pAcGFP1-C In-Fusion ReadypSV-β-Galactosidase pRevTRE p3XFLAG-CMV-14pSI pTK-hyg p3XFLAG-CMV-8pSG5pTRE3G-Luc pFLAG-CMV-2pSFV1pSwitch pcDNA3.3-TOPOpSecTag2/Hygro A pcDNA4/His C pcDNA6.2/cLumio-DESTpSecTag B c-Flag pcDNA3pCMV-tdTomatopRluc-N2pcDNA4/TO/Myc-His A pAcGFP1-MitopPICZalpha D pcDNA6/myc-His B pAcGFP1-N In-Fusion Ready pORF-lacZ pcDNA6/V5-His B pDsRed-Monomer-N In-Fusion Ready pORF-HSV1tk pcDNA6.2/nTC-Tag-DEST pcDNA4/TO/Myc-His BpOG44pOptiVEC-TOPO pIRES2-EGFPpNTAP-B pcDNA5/FRT pcDNA3.1/His CpMEP4pGL4.30pcDNA3.1/CT-GFP-TOPOpLVX-ZsGreen-miRNA-Puro pGL4.19pEF1α-IRES-AcGFP1pLVX-IRES-Puro-3xFlag pACT-MyoD pcDNA3.2/V5/GW/D-TOPO pLPCX pCMV-BD pcDNA4/TO/Myc-His/LacZ pLEGFP-N1pCMV-Tet3G pcDNA4/HisMax-TOPOpKH3pTet on advanced p3XFLAG-CMV-13pIRES-puro2pTRE-Tight p3xFLAG-CMV-10phRL-TK pIND pFLAG-CMV-3pG5lac pGene/V5-His B pcDNA4/TO/Myc-His CpFR-luc pOPRSVI pcDNA6.2/C-YFP-DESTpEF6/myc-His C pcDNA4/HisMax A pcDNA6.2/cTC-Tag-DESTpEF4/V5-His A pIRESpuro3pcDNA6.2/nGeneBLAzer-DESTpEF1/myc-His lacZ pIRESneo3pCRE-MetLuc2-ReporterpEF1/myc-His C pIRESneo2pEF1α-DsRed-Express2pEF1/myc-His B pcDNA4/myc-His A pDsRed-Express-C1pEF1/myc-His A pCMV-PKA pEF1α-DsRed-Monomer-N1 pECFP-Mito pAcGFP1-N3pDD-AmCyan1ReporterpECFP-ER pcDNA5/FRT/TO pCRE-DD-AmCyan1pDP8rs pBApo-CMV-Pur pIRES2-DsRed-Express2pDP5rs pBApo-EF1α-pur pDsRed-Express-N1pDP4rs ptdTomato-N1pcDNA6.2/nLumio-DESTpDP3rs pAcGFP1-Golgi pcDNA6/myc-His ApDP2rs pAcGFP1-p53pcDNA6/V5-His ApDP1rs pAcGFP1-Actin pcDNA5/FRT/TO-TOPOpCMV-Myc-C pBI-CMV2pcDNA6.2/V5/GW/D-TOPOpCMV-HA-N pEF1α-tdTomato pcDNA6.2/cGeneBLAzer-DEST pCMV-HA-C pEF1α-tdTomato pcDNA6.2/nGeneBLAzer-GW/D-TOPO pCMV6-XL4pEBVHis A pcDNA5/TOpCMV6-AC-GFP pGL4.10pBApo-CMV-neopCMV5pGL4.29pDsRed-MonomerpCI pGL4.13pIRESpCGN pG5luciferase pIRES-hrGFP-1apcDNA6.2/EmGFP-Bsd/V5-DEST pCMV-AD pDsRed-Express2-N1pcDNA4/V5-His A pRevTet-Off pCMV-Tag3BpcDNA3-mRFP pTet-Off pCRE-hrGFPpcDNA3-CFP pTRE2-hygro pDsRED2-MitopcDNA3.1(+)/myc-His C pVgRxR pAcGFP1-FpcDNA3.1(+)/myc-His A pOPI3CAT pAcGFP1-C1pcDNA3.1(+)/CAT pBK-RSV pAsRed2-C1pcDNA3.1(-)/myc-His C pIRES2-DsRed2pAsRed2-N1pcDNA3.1/Zeo(+)pCMV-Myc pAcGFP1-LampcDNA3.1/Zeo(-)pCMV-Tag2C pAcGFP1-CpcDNA3.1/V5-His C pCMV-Tag5A pSEAP2-BasicpcDNA3.1/Hygro(+)pCMV-Tag3C pBI-CMV3pcDNA3.1/Hygro(-)p3XFLAG-CMV-7pNFkB-DD-tdTomatopcDNA3.1/GS p3XFLAG-CMV-9pcDNA3.1/His ApBS185CMV-Cre pFLAG-CMV-4pEBVHis BpBIND-GFP pBI-CMV4pGL4.75pBiFC-VN155(I152L)pcDNA4/His A pGL4.20pBiFC-CC155pcDNA4/myc-His B pCMV-SPORT6pBiFC-CrN173pcDNA4/HisMax C pCMV-SPORT6pBiFC-bJunVN155(I152L)pCMV-Tag4A pBINDpBD-p53pcDNA6/myc-His C pBD-NF-κBpBD-NF-kB pCMV-Tag2B pRevTet-OnpBC1pGRN145pTet-OnpAD-TRAF pCMV-MEK1pTRE3GpAD-SV40T pCMV-Tag3A pcDNA4/TOpAAV-ZsGreen-miRNA pCMVLacI pcDNA4/His BpAAV-tTS-shRNA pBI-CMV1pcDNA4/HisMax BpIREShyg3pEF1α-AcGFP1-N1pcDNA4/myc-His CpcDNA6/TR pCMV-LacZ pcDNA3.1/His BpDsRed-Express2-C1pCMV-Tag4B pcDNA6/V5-His CpBI-CMV5pCMV-Tag5C pCHO1.0pAmCyan1-C1plRES2-ZsGreen1pGL3-PromoterpAcGFP1-Mem p3XFLAG-CMV-7.1pCMV-MEKK1 pAcGFP1-C3pFLAG-CMV-5a pFLAG-CMV2 pTT5pBudCE4.1pAcGFP1-C2 pSEAP2-Control pREP4ptdTomato-C1 pIRES2-AcGFP1pBApo-CMV pCRE-DD-tdTomato pAcGFP1-Hyg-C1。

miRNA%20agomir%20使用操作手册pdf

miRNA%20agomir%20使用操作手册pdf

转染优化
优化转染效率是使得 miRNA agomir 活性最大化的 的最关键的一个因素之一,对每种转染试剂而言, 首先要确定一款最合适的转染试剂,主要看从以下 几点着手处理: 转染试剂的量 MicroRNA agomir 的量 转染时的细胞密度 转染时候的操作顺序 细胞与转染试剂/siRNA 复合物的接触时间
Mir-upTM B06001 2
agomir
OD
HPLC 纯化 干粉 在-20℃ 或者-80℃ 1 年,在-20℃或者-80℃
产品是准确分子量大小且经过特殊化学修饰的双链 agomir 分子。 经过 HPLC 纯化并测定 miRNA agomir 的 纯度>95% RNA oligo 在操作过程,如果有外源的核酸酶存在,RNA oligo容易发 生降解。在进行相关试验中,请带手套进行操作,尽量用无RNAase 污染的试剂,试管,移液枪和枪头。收到产品后尽快贮存在–20°C 或 –80°C环境中。 在最大转速为 4,000 X g 的低速条件下离心 EP 管, 让 miRNA agomir 聚 集在试管的底部。 1.轻轻的打开管盖. 2.1 OD加入DEPC水125 ul,配成20uM的储备液 3.柔和的用移液枪吹打储备液 5 次 4.根据具体用量情况分装,避免多次冻融 5.在重新贮存的时候注意密封好 EP 管 6.贮存在-80°C,以备使用
MicroRNA agomir 的 重悬
MicroRNA agomir Product
MicroRNA agomir 介绍 agomir 是根据 microRNA 成熟体序列设计, 经过特殊标记与化学修饰的双链 小 RNA 分子,是用于模拟内源性成熟体 miRNA 序列。 agomir 包括一条与目标 miRNA 成熟体序列一致的序列, 以及一条与 miRNA 成熟体序列互补的序列。 特异的 MicroRNA agomir 能够被导入到表达对应 microRNA 的细胞内,模拟 microRNA 的作用, 或者与构建有 miRNA 结合位点的双荧光素酶报告系统结 合,验证 miRNA 与靶基因之间的调控关系。 miRNA 表达水平分析 为了分析 miRNA 的上调水平,miRNA agomir 可以被转染入细胞并通过 Northern blotting 检测 以及实时定量荧光 PCR 检测的方法进行功能验证。 靶基因表达水平分析 通过对转染 miRNA agomir 和阴性对照序列的细胞内 miRNA 靶基因进行实 时定量荧光 PCR 检测和 western blotting 检测,可以检测靶基因蛋白的表 达水平,验证 miRNA 与靶基因之间的调控关系。 miRNA3’UTR 靶位点验证分析 通过将一个或多个预测的 miRNA 3’UTR 结合靶位点构建到报告质粒上, 并 将 miRNA agomir 和报告质粒共转染细胞,agomir 可以抑制报告质粒上的 报告基因,从而可以直接检验 miRNA agomir 和 miRNA 预测结合位点之间 的作用关系。我们建议使用 miRNA agomir 阴性对照作为参照,阴性对照 的实验浓度,转染条件应与实验组相同。 转染程序 转染效率对不同的细胞株和不同的转染试剂是不同的。 最优的转染条件还是需要通过实验来确定。 我们建议优化时 miRNA agomir 的浓度范围可以放宽至 1-100nM 之间。 96 孔板 0.2-0.6 ul 3 pmol 6000 cells/well 0.1 ml 24 孔板 0.5-2 ul 15 pmol 40,000 cells/well 0.5 ml 12 孔板 1-3 ul 30 pmol 80,000 cells/well 1.0 ml 6 孔板 2-5ul 75pmol 200,000cells/well 2.5ml

RNAi-Mate转染试剂操作手册说明书

RNAi-Mate转染试剂操作手册说明书

目录号 C-01
产品说明 RNAi-Mate 转染试剂
规格 0.1mL
价格 ¥160
交货期限 2 个工作日
操作方法
一、体外转染方法 1. 细胞培养
可广泛应用于多种细胞系的DNA和siRNA转染。已成功地应用于多种代表各种来源的细胞类 型,包括 Hela(人宫颈癌细胞), MCF-7(人乳腺癌细胞), Hep3B(人肝细胞癌细胞), COS-7(猴肾细胞), Neuro-2a(鼠神经 母细胞瘤细胞),NIKS(人角质化细胞),C6(鼠神经胶质瘤细胞), DLD-1(人结肠癌细胞), NIH/3T3(鼠胚胎成纤维细 胞), HT-29(人结肠腺癌细胞), A549(人肺癌细胞), CHO-k1(仓鼠卵巢细胞)和293(腺病毒5 DNA转化的人胚胎 肾细胞), SVRbag4细胞。
3. 细胞出现明显死亡
问题 与细胞生存相关的关键基因被关闭
细胞状态欠佳
siRNA/RNAi-Mate(或DNA/RNAiMate) 复合物浓度过高
重新设计实验
建议
使用传代次数较低的细胞;细胞接种后在24小时内达 到70-90%,并在24小时内完成转染
siRNA/RNAi-Mate(或 DNA/RNAi-Mate)浓度过高 时,有时也会产生毒性
4.悬浮细胞转染程序 本程序适用于使用24孔板悬浮细胞的转染。选用生理状态良好的细胞对提高转染效率很重要。 siRNA(DNA)和DNA的用量和两者的比例可在推荐范围内适当调整。 4.1 转染的当天,收集细胞离心,重悬。 4.2 在50μl的DMEM(或Opti-MEM, 或其他无血清培养基)无血清培养基加入20pmol siRNA(或 0.8μg DNA), 柔和混匀。 4.3 混匀RNAi-Mate试剂,用50μl无血清的DMEM或Opti-MEM,或其他无血清培养基)稀释 1μl RNAi-Mate试剂(DNA转染时,则加入2μl RNAi-Mate试剂),轻轻混匀,室温放置5分钟。 4.4 将稀释好的siRNA和RNAi-Mate试剂混合;轻柔混匀,室温放置20分钟,以便形成siRNA/RNAiMate(或DNA/RNAi-Mate)复合物。 4.5 将100μl siRNA/RNAi-Mate(或DNA/RNAi-Mate)复合物加到含有细胞和培养基的培养板的孔 中,来回轻柔摇晃细胞培养板。 4.6 再加入400μL细胞悬浮液(细胞数量决定于细胞类型和转染后分析测试的时间)。 4.7 细胞在37℃温育24h-48h后进行转染后的其它步骤。如果细胞株比较敏感,孵育4-6小时后,除去 复合物,更换培养基。

靶向表皮生长因子受体shRNA表达载体的构建和鉴定

靶向表皮生长因子受体shRNA表达载体的构建和鉴定

靶向表皮生长因子受体shRNA表达载体的构建和鉴定【摘要】目的构建靶向表皮生长因子受体(EGFR)的短发卡状RNA(shRNA)质粒表达载体并进行鉴定。

方法①根据人类EGFR的mRNA序列,设计4条干扰片段,以PGPU6/GFP/Neo质粒为载体,构建shRNA重组体,转化入DH5a大肠杆菌,提取质粒,进行酶切和测序鉴定;②采用脂质体Lipofectamin 2000分别转染人皮肤鳞状细胞癌细胞株Colo-16细胞,用G418筛选阳性克隆。

结果①经酶切及测序鉴定,成功构建了针对EGFR的4个重组干扰质粒;②成功转染Colo-16细胞,经筛选后得到稳定表达的细胞克隆。

结论利用RNAi 技术原理成功构建针对EGFR的shRNA重组质粒,并转染入Colo-16细胞。

【关键词】表皮生长因子受体;RNA干扰;短发卡状RNA;转染Abstract:Objective To establish and identify the plasmid expression vector encoding short hairpin RNA (shRNA) targeting epidermal growth factor receptor (EGFR) of human gene. Methods ①Four short hairpin RNAs (shRNA) were designed according to the homo sapiens EGFR mRNA ID, and then recombinant shRNA was reconstructed, with PGPU6/GFP/Neo plasmids as vectors, respectively. The plasmids were transferred into E. coli DH5αfor plasmid extraction and the subsequent identification by enzyme digesting and sequencing. ②Four recombinant plasmids were transfected into Colo-16 cells with lipofectamine 2000 and were screened for positive clones by G418. Results ①The results of enzyme-digestion sequencing confirmed that four plasmids containing shRNA were successfully constructed. ②Four recombinant plasmids were successfully transfected into Colo-16 cells and the cell clones with stable expression were obtained. Conclusion With RNAi technology, the recombinant shRNA plasmids targeting EGFR were successfully established and transfected into Colo-16 cells.Key words: epidermal growth factor receptor; RNA interference; small hairpin RNA; transfection表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor,EGFR)属于表皮生长因子家族[1] (erbB家族),为原癌基因C-erbB(HER-1)的表达产物,是一种细胞膜表面的糖蛋白受体,它与表皮生长因子(epidermal growth factor,EGF)、转化生长因子(transferring growth factor ,TGF)等配体结合,能激活酪氨酸激酶受体,导致酪氨酸残基的磷酸化,促进细胞无节制地增殖分裂,导致恶性肿瘤的发生[2]。

吉玛重组腺病毒操作手册说明书

吉玛重组腺病毒操作手册说明书

如有疑问欢迎垂询上海电话:************-8009苏州电话:*************-8042E-mail:************************** E-mail:************************吉玛重组腺病毒操作手册GenePharma Recombinant Adenovirus Operation Manual2017 年 6 月如有疑问欢迎垂询上海电话:************-8009苏州电话:*************-8042E-mail:**************************E-mail:************************目录一、产品简介 (4)二、腺病毒载体优势 (4)三、生物安全性 (5)3.1安全性 (5)3.2实验室安全措施 (5)四、流程描述 (6)五、材料与仪器 (7)5.1实验材料 (7)5.1.1细胞株 (7)5.1.2质粒 (7)5.1.3试剂 (8)5.2实验耗材及仪器 (8)5.2.1耗材 (8)5.2.2仪器 (9)六、具体步骤 (9)6.1细胞培养 (9)6.1.1活细胞计数 (9)6.1.2细胞株的冻存 (9)6.1.3细胞复苏 (10)6.1.4细胞传代 (10)6.2病毒包装 (10)6.3病毒收集 (11)6.4病毒扩增 (12)6.5病毒纯化 (12)6.6病毒重悬和保存 (13)6.7病毒滴度检测 (13)七、使用方法 (14)如有疑问欢迎垂询上海电话:************-8009苏州电话:*************-8042E-mail:************************** E-mail:************************重组腺病毒在细胞水平使用 (14)7.1病毒滴度复核(有限稀释法测定) (14)7.2靶细胞感染预实验 (16)7.3正式试验 (18)八、运输和储存 (18)九、常见问题及解决方案 (19)十、吉玛案例 (20)十一、附录 (21)如有疑问欢迎垂询上海电话:************-8009苏州电话:*************-8042E-mail:************************** E-mail:************************一、产品简介腺病毒(Adenovirus,Adv)是一种线性双链DNA 病毒。

双启动子shRNA真核表达载体的构建

双启动子shRNA真核表达载体的构建

双启动子shRNA真核表达载体的构建娜仁;郭刚;张瑞;赵郁;汪蓓蕾;梁东春;杨宇虹【期刊名称】《天津医药》【年(卷),期】2010(038)010【摘要】目的:构建含有双启动子的shRNA真核表达载体.方法:通过PCR分别扩增带有BamH Ⅰ、EcoR Ⅰ酶切位点的人U6启动子序列(U6-B/E)和带有Bgl Ⅱ、HindⅢ酶切位点的人U6启动子序列(U6-B/H),用BamH Ⅰ与EcoRⅠ双酶切pcDNA3.1(+)与PCR产物U6-B/E后进行连接,重组质粒命名为psPRO.再用BglⅡ与HindⅢ双酶切psPRO与PCR产物U6-B/H后进行连接,构建含有双启动子的shRNA真核表达载体.结果:酶切鉴定以及DNA测序结果显示载体构建成功.结论:构建双启动子的shRNA真核表达载体,使其在细胞中表达2个不同的siRNA,不仅筛选方便,而且可以通过建立这种模式化工具载体,为今后RNA干扰实验研究的开展和深入提供手段.【总页数】3页(P840-842)【作者】娜仁;郭刚;张瑞;赵郁;汪蓓蕾;梁东春;杨宇虹【作者单位】300070,天津医科大学代谢病医院内分泌研究所,卫生部激素与发育重点实验室;300070,天津医科大学代谢病医院内分泌研究所,卫生部激素与发育重点实验室;300070,天津医科大学代谢病医院内分泌研究所,卫生部激素与发育重点实验室;天津医科大学生化教研室;300070,天津医科大学代谢病医院内分泌研究所,卫生部激素与发育重点实验室;300070,天津医科大学代谢病医院内分泌研究所,卫生部激素与发育重点实验室;天津医科大学生化教研室【正文语种】中文【中图分类】R3【相关文献】1.NSE启动子调控的pNSE-IRES2-EGFP-p27双顺反子真核表达载体的构建及表达分析 [J], 朱舟;陈华先;徐逸;张强;陈晨;王伟2.NF-κB启动子调控的pNF-κB-IRES2-EGFP-p27 双顺反子真核表达载体的构建及表达分析 [J], 徐逸;朱舟;吴轲;曾宁;田学俾;陈忠华3.肿瘤特异性Survivin启动子驱动的FAK shRNA真核表达载体的构建 [J], 孙昊;韩少山;周振宇;宋涛;刘青光4.GFAP启动子调控的双顺反子真核表达载体pGFAP-IRES2-EGFP-p27的构建及表达分析 [J], 朱舟;徐逸;田学愎;潘邓记;谢敏杰;王伟5.MDR1启动子调控的双自杀基因真核表达载体的构建及其在K562/A02细胞中的表达 [J], 王向玲;纪春岩;马道新;赵建强;侯明;余海青;臧绍蕾因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

吉玛RNA手册

吉玛RNA手册

THE RNAi COMPANYRNAi 产品使用手册上海吉玛制药技术有限公司Shanghai GenePharma Co.,Ltd.Ⅰ. RNAi 简介 1A.RNAi 实验原理B.RNAi 实验流程C.RNAi 实验所需试剂D.上海吉玛 RNAi 相关产品Ⅱ. siRNA 设计7A. 哺乳动物siRNA 设计B. 上海吉玛 siRNA 产品特性C. siRNA oligo 技术数据Ⅲ. siRNA 对照9A.普通阴性对照B.荧光标记的阴性对照C.siRNA 阳性对照D. 转染试剂对照E. 避免off-target 对照Ⅳ. siRNA 转染10A.siRNA 转染的方法B.RNAi-Mate 转染试剂C.RNAi-Mate 适用的细胞类型D.转染前细胞培养E.RNAi-Mate:siRNA/DNA 比例F.贴壁细胞转染程序G.悬浮细胞siRNA 转染程序H.DNA 和siRNA 共转染细胞程序I.体内siRNA 导入方法J.siRNA 转染常见问题与建议Ⅴ. mRNA 水平RNAi 效果监测15A.siRNA 细胞转染条件优化B.Real-Time PCR RNAi 效果检测C.Real-Time PCR 结果分析Ⅵ. 蛋白质水平RNAi 效果监测20A.western-blot 原理B.western-blot 操作步骤C.western-blot 上样液的制备D.western-blot 常用试剂的配制Ⅶ. RNAi 实验常见问题解答22Ⅰ. RNAi 简介A. RNAi 实验原理RNA 干扰(RNA interfering,RNAi)现象是由与靶基因序列同源的双链RNA(double-stranded RNA,dsRNA)引发的广泛存在于生物体内的序列特异性基因转录后的沉默过程。

细胞中的核糖核酸酶III 家族成员之一的,dsRNA 特异性的核酸酶Dicer 将dsRNA 裂解成由21-25 个核苷酸组成的小干扰RNA (small interfering RNA,siRNA),随后siRNA 作为介导子引起特异性地降解相同序列的mRNA,从而阻断相应基因表达的转录后基因沉默机制。

STAT5ashRNA表达载体使用说明

STAT5ashRNA表达载体使用说明

STAT5a shRNA表达载体使用说明1998年,RNA干扰(RNAi)作为一项重大发现出现在基因组学领域。

但RNAi在哺乳动物细胞中容易引起细胞毒反应,要求新的阻断mRNA翻译的方法出现――短小的双链RNA序列(siRNA)干扰。

mRNA被siRNA破坏的机理很简单:通过Dicer酶作用,siRNA结合到被称为RNA诱导沉默复合物(RISC)的多体蛋白核酸酶复合物上。

siRNA的正义链与靶mRNA的同源性使该复合物结合于mRNA上,并将mRNA降解为小片段,实现哺乳动物模型中特定基因的表达沉默。

siRNA具有高效性和高度特异性,必将得到广泛应用。

STAT5(Signal Transducer and Activator of Transcription 5)――信号转导和转录激活因子5,是一种存在于细胞浆与酪氨酸磷酸化信号通道偶联的双功能蛋白,主要通过JAK/STATs信号途径完成信号转导,是STATs七个家族成员之一。

有STAT5a和STAT5b两种亚型,具有95%的同源性。

STAT5的活化与肿瘤的发生关系密切,ALL(急性淋巴细胞白血病)、AML(急性髓细胞白血病)等白血病均有JAKs,Stat1、3、5的活化,ALL以Stat5活化为主。

在Stat5活化的AML病例中,有部分只有STAT5b活化而无Stat5a活化。

另外,在各种人固体瘤和血液恶性瘤中,STAT蛋白(尤其是STAT3和STAT5)经常被过度活化。

因此,可将STAT蛋白家族做为肿瘤治疗的理想靶点,研究它们参与整个肿瘤细胞生长过程的调控机制,分析它们在细胞中的活化和抑制过程,为肿瘤的治疗提供新思路。

在细胞内诱导RNAi的最常规方法是合成双链RNA(dsRNA)的显微注射法和用短链发夹RNA (shRNA)表达载体的转染法。

采用特别设计的载体来表达shRNA比寡核苷酸技术有更多的优越性。

最显著的优点是载体表达的shRNA非常稳定,用带有启动子的载体可以使shRNA在细胞内长期表达。

靶向表皮生长因子受体shRNA质粒表达载体的构建和鉴定

靶向表皮生长因子受体shRNA质粒表达载体的构建和鉴定

靶向表皮生长因子受体shRNA质粒表达载体的构建和鉴定邬跃刚;曹政;吴相柏;魏亚元;霍磊;陶凯雄【期刊名称】《山东医药》【年(卷),期】2006(46)36【摘要】目的构建靶向表皮生长因子受体(EGFR)的短发卡状RNA(shRNA)质粒表达载体并进行鉴定.方法设计两个小分子干扰RNA(siRNA)序列,体外合成DNA 模板引物,与Pgenesil-1质粒构建成编码shRNA的表达载体,进行酶切鉴定和测序,再转染人大肠癌LoVo细胞,进行荧光摄像和G418抗性筛选.结果构建的质粒表达载体完全符合设计要求,转染成功的细胞在荧光显微镜下显示为绿色,G418可以筛选出阳性克隆.结论成功构建了编码EGFR-shRNA的质粒表达载体,并可以进行稳定筛选.【总页数】2页(P11-12)【作者】邬跃刚;曹政;吴相柏;魏亚元;霍磊;陶凯雄【作者单位】宜昌市第二人民医院,湖北,宜昌,443000;宜昌市第二人民医院,湖北,宜昌,443000;宜昌市第二人民医院,湖北,宜昌,443000;宜昌市第二人民医院,湖北,宜昌,443000;宜昌市第二人民医院,湖北,宜昌,443000;华中科技大学同济医学院附属协和医院【正文语种】中文【中图分类】R3【相关文献】1.靶向RhoA基因的shRNA质粒表达载体的构建与鉴定 [J], 李正伟;白云深;任宪盛;杨有庚2.靶向hVEGF165基因shRNA质粒表达载体的构建及筛选 [J], 王卫东;蒋立新;徐江平;陆兵勋3.靶向表皮生长因子受体shRNA表达载体的构建和鉴定 [J], 王慧;魏志平;刘彦群4.靶向survivin基因的shRNA质粒表达载体的构建 [J], 熊英;郭文5.靶向钠钾ATP酶α1亚单位shRNA质粒表达载体的构建与筛选 [J], 周蔚;徐忠伟;王凤梅;陈小义;呼文亮;徐瑞成因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

人端粒酶逆转录酶基因小片段干扰RNA慢病毒表达载体的构建及其在子宫颈癌caski细胞的表达

人端粒酶逆转录酶基因小片段干扰RNA慢病毒表达载体的构建及其在子宫颈癌caski细胞的表达

人端粒酶逆转录酶基因小片段干扰RNA慢病毒表达载体的构建及其在子宫颈癌caski细胞的表达赵红珂;莫凌昭【摘要】目的构建及鉴定携带沉默人端粒酶逆转录酶基因(human telomerase reverse transcriptase,hTERT)慢病毒(lentivirus,LV)表达载体,并观察其在子宫颈癌caski细胞的表达情况.方法以Designer3.0(Genepharma)软件设计靶向hTERT基因特异性的小片段RNA(shRNA)干扰序列,将hTERT-shRNA基因片段插入重组慢病毒pGLV3/H1/GFP+Pum,构建慢病毒表达质粒LV3-shRNA-hTERT,酶切、DNA测序验证hTERT片段准确性.LV3-shRNA-hTERT与包装质粒共转染293T细胞,浓缩上清液并测定病毒滴度获得重组慢病毒后感染caski细胞.将细胞分为空白对照组(未感染病毒的caski细胞)、阴性对照组(感染空载病毒LV3-shNC 的caski细胞)和hTERT干扰组(感染携带LV3-shhTERT慢病毒的caski细胞).绿色荧光蛋白(GFP)的表达判断转染结果并估计转染效率,流式细胞术仪检测病毒感染率,实时荧光定量PCR法(qRT-PCR)检测转染后基因hTERT mRNA的表达情况,CCK-8法检测caski细胞增殖情况.结果将目的序列成功连接到载体上,并经测序分析证实载体构建成功;成功包装成高滴度的慢病毒,且能有效感染子宫颈癌caski细胞.荧光定量PCR检测结果证实构建的hTERT-小片段干扰RNA慢病毒表达载体可显著抑制hTERT基因的表达.hTERT干扰组细胞增殖受抑制,生长速度较阴性对照组生长缓慢.结论成功构建了携带hTERT-shRNA慢病毒表达载体LV3-shRNA-hTERT,并稳定转染子宫颈癌caski细胞.该载体能够有效抑制hTERT的表达,使子宫颈癌caski细胞增殖缓慢,为进一步探讨hTERT基因在子宫颈癌的发病机制和体外基因干预治疗奠定基础.【期刊名称】《中国癌症防治杂志》【年(卷),期】2014(006)004【总页数】6页(P342-347)【关键词】子宫颈肿瘤;人端粒酶逆转录酶基因;慢病毒载体;小片段RNA;caski细胞【作者】赵红珂;莫凌昭【作者单位】广西医科大学研究生学院;530021 南宁广西医科大学附属肿瘤医院妇瘤科【正文语种】中文【中图分类】R737.33子宫颈癌是常见的女性恶性肿瘤之一,其发病率居于我国女性生殖系统恶性肿瘤的首位,发展中国的家的发病率高于发达国家[1]。

吉玛RNA手册

吉玛RNA手册

THE RNAi COMPANYRNAi 产品使用手册上海吉玛制药技术有限公司Shanghai GenePharma Co.,Ltd.Ⅰ. RNAi 简介 1A.RNAi 实验原理B.RNAi 实验流程C.RNAi 实验所需试剂D.上海吉玛 RNAi 相关产品Ⅱ. siRNA 设计7A. 哺乳动物siRNA 设计B. 上海吉玛 siRNA 产品特性C. siRNA oligo 技术数据Ⅲ. siRNA 对照9A.普通阴性对照B.荧光标记的阴性对照C.siRNA 阳性对照D. 转染试剂对照E. 避免off-target 对照Ⅳ. siRNA 转染10A.siRNA 转染的方法B.RNAi-Mate 转染试剂C.RNAi-Mate 适用的细胞类型D.转染前细胞培养E.RNAi-Mate:siRNA/DNA 比例F.贴壁细胞转染程序G.悬浮细胞siRNA 转染程序H.DNA 和siRNA 共转染细胞程序I.体内siRNA 导入方法J.siRNA 转染常见问题与建议Ⅴ. mRNA 水平RNAi 效果监测15A.siRNA 细胞转染条件优化B.Real-Time PCR RNAi 效果检测C.Real-Time PCR 结果分析Ⅵ. 蛋白质水平RNAi 效果监测20A.western-blot 原理B.western-blot 操作步骤C.western-blot 上样液的制备D.western-blot 常用试剂的配制Ⅶ. RNAi 实验常见问题解答22Ⅰ. RNAi 简介A. RNAi 实验原理RNA 干扰(RNA interfering,RNAi)现象是由与靶基因序列同源的双链RNA(double-stranded RNA,dsRNA)引发的广泛存在于生物体内的序列特异性基因转录后的沉默过程。

细胞中的核糖核酸酶III 家族成员之一的,dsRNA 特异性的核酸酶Dicer 将dsRNA 裂解成由21-25 个核苷酸组成的小干扰RNA (small interfering RNA,siRNA),随后siRNA 作为介导子引起特异性地降解相同序列的mRNA,从而阻断相应基因表达的转录后基因沉默机制。

HIF1α-shRNA表达载体的构建与鉴定

HIF1α-shRNA表达载体的构建与鉴定

HIF1α-shRNA表达载体的构建与鉴定HIF1α是一种重要的响应细胞缺氧的转录因子,参与了一系列细胞代谢和生存过程的调控。

因此,研究HIF1α的表达调控机制对于深入理解细胞生物学过程具有重要意义。

RNA干扰技术是一种有效的基因沉默方法,通过转染表达特定的shRNA序列可以降低目标基因的表达水平。

在本实验中,我们通过克隆HIF1α-shRNA序列到载体中,在细胞水平上验证其对HIF1α的抑制效果,为后续研究提供基础保证。

1. 载体构建我们选择pGPU6/GFP/Neo载体作为表达载体,该载体具有绿色荧光标记并带有慢病毒包装序列,适合于在细胞中稳定表达。

我们在载体中插入了针对HIF1α编码序列的shRNA 序列,并在该序列的末端添加了环状病毒MluI启动子和miR30e终止子。

所选shRNA序列如下:5'-GGTCCTGTGCTTCAACTAT-3'2. 载体鉴定为验证所构建的载体是否能在细胞中稳定表达HIF1α-shRNA,我们进行了荧光定量PCR检测和Western Blot分析。

2.1 荧光定量PCR检测我们在293T细胞中转染了HIF1α-shRNA载体和对照载体(不含shRNA序列)后,提取总RNA并进行反转录。

然后,利用荧光定量PCR技术检测HIF1α mRNA表达水平的变化。

结果显示,HIF1α-shRNA载体转染组的HIF1α mRNA表达水平较对照组显著降低,表明HIF1α-shRNA能有效沉默目标基因的表达(图1)。

2.2 Western Blot分析综上所述,我们成功构建了HIF1α-shRNA表达载体,并证实了该载体在细胞水平上能够有效降低H IF1α表达水平。

该表达载体可为研究细胞代谢和生存过程提供重要的工具和支持。

吉玛慢病毒使用手册(genepharma)

吉玛慢病毒使用手册(genepharma)

量法
Vg/ml
滴度
和操作要求高 倍 2
TU/ml(估计)
GFP 荧光计数 FACS(流式细胞 TU/ml
感染滴度 经典方法,简单、-

计数)
重复性好
抗性克隆计 细胞克隆计数 TU/ml
感染滴度 克隆形成需约 2 周 低估 5~10 倍 3
数法
Dot-blot 法 RNA dot-blot RNA/ml
Lentivirus 表达时间较长,但在一般代谢较旺盛的细胞(如 293T, BHK21 等)上,病毒感染 24hrs 后可以观察到 GFP 荧光;代谢比较缓慢 的细胞(如原代培养细胞,神经干细胞,胚胎干细胞等)GFP 蛋白表达 时间较长,感染后 72-96hrs 甚至更长时间才可以观察到 GFP 荧光。感染 后的细胞可以连续培养一周,通过观察 GFP 的表达时间和表达强度来确 定 Lentivirus 对目的细胞的感染情况。感染后期请根据细胞生长的情况对 细胞进行及时换液和传代,以保证细胞良好的生长状态。
生物安全
1、安全性 (1)删除了全部 HIV-1 的编码基因,在介导目的基因的表达时,没有任 何 HIV-1 蛋白的表达; (2)对 5’和 3’ LTR 分别进行了删除改造,5’LTR 缺失 U3,换上 RSV enhancer/promoter,使载体的复制不再依赖 Tat;3’LTR 删除 U3,使其不 再具有启动/增强活性,成为自灭活(self-inactivating, SIN)载体; (3)病毒包装必需的 3 个蛋白 Gag/Pol、Rev、VSV-G(代替 HIV-1 的 Env)分别独立放置在 3 个质粒上(pGag/Pol、pRev、pVSV-G),且互相 之间没有任何同源序列,大大降低了复制型慢病毒(RCL)的产生几率; (4)与 MuLV 等逆转录病毒载体相比,慢病毒载体的整合更偏向于宿主 细胞基因组的基因表达活跃区,激活沉默的原癌基因的几率可能比逆转 录病毒载体低; (5)慢病毒载体未发现有致肿瘤活性,全世界有 4 千万人感染了 HIV-1,

重组激活基因1shRNA慢病毒载体的构建与鉴定

重组激活基因1shRNA慢病毒载体的构建与鉴定

重组激活基因1shRNA慢病毒载体的构建与鉴定陈浩浩;周星娟;周婧;李一乔;韩曙;凌树才【期刊名称】《细胞生物学杂志》【年(卷),期】2009()5【摘要】构建3对针对大鼠海马神经元重组激活基因(Rag1)的RNA干扰重组表达载体及1对无关序列的载体,分别命名为shRNA1、shRNA2、shRNA3及negative。

经基因测序确认后,采用慢病毒载体系统分别包装4个载体,而后分别感染体外培养的大鼠原代海马神经细胞,收集感染后96h的细胞,通过免疫荧光观察细胞感染情况,并且利用RT-PCR和Western印迹检测Rag1mRNA及蛋白质的表达。

经测序鉴定合成的shRNA序列正确,并且慢病毒感染细胞效果良好。

LV-shRNA1组、LV-shRNA2组、LV-shRNA3组与正常对照组相比,Rag1mRNA表达都明显减少(P<0.01),其中LV-shRNA3组的抑制效率最高为(76.4±3.5)%,Western印迹结果与其基本一致,而LV-negative组对Rag1mRNA及其表达的蛋白质都无明显影响。

实验结果表明,我们成功构建了能特异性抑制大鼠海马神经元Rag1表达的shRNA慢病毒表达载体。

【总页数】6页(P671-676)【关键词】重组激活基因1;神经元;shRNA;RT-PCR;Western印迹【作者】陈浩浩;周星娟;周婧;李一乔;韩曙;凌树才【作者单位】浙江大学医学院人体解剖与细胞生物学系【正文语种】中文【中图分类】Q782;S852.659.6【相关文献】1.MHC Ⅱ类转激活因子基因的重组腺病毒载体的构建 [J], 张敏敏;杨骅;金晶;吴红玉;李兆申2.携带小鼠信号转导子及转录激活子3重组慢病毒载体的构建与鉴定 [J], 杨华安;张扬;杨钰兴;胡溯;苟欣3.p38丝裂原激活蛋白激酶基因重组慢病毒载体的构建及其在建立人前列腺癌稳定细胞株中的应用 [J], 荆玉明;李红卫;罗杰;张艳玲;陈三三;万沛;颜仁和;王宏昌;陈白虹;谭万龙4.晚期内含子/溶酶体适配子和促分裂原活化蛋白激酶以及哺乳动物重组雷帕霉素激活物分子 2 基因的 RNA 干扰慢病毒载体的构建及其对巨噬细胞中炎性因子分泌的影响 [J], 伍婷; 徐方明; 苏丛; 刘艳艳; 兰燕虎; 李家斌因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

吉玛基因 RNA FISH 试剂盒 (细胞爬片) 说明书

吉玛基因 RNA FISH 试剂盒 (细胞爬片) 说明书

股票代码:430601 如有疑问欢迎垂询上海电话:021-******** E-mail :**********************苏州电话:0512-******** E-mail :************************ 吉 玛 基 因RNA FISH 试剂盒 (细胞爬片)说明书B023-V002-20191025股票代码:430601一、检测原理RNA荧光原位杂交(fluorescence in situ hybridization),简称为RNA FISH,是一种重要的非放射性原位杂交技术。

它的基本原理是:用已知的荧光素标记单链核酸为探针,按照碱基互补配对原则,与待检测的RNA特异结合,二者经变性-退火-复性,即可形成靶RNA与核酸探针的杂交体,随后在荧光显微镜下对待测RNA 进行相对定性、定量或定位分析。

二、组分和保存条件成分容量(50 tests)储存Buffer A(TritonX-100)30 μl 室温Buffer C(20×SSC) 6 ml 室温Buffer E(杂交缓冲液)8 ml 室温Buffer F(Tween 20)50 μl 室温DEPC水 6 ml -20℃DAPI 15 μl -20℃三、试剂配制1.0.1% Buffer A配制:PBS 999 μl,Buffer A 1μl,且每次新鲜配制。

2.Buffer C母液为20×,用一级纯水稀释成4×、2×或1×使用。

3.0.1% Buffer F配制:4×Buffer C 999 μl,Buffer F 1 μl,且每次新鲜配制。

4.DAPI工作液:用PBS 按照1:1000稀释,需避光保存和使用。

注意:1.探针应避光稀释并保存,且实验过程中加入探针后的操作应在避光条件下进行。

2.实验过程中常用试剂,如多聚甲醛等请您自备。

3.探针配制方法及保存请参考探针使用报告。

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GenePharma shRNA 表达载体使用说明
RNA干扰实验设计
在使用载体法针对某一基因进行RNA干扰研究过程中,通常会遇到如下几个问题:实验对照组的确立、细胞转染条件的确定、基因抑制效率的检测。

1、实验对照组的确立
在一个完善的RNA干扰实验设计中,必须考虑设立正确合理的实验对照组。

通常,这些对照组包括阴性对照、阳性对照、转染试剂对照。

阴性对照可以有两种,一种是采用通用的阴性对照组,在本试剂盒中包括了该对照所需的载体(shNC),可以表达与目的基因序列无同源性的siRNA片段;另一种是将目的siRNA的序列打乱后重新组合所得的阴性对照(scrambled)。

阳性对照组的设立对于RNA干扰研究是很有必要的,尤其对于第一次接触RNA干扰的用户而言。

您可以利用阳性对照来确认RNAi实验中转染、RNA提取和基因表达检测方法的可靠性。

阳性对照通常采用已验证的对某些基因有效抑制的siRNA片段。

本试剂盒中包括针对人GAPDH基因的表达载体(shGAPDH),该载体在导入细胞中后,可以有效抑制GAPDH基因的表达。

上海吉玛还向用户提供其他的阳性对照以资选择,详细情况请参见本公司的产品目录或《RNAi产品使用手册》。

2、细胞转染条件的确定
使用DNA载体转染细胞时,为了选择合适的转染方法和确定转染效率,通常采用报告基因来检测DNA的导入情况。

最常用的报告基因是绿色荧光蛋白。

上海吉玛公司提供的shRNA表达载体有一部分载体中包含绿色荧光蛋白的表达框架,转入细胞后可以表达绿色荧光蛋白,是用荧光显微镜或流式细胞仪可以很容易的确定转染效率;如果您所定购的载体中不含绿色荧光蛋白的表达框架,您可以先使用可以表达绿色荧光蛋白的表达载体来确定转染效率和转染条件,然后使用同样的条件来转染shRNA表达载体。

还用一种方法可以用于确定转染条件,就是采用阳性对照载体来转染细胞(如shGAPDH),检测对照载体对基因的抑制效率,然后采用抑制效率较高时的转染条件来进一步转染shRNA表达载体。

3、基因抑制效率的检测
通常用两大类方法来检测RNA干扰对目的基因表达的抑制效率,一类方法是直接检测目的基因在不同水平如mRNA和蛋白水平的变化,具体的方法如qPCR和Western杂交等;另一类方法是通过检测目的基因的生物学效应和细胞效应来间接的反映目的基因的表达变化,这一类方法很多,不同的基因有不同的检测方法。

通常在有效片段筛选过程中多选用qRT-PCR和western杂交等方法直接检测目的基因的变化情况,可以很直观地反映基因的真实情况,不过也有一部分研究人员通过检测细胞效应如细胞增殖速率等指标间接反映基因变化。

RNA干扰实验操作
由于在RNA干扰实验中有多种条件选择如试剂和细胞株等,在本实验操作中以shNC为阴性对照,shGAPDH为阳性对照,RNAi-Mate为转染试剂,Hela细胞为实验细胞株,按照上述条件分步阐述RNA干扰实验的操作过程。

如果用户使用不同的细胞株和转染试剂,可根据吉玛公司的《RNAi产品使用手册》进行相应的调整。

1 转染条件的确定
如果您选用可表达绿色荧光蛋白的pGPU6/GFP/Neo或pGPH1/GFP/Neo载体,可以直接用这些载体来确定转染效率;如果选用其他载体,可用其他表达绿色荧光蛋白的载体来确定转染条件,或使用阳性对照载体如shGAPDH来去确定转染条件。

选用生理状态良好的细胞对提高转染效率很重要。

DNA 的用量及其与转染试剂的比例可在推荐范围内适当调整。

1、转染前一天,接种0.4-1.0×105细胞/孔至24孔板中,加入500μl含血清培养液,37ºC 5% CO2培养至40-70%融合。

2、在50 μl Opti-MEM I培养液或其它无血清培养液中加入0.5-0.8μg DNA,混匀。

3、使用前轻轻混匀RNAi-Mate试剂,切忌离心处理。

用30μl无血清的DMEM或Opti-MEM,或其他无血清培养基)稀释1-4μg RNAi-Mate试剂(可以分别设立DNA/RNAi-Mate的不同用量组,通常DNA 和RNAi-Mate的用量在1:2-1:5范围内,针对不同的细胞需要不同的用量),轻轻混匀,室温放置5分钟。

4、将稀释好的siRNA和RNAi-Mate试剂混合,定容到100μl;轻柔混匀,室温放置30分钟,以便形成siRNA/RNAi-Mate(或DNA/RNAi-Mate)复合物。

5、将100μl DNA/RNAi-Mate复合物加到含有细胞和培养基的培养板的孔中,来回轻柔摇晃细胞培养板板,使DNA/RNAi-Mate混合物均匀覆盖细胞。

6、细胞在CO2培养箱中37℃温育24h-48h后,进行转染后的其它检测步骤。

如果细胞株比较敏感,孵育4-6小时后,除去复合物,更换培养基。

7、如果使用可以表达绿色荧光蛋白的DNA载体来检测细胞的转染效率,细胞转染后24-48 h后,使用荧光显微镜观察计数表达绿色荧光蛋白的细胞,在明场观察计数同一视野中的总细胞数,转染细胞率=荧光蛋白表达细胞数/总细胞数×100%。

或使用DAPI等染料染核后,使用流式细胞仪进行计数,然后计算转染效率。

8、也可使用阳性对照的抑制率来标定转染效率。

例如使用shGAPDH来抑制细胞内GAPDH基因的表达,如果转染效率较高,shGAPDH对GAPDH基因的mRNA和蛋白水平的抑制率通常分别为50-90%和50-90%。

反之,如果shGAPDH对GAPDH基因表现出较高的抑制率,也表明细胞的转染效率较高,可以满足进一步实验需要。

9、如果在转染条件摸索实验中没有找到较高效率的转染方法,请更换转染方法和试剂。

如无其他方法选择,可以使用流式细胞仪将转染的细胞分选出来用于后续实验。

如果无法分选细胞,可以在计算RNA 干扰抑制效率时去除转染效率的影响,也可以使用抗生素对转染后的细胞进行初筛后再进一步检测抑制效率。

2 细胞的转染1、设定合理的实验组,包括转染试剂对照(mock transfection)、阴性对照(negative control)、阳性对照(positive control)和目的基因实验组。

2、按照前面实验确定的细胞接种量接种。

37ºC 5% CO2培养至40-70%融合。

3、按照前面实验确定的转染条件转染细胞。

如果需要转染不同培养量的细胞,试剂的用量可以根据本公司《RNAi产品使用手册》第9页和第13页所述进行相应的变化。

4、转染后24-48h后,收集细胞进行下一步的检测工作。

通常,目的基因在转染后24-48h内就会表现出表达抑制,但有一些蛋白比如稳定性较强、半衰期较长的蛋白在转染后含量降低比较缓慢,所以需要延长检测时间。

3 基因抑制效率的检测1、在本公司的《RNAi产品使用手册》(14页-19页)中较详细地介绍了使用荧光定量PCR技术和Western blot方法检测目的基因表达变化的操作步骤和注意事项,用户可以酌情选用。

2、用户也可选用其他间接的方法(如目的基因的生物学功能或细胞生物学特性的变化)来检测目的基因的抑制情况。

鉴于这方面的检测手段多种多样,需要用户自己进行选择,在此不再赘述。

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