3.抗菌药物的体内外活性评价方法
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2. Epsilometer Test
特点: 新 综合了定性(易操作)及定量的特点, 可从含药梯度条上能直接读出MIC值 费用高限制了其应用。
3.稀释法
MIC测定是将细菌与系列稀释的抗菌药物 共同孵育18-24h,观察能抑制细菌生长 的最低浓度 ,MBC则是在此条件下,使 受试菌99.9%被杀灭的最低药物浓度。 MBC测定需要进行菌落计数。 实验用细菌浓度:1~5×105 CFU/ml(colony forming units)
Response Surface Approach
三、 联合药敏测定方法 2. 时间-杀菌曲线法
药物联合应用效果时间-杀菌曲线示意图
联合药敏-- 杀菌曲线法结果判断
测定抗菌药物联用(24~48h)效果时应遵循以 下标准: 与活性最强的成分相比,每毫升CFU的常用对数 值下降≥2定义为协同; 与活性最低的成分相比,每毫升CFU的常用对数 值升高≥2定义为拮抗; 与活性最强的成分相比,每毫升CFU的常用对数 值下降>1且<2定义为相加; 与活性最低者相比,每毫升CFU的常用对数值升 高>1且<2为无关。
菌液浓度:0.5~2.5×103cfu/ml
二、时间-杀菌曲线法
将受试菌与一定浓度的抗生素共同孵育,在不 同时间点进行菌落计数,以时间为横坐标,细 菌数的对数值为纵坐标所绘制的曲线;可用不 同抗生素浓度绘制多条杀菌曲线,如1/4,1/2, 1,2,4倍MIC,杀菌曲线的斜率反应出药物对 细菌的杀灭速度。
药敏报告的临床意义
敏感(Sensitive S):表明该菌株所致感染, 用此药物正常剂量,除非存在禁忌症。
中介(Intermedium I): 此菌所致的感染可 以用此药,但需加大剂量。
耐药(Resistance R): 此菌所致的感染用 此药无效。
药敏试验折点的建立
MIC的分布 药代动力学和药效学 定 MIC的折点 临床疗效和细菌清除率 抑菌圈直径的分布 定 抑菌圈折点
曲线一般分为三个时相:延迟时、杀菌期 和恢复再生长期。可比较不同抗菌药物的 杀菌速度和持续时间。
杀菌曲线
通过杀菌曲线可以发现,在低于MIC值时, 杀菌曲线斜率为正值,随着药物浓度的 增加,斜率逐渐减小;当抗生素浓度为 MIC时,杀菌曲线有两种情况,一为曲线 斜率呈负值,另一为曲线近水平状,表 明前者有杀菌作用,为杀菌剂,而后者 则只是具有抑菌作用,为抑菌剂。
体内 :
– ED50(动物) – 临床有效率与细菌清除率 – 抗生素后效应 – 血清杀菌滴度(SBA)
一、药物敏感性实验测定方法 MIC/MBC测定
NCCLS:National Committee for Clinical Laboratory Standards Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI) 药物敏感试验:MIC测定
抗菌药物活性评价方法研究进展
山东省千佛山医院
孙淑娟
CONTENTS
抗菌药物敏感性实验测定方法
–MIC、MBC测定
杀菌曲线 联合药效测定
血清杀菌活性/滴度
抗菌药物对细菌形态影响研究进展
抗菌药物抗菌活性评价方法
体外:
– 药物敏感性实验
MIC/MBC测定
– 时间-杀菌曲线 – 联合药敏试验 – 抗生素后效应:PAE
抗菌药物分类---抗菌效果
抑菌剂 & 杀菌剂
1 0.9 0.8 0.7 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 0 1 2 Time(h) 3
Optical density
resistant bacteriostatic bacteriocidal
4
杀菌曲线
对于杀菌剂,随着浓度逐渐增加杀菌曲线 斜率的负值也逐渐加大,但当抗菌药物浓 度增加到一定程度后(如4MIC),再增加 其浓度又有两种可能,一则曲线斜率随之 增加,另一曲线斜率不在增加,前者杀菌 活性与浓度有密切关系,而后者杀菌作用 不完全依赖于抗生素浓度,分别称这两类 抗生素为浓度依赖性抗生素与浓度非依赖 性抗生素或时间依赖性抗生素。
杀菌曲线与抗菌药物PK/PD分类
9.5 9.5
9.5
LogCFU
8.5 7.5
8.5 7.5
8.5
7.5
6.5
6.5
6.5
control 1/4MIC
5.5 4.5
5.5 4.5
5.5
MIC 4MIC
4.5
16MIC 64MIC
3.5 2.5
3.5 2.5
3.5
2.5
1.5 0 2 4 6
1.5 0 2 4 6
纸片法:K-B法(定性法) 定量纸条法(E-test) 稀释法:常量法:试管稀释法(1-2ml) 微量法:肉汤稀释法(0.1-0.2ml): 肉眼观察、OD、MTT、XTT 琼脂稀释法
1. 纸片法(Disk Diffusion Assay)
又称K-B法(Kirby-Bauer):利用含一定浓度 抗菌药物的滤纸片贴附在涂布受试菌的琼脂平 板,孵育18-24h后,据抑菌圈的大小判定细菌 对抗生素的敏感性,该法简便,是临床抗菌药 物敏感性检测定wk.baidu.com的常用方法; 菌液浓度一般为104cfu/ml 。 抑菌圈直径解释标准。 报告(定性):针对抑菌圈直径测量值报告敏 感、中介、耐药。 影响因素:琼脂成分、孵化温度、细菌接种量、 抗菌药物纸片含量。
–统计学的线性回归 –计算错误率:尽可能减少极重要误差(假
敏感率)
MIC的局限性
体外抗菌药物敏感测定虽能反应抗菌药物 的抗菌活性,但只表明抗菌药物在其一定 浓度的活性,不能体现抗生素杀菌的动态 过程及不同浓度抗菌药物的抗菌过程。 多用于科研
MIC测定-稀释法 真菌
NCCLS M-27 A,CLSI M-27A 念珠菌 NCCLS M-27 A2,CLSI M-27A2 M38-A 霉菌
1.5 0 2 4 6 8
Tobramycin
Ciprofloxacin
Ticarcillin
Time(h)
三、 联合药敏测定方法
1. 棋盘法-微量稀释法
图2 棋盘法表现两药协同作用
联合药敏--棋盘法结果评价
通过计算联合分数抑菌浓度指数 (Fractional inhibitory concentration index,FIC),判断联合 用药的结果。 FIC指数=MICA药联用/MICA药单用+MICB药联用/MICB药单用
联合药敏--棋盘法结果评价
目前国际上已报道了多种借助计算机软件来进 行统计处理的模型法,如RSA(Response Surface Approach)法 BI理论的评价参数△E为真菌的理论生长率与 实际生长率之差,又称为生长率差值法(△E 法)。
Response Surface Approach
联合药敏测定方法
时间-杀菌曲线法
时间-杀菌曲线法可提供以下信息:
药物抗菌活性的速度和程度;
药效学参数(如浓度-效应关系及后效应); 抗菌药物联用时的药效关系(协同、拮抗、
相加或无关)。
四、血清杀菌活性/滴度
SBA:Serum Bactericidal Activity SBT: Serum Bactericidal Titer 方法:患者给药后一定时间(一般为峰浓度 时间)采血,测定能抑制细菌生长的最高血 清稀释倍数 样品:血样、胰液、肺泡液、尿液…. 国外应用情况 国内研究应用情况.
MIC测定方法及终点
MIC终点:
– 100%抑制,细菌 – 80%抑,真菌 – 50% 研究
肉眼观察 比浊(类OD) 比色:采用氧化-还原指示剂进行比色分析的终点判
读方法 噻唑蓝 (MTT) ,甲基四氮盐(XTT)。
结果影响因素
培养基及其所含阳离子(生理水平的 钙、镁离子影响氨基糖苷类的抗菌活 性、pH值、血清蛋白) 菌液浓度 培养温度与时间 观察与测定方法
血清杀菌活性/滴度
SBA与MIC的区别: 测定SBA的临床意义: 临床上对于一些难治性感染,如心内膜 炎、脑膜炎等,可以利用血清杀菌滴度 调整治疗方案,当SBA≧1:8时,对上述 难治性感染可获得较好的疗效。
五、抗菌药物对细菌形态影响 的研究方法进展
光镜:各种染色 电镜 激光共聚焦显微镜
FIC≤ 0.5 协同效应 FIC>05-1 相加效应 FIC>1-2 无关效应 FIC≥2 拮抗效应
联合抗菌作用
由于各种抗菌药物抗菌活性、抗菌谱不同, 在处理部分细菌感染时需要联合两种甚至 两种以上的抗菌药物。 有关抗菌药物联合作用的体外研究表明, 两种抗菌药物联合可以产生协同、相加、 无关与拮抗等四种结果。 一般杀菌剂与杀菌剂联合产生协同作用, 杀菌剂与抑菌剂联合产生拮抗作用。
白念
白色念珠菌.JPG
黑曲霉
THANKS